Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние острой экспериментальной гипоксии на мозговое кровообращение и вегетативную регуляцию сердечного ритма у человека

Диссертация: Влияние острой экспериментальной гипоксии на мозговое кровообращение и вегетативную регуляцию сердечного ритма у человека
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При освоении высокогорья, при высотных авиационных и космических полетах человек столкнулся с проблемой выживания в условиях пониженного содержания кислорода во вдыхаемом воздухе. Кислородная недостаточность лежит и в основе развития многих патологических состояний, например, нарастающее гипоксическое воздействие на миокард характерно для развития ишемической болезни сердца. Гипоксия — сильное… Читать ещё >

Влияние острой экспериментальной гипоксии на мозговое кровообращение и вегетативную регуляцию сердечного ритма у человека (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ОСНОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Гипоксия: определение и классификация
    • 1. 2. Кислородная недостаточность. Современные представления о влиянии гипоксии на организм
    • 1. 3. Компенсаторные и адаптационные реакции организма на гипоксическую гипоксию
    • 1. 4. Основы спектрального анализа сигналов. Вейвлет-преобразование
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Методика гипоксического воздействия
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Методика реоэнцефалографии
      • 2. 2. 2. Методика оценки центральной гемодинамики
      • 2. 2. 3. Методика оценки вегетативной регуляции сердечно-сосудистой системы
      • 2. 2. 4. Пульсоксиметрия
      • 2. 2. 5. Сфигмоманометрия
      • 2. 2. 6. Пневмотахография
    • 2. 3. Математический анализ результатов исследований
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Динамика мозгового кровообращения при воздействии острой гипоксии
      • 3. 1. 1. Изменение объемной скорости мозгового кровотока
      • 3. 1. 2. Изменение тонуса артерий
      • 3. 1. 3. Изменение тонуса вен
      • 3. 1. 4. Изменение величины сосудистого сопротивления
    • 3. 2. Динамика показателей центрального кровообращения при воздействии гипоксии
      • 3. 2. 1. Изменение ударного и минутного объема сердца
      • 3. 2. 2. Изменение частоты сердечных сокращений и кардиоритмограммы
      • 3. 2. 3. Изменение артериального давления
      • 3. 2. 4. Изменение насыщения гемоглобина кислородом
      • 3. 2. 5. Изменение частоты дыхания
    • 3. 3. Взаимосвязь между частотой дыхания и параметрами вариабельности сердечного ритма
    • 3. 4. Вегетативная регуляция сердечного ритма и пульсового давления при воздействии острой гипоксии
      • 3. 4. 1. Изменение вегетативной регуляции сердечного ритма и пульсового давления (преобразование Фурье)
      • 3. 4. 2. Изменение вегетативной регуляции сердечного ритма при гипоксии (вейвлет-преобразование)
  • Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Гипоксия — актуальнейшая проблема сегодняшнего дня. Любое патологическое состояние прямо или косвенно связано с нарушением кислородного гомеостаза организма, а смерть является его экстремальной формой. Инсульты, инфаркты, ишемические состояния различных органов, инфекционные заболевания — это лишь небольшой перечень тех патологий, в основе ге-неза которых леэюит гипоксия. Поэтому защита от гипоксии и ее последствий становится первостепенной задачей медицины, а проблема, связанная с этим, приобретает социальное значение.

Академик РАМН В. И. Покровский. (Проблемы гипоксии: молекулярные, физиологические и медицинские аспекты. — М., 2004.).

Актуальность проблемы.

При освоении высокогорья, при высотных авиационных и космических полетах человек столкнулся с проблемой выживания в условиях пониженного содержания кислорода во вдыхаемом воздухе. Кислородная недостаточность лежит и в основе развития многих патологических состояний, например, нарастающее гипоксическое воздействие на миокард характерно для развития ишемической болезни сердца. Гипоксия — сильное стрессовое воздействие на организм, ставящее под угрозу само его существование и вызывающее компенсаторные реакции на всех уровнях и во всех системах организма и, в первую очередь, — реакции, направленные на сохранение самого важного и самого чувствительного к недостатку кислорода органа — головного мозга. Для решения «первостепенной задачи» — «защиты от гипоксии и ее последствий» [Покровский, 2004], требуется более полное знание механизмов реакции организма на это воздействие. Важную роль, как в процессах краткосрочной компенсации, так и при адаптации к продолжительному воздействию гипоксии играет сердечно-сосудистая система (ССС). Ведущее значение в ее регуляции и в приспособлении функций ССС к гипоксическим условиям принадлежит вегетативной (автономной) нервной системе (ВНС) [Ноздрачев, 1991; Barak et al., 2001]. Поэтому исследование особенностей функционирования этих систем и механизмов их взаимодействия в условиях гипоксии представляет собой исключительный теоретический интерес и имеет первостепенное значение для практической медицины.

Согласно современным представлениям, ключевую роль в развитии связанных с гипоксией заболеваний играют клеточные биоэнергетические механизмы (митохондриальная дисфункция) [Лукьянова, 2003]. В то же время обеспечение индивидуальной резистентности и включение срочных компенсаторных механизмов при адаптации к гипоксии в значительной степени зависят от функционирования центральных механизмов регуляции, вносящих необходимую коррекцию в деятельность отдельных эффекторных систем организма [Сороко, 2004]. В частности, такая регуляция со стороны ВНС обеспечивает адекватное воздействию гипоксии кровообращение путем регуляции частоты сердечных сокращений (ЧСС) и величины пульсового давления крови [Cornolo et al., 2004]. Одним из важных механизмов адаптации организма к кислородной недостаточности является увеличение интенсивности мозгового кровотока [Kety, Schmidt, 1948; Cohn et al., 1974; Бурых и др., 2002], направленное на компенсацию падения уровня насыщения гемоглобина кислородом.

В настоящее время одним из основных методов изучения механизмов контроля ССС со стороны ВНС является анализ вариабельности сердечного ритма (ВСР) с помощью электрокардиографии (ЭКГ) [Task Force, 1996;

Рябыкина, Соболев, 2001; Баевский и др. 2002]. Об актуальности таких исследований свидетельствует быстрый рост числа отечественных и зарубежных публикаций, посвященных этой проблеме. В то же время стала очевидной необходимость разработки усовершенствованных пульсометрических систем кардиоскрининга, обеспечивающих одновременный анализ не только сердечного ритма, но и динамики пульсового прироста артериального давления (АД) крови. Именно такой сочетанный анализ двух основных характеристик пульса открывает перспективу более полного выявления роли и механизмов вегетативной регуляции системы кровообращения. Амплитудно-временной анализ динамики пульсового АД делает возможным раннее донозо-логическое обнаружение функциональных изменений, происходящих в миокарде и кровеносных сосудах при воздействии на организм неблагоприятных факторов, в том числе гипоксической (дыхательной) гипоксии, а эти изменения' могут предшествовать нарушениям, выявляемым с помощью ЭКГ. При изучении реакций организма на кислородную недостаточность была экспериментально установлена адекватность модели острой дыхательной гипоксии для выявления механизмов компенсации и адаптации организма человека к этому воздействию [Малкин, Гиппенрейтер, 1977; Сороко, Димаров, 1994]. Учитывая изложенное, перед нами была поставлена задача исследовать особенности мозгового кровообращения, а также использовать возможности пульсометрического метода регистрации и анализа параметров вегетативной регуляции сердечного ритма при развитии острой гипоксии, возникающей под воздействием гипоксических газовых смесей с 8-процентным содержанием кислорода в азоте.

Цель и задачи исследования

.

Основной целью работы являлось изучение влияния острой нормоба-рической гипоксической гипоксии на мозговое кровообращение и характер вегетативной регуляции сердечно-сосудистой системы человека. На пути достижения цели ставилось несколько задач:

1. Исследовать влияние острой нормобарической гипоксии на показатели мозгового кровообращения — объемную скорость кровотока, тонус внутримозговых артерий и вен, периферическое сопротивление.

2. Изучить влияние острой гипоксии на показатели центральной гемодинамики и дыхания.

3. Исследовать влияние острой гипоксии на спектральные характеристики вариабельности сердечного ритма и пульсового давления с помощью современных методов математического анализа.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Развитие гипоксического состояния при дыхании гипокси-ческими газовыми смесями с 8-процентным содержанием кислорода в азоте сопровождается постепенным увеличением объемной скорости мозгового кровотока, в основе которого лежит дилатация артериальных и венозных сосудов. Кровоток в вертебробазиллярном бассейне, обеспечивающем такие жизненно важные структуры головного мозга как ствол мозга, средний и промежуточный мозг, реагирует на гипоксию быстрее, чем кровоток в бассейне внутренней сонной артерии.

2. Незначительное увеличение минутного объема сердца и уменьшение ударного объема сердца при острой гипоксии продолжительностью 15 минут свидетельствует о том, что увеличение интенсивности мозгового кровотока происходит преимущественно за счет перераспределения (централизации) общего кровотока.

3. Уменьшение вариабельности сердечного ритма у большинства испытуемых при выраженной гипоксии свидетельствует о постепенном уменьшении центральных регулирующих влияний и повышении роли внут-рисердечных механизмов регуляции сердечной деятельности.

4. Компенсаторно-приспособительные реакции организма на гипоксическое воздействие особенно эффективны в случае усиления не только симпатического, но и парасимпатического влияния на сердце.

Научная новизна.

Впервые подробно описаны изменения мозгового кровотока в различных сосудистых бассейнах правого и левого полушарий, межполушарные отличия, оценены тонус и сопротивление внутримозговых сосудов при воздействии на человека гипоксических газовых смесей с 8-процентным содержанием кислорода в азоте. Показано, что наиболее быстро реагирует сосудистая сеть вертебробазиллярного бассейна. Установлено, что одной из причин низкой устойчивости человека к гипоксии может быть нарушение вегетативной регуляции сердечно-сосудистой системы.

Впервые для оценки влияния острой нормобарической дыхательной гипоксии на сердечно-сосудистую систему человека применен компьютерный вариант неинвазивного метода дифференциальной сфигмографии, позволивший непрерывно в течение всего исследования регистрировать кривую артериального пульса и анализировать широкий спектр амплитудно-временных параметров, характеризующих сердечный ритм, кардиогемоди-намику и тонус стенок сосудов артериального русла. Для этого создан аппаратно-программный комплекс и разработан алгоритм спектрального анализа вариабельности сердечного ритма и гемодинамических показателей с использованием как преобразования Фурье, так и вейвлет-преобразования.

Впервые по характеру влияния частоты дыхания на показатели вариабельности сердечного ритма оценена роль кардиореспираторного взаимодействия в обеспечении адекватного воздействию гипоксии баланса регулирующих влияний со стороны симпатического и парасимпатического звеньев вегетативной" нервной системы. На основании полученных результатов сделаны выводы, рекомендующие учитывать дыхательный ритм при физиологической интерпретации и оценке ВСР.

Теоретическая и практическая значимость.

Полученные данные о внутримозговом перераспределении кровотока, роли симпатического и парасимпатического звеньев в регуляции ССС, выявление индивидуальных типов компенсаторных реакций на разных стадиях развития острой гипоксии у человека имеют важное теоретическое значение для понимания физиологических механизмов, лежащих в основе индивидуальной чувствительности и устойчивости человека к гипоксии и могут быть использованы на практике при совершенствовании медико-физиологического отбора лиц для работы в условиях гипоксии (летчики, космонавты, подводники, альпинисты и др.), а также для повышения точности клинического мониторинга больных с угрозой развития гипоксических состояний (травмы, сердечно-сосудистая патология, нарушения дыхания и т. п.).

Апробация работы.

Основные положения работы доложены на XXVI Международном конгрессе по электрокардиологии (Сыктывкар. 1999), на Международной конференции «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Санкт-Петербург. 1999), на Российских конференциях молодых ученых (Санкт-Петербург. 2000, 2002), на Российских конференциях с международным участием «Организм и окружающая среда: адаптация к экстремальным условиям» и «Фундаментальные науки и прогресс клинической медицины» (Москва. 2003, 2004), на Международном симпозиуме по сравнительной электрокардиологии (Сыктывкар. 2004), на Международном симпозиуме по «Биологической подвижности» (Пущино. 2004), на II симпозиуме с международным участием «Проблемы адаптации человека к экологическим и социальным условиям севера» (Сыктывкар. 2004), были представлены на XIX Съезде физиологического общества России (Екатеринбург. 2004).

144 ВЫВОДЫ.

1. Дыхание гипоксическими газовыми смесями с 8-процентным содержанием кислорода в азоте в течение 15 минут приводит к развитию у испытуемых острой выраженной гипоксии, сопровождающейся включением нейро-рефлекторных компенсаторно-приспособительных реакций.

2. В ответ на дефицит кислорода в организме происходит компенсаторное увеличение мозгового кровотока за счет снижения тонуса и расширения сосудов мозга и уменьшения сосудистого сопротивления.

3. Поддержание минутного объема сердца на необходимом уровне происходит не за счет увеличения ударного объема, а за счет увеличения частоты сердечных сокращений, что является адекватной реакцией в условиях нарастающей тканевой гипоксии.

4. В процессе гипоксии происходит снижение вариабельности сердечного ритма с резким уменьшением в частотном спектре высокочастотной составляющей, что свидетельствует об уменьшении сердечно-легочного сопряжения и центральных влияний на сердечный ритм.

5. В условиях гипоксии существенно возрастает спектральная мощность низкочастотной компоненты вариабельности пульсового артериального давления.

6. Развитие гипоксии приводит к изменению симпатовагальных отношений в сторону усиления влияния симпатического звена регуляции. При этом наиболее эффективные компенсаторно-приспособительные реакции отмечаются при увеличении тонуса как симпатического, так и парасимпатического отделов вегетативной нервной системы.

7. У лиц с низкой гипоксической устойчивостью воздействие гипокси-ческой газовой смеси с 8-процентным содержанием кислорода уже на.

7−10-ой минуте может приводить к срыву деятельности механизмов компенсации, сопровождающемуся внезапным ухудшением общего состояния и развитием коллапса.

8. При отмене гипоксического воздействия и переводе испытуемых на дыхание атмосферным воздухом насыщение гемоглобина артериальной крови кислородом, параметры центрального и мозгового кровообращения в течение 15−20 минут возвращаются к фоновым значением, в то время как параметры вегетативной регуляции восстанавливаются не полностью.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Результаты проведенных исследований показали, что дыхание гипок-сической газовой смесью с 8-процентным содержанием кислорода в азоте в течение 15 минут приводит к резкому снижению насыщения гемоглобина артериальной крови кислородом (до 60−70%), развитию тканевой гипоксии и повышению напряжения вегетативных систем регуляции. В ряде случаев это сопровождается срывом деятельности компенсаторно-приспособительных механизмов с признаками функциональных нарушений в сердечно-сосудистой системе (резкое падение АД, снижение вариабельности сердечного ритма и т. п.). Выраженность общей гипоксии организма и характер возникающих при этом компенсаторно-приспособительных реакций имеют индивидуальную зависимость и определяются чувствительностью и устойчивостью организма человека к дефициту кислорода, типологическими особенностями вегетативных механизмов регуляции. Известно, что гипокси-ческая устойчивость организма человека и животных во многом зависит от индивидуальных особенностей окислительно-восстановительных процессов [Березовский и др., 1975; Яковлев, 1998; Hochachka et al., 1999] и, в первую очередь, от митохондриальных ферментных комплексов дыхательной цепи [Nicholls, Budd, 2000; Лукьянова, 2004]. Наши исследования показали, что существенную роль в устойчивости человека к острой экспериментальной гипоксии играют компенсаторно-приспособительные реакции ССС, обеспечивающей как системную гипоксическую централизацию кровообращения, так и внутримозговое регионарное перераспределение крови в пользу наиболее жизненно важных центров. Устанавливаются адекватные гипоксическому воздействию кардиореспираторные отношения, направленные на максимально возможную компенсацию тканевого кислородного дефицита. Важную роль играет ВНС, которая через симпатическое и парасимпатическое звенья регуляции осуществляет постоянную корректировку функционального состояния ССС в жестких условиях развивающейся гипоксии организма. У гипоксически устойчивых лиц компенсаторно-приспособительные реакции обеспечивают хорошую переносимость гипоксического воздействия ГГС-8 в течение 15 минут без выхода физиологических параметров за пределы нормы реакции. Тем не менее, у части испытуемых были выявлены низкие функциональные резервы гипоксической устойчивостидля них в условиях гипоксии были характерны неустойчивость регуляции со стороны ВНС и дезинтеграция кардиореспираторных взаимосвязей, приводящие к срыву деятельности механизмов компенсации и развитию угрожающих состояний. Первыми объективными признаками наступающей декомпенсации являются резкое снижение ВСР и изменение симпатовагального баланса. При переводе испытуемых на дыхание нормальным атмосферным воздухом все признаки декомпенсации постепенно исчезают.

Таким образом, острая экспериментальная гипоксия, возникающая у человека при дыхании гипоксическими газовыми смесями, является адекватной физиологической моделью для изучения реакции мозговых сосудов, качественной и количественной оценки эффективности компенсаторно-приспособительных реакций кардиореспираторной системы на дозированное гипок-сическое воздействие и может использоваться для экспресс-оценки гипоксической устойчивости человека при медико-физиологическом отборе специалистов, чья профессия связана с работой в условиях дефицита кислорода.

Показать весь текст

Список литературы

  1. H.A., Елфимов А. И. Функции организма в условиях гипоксии и гиперкапнии. М.: Медицина, 1986. — 270 с.
  2. H.A., Миррахимов М. М. Горы и резистентность организма. -М.: Наука, 1970.- 184 с.
  3. H.A., Чижов А. Я. Классификация гипоксических, гипо- и ги-перкапнических состояний // Ф1зюл. журн. 2003. — Т.49, № 3. — С. 1116.
  4. В.Н. Специально-диагностические исследования сердечно-сосудистой системы и дыхания во врачебной экспертизе летного состава гражданской авиации: Автореф. дис. докт. мед. наук. М., 1967. — 42 с.
  5. P.M., Иванов Г. Г., Чирейкин JI.B. Анализ вариабельности сердечного ритма при использовании различных электрокардиографических систем. Методические рекомендации. М., 2002. — 53 с.
  6. З.И. Акклиматизация к гипоксии и ее физиологическое значение. -М.: Изд-во АН СССР, 1960.-216 с.
  7. Э.Н., Болярская В. А. Изменение сердечно-тормозного эффекта раздражения блуждающего нерва при нарушении функции надпочечников в эксперименте // Бюл. экспер. биол. 1968. — Т.65, № 6. — С. 41−55.
  8. A.B., Буянов П. В., Малкин В. Б. Дыхание и газообмен при острой гипоксической пробе. В кн.: Авиационная и космическая медицина.-М.: Воениздат, 1963. — С. 72−101.
  9. В.В., Дашинимаев В. Д., Трубачев Э. А. Датчики пульса для практической диагностики в тибетской медицине. — В кн.: Пульсовая диагностика тибетской медицины. Новосибирск: Наука, 1988. — С. 6477.
  10. Бурых Э. А, Нестеров С. В, Сороко С. И, Волков Н. Ю. Взаимоотношение динамики мозгового кровотока и биоэлектрической активности мозга у человека при острой экспериментальной гипоксии // Физиология человека. 2002. — Т.28, № 6. — С. 24−31.
  11. И.Н. ЭКГ-изменения в стандартных и грудных отведениях под влиянием Ог голодания и физической нагрузки как метод функционального исследования сердца: Автореф. дис. канд. мед. наук. JI, 1951.-22 с.
  12. Ван Лир Э, Стикней К. Гипоксия. М.: Медицина, 1967. — 368 с.
  13. H.A. Влияние высоты на органы чувств. В кн.: Авиационная медицина. — М.: Медгиз, 1941. — С. 65−110.
  14. Гипоксия и индивидуальные особенности реактивности / В. А. Березовский, К. А. Бойко и др.- под. ред. В. А. Березовского. К.: Наукова думка, 1978.-216с.
  15. Григорьев А. И, Баевский P.M. Концепция здоровья и проблема нормы в космической медицине. М.: Слово, 2001. — 96 с.
  16. Данияров С. Б, Кононец И. Е, Наумова Т. Н., Тюреканова Н. Э. Состояние сердечно-сосудистой системы в условиях высокогорья Киргизии. — Фрунзе: Илим, 1982. 116 с.
  17. Дедухова В. И, Логинова Е. В, Малкин В. Б., Мохова Е. Н, Рощина H.A. О механизме адаптации к гипоксической гипоксии // Косм. биол. мед. -1972,-№ 4.-С. 9−23.
  18. И.Т. Кровоснабжение бодрствующего мозга. Л.: Наука, 1983.- 173 с.
  19. И. Десять лекций по вейвлетам. — Ижевск: НИЦ «Регулярная и хаотическая динамика», 2001. 464 с.
  20. E.H. Некоторые физиологические механизмы приспособления организма к кислородной недостаточности. В кн.: Физиология ипатология дыхания, гипоксия и оксигенотерапия. Киев: Изд-во АН УССР, 1958.-С. 67−112.
  21. Л.Р., Ронкин М. А. Функциональная диагностика нервных болезней. -М.: Медицина, 1991.-640 с.
  22. Интенсивная терапия: пер. с англ. доп. // гл. ред. А. И. Мартынов М.: ГЭОТАР МЕДИЦИНА, 1998. — 640 с.
  23. В.А. Система свертывания крови и адаптация к природной гипоксии. -Л.: Наука, 1983. 151 с.
  24. Е.Я. Регуляция процессов биоокисления как способ повышения устойчивости организма при гипо- и гипероксии: Автореф. дис. докт. мед. наук. М., 1971. — 38 с.
  25. А.З. Кислород, физическое состояние, работоспособность. -К., 1991.-206 с.
  26. А.З. Недостаток кислорода и возраст. К: Наукова думка, 1964.-336 с.
  27. С.А., Ноздрачев А. Д., Одинак М. М., Шустов Е. Б., Коваленко И. Ю., Давыденко В. Ю. Вариабельность ритма сердца: представления о механизмах // Физиология человека. 2002. — Т.28, № 1. — С. 130 143.
  28. Л.Д. Биоэнергетическая гипоксия: понятие, механизмы и способы коррекции // Бюл. экспер. биол. 1997. — Т. 124, № 9. — С. 244−254.
  29. Л.Д. Митохондриальные дисфункции при гипоксии типовой патологический процесс. — В кн.: Митохондрии в патологии. — Пу-щино, 2001.-С. 66−67.
  30. Л.Д. Молекулярные механизмы тканевой гипоксии и адаптация организма // Ф1зюлог. журн. 2003. — Т.49, № 3. — С. 17−35.
  31. В.Б. Кровообращение при гипоксии. — В кн.: Авиационная медицина. -М.: Воениздат, 1959. С. 108−163.
  32. В.Б., Гиппенрейтер Е. Б. Острая и хроническая гипоксия. М.: Наука, 1977.-315 с.
  33. В.Б., Плахатнюк В. И. Изменения электрокардиограммы при острой гипоксии и их значимость // Косм. биол. мед. 1974. — № 2. — С. 5468.
  34. М.Е. Физиологическое значение углекислоты. — М.: Медицина, 1969.- 144 с.
  35. Ф.З. Адаптационная медицина. Механизмы и защитные эффекты адаптации. М.: Медицина, 1993. — 331 с.
  36. М.М. Влияние длительного пребывания в высокогорье Киргизии на некоторые гемодинамические показатели. — В сб.: Труды Киргизск. мед. ин-та, т. 9. — Фрунзе, 1957. — С. 176−179.
  37. Ю.Е., Бекетов А. И., Орлов Р. С. Мозговое кровообращение. Физико-химические приемы изучения. Д.: Наука, 1989. — 152 с.
  38. Ю.Е., Вайнштейн Г. Б., Демченко И. Т. Внутричерепная гемодинамика. Биофизические аспекты. Л.: Наука, 1975. — 202 с.
  39. Ю.Е., Демченко И. Т., Буров С. В., Дерий И. П. Роль симпатической нервной системы в регуляции кровоснабжения головного мозга // Физиол. ж. СССР. 1977. — Т.63, № 8. — С. 1088−1095.
  40. Ю.Е., Хилько В. А. Принципы исследования сосудистой системы головного мозга человека. JL: Наука, 1984. — 64 с.
  41. В.П., Демина И. Н., Нестеров С. В. Ионы натрия в системе элек-тро-механического сопряжения миокарда и скелетных мышц лягушки Rana temporaria II Ж. эвол. биохим. физиол. 2002. — Т.38, № 1. — С. 2024.
  42. В.П., Хирманов В. Н., Нестеров С. В., Тюрина Т. В. Пульсомет-рическое изучение функционального состояния сердечно-сосудистойсистемы в условиях, провоцирующих развитие нейрогенных обмороков // Бюл. экспер. биол. 2001. — Т. 132, № 9. — С. 310−314.
  43. B.C. Физиология летного труда. Учебник. СПб.: Наука, 1997. -411 с.
  44. JI.B. Основы вейвлет-анализа сигналов. Учебное пособие. -СПб.: «Модус+», 1999. 152 с.
  45. А.Д. Автономная нервная система и адаптивные реакции организма // Стресс, адаптация, дисфункции: Тез. 4 Всесоюз. симп. (2728 июня 1991 г.). Кишинев, 1991. — С. 70.
  46. А.Д. Метасимпатическая нервная система: элементы организации // Регуляция висцеральных функций: Закономерности и механизмы: Сб. науч. работ, посвящ. 100-летию со дня рождения акад. K.M. Быкова. Л.: Наука, 1987. — С. 178−191.
  47. А.Д., Фатеев М. М. Звездчатый ганглий. Структура и функции. СПб.: Наука, 2002. — 239 с.
  48. Н.Р., Каевицер И. М. Атлас гемодинамических исследований в клинике внутренних болезней. М.: Медицина, 1975. — 240 с.
  49. В.В., Баевский P.M. Введение в медицинскую кибернетику. М.: Медицина, 1966. — 220 с.
  50. В.И. Реакции сердечно-сосудистой системы человека при ги-поксической функциональной пробе в барокамере и их экспертная оценка: Автореф. дис. канд. мед. наук. — М., 1975. — 22 с.
  51. А.Г., Погорелова В. Н., Хренова Е. В., Демин И. П. Особенности ионного транспорта в мышечной клетке сердца при гипоксии. — В сб.: Гипоксия: механизмы, адаптация, коррекция. — М., 2002. С. 92−93.
  52. Г. В., Соболев A.B. Вариабельность ритма сердца. М.: «Оверлей», 2001.-200 с.
  53. М.О. Реакция нейронов мозга на гипоксию. JL: Наука, 1985. — 190 с.
  54. О.Н., Розе E.H., Бондаренко Б. Б. Патофизиология кратковременной ишемии миокарда (модель ишемической реакции) // Физиология человека. 1999.-Т.25, № 2.-С. 86−91.
  55. М.М. Життя на висотах i хвороба висоти. К., 1939. — 225 с.
  56. H.H. Эволюция резистентности и реактивности организма. -М.: Медицина, 1981.-235 с.
  57. Словарь физиологических терминов. М.: Наука, 1987. — 448 с.
  58. С.И., Димаров P.M. Индивидуальные особенности изменений биоэлектрической активности и гемодинамики мозга человека при воздействии экспериментальной и высокогорной гипоксии // Физиология человека. 1994. — Т.20, № 6. — С. 16−23.
  59. Сулимо-Самуйло З. К. Гиперкапния. Л.: Изд-во ВМедА, 1971. — 124 с.
  60. Н.К. Изоляция от нервных влияний как механизм приспособления биологических систем в патологии // Бюл. экспер. биол. 1998. -Т. 125, № 6.-С. 604−611.
  61. Чуй К. Введение в вэйвлеты. -М.: Мир, 2001. -412 с.
  62. Шейх-Заде Ю.Р., Скибицкий В. В., Катханов A.M., Шейх-Заде К.Ю., Сухомлинов В. В., Кудряшов Е. А., Чередник И. Л., Жукова Е. В., Каблов Р. Н., Зузик Ю. А. Альтернативный подход к оценке вариабельности сердечного ритма // Вестн. аритм. 2001. — № 22. — С. 49−55.
  63. Х.Х. Клиническая реоэнцефалография. М.: Медицина, 1983. -272 с.
  64. Akselrod S., Arbel J., Oz О., Benary V., David D. Spectral analysis of HR fluctuations in the evaluation of autonomous control during acute myocardial infarction // Сотр. Cardiol. 1985. — V.12. — P. 315−318.
  65. Akselrod S., Barak Y., Ben-Dov Y., Keselbrener L., Baharav A. Estimation of autonomic response based on individually determined time axis // Auton. Neurosci. Basic Clin. 2001. — V.90. — P. 13−23.
  66. Akselrod S., Gordon D., Ubel F.A., Shannon D.C., Berger A.C., Cohen R.J. Power spectrum analysis of heart rate fluctuations: a quantitative probe of beat-to-beat cardiovascular control // Science. 1981. — V.213. — P. 220−222.
  67. Andine P., Sandberg M., Bagenholm R., Lehmann A., Hagberg H. Intra- and extracellular changes of amino acids in the cerebral cortex of the neonatal rat during hypoxic-ischemia // Brain Res. Dev. Brain Res. — 1991. — V.64. P. 115−120.
  68. Armour J.A. Instant-to-instant reflex cardiac regulation // Cardiology. 1976. -V.61.-P. 309−328.
  69. Armour J.A. Myocardial ischaemia and the cardiac nervous system // Cardio-vasc.Res.- 1999. V.41.-P. 41−54.
  70. Armour J.A., Hopkins D.A. Activity of in situ canine left atrial neurons // Am. J. Physiol. 1990. — V.259. — P. H1207−1215.
  71. Armstead W.M. Role of nitric oxide, cyclic nucleotides, and the activation of ATP-sensitive K+ channels in the contribution of adenosine to hypoxia-in-duced pial artery dilation // J. Cereb. Blood Flow Metab. 1997. — V. 17. — P. 100−108.
  72. Armstead W.M. Role of opioids in hypoxic pial artery dilation is stimulus duration dependent // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 1998. — V.275, № 44.-P. H861-H867.
  73. Ashwal S., Majcher J.S., Longo L.D. Patterns of fetal lamb regional cerebral blood flow during and after prolonged hypoxia: studies during the posthy-poxic recovery period // Am. J. Obstet. Gynecol. 1981. — V.139, № 4. — P. 365−372.
  74. Audibert G., Saunier C., Hartemann D., Bigard O., Haberer J.P. Effects of H2-receptor blockers on response of cerebral blood flow to normocapnic hypoxia // Anesth. Analg. 1991. — V.72, № 4. — P. 532−537.
  75. Azabji Kenfack M., Lador F., Licker M., Moia Ch., Tam E., Capelli C., Morel D., Ferretti G. Cardiac output by Modelflow® method from intra-arterial and fingertip pulse pressure profiles // Clin. Sci. 2004. — V.106. — P. 365−369.
  76. Bao X., Kennedy B.P., Hopkins S.R., Bogaard H.J., Wagner P.D., Ziegler M.G. Human autonomic activity and its response to acute oxygen supplement after high altitude acclimatization // Auton. Neurosci. 2002. — V.102. — P. 54−59.
  77. Barak Y., David D., Keselbrener L., Akselrod S. Autonomic response to hypobaric hypoxia assessed by time-dependent frequency decomposition of heart rate // Aviat. Space Environ. Med. 2001. — V.72, № 11. — P. 992−1000.
  78. Barron H.V., Viskin S. Autonomic markers and prediction of cardiac death after myocardial infarction//Lancet. 1998. — V.351. -P. 461−475.
  79. Bartels M.N., Gonzalez J.M., Kim W., De Meersman R.E. Oxygen supplementation and cardiac-autonomic modulation in COPD // Chest. 2000. -V.l 18, № 3. — P. 691−696.
  80. Ba§ ar E., Schurmannb M., Demiralpc T., Ba§ ar-Eroglud C., Ademoglue A. Event-related oscillations are 'real brain responses' wavelet analysis and new strategies // Int. J. Psychophysiol. — 2001. — V.39. — P. 91−127.
  81. Baumgartner R.W., Spyridopoulos I., Bartsch P., Maggiorini M., Oelz O. Acute mountain sickness is not related to cerebral blood flow: a decompression study chamber // J. Appl. Physiol. 1999. — V.86, № 5. — P. 1578−1582.
  82. Beny J.L., Von Der Weid P.Y. Hyperpolarizing factors // Coronary Artery Dis. 1991. — V.2. — P. 300−306.
  83. Bereczki D., Wei L., Otsuka T., Acuff V., Pettigrew K., Patlak C., Fenstermacher J. Hypoxia increases velocity of blood flow through parenchymal microvascular systems in rat brain // J Cereb. Blood Flow Metab. 1993. -V.13, № 3. — P. 475−486.
  84. Berger C., von Kummer R. Does NO regulate the cerebral blood flow response in hypoxia? // Acta Neurol. Scand. 1998. — V.97, № 2. — P. 118−125.
  85. Berger R.D., Saul J.P., Cohen RJ. Transfer function analysis of autonomic regulation. I. Canine atrial rate response // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 1989. — V.256. — P. H142-H152.
  86. Bernardi L., Keller F., Sanders M., Reddy P. S., Griffith B., Meno F., Pinsky M.R. Respiratory sinus arrhythmia in the denervated human heart // J. Appl. Physiol. 1989. — V.67. — P. 1447−1455.
  87. Bernardi L., Passino C., Wilmerding V., Dallam G.M., Parker D.L., Robergs R.A., Appenzeller O. Breathing patterns and cardiovascular autonomic modulation during hypoxia induced by simulated altitude // J. Hypertens. -2001a. V.19, № 5. — P. 947−958.
  88. Bernardi L., Porta C., Gabutti A., Spicuzza L., Sleight P. Modulatory effects of respiration // Auton. Neurosci. 2001b. — V.90. — P. 47−56.
  89. Berre J., Vachiery J.L., Moraine J.J., Naeije R. Cerebral blood flow velocity responses to hypoxia in subjects who are susceptible to high-altitude pulmonary oedema // Eur. J. Appl. Physiol. Occup. Physiol. 1999. — V.80, № 4. -P. 260−263.
  90. Bicher H.I., Reneau D.D., Bruley D.F., Knisely M.H. Brain oxygen supply and neuronal activity under normal and hypoglycemic conditions // Am. J. Physiol. 1973. — V.224, № 2. — P. 275−289.
  91. Billman G. E., Hoskins R. S. Time-series analysis of heart rate variability during submaximal exercise. Evidence for reduced cardiac vagal tone in animals susceptible to ventricular fibrillation // Circulation. 1989. — V.80. — P. 146 157.
  92. Bootsma M., Swenne C.A., Van Bolhuis H.H., Chang P.C., Cats V.M., Bruschke A.V. Heart rate and heart rate variability as indexes of sympathovagal balance // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 1994. — V.266. — P. H1565-H1571.
  93. Bossenmeyer-Pourie C., Chihab R., Schroeder H., Daval J.L. Transient hypoxia may lead to neuronal proliferation in the developing mammalian brain: from apoptosis to cell cycle completion // Neuroscience. 1999. — V.91, № 1. -P. 221−231.
  94. Boutcher S.H., McLaren P.F., Cotton Y. Stroke volume response to incremental submaximal exercise in aerobically trained, active, and sedentary men // Can. J. Appl. Physiol. 2003. — V.28, № 1. — P. 12−26.
  95. Braun C., Kowallik P., Freking A., Hadeler D., Kniffki K.D., Meesmann M. Demonstration of nonlinear components in heart rate variability of healthy person // Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 1998. — V.275. — P. HI577-H1584.
  96. Brian J.E. Jr., Faraci F.M., Heistad D.D. Recent insights into the regulation of cerebral circulation // Clin. Exp. Pharmac. Physiol. 1996. — V.23. — P. 449 457.
  97. Buck A., Schirlo C., Jasinsky V. Changes of cerebral blood flow during short-term exposure to normobaric hypoxia // J. Cereb. Blood Flow Metab. 1998. -V.18.-P. 906−910.
  98. Buckler K.J. A novel oxygen-sensitive potassium current in rat carotid body type I cells // J. Physiol. 1997. — V.498. — P. 649−662.
  99. Bunn H.F., Poyton R.O. Oxygen sensing and molecular adaptation to hypoxia // Physiol. Rev. 1996. — V.76. — P. 839−885.
  100. Burmester T., Welch B., Reinhardt S., Hankeln T. A vertebrate globin expressed in the brain // Nature. 2000. — V.407. — P. 520−523.
  101. Busija D.W. Sympathetic nerves reduce cerebral blood flow during hypoxia in awake rabbits // Am. J. Physiol. 1984. — V.247, № 3. — P. H446-H451.
  102. Busija D.W., Heistad D.D. Effects of cholinergic nerves on cerebral blood flow in cats // Circ. Res. 1981. — V.48. — P. 62−69.
  103. Carey H.V., Andrews M.T., Martin S.L. Mammalian hibernation: cellular and molecular responses to depressed metabolism and low temperature // Physiol. Rev. 2003. — V.83. — P. 1153−1181.
  104. Cohn E., Sacks E.J., Heymann M.A., Rudolph A.M. Cardiovascular responses to hypoxemia and acidemia in fetal lambs // Am. J. Obstet. Gynecol. 1974. -V. 120, № 6. -P. 817−831.
  105. Cormier-Regard S., Nguyen S.V., Claycomb W.C. Adrenomedullin gene expression is developmentally regulated and induced by hypoxia in rat ventricular cardiac myocytes // J. Biol. Chem. 1998. -V.273. — P. 17 787−17 792.
  106. Cornolo J., Mollard P., Brugniaux J.V., Robach P., Richalet J.-P. Autonomic control of the cardiovascular system during acclimatization to high altitude: effects of sildenafil // J. Appl. Physiol. 2004. — V.97. — P. 935−940.
  107. Coumans A.B., Gamier Y., Supcun S., Jensen A., Hasaart T.H., Berger R. The role of nitric oxide on fetal cardiovascular control during normoxia and acute hypoxia in 0.75 gestation sheep // J. Soc. Gynecol. Invest. 2003. -V.10, № 5. — P. 275−282.
  108. Craven R. New blood in the globin family // Nature. 2002. — V.3. — P. 89.
  109. Cselenyi Z., Olsson H., Farde L., Gulyas B. Wavelet-aided parametric mapping of cerebral dopamine D2 receptors using the high affinity PET radioligand nC. FLB 457 // Neuroimage. 2002. — V. 17, № 1. — P. 47−60.
  110. Dampney R.A.L. Functional organization of central pathways regulating the cardiovascular system // Physiol. Rev. 1994. — V.74, № 2. — P. 323−364.
  111. Davy K.P., Miniclier N.L., Taylor J.A., Stevenson E.T., Seals D.R. Elevated heart rate variability in physically active postmenopausal women: a cardioprotective effect? // Am. J. Physiol. 1996. — V.271. — P. H455-H460.
  112. De Meersman, R. E. Heart rate variability and aerobic fitness // Am. Heart J. 1993.- V.125.-P. 726−731.
  113. Delpiano M.A., Hescheler J. Evidence for a P02-sensitive K+ channel in the type-I cell of the rabbit carotid body // FEBS Lett. 1989. — V.249. — P. 195 198.
  114. Detar R., Bohr D.F. Adaptation to hypoxia in vascular smooth muscle // Federat. Proc. 1968. — V.27, № 6.-P. 1416−1430.
  115. Ebeigbe A.B. Influence of hypoxia on contractility and calcium uptake in rabbit aorta//Experientia. 1982. — V.38. — P. 935−937.
  116. Edoute Y., Arieli R. Effect of different degrees of hypoxia and reoxygenation on myocardial energetics // Isr. J. Med. Sci. 1989. — V.25, № 7. — P. 382 388.
  117. Farinelli C.C., Kayser B., Binzoni T., Cerretelli P., Girardier L. Autonomic nervous control of heart rate at altitude (5050 m) // Eur. J. Appl. Physiol. -1994.-V.69.-P. 502−507.
  118. Farkas E., Luiten P.G.M. Cerebral microvascular pathology in aging and Alzheimer’s disease // Prog. Neurobiol. 2001. — V.64. — P. 575−611.
  119. Feigl E.O. Neural control of coronary blood flow. B kh.: Neurocardiology. -New York: Oxford University Press, 1994.-P. 139−164.
  120. Gerber H.P., Condorelli F., Park J., Ferrara N. Differential transcriptional regulation of the two vascular endothelial growth factor receptor genes. FIt-1, but not Flk-l/KDR, is up-regulated by hypoxia // J. Biol. Chem. 1997. -V.272.-P. 23 659−23 667.
  121. Ginsberg M.D., Medoff R., Reivich M. Heterogeneities of regional cerebral blood flow during hypoxia-ischemia in the rat // Stroke. 1976. — V.7, № 2. -P. 132−134.
  122. Goldberger J.J., Ahmed M.W., Parker M.A., Kadish A.H. Dissociation of heart rate variability from parasympathetic tone // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 1994. — V.266. — P. H2152-H2157.
  123. Goldberger J.J., Challapalli S., Tung R., Parker M.A., Kadish A.H. Relationship of heart rate variability to parasympathetic effect // Circulation. 2001. -V.103.-P. 1977−1983.
  124. Goldberger JJ., Kim Y.H., Ahmed M.W., Kadish A.H. Effect of graded increases in parasympathetic tone on heart rate variability // J. Cardiovasc. Electrophysiol. 1996. — V.7. — P. 594−602.
  125. Goldsmith R. I., Bigger J. T., Steinman R. C., Fleiss J. L. Comparison of 24hour parasympathetic activity in endurance-trained and untrained young men // J. Am. Coll. Cardiol. 1992. — V.20. — P. 552−558.
  126. Graven K.K., Yu Q., Pan D., Roncarati J.S., Farber H.W. Identification of an oxygen responsive enhancer element in the glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase gene // Biochim. Biophys. Acta. 1999. — V.1447. — P. 208−218.
  127. Gray A.L., Johnson T.A., Ardell J.L., Massari V.J. Parasympathetic control of the heart. II. A novel interganglionic intrinsic cardiac circuit mediates neural control of heart rate // J. Appl. Physiol. 2004a. — V.96. — P. 2273−2278.
  128. Grollman A. Physiological variations of the cardiac output of man // Am. J. Physiol. 1930. — V.93, № 1. — P. 19−32.
  129. Grover R.F., Reeves J.T., Maher J.T., McCullough R.E., Cruz J.C., Denniston J.C., Cymerman A. Maintained stroke volume but impaired arterial oxygenation in man at high altitude with supplemental C02 // Circ. Res. 1976. -V.38,№ 5.-P. 391−396.
  130. Haddad J.J. Oxygen-sensing mechanisms and the regulation of redox-respon-sive transcription factors in development and pathophysiology // Respir. Res. 2002. — V.3, № 1. — P. 26−53.
  131. Halliwill J.R., Minson C.T. Effect of hypoxia on arterial baroreflex control of heart rate and muscle sympathetic nerve activity in humans // J. Appl. Physiol. 2002. — V.93. — P. 857−864.
  132. Hammill S.C., Wagner W.W. Jr., Latham L.P., Frost W.W., Weil J.V. Autonomic cardiovascular control during hypoxia in the dog // Circ. Res. 1979. -V.44.-P. 569−575.
  133. Hayano J., Yasuma F., Okada A., Mukai S., Fujinami T. Respiratory sinus arrhythmia phenomenon improving pulmonary gas exchange and circulatory efficiency // Circulation. — 1996. — V.94. — P. 842−847.
  134. Hermes-Lima M., Zenteno-Savin T. Animal response to drastic changes in oxygen availability and physiological oxidative stress // Comp. Biochem. Physiol. C. -2002. V. 133. — P. 537−556.
  135. Hirakawa H., Nakamura T., Hayashida Y. Effect of carbon dioxide on autonomic cardiovascular responses to systemic hypoxia in conscious rats // Am. J. Physiol. 1997. — V.273, № 2. — P. R747-R754.
  136. Hirsch J.A., Bishop B. Respiratory sinus arrhythmia in humans: how breathing pattern modulates heart rate // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 1981. -V.241.-P. H620-H629.
  137. Hochachka P.W., Lutz P.L. Mechanism, origin, and evolution of anoxia tolerance in animals // Comp. Biochem. Physiol. B. 2001. — V. 130. — P. 435−459.
  138. Hochachka P.W., Rupert J.L., Monge C. Adaptation and conservation of physiological systems in the evolution of human hypoxia tolerance // Comp. Biochem. Physiol. A. 1999. — V. 124. — P. 1−17.
  139. Hoff J.T., MacKenzie E.T., Harper A.M. Responses of the cerebral circulation to hypercapnia and hypoxia after 7th cranial nerve transection in baboons // Circ. Res. 1977. — V.40, № 3. — P. 258−262.
  140. Hopkins S.R., Bogaard H.J., Niizeki K. Yamaya Y., Ziegler M.G., Wagner P.D. p-Adrenergic or parasympathetic inhibition, heart rate and cardiac output during normoxic and acute hypoxic exercise in humans // J. Physiol. 2003. — V.550, № 2. — P. 605−616.
  141. Hu J., Discher D.J., Bishopric N.H., Webster K.A. Hypoxia regulates expression of the endothelin-1 gene through a proximal hypoxia-inducible factor-1 binding site on the antisense strand // Biochem. Biophys. Res. Commun. -1998.-V.245.-P. 894−899.
  142. Hughson R. L., Yamamoto Y., McCullough R.E., Sutton J.R., Reeves J.T. Sympathetic and parasympathetic indicators of heart rate control at altitude studied by spectral analysis // J. Appl. Physiol. 1994. — V.77. — P. 25 372 542.
  143. Ishikawa Y., Mochimaru F. Wavelet theory-based analysis of high-frequency, high-resolution electrocardiograms: a new concept for clinical uses // Prog. Biomed. Res. 2002. — V.7, № 3. — P. 179−184.
  144. Jansen G. F. A., Krins A., Basnyat B. Cerebral vasomotor reactivity at high altitude in humans // J. Appl. Physiol. 1999. — V. 86, № 2. — P. 681−686.
  145. Jelkmann W. Erythropoietin: structure, control of production, and function // Physiol. Rev. 1992. — V.72. — P. 449−489.
  146. Jelles B., van Birgelen J.H., Slaets J.P.J., Hekster R.E.M., Jonkman E.J., Stam C.J. Decrease of non-linear structure in the EEG of Alzheimer patients compared to healthy controls // Clin. Neurophysiol. 1999. — V. 110. — P. 11 591 167.
  147. Jennett S, Pitts L. H, North J.B. Rapid cerebral vasodilatation in brief hypoxia in anaesthetized animals // Q. J. Exp. Physiol. 1981. — V.66. — P. 447 463.
  148. Jennings R. B, Reimer K.A. The cell biology of acute myocardial ischemia // Annu. Rev. Med. 1991. — V.42. — P. 225−246.
  149. Jensen J. B, Sperling B, Severinghaus J. W, Lassen N.A. Augmented hypoxic cerebral vasodilation in men during 5 days at 3,810 m altitude // J. Appl. Physiol. 1996. — V.80. — P. 1214−1218.
  150. Jensen J. B, Wright A. D, Lassen N.A. Cerebral blood flow in acute mountain sickness //J. Appl. Physiol. 1990. — V.69. — P. 430−433.
  151. Julien-Dolbec C, Tropres I, Montigon O, Reutenauer H, Ziegler A, Decorps M, Payen J.F. Regional response of cerebral blood volume to graded hypoxic hypoxia in rat brain // Br. J. Anaesth. 2002. — V.89, № 2. — P. 287 293.
  152. Kahkonen S, Bondarenko B.B. L-type Ca2+ channels mediate cardiovascular symptoms of alcohol withdrawal in humans // Prog. Neuropsychopharmacol. Biol. Psychiatry. 2004. — V.28. — P. 45−48.
  153. Kanai M, Nishihara F, Shiga T, et al. Alteration in autonomic nervous control of heart rate among tourists at 2700 and 3700 m above sea level // Wilderness Environ. Med. 2001. — V. 12, № 1. — P. 8−12.
  154. Kanstrup I. L, Poulsen T. D, Hansen J. M, Andersen L. J, Bestle M. H, Christensen N. J, Olsen N.V. Blood pressure and plasma catecholamines in acute and prolonged hypoxia: effects of local hypothermia // J. Appl. Physiol. -1999. V.87. — P. 2053−2058.
  155. Kanters J.K., Hojgaard M.V., Agner E., Holstein-Rathlou N.-H. Influence of forced respiration on nonlinear dynamics in heart rate variability // Am. J. Physiol. Reg. Integr. Comp. Physiol. 1997. — V.272, № 41. — P. R1149-R1154.
  156. Keng F.Y. Clinical applications of positron emission tomography in cardiology//Ann. Acad. Med. Singapore.-2004.-V.33, № 2.-P. 175−182.
  157. Kety S.S., Schmidt C.F. The nitrous oxide method for the determination of cerebral blood flow in man: theory, procedure and normal values // J. Clin. Invest. 1948. — V.27. — P. 476−502.
  158. Kimura T., Komatsu T., Takezawa J. Alterations in spectral characteristics of heart rate variability as a correlate of cardiac autonomic dysfunction after esophagectomy or pulmonary resection // Anesthesiology. 1996. — V.84, № 5.-P. 1068−1076.
  159. Kitano H. Computational systems biology // Nature. 2002. — V.420. — P. 206−209.
  160. Kocsis B., Fedina L., Pasztor E. Two-phase change of sympathetic rhythms in brain ischemia, Cushing reaction, and asphyxia // Am. J. Physiol. 1989. -V.256, № 1. — P. R120-R132.
  161. Koizumi K., Kollai M. Control of reciprocal and non-reciprocal action of vagal and sympathetic efferents: study of centrally induced reactions // J. Auton. Nerv. Syst. 1981. — V.3. — P. 483−501.
  162. Kolb J.C., Ainslie P.N., Kojiro I., Poulin M.J. Protocol to measure acute cerebrovascular and ventilatory responses to isocapnic hypoxia in humans // Respir. Physiol. Neurobiol. 2004. — V. 141. — P. 191 -199.
  163. Kollai M., Koizumi K. Reciprocal and non-reciprocal action of the vagal and sympathetic nerves innervating the heart // J. Auton. Nerv. Syst. 1979. -V.l.-P. 33−52.
  164. Koller E.A., Drechsel S., Hess T. Effects of atropine and propranolol on the respiratory, circulatory, and ECG responses to high altitude in man // Eur. J. Appl. Physiol. 1988. — V.57. — P. 163−172.
  165. Korner P.J., Edwards A.W.T. The immediate effects of acute hypoxia on the heart rate, arterial pressure, cardiac output and ventilation of the unanaesthe-tized rabbit // Quart. J. Exper. Physiol. 1960. — V.45, № 2. — P. 113−127.
  166. Krasney J.A., Magno M.G., Levitzky M.G., Koehler R.C., Davies D.G. Cardiovascular responses to arterial hypoxia in awake sinoaortic-denervated dogs // J. Appl. Physiol. 1973. — V.35, № 5. — P. 733−738.
  167. Krasney J.A., McDonald B.W., Matalon S. Regional circulatory responses to 96 hours of hypoxia in conscious sheep // Respir. Physiol. 1984. — V.57, № 1. — P. 73−88.
  168. Kregel K.C. Alterations in autonomic adjustments to acute hypoxia in conscious rats with aging // J. Appl. Physiol. 1996. — V.80, № 2. — P. 540−546.
  169. Langewitz W., Ruddel H., Schachinger H. Reduced parasympathetic cardiac control in patients with hypertension at rest and under mental stress // Am. Heart J. 1994.-V. 127.-P. 122−128.
  170. Langewouters G.J., Settels J.J., Roelandt R., Wesseling K.H. Why use Finapres or Portapres rather than intra-arterial or intermittent non-invasivetechniques of blood pressure measurement? // J. Med. Eng. Technol. 1998. — V.22. — P. 37−43.
  171. Laptook A.R., Corbett R.J., Arencibia Mireles O., Ruley J. Glucose-associated alterations in ischemic brain metabolism of neonatal piglets // Stroke. -1992.-V.23.-P. 1504−1511.
  172. Lassen N.A. Brain extracellular pH: the main factor controlling cerebral blood flow// Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1968. — V.22. — P. 247−251.
  173. Lassen N.A. Cerebral blood flow and oxygen consumption in man // Physiol. Rev. 1959. — V.39, № 2. — P. 183−238.
  174. Laudignon N., Farri E., Beharry K., Rex J., Aranda J.V. Influence of adenosine on cerebral blood flow during hypoxic hypoxia in the newborn piglet // J. Appl. Physiol. 1990. — V.68. — P. 1534−1541.
  175. Lazoglu A. H., Glace В., Gleim G. W., Coplan N. L. Exercise and heart rate variability // Am. Heart J. 1996. — V. 131. — P. 825−827.
  176. Leuenberger U.A., Gray K., Herr M.D. Adenosine contributes to hypoxia-in-duced forearm vasodilation in humans // J. Appl. Physiol. 1999. — V.87, № 6.-P. 2218−2224.
  177. Lipton P. Ischemic cell death in brain neurons // Physiol. Rev. 1999. — V.79. -P. 1431−1568.
  178. Liu X.X., Lu L.L., Zhong C.F., Cheng Z.H., Yuan Q., Ren H.R. Analysis of heart rate variability during acute exposure to hypoxia. / Кит. // Space Med. Med. Eng. (Beijing). -2001. V. 14, № 5. — P. 328−331.
  179. Lombardi F. Chaos theory, heart rate variability, and arrhythmic mortality // Circulation. 2000. — V. 101, № 1. — P. 8−10.
  180. Lopez-Barneo J. Oxygen and glucose sensing by carotid body glomus cells // Cur. Opin. Neurobiol. 2003. — V. 13. — P. 493−499.
  181. Lopez-Barneo J., del Того R., Levitsky K.L., Chiara M.D., Ortega-Saenz P. Regulation of oxygen sensing by ion channels // J. Appl. Physiol. 2004. -V.96.-P. 1187−1195.
  182. Lopez-Barneo J., Pardal R., Ortega-Saenz P. Cellular mechanisms of oxygen sensing // Annu. Rev. Physiol. 2001. — V.63. — P. 259−287.
  183. Lucy S.D., Hughson R.L., Kowalchuk J.M., Paterson D.H., Cunningham D.A. Body position and cardiac dynamic and chronotropic responses to steady-state isocapnic hypoxaemia in humans // Exp. Physiol. 2000. — V.85, № 2. — P. 227−237.
  184. Lucy S.D., Kowalchuk J.M., Hughson R.L., Paterson D.H., Cunningham D.A. Blunted cardiac autonomic responsiveness to hypoxemic stress in healthy older adults // Can. J. Appl. Physiol. -2003. -V.28, № 4. P. 518−535.
  185. Lund V.E., Kentala E., Scheinin H., Klossner J., Helenius H., Sariola-Hei-nonen K., Jalonen J. Heart rate variability in healthy volunteers during nor-mobaric and hyperbaric hyperoxia // Acta Physiol. Scand. — 1999. — V.167, № 1.-P. 29−35.
  186. Maktabi M.A., Todd M.M., Stachovic G. Angiotensin II contributes to cerebral vasodilatation during hypoxia in the rabbit // Stroke. 1995. — V.26, № 10.-P. 1871−1876.
  187. Malliani A. The pattern of sympathovagal balance explored in frequency domain//News Physiol. Sci.- 1999.-V.14.-P. 111−117.
  188. Malliani A., Pagani M., Lombardi F., Cerutti S. Cardiovascular neural regulation explored in the frequency-domain // Circulation. 1991. — V.84. — P. 482−492.
  189. Malpas S.C. Neural influences on cardiovascular variability: possibilities and pitfalls // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2002. — V.282. — P. H6-H20.
  190. Marbarger J.P., Wechberg P.H., Pestel C.F., Fauter J.F., Franzblau S.A. Altitude stress in subjects with impaired cardio-respiratory function // J. Aviat. Med. 1953.- V.24, № 4. — P. 263−270.
  191. Massik J., Jones M.D., Miyabe M., Tang Y.L., Hudak M.L., Koehler R.C., Traystman R.J. Hypercapnia and response of cerebral blood flow to hypoxia in newborn lambs // J. Appl. Physiol. 1989. — V.66, № 3. — P. 1065−1070.
  192. Mayock D.E., Gleason C.A. Cerebrovascular effects of rapid volume expansion in preterm fetal sheep // Pediatr. Res. 2004. — V.55, № 3. — P. 395−399.
  193. Mazzeo R.S., Bender P.R., Brooks G.A., Butterfield G.E., Groves B.M., Sutton J.R., Wolfel E.E., Reeves J.T. Arterial catecholamine responses during exercise with acute and chronic high altitude exposure // Am. J. Physiol. 1991. -V.261.-P. E419-E424.
  194. Mazzuero G. Altitudine e sistema nervoso autonomo // Ital. Heart J. Suppl. — 2001. V.2, № 8. — P. 845−849.
  195. Meerson F.Z., Ustinova E.E., Manukhina E.B. Prevention of cardiac arrhythmias by adaptation to hypoxia: regulatory mechanisms and cardiotropic effect // Biomed. Biochim. Acta. 1989. — V.48. — P. S83-S89.
  196. Melin A., Fauchier L., Dubuis E., Obert P., Bonnet P. Heart rate variability in rats acclimatized to high altitude // High Alt. Med. Biol. 2003. — V.4, № 3. -P. 375−387.
  197. Min S.W., Ko H., Kim C.S. Power spectral analysis of heart rate variability during acute hypoxia in fetal lambs // Acta Obstet. Gynecol. Scand. 2002. -V. 81, № 11.-P. 1001−1005.
  198. Minet E., Michel G., Mottet D., Raes M., Michiels C. Transduction pathways involved in hypoxia-inducible factor-1 phosphorylation and activation // Free Radic. Biol. Med. -2001. -V.31, № 7. P. 847−855.
  199. Miyabe M., Jones M.D., Koehler R.C., Traystman R.J. Chemodenervation does not alter cerebrovascular response to hypoxic hypoxia // Am. J. Physiol. 1989. — V.257, № 5. — P. H1413-H1418.
  200. Montano N., Ruscone T.G., Porta A., Lombardi F., Pagani M., Malliani A. Power spectrum analysis of heart rate variability to assess the changes in sym-pathovagal balance during graded orthostatic tilt // Circulation. 1994. -V.90.-P. 1826−1831.
  201. Moore L.G., Brewer G.J. Beneficial effect of rightward hemoglobinoxygen dissociation curve shift for short-term high-altitude adaptation // J. Lab. Clin. Med. 1981.-V.98.-P. 145−154.
  202. Moreland S., Coburn R.F., Baron C.B., Moreland R.S. Mechanical and biochemical events during hypoxia-induced relaxations of rabbit aorta // Adv. Exp. Med. Biol. 1991. — V.304. — P. 147−157.
  203. Mortola J.P., Leon-Velarde F., Aguero L., Frappell P.B. Heart rate variability in 1-day-old infants born at 4330 m altitude // Clin. Sci. (Lond). 1999. -V.96, № 2. — P. 147−153.
  204. Mortola J.P., Seifert E.L. Circadian patterns of breathing // Respir. Physiol. Neurobiol. 2002. — V. 131, № 1 -2. — P. 91 -100.
  205. Mukhopadhyay C.K., Mazumder B., Fox P.L. Role of hypoxia-inducible factor-1 in transcriptional activation of ceruloplasmin by iron deficiency // J. Biol. Chem. 2000. — V.275. — P. 21 048−21 054.
  206. Myers R.E., Kopf G.S., Mirvis D.M. Hemodynamic response to profound hypoxia in intact rhesus monkeys // Stroke. 1980. — V. l 1, № 4. — P.389−393.
  207. Nattie E. CO2, brainstem chemoreceptors and breathing // Prog. Neurobiol. — 1999.-V.59.-P. 299−331.
  208. Nayler W.G. The ischemic myocardium and calcium antagonists / Myocardial Protection by Calcium Antagonists, edited by L. H. Opie. New York: Wiley-Liss, 1994. — P. 46−61.
  209. Nozdrachev A.D. The metasympathetic nervous system, its structure, properties and possible evolutionary origin // XXXI Int. Congr. Physiol. Sci. (Helsinki, Finland, 9−14 July, 1989): Abstr. Oulu, 1989. — P. 308 (N 3478).
  210. Oliver R.M., Peacock A.J., Challenor V.F., Fleming J.S., Waller D.G. The effect of acute hypoxia on right ventricular function in healthy adults // Int. J. Cardiol. 1991. — V.31, № 2. — P. 235−241.
  211. Olteanu A., Grosu L., Vlasie N., Pavel T., Barabas E., Baciu I. The renin-angiotensin system and the effect of propranolol upon the cerebral cortical and hypothalamic circulation in hypoxia // Rom. J. Physiol. 1997. — V.34. — P. 25−33.
  212. Ong B.Y., Kettler J.J., Bose D. Alteration of pial vessel responses to blood pressure changes in rats after hypoxia // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1987. — V.65, № 11. — P. 2265−2268.
  213. Ostadal B., Ostadalova I., Dhalla N.S. Development of cardiac sensitivity to oxygen deficiency: comparative and ontogenetic aspects // Physiol. Rev. -1999. V.79, № 3. p. 635−659.
  214. Palmer L.A., Semenza G.L., Stoler M.H., Johns R.A. Hypoxia induces type II NOS gene expression in pulmonary artery endothelial cells via HIF-1 // Am. J. Physiol. 1998. — V.274. — P. L212-L219.
  215. Parer J.T., Dijkstra H.R., Vredebregt P.P., Hams J.L., Krueger T.R., Reuss M.L. Increased fetal heart rate variability with acute hypoxia in chronically instrumented sheep // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 1980. — V.10, № 6.-P. 393−399.
  216. Pearce W.J. Mechanisms of hypoxic cerebral vasodilatation // Pharmac. Ther. 1995.-V.65.-P. 75−91.
  217. Pearce W.J., Ashwal S., Long D.M., Cuevas J. Hypoxia inhibits calcium influx in rabbit basilar and carotid arteries // Am. J. Physiol. 1992. — V.262, № 1 (2). — P. H106-H113.
  218. Perini R., Milesi S., Biancardi L., Veicsteinas A. Effects of high altitude acclimatization on heart rate variability in resting humans // Eur. J. Appl. Physiol. 1996. — V.73, № 6. — P. 521−528.
  219. Perini R., Orizio C., Baselli G., Cerutti S., Veicsteinas A. The influence of exercise intensity on the power spectrum of heart rate variability // Eur. J. Appl. Physiol. 1990. — V.61. -P. 143−148.
  220. Perlini S., Solda P.L., Piepoli M., Sala-Gallini G., Calciati A., Finardi G., Bernardi L. Determinants of respiratory sinus arrhythmia in the vagotomized rabbit // Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 1995. — V.269. — P. H909-H915.
  221. Phillis J.W. Adenosine in the control of the cerebral circulation // Cere-brovasc. Brain Metab. Rev. 1989. — V.l. — P. 26−54.
  222. Pinard E., Purves M.J., Seylaz J., Vasquez J.V. The cholinergic pathway to cerebral blood vessels. II. Physiological studies // Pflugers Arch. 1979. — V.379.-P. 165−172.
  223. Pittman R.N., Duling B.R. Oxygen sensitivity of vascular smooth muscle. I. In vitro studies // Microvasc. Res. 1973. — V.6. — P. 202−211.
  224. Poulin M.J., Fatemian M.3 Tansley J.G., O’Connor D.F., Robbins P.A. Changes in cerebral blood flow during and after 48 h of both isocapnic and poikilocapnic hypoxia in humans // Exp. Physiol. 2002. — V.87, № 5. — P. 633−642.
  225. Prabhakar N.R. Oxygen sensing in the carotid body chemoreceptors // J. Appl. Physiol. 2000. — V.88. — P. 2287−2295.
  226. Raju T.N., Bhat R., Vidyasagar D. Age-related difference in cerebral perfusion pressure response to acute hypoxia in neonatal puppies // Biol. Neonate. 1982.-V.41.-P. 258−264.
  227. Raub J.A., Benignus V.A. Carbon monoxide and the nervous system //Neuro-sci. Biobehav. Rev. 2002. — V.26. — P. 925−940.
  228. Reeves J.T., Mazzeo R.S., Wolfel E.E., Young A.J. Increased arterial pressure after acclimatization to 4300 m: possible role of norepinephrine // Int. J. Sports Med. 1992. — V.13. -P. S18-S21.
  229. Reimer K.A., Jennings R.B. Total ischemia in dog hearts, in vitro. II. High energy phosphate depletion and associated defects in energy metabolism, cell volume regulation and sarcolemmal integrity // Circ. Res. 1981. — V.49. — P. 901−911.
  230. Roach R.C., Loeppky J.A., Icenogle M.V. Acute mountain sickness: increased severity during simulated altitude compared with normobaric hypoxia // J. Appl. Physiol. 1996. — V.81, № 5. — P. 1908−1910.
  231. Roche F., Pichot V., Sforza E., Court-Fortune I., Duverney D., Costes F., Garet M., Barthelemy J.-C. Predicting sleep apnoea syndrome from heart period: a time-frequency wavelet analysis // Eur. Respir. J. 2003. — V.22. — P. 937 942.
  232. Rosenberg A.A., Narayanan V., Jones M.D. Comparison of anterior cerebral artery blood flow velocity and cerebral blood flow during hypoxia // Pediatr. Res. 1985. — V. 19, № 1. — P. 67−70.
  233. Roy C.W., Sherrington C.S. On the regulation of the blood-supply of the brain // J. Physiol. (Lond.). 1890. — V.ll. — P. 85−108. (LJht.: Pearce W.J. Mechanisms of hypoxic cerebral vasodilatation // Pharmac. Ther. — 1995. -V.65.-P. 75−91.).
  234. Saito M., Mano T., Iwase S., et al. Responses in muscle sympathetic activity to acute hypoxia in humans // J. Appl. Physiol. 1988. — V.65. — P. 15 481 552.
  235. Saltz S.B., Beller G.A., Giamber S.R. Circulatory response to acute hypobaric hypoxia in conscious dogs // Aviat. Space Environ. Med. 1976. — V.47, № 2. -P. 129−132.
  236. Sarkar S., Banerjee P.K., Selvamurthy W. High altitude hypoxia: an intricate interplay of oxygen responsive macroevents and micromolecules // Mol. Cel. Biochem. 2003. — V.253. — P. 287−305.
  237. Sartoretto F., Ermani M. Automatic detection of epileptiform activity by single-level wavelet analysis // Clin. Neurophysiol. 1999. — V.110, № 2. — P. 239−249.
  238. Saul J.P., Berger R.D., Albrecht P., Stein S.P., Chen M.H., Cohen R.J. Transfer function analysis of the circulation: unique insights into cardiovascular regulation // Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 1991. — V.261. — P. H1231-H1245.
  239. Schmedtje J.F., Ji Y.-S., Liu W.L., Dubois R.N., Runge M.S. Hypoxia induces cyclooxygenase-2 via the NK-kB p65 transcription factor in human vascular endothelial cells // J. Biol. Chem. 1997. — V.272. — P. 601−608.
  240. Schneider H., Schaub C.D., Chen C.A., Andreoni K.A., Schwartz A.R., Smith P.L., Robotham J.L., O’Donnell C.P. Neural and local effects of hypoxia on cardiovascular responses to obstructive apnea // J. Appl. Physiol. 2000. -V.88, № 3. — P. 1093−1102.
  241. Schwartz P. J., Priori S. G. Sympathetic nervous system and cardiac arrhythmias / Cardiac Electrophysiology: From Cell to Bedside / Editors: D.P. Zipes, J. Jalife. Philadelphia, PA: Saunders, 1990. — P. 330−343.
  242. Semenza G.L. Hypoxia-inducible factor 1: master regulator of O2 homeostasis // Curr. Opin. Genet. Develop. 1998. — V.8. — P. 588−594.
  243. Semenza G.L., Roth P.H., Fang H.M., Wang G.L. Transcriptional regulation of genes encoding glycolytic enzymes by hypoxia-inducible factor 1 // J. Biol. Chem.- 1994.-V.269.-P. 23 757−23 763.
  244. Sharp F.R., Bernaudin M. HIF1 and oxygen sensing in the brain // Nature. -2004. V.5. — P. 437−448.
  245. Short B.L., Walker L.K., Traystman R.J. Impaired cerebral autoregulation in the newborn lamb during recovery from severe, prolonged hypoxia, combined with carotid artery and jugular vein ligation // Crit. Care Med. 1994. — V.22, № 8.-P. 1262−1268.
  246. Silverstein F.S., Naik B., Simpson J. Hypoxia-ischemia stimulates hippocam-pal glutamate efflux in perinatal rat brain: an in vivo microdialysis study // Pediat. Res. 1991. — V.30. — P. 587−590.
  247. Skinner J. E., Nester B.A., Dalsey W.C. Nonlinear dynamics of heart rate variability during experimental hemorrhage in ketamine-anesthetized rats // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000. — V.279. — P. H1669-H1678.
  248. Slobounov S., Tutwiler R., Slobounova E., Rearick M., Ray W. Human oscillatory brain activity within gamma band 30−50 Hz induced by visual recognition of non-stable postures // Cognit. Brain Res. 2000. — V.9. — P. 177−192.
  249. Stea A., Nurse C.A. Whole-cell and perforated-patch recordings from (^-sensitive rat carotid body cells grown in short- and long-term culture // Pfliigers Arch. 1991.-V.418.-P. 93−101.
  250. Stoyka W.W., Frankel D.Z., Kay J.C. The linear relation of cerebral blood flow to arterial oxygen saturation in hypoxic hypoxia induced with nitrous oxide or nitrogen // Can. Anaesth. Soc. J. 1978. — V.25, № 6. — P. 474−478.
  251. Swenson E.R., Duncan T.B., Goldberg S.V., Ramirez G., Ahmad S., Schoene R.B. Diuretic effect of acute hypoxia in humans: relationship to hypoxic ventilatory responsiveness and renal hormones // J. Appl. Physiol. 1995. -V.78.-P. 377−383.
  252. Tacchini L., Bianchi L., Bernelli-Zazzera A., Cairo G. Transferrin receptor induction by hypoxia. HIF-1 -mediated transcriptional activation and cell-specific post-transcriptional regulation // J. Biol. Chem. 1999. — V.274. — P. 24 142−24 146.
  253. Tanaka K., Hargens A.R. Wavelet packet transform for R-R interval variability // Med. Eng. Phys. 2004. — V.26. — P. 313−319.
  254. Tazuke S.I. Hypoxia stimulates insulin-like growth factor binding protein 1 (IGFBP-1) gene expression in HepG2 cells: a possible model for IGFBP-1 expression in fetal hypoxia // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1998. — V.95. — P. 10 188−10 193.
  255. Toledo E., Gurevitz O., Hod H., Eldar M., Akselrod S. Wavelet analysis of instantaneous heart rate: a study of autonomic control during thrombolysis // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2003. — V.284. — P. R1079-R1091.
  256. Toledo E., Pinhas I., Almog Y., Aravot D., Akselrod S. Functional restitution of cardiac control in heart transplant patients // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2002. — V.282. — P. R900-R908.
  257. Toledo E., Pinhas I., Aravot D., Akselrod S. Evolution of compensatory cardiovascular control mechanisms in heart transplant subjects // Comp. Card. -2000.-V.27.-P. 1−4.
  258. Traystman R.J., Fitzgerald R.S. Loscutoff S.C. Cerebral circulatory responses to arterial hypoxia in normal and chemodenervated dogs // Circ. Res. 1978. -V.42.-P. 649−657.
  259. Trent III J.T., Watts R.A., Hargrove M.S. Human neuroglobin, a hexacoordi-nate hemoglobin that reversibly binds oxygen // J. Biol. Chem. 2001. -V.276.-P. 106−110.
  260. Tsuji H., Larson M.G., Venditti F.J., Manders E.S., Evans J.C., Feldman C.L., Levy D. Impact of reduced heart rate variability on risk for cardiac events: the Framingham heart study // Circulation. 1996. — V.94. — P. 2850−2855.
  261. Tulppo M.P., Makikallio T.H., Seppanen T., Laukkanen R.T., Huikuri H.V. Vagal modulation of heart rate during exercise: effects of age and physical fitness // Am. J. Physiol. 1998. — V.274. — P. H424-H429.
  262. Tulppo M.P., Makikallio T.H., Takala T.E.S., Seppanen T., Huikuri H.V. Quantitative beat-to-beat analysis of heart rate dynamics during exercise // Am. J. Physiol. 1996. — V.271. — P. H244-H252.
  263. Ulatowski J.A., Bucci E., Razynska A., Traystman R.J., Koehler R.C. Cerebral blood flow during hypoxic hypoxia with plasma-based hemoglobin at reduced hematocrit//Am. J. Physiol. 1998. — V.274, № 6. — P. H1933-H1942.
  264. Van Lieshout J .J., Wieling W., Karemaker J.M., Secher N.H. Syncope, cerebral perfusion, and oxygenation // J. Appl. Physiol. 2003. — V.94. — P. 833 848.
  265. Van Mil A.H., Spilt A., Van Buchem M.A., Bollen E.L., Teppema L., Westendorp R.G., Blauw G.J. Nitric oxide mediates hypoxia-induced cerebral vasodilation in humans // J. Appl. Physiol. 2002. — V.92, № 3. — P. 962−966.
  266. Vanoli E., De Ferrari G. M., Stramba-Badiale M., Hull S. S., Foreman R. D., Schwartz P. J. Vagal stimulation and prevention of sudden death in consciousdogs with a healed myocardial infarction I I Circ. Res. 1991. — V.68. — P. 1471−1481.
  267. Veglio M., Maule S., Cametti G., Cogo A., Lussiana L., Madrigale G., Pecchio O. The effects of exposure to moderate altitude on cardiovascular autonomic function in normal subjects // Clin. Auton. Res. 1999. — V.9. — P. 123−127.
  268. Venteicher A., Armstead W.M. Vasopressin contributes to dynorphin modulation of hypoxic cerebrovasodilation // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. -1998. V.275, № 44. — P. H2072-H2079.
  269. Voelkel N.F., Hegstrand L., Reeves J.T., McMurty I.F., Molinoff P.B. Effects of hypoxia on density of beta-adrenergic receptors // J. Appl. Physiol. 1981. — V.50,№ 2.-P. 363−366.
  270. Vogel J.A., Harris C.W. Cardiopulmonary responses of resting man during early exposure to high altitude // J. Appl. Physiol. 1967. — V.22. — P. 11 241 128.
  271. Walker B.R. Role of vasopressin in the cardiovascular response to hypoxia in the conscious rat // Am. J. Physiol. 1986. — V.251, № 6(2). — P. HI316-H1323.
  272. Wang G.L., Semenza G.L. Characterization of hypoxia-inducible factor 1 and regulation of DNA binding activity by hypoxia // J. Biol. Chem. 1993. -V.268.-P. 21 513−21 518.
  273. Watson J.P., Nolan J., Elliott M.W. Autonomic dysfunction in patients with nocturnal hypoventilation in extrapulmonary restrictive disease // Eur. Respir. J. 1999. — V.13, № 5. — P. 1097−1102.
  274. Wei H.M., Chen W.Y., Sinha A.K., Weiss H.R. Effect of cervical sympathectomy and hypoxia on the heterogeneity of O2 saturation of small cerebrocor-tical veins // J. Cerebr. Blood Flow Metab. 1993. — V.13. — P. 269−275.
  275. Weiss H. R, Buchweitz-Milton E. Role of alpha-adrenoceptors in the control of the cerebral blood flow response to hypoxia // Eur. J. Pharmacol. 1988. -V.148, № 1. -P. 107−113.
  276. Wiggers C.J. Cardiac adaptations in acute progressive anoxia // Ann. Intern. Med. 1941.-V.14.-P. 1237−1249.
  277. Winslow R. M, Samaja M, West J.B. Red cell function at extreme altitude on Mount Everest // J. Appl. Physiol. 1984. — V.56. — P. 109−116.
  278. Wolff C. B, Barry P, Collier D.J. Cardiovascular and respiratory adjustments at altitude sustain cerebral oxygen delivery Severinghaus revisited // Comp. Biochem. Physiol. A. -2002. — V. 132, № 1. — P. 221−229.
  279. Xie A, Skatrud B, Puleo D, et al. Exposure to hypoxia produces long-lasting sympathetic activation in humans // J. Appl. Physiol. 2001. — V.91. — P. 1555−1562.
  280. Yager J. Y, Brucklacher R. M, Vannucci R.C. Cerebral oxidative metabolism and redox state during hypoxia-ischemia and early recovery in immature rats //Am. J. Physiol. 1991. — V.261, № 4(2). — P. H1102-H1108.
  281. Yamamoto Y, Hoshikawa Y, Miyashita M. Effects of acute exposure to simulated altitude on heart rate variability during exercise // J. Appl. Physiol. 1996. — V.81, № 3. — P. 1223−1229.
  282. Yamamoto Y, Hughson R. L, Peterson J. C. Autonomic control of heart rate during exercise studied by heart rate variability spectral analysis // J. Appl. Physiol. 1991.-V.71.-P. 1136−1142.
  283. Yamamoto Y, Hughson R. L, Sutton J. R, Houston C. S, Cymerman A, Fallen E. L, Kamath M.V. Operation Everest II: an indication of deterministic chaos in human heart rate variability at simulated extreme altitude // Biol. Cybern.- 1993.-V.69.-P. 205−212.
  284. Yasuma F, Hayano J. Respiratory sinus arrhythmia: why does the heartbeat synchronize with respiratory rhythm? // Chest. 2004. — V.125, № 2. — P. 683−90.
  285. Yuan X.J., Tod M.L., Rubin L.J., Blaustein M.P. Contrasting effects of hypoxia on tension in rat pulmonary and mesenteric arteries // Am. J. Physiol. -1990. V.259. — P. H281-H289.
  286. Zhang J., Gibney G.T., Zhao P., Xia Y. Neuroprotective role of 8-opioid receptors in cortical neurons // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2002. — V.282. -P. C1225-C1234.
  287. Zhang Y., Guo Z., Wang W., He S., Lee T., Loew M. A comparison of the wavelet and short-time fourier transforms for Doppler spectral analysis // Med. Eng. Phys. 2003. — V.25, № 7. — P. 547−57.
  288. Zuzewicz K., Biernat B., Kempa G., Kwarecki K. Heart rate variability in exposure to high altitude hypoxia of short duration // Int. J. Occup. Saf. Ergon. 1999. — V.5, № 3. — P. 337−346.
  289. Особую благодарность автор выражает доктору медицинских наук Михаилу Степановичу Лушнову.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!