Экологические особенности микроспорогенеза и прогамной фазы оплодотворения у гибридов облепихи крушиновидной (Hippophae rhamnoides L.) разного эколого-географического происхождения
Диссертация
Декларация личного участия автора. При выполнении диссертационной работы были использованы материалы,. полученные в условиях полевых и лабораторных опытов, выполненных в 2004 — 2007 гг. За годы исследования было проанализировано 40 мужских растений, по 5 экземпляровкаждого гибрида. При определенииморфологических показателей пыльцы измерено 1440' пыльцевых зерен. При определении' показателей… Читать ещё >
Список литературы
- Авдеев В.И. К истории рода Hippophae L. //Биология, селекция и агротехника плодовых и ягодных культур. Сб. науч. тр. /Нижегород. с.-х. инт. — Н. Новгород, 1991.-С. 18−22.
- Алимова Г. К. Микроспора // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 1. Генеративные органы цветка. / Ред. Т. Б. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1994. — С. 82 — 83.
- Андреюк Д.С., Матвеева Н. П., Тукева М. И., Ермаков И. П. Динамка неорганических ионов в микроспоре и пыльцевых зернах табака в развитии мужского гаметофита // Онтогенез, 2000. Т. 31. — № 1. — С. 114−119.
- Архангельский Д. Б. Морфологические типы пыльцевых зерен современных цветковых растений // Бот. журн., 1982. Т. 67. — № 7. — С. 890 897.
- Барыкина Р.П., Веселова Т. Д., Девятов А. Г., Джалилова Х. Х., Ильина Г. М., Чубатова Н. В. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: Изд-во МГУ., 2004. 312 с.
- Батыгина Т.Б., Терехин Э. С., Алимова Г. К., Яковлев М. С. Генезис мужских спорангиев Gramineae и Ericaceae // Бот. журн., 1963. Т. 48. — № 8. -С. 1108- 1120.
- Батыгина Т.Б. Эмбриология пшеницы. Л.: Колос, 1974. 206 с.
- Батыгина Т.Б., Колесова Г. Е. Семейство Euphorbiaceae // Сравнительная эмбриология цветковых растений. Phytolaccaceae -Thymelaeaceae. Jl.: Наука, 1983. С. 267 — 277.
- Батыгина Т.Б., Круглова Н. Н. Движение ядра и клеток в развивающемся пыльцевом зерне // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 1. Генеративные органы цветка. / Ред. Т. Б. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1994. — С. 120 — 121.
- Батыгина Т.Б., Васильева В. Е. Размножение растений // Учебник -СПб.: Изд. С.-Петерб. ун-та, 2002. 232 с.
- Бессчетнов В.П. Селекционная оценка облепиховых зарослей //Вестник с.-х. науки Казахстана. Алма-Ата, 1975. — № 4. — С. 93 — 96.
- Бессчётнов В.П., Кентбаев Е. Ж. Популяционная структура естественных насаждений облепихи в Казахстане // Селекция, интродукция плодовых и ягодных культур: Сб. тр. НГСХА. Н. Новгород, 2003 — С. 60 -62.
- Бородина H.A. Полиплоидия в интродукции древесных растений. М.: Наука, 1982.-С. 56−57.
- Бритиков Е.А. Биологическая роль пролина. М., 1975. 88 с.
- Бритиков Е.А., Мусатова H.A. Накопление свободного пролина в пыльце // Физиология растений, 1964. Т.П. — вып.2. — С. 461−472.
- Броунов П.И. Значение сельскохозяйственно-метерологических наблюдений и краткое руководство для проведения их. СПб., 1897. — 137с.
- Васильева А.Е. Ультраструктура стигматоидных клеток Lilium // Физиология растений, 1970. Т. 17. — № 6. — С. 1240 — 1248.
- Вишнякова М.А. Исследование прогамной фазы оплодотворения у люцерны в связи с самонесовместимостью // Тр. по прикл. бот., ген. и селекции. Л., 1986. Т. 99. — С. 17 — 22.
- Вишнякова М.А. Рост пыльцевых трубок в пестиках цветка яблони (Malus domestica Borkh.) в связи с самонесовместимостью // Бюлл. ВИР, 1987. Вып. 170.-С. 34−38.
- Вишнякова М.А. Роль рыльца и столбика во взаимодействии пыльцы с пестиком у Trifolium pretense (Fabaceae) // Бот. журн., 1991. Т. 76. — № 5. -С.677 — 686.
- Вишнякова М.А. Проводниковый тракт пестика // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 2. Семя. / Ред. Т. Б. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1997. — С. 107 — 113.
- Гланц С. Медико биологическая статистика. Пер. с англ. — М., Практика, 1998.-459 с.
- Голубинский И.Н. Биология прорастания пыльцы. Киев, 1974. 368 с.
- Грибановская Т.В. Биологические особенности пыльцы некотрых плодовых культур. // Матер. Межд. Научн. практич. Конф. Молодых учёных. — Мичуринск, 2000. — Ч. 1. — С. 20 — 25.
- Добровольская A.A. Спорофитная регуляция развития мужского гаметофита петунии (PETUNIA HYBRIDA L.). Автореф. дис.. канд. биол. наук. М., 2006.-27 с.
- Доспехов Б. А. Методика полевого опыта. Изд. «Колос», М., 1973.
- Елисеев И.П. Некоторые соображения о систематике рода Hippophao L. // Плодовые и ягодные культуры. / Тр. ГСХИ. Т.77. Горький, 1974. — С. 60 -72.
- Елисеев И.П. Онтогенез и продолжительность жизни особей Hippophae rhamnoides L. в культуре // Биологические основы повышения продуктивности и охраны лесных, луговых и водных фитоценозов. Сб. ст. — Горький, 1975.-Вып. 4.-С. 3−11.
- Ермаков Б.С., Фаустов В. В. Технология выращивания облепихи. М.: Россельхозиздат, 1983. — 63 с.
- Жамсран Ц. Биология облепихи крушиновидной Северной Монголии: Автореф. дис. канд. .биол. наук. Иркутск, 1971. 20 с.
- Запрягаева В.И. Дикорастущие плодовые Таджикистана. — M.-JL: Наука, 1964. С. 559 — 567.
- Ильина H.A. Особенности опыления облепихи в Челябинской области // Бюлл. Всесоюзного института растениеводства им. Н. И. Вавилова. Л., 1982.-Вып. 118.-С. 70−71.
- Ильина H.A. Особенности биологии и хозяйственная ценность сортов и форм облепихи в условиях Южного Урала: Автореф. Дисс. канд с.-х. наук. Л. 1983.-21 с.
- Ильина H.A. Развитие цветочных почек у облепихи в условиях Челябинска // Физиология, экология и агротехника садовых культур: Сб. науч. тр. Новосибирск, 1985. —С. 107—115.
- Имс А. Д. Морфология цветковых растений. М., 1964. 497с.
- Каден H.H., Кондорская В. Р. Морфология цветка и плода лоховых // Морфология растений: Сборник статей, посвящ. памяти проф. К. И. Мейерэ. — М, 1967.-С. 102−119.
- Камелина О.П., Проскурина О. Б. Семейство Elaeagnaceae // Сравнительная эмбриология цветковых растений. Davidiaceae — Asteraceae. — Л., 1987.-С. 105−110.
- Камелина О.П. Тапетум // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 1. Генеративные органы цветка. / Ред. Т. Б. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1994. — С. 46 — 47.
- Касимовская И.А. Оценка сортов облепихи в условиях центральночернозёмного региона. Автореф. дис. .канд. с. х наук. Мичуринск, 2004. — 28 с.
- Ковалева Л.В., Ракитин В. Ю., Добровольская А. А. Гаметофитно-спорофитные взаимодействия в системе пыльца-пестик. II. Выделение этилена и СО2 при опылении // Физиология растений, 2000. Т. 47. — № 3. -С. 474−477.
- Ковалева Л.В., Захарова Е. В., Скоробогатова И. В., Карсункина Н. П. Гаметофитно-спорофитные взаимодействия в системе пыльца-пестик. 3. Гормональный статус в прогамной фазе оплодотворения // Физиология растений, 2002. Т. 49. — № 4. — С 549 — 552.
- Ковалева Л.В., Захарова Е. В. Гаметофитно-спорофитные взаимодействия в системе пыльца-пестик. 4. Гормональный статус и механизм самонесовместимости // Физиология растений, 2004. — Т. 51. — № 3. -С. 402−406.
- Кондорская В. Р. Морфология тычиночного цветка и развитие мужского гаметофита облепихи // Науч. доклады высшей школы. Биол. науки. 1967. № 4. — С. 69 — 75.
- Кондорская В. Р. Анатомо-морфологическое исследование облепихи (ГПррорЬае гЬатшлёез Ь.): Автореф. дисс.. канд. биол. наук. М., 1973. -21с.
- Кондрашов В.Т. Культура облепихи в центральных районах РСФСР (рекомендации). Мичуринск, 1984. — 34 с.
- Кондрашов В.Т., Соколова Е. П. О новых вилтоустойчивых формах облепихи // Бюл. Моск. О-ва испытателей природы. Отд. Биол., 1991. Т. 96. -Вып. 1.-С. 146−153
- Концевой М.Г. Облепиха. Ижевск: Удмуртия, 1981. — 72 с.
- Корзинников Ю.С., Крымская Н. Б., Гачечиладзе Н. Д. особенности биологии и морфологии облепихи Западного Памира //Биология, химия и фармакология облепихи. Сб. науч. тр. Новосибирск: Наука, 1983. — С. 19 — 24.
- Коробова С.Н. Движение спермиев в пыльцевой трубке покрытосеменных растений // Бот. журн., 1977. Т. 62. — № 11. — С. 1585 -1589.
- Коробова С.Н. Движение спермиев покрытосеменных растений в пыльцевой трубке и в зародышевом мешке // Актуальные вопросы эмбриологии покрытосеменных. / Ред. М. С. Яковлев. — Л.: Наука, 1979. — С. 5 19.
- Коробова С.Н., Ковалева Л. В. Пыльцевая трубка // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 2. Семя. / Ред. Т. Б. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1997. — С. 120 — 121.
- Линскенс Г. Ф. Реакция торможения при несовместимом опылении и ее преодоление // Физиология растений, 1978. — Т. 19. № 1. — С. 192 — 204.
- Литвак А.И. Люминесцентная микроскопия в исследовании опыления и роста пыльцевых трубок в пестике // Генетика и селекция в Молдавии. — Кишинев, 1971.-С. 1 105.
- Мальцева А.Н. Морфофизиологический анализ развития почек облепихи крушиновидной // Биология, селекция и агротехника плодовых и ягодных культур. Сб науч. тр. Горький, 1987. — С. 91 — 100.
- Матвеева Н.П., Ермаков И. П. Физиология развития мужского гаметофита покрытосеменных растений (Современные направления исследований) // Журнал общей биологии, 1999. Т. 60. № 3. С. 277 — 293.
- Минкина Ю.В. Фитогормоны и флавонолы в регуляции прорастания пыльцы и роста пыльцевых трубок петунии (PETUNIA HYBRIDA L.). Автореф. дис.. канд. биол. наук. М., 2007. -27 с.
- Меликян А.П., Тихомиров В. Н. Цветок // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 1. Генеративные органы цветка. / Ред. Т. Б. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1994. — С. 29 — 34.
- Модилевский Я.С. Эмбриология покрытосеменных растений. Киев.: Изд-во АН УССР, 1953. 224 с.
- Мочалов B.B. Введение облепихи в культуру в Новосибирской области // Научные труды Новосибирской плодово-ягодной опытной станции. — Вып. 1. Новосибирск, 1974. — С. 99−108.
- Навашин М.С. Пыльцевая трубка покрытосеменных как полярно-дифференцированная система // Матер. Всес. симп. по эмбриологии растений. Киев: Наукова думка, 1968. — С. 141- 146.
- Навашин М.С., Макушенко JI.M., Волховских З. В. Морфологическое исследование пыльцевой трубки // Тез. координац. совещ. По проблеме «Узловые вопросы цитологии». JL, 1959. С. 17.
- Наумова Т.Н. Халазогамия // Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции. Т. 2. Семя. / Ред. Т. Е. Батыгиной. СПб.: Мир и семья, 1997.-С. 138- 139.
- Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. М., 1974. 304 с.
- Поддубная-Арнольди В. А. Общая эмбриология покрытосеменных растений. М.: Наука, 1964. — 482 с.
- Поддубная-Арнольди В. А. Цитоэмбриология покрытосеменных растений. Основы и перспективы. -М.: Наука, 1976. 508 с.
- Полунина H.H., Свешникова А. И. Микрофотосъёмка при изучении пыльцы и пыльцевых трубок некоторых амариллисовых // ДАН СССР., 1959. -Т. 127. -№ 1.-С. 217−219.
- Прозина М.Н. Ботаническая микротехника. М.: Высшая школа. 1960. -206 с.
- Резникова С.А. Цитология и физиология развивающегося пыльника. М.: Наука, 1984.-266 с.
- Селехов В.В. Селекционно-биологическая оценка мужских форм облепихи: Автореф. кад. дис.. с х наук. — Брянск, 2000. — 22 с.
- Созонова Л.И. Плод облепихи. Закономерности развития и строения в связис накоплением масла. Н. Новгород, 1991. — 257 с.
- Соколова Е.П. Период восприимчивости цветка облепихи к опылению //Вопросы интенсификации садоводства в центрально-черноземной зоне. Сб. науч. тр. Воронеж, 1985. — С. 178 — 185.
- Соколова Е.П., Кондратов В. Т. Биологические особенности опылителей облепихи, перспективных для Центральной Чернозёмной Зоны. // Биология, селекция и агротехника облепихи: Сб. науч. тр. Изд-во Горьк. с.-х. ин-т. Горький, 1988. С. 64−70.
- Тахтаджян А.Л. Систематика и филогения цветковых растений. М.: Л.: Наука, 1966.-612 с.
- Тихменев Е.А. О жизнеспособности пыльцы арктических злаков // Бот. журн., 1974.-Т. 59.-№ 10.-С. 1520- 1524.
- Фаустов В.В. Особенности цветения и плодоношения облепихи крушиновидной//Известия ТСХА., 1975.-Вып.З.-С. 137−146.
- Фефелов В.А., Фефелова H.H. Целебный дар природы. — Н. Новгород: изд-во ННГУ, 1991.-61 с.
- Фефелов В.А., Селехов В. В., Коровина М. А., Кузнецова Т. Н. Материалы к разработке программы селекции мужских сортов-опылителей облепихи. // Мат. III. Международ. Симпозиума по облепихи. Улан-Уде, 24 -29 авг. 1998. г. Новосибирск, 1998. — С. 32 — 35.
- Фефелов В.А. Биология опыления облепихт. // Физиология, электрофизиология, ботаника и интродукция сельскохозяйственных растений: Сборник научных трудов / НГСХА. Н. Новгодод, 2001. С. 250 -253.
- Фефелов В.А. Особенности цветения и оплодотворения облепихи крушиновидной. // Актуальные проблемы лесного хозяйства Нижегородского Поволжья и пути их решения: сборник научных статей / НГСХА. Н. Новгород, 2005. С. 224 — 228.
- Финн В.В. Spermazellen bei Vinca minor and V. herbacea // Ber. deutsch. bot. Gesell., 1928. 46. — C. 235 — 246.
- Цигнер H.B., Петровская-Баранова Т.П. Оболочка пыльцевого зерна -живая физиологически активная структура // ДАН СССР., 1961. Т. 138. — С. 466−469.
- Эсау К. Анатомия растений. М.: Мир, 1969. 564 с.
- Яндовка JI.B. Цитологический анализ процесса микроспорогенеза Cerasus vulgaris (Rosaceae) в связи с водным режимом. // Бот. журн., 2004 а. -Т. 89.- № 6. -С. 924 -935.
- Яндовка JI.B. Цитомиксис в процессе мейоза при микроспорогенезе у Cerasus vulgaris (Rosaceae) в связи с водным режимом. // Бот. журн., 2004 б. — Т. 89.-№ 7.-С. 1141 1145.
- Ai Y.J., Singh A., Coleman C.E., Loerger T.R., Kheyr-Pour A., Kao Т.Н. Self-incompatibility in Petynia inflate isolation and characterization of cDNAs encoding 3 S-allele-associated proteins. // Sex. Plant Reprod., 1990. — V. 3. — S. 323−331.
- Allwod E.G., Anthony R.G., Smertenko A.P., Reichelt S., Drobak B.K., Doonan J.H., Weeds A.G., Hussey P.J. Regulation of the pollen-specific actin-depolymerizing factor LIADF1. // Plant Cell., 2002. V. 14. — S. 2915 -2927.
- Amici G.B. Observations microscopiques sur diverses especes deplantes. // Ann. Sci. Nat. Bot., 1823. 2: 41 70, 211 — 248.
- Aouali N,. Laporte P., Clement C. Pectin secretion and distribution in the anther during pollen development in Lilium. // Planta. 2001. V. 213 (1). S. 71 79.
- Barendse G.W.M., Pereira A.S.R., Berkers P.A., Driessen F.M., van Eyden-Emons A., Linskens H.F. Growth hormones in pollen, styles and ovaries of Petunia hybrida and Lilium species. // Acta. Bot. Neerl. 1970. V.19. — S. 175 — 185.
- Batygina T.B., Vasilyeva V.E. Periodization in the development of flowering plant reproductive structures critical periods. // Acta Biol. Cracov., Ser. Bot. 2003.-V. 45.-№ l.-S. 27−36.
- Bednarska E. The effect of exogenous Ca2+ ions on pollen grain germinationo i ^ ¦and pollen tube growth-investigation with the use of Ca and verapamil, Ca and ruthenium red. // Sex Plant Reprod., 1991. V. 4. — S. 36 — 38.
- Bednarska E., Butowt R. Calcium in pollen-pistil interaction in Petunia hybrida Hort. II. Localization of Ca2+ ions and Ca2±ATPase in unpollinated pistil. Folia Cytochem Cytobiol., 1995. V. 33. — S. 43 — 52.
- Bernabas B. Effect of water loss on germination ability of maize (Zea mays) pollen. // Ann. Bot., 1985. 48. S. 861 — 864.
- Bell P.R. Incompatibility in flowering plants: adaptation of an ancient response. // Plant Cell., 1995. V. 7. — № 7. — S. 5 — 16.
- Blackmore S., Barnes S.H. Pollen wall development in angiosperms. // In Microspores, Evolution and ontogeny / S. Blackmore and R.B. Knox, eds. New York: Academik Press, 1990. S. 173 — 192.
- Bots M., Vergelt F., Wolters-Arts M., Weterings K., van As H., Mariani C. Aquaporins of the PIP 2 class are required for efficient anter dehiscence in tobacco. // Plant Physiology, 2005. V. 135. — S. 1049 — 1056.
- Bots M., Feron R., Uehlein N., Weterings K., Kaldenhoff R., Mariani C. PIP1 and PIP2 aquaporins are differentially expressed during tobacco anther and stigma development. // J. Exp. Bot., 2005. V. 56. — S. 113 — 121.
- Brown R.C., Lemmon B.E. Pollen development in orhids 3. A novel generative pole microtubule system predicts unequal pollen mitosis. // J. Cell. Sci. 1991.-V. 99.-S. 273−281.
- Bruun L., Olesen P. A structural investigation of the ovule in sugar beet, Beta vulgaris: The micropylar nucellus. // Nordic J. Bot., 1989. V. 9. — S. 81 -97.
- Bui A.Q., O’Neill S.D. Three 1-aminocyclopropane-l-carboxylate synthase genes regulated by primary and secondary pollination signals in orchid flowers. // Plant Physiol., 1998. V. 116. — S. 419 — 428.
- Burg S.P., Dijkman MJ. Ethylene and auxin participation in pollen induced fading of Vanda orchid blossoms. // Plant Physiol., 1967. V. 42. — S. 1648.
- Carafa A.N., Pizzolongo P. Callose in cell wall during reproductive processes in Cytinus hypocistis L. // Cariologia., 1990. V. 43. — № 1. — S. 57 -63.
- Chen Y.C. S., McCormick S. Sidecar pollen, an Arabidopsis thaliana male gametophytic mutant with aberranmt cell divisions during pollen development. // Development. 1996. V. 122. — S. 3243 — 3253.
- Chen Y.C. S., Wong E.L., Vidali L., Estavillio A., Hepler P.K., Wu H.M., Cheung A.Y. The regulation of actin organization by actin-depolymerizing factor in elongating pollen tubes. // Plant Cell. 2002. V. 14. — S. 2175 — 2190.
- Cheung A.Y. Pollen-pistil interactions in compatible pollination. // Proc Natl Acad Sci. 1995. V. 92. — S. 3077 — 3080.
- Cheung A.Y., Wang H., Zhan X., Wu H. A transmitting tissue specific pollen tube growth-promoting glycoprotein. Proc 15th Intern. Congress on Sexual Plant Reproduction. 1998.
- Chibi F., Angosto T., Matilla A. Variations of the patterns of abscisic acid and praline during maturation of Nicotiana tabacum pollen grains. // J. Plant Phys. 1995. V. 147. — № 3 — 4. — S. 355 — 358.
- Clark K.R., Okuley J.J., Collins P.D., Sims T.L. Sequence variability and developmental expression of S-alleles in self-compatible and pseudo seif-compatible Petunia. // Plant Cell., 1990. V. 2. — S. 815 — 826.
- Clement C., Laporte P., Audran J.C. The loculus content and tapetum during pollen development in Lilium. // Sex Plant Reprod., 1998. V. 11. — S. 94 — 106.
- Cresti M., Murgia M., Theunis C.H. Microtubule organization in sperm cells in the pollen tubes of Brassica oleracea L. // Protoplasma. 1990. V. 154 (2/3). -S. 151 — 156.
- Dutta R., Robinson K.R. Identification and characterization of stretch-activated ion channels in pollen protoplasts. // Plant Physiol. 2004. V. 135. — S. 1398- 1406.
- Eady C., Lindsey K., Twell D. The significance of microspore division and division symmetry for vegetative cell-specific transcription and generative cell differentiation. // Plant Cell., 1995. V. 7. — № 1. — S. 65 — 74.
- Feijo J.A., Malho R., Obermeyer G. Ion dynamics and its possible role during in vitro pollen germination and tube growth. // Protoplasma., 1995. V. 187.-S. 155 — 167.
- Feijo J. A. The pollen tube oscillator: towards a molecular mechanism of tip growth? Fertilization in higher plants. Heidelberg, Germany. Springer-Verlag Berlin. 1999. S. 317 -336.
- Feijo J.A., Sainhas J., Holdaway-Clarke T., Cordeiro M.S., Kunkel J.G., Hepler P.K. Cellular oscillations and the regulation of growth: the pollen tube paradigm. // Bioessays. 2001. V. 23. — № 1. — S. 86 — 94.
- Franci G. G., Nepi M., Dafni A., Pacini E. Partially Hydrated pollen: Taxonomic distribution, ecological and evolutionary significance. // Plant Syst. Evol. 2002. V. 234. — S. 211 — 227.
- Franklin-Tong V.E., Hackett G., Hepler P.K. Ratio imaging of Ca in the self-incompatibility response in pollen tubes of Papaver rhoeas. // Plant J. 1997. -V. 12.-S. 1375- 1386.
- Franklin-Tong V.E. Signaling and the modulation of pollen tube growth. // Plant Cell, 1999.-V. 11. —S. 727−738.
- Franssen-Verheijen M.A.W, Willemse M.T.M. The ovule of Gasteria verrucosa at receptivity of the stigma: an ultrastructural study. // Acta Bot. Neerl. 1990.-V. 1990.-S. 53 -63.
- Fu Y., Yang Z. Rop GTRase: a master switch of cell polarity development in plants. // Elsevier Science Ltd. 2001. -PII. S. 1360 — 1385.
- Geitmann A., Cresti M. Ca channels control the rapid expension in pulsating growth of Petunia hybrida pollen tubes. // J Plant Physiol., 1998. V. 152.-S. 439−447.
- Geitmann A., Snowman B.N., Emons A.M.C., Franklin-Tong V.E. Alterations in the cytoskeleton of pollen tubes are induced by the self-incom patibility reaction in Papaver rhoeae. // Plant Cell. 2000. V. 11. — S. 1239 — 1251.
- Ghosh S., Shivanna K.R. Anatomical and cytochemical studies of the stigma and style in some legumes. // Bot. Gaz., 1982. V. 143 (3). — S. 311 — 318.
- Golaszweska B., Bernarska E. Immunocytochemical localization of pectins in the maturing anther of Allium cepa L. // Folia Histochem. Citobiol., 1999. V. 37. -№ 3. — S. 199−208.
- Goldberg R. B. Plant: novel developmental processes. // Science., 1988. V. 240.-S. 1460- 1467.
- Goldberg R. B., Beals T.P., Sanders P.M. Anther development: basic principles and practical applications. // The Plant Cell., 1993. -V. 5.-S. 1217 — 1229.
- Hepler P.K. Tip growth in pollen tubes: Calcium lies the way. // Trends Plant Sci., 1997. V. 2. — S. 79 — 80.
- Herrero M., Arbeloa A. Influence of the pistil on pollen tube kinetics in peach (Prunus persica). // Amer. J. Bot., 1989. V. 76. — № 10. — S. 1441 — 1447.
- Heslop-Harrison J. Cell walls, cell membranes and protoplasmic connections during meiosis and pollen development. // In: Pollen: physiology and fertilization / Ed. Linskens. Amsterdam.: North-Holland Pabl. Co., 1964. S. 39 — 47.
- Heslop-Harrison J. Cytoplasmic continuities during spore formation in flowering plants. // Endeavour., 1966. V. 25. — S. 65 — 72.
- Heslop-Harrison J. Incompatibility and the pollen stigma interaction. // Ann. Rev. Plant Physiol., 1975. V. 26. — S. 403 — 425.
- Heslop-Harrison J. Pollen germination and pollen tube growth. // Int. Review of Cytology. Pollen: Cytology and development. / Eds. Giles K.L., Prakash J. London, 1987. S. 1 — 78.
- Heslop-Harrison J., Heslop-Harrison Y. Enzymic removal of the proteinaceous pellicle of the stigma papilla prevents pollen tube entry in the Caryophyllaceae. //Ann. Bot. (London), 1975. -V. 39. S. 163 — 165.
- Heslop-Harrison J., Heslop-Harrison Y. The pollen-stigma interaction in the grasses. 2. Pollen tube penetration and the stigma response in Secale. // Acta Bot. Neerl. 1981. V. 30. — № 4. — S. 289 — 307.
- Heslop-Harrison Y. The pollen-stigma interaction: pollen tube penetration in Crocus. // Ann. Bot. (London), 1977. V. 41. — S. 913 — 922.
- Heslop-Harrison Y., Heslop-Harrison J. The pollen-stigma interaction in the Leguminosae: The secretory system of the style in Trifolium pretense. // Ann. Bot. (London), 1982. V.50. — S. 635 — 645.
- Heslop-Harrison Y., Reger J. Tissue organization, pollen receptivity and pollen tube guidance in normal and mutant stigmas of the grass Pennisetum typhoides (Burm.) Stapf et Hubb. // Sex. Plant Reprod., 1988. V. 1. — S. 182 -193.
- Heslop-Harrison Y., Shivanna K.R. The receptive surface of angiosperm stigma. // Ann. Bot. (London), 1977. V. 41. — S. 1233 — 1258.
- Hicks G.R., Rojo E., Hong S., Carter D.G., Raikhel N.V. Germinatinog pollen has tubular vacuoles, displays highly dynamic vacuole biogenesis, and requires VACUOLESS1 for proper function. // Plant Physiology., 2004. V. 134. № 3.s. 1227.
- Hille B. Ion channels of excitable membranes, 3rd Sunderland, MA, USA: Sinauer Press. 2001.
- Hoekstra F. A, Bruinsma J. Respiration and vitality of binucleate and trinucleate pollen. // Physiol. Plant. (Copenhagen), 1975. V. 34. — S. 221 — 225.
- Holdaway-Clarke T. L, Feijo J. A, Hackett G. R, Kunkel J. G, Hepler P.K. Pollen tube growth and the intracellular cytosolic calcium gradient oscillate in phase while extracellular calcium influx is delayed. // Plant Cell, 1997. V. 9. — S. 1999−2010.
- Hoopen R. T, Harbord R. M, Maes T, Nanninga N, Robbins T.P. The Self-incompatibility (S) locus in Petunia hybrida is located on chromosome III in a region, syntenic for the Solanaceae. // Plant J, 1998. V. 16. — S. 729 — 734.
- Horvitz H. R, Herskowitz I. Mechanisms of asymmetric cell division: Two Bs or not two Bs, that is the question. // Cell, 1992. V. 68. — S. 237 — 255.
- Iwano M. Entani T, Shiba H, Takayama S, Isogai A. Calcium crystals in the anther of Petunia: the existence and biological significance in the pollination process. // Plant. Cell. Physiol. 2004. V. 45. — S. 40 — 47.
- Jaffe L. A, Weisenseel M.H. Jaffe L.F. Calcium accumulation within the growing tips of pollen tubes. // J. Cell. Biol. 1975. V. 67. — S. 488 — 492.
- Janson J. Pollen Tube-pistil Interaction and Fertilization in Lilium longiflorum. Wageningen: Landbouwuniversiteit Wageningen, 1992. S. 1 — 145.
- Jensen W. A, Fisher D.B. Cotton embryogenesis: the tissue of the stigma and style and their relation to the pollen tube. // Planta, 1969. V. 84. S. 97 — 121.
- Kevin L.-C. Wang, Hai Li, Ecker J.R. Ethylene biosynthesis and signaling networks.//Plant Cell. 2002. V. 14. S. 131 151.
- Kinoshita T., Nishimura M., Shimazaki K. Cytosolic concentration of Ca2+ regulates the plasma membrane IT1″ -ATPase in guard cells of fava bean. // Plant Cell. 1995. V. 7. S. 1333 1342.
- Knox R.B. The pollen grain. // in B.M. Johri (Ed.) Embriology of Angiosperms. Springer Verlag. 1984. S. 197−271.
- Koltunow A.M., Truettner J. Cox K. H., Wallroth M., Golberg R.B. Defferent temporal and spatial gene expression patterns occur during anther development. // Plant Cell. 1990. V. 2. S. 1201 1224.
- Kovaleva L., Zakharova E. Hormonal status of the pollen-pistil system at the progamic phase of fertilization after compatible and incompatible pollination in Petunia hybrida L. // Sex Plant Reprod. 2003. V. 16. S. 191 196.
- Lee H.S., Karunanandaa B., McCubbin A., Gilroy S., Kao T. PRK1, a receptor-like kinase of Petunia inflate, is essential for postmeiotic development of pollen. // Plant J. 1996. V. 9. № 5. S. 613 624.
- Lee S.-L. J., Warmke H. E. Organelle size and number in fertile and T-cytoplasmic male sterile corn. // Am. J. Bot. 1979. V. 66. S. 141 148.
- Lenartowska M., Rodriguez-Garcia M.I., Bednarska E. Immunocytochemical localization of esterified and unesterified pectins in pollinated and pollinated styles of Petunia hybrida Hort. // Planta., 2001. V. 213. -S. 182−191.
- Linskens H.F., Heinen W. Cutinase-Nachwies in Pollen. // Z. Bot., 1962. -V. 50.-№ 4.-S. 338−347.
- Llop-Tous I., Barry C.S., Grierson D. Regulation of ethylene biosynthesis in response to pollination in tomato flowers. // Plant Physiol. 2000. V. 123. — № 3. -S. 971−978.
- Lord E.M., Heslop-Harrison Y. Pollen-stigma interaction in Leguminosae: stigma organization and the breeding systems in Vicia faba L. // Ann. Bot. (London), 1984. V. 54. — № 6. — S. 827 — 836.
- Lord E.M., Webster B.D. The stigmatic exudates of Phaseolus vulgaris L. // Bot. Gaz., 1979. V. 140. — S. 266 — 271.
- Malho R., Trewavas A J. Localized apical increases of cytosolic free calcium control pollen tube orientation. // Plant Cell., 1996. V. 8. — S. 1935 -1949.
- Malho R. Pollen tube guidance the long and wounding road. // Sex Plant reproduction., 1998. — V. 11. — S. 242 — 244.
- Mariani C., De Beuckeleer M., Truettner J., Leemans J., Goldberg R.B. Induction of male sterility in plants by a chimeric ribonyclease gene. // Nature., 1990.-V. 347.-S. 737−741.
- Martinis D.D., Mariani C. Silencing sene exoression of the ethylene-forming enzyme results in a reversible inhibition of ovule development in transgenic tobacco plants. // Plant Cell., 1999. V. 11. — S. 1061 — 1071.
- Martinis D.D., Cotti G., te Lintel Hekker S., Harren F.S., Mariani C. Ethylene response to pollen tube grouth in Nicotiana tabacum flowers. // Planta., 2002. V. 214. — S. 806 — 812.
- Mascarenhas J.P. The male gametophyte of flowering plants. // The Plant Cell., 1989. V. 1. — S. 657 — 664.
- Mascarenhas J.P. Gene activity during pollen development. // Annu Rev Plant Physiol. Plant Mol Biol., 1990. V. 41. — S. 317 — 338.
- Mattsson O., Knox R.B., Heslop-Harrison J., Heslop-Harrison Y. Protein pellicle of stigmatic papillae as a probable recognition site in incompatibility rection. // Nature, 1974. V. 247. — S. 298 — 300.
- Messerli M.A., Danuser G., Robinson K.R. Pulsative influxes of FT, K+ and Ca lag growth pulses of Lilium longiflorum pollen tubes. // J Cell Sci., 1999. V. 112. -№ 10.-S. 1497- 1509.
- Messerli M.A., Creton R., Jaffe L.F., Robinson K.R. Periodic increases in• 2 1'elongation rate precede increases in cytosolic Ca during pollen tube growth. //
- Developmental Biol. 2000. V. 222. — S. 84 — 98.• 2+ 181. Messerli M.A., Robinson K.R. Tip localized Ca pulses are coincident withpeak pulsatile growth rates in pollen tubes of Lilium longiflorum. // Cell Sci., 1997. V. 110. — S. 1269 — 1278.
- Miki-Hirosige H., Nakamura S. Process of metabolism during pollen tube wall formation. // J. Electron Microsc., 1982. — S. 31.
- Mol R., Filek M., Dumas C., Matthys-Rochon E. Cytoplasmic calcium in silk trichomes after pollen grain receptor and post-pollination changes of the electric potential in pistil tissues of maize. // Plant Science, 2004. V. 166. — S. 1461 — 1469.
- Nasrallah J.B., Kao T.-h., Goldberg M.L., Nasrallah M.E. A c DNA Clone encoding an S-specific glycoprotein from Brassica oleracea. //Nature., 1985. V. 318. — S. 263 — 267.
- Pacini E., Franchi G., Hesse M. The tapetum: its form, function end possible phylogeny in Embriophyta. // Plant System. Evolut., 1985. V. 149. — № 1. — S. 155- 185.
- Park S.-Y., Jauh G.-Y., Mollet J.-C., Eckard J., Nothnagel E.A., Walling L.L., Lord E.M. A lipid transfer-like protein is necessary for lily pollen tube adhesion to an in vitro stylar matrix. // Plant Cell., 2000. V. 12. — S. 151 — 163. I
- Picton J.M., Steer M.W. Evidence for the role of Ca ions in tip extension in pollen tubes. // Protoplasma, 1983. V. 115. — S. 11 — 17.
- Pierson E.S., Cresti M. Cytoskeleton and cytoplasmic organization of poiien and pollen tubes. // Int Rev Cytol., 1992. V. 140. — S. 73.
- Pierson E.S., Miller D.D., Callaham D.A., van Aken J., Hackett G., Hepler P.K. Tip-localized calcium entry fluctuates during pollen tube growth. // Dev. Biol., 1996. V. 174. — S. 160 — 173.
- Polowick P.L., Sawhney V.K. Ultrastructure of the tapetal cell in the stamenless-2 mutant of tomato (Lycopersicon esculentum): correlation between structure and male sterility. // Protoplasms., 1995. V. 189. — № 3−4. — S. 249 -255.
- Prakash J., Giles K.L. Induction and growth of androgenetic haploids. // In Pollen: Cytology and Development. Int. Rev. Cytol., 1987. V. 107. — S. 273 -292.
- Preuss D., Lemieux B., Yen G., Davis R.W. A conditional sterile mtation eliminates surface components from Arabidopsis pollen and disrupts cell signaling during fertilization. // Genes Dev., 1993. V. 7. — № 6. — S. 974 — 985.
- Rau M.A., Sharma V.K. Elaeagnaceae. // Bui. Ind. Nat. Sci. Acad., 1970. -№ 41.-p. 185 187.
- Ressayre A., Mignot A., Siljak-Yakovlev S., Raquin C. Postmeiotic cytokinesis and pollen aperture number determination in eudicots: effect of the cleavage wall number. // Protoplasma., 2003. V. 221. — № 3−4. — S. 257 — 268.
- Ross J.H.E., Murphy D.J. Characterization of anther-expressed genes encoding a major class of extracellular oleosin-like proteins in the pollen coat of Brassicaceae. // Plant J., 1996. V. 9. — № 5. — S. 625 — 637.
- Rougier M., Inoud N., Said C., Russell S., Dumas C. Male gametophyte development and formation of the male germ unit in Populus deltoides following compatable pollination. // Protoplasma, 1991. V. 162. — № 2−3. — S. 140 — 150.
- Rousi Arne. Evolutionary Relationship and Systematics in Hippophae. Proceedings of International Symposium on Sea Buckthorn (H. Rhamnoides L.), P. Xian, China. 1989.-p. 17−20.
- Rudd J. J, Franklin-Tong V.E. Unravelling response-specificity in Ca signaling pathways in plant cells. // New Phytologist, 2001. V. 151. — S. 7 — 33.
- Scott R, Hodge R, Paul W, Draper J. The molecular biology of anther defferentiaton.//Plant Science, 1991. V. 80. — S. 167 — 191.
- Scott R. J, Spielman M, Dickinson H.G. Stamen structure and function. // Plant Cell (Suppl), 2004. V. 16. — S. 46 — 60.
- Scott R. Anther development: a molecular perspective. // In: Jordan B.R. (ed.) The molecular biology of flowering. 1993. C.A.B. International, Wallingford. -S. 141−184.
- Servettaz C. Monographie des Elaeagnaceae // Beihefte zum Bot. Centralblatt. Dresden, 1909. Bd. 25. — 407 s.
- Shimmen T, Ridge R. W, Lambiris I, Plazinski J, Yokota E, Williamson R.E. Plant myosins. // Protoplasma, 2000. V. 214. — S. 1 — 10.
- Shivanna K. R, Heslop-Harrison Y, Heslop-Harrison S.S. Inhibition of the pollen tube in the self-incompatibility response of grasses. // Incompat. Newslett, 1978.-V. 10.-S. 5−7.
- Singh A, Evensen K. B, Kao T.-h. Ethylene synthesis and floral senescence following compatible and incompatible pollination in petunia inflate. // Plant Physiol, 1992. V. 99. — S. 38 — 45.
- Sondheimer E, Linskens H.F. Coltrol of in vitro germination and tube extension of Petunia hybrida pollen. // Koninkl. Nederl. Akademie van wetenschappen Amsterdam. Reprinted from Proceedings, 1974. — V. 77. — № 2. -S. 116−124.
- Staehelin L.A., Hepler P.K. Cytokinesis in higher plants. // Cell., 1996. V. 84. — № 6. — S. 821 -824.
- Stanley R.G., Linskens H.F. Pollen: Biology, biochemistry, management. Berlin, N-Y: Springer, 1974.
- Stauffer C., Benito Moreno R.M., Heberle-Bors E. Seed set after pollination with in-vitro-matured isolated pollen of Triticum aestivum. // Theor. Appl. Genet., 1991.-V. 81.-S. 576−580.
- Stein J.C., Dixit R., Nasrallah M.E., Nasrallah J.B. SRK, the stigmaspecific S locus receptor kinase of Brassica, is targeted to the plasma membrane in transgenic tobacco. // Plant Cell., 1996. V. 8. — S. 429 — 445.
- Tanaka I. Microtubule-determined plastid distribution during microsporogenesis in Lilium longiflorum. // J. Cell Sci., 1991. V. 99. — S. 21 -31.
- Tanaka I. Development of Male Gametes in Flowering Plants. // J. Plant Res., 1993. V. 106. — S. 55 — 63.
- Tang X., Gomes A.M.T.R., Bhatia A., Woodson W.R. Pistil specific and ethylene-regulated expression of 1-aminocyclopropane-l-carboxylate oxidase genes in petunia flowers. // Plant Cell., 1994. V. 6. — S. 1227 — 1239.
- Testilliano P. S., Gonzales-Melendi P., Ahmadian P., Fadon B., Risueno M.S. The immunolocalization of nuclear antigens during the pollen developmental program and the induction of pollen embryogenesis. // Exptl. Cell Res., 1995. V. 221. -№ 1.-S.41 -54.
- Theologis A. One rotten apple spoils the whole bushel: The role of ethylene in fruit ripening. // Cell., 1992. V. 70. — S. 181 — 184.
- Tupy J., Rihova L., Zarsky V. Production of fertile tobacco pollen From microspores in suspension culture and its storage for in situ pollination. // Sex Plant Reprod., 1991. V. 4. — S. 284 — 287.
- Tupy J., Rihova L., Capkova V., Zarsky V. Differentiation and maturation of tobacco pollen in situ and in suspension culture. // Angiosperm pollen and Ovules. N.Y. etc.: Springer-Verlag, 1992. S 309 — 314.
- Vidali L., McKenna S.T., Hepler P.K. Actin polymerization is essential for pollen tube growth. // Molecular Biology of the Cell. 2001. V. 12. S. 2534 2545.
- Vishnakova M.A., Willemse M.T.M. Pollen-pistil interaction in wheat. // Acta Bot. Neerl., 1994.-V. 43.-№ 1. S. 231 -252.
- Wagner V.T., Cresti M., Salvatici P., Tiezzi A. Changes in volume, surface area, and frequency of nuclear pores of the vegetative nucleus of tobacco pollen in fresh, hydrated, and activated conditions. // Planta., 1990. V. 181. — S. 304 — 309.
- Walters M.S. Meiosis readiness in Lilium. // Can. J. Genet. Cytol., 1985. -V. 27.-S. 33 -38.
- Wang T.W., Balsamo R.A., Ratnayake C., Piatt K.A., Ting J.T., Huang A.H. Identification, subcellular localization, and developmental studies of oleosins in the anther of Brassica napus. // Plant J., 1997. V. 11. — № 3. — S. 475 — 487.
- Weterings K., Pezzotti M., Cornelissen M., Mariani C. Dynamic 1-aminocyclopropane-l-cardoxylate-synthase and oxidase transcript accumulation patterns during pollen tube growth in tobacco styles. // Plant Physiol., 2002. — V. 130.-S. 1190−1200.
- White P.J. Calcium channels in higher plants. // Biochim. Biophys. Acta., 2000.-V. 1465.-S. 171 189.
- Whitehead C.S., Halevy A.H., Reid M.S. Role of ethylene and ACC in pollination and wound-induced senescence of Petunia hybrida flowers. // Physiol. Plant., 1984. V. 61. — S. 643 — 648.
- Wiermann R., Gubatz S. Pollen wall and sporopollenin. // Int. Rev. Cytol., 1992.-V. 140.-S. 35−72.
- Worral D., Twell D. Pollen maturation: Where ubiquitin is not required? // Bioassays., 1994. V. 16. — № 12. — S. 873 — 875.
- Wu H., Wang H., Cheung A.Y. A pollen tube growth stimulatory glycoprotein is deglycosylated by pollen tubes and displays a gradient in the flower.//Cell., 1995.-V. 82. S. 393−403.
- Wu H.M., Wong E., Ogdahl J., Cheung A.Y. A pollen tube growth promoting arabinogalactan protein from Nicotiana alata is similar to the tobacco TTS protein. // Plant J., 2000. V. 22. — S. 165 — 176.
- Yamamoto Y., Nishimura M., Hara-Nishimura I., Noguchi T. Behavior of vacuoles during microspore and pollen development in Arabidopsis thaliana. // Plant and Cell Physiology, 2003.-V. 44.-№ 11. S. 1192- 1201.
- Yang Z.H. Small GTRases: Versatile signaling switches in plants. // Plant Cell., 2002. V. 14. — S. 375 — 388.
- Yu H.S., Rassel S.D. Occurrence of mitochondria in the nuclei of Nicotiana tabacum sperm cells. // Plant Cell., 1994. V. 6. — S. 1477 — 1484.
- Zarsky V., Garrido D., Rihova L., Tupy J., Vicente O., Heberle-Bors E. Derepression of the cell cycle by starvation is involved in induction of tobacco pollen embryogenesis. // Sex Plant Reprod, 1992. V. 5. — S. 189 — 194.
- Zheng Z.L., Yang Z. The Rop GTPase: an emerging signaling switch in plants. // Plant Molecular Biology, 2000. V 44. — S. 1 — 9.
- Zinkl G.M., Preuss D. Dissecting Arabidopsis pollen-stigma interactions reveals novel mechanisms that confer mating specificity. // Annals of Botany., 2000. V. 3. — S. 54−60.
- Zonia L., Tupi J., Staiger C. Unique actin and microtubule arrays coordinate the differentiation of microspores to mature pollen in Nicotiana tabacum. // J. Exp. Bot., 1990. V. 50. — № 5. — S. 581 — 594.
- Zonia L., Cordeiro S., Feijo J.A. Ion dynamics and hydrodynamics in the regulation of pollen tube growth. // Sex Plant Reproduction, 2001. V. 14. — S. 111−116.
- Zonia L., Cordeiro S., Feijo J.A. Oscillatory chloride efflux at the pollen tube apex has a role in growth and cell volume regulation and is targeted by inositol 3,4,5,6 tetrakisphosphate. // Plant Cell., 2002. — V. 14. — S. 2233 — 2249.