Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Бактериофаги клубеньковых бактерий люцерны и их роль в формировании бобово-ризобиального симбиоза

Диссертация: Бактериофаги клубеньковых бактерий люцерны и их роль в формировании бобово-ризобиального симбиоза
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В лаборатории генетики и селекции микроорганизмов ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии в течение последних лет ведется интенсивное генетико-биохимическое изучение R. meiiioti, осуществляется разработка новых, перспективных методов селекции штаммов с повышенной азотфиксирующей активностью. Для планомерной и плодотворной работы в этом направлении необходимо владение всеми способами передачи… Читать ещё >

Бактериофаги клубеньковых бактерий люцерны и их роль в формировании бобово-ризобиального симбиоза (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ВВБЩЕНИЕ
  • Глава I. БАКТЕРИОФАГИ КЛУБЕНЬКОВЫХ БАКТЕРИЙ Обзор литературы)
    • 1. 1. Распространение и экология фагов клубеньковых бактерий
      • 1. 1. 1. Экология ризобиофагов
      • 1. 1. 2. Лизогения у клубеньковых бактерий. II
    • 1. Л.З. Дефектные фаги
      • 1. 2. Специфичность литического действия бактериофагов
  • Rhizobium
    • 1. 3. Морфология частиц ризобиофагов и их физико-химические свойства
    • 1. 4. Фаги Rhizobium в генетических исследованиях
    • 1. 4. Л. Общая трансдукция у клубеньковых бактерий
  • Картирование хромосомы бактерии-хозяина. 32 1.4.2″ Специализированная трансдукция у клубеньковых бактерий. Картирование фагового генома
    • 1. 5. Симбиотические свойства фагоустойчивых мутантов
    • 1. 6. Влияние бактериофагов на формирование симбиотических взаимоотношений Rhizobium -бобовое растение

Актуальность проблемы. Повышение роли «биологического азота» в земледелии является одной из важнейших задач сельскохозяйственной микробиологии. Наиболее активными микроорганизмаш-азот-фиксаторами являются клубеньковые бактерии (род Rhizobium), осуществлявшие фиксацию азота в симбиозе с бобовыми растениями. На основе клубеньковых бактерий производят препарат нитрагин (ризо-торфин). Для изготовления препарата используют активные штаммы клубеньковых бактерий. Нитрагинизация семян перед посевом способствует увеличению урожая бобовых культур, улучшению его качества, повышению плодородия почвы (Доросинский, 1970; Мишустин, Шильникова, 1973). Известно, что помимо особенностей макрои микросимбионта, взаимоотношения бобовых растений с клубеньковыми бактериями зависят от множества различных факторов, среди которых важную роль играют бактериофаги. Фаги клубеньковых бактерий широко распространены в природе. Наиболее высок их титр в тех почвах, в которых содержится много клубеньковых бактерий. Известно также, что большинство штаммов Rhizobium несут црофаги, цричем природные культуры клубеньковых бактерий часто являются полилизогенны-ми. Фаги оказывают влияние на многие свойства клубеньковых бактерий, в том числе и на их симбиотические признаки. С одной стороны, свободный фаг в щяшорневой зоне растений может снижать численность фагочувствительных штаммов, что наобходимо иметь в виду при селекции новых высокоактивных и конкурентоспособных штаммов. С другой стороны, фаги Rhizobium являются факторами изменчивости бактерий, однако, их роль в изменчивости симбиотических признаков исследована недостаточно. Кроме того, на основе бактериофагов клубеньковых бактерий могут быть созданы векторы для клонирования генов, контролирующих симбиотическую азотфиксацию, что позволит использовать методы генной инженерии в селекции. Однако, в целом, влияние бактериофагов на формирование симбиоти-ческих взаимоотношений между клубеньковыми бактериями и бобовыми растениями црактически не исследовано. Не изучена и возможность их использования в селекции высокоэффективных и конкурентоспособных штаммов.

Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы явилось изучение влияния бактериофагов Rhizobium (на примере клубеньковых бактерий люцерны) на формирование симбиотических взаимоотношений между клубеньковыми бактериями и бобовыми растениями. В нашу задачу входило:

— создать коллекцию бактериофагов клубеньковых бактерий люцерны различного происхождения и охарактеризовать их литическую активность;

— исследовать связь между симбиотическими и культуральными свойствами мутантов клубеньковых бактерий и их чувствительностью к бактериофагам;

— изучить влияние лизогенизации на симбиотические свойства клубеньковых бактерий;

— оценить роль фага в конкурентной способности штаммов клубеньковых бактерий;

— осуществить поиск фагов клубеньковых бактерий люцерны, способных переносить наследственный материал бактерии-хозяина, и изучить их свойства;

— с помощью трансдукции провести генетический анализ мутантов, утративших способность к симбиотической азотфиксации;

— изучить возможность использования трансдукции в селекции высокоактивных штаммов клубеньковых бактерий.

Научная новизна, В работе впервые показано, что:

— фаги, выделенные из почвы, обладают более широким спектром литической активности по отношению к штаммам клубеньковых бактерий люцерны чем фаги, индуцированные из лизогенных культур;

— экспериментальная лизогенизация нелизогенных штаммов клубеньковых бактерий может вызывать снижение их симбиотической эффективности и азотфиксирущей активности по сравнению с исходным штаммом;

— свободный фаг, црисутствующий в прикорневой зоне бобовых растений, резко снижает конкурентоспособность фагочувствитель-ных штаммов, цри этом конкурентоспособность устойчивых к данному фагу вариантов значительно возрастает;

— среди новых трансдуцирующих бактериофагов имеются фаги, осуществляющие трансдукцию маркеров с высокой частотой до 6"КГ4;

— с помощью трансдукции можно получать штаммы клубеньковых бактерий, обладающие повышенной азотфиксирующей активностью и симбиотической эффекзлшностью.

Практическая ценность" Создана коллекция из 89 бактериофагов клубеньковых бактерий люцерны. Она может быть использована для фаготипирования и быстрой идентификации штаммов Rhizobium. Выделенные фаги можно использовать для изучения лизогении у клубеньковых бактерий, для проведения генетического анализа мутантов Rhizobium, для картирования бактериальной хромосомы и т. д. На основе охарактеризованных бактериофагов могут быть созданы векторы для клонирования и переноса генов, ответственных за симбиотическую азотфиксацию. В результате изучения симбиотиче-ских свойств полученных трансдуктантов, проведенного в условиях микровегетационных и вегетационных опытов, показано, что транс-дукция может быть использована в селекции высокоактивных штаммов клубеньковых бактерий.

ВЫВОДЫ

1. Создана коллекция, включающая 89 бактериофагов клубеньковых бактерий люцерны различного происхождения. Обнаружено, что фаги, выделенные из почвы, обладают широким спектром литической активности в отличие от фагов, индуцированных из лизогенных штаммов. Показано, что выделенные фаги видоспецифичны и не действуют на клубеньковые бактерии других видов.

2. При изучении фагочувствительности мутантов клубеньковых бактерий (ауксотрофных, морфологических и мутантов по симбиоти-ческим свойствам) обнаружено, что появление фагоустойчивости у них, коррелирующее с исчезновением способности к синтезу внеклеточных полисахаридов, сопровождается потерей азотфиксирующей активности.

3. Анализ симбиотических свойств у 36 экспериментально полученных лизогенных клонов показал, что лизогенизация может приводить к снижению симбиотической эффективности и азотфиксирующей активности по сравнению с исходными штаммами.

4. Присутствие свободного фага в прикорневой зоне растений люцерны приводит к резкому снижению (более чем в 10 раз) конкурентоспособности фагочувствительных штаммов и возрастанию конкурентной способности вариантов, устойчивых к литическому действию данного фага.

5. Обнаружено 3 фага, способных осуществлять общую трансдукцию у клубеньковых бактерий люцерны. Выделенные фаги являются умеренными, гетероиммунными по отношению друг к другу и различаются по строению вириона. Определены условия, способствующие максимальным частотам трансдукции.

6. Изучение симбиотических свойств 108 прототрофных трансдуктантов показало, что потеря симбиотической эффективности у мутантов, нуждающихся в триптофане, аденине, лейцине, изолейцине и валине, пантотеновой кислоте, является следствием нлейотропного эффекта мутаций ауксотрофности.

7. Среди 108 црототрофных трансдуктантов, проверенных в условиях микровегетационного опыта, 26 штаммов, то есть 24%, обладают повышенной азотфиксирующей активностью. Симбиотические свойства 10 наиболее активных рекомбинантов были проверены в условиях вегетационного опыта. Результаты вегетационных опытов свидетельствуют о том, что отобранные штаммы способствуют возрастанию массы растений, а также более активно фиксируют и накапливают азот у инокулированных ими растений люцерны. Полученные результаты говорят о возможности использования трансдукции в селекции клубеньковых бактерий.

Заключение

Итак, мы рассмотрели современное состояние проблемы бактериофагии у клубеньковых бактерий. Можно заключить, что этот раздел микробиологии Rhizobium, несмотря на обилие выполненных работ, исследован недостаточно. Наиболее разработанными, на наш взгляд, являются вопросы «экологии ризобиофагов и лизогении клубеньковых бактерий. Недостаточно ясны до сих пор вопросы специфичности фагов клубеньковых бактерий. Совсем мало внимания уделялось тем аспектам бактериофагии, которые непосредственно затрагивают проблему формирования эффективных симбиотических взаимоотношении между клубеньковыми бактериями и бобовым растением. Сюда прежде всего следует отнести явление лизогенной конверсии, у клубеньковых бактерий, роль фагов в конкуренции штаммов Rhizobium в природных условиях, и, наконец, совершенно не исследованы возможности использования трансдукции в селекции высокоактивных штаммов клубеньковых бактерий.

В лаборатории генетики и селекции микроорганизмов ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии в течение последних лет ведется интенсивное генетико-биохимическое изучение R. meiiioti, осуществляется разработка новых, перспективных методов селекции штаммов с повышенной азотфиксирующей активностью. Для планомерной и плодотворной работы в этом направлении необходимо владение всеми способами передачи генетического материала у клубеньковых бактерий.

В связи с вышеизложенным в нашу задачу входило:

— создать коллекцию бактериофагов R. meiiioti различного происхождения и изучить специфичность литической активности выделенных фаговых изолятов по отношению к коллекционным штаммам Rhizobium;

— исследовать корреляцию между симбиотическими свойствами мутантов клубеньковых бактерий и их чувствительностью к бактериофагам;

— изучить влияние лизогенизации на характер симбиотических

СВОЙСТВ у R. meiiioti;

— оценить роль фага в конкурентной способности штаммов клубеньковых бактерий люцерны;

— осуществить поиск фагов R. meiiioti, способных переносить наследственный материал бактерии-хозяина, и изучить их свойства;

— с помощью трансдукции вскрыть причины потери симбиотической эффективности у ауксотрофных мутантов R. meiiioti;

— изучить возможность использования трансдукции в селекции высокоактивных штаммов клубеньковых бактерий.

Глава 2 МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Штаммы

Основным объектом наших исследований были штаммы клубеньковых бактерий люцерны Rhizobium meiiioti, а также клубеньковые бактерии других видов из музея типовых культур ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии (табл.4). Кроме того, на чувствительность к бактериофагам, специфичным для клубеньковых бактерий люцерны, были исследованы 3 штамма Agrobacterium radiobacter И 9 ШТЭММОВ Azotobacter. Номера культур:

Agr.radiobacter — 5/247, 7/777, 57/136

Azotobacter vinelandii — I/I5, 87/11 Az. chroococcum — 47/7, 67/A-240

Az.beijerincku — 81/31, 84/Hg

Az.agile — 2/21

Az.indicum — 76/ATCC-9037-YAM-'H72, 77/jPO-3745. Дяя фаготипирования и проведения трансдукции была использована обширная коллекция мутантов R. meliloti, полученных в лаборатории генетики и селекции микроорганизмов ВНИИ сельскохозяйственной микробиологии. Среди них были мутанты, имеющие дефект, в синтезе метаболитов (табл.5), прототрофные мутанты по симбиоти-ческим свойствам (табл.6), а также штаммы, неспособные к слизе-образованию на твёрдой питательной среде (номера мутантовCXMI-30, 31, 32, 33- Федоров, 1983). Кроме того, для фаготипирования были использованы 40 трансконъюгантов, полученных Черновой Т. А. после введения плазмиды R68.45 из вирулентного штамма

Показать весь текст

Список литературы

  1. М. Бактериофаги. — М.: ИЛ, 1961.- 527 е., илл.
  2. Э.Я., Домарадский И. В. Трансдукция: возможности, ограничения, перспективы. М.: Главное управление микробиологической промышленности при СМ СССР. ОНТИ и ТЭИ. Сер.П. «Общие вопросы микробиологической промышленности», 1981, вып.2, 4 -43 с.
  3. И.Н., Москаленко Л. Н. О некоторых особенностях экспериментально полученных лизогенных культур Rhizobium japoni-cum. Микробиология, 1982а, т.51, № 5, с.832−837.
  4. И.Н., Москаленко Л. Н. О морфологии частиц и негативных колоний бактериофагов клубеньковых бактерий сои. -Микробиология, 19 826, т.51,)?> 3, с.522−526.
  5. А.А., Злотников К. М. Генетика и генетическая инженерия клубеньковых бактерий. Изв. АН СССР, сер. биологическая, 1981, вып.6, с.805−823.
  6. Л.А. Лизогения клубеньковых бактерий донника. Изв. АН
  7. Молд.ССР, сер.биол. и хим. наук, 1976, вып.5, с.88−90.
  8. Л.А. Лизогения клубеньковых бактерий. Изв. АН Молд. ССР, сер.биол. и хим. наук, 1978, вып.4, с.44−54.
  9. Д.М. Бактериофагия. М.: Медгиз, 1961.- 297 с.
  10. Л.М. Влияние бактериофага на развитие клевера. -Микробиология, 1941, т.10, В 2, с.208−211.
  11. Л.М. Клубеньковые бактерии и нитрагин.1. Л.: Колос, 1970.- 191 с.
  12. Л.М. Некоторые воцросы практического использования клубеньковых бактерий, Труды ВНИИ с.-х. микробиол., 1980, т.50, с.76−85.
  13. .А. Планирование полевого опыта и статистическая обработка его данных. М.: Колос, 1972.- с.98−115.
  14. З.И. Теория и црактика вегетационного опыта. -М.: Наука, 1968.- 266 е., илл.
  15. А.Н. Метод трансформации как способ повышения активности клубеньковых бактерий люцерны. Микробиология, 1976, т.45, 'Jfe 5, с.873−877.
  16. А.Н., Бойко Л. А. Изменение фагочувствительности у трансформантов Rhizobium meliloti.- Микробиология, 1977, т.46, № 4, с.737−740.
  17. Т.С., Смирнов Г. Б. Мигрирующие генетические элементыи их роль в эволюции бактерий. «Итоги науки и техники», сер. Микробиология.- М.: ВИНиТИ, 1979, т.10, с.99−153.
  18. А.Д. Бактериофаг клубеньковых бактерий и его влияние на эффективность симбиоза клубеньковых бактерий с бобовым растением.- Труды ин-та микробиол. АН Латв.ССР, 1952, вып. I, с.47−84.
  19. А.Д. Расцространение фага клубеньковых бактерий в почвах Латвийской ССР. Труды ин-та микробиол. АН Латв.ССР, 1956, вып.4, с.3−39.
  20. А. Д., Лаузне Э. Я. Бактериофагия. В сб.: Микроорганизмы и среда. Изд. АН Латв. ССР, 1962, с.137−152.
  21. О.И. Азотфиксирующие бактерии. Физиология развития. Минск: Белор.гос. университет, 1982, с.70−82.
  22. О.И., Тевелева М. К. Действие бактериофага на вирулентность и азотфиксирующую способность клубеньковых бактерий гороха. Докл. АН БССР, 1967, т. II, № 3, с.268−270.
  23. А.И., Малышева Т. В. Биология R-плазмид. Успехи соврем.биол., 1982, т.93, № 2, с.196−213.
  24. Н.А. Изменчивость клубеньковых бактерий. I. Образование рас под влиянием бактериофага. Микробиология, 1941, т.10, № 4, с.396−400.
  25. Н.А., Кореняко А. И. О методах количественного учета клубеньковых бактерий в почвах. Микробиология, 1940, т.9, № I, с.27−31.
  26. Краткий определитель бактерий Берги/под ред.Дк.Хоулта. -М.:Мир, 1980, с.127−131.
  27. Д.Г., Лиходед В. Г. Бактериоциногения. М.: Медицина, 1966.- 203 с.
  28. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1980.- 293 с.
  29. Г. Ю., Симаров Б. В. Картирование генетического фактора, контролирующего эффективность азотфиксации у клубеньковых бактерий люцерны. Докл. АН СССР, 1981, т.261, № I, с.207−210.
  30. Г. В. К вопросу отбора активных и фагоустойчивых культур клубеньковых бактерий для производства нитрагина. Труды ВНИИ с.-х. микробиол., I960, т.16, с.146−158.
  31. С., Дарнелл Дк., Балтимор Д., Кэмпбелл Э. Общая вирусология. М.: Мир, 1981, — 680 е., илл.
  32. Л.А. Бактериофаги Rhizobium meliloti и их свойства. -Бюллетень ВНИИ с.-х. микробиол., 1972, № 16, вып.1, с.94−96.
  33. Л.А. Лизогения Rhizobium meliloti (люцерны и донника)
  34. И Rhizobium 1 е gum in о s аггдт (кормовых бобов) И особенности ИХ бактериофагов: Автореф.дисс.. биол. наук. Л., 1973.-19с.
  35. Л.А. Нуклеотидный состав некоторых бактериофагов Rhizobium meiiioti. -Бюллетень ВНИИ с.-х. микробиол., 1974,16, вып. З, с.35−37.
  36. Л.А., Москаленко Л. Н., Раутенштейн Я. И. Лизогения среди клубеньковых бактерий люцерны (Rhizobium meiiioti).
  37. Изв.АН СССР, сер. биологическая, 1973а, вып.5, с.720−728.
  38. Л.А., Москаленко Л. Н., Раутенштейн Я. И. Некоторые биологические свойства фагов Rhizobium meiiioti. Микробиология, 19 736, т.42, № 6, с.1088−1093.
  39. Н.И. Методы генной инженерии. «Итоги науки и техники», сер. Микробиология. — М.: ВИНиТИ, 1979, т.10, с.3−98.
  40. Г. Бактериальные плазмиды. М.: Мир, 1976.- 237 е., илл.
  41. Методические рекомендации для курсов повышения квалификации научных сотрудников по сельскохозяйственной микробиологии. Методы исследований клубеньковых бактерий. Л.: ВНИИ с.-х. микробиол., 1981, 47 с.
  42. Е.Н., Шильникова В. К. Биологическая фиксация атмосферного азота. М.: Наука, 1968.
  43. Е.Н., Шильникова В. К. Клубеньковые бактерии и иноку-ляционный процесс. М.: Наука, 1973.- 288 е., илл.
  44. Л.Н. Бактериофагия клубеньковых бактерий: Автореф. дис.. биол. наук. М., 1970.- 27 с.
  45. Л.Н., Раутенштейн Я. И. Лизогения клубеньковых бактерий фасоли (Rhizobium phaseoli).- Микробиология, 1969а, т.38, № 2, с.340−345.
  46. Л.Н., Раутенштейн Я. И. Электронно-микроскопическое изучение бактериофагов полилизогенных культур Rhizobium phaseoli. Микробиология, 19 696, т.38, J6 3, с.489−491.
  47. Л.Н., Раутенштейн Я. И., Князева В. Л., Загорье И. В. О лизогении У Rhizobium japonicum И чувствительности ЭТИХ культур к фагам, выделенным из почвы. Микробиология, 1979, т.48, J6 2, с.329−335.
  48. Н.Н., Фокина И. Г., Симаров Б. В. Антагонистические взаимоотношения у клубеньковых бактерий Rhizobium meiiioti. -Микробиология, 1982, т.51, В 3, с.497−500.
  49. .Б. Некоторые физиолого-биохимические свойства и лизогения у клубеньковых бактерий сои и фасоли из почв Раунды и СССР.: Автореф.дисс.. биол. наук. М., 1977.17 с.
  50. .Б. Лизогения клубеньковых бактерий фасоли. Некоторые данные о происхождении одного фага Rhizobium phased! Докл. ТСХА, 1978, вып.238, с.64−67.
  51. Х.Н. Методы биохимического анализа растений. -Киев: Наукова Думка, 1976, с.72−82.
  52. З.Г. К вопросу о клубеньковом бактериофаге. -Архив биол. наук, 1932, т.32, № 4, с.304−312.
  53. Я.И. Лизогения и ее биологическое значение. -Успехи соврем.микробиол., 1971, т.7, с.223−240.
  54. Я.И., Москаленко Л. Н., Маранц Л. А., Блохина Т. П. Индукция вирулентных мутантов умеренных фагов индикаторных культур как причина возможных ошибочных заключений. -Микробиология, 1974, т.43, № 4, с.732−734.
  55. Раутенштейн Я. И, Соловьева Н. Я., Москаленко Л. Н., Филатова А. Д. Некоторые особенности актинофагов полилизогенной культуры Actinomyces grieeus. Микробиология, 1971, Т.40, № 6, с.1094−1099.
  56. Я.И., Хаджи-Мурат Л.Н. Бактериофаги клубеньковыхбактерий. Изв. АН СССР, сер. биологическая, 1967, вып.2, с.184−201.
  57. .В., Аронштам А. А. Актуальные проблемы генетики клубеньковых бактерий. Труды ВНИИ с.-х.микробиол., 1980, т.50, с.86−96.
  58. Г., Кэлиндар Р. Молекулярная генетика. М.: Мир, 1981.646 с., илл.
  59. М.К. Лизогения клубеньковых бактерий. В сб.: Физиология и биохимия микроорганизмов. Шнек, 1970, с.182−186.
  60. А.С. Ультраструктура вирусов бактерий. М.: Наука, 1968.- 297 е., илл.
  61. Фаг лямбда/ под ред.Б. Н. Ильяшенко. М.: Мир, 1975.- 422 с.
  62. С.Н. Зависимость азотфиксирующей активности клубеньковых бактерий люцерны от типа возникших мутаций. Бюллетень ВНИИ с.-х.микробиол., 1983, вып.37, с.6−11.
  63. С.Н., Бутвина О. Ю., Симаров Б. В. Мутагенное действие УФ-излучения на клубеньковые бактерии люцерны и анализ симбиотических свойств полученных ауксотрофных мутантов. Генетика, 1983а, т.19, № 5, с.727−736.
  64. С.Н., Зарецкая А. Н. Индуцирование этилметансульфона-том ауксотрофных мутантов Rhizobium meiiioti и их характеристика. Микробиология, 1978, т.47, № 4, с.728−732.
  65. С.Н., Мультатули Н. Н. Получение мутантов клубеньковых бактерий люцерны с измененными симбиотическими свойствами. -Тезисы докладов 1У съезда ВОГиС им. Н. И. Вавилова. Кишинев, 1981, ч. I, с. 377.
  66. Хаджи-Мурат Л.Н., Смирнова Е. И., Раутенштейн Я. И. Электронно-микроскопическое изучение некоторых бактериофагов клубеньковых бактерий. Микробиология, 1967, т.36, 1, с. 140−143.
  67. Т.А. Восстановление азотофиксирующей активности и вирулентности у мутантов клубеньковых бактерий люцерны при конъюгации. Вестник ЛГУ, 1982, № 15, вып. З, с. 112.
  68. О.И. Бактериофаг и клубеньковые бактерии. I сообщение. Труды ВНИИ с.-х.микробиол., 1936, т.8, вып.2, с.43−57.
  69. О.И. Бактериофаг и клубеньковые бактерии (сообщение П). Микробиология, 1944, т.13, вып.2−3, с.107−115.
  70. Л.Н., Новосельцев Н. Н. О природе фаговых рецепторов у бактерий. Микробиол. журнал, 1980, т.42, № 3, с.394−402.
  71. Allen Е.К., Allen О.И. Biochemical and symbiotic properties of Rhizobia. Bacterid.Rev., 1950, v.14, N 4, p.273−330.
  72. Arber W. Transduction des caractkres gal par le bacteriophage lambda. Archives des sciences, Geneva, 1958, v.11, Fasc. sp., p.259−338.73″ Arber W. Host-controlled modification of bacteriophage.
  73. Ann.Rev .Microbiol., 1965, v.19, p.365−378. 74. Arber W. ША modification and restriction. Prog. Nucleic
  74. Acid Res., 1974, v.14, N 1, p.1−31. 75″ Arnaudi E., Castellani E. Sur le bacteriophage du «Rhizobium radicicola». Boll.Sez.Ital.Soc.Intern.Microbiol. (Milano), 1934, v.6, p.317−321.
  75. Atkins G.J. Some bacteriophage active against Rhizobium trifolii strain V719. J.Virol., 1973a, v.12, IT 1, p.149−15G.
  76. J.Gen.Microbiol., 1972, v.73, part 2, p.273−278. 79″ Ausubel P.M. Molecular genetics of symbiotic nitrogen fixation. Cell, 1982, у.29, N 5, p.1−2.
  77. Banfalvi Z., Sakanyan V., Koncz C., Dusha I., Kondorosi A. Location of nodulation and nitrogen fixation genes on a highmolecular weight plasmid of Rhizobium meiiioti. Molec.gen. Genet., 1981, v.184, К 2, p.318−325.
  78. Barksdale L., Arden S. Persisting bacteriophage infections, lysogeny and phage conversions. Ann.Rev.Microbiol., 1974, v.28, p.265−299.
  79. Barnet Y.M. Bacteriophage of Rhizobium trifolii. I. Morphology and host range. J.gen.Virol., 1972, v.15, part 1, p.1−15.
  80. Barnet Y.M. Properties of Rhizobium trifolii isolates surviving exposure to specific bacteriophage. Can.J.Microbiol., 1979, v.25, N 9, p.979−986.
  81. Barnet Y.M. The effect of rhizobiophages on population of Rhizobium trifolii in the rootzone of clover plants. Can.J. Microbiol., 1980, v.26, N 5, p.572−576.
  82. Barnet Y.M., Humphrey B. Exopolysaccharide depolymerases induced by Rhizobium bacteriophages. Can.J.Microbiol., 1975, v.21, N 10, p.1647−1650.
  83. Barnet Y.M., Vincent J.M. Lysogenic conversion of Rhizobium trifolii. J.gen.Microbiol., 1970, v.61, part 3, p.319−325.
  84. E.J., 01ivare3 J. Autotransmissible resident plasmid of Rhizobium meiiioti. Molec.gen.Genet., 1980, v.177, IT 2, p.329−331.
  85. Beringer J.E. The development of Rhizobium genetics. Thefourth Fleming lecturo. J.gen.Microbiol•, 1980, v.116, N 1, p.1−7.
  86. Beringer J.E., Brewin II.J., Johnston A.W.B. The genetic analysis of Rhizobium in relation to symbiotic nitrogen fixation.-Heredity, 1980, v.45, N 2, p.161−186.
  87. Berzinger R., Hartman P.E. Effects of ultraviolet light on transducing phage P22. Virology, 1962, v.18, N 4, p.614−626.
  88. Beringer J.E., Hoggan S.A., Johnston A.W.B. Linkage mapping in Rhizobium leguminosarum by means of R-plasmid mediatedrecombination. J.gen.Microbiol., 1973, v.104, N 2, p.201−207.
  89. Beringer J.E., Hopwood D.A. Chromosomal recombination and mapping in Rhizobium leguminosarum. Nature, 1976, v.264, p.291−293.•93. Beringer J.E., Johnston A.W.B. Genetics of Rhizobium. In:
  90. Brewin N.J., Beringer J.E., Buchanan-Wollaston V., Johnston A. W.B., Hirsch P.R. Transfer of symbiotic genes with bacterio-cinogenic plasmids in Rhizobium leguminosarum. J.gen.Microbiol., 1980, v.116, N 2, p.261−270.
  91. Bruch C.W., Allen O.N. Host specificities of four Lotus. rhizo-biophages. Can.J.Microbiol., 1957, v.3, II 2, p.181−189.
  92. Buchanan-Wollaston V. Generalized transduction in Rhizobium leguminosarum. J.gen.Microbiol., 1979, v.112, part 1, p.135−142.
  93. Casadesus J., Olivares J. Rough and fine linkage mapping of the Rhizobium meiiioti chromosome. Molec.gen.Genet., 1979a, v. 174> IT 2, p.203−209.
  94. Casadesus J., Olivares J. General transduction in Rhizobium meiiioti by a thermosensitive mutant of bacteriophage DF2. J. Bacterid *, 1979b, v.139, IT 1, p.316−317
  95. Cerda-Olmedo E., Hanawalt P.O., Guerola IT. Mutagenesis of the replication point by nitrosoquanidine: map and pattern of replication of the E. coli chromosome. J.Mol.Biol., 1968, v.33, N 3, p.705−719.
  96. Conn H.J., Bottcher E.J., Randall C. The value of bacteriophage in classifying certain soil bacteria. J.Bacteriol., 1945, v.49, IT 4, p.359−373.
  97. Corral E., Montoya E., Olivares J. Sensitivity to phages in Rhizobium meiiioti as a plasmid consequence. Microbios. Lett., 1977, v.5, IT 18, p.77−80.
  98. Cross D.C., Vidaven A.K. Bacteriocin-like substances produced by Rhizobium japonicum and other slow-growing Rhizobia.
  99. Appl.environ.Microbiol., 1978, v.36, IT 6, p.936−943.
  100. Dallmann G., Olasz P., Orosz L. Virulent mutants of temperate Rhizobium meiiioti phage 16−3: loci avir С and avir T, and increased recombination. Molec gen.Genet., 1980, v.178,1. 2, p.443−446.
  101. Dallmann G., Orosz L., Sain B. Restriction mapping of DITA of temperate Rhizobium meiiioti phage 16−3: comparison of gcne-tic and physical maps indicates a long genetically silent chromosomal arm. Molec.gen.Genet., 1979, v.176, IT 3, p.439
  102. Dandekar A.M., Modi V.V. Interaction between Rhizobium japo-nicum phage M-1 and its receptor. Can.J.Microbiol., 1978, v.24, N 6, p.685−688.
  103. Datta N., Hedges R.W., Shaw E.J., Sykes R.3., Richmond M.H.
  104. Properties of an R-factor from Pseudomonas aeruginosa. -J.Bacteriol., 1971, v.108, N 4, p.1244−1249.
  105. Datta S.C. On the bacteriophage of root nodule organisms. -Indian J.agron.Sci., 1944, v.14, p.272−276.
  106. Daves Y. Characterization of the bacteriophage T4 receptor site. Nature, 1975, v.256, IT 5513, p.127−128.
  107. Davis R.J. A temperature bacteriophage associated with a strain of root nodule bacteria. Bacterid.Proc.Abst., 1958, v. A12, p.10.
  108. Dhar В., Singh B.D., Singh R.B., Srivastava J.S., Singh V.P.,
  109. Singh R.M. Occurence and distribution of rhizobiophages in Indian soils. Acta Microbiol.Polon., 1979, v.28, N 4, p.319−325.
  110. Dorgai L., Olasz F., Berenyi 1-I., Dallman G., Pay A., Orosz L. Orientation of the genetic and phisical map of Rhizobium meliloti temperate phage 1G—3• Molec.gen.Genet., 1981, v.182, II 2, p.321−332.
  111. Evans J., Barnet Y.M., Vincent J.M. Effect of a bacteriophage on the colonization and nodulation of the clover roots by a strain of Rhizobium trifolii. Can.J.Microbiol., 1979a, v.25, N 9, p.968−973.
  112. Evans J., Barnet Y.M., Vincent J.M. Effect of a bacteriophage on colonization and nodulation of clover root bjipaired strains of Rhizobium trifolii. Can.J.Microbiol., 1979b, v.25, N 9, p.974−978.
  113. Garen A., Zinder II.D. Radiobiological evidence for partial genetic homology between bacteriophage and host bacteria. -Virology, 1955, v. 1, II 3, p.347−376.
  114. Garro A.J., Marmur J. Defective bacteriophages. J.Cell. Physiol., 1970, v.76, N 3, p.253−263.
  115. Gissmann L., Lotz W. Unempfindlichkeit defect lysogener Rhizobium lupini. Stamme gegenuber homologen Phagen — ahnli-chen Bacteriocinen.Zentr.Bakt.Hyg., 1974, A228, 183−184.
  116. Golebiowska J., Sawicka A., Swiontek J. The occurence of rhizobiophages in various lucerne plantations. Acta Microbiol. Polon., 1976, v.25, и 2, p.161−163.
  117. Hardy R.W.F., Holstein R., Jackson E., Burns R.S. The C2H2~ C2H4 assay for N2 fixation: laboratory and field evalution.- Plant Physiol., 1968, v.43 (suppl.), p.9−13.
  118. Hemphill H.E., Whiteley H.R. Bacteriophages of Bacillus sub-tilis. Bacteriol.Rev., 1975, v.39, N 3, p.257−315.
  119. Hirsch P.R. Plasmid-determined bacteriocin production by Rhizobium leguminosarum. J.gen.Microbiol., 1979, v.113, N 1, p.219−228.
  120. Hirsch P.R., van Montagu M., Johnston A. V/.B., Brewin H.J., Schell J.S. Physical identification of bacteriocinogenic, nodulation and other plasmids in strains of Rhizobium leguminosarum. J.gen.Microbiol., 1980, v.120, N 3, p.403−412.
  121. Hombrecher G., Brewin N.J., Johnston A.W.B. Linkage of genes of nitrogenase and nodulation ability of plasmids in Rhizobium leguminosarum and Rhizobium phaseoli. Molec.gen.Genet., 1981, v.182, II 1, p.133−136.
  122. Howe M.M., Bade E.G. Molecular biology of bacteriophage Mu.-Science, 1975, v.190, p.624−632.
  123. Ikeda H., Tomizawa J.-I. Transducing fragments in generalized transduction by P1. I. Molecular origin of the fragments.- J.Mol.Biol., 1965, v.14, N 1, p.85−109.
  124. Jacob A.E., Cresswell J.M., Hedges R.W. Molecular characterization of the P group plasmid R68 and variants with enhanced chromosome mobilising ability. FEMS Microbiol. Lett•, 1977, N 1, p.71−77.
  125. Jacob F. Developpement spontane et induit des bacteriophages chez des Ps. pyocyanea polylysogenes. Ann.Inst.Pasteur, 1952, t.83, N 5, p.671−692.
  126. Jacob F., Wollman E. Lysogeny. In: The Viruses, ed. by F.M.Burnet and W.M.Stanley. — N.Y.: Acad. Press, 1959, v.2, p.319−351.
  127. Johnston A.W.B., Beynon J.L., Buchanan-Wollaston A.V., Set-chell S.M., Hirsch P.R., Beringer J.E. High frequency transfer of nodulating ability between strains and species of Rhizobium. Nature, 1978, v.276, N 5688, p.634−636.
  128. Johnston A.W.B., Hombrecher G., Brewin N.J., Cooper M.C. Two transmissible plasmids in Rhizobium leguminosarum strain 300. J.Gen.Microbiol., 1982, v.128, II 1, p.85−93″
  129. Kamberger W. Role of cell surface polysaccharides in the Rhizobium pea symbiosis. — FEMS Microbiol.Lett., 1979, N 6, p.361−365.143″ Katznelson H., Wilson J.K. Occurence of Rhizobium meliloti bacteriophage in soils. Soil.Sci., 1941, v.51, p.59−63.
  130. Kiss G.B., Dobo K., Dusha I., Breznowits A., Orosz L., Vinc-ze E., Kondorosi A. Isolation and characterization of an R-prirae from Rhizobium meliloti. J.Bacteriol., 1980, v.141,1. 1, p.121−128.
  131. Kiss G.B., Vincze E., Kalman Z., Forrai Т., Kondorosi A. Genetic and biochemical analysis of mutants affected in nitrate reduction in Rhizobium meliloti. J.gen.Microbiol., 1979, v.113, II 1, p.105−118.
  132. Kleckner N. Transposable elements in prokaryotes. Ann.Rev.
  133. Genet., 1981, v.15, p.341−404.
  134. Kleczkowska J. A quantitative study of the interaction ofbacteriophage with Rhizobium using the technique of poured plates. J.Bacterid., 1945a, v.50, N 1, p.81−94.
  135. Kleczkowska J. The production of plaques by Rhizobium bacteriophage in poured plates and its value as a counting method.-J.Bacterid., 1945b, v.50, N 1, p.71−79.
  136. Kleczkowska J. The separation of different strains of bacteriophage from a crude culture. J.Bacterid., 1946, v.52,1. 1, p.25−32.
  137. Kleczkowska J. A study of phage-resistant mutants of Rhizobium trifolii. J.Gen.Microbiol., 1950, v.4, IT 2, p.298−310.
  138. Kleczkowska J. A study of distribution and the effects of bacteriophage of root nodule bacteria in the soil. -Can.J.Microbiol., 1957, v.3, H 2, p.171−180.
  139. Kleczkowski A., Thornton H. A serological study of root nodule bacteria from pease and clover inoculation groups. J.Bacterid., 1944, v.48, IT 6, p.661−672.
  140. Kondorosi A*, Kiss G.B., Forrai Т., Vincze E., Banfalvi Z. Circular linkage map of Rhizobium meliloti chromosome.
  141. Nature, 1977, v.268, N 5620, p.525.
  142. Kondorosi A., Orosz I"., Svab Z., Sik T. Genetic studies on rhizobiophage 16−3. II. Helper-induced transfection. -Molec.gen.Genet., 1974, v.132, Ж 2, p.153−163.
  143. Kondorosi A., Sik T. Mechanism of helper phage transfection. Acta microbiol.Acad.Sci.hung., 1973, v.20, H 1, p.25.
  144. Kondorosi A., Vincze E., Johnston A.W.B., Beringer J.E.
  145. A comparison of three Rhizobium linkage maps. Molec.gen. Genet., 1980, v.178, N 3, p.403−408.
  146. Kowalczuk E., Skorupska A., borkiewicz Z. Transfer of nodulation ability in -Rhizobium using R68.45 derived plasmids. -Molec.gen.Genet., 1981, p.183, N 2, p.388−395.
  147. Kowalski M. Prophage substitution in Rhizobium meliloti strains. Microb.Genet.Bull., 1965, v.22, p.19.
  148. Kowalski M. Lysogeny in Rhizobium meliloti. Acta Microbiol.
  149. Polon., 1966, V.15, И 2, p.119−128.
  150. Kowalski M. Transduction in Rhizobium meliloti. Acta Micro-biol.Polon., 1967, v• 16, II 1, p.7−12.
  151. Kowalski M. Transduction of streptomycin resistance by Rhizobium meliloti phages. Microb.Genet.Bull., 1968, v.29, p.16.
  152. Kowalski M. Transducing phages of Rhizobium meliloti. -Acta Microbiol.Polon., Ser. A, 1970a, v.2(19), N 3, p.109−113.
  153. Kowalski M. Genetic analysis by transduction of Rhizobium meliloti mutants with changed symbiotic activity.
  154. Acta Microbiol.Polon., Ser. A, 1970b, v.2(19), H 3, p.115−122.
  155. Kowalski М. Transduction in Rhizobium meliloti. Plant and Soil., 1971a, Sp.vol., p.63−66.
  156. Kowalski M. Transduction test in Rhizobium meliloti mutants with changed. symbiotic activity. Genet, Polon., 1971b, v.12, N 3, p.201−204.
  157. Kowalski M., Denarie J. Transduction d’un gene controlant1'expression de la fixation de 1'azote chez Rhizobium meliloti. C.R.Acad.Sc.Paris, Ser.D., 1972, t.275, N 1, p.141−144.
  158. Kowalski M., Ham G.E., Frederick L.R., Anderson I.C. Relation’ship between strains of Rhizobium japonicum and their bacteriophages from soil and nodules of field-grown soybeans. -Soil Sci., 1974, v.118, ИЗ, p.221−228.
  159. Kowalski M., Staniewski R., Paraniak M. The effects of osmotic shock and ultraviolet radiation on Rhizobium bacteriophages. Acta Microbiol.Polon., 1963a, v.12, N 3, p.180−183.
  160. Krishnapillai V. The use of bacteriophage for differentiating plasmids of Pseudomonas aeruginosa. Genet.Res., 1974, v.23, U 3, p.327−334.
  161. Laane С., Haaker H., Veeger C. Involvement of the cytoplasmicmembrane in a nitrogen fixation by Rhizobium leguminosarum bacteroides. Eur.J.Biochem., 1978, v.87, IT 1, p.147−153.
  162. Laird D. Bacteriophage and the root nodule bacteria. -Arch.Microbiol., 1932, v.3, IT 2, p.159−193.
  163. Lesley S.M. A bacteriophage typing system for Rhizobium meliloti. Can.J.Microbiol., 1981, v.28, II 2, p.180−189.
  164. Ьеу A.W., Warner H.R., Kahn P.L. Virulent bacteriophage infection of Rhizobium leguminosarum. Can.J.Microbiol., 1972, v.18, II 4, p.375−384.
  165. Lindberg A.A. Bacteriophage receptors. Ann.Rev.Microbiol., 1973, v.27, p.205−241.
  166. Lotz W. Defective bacteriophages! the phage tail-like particles. In: Progress in Molecular and Subcellular Biology, ed. by F.E.Hahn. — Berlin etc.: Springer-Verlag, 1976, v.4, p.53−102.
  167. Lotz W., Mayer F. Isolation and characterization of a bacteriophage tail-like bacteriocin from a strain of Rhizobium
  168. J.Virol., 1972a, v.9, N 1, p.160−173.
  169. Lotz V., Mayer P. Electron microscopical characterization of newly isolated Rhizobium lupinibacteriophages. Can.J.Microbiol., 1972b, v.18, И 8, p.1271−1274.
  170. Lotz W., Pfister H., Gissman L., Lurz R. Verbreitung der defecten Lysogenie bei Rhizobium lupini. 2bl.Bakt.Hyg., I Abt, 1974, T. A228, 175−178.
  171. Luria S.E. Host-induced modifications in viruses. Cold Spring Harbor Symp.Quant.Biol., 1953, v.18, p.237−244.
  172. Luria S.E., Adams J.N., Ting R.C. Transduction of lactose utilising ability among strains of E. coli and Shigella dysen-teriae and the properties of the transducing particles. -Virology, 1960, v.12, N 3, p.348−390.
  173. Lurz R., Mayer P., Lotz W. Charakterisierung eines neu isoli-erten Rhizobium lupiniBakteriophagen mit Zirkularisierendem
  174. Chromosom. Zbl.Bakt.Hyg., 1974, A228, 185−138.
  175. Lwoff A. Lysogeny. Bacterid.Rev., 1953, v.17, N 4, p.269−337.189 • Maier R. J., Brill W. J• Ineffective and. non—nodulatmg mutant strains of Rhizobium japonicum. J.Bacteriol., 1976, v.127, N 2, p.763−769.
  176. Maier R.J., Brill W.J. Involvement of Rhizobium japonicum 0-antigen in soybean nodulation. J.Bacteriol., 1978, v.133, N 3, p.1295−1299.
  177. Malek W. Relation between phage sensitivity and symbiotic properties of auxotrophic mutants of Rhizobium meiiioti. -Acta Microbiol.Polon., Ser. A, 1974, v.6(23), N 3, p.225−229.
  178. Malek W., Kowalski M. Auxotrophic mutations related to symbiotic properties of Rhizobium meiiioti strain L5−30.
  179. Acta Microbiol.Polon., 1977, v.26, N 4, p.345−350.193″ Manninger E. Virulent rhizobiophages in hungarian soils. -Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1978, v.25, N 2, p.149.
  180. Marshall K.C. A lysogenic strain of Rhizobium trifolii. -Nature, 1956, v.177, N 4498, p.92.
  181. Marshall K.C., Vincent J.M. Relationship between the somatic antigens of Rhizobium trifolii and susceptibility to bacteriophage. Austr.J.Sci., 1954, v.17, N 2, p.68−69.
  182. Matsushiro A. Specialized transduction of tryptophan markers in E. coli К 12 by bacteriophage 0 80. Virology, 1963, v.19, N 4, p.475−482.
  183. Meyer P., Lotz W., Lang D. Electron microscope study of lenght and partial denaturation of Rhizobium bacteriophage ША. J.Virol., 1973, v.11, N 6, p.946−952.
  184. Meade H.M., Signer E.R. Genetic mapping in Rhizobium meiiioti. Proc.Natl.Acad.Sci.USA, 1977, v.74, N 5, p.2076−2078.
  185. Megias M., Caviedes M.A., Palomares A.J., Perez-Silva J. Use of plasmid R68.45 for constructing a circular linkage map of the Rhizobium trifolii chromosome. J.Bacteriol., 1982, v.149, И 1, p.59−64.
  186. Morse M.L., Lederberg E.M., Lederberg J, Transductional hete-rogenotes in Escherichia coli. Genetics, 1956, v.41, К 3, p.758−779.
  187. Napoli C., Albersheim P. Phizobium leguminosarum mutants incapable of normal extracellular polysaccharide production. -J .Bacterid., 1980, v. 141, IT 3, p. 1454−1456.
  188. Rhizobium meiiioti. Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1961, v.8, IT 1, p.65−71.
  189. Orosz L. Methods for analysis of the с cistron of temperate phage 16−3 of Rhizobium meiiioti. Genetics, 1980, v.94,1. И 2, p.265−276.
  190. Orosz L., Ascher Z, Deletion and the three point map of gene с of rhizobiophage 16−3. Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1977, v.24, N 1, p.89.
  191. Orosz L., Pay A., Dallmann G. Heterozygosis of phage 16−3 of Rhizobium meiiioti: moderate level of mismatch repair of geneconversion. Molec.gen.Genet., 1980a, v.179, IT 1, p.163−167.
  192. Orosz L., Sik T. Genetic mapping of rhizobiophage 16−3. -Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1970, v.17, IT 2, p.185−194.
  193. Orosz L., Sik T. Genetic analysis of mutations influencing the regulator gene function of temperate bacteriophages.
  194. Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1973, v.20, IT 1, p.24.
  195. Orosz L., Svab Z., Kondorosi A., Sik T. Genetic studies on rhizobiophage 16−3. I. Genes and functions on the chromosome.- Molec.gen.Genet., 1973, v.125, N 3, p.341−350.
  196. Ozeki H., Ikeda H. Transduction mechanisms. Ann.Rev.Genet 1968, v.2, p.245−278.
  197. Pain A.N. Symbiotic properties of antibiotic-resistant and auxotrophic mutants of Rhizobium leguminosarum. J.appl.
  198. Parker D.T., Allen O.N. Characteristics of four rhizobiopha-ges active against Rhizobium meliloti. Can.J.Microbiol., 1957, v.3, N 3, p.651−668.
  199. Patel J.J. Morphology and host range of virulent phages of lotus rhizobia. Can.J.Microbiol., 1976, v.22, N 2, p.204 212.
  200. Patel J.J. Symbiotic effectiveness of phage-resistant mutants of two strains of lotus rhizobia. Plant and Soil., 1978, v.49, p.251−257.
  201. Pemberton J.M., Fisher P.R. 2,4-D plasmids and persistance
  202. Nature, 1977, v.268, p.732−733.
  203. Pfister H., Lodderstaedi G. Adsorption of a phage tail-like bacteriocin to isolated lipopolysaccharide of Rhizobium. -J.gen.Microbiol., 1977, v.37, N 2, p.337−347.
  204. Pfister H., Lotz W. Spontaninduction eines defekten Prophagenvon Rhizobium lupini. Zbl.Bakt.Hyg., 1974, A228, 179−182.
  205. Raina J.L., Modi V.V. Deoxyribonucleate binding and transformation in Rhizobium japonicum. J.Bacteriol., 1972, v.111, N 2, p.356−360.
  206. Raleigh E.A., Signer E.R. Positive selection of nodulation-deficient Rhizobium phaseoli. J.Bacteriol., 1982, v.151, IT 1, p.83−88.
  207. Roslycky E.B., Allen O.N., McCoy E. Phages for Agrobacteriumradiobacter with reference to host range. Can.J.Microbiol., 1962, v.8, Б 1, p.71−78.
  208. Rostas R., Orosz L. Two point crosses with internal recombination control to detect marker effect in gene с of rhizobio-phage 16−3. Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1977, v.24,1. N 1, p.89.
  209. Russa R., Urbanik Т., Kowalczuk E., Lorkiewicz Z. Correlation between the occurence of plasmid pUCS202 ans lipopolysaccha-ride alterations in Rhizobium.- FEMS Microbiol.Lett., 1982, v.13, N 2, p.161−165.
  210. Russa R., Urbanik Т., Zurkowski M., Lorkiewicz Z. Neutral sugars in lipopolisaccharides of Rhizobium trifolii and its non-nodulating mutant. Plant and Soil, 1981, v.61, IT 1−2, p.81−85.
  211. Sanders R.E., Carlson R.W., Albersheim P. A Rhizobium mutant incapable of nodulation and normal polysaccharide secretion.-Nature, 1978, v.271, N 5642, p.240−242.
  212. Schwinghamer E.A. Host-controlled modification of Rhizobium bacteriphage. Austr.J.Biol.Sci., 1965, v.18, N 2, p.333−343.
  213. Schwinghamer E.A. Factors affecting phage-restricting ability in Rhizobium leguminosarum strain L4. Can.J.Microbiol., 1966, v.12, N 3, p.395−407.
  214. Schwinghamer E.A. Antagonism between strains of Rhizobium tri-folii in culture. Soil Biol.Biochem., 1971, v.3, N 2, p.355−363.
  215. Schwinghamer E.A. Properties of some bacteriocins by R.trifolii. J.Gen.Microbiol., 1975, v.91, N 2, p.403−413.
  216. Schwinghamer E.A., Pankhurst C.E. Whitfield P.R. A phage-like bacteriocin of Rhizobium trifolii. Can.J.Microbiol., 1973, v.19, N 3, p.359−368.
  217. Schwinghamer E.A., Reinhardt D.J. Lysogeny in Rhizobium legu-minosarum and Rh.trifolii. Austr.J.Biol.Sci., 1963, v.16,1. И 3, p.597−605.
  218. Sik Т., Horvath J., Misra A.K., Chattopadhyay S. General transduction in Rhizobium meiiioti. Acta Microbiol.Acad. Sci.Hung., 1978, v.25, N 2, p.129.
  219. Sik Т., Orosz L. Ghemistry and genetics of Rh. meliloti phage 16−3. Plant and Soil, 1971, Sp.vol., p.57−62.
  220. Smith-Keary P.P. Restricted transduction by bacteriophage P22 in Salmonella typhimurium. Genet.Res., 1966, v.8, II 1, p.73−82.
  221. Staniewski R. Relationship among different Rhizobium strains determined by phage lysis. Acta Microbiol. Polon, Ser.B., 1970, v.2 (19), N 1, p.3−11.
  222. Staniewski R., Typing of Rhizobium by phages. Canad.J.
  223. Microbiol., 1970, v.16, N 10, p.1003−1007. 249• Staniewski R. Typing of Rhizobium with two different phage dilutions. Acta Microbiol.Polon., 1980, v.29, IT 4, p.331−341.
  224. Staniewski R., Kowalska W., Typing of Rhizobium meiiioti mutants bjr means of phages. Acta Microbiol.Polon., ser. A, 1974, v.6(23), IT 2, p.183−186.
  225. Staniewski R., Kowalski M. Effect of lysogenization of variability of phage type in Rhizobium meiiioti. Acta Microbiol. Polon., 1965, v. 14, IT 3, p.231−236.
  226. Staniewski R., Kowalski M., Gogacz E., Sokolowska P., Succepitibility of Rhizobium strains to phages. Acta Micro-biol.Polon., 1962, v.11, IT 3, p.245−254.
  227. Staniewski R., Kowalski M., Zomanska T. Neutralization of Rhizobium phages by antiphage sera. Acta Microbiol.Polon., 1963, v.15, N 3, p.187−191.
  228. Staniewski R., Jurzyk I., Lorkiev/icz Z. Typing of Rhizoboum trifolii mutants by means of phages. Acta Microbiol.Polon., 1973, v.5(22), N 1, p.21−25.
  229. Stocker B.A.D., Makela P.H. Genetics of the (gram-negative)bacterial surface! Proc.R.Soc.Lond.B., 1978, v.220, N 1146, p.5−30.
  230. Suskind M.M., Botstein D. Molecular genetics of bacteriophage P22. Microbiol.Rev., 1978, v.42, IT 2, p.385−413.
  231. Svab Z., Kondorosi A., Orosz L. Specialized transduction of a systeine marker by Rhizobium meiiioti phage 16−3.
  232. J.gen.Microbiol., 1978, v.106, N 2, p.321−327.
  233. Svab Z., Orosz L., Kondorosi A., Sik T. Study of a specially transducing Rhizobium phage. Acta microbiol.Acad.Sci.Hung., 1973, v.20, N 1, p.24.
  234. Szabo S.J. Phage infection of vitamin B^ producing Rhizobium meliloti. Acta Microbiol.Acad.Sci.Hung., 1971, v.18,1. 2, p.81−86.
  235. Szende K. Genome structures in a lysogenie Rhizobium meliloti system. Plant and Soil., 1971, Sp.vol., p.81−84.
  236. Szende K., Ordogh P. Die Lysogenie von Rhizobium meliloti.-TTaturwissenschaften, 1960, v.47, IT 17, p.404−405.
  237. Takahashi J., Quadling C. Lysogeny in Rhizobium trifolii.-Can.J.Microbiol., 1961, v.7, N 4, p.455−465.
  238. Truchet G., Denarie J. Ultrastructure et activite reductrice d’acetylene des nodusites de luzerne (Medicago sativa L) induites par des souches de Rhizobium meliloti auxotrophes pour la leucine. C.R.Acad.Sci., Ser. D, 1973, v.277, IT 4, p.925.
  239. Truchet G., Michel M., Denarie J. Sequential analysis of the organogenesis of lucerne (Medicago sativa) root nodules using symbiotically-defective mutants of Rhizobium meliloti. Differentiation, 1980, v.16, IT 3, p.163−172.
  240. Vincent J.M., Nutman P. S., Skinner P.A. The identification and classification of Rhizobium. In: Identification methods for microbiologists. Ed. by Skinner, 1979, p.49−69.
  241. Wong F.H., Bryan L.E. Characterization of PR5, a lipid-con-taining plasmid-dependent phage. Gen.J.Microbiol., 1978, v.24, И 7, p.875−882.
  242. Wyss 0., ITimeck M.W. Interspecific transduction in Azotobac-ter. Federat.Proc., 1962, v.21, N 2, p.187−194.
  243. Zajac E., Russa R., Lorkiewicz Z. Lipopolysaccharide as receptor for Rhizobium phage 1P.-J.gen.Microbiol., 1975, v.90, IT 2, p.365−367.
  244. Zelazna-Kowalslca I. Bacteriocinogeny of Rhizobium trifolii.
  245. Acta Microbiol.Polon., 1979, v.28, IT 1, p.35−45.
  246. Zinder N.D. Bacterial transduction. J.Cell.Сотр.Physiol., 1955, v.45, Suppl.2, p.23−45.
  247. Zurkowski W. Conjugational transfer of the nodulation-conferring plasmid pWZ2 in Rhizobium trifolii. Molec.gen.Genet., 1981, v.181, II 4, p.522−524.
  248. Zurkowski W. Molecular mechanisms for loss of nodulation properties of Rhizobium trifolii. J.Bacterid., 1982, v.150,1. 3, p.999−1007.
  249. Zurkowski W., Lorkiewicz Z. Effective method for the isolation of non-nodulating mutants of Rhizobium trifolii. Genet. Res., 1978, v.32, IT 3, p.311−314.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!