Гликозаминогликан-связывающие варианты вируса клещевого энцефалита
Диссертация
Гликозаминогликаны (ГАГ) — линейная полисахаридная молекула, которая экспрессируется на поверхности почти всех клеток млекопитающих, а также у организмов различных типов, таких как хордовые и членистоногие. Эти молекулы играют важную роль во взаимодействии клетки с внеклеточным матриксом, межклеточном сигналинге как рецепторы, и ко-рецепторы. Различные по структуре вириона и схеме репликации… Читать ещё >
Список литературы
- Грицун Т.С., Ляпустин В. Н., Шаталов А. Г., Лашкевич В. А. 1990. Множественные формы белка NS1 как основного компонента невирионного («растворимого») антигена вируса клещевого энцефалита. Вопр. вирусол. № 6, стр. 471−474.
- Дживанян Т.И., Чунихин С. П., Лисак В. М., Каштанова Г. М., Королев М. Б. 1986. Иммунохимические характеристики антигенов варианта вируса клещевого энцефалита, адаптированного к клещам Hyalomma plumbeum. Вопр. вирусол. № 1, стр. 92−96.
- Дживанян Т.И., Чунихин С. П., Чупринская М. В., Лашкевич В. А. 1975. Изменчивость вируса клещевого энцефалита по ДС-признаку при пассажах через клещей и позвоночных животных. Материалы IX симпозиума «Экология вирусов», г. Душанбе, стр. 22−24.
- Дживанян Т.И., Батикова М., Грешикова М., Чунихин С. П. 1981. Различия штаммов вируса клещевого энцефалита по чувствительности их гемагглютининов к действию детергентов. Вопр. вирусол. № 2, стр.237−240.
- Карганова Г. Г. 1991. Зависимые от хозяина варианты вируса клещевого энцефалита и особенности их репродукции в клетках млекопитающих. Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук по специальности вирусология.
- Ляпустин В.Н., Чунихин С. П., Решетников И. Н., Лашкевич В. А. 1987. Изменения синтеза вирионного антигена вируса клещевого энцефалита после пассирования через иксодовых клещей и мелких млекопитающих. Вопр. вирусол. № 4, стр. 451−456.
- Протопопова Е.В., Коновалова С. Н. и Локтев В.Б. 1997. Выделение клеточного рецептора для вируса клещевого энцефалита при помощи анти-идиотипических антител. Вопр. виру con. № 2, стр. 264−268.
- Чунихин С.П. и Дживанян Т.И. 1977. «Экологические маркеры» арбовирусов. ДС-маркер вируса клещевого энцефалита. Вестник АМН СССР. № 5, стр. 17−21.
- Чунихин С. П1., Решетников И. Н., Ляпустин В: Н. 1986. Изменчивость вируса клещевого энцефалита при пассировании через иксодовых клещей и мелких млекопитающих. Мед. паразптол. и паразит, болезни. № 6, стр. 58−61.
- Чунихин С.П., Дживанян Т. И., Баннова Г. Г., Бабенко Л.В: 1975. Экспериментальное изучение роли иксодовых клещей в изменчивости вируса клещевого энцефалита по ДС-признаку. Мед. паразитом, и паразит, болезни. № 3, стр. 344−347.
- Alberts В., Bray D., Lewis J., Raff М., Roberts К., Walter P. 2008: Molecular biology of the cell, fifth ed. Garland Science, Taylor & Francis Group, USA.
- Allison S. L, Stiasny K., Stadler К., Mandl C.W., Heinz F.X. 1999. Mapping of functional elements in the stem-anchor region of tick-borne encephalitis virus envelope protein E. J.Virol. 73, p. 5605−5612.
- Allison S.L., Schalich J., Stiasny K., Mandl C.W., Kunz С., Heinz F.X. 1995. Oligomeric rearrangement of tick-borne encephalitis virus envelope proteins induced by an acidic pH. J. Virol. 69(2), p. 695−700.
- Alonso A., Goni F.M., Buckley J.T. 2000. Lipids favoring inverted phase enhance the ability of aerolysin to permeabilize liposome bilayers. Biochemistry. 39, p. 14 019−14 024.
- Ammendolia M.G., Pietrantoni A., Tinari A., Yalenti P., Superti F. 2007. Bovine lactoferrin inhibits echovirus endocytic pathway by interacting with viral structural polypeptides. Antiviral. Res. 73(3), p. 151−60.
- Andreo U., Maillard P., Kalinina O., Walic M., Meurs E., Martinot M., Marcellin P., Budkovvska A. 2007. Lipoprotein lipase mediates hepatitis С virus (HCY) cell entry and inhibits HCV infection. Cell. Microbiol. 9, p. 2445−2456.
- Baranowski E., Ruiz-Jarabo C.M., Sevilla N., Andreu D., Beck E., Domingo, E. 2000. Cell recognition by foot-and-mouth disease virus that lacks the RGD integrin-binding motif: flexibility in aphtliovirus receptor usage. J. Virol. 74, p. 1641−1647.
- Baranowski E., Sevilla N., Verdaguer N., Ruiz-Jarabo C.M., Beck E., Domingo E. 1998'. Multiple virulence determinants of foot-and-mouth disease virus in cell culture. J. Virol. 12, p.6362−6372.
- Barker W.C., Mazumde, R., Vasudeva, S., Sagripant, J.L., Wu C.H. 2009. Sequence signatures in envelope protein may determine whether flaviviruses produce hemorrhagic or encephalitic syndromes. Virus Genes. 39(1), p. 1−9.
- Barrett C.P., Hall B.A., Noble M.E.M. 2004. Dynamite: A Simple Way to Gain Insight into Protein Motions. Acta Cryst. 60(12−1), p.2280−2287.
- Barth H., Schafer С., Adah M.I., Zhang F., Linhardt R.J., Toyoda H., Kinoshita-Toyoda A., Toida Т., Van Kuppevelt Т.Н., Depla E., Yon Weizsacker F., Blum H.E., Baumert T.F. 2003.
- Cellular binding of hepatitis C virus envelope glycoprotein E2 requires cell surface heparan sulfate. J. Biol. Chem. 278, p. 41 003−41 012.
- Barth H., Schnober E.K., Zhang F., Linhardt R.J., Depla E., Boson B., Cosset F.L., Patel A.H., Blum H.E., Baumert T.F. 2006. Viral and cellular determinants of the hepatitis G virus envelope-heparan sulfate interaction. J. Virol. 80, p. 10 579−10 590.
- Basu, A., Beyene, A., Meyer, K., Ray, R. 2004. The hypervariable region 1 of the E2 glycoprotein of hepatitis C virus binds to glycosaminoglycans, but this binding does not lead to infection in a pseudotype system. J. Virol. 78, p. 4478- 4486.
- Basu A., Kanda T., Beyene A., Saito K., Meyer K., Ray R. 2007. Sulfated homologues of heparin inhibit hepatitis C virus entry into mammalian cells. J. Virol. 81, p. 3933−3941.
- Bernard K.A., Klimstra W.B., Johnston R. E. 2000. Mutations in the E2 glycoprotein of Venezuelan equine encephalitis virus confer heparan sulfate interaction, low morbidity, and rapid clearance from blood of mice. Virology. 276, p. 93−103.
- Bressanelli S., Stiasny K., Allison S.L., Stura E.A., Duquerroy S., Lescar J., Heinz F.X., Rey
- F.A. 2004. Structure of a flavivirus envelope glycoprotein in its low-pH-induced membrane fusion conformation. EMBOJ. 23, p. 728−738.
- Burke D.S., Monath T.P. 2001. Flaviviruses. In D. M. Knipe, P. M. Howley et al. (eds.), Fields-virology, 4th ed. Lippincott- Williams & Wilkins, Philadelphia, Pa. p. 1042−1150.
- Burlone M.E., Budkowska A. 2009. Hepatitis C virus cell entry: role of lipoproteins and cellular receptors. J. Gen. Virol. 90, p. 1055−1070.
- Byrnes A.P., Griffin D.E. 1998. Binding of Sindbis virus to cell surface heparan sulfate. J. Virol 72(9), p. 7349−7356.
- Calisher C.H., Gould E.A. 2003. Taxonomy of the virus family Flaviviridae. Adv. Vir. res. 59, p. 1−19.
- Callens N., Ciczora Y., Bartosch B., Vu-Dac N., Cosset F.L., Pawlotsky J.M., Penin F., Dubuisson J. 2005. Basic residues in hypervariable region 1 of hepatitis C virus envelope glycoprotein e2 contribute to virus entry. J. Virol. 79, p. 15 331−15 341.
- Cardosa M.J., Porterfield J.S., Gordon S. 1983. Complement receptor mediates enhanced Flavivirus replication in macrophages. J. Exp. Med. 158, p. 258−263.
- Case D.A., Darden T.A., Cheatham III T.E., Simmerling C.L., Wang J., Duke R.E., Luo R., Crowley M., Walker R.C., Zhang W., Merz K.M., Wang B., Hayik S., Roitberg A., Seabra
- Castle E., Nowak T., Leidner U., Wengler G. 1985. Sequence analysis of the viral core protein and the membrane-associated proteins VI and NV2 of the flavivirus West Nile virus and of the genome sequence for these proteins. Virology. 145, p. 227−236.
- Chen Y.C., Wang S.Y., King C.C. 1999. Bacterial lipopolysaccharide inhibits DEN infection of primary human monocytes/macrophages by blockade of virus entry via a CD14-dependent mechanism. J. Virol. 73, p. 2650−2657.44.