Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Фотосинтетическая активность, динамика численности и взаимодействие морских планктонных водорослей при ассимиляции органического азота

Диссертация: Фотосинтетическая активность, динамика численности и взаимодействие морских планктонных водорослей при ассимиляции органического азота
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Существование любой популяции, в том числе и популяций планктонных водорослей, определяется не только совокупностью абиотических факторов, но и биотическими условиями среды, важнейшей составляющей которых являются конкурентные взаимодействия между популяциями фитопланктона. Конкурентные взаимодействия между популяциями водорослей зависят от их обеспеченности компонентами минерального питания… Читать ещё >

Фотосинтетическая активность, динамика численности и взаимодействие морских планктонных водорослей при ассимиляции органического азота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава I. Обзор литературы
    • 1. 1. Лимитирование роста и фотосинтетической активности водорослей недостатком элементов минерального питания
    • 1. 2. Потребление и ассимиляция водорослями минерального азота
    • 1. 3. Восстановление фотосинтетического аппарата и активация роста водорослей при ассимиляции минеральных форм азота
    • 1. 4. Потребление и ассимиляция водорослями органического азота
      • 1. 4. 1. Потребление и ассимиляция мочевины
      • 1. 4. 2. Потребление и ассимиляция аминокислот
      • 1. 4. 3. Значимость субстратов растворенного органического азота для обеспечения жизнедеятельности миксотрофных водорослей в природных экосистемах
    • 1. 5. Влияние интенсивности света на фотосинтез и рост водорослей
      • 1. 5. 1. Акклимация к снижению освещенности
      • 1. 5. 2. Акклимация к повышению освещенности
      • 1. 5. 3. Фотоингибирование
    • 1. 6. Взаимодействие популяций планктонных водорослей
      • 1. 6. 1. Классификационные схемы жизненных стратегий
      • 1. 6. 2. Характеристика первичных стратегий планктонных водорослей в параметрах конкурентной способности популяций
  • Глава II. Материалы и методы
  • Глава III. Результаты и обсуждение
    • III. 1. Динамика биомассы и фотосинтетических параметров водорослей при возрастании дефицита азота
    • 111. 2. Динамика численности и фотосинтетических параметров у водорослей, ассимилирующих органические и минеральные формы азота
    • 111. 3. Взаимодействие морских планктонных водорослей в смешанных культурах при органическом и минеральном источниках азота

Первичная продукция в большинстве районов Мирового океана ограничена недостатком азота (Glibert, 1988; Barber, 1992). Азотное лимитирование приводит к снижению эффективности и интенсивности световых реакций фотосинтеза, уменьшению скорости фотосинтетической фиксации углерода и популяционного роста водорослей (Falkowski, Raven, 1997). В условиях недостатка минерального азота возрастает значимость потребления планктонными водорослями растворенного органического азота (Nopr). При обширном объеме сведений о способности различных водорослей ассимилировать тот или иной содержащий азот органический субстрат (см., например, Antia et al., 1991), данные о динамике фотосинтетической активности и, в частности, световых реакций фотосинтеза, при потреблении органического азота практически отсутствуют. Оценка соотношения интенсивностей световых реакций фотосинтеза при минеральном и органическом источниках азота является принципиально важной задачей для продукционной гидробиологии, поскольку именно в результате световых реакций внешняя (солнечная) энергия поступает в водные экосистемы.

В природных экосистемах уровень Nopr в среде изменяется значительно как во временном, так и пространственном масштабах. Значимую долю в Nopr составляют вещества, которые планктонные водоросли способны ассимилировать. Например, в летний период доля азота мочевины в суммарном содержании Nopr может достигать 48%, а доля азота свободных аминокислот — более 25% (Flynn, Butler, 1986). В природных экосистемах фитопланктон в поверхностном слое испытывает стресс фотоингибирования, на промежуточных глубинах фотической зоны освещенность близка к насыщающему фотосинтез уровню, на нижней границе фотической зоны освещенность лимитирует фотосинтез. Различная обеспеченность фитопланктона световой энергией, а также зависимость скорости потребления водорослями мочевины и аминокислот от освещенности (Bonin et al., 1982; Wallen, Allan, 1987) выдвигают в качестве актуальных задач оценку динамики биомассы и фотосинтетической активности у водорослей, ассимилирующих органический азот при разных уровнях освещенности.

Существование любой популяции, в том числе и популяций планктонных водорослей, определяется не только совокупностью абиотических факторов, но и биотическими условиями среды, важнейшей составляющей которых являются конкурентные взаимодействия между популяциями фитопланктона. Конкурентные взаимодействия между популяциями водорослей зависят от их обеспеченности компонентами минерального питания, и в частности, от того, какой минеральный ресурс лимитирует развитие водорослей (Ильяш, 1998; Tilman, 1982). С другой стороны, способность водорослей расти за счет ассимиляции органических субстратов в условиях отсутствия или недостатка минеральных ресурсов дает основание предполагать, что между популяциями фитопланктона существуют конкурентные отношения и за органические ресурсы. Если взаимодействие водорослей при ассимиляции органического ресурса проявляется в виде эксплуатационной конкуренции, тогда закономерно возникает вопрос о соотношении конкурентных параметров популяций при использовании органического и минерального ресурсов.

Таким образом, для понимания закономерностей формирования видовой структуры фитопланктона и первичной продукции в водных экосистемах, а также для определения факторов, определяющих сезонную изменчивость и пространственную неоднородность фитопланктона, необходимо выявление особенностей динамики биомассы, фотосинтетической активности и взаимодействия популяций планктонных водорослей при ассимиляции органических субстратов. Особую актуальность такой подход приобретает в свете ежегодного возрастания количества поступающего в водные экосистемы органического азота антропогенного происхождения (Seitzinger, Sanders, 1999).

Цель настоящей работы — выявление особенностей динамики численности, фотосинтетической активности и взаимодействия морских планктонных водорослей Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima при ассимиляции органического азота в условиях лимитирующей и насыщающей фотосинтез освещенности.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

1. Оценка и сравнительный анализ динамики численности водорослей Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima при ассимиляции мочевины, глицина, нитратов и аммония в условиях лимитирующей и насыщающей фотосинтез освещенности.

2. Оценка и сравнительный анализ параметров, характеризующих фотосинтетическую активность водорослей Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima при ассимиляции мочевины, глицина, нитратов и аммония в условиях лимитирующей и насыщающей фотосинтез освещенности.

3. Оценка и сравнительный анализ конкурентных параметров водорослей Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima при совместном росте с использованием в качестве единственного источника азота мочевины или нитратов в условиях лимитирующей и насыщающей фотосинтез освещенности.

выводы.

1. Морские планктонные водоросли Tetraselmis viridis (Prasinophyta), Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima (Bacillariophyta) способны расти с использованием мочевины и глицина в качестве единственного источника азота. Ассимилированный азот мочевины, глицина и нитратов одинаково эффективно используется на рост как при лимитирующей, так и при насыщающей интенсивности света, и при культивировании с использованием разных источников азота водоросли достигают одинакового уровня максимальной численности.

2. Водоросли Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima ассимилируют мочевину и глицин и в темноте, при этом энергетические и субстратные затраты на потребление и внутриклеточную трансформацию субстратов покрываются, по-видимому, за счет окисления запасных полисахаридов, как это происходит в случае темновой ассимиляции минерального азота.

3. У водорослей Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima при высокой степени клеточного дефицита азота, обусловливающей функциональные и структурные нарушения фотосинтетического аппарата, за счет ассимиляции мочевины и глицина происходит увеличение относительного выхода переменной флуоресценции, содержания фотосинтетических пигментов, коэффициента максимальной утилизации световой энергии, максимальной относительной скорости электронов по электрон транспортной цепи, насыщающей интенсивности света, скорости фотосинтетической фиксации углерода и фотосинтетического выделения кислорода, повышаются устойчивость к фотоингибированию и способность к восстановлению после ингибирования сильным светом. Все это свидетельствует об использовании ассимилируемого органического азота для восстановления нормальной работы фотосинтетического аппарата водорослей.

4. Водоросли Tetraselmis viridis, Thalassiosira weissflogii и Pseudo-nitzschia delicatissima характеризуются видоспецифичной зависимостью относительного выхода переменной флуоресценции, скорости синтеза фотосинтетических пигментов, скорости фотосинтетической фиксации углерода и фотосинтетического выделения кислорода от концентрации субстратов и освещенности. Им так же присуща видоспецифичность в соотношении параметров, характеризующих фотосинтетические и метаболические процессы, при органическом и минеральном источниках азота.

5. При совместной эксплуатации органического азота (мочевины) взаимодействие между популяциями Pseudo-nitzschia delicatissima, Thalassiosira weissflogii и Tetraselmis viridis так же как и при потреблении минерального ресурса (нитратов), соответствует конкурентным отношениям. При этом конкурентный эффект у каждой из трех популяций видоспецифично зависит от источника азота и уровня освещенности, тогда как устойчивость к конкурентному вытеснению от источника азота и уровня освещенности не зависит.

Автор выражает глубокую признательность научному руководителю д.б.н. JI.B. Ильяш, чьи знания и опыт помогли в проведении данных исследований, обработке материала и написании работы. Я благодарна также д.б.н. Д. Н. Моторину за помощь в экспериментальной части, ценные замечания по работе и к.б.н. Т. А. Белевич за помощь в проведении исследований и обработке материала.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Морские планктонные водоросли Pseudo-nitzschia delicatissima, Thalassiosira weissflogii и Tetraselmis viridis способны расти с использованием мочевины и глицина в качестве единственного источника азота. Эти водоросли ассимилируют мочевину и глицин и в темноте, при этом энергетические и субстратные затраты на потребление и внутриклеточную трансформацию субстратов покрываются, по-видимому, за счет окисления запасных полисахаридов, как это происходит в случае темновой ассимиляции минерального азота.

У всех трех видов водорослей при высокой степени клеточного дефицита азота, обусловливающей функциональные и структурные нарушения фотосинтетического аппарата, за счет ассимиляции мочевины и глицина происходит увеличение относительного выхода переменной флуоресценции, содержания фотосинтетических пигментов, скорости фотосинтетической фиксации углерода и фотосинтетического выделения кислорода. Все это свидетельствует об использовании ассимилируемого органического азота для восстановления нормальной работы фотосинтетического аппарата водорослей. Водоросли характеризуются видоспецифичной зависимостью конкретных параметров от концентрации субстратов и освещенности. Им также присуща видоспецифичность в соотношении параметров, характеризующих фотосинтетические и метаболические процессы, при органическом и минеральном источниках азота. Во многих случаях динамика параметров при ассимиляции мочевины и глицина не отличается от таковой при ассимиляции минерального азота. В конечном итоге соотношение параметров при использовании водорослями органических и минеральных ресурсов определяется, по-видимому, соотношением клеточных затрат вещества и энергии на потребление и ассимиляцию конкретного субстратапутями внутриклеточной трансформации субстратапреимущественной направленностью продуктов трансформации субстрата на определенный метаболический процесс.

При совместной эксплуатации органического ресурса (мочевины) взаимодействие между популяциями Pseudo-nitzschia delicatissima, Thalassiosira weissflogii и Tetraselmis viridis, так же как и при потреблении минерального ресурса (нитратов), соответствует конкурентным отношениям. При этом конкурентные параметры популяций обусловлены не только конкурентными способностями видапартнера, но и видоспецифично зависят от источника азота и уровня освещенности.

В природных экосистемах обеспеченность фитопланктона минеральными и органическими ресурсами, а также световой энергией меняется как во времени, так и в пространстве. Например, в морях с выраженной сезонной динамикой абиотических факторов (умеренные и высокие широты) весеннее развитие фитопланктона ведет к практически полному исчерпанию минерального азота в фотическом слое. Относительная доля минерального азота в суммарном содержании растворенного азота снижается, а доля органического — увеличивается (Mantoura et al., 1988). В летний период доля мочевины в суммарном содержании растворенного азота может достигать 48%, а доля свободных аминокислот — более 25% (Flynn, Butler, 1986). В поверхностном слое фитопланктон испытывает стресс фотоингибирования, на промежуточных глубинах фотической зоны освещенность близка к насыщающему фотосинтез уровню, на нижней границе фотической зоны освещенность лимитирует фотосинтез. В летний период при низкой концентрации минеральных ресурсов в ряде случаев наблюдается интенсивное развитие фитопланктона, который представлен, как это показано, например, для Белого моря (Ильяш и др., 2003), в основном миксотрофными диатомовыми и жгутиковыми водорослями. Выявленное у водорослей Pseudo-nitzschia delicatissima, Thalassiosira weissflogii и Tetraselmis viridis эффективное восстановление фотосинтетического аппарата за счет ассимиляции мочевины и глицина свидетельствует, что формирование летнего цветения диатомей и массовое развитие жгутиковых водорослей может быть обусловлено их способностью к ассимиляции азот содержащих органических субстратов и поддержанию за счет органических ресурсов нормального функционирования фотосинтетического аппарата и популяционного роста.

Возможность активного роста водорослей за счет органических ресурсов в природных условиях определяется их способностью ассимилировать органические субстраты при природных концентрациях, а также конкурентными отношениями с бактериопланктоном — основным потребителем растворенного органического вещества. Содержание растворенного органического азота в поверхностных водах колеблется в пределах 8.6 — 31.4 мкмоль азота (Sharp, 1983). Значимую долю в пуле органического азота составляют вещества, которые планктонные водоросли способны ассимилировать (Antia et al., 1991). У морских планктонных водорослей константы полунасыщения (Ks), характеризующие потребление мочевины, варьируют в пределах, соответствующих концентрациям этого субстрата в природных водах (Antia et al., 1991). В морских экосистемах именно фитопланктон является основным потребителем мочевины (Remsen et al., 1972; Billen, 1984), поскольку у большинства бактерий величины Ks, характеризующие потребление мочевины, существенно выше (Jahns et al., 1988). Константы полунасыщения, характеризующие потребление различных аминокислот морскими водорослями, в среднем превышают пределы концентраций этих субстратов в природных водах. Однако многие ранее полученные оценки Ks могли быть завышены в силу методических погрешностей (Antia et al., 1991). Для ряда видов показана способность потреблять аминокислоты при концентрациях, соответствующих природным (North, Stephens, 1971; Ming, Stephens, 1985; Flynn, Syrett, 1986a). Предполагают, что при конкурентных отношениях за аминокислоты фитои бактериопланктон обладают примерно равными возможностями (Saks, Kahn, 1979), а относительные вклады в суммарное потребление аминокислот определяются соотношением биомассы бактериои фитопланктона (Wheeler et al., 1977).

Спектры органических субстратов, которые способны потреблять морские планктонные водоросли, видоспецифичны (Antia et al., 1991). Возможно, благодаря этим различиям достигается сосуществование разных популяций фитопланктона при дефиците минеральных ресурсов. В то же время, выявленные в экспериментальных сообществах конкурентные отношения за органические ресурсы между планктонными водорослями дают основание предполагать наличие конкурентных отношений и между популяциями фитопланктона в природных экосистемах в условиях дефицита минерального азота и обеспеченности органическим.

Обнаруженная видоспецифичная зависимость конкурентных параметров водорослей от источника азота свидетельствует о том, что популяции, являющиеся преимущественными конкурентами в борьбе за минеральные ресурсы, могут быть более слабыми конкурентами, когда решающей становится борьба за органические ресурсы. Это подтверждается и результатами экспериментов с природным фитопланктоном: при конкуренции за аммонийный азот в сообществе преобладали мелкие жгутиковые, а при конкуренции за азот органических субстратов — диатомовые идинофитовые водоросли (Seitzinger, Sanders, 1999).

Выявленная видоспецифичная зависимость конкурентных параметров водорослей от освещенности может обусловливать неоднородность структуры природного фитопланктона по глубине, например, смену состава доминирующих форм на разных горизонтах фотической зоны.

Количество поступающего в водные экосистемы органического азота антропогенного происхождения ежегодного возрастает (Seitzinger, Sanders, 1999). Увеличение обилия доступных водорослям органических ресурсов может вызывать изменение структуры и продуктивности экосистем. Например, случаи массового цветения («коричневые приливы») популяции Aureococcus anophagefferus связывают с предпочтительным использованием этой водорослью органического азота (Berg et al., 1997). Наблюдаемое в последнее десятилетие возрастание более, чем на порядок, биомассы диатомеи Skeletonema costatum, в массе развивающейся летом в прибрежных водах Белого моря, как полагают, обусловлено увеличением поступления в море органического азота преимущественно антропогенного происхождения (Ильяш и др., 2003).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.А., Ильяш Л. В., Маторин Д. Н. Влияние растворенного органическоговещества на фотосинтез диатомовой водоросли Thalassiosira weissflogii // Вест. МГУ. Сер. биол. 2001. № 4. С. 32−38.
  2. Д. В., Маторин Д. Н., Венедиктов П. С., Рубин А. Б. Два типа неактивных центров фотосистемы 2 у зеленой водоросли Chlorella, выращенной в условиях недостатка минерального азота // Физиол. раст. 1999. Т. 46. № 5. С. 679−685.
  3. С.С., Арутюнян А. А., Чемерис Ю. К., Пащенко В. З., Венедиктов П. С., Рубин А. Б. Кинетика затухания пикосекундной флуоресценции хлорофилла при недостатке минерального питания хлореллы//Биофизика. 1986. Т. 31. С. 27−30.
  4. М. И. Полярографическое определение кислорода в исследованиях по фотосинтезу и дыханию. Л.: Наука. 1986. 140 с.
  5. Л.В. Жизненные стратегии у морских планктонных микроводорослей // Автореф. дис. .докт. биол. наук: 03.00.18. М., 1998. 48 с.
  6. Л.В., Федоров В. Д. Взаимодействие трех видов динофлагеллят в смешанных культурах // Науч. докл. высш. шк. Биол. науки. 1985. № 11. С.67−74.
  7. Л.В., Федоров В. Д., Сарухан-Бек К.К. Динамика биомассы и функциональных характеристик беломорских диатомовых водорослей Skeletonema costatum и Chaetoceros decipiens при накопительном культивировании // Изв. РАН. Сер. Биол. 1996. № 4. С. 472−477.
  8. Л.В., Федоров В. Д., Сарухан-Бек К.К., Радченко И. Г., Кольцова Т. И., Полякова Т. В. Фотосинтетическая и гетеротрофная активности фитопланктона Белого моря //Водные ресурсы. 1997. Т. 24. С. 205 210.
  9. Л.В., Кольцова Т. И., Сарухан-Бек К.К., Федоров В. Д. Эколого-ценотические стратегии популяций фитопланктона Белого моря // Вестн. МГУ. Сер. биол. 1999. № 2. С. 24−31.
  10. Л.В., Житина Л. С., Федоров В. Д. Фитопланктон Белого моря. М.: Янус-К, 2003.168 с.
  11. JI.B., Маторин Д. Н., Кольцова Т. И., Шам X. X. Пространственноераспределение и суточная динамика фитопланктона залива Нячанг ЮжноКитайского моря//Океанология. 2004. Т. 44. № 2. С. 238−248.
  12. Кобленц-Мишке О. И. Экстрактный и безэкстрактный методы определения фотосинтетических пигментов в пробе // Современные методы оценки распределения морского планктона. М.: Наука, 1983. С. 114−125.
  13. М.И. Миксотрофизм синезеленых водорослей и его значение. Киев: Наукова Думка, 1981. 212 с.
  14. Л.А. Культивирование водорослей // Экологическая физиология морских планктонных организмов. Киев: Наукова Думка, 1971. С. 3 15.
  15. Д. Н., Венедиктов П. С. Люминисценция хлорофилла в культурахмикроводорослей и природных популяциях фитопланктона // Итоги науки и техн. ВИНИТИ, сер. Биофизика. 1990. Т. 40. С. 49−100
  16. Д.Н., Васильев И. Р., Ведерников В.И Исследование фотоингибирования первичных реакций фотосинтеза у природных популяций фитопланктона Черного моря//Физиол. раст. 1992. Т. 39. № 3. С. 455−463.
  17. Л. Г. Введение в комплексное почвенно-геоботаническое исследование земель. М.: Сельхозгиз, 1938. С. 279 280.
  18. В.И., Кузнецов С. И. Экология микроорганизмов пресных водоемов. Л: Наука, 1974. С. 25 -38.
  19. Ю.Э. Стратегии жизненного цикла: синтез эмпирического и теоретического подходов//Журн. общ. биол. 1998. Т. 59. № 6. С. 359−370.
  20. А.Б. Биофизика. Т. 2. М.: Книжный дом «Университет», 2000. 468 с.
  21. В.Е. Молекулярно-биологические аспекты эндогенной регуляции фотосинтеза//Физиол. раст. 1978. Т. 25. С. 903 921.
  22. Н.С., Бузинова НС. Практическое руководство по гидрохимии. М.: МГУ, 1980. 198 с.
  23. В.Д. О методах изучения фитопланктона и его активности. М.: МГУ, 1979. 165 с.
  24. В.Д., Ильяш ЛВ. Адаптивные механизмы микроводорослей в осуществленииразличных типов жизненных стратегий//Гидробиол. ж. 1991. № 5. С. 3 -10.
  25. Финенко 3. 3., Тен В. С., Акишина Д. К., Сергеева JI. М., Берсенева Г. П. Пигменты в морских одноклеточных водорослях и интенсивность фотосинтеза // Экологическая физиология морских планктонных водорослей. Киев: Наукова думка, 1971. С. 51−90.
  26. К.М. Экологический метаболизм в море. Киев: Наукова Думка, 1971. 252 с.
  27. Ю.К., Шендерова JI.B., Венедиктов П. С. Изменение параметров фотосинтетического аппарата Chlorella vulgaris Beijer в процессе развития и обращения голодания по азоту// Физиол. раст. 1983. Т. 30. №. 2. С. 355−359.
  28. Ю.К., Попова А. В., Арутюнян А. А., Венедиктов П. С. Влияние недостатка минерального питания на фотосинтетический аппарат хлореллы // Физиол. раст. 1989. Т. 36. С. 57−66.
  29. Ю.К., Шендеров JI.B., Лядский В. В., Венедиктов П. С. Связь инактивации ФС II с накоплением продуктов фотосинтетического метаболизма углерода при азотном голодании клеток хлореллы // Физиол. раст. 1990. Т. 37. № 2. С. 241 248.
  30. Л.В., Чемерис Ю. К., Венедиктов П. С. Разрушение хлорофиллов у Chlorella vulgaris Beijer в условиях азотного голодания и последующего восстановления на среде с нитратом // Физиол. раст. 1983. Т. 30. № 4. С. 668−672.
  31. О.И. Аквариум с искусственной морской водой для содержания иразведения примитивного многоклеточного организма Trichoplax и других мелких беспозвоночных//Зоол. журн. 1983. Т. 12. № 4. С. 618−621.
  32. Admiraal W., Peletier Н. Influence of organic compounds and light limitation on the growth rateofestuarinebenthic diatoms//Br. Phycol. J. 1979. V. 14. P. 197−206.
  33. Admiraal W., Laane R.W.P.M., Peletier H. Participation of diatoms in the amino acid cycle of coastal waters- uptake and excretion in cultures // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1984. V. 15. P. 303−306.
  34. Admiraal W., Peletier H., Laane R.W.P.M. Nitrogen metabolism of marine planktonicdiatoms: excretion, assimilation and cellular pools of free amino acids in seven species with different cell size // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1986. V. 98. P. 241−263.
  35. Admiraal W., Riaux-Gobin C., Laane R.W.P.M. Interactions of ammonium, nitrate, and D-and L-amino acids in the nitrogen assimilation of two species of estuarine benthic diatoms // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1987. V. 40. P. 267−273.
  36. An G.H., Schuman D.B., Johnson E.A. Isolation of Phqffia rhodozyma with increased astaxanthin content // Appl. Environ. Microbiol. 1989. V. 55. P. 116. 124.
  37. Anderson S.M., Roels O.A. Effects of light intensity on nitrate and nitrite uptake and excretion by Chaetoceros curvisetus II Mar. Biol. 1981. V. 62. P. 257 -261.
  38. Anning Т., Maclnture P., Sammes P.J., Gibb S., Geider R.J. Photoacclimation in the marine diatom Skeletonema costatum I I Limnol. Oceanogr. 2000. V. 45. P. 1807−1817.
  39. Antal Т.К., Venediktov P. S., Matorin D.N., Ostrowska M., Wozniak B. Measurement of phytoplankton photosynthesis rate using a pump-and-probe fluorometer // Oceanologia. 2001. V. 43. P. 291−313.
  40. Antia N. J., Chorney V. Nature of the nitrogen compounds supporting phototrophic growth of the marine cryptomonad Hemiselmis virescens II J. Protozool. 1968. V. 15. P. 198−201.
  41. Antia N.J., Berland В., Bonin D J., Maestrini S. Y. Comparative evaluation of certain organic sources of nitrogen for phototrophic growth of marine microalgae // J. Mar. Biol. Assoc. UK. 1975. V. 55. P. 519−539.
  42. Antia N.J., Berland B.R., Bonin D.J., Maestrini S.Y. Effects of urea concentration insupporting growth of certain marine microplanktonic algae // Phycologia. 1977. V. 16. P. 105−111.
  43. Antia N.J., Harrison J.P., Oliveira L. The role of dissolved organic nitrogen in phytoplankton nutrition, cell biology and ecology // Phycologia. 1991. V. 30. P. 1 89.
  44. Arad (Malis) S., Conen E., Ben-Amotz A. Accumulation of canthaxanthin in Chlorella emersonii //Physiol. Plant. 1993. V. 87. P. 232−236.
  45. Aro E. M., Hundal Т., Carlberg J., Anderson B. In vivo studies of light- induced inhibition of photosystem 2 and Di- protein degradation at low temperature // BBA. 1990. V. 1019. P. 269−275.
  46. Avalos J.E., Bejarano E.R., Cerda-Olmedo E. Photoinduction in carotenoid biosynthesis // Methods in Enzymology. 1993. V. 214. P. 283−294.
  47. Baden D.G., Mende T.J. Amino acid utilization by Gymnodinium breve II Phytochem. 1979. V. 18. P. 247−251.
  48. Balch W.R., Ewans R., Brown J., Feldman G., McClain C., Essaias W. Remote sensing of oceanic primary productivity: Use of new data compilation to test satellite algorithms //J. Geophys. Res. 1992. V. 97C. P. 2279−2293.
  49. Barber R.T. Geological and climatic time scales of nutrient availability // Primary productivity and biogeochemical cycles in the sea. Eds. Falkowski P.G., Woodhead A. N.Y.: Plenum, 1992. P. 89 -106.
  50. Bates S.S. Effect of light and ammonium on nitrate by two species of estuarine phytoplankton //Limnol. Oceanogr. 1976. V. 21. P. 212−218.
  51. Bekheet L.A., Syrett P. J. Urea-degrading enzymes in algae // Br. Phycol. J. 1977. V. 12. P. 137−143.
  52. Ben-Amotz A. Effect of irradiance and nutrient deficiency on the chemical composition of Dunaliella bardawil Ben-Amotz and Avron (Volvocales, Chlorophyta) // J. Plant Physiol. 1987. V. 131. P. 479−487.
  53. Ben-Amotz A., Katz A., Avron M. Accumulation of p-carotine in halotolerant algae: purification and characterization of p-carotene rich globules from Dunaliella bardawil (Chlorophyceae) // J. Phycology. 1982. V. 18. P. 529−537.
  54. Berdall J., Morris Y. The concept of light intensity adaptation in marine phytoplankton: some experiments with Phaeodactylum tricornutum II Mar. Biol. 1976. V. 37. P. 377−387.
  55. Berg G.M., Glibert P.M., Lomas M.W., Buford M.A. Organic nitrogen uptake and growth by the chrysophyte Aureococcus anophagefferus during a brown tide event // Mar. Biol. 1997. V. 129. P. 377−387.
  56. Berges J.A., Charlebois D.O., Mauzerall D.C., Falkowski P.G. Differential effects nitrogen limitation on photosynthetic efficiency of photosystems I and II in microalgae // Plant Physiol. 1996. V. 110. P. 689−696.
  57. Berland B.R., Bonin D.J., Guerin-Ancey O., Antia N.J. Concentration requirement of glycine as nitrogen source for supporting effective growth of certain marine microplanktonic algae//Mar. Biol. 1979. V. 55. P. 83−92.
  58. Berner Т., Dubinsky Z., Wyman K., Falkowski P. G. Photoadaptation and the «package» effect in Dunaliella tertiolecta (Chlorophyceae) // J. Phycology. 1989. V. 25. P. 70−80.
  59. Berns D.S., Holohan P., Scott E. Urease activity in blue-green algae // Science. 1966. V. 152. P. 1077−1078.
  60. Bilbao M.M., Gabas J.M., Serra J.L. Inhibition of nitrite uptake in diatom Phaeodactylum tricornutum by nitrate, ammonium and some L-amino acid // Biochemical Society Transactions. 1981. V. 9. P. 476−477.
  61. Bienfang P.K. Steady state analysis of nitrate-ammonium assimilation by phytoplankton // Limnol. Oceanogr. 1975. V. 20. P. 402−411.
  62. Billen G. Heterotrophic utilization and regeneration of nitrogen // Heterotrophic activity in the sea. Eds. Hobbie J.E., Williams P.J. N.Y.: Plenum Press, 1984. P. 313−355.
  63. Birdsey E.S., Lynch V.H. Utilization of nitrogen compounds by unicellular algae // Science. 1962. V. 137. P. 763−764.
  64. Bohling H. Untersuchungen iiber freie geloste Aminosain Meerwasser // Mar. Biol. 1970. V. 6. P. 213−225.
  65. Bohling H. Geloste aminosauren in oberflachenwasser der Nordsee bei Helgoland: Konzentrationsveranderungen im Sommer 1970 //Mar. Biol. 1972. V. 16. P. 281−289.
  66. Bonin D.J., Antia N.J., PelaezrHudlet J. Influence of temperature and light intensity on the utilization of glycine as nitrogen source for phototrophic growth of marine unicellular cyanophyte (Cyanobacterium) // Bot. Mar. 1982. V. 25. P. 493−499.
  67. Bressler S.L., Ahmed S.I. Detection of glutamine synthetase activity in marine phytoplankton: optimization of bio synthetic assay//Mar. Ecol. Progr. Ser. 1984. V. 14. P. 207−217.
  68. Bronk D.A., Glibert P.M. Application of a 15N tracer method to the study of dissolved organic nitrogen uptake during spring and summer in Chesapeake Bay // Mar. Biol. 1993. V. 115. P. 501−508.
  69. Cain B.J. Nitrogen utilization in 38 freshwater chlamydomonad algae // Can. J. Bot. 1965. V. 43. P. 1367−1378.
  70. Caperon J., Meyer J. Nitrogen-limited growth of marine phytoplankton. II. Uptake kinetics and their role in nutrient limited growth of phytoplankton // Deep-Sea Res. 1972. V. 19. P. 619−632.
  71. Caperon J., Ziemann D.A. Synergistics effects of nitrate and ammonium ion on the growth and uptake kinetics ofMonochrysis lutheri in continuous culture // Mar. Biol. 1976. V. 36. P. 73−84.
  72. Carpenter E.J., Dunham S. Nitrogen nutrient uptake, primary production and species composition of phytoplankton in the Carmans River estuary, Long Island, New York // Limnol. Oceanogr. 1985. V. 30. P. 513−526.
  73. Carpenter E.J., Remsen C.C., Schroeder B.W. Comparison of laboratory and in situ measurements of urea decomposition by marine diatom // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1972 a. V. 8. P. 259−264.
  74. Carpenter E.J., Remsen C.C., Watson S.W. Utilization of urea by some marine phytoplankters //Limnol. Oceanogr. 1972b. V. 17. P. 265−269.
  75. Carvajal N., Fernandez M., Rodriguez J.P., Donoso M. Urease of Spirulina maxima II Phytochem. 1982. V. 21. P. 2821−2823.
  76. Charlesworth B. Selection in density-regulated populations // Ecology. 1971. V. 52. P. 469 -474.
  77. Chow W.S. Photoprotection and photoinhibition damage // Advances in molecular and cell biology. V. 10. Ed. Barber J. Greenwich, Connecticut: JAI Press Inc., 1994. P. 151−196.
  78. D.R., Flynn K.J. ^-assimilation in the noxious flagellate Heterosigma carterae (Raphidophyceae): dependence on light, iV-source, and physiological state // J. Phycology. 2002. V. 38. P. 503−512.
  79. Clark M.E., Jackson G.A., North W.J. Dissolved free amino acid in southern California coastal waters//Limnol. Oceanogr. 1972. V. 17. P. 749−758.
  80. Cleveland J.S., Perry M.J. Quantum yield, relative specific absorption and fluorescence in nitrogen-limited Chaetoceros gracilis II Mar. Biol. 1987. V. 97. P. 489−497.
  81. Cochlan W.P., Harrison P.J. Uptake of nitrate, ammonium, and urea by nitrogen-starvedcultures ofMicromonaspusilla (Prasinophyceae): transient responses // J. Phycology. 1991. V. 27. P. 673−679.
  82. Cochlan W.P., Harrison P. J., Denman K.L. Diel periodicity of nitrogen uptake by marinephytoplankton in nitrate-rich environments // Limnol. Oceanogr. 1991. V. 36. P. 16 891 700.
  83. Collos Y. Transient situations in nitrate assimilation by marine diatoms. 3. Short-termuncoupling of nitrate uptake and reduction//J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1982. V. 62. P. 285 295.
  84. Collos Y., Slawyk G. Significance of cellular nitrate content in natural populations of marine phytoplankton growing in shipboard cultures // Mar. Biol. 1976. V. 34. P. 27−32.
  85. Y., Slawyk G. 13C and 15N uptake by marine phytoplankton. I. Influence of nitrogen source and concentration in laboratory cultures of diatoms // J. Phycology. 1979. V. 15. P. 186- 190.
  86. Collos Y., Siddiqi M.Y., Wang M.Y., Glass A.D.M., Harrison P.J. Nitrate uptake kinetics by two marine diatoms using the radioactive tracer 15N // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1992. V. 163. P. 251−260.
  87. Conover S.A.M. Partitioning of nitrogen and carbon in cultures of the marine diatom Thalassiosira fluviatilis supplied with nitrate, ammonium, or urea // Mar. Biol. 1975. V. 32. P. 231−246.
  88. Conway H.L. Interactions of inorganic nitrogen in the uptake and assimilation by marine phytoplankton//Mar. Biol. 1977. V. 39. P. 221−232.
  89. Corner E.D.S., Newell B.S. On the nutrition and metabolism of zooplankton. IV. The forms of nitrogen excreted by Calanus И J. Mar. Biol. Assoc. U.K. 1967. V. 47. P. 113−120.
  90. Cresswell R.C., Syrett P.J. Ammonium inhibition of nitrate uptake by diatom, Phaeodactylum tricornutum И PI. Sci. Lett. 1979. V. 14. P. 321−325.
  91. Cresswell R.C., Syrett P.J. Uptake of nitrate by the diatom, Phaeodactylum tricornutum // J. Exp. Bot. 1981. V. 32. P. 19−26.
  92. Dagestad D., Lien Т., Knutsen G. Degradation and compartmentalization of urea in Chlamydomonas reinchardtii II Arch. Microbiol. 1981. V. 129. P. 261−264.
  93. DeHaan H., De Boer Т. Seasonal variation of fulvic acid, amino acid and sugar in Tjeukemeer, the Netherlands // Arch. Hydrobiol. 1979. V. 85. P. 30−40.
  94. DeManche J.M., Curl H.C., Jr., Lundy D.W., Donaghay P.L. The rapid response of marine diatom Skeletonema costatum to changes in external nutrient concentration // Mar. Biol. 1879. V. 53. P. 323−333.
  95. Demmig-Adams B. Carotenoids and photoprotection: A role for xanthophylls zeaxanthin // Biochem. Biophys. Acta. 1990. V. 1020. P. 1−24.
  96. Demmig-Adams В., Adams W.W. Photoprotection and other responses of plants to high light stress // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 43. P. 599−626.
  97. Dortch Q. Effect of growth conditions on accumulation of internal nitrate, ammonium, amino acids and protein in three marine diatoms // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1982. V. 61. P. 243−264.
  98. Dortch Q. The interaction between ammonium and nitrate uptake in phytoplankton // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1990. V. 61. P. 183−201.
  99. Dortch Q., Conway H.L. Interactions between nitrate and ammonium uptake: variation with growth rate, nitrogen source and species // Mar. Biol. 1984. V. 79. P. 151−164.
  100. Dortch Q., Ahmed S.I., Packard T.T. Nitrate reductase and glutamate dehydrogenase activities in Skeletonema costatum as measures of nitrogen assimilation rates // Plankton Res. 1979. V. l.P. 169−186.
  101. Dortch Q., Clayton J.R., Jr., Thoresen S.S., Bressler S.L., Ahmed S.I. Response of marine phytoplankton to nitrogen deficiency: decreased nitrate uptake vs enhanced ammonium uptake // Mar. Biol. 1982. V. 70. P. 13−19.
  102. Dortch Q., Clayton J.R., Jr., Thoresen S.S., Ahmed S.I. Species difference in accumulation of nitrogen pools in phytoplankton // Mar. Biol. 1984. V. 81. P. 237−250.
  103. Dortch Q., Thompson P.A., Harrison P.J. Short-term interaction between nitrate andammonium uptake in Thalassiosira pseudonana: effect of preconditioning nitrogen source and growth rate//Mar. Biol. 1991. V. 110. P. 183−193.
  104. Droop M.R. Auxotrophy and organic compounds in the nutrition of marine phytoplankton // J. Gen. Microbiol. 1957. V. 16. P. 229 231.
  105. Droop M.R. Haematococcuspluvialis and its allies. Ш. Organic nutrition // Revue Algologique. 1961. V. 4. P. 247−259.
  106. Dubinsky Z., Falkowski P.G., Wyman K. Light harvesting and utilization by phytoplankton // Plant Cell Physiol. 1986. V. 27. P. 1335−1349.
  107. Dugdale R.C., Goering J.J. Uptake of new and regenerated forms of nitrogen in primary productivity //Limnol. Oceanogr. 1967. V. 12. P. 196−206.
  108. Edge P.A., Ricketts T.R. Some notes on the growth and nutrition of Platymonas striata Butcher (Prasinophyceae) // Nova Hedwigia. 1978. V. 29. P. 675−682.
  109. Elrifi I.R., Turpin D.H. Transient photosynthetic responses of nitrogen-limited microalgae to nitrogen addition//Mar. Ecol. Progr. Ser. 1985. V. 20. P. 253- 256.
  110. Elrifi I.R., Turpin D.H. Nitrate and ammonium induced photosynthetic suppression in N-limited Selenastrum minimum II Plant Physiol. 1986. V. 81. P. 273- 279.
  111. Eppley R.W., Coastsworth J.L. Uptake of nitrate and nitrite by Ditylum brightwellii -kinetics and mechanisms// J. Phycology. 1968. V. 4. P. 151 156.
  112. Eppley R.W., Renger E.H. N assimilation of an oceanic diatom in N-limited continuous culture // J. Phycology. 1974. V. 10. P. 15−23.
  113. Eppley R.W., Rogers J.N. Inorganic nitrogen assimilation of Ditylum brightwellii, a marine plankton diatom// J. Phycology. 1970. V. 6. P. 344 351.
  114. Eppley R.W., Carlucci A.F., Holm-Hansen O., Kiefer D., McCarthy J. J., Ventrick E.,
  115. Williams P.M. Phytoplankton growth and composition in shipboard cultures supplied with nitrate, ammonium or urea as the nitrogen source // Limnol. Oceanogr. 1971. V. 16. P. 741−751.
  116. Eppley R.W., Renger E.H., Venrick E.L., Mullin M.M. A study of plankton dynamics and nutrient cycling in the central gyre of the north Pacific Ocean // Limnol. Oceanogr. 1973. V. 18. P. 534−551.
  117. Eppley R.W., Sharp J.H., Renger E.H., Perry M.J., Harrison W.G. Nitrogen assimilation by phytoplankton and other microorganisms in the surface of the central North Pacific Ocean//Mar. Biol. 1977. V. 39. P. 111−120.
  118. Eppley R.W., Renger E.H., Harrison W.G. Nitrate and phytoplankton production in southern California coastal waters//Limnol. Oceanogr. 1979. V. 24. P. 483−494.
  119. Falkowski P.G. Light-shade adaptation in marine phytoplankton // Primary productivity in Sea. Ed. Falkowski P.G. N.Y.: Plenum Press, 1980. P. 99−119.
  120. Falkowski P.G. Light-shade adaptation and vertical mixing of marine phytoplankton: a comparative field study // J. Mar. Res. 1983. V. 41. P. 215−237.
  121. Falkowski P.G. Physiological responses of phytoplankton to natural light regimes // J. Plankton Res. 1984. V. 6. P. 295- 307.
  122. Falkowski P.G. Molecular ecology of phytoplankton photosynthesis // Primary productivityand biogeochemical cycles in the sea. Ed. Falkowski P.G. N.Y.: Plenum Press, 1992. P. 47−68.
  123. Falkowski P.G., Owens T.G. Light- shade adaptation: two strategies in marine phytoplankton
  124. Cyanophycee)// Arch. Hydrobiol. 1986. V. 107. P. 441−463. Fisher N.S., Cowdell R.A. Growth of marine planktonic diatoms on inorganic nitrogen // Mar.
  125. Phaeodactylum tricornutum //Mar. Biol. 1985. V. 89. P. 317−325. Flynn K. J., Syrett P.J. Characteristics of the uptake system for L-lysin and L-arginin in
  126. Furnas M.J. Nitrogen dynamics in lower Naragansett Bay, Rhode Island. I. Uptake by size-fractionated phytoplankton populations //J. Plankton Res. 1983. V. 5. P. 657−676.
  127. Gadgil М., Bossert W.H. Life-history consequences of natural selection // Am. Nat. 1970. V. 104. P. 1 -24.
  128. Eucalanuspileatus И J. Plankton Res. 1982. V. 4. P. 725−734. Garside C., Glover H.E. Chemiluminescent measurements of nitrate kinetics: I. Thalassiosira pseudonana (clone 3H) and neritic assembles // J. Plankton Res. (suppl). 1991. V.13. P. 5−19.
  129. Geider R.J., Osborn B. A., Raven J.A. Light dependence of growth and photosynthesis in Phaeodactylum tricornutum (Bacillariophyceae) // J. Phycology. 1985. V. 21. P. 600 619.
  130. Geider R.J., Maclnture H.L., Kana T.M. A dynamic regulatory model of phytoplankton acclimation to light, nutrients and temperature // Linmol. Oceanogr. 1998. V. 43. P. 679−694.
  131. Goericke R., Welschmeyer N.A. Pigment turnover in Thalassiosira weissflogii. II. The 14СОг labelling kinetics of carotenoids in a marine diatom // J. Phycology. 1992. V. 28. P. 507 517.
  132. Goldman J.C., Dennet M.R. Effect of nitrogen source on short term light and dark CO2 uptake by a marine diatom// Mar. Biol. 1983. V. 76. P. 7−15.
  133. Goldman J.C., Dennet M.R. Photosynthetic responses of 15 phytoplankton species to ammonium pulsing//Mar. Ecol. Progr. Ser. 1984. V. 20. P. 259−264.
  134. Goldman J.C., Glibert P.M. Comparative rapid ammonium uptake by four marine phytoplankton species // Limnol. Oceanogr. 1982. V. 27. P. 814−827.
  135. Goldman J.C., Dennet M.R., Riley C.B. Marine phytoplankton photosynthesis and transient ammonium availability // Mar. Biol. Lett. 1981. V. 2. P. 323−331.
  136. Goldstein L. Forster RP. The role of uricolysis in the production of urea by fishes and other aquatic vertebrates // Сотр. Biochem. Physiol. 1965. V. 14. P. 567−576.
  137. Gosselin M., Legendre L., Demers S., Therriault J.C. Utilization of nitrate, ammonium and urea by sea-ice microalgae // Eos. 1988. V. 69. P. 1104.
  138. Grant B.R., Turner I.M. Light-stimulated nitrate and nitrite assimilation in several species of algae // Сотр. Biochem. Physiol. 1969. V. 29. P. 995−1004.
  139. Grant B.R., Madgwick J., DalPont G. Growth of Cylirtdrotheca closterium var. California1 (Mereschk.) Rieman, Lewin on nitrate, ammonia and urea // Aust. J. Mar. Freshwater Res. 1967. V. 18. P. 129−135.
  140. Granum E., Myklestad S.M. Mobilization of p-l, 3-glucan and biosynthesis of amino acids induced by NRt+ addition to iV-limited cells of marine diatom Skeletonema costatum (Bacillariophyceae) // J. Phycology. 2001. V. 37. P. 772−782.
  141. Green D.W., Oliver R.L. Using non-photochemical quenching of chlorophyll a fluorescence to assess the light climate and growth rate of the cyanobacterium Anabaena circinalis //Eur. J. Phycology. 2003. V. 38. P. 113−122.
  142. Greer D. H., Berry J. A., Bjorkman O. Photoinhibition of photosynthesis in intact bean leves, role of light and temperature and requirement for chloroplast protein synthesis during recovery//Planta. 1986. V. 168. P. 253−260.
  143. Grime J.P. Vegetation classification by reference to strategies // Nature. 1974. V. 250. P. 26 -31.
  144. Grime J.P. Plant strategies and vegetation processes. N.Y.: Wiley, 1979. 371 p.
  145. Guerrini F., Cangini M., Boni L., Trost P., Pistocchi R. Metabolic responses of the diatom
  146. Achnanthes brevipes (Bacillariophyceae) to nutrient limitation // J. Phycology. 2000. V. 36. P. 882−890.
  147. Guillard R.R.L. Organic sources of nitrogen for marine centric diatoms // Symposium on Marine Microbiology. Ed. C.H. Oppenheimer. Springfield, Illinois: Thomas C.C., 1963. P. 93−104.
  148. Guillard R.R.L., Ryther J.H. Studies on marine diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea (Cleve) Gran. // Can. J. Microbiol. 1962. V. 8. P. 229−239.
  149. Haines K.C., Wheeler P.A. Ammonium and nitrate uptake by the marine macrophytes Hypnea musciformis (Rhodophyta) and Macrocystis pyrifera (Phaeophyta) // J. Phycology. 1978. V. 14. P. 319−324.
  150. Halldall P. Pigment formation and growth in blue-green algae in crossed gradient of light intensity and temperature // Physiol. Plant. 1958. V. 11. P. 401.
  151. Hama N., Honjo T. Photosynthetic products and nutrient availability in phytoplanktonpopulation from Gokasho Bay, Japan // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1987. V. 112. P. 252 266.
  152. Hammer K.D., Brockmann U.H. Rhythmic release of dissolved free amino acids from partly synchronized Thalassiosira rotula under nearly natural conditions II Mar. Biol. 1983. V. 74. P. 305−312.
  153. Hammer K.D., Eberlein K. Parallel experiments with Thalassiosira rotula in outdoor plastic tanks: development of dissolved free amino acids during an algae bloom // Marine Chemistry. 1981. V. 10. P. 533−544.
  154. Hammer K.D., Brockmann U.H., Kattner G. Release of dissolved free amino acids during a bloom of Thalassiosira rotula II Kieler Meeresforschungen Sonderheft. 1981. V. 5. P. 101−109.
  155. Hanisak M.D., Harlin M.M. Uptake of inorganic nitrogen by Codium fragile subsp. tomentosoides (Chlorophyta) // J. Phycology. 1978. V. 14. P. 450−454.
  156. Harris G. P., Puccinin В. B. Phosphorus limitation and carbon metabolism in a unicellular algae: interaction between growth rate and the measurement of net and gross photosynthesis// J. Phycology. 1983. V. 19. P. 185−193.
  157. Harrison W.G., Piatt T. Photosynthesis-irradiance relationships in polar and temperature phytoplankton populations//Polar Biol. 1986. V. 5. P. 153−164.
  158. Harrison W.G., Cota G.F., Smith R.E.H. Nitrogen utilization in ice algal communities of
  159. Barrow Strait, NWT, Canada // Eos. 1988. V. 69. P. 1104 Harvey W.A., Caperon J. The rate of utilization of urea, ammonium and nitrate by natural populations of marine phytoplankton in a eutrophic environment // Pacific Science. 1976. V. 30. P. 329−340.
  160. Phycology. 1979. V. 15. P. 289−299. Hellebust J. A., Lewin J. Heterotrophic nutrition // The biology of diatoms. Bot. Monographs
  161. Ed. Werner D. Oxford: Blackwell Scientific Pub., 1977. P. 169−197. Herzig R., Falkowski P.G. Nitrogen limitation in Isochrysis galbana (Haptophyceae). Photosynthetic energy conversion and growth efficiencies // J. Phycology. 1989. V. 25. P. 462−471.
  162. Hodson R.C., Williams S.K., Davidson W.RJr. Metabolic control of urea catabolism in Chlamydomonas reinhardtii and Chlorella pyrenoidosa II J. Bacteriol. 1975. V. 121. P. 1022−1035.
  163. Honeywill C., Paterson D.M., Hagerthey S.E. Determination of microphytobenthic biomass using pulse-amplitude modulated minimum fluorescence // Eur. J. Phycology. 2002. V. 37. P. 485−492.
  164. Rev. Plant Physiol. Plant. Mol. Bol. 1994. V. 45. P. 577−607. Ignatiades L. Annual variability of 14C. urea utilization by natural marine phytoplankton //
  165. Br. Phycol. J. 1986. V. 21. P. 209−215. Ilyash L.V., Belevich T.A. Interaction between populations of marine microalgae
  166. Jahns Т., Zobel A., Kleiner D., Kaltwasser H. Evidence for carrier-mediated, energy-dependent uptake of urea in some bacteria // Arch. Microbiol. 1988. V. 149. P. 377 383.
  167. Jassby A.D., Piatt T. Mathematical formulation of the relationship between photosynthesis and light for phytoplankton // Limnol. Oceanogr. 1976. V. 21. P. 540−547.
  168. Jeffrey S.W., Humphrey G.H. New spectrophotometric equations for determing chlorophylls a, b, Ci and ci in higher plants, algae and natural phytoplankton // Biochem. und Physiol. Pflanz. 1975. V. 167. P. 191 194.
  169. Johannes R.E., Webb K.L. Release of dissolved amino acids by marine zooplankton // Science. 1965. V. 150. P. 76−77.
  170. Johnson F.A., Lewis M.J. Astaxanthin formation by the pigments of photosynthetic biomembranes//Method in Enzymology. 1979. V. 148. P. 350−382.
  171. Jorgensen E.G. Adaptation for different light intensities in the diatom Cyclotella meneghinianaKutz. //Physiol. Plant. 1964. V. 17. P. 136−145.
  172. Kanda J., Saino Т., Hattori A. Nitrogen uptake by natural populations of phytoplankton and primary production in the Pacific Ocean: regional variability of uptake capacity // Limnol. Oceanogr. 1985. V. 30. P. 987−999.
  173. Kapp R., Stevens Jr. S.E., Fox J.L. A survey of available nitrogen sources for the growth of the blue- green alga, Agmenellum quadruplicatum II Archs. Microbiol. 1975. V. 104. P. 135−138.
  174. Kaufman Z.G., Lively J.S., Carpenter E.J. Uptake of nitrogenous nutrients by phytoplankton in barrier island estuary: Great South Bay, New York // Estuarine Coastal Shelf Sci. 1983. V. 17. P. 483−493.
  175. Kirk D.L., Kirk M.M. Amino acid and urea uptake in ten species of Chlorophyta // J. Phycology. 1978 a. V. 14. P. 198−203.
  176. Kirk D.L., Kirk M.M. Carier-mediated uptake of arginin and urea by Chlamydomonas reinhardtii И Plant Physiol. 1978 b. V. 61. P. 556−560.
  177. Kirk M.M., Kirk D.L. Carrier-mediated uptake of arginine and urea by Volvox carteri f. nagariensis II Plant Physiol. 1978 с. V. 61. P. 549−555.
  178. Kokkinakis S. A., Wheeler P. A. Nitrogen uptake and phytoplankton growth in coastalupwelling region //Limnol. Oceanogr. 1987. V. 32. P. 1112−1123.
  179. Kokkinakis S.A., Wheeler P. A. Uptake of ammonium and urea in the north-east Pacific: comparison between netplankton and nanoplankton // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1988. V. 43. P. 113−124.
  180. Kolber Z., Zehr J., Falkowski P.G. Effects of growth irradiance and nitrogen limitation on photosynthetic energy conversion in Photosystem II // Plant Physiol. 1988. V. 88. P. 923 929.
  181. M., Stephens G.C. Demonstration of net influx of free amino acids in Phaeodactylumtricornutum using high performance liquid chromatography // J. Phycology. 1984. V. 20. P. 584−589.
  182. H.L., Капа Т., Anning Т., Geider R. Photoacclimation of photosynthesis irradiance response curves and photosynthetic pigments in microalgae and cyanobacteria // J.
  183. Gen. Microbiol. 1986. V. 132. P. 2749−2752. Maestrini S.Y., Robert J.M., Leftley J. W., Collos Y. Ammonium thresholds for simultaneous uptake of ammonium and nitrate by oyster-pond algae // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1986. V. 102. P. 75−98.
  184. Mahoney J.B., McLaughlin J.J.A. The association of phytoflagellate blooms in lower New
  185. New Phytol. 1986. V. 104. P. 415−427. McCarthy J.J. The uptake of urea by natural populations of marine phytoplankton // Limnol.
  186. Oceanogr. 1972 a. V. 17. P. 738 748. McCarthy J.J. The uptake of urea by marine phytoplankton // J. Phycology. 1972 b. V. 8. P. 216−222.
  187. McCarthy J.J. Nitrogen // Physiological ecology of phytoplankton Ed. Morris I. Oxford:
  188. Blackwell, 1980. P. 191−233. McCarthy J.J. The kinetics of nutrient utilization // Can. Bull. Fish. Aquat. Sci. 1981. V. 210. P. 211−233.
  189. McCarthy J. J., Eppley R.W. A comparison of chemical, isotope and enzymatic methods for measuring nitrogen assimilation of marine phytoplankton // Limnol. Oceanogr. 1972. V. 17. P. 371−382.
  190. McCarthy J.J., Taylor W.R., Taft J.L. Nitrogenous nutrition of the plankton in the Chesapeake Bay. I. Nutrient availability and phytoplankton preferences // Limnol. Oceanogr. 1977. V. 22. P. 996−1011.
  191. McCarthy J.J., Wynne D., Berman T. The uptake of dissolved nitrogenous nutrient by Lake Kinneret (Israel) microplancton // Limnol. Oceanogr. 1982. V. 27. P. 673−680.
  192. Miflin B.J., Lea P.J. The pathway of nitrogen assimilation in plants // Phytochem. 1976. V. 15. P. 873−885.
  193. Ming L., Stephens G.C. Uptake of free amino acids by diatom Melosira mediocris И Hydrobiologia. 1985. V. 128. P. 187−191.
  194. Mitamura O., Saijo Y. Decomposition of urea associated with photosynthesis of phytoplankton in coastal waters // Mar. Biol. 1975. V. 30. P. 67−72.
  195. Mitamura O., Saijo Y. In situ measurement of urea decomposition rate and its turnover rate in the Pacific Ocean//Mar. Biol. 1980 a. V. 58. P. 147−152.
  196. Mitamura O., Saijo Y. Urea supply from decomposition and excretion of zooplankton // J. Oceanographyc Society of Japan. 1980 b. V. 36. P. 121−125.
  197. Mitamura O., Saijo Y. Urea metabolism and its significance in the nitrogen cycle in theeuphotic layer of Lake Biwa. I. In situ measurement of nitrogen assimilation and urea decomposition//Arch. Hydrobiol. 1986 a. V. 107. P. 23−51.
  198. Mitamura O., Saijo Y. Urea metabolism and its significance in the nitrogen cycle in the euphotic layer of Lake Biwa. IV. Regeneration of urea and ammonia // Arch. Hydrobiol. 1986 b. V. 107. P. 425−440.
  199. Molloy C.J., Syrett P.J. Interrelationships between uptake of urea and uptake of ammonium by microalgae // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1988 a. V. 118. P. 85−95.
  200. Molloy C.J., Syrett J. Effect of light and N deprivation on inhibition of nitrate uptake by urea in microalgae // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1988 b. V. 118. P. 97−101.
  201. Morrelli G., Nelson M.A., Ballario P., Macino G. Photoregulated carotenoid biosynthetic genes of Neuspora crassa II Methods in Enzymology. 1993. V. 214. P. 412−424.
  202. Morris I. Nitrogen assimilation and protein synthesis // Algal physiology and biochemistry. Ed. Stewart W.D.P. Oxford: Blackwell, 1974. P. 583−609.
  203. Myklestad S. Production of carbohydrates by marine planktonic diatoms. I. Comparison of nine different species in cultures // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1974. V. 15. P. 261−274.
  204. Myklestad S., Haug A. Production of carbohydrates by the marine diatom Chaetoceros affinis var. willei (Gran) Hustedt. I. Effect of the concentration of nutrients in the culture medium //J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1972. V. 9. P. 125−136.
  205. Bull. 1967. V. 133. P. 391−400. North B.B., Stephens G.C. Dissolved amino acids and Platymonas nutrition // Proc. Sixth Intern. Seaweed Symposium. Ed. R. Margalef. Madrid: Subsecretaria de la Marina, 1969. P. 263−273.
  206. Oliveira L., Antia N.J. Nickel ion requirements for autotrophic growth of several marine microalgae with urea serving as nitrogen source // Can J. Fish. Aquat. Sci. 1986 b. V. 43. P. 2427−2433.
  207. Olson R.J. Nitrate and ammonium uptake in Antarctic waters // Limnol. Oceanogr. 1980. V. 25. P. 1064−1074.
  208. Paashe E. Effect of ammonia and nitrate on growth, photosynthesis, and ribulosodiphosphate carboxylase content of Dunaliella tertiolecta // Physiol. Plant. 1971. V. 25. P. 294 299.
  209. Paasche E., Kristiansen S. Nitrogen nutrition of the phytoplankton in the Oslofjord //
  210. Parslow J.S., Harrison P.J., Thompson P.A. Ammonium uptake by phytoplankton cells on a filter: a new hight-resolution technique // Mar. Ecol. Progr. Ser. 1985. V. 25. P. 121−129.
  211. Perry M., Talbot M., Alberte R. Photoadaptation in marine phytoplankton: response of the photosynthetic unit//Mar. Biol. 1981. V. 62. P. 91−101.
  212. Pettersen R., Knutsen G. Uptake of guanine by synchronized Chlorella fusca. Characterization of the transport system in autospores // Archiv. Microbiol. 1974. V. 96. P. 233−246.
  213. Pettersson K., Sahlsten E. Diel patterns of combined nitrogen uptake and intracellular storage of nitrate by phytoplankton in the open Skagerrak // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1990. V. 138. P. 167−182.
  214. Pianka E.R. On r- and K-selection // Am. Nat. 1970. V. 104. P. 592 597.
  215. Pistorius E.K., Funkhouser E.A., Voss H. Effect of ammonium and ferricyanide on nitrate utilization by Chlorella vulgaris II Planta. 1978. V. 141. P. 279−282.
  216. Piatt Т., Denman K.L., Jassby A.D. Modeling the productivity of phytoplankton // The Sea. Ed. Golberg E.D. N.Y.: John Willey, 1977. P. 807−856.
  217. Post A.F., Dubinsky Z., Wyman K., Falkowski P.G. Kinetik of light-intensity adaptation in a marine planktonic diatom // Mar. Biol. 1984. V. 83. P. 231−238.
  218. Poulet S.A., Martin-Jezequel V. Relationships between dissolved free amino chemical composition and growth of marine diatom Chaetoceros debile II Mar. Biol. 1983. V. 77. P. 93−100.
  219. Prezelin В. B. Light reactions in photosynthesis I I Physiological bases of phytoplankton ecology. Ed. Piatt T. Can. Bull. Fish. Aquat. Sci. 1981. V. 210. P. 1−12.
  220. Prezelin B.B., Alberte R.S. Photosynthetic charateristics and organization of chlorophyll in marine dinoflagellates // Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 1978. V. 75. P. 187−195.
  221. Price N.M., Harrison P.J. Uptake of urea carbon and urea nitrogen by the coastal marine diatom ThalassiosirapseudonanaII Limnol. Oceanogr. 1988. V. 33. P. 528 537.
  222. Price N.M., Cochlan W.P., Harrison P.J. Time course of uptake of inorganic and organic nitrogen by phytoplankton in the Strait of Georgia: comparison of frontal and stratified communities //Mar. Ecol. Progr. Ser. 1985. V. 27. P. 39−53.
  223. Probyn T.A. Nitrogen utilization by phytoplankton in the Namibian upwelling region during an austral spring//Deep-Sea Research. 1988. V. 35. P. 1387−1404.
  224. Probyn T.A., Waldron H.N., Searson S., Owens N.J.P. Diel variability in nitrogenous nutrient uptake at photic and sub-photic depths // J. Plankton Res. 1996. V. 18. P. 2063−2079.
  225. Provasoli L., McLaughlin J.J.A. Limited heterotrophy of some photosynthetic dinoflagellates // Marine microbiology Ed. Oppenheimer C.H. Illinois: Springfield, 1963. P. 105−113.
  226. Quarmby L.M. The influence of temperature and salinity on the nitrogenous excretion of the spot prawn, Pandalusplatyceros Brandt // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1985. V. 8. P. 229 239.
  227. Qafaiti M., Stephens G.C. Effect of nitrogen deprivation on amino acid uptake by the chlorophyte Platymonas subcordiformis И Mar. Biol. 1989. V. 100. P.515−523.
  228. Raimbault P., Gentilhomme V. Short- and long-term responses of the marine diatom
  229. Phaeodactylum tricornutum to spike additions of nitrate at nanomolar levels // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1990. V. 135. P. 161 176.
  230. Raimbault P., Mingazzini M. Diurnal variations of intracellular nitrate storage by marine diatoms: effects of nutritional state // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1987. V. 112. P. 217 -232.
  231. Raven J.A. Nutrient transport in microalgae // Adv. Microb. Physiol. 1980. V. 21. P. 47−226.
  232. Rees T.A.V., Bekheet I. A. The role of nickel in urea assimilation by algae // Planta. 1982. V. 156. P. 385−387.
  233. Rees Т.A.V., Syrett P.J. The uptake of urea by the diatom Phaeodactylum И New Phytol. 1979 a. V. 82. P. 169−178.
  234. Rees T.A.V., Syrett P.J. Mechanisms for urea uptake by the diatom Phaeodactylum tricornutum: the uptake of thiourea // New Phytol. 1979 b. V. 83. P. 37−48.
  235. Remsen C.C., Carpenter E.J., Schroeder B.W. Competition for urea among estuarine microorganisms//Ecology. 1972. V. 53. P. 921−926.
  236. Remsen C.C., Carpenter E.J., Schroeder B.W. The role of urea in marine microbial ecology // Effect of the ocean environments on microbial activities. Eds. Colwell R.R., Morita R.Y. Baltimore: University Park Press, 1974. P. 286−304.
  237. Rhee G.-Y., Lederman T.C. Effect of nitrogen sources on P-limited growth of Anabaena flos-aquae 111. Phycology. 1983. V. 19. P. 179−185.
  238. Rhiel E., Krupinska K., Wehrmeyer W. Effects of nitrogen starvation on the function and organization of photosynthetic membranes in Cryptomonas maculata (Cryptophyceae) //Planta. 1986. V. 169. P. 361−369.
  239. Richardson K., Beardall J., Raven J. A. Adaptation of unicellular algae to irradiance an analysis of strategies//New Phytol. 1983. V. 93. P. 157−205.
  240. Ricketts T.R. Homeostatis in nitrogenous uptake/assimilation by the green alga Platymonas (Tetraselmis) striata (Prasinophyceae) // Ann. Bot. 1988. V. 61. P. 481−485.
  241. Riemann C., J0rgensen N.O.G., Lampert W., Fuhrman J.A. Zooplankton induced changes in dissolved free amino acid and in production rates of freshwater bacteria // Microbiol. Ecol. 1986. V. 12. P. 247−258.
  242. Riper D.M., Owens T.G., Falkowski P.G. Chlorophyll turnover in Skeletonema costatum, a marine plankton diatom // Plant Physiol. 1979. V. 64. P. 49−54.
  243. Rivkin R.B., Putt M. Heterotrophy and photoheterotrophy by Antarctic microalgae: light-dependent incorporation of amino acids and glucose // J. Phycology. 1987. V. 23. P. 442 452.
  244. Roon R.J., Levenberg B. Urea amidolyase. I. Properties of the enzyme from Candida utilis II J. Biol. Chem. 1972. V. 247. P. 4107−4113.
  245. Rosen B.H., Lowe R.L. Physiological and ultrastructural responses of Cyclotella meneghiniana (Bacillariophyta) to light and nutrient limitation // J. Phycology. 1984. V. 20. P. 173−182.
  246. Roughgarden J. Density-dependent natural selection // Ecology. 1971. V. 52. P. 453 468.
  247. Sahlsten E., Sorensen F., Pettersson K. Planktonic nitrogen uptake in the south-eastern Kattegat // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1988. V. 121. P. 227−246.
  248. Saks N.M., Kahn E.G. Substrate competition between a salt marsh diatom and a bacterialpopulation // J. Phycology. 1979. V. 15. P. 17−21.
  249. Sakshaug E., Bricaud A., Dandonneau Y., Falkowski P.G., Kiefer D.A., Legendre L., Morel A., Parslow J., Takahashi M. Parameters of photosynthesis: definition, theory and interpretation of results//J. Plankton Res. 1997. V. 19. P. 1637−1670.
  250. Satoh Y. Production of urea by bacterial decomposition of organic matter including phytoplankton//Int. Rev. gesamten Hydrobiologie. 1980. V. 65. P. 295−301.
  251. Satoh Y., Okino Т., Aoyama K. Correlation between urea and other chemical and biological parameters in waters of Lake Suwa, Japan // Int. Rev. gesamten Hydrobiologie. 1980. V. 65. P. 445−454.
  252. Seitzinger S.P., Sanders R.W. Atmospheric input of dissolved organic nitrogen stimulate estuarine bacteria and phytoplankton // Limnol. Oceanogr. 1999. V. 44. P. 721−736.
  253. Shah N., Syrett P.J. Uptake of guanine by the diatom Phaeodactylum tricornutum II J. Phycology. 1982. V. 18. P. 579−587.
  254. Sharp J.H. The destribution of inorganic nitrogen and dissolved organic nitrogen in the sea // Nitrogen in the marine environment. Ed. Carpenter C. N.Y.: Academic Press, 1983. P. 1−35.
  255. Siefermann-Harms D. The light-harvesting and protective functions of carotenoids in photosynthetic membranes // Physiol. Plant. 1987. V. 69. P. 561−568.
  256. Singh R.A., Singh S.N. Liver arginase in air-breathing and non-air-breathing freshwater teleost fish//Biochemical Systematics and Ecology. 1986. V. 14. P. 239−241.
  257. Smith S. V. Phosphorus versus nitrogen limitation in the marine environment // Limnol. Oceanogr. 1984. V. 29. P. 1149 1160.
  258. Smith G.J., Zimmerman R.C., Alberte R.S. Molecular responses of diatoms to variable levels of irradiance and nitrogen availability: Growth of Skeletonema costatum in simulated upwelling conditions//Limnol. Oceanogr. 1992. V. 37. P. 989−1007.
  259. Sosik H., Chisholm S.W., Oslon R.J. Chlorophyll fluorescence from single cells:1.terpretation of flow cytometric signal // Limnol. Ocanogr. 1989. V. 34. P. 17 491 761.
  260. Steemann Nielsen E. The use of radioactive carbon (C14) for measuring organic production in the sea // J. Cons. per. int. l’exporation de la mer. 1952. V. 18. P. 117 -140.
  261. Stephens G.C., North B.B. Extrusion of carbon accompanying uptake of amino acids by marine phytoplankters//Mar. Biol. 1971. V. 16. P. 752 757.
  262. Strathman R.R. Estimating the organic carbon content of phytoplankton from cell volume or plasma volume//Limnol. Oceanogr. 1967. V. 12. P. 411−418.
  263. Styring S., Virgin I., Ehrenberg A., Andersson B. Strong light photoinhibition of electron transport in photosystem II. Impairment of the function of the first quinone acceptor Qa//BBA. 1990. V. 1015. P. 269−270.
  264. Sukenik A., Bennett J., Falkowski P.G. Light-saturated photosynthesis limitation byelectron transport or carbon fixation//Вiohem. Biophys. Acta. 1987. V. 891. P. 205−215.
  265. Sukenik A., Bennett J., Mortain- Bertrand A., Falkowski P.G. Adaptation of thephotosynthetic apparatus to irradiance in Dunaliella tertiolecta И Plant Physiol. 1990. V. 92. P. 891- 898.
  266. Summons R.E., Osmond C. B Nitrogen assimilation in the symbiotic marine alga
  267. Gymnodinium microadriaticum: direct analysis of 15N incorporation by GS-MS methods //Phytochem. 1981. V. 20. P. 575−578.
  268. Syrett P.J. Nitrogen metabolism in microalgae // Physiological bases of phytoplankton ecology. Ed. Piatt T. Ottawa: J. Can. Fish Res. Bd. 1981. P. 182- 210.
  269. Syrett P.J., Leftley J.W. Nitrate and urea assimilation by algae // Perspectives in Experimental Biology. V. 2. Botany. Ed. Sunderland N. Oxford: Pergamon, 1976. P. 221−234.
  270. Syrett P. J., Morris I. The inhibition of nitrate assimilation by ammonium in Chlorella II Biochem. Biophys. Acta. 1963. V. 67. P. 566−575.
  271. Syrett P.J., Flynn K.J., Molloy C.J., Dixion G.K., Peplinska A.M., Cresswell R.C. Effect of nitrogen deprivation on rates of uptake of nitrogen compounds by the diatom Phaeodactylum tricornutum Bohlin // New Phytol. 1986. V. 102. P. 39−44.
  272. Tadros M.G., Johansen J.R. Physiological characterization of six lipid-producing diatoms from the south-eastern United States // J. Phycology. 1988. V. 24. P. 445−452.
  273. Takamura N., Iwakuma Т., Yasuna M. Uptake of13 С and 15N ammonium, nitrate and urea by Microcystis in Lake Kasumigaura // J. Plankton. Res. 1987. V. 9. P. 151−165.
  274. Terlizzi D.E. Jr, Karlander E.P. Growth of a coccoid nanoplankter (Eustigmatophyceae) from the Chesapeake Bay as influenced by light, temperature, salinity and nitrogen source in factorial combination//J. Phycoloogy. 1980. V. 16. P. 364−368.
  275. Terry K.I. Nitrate uptake and assimilation in Thalassiosira weissflogii and Phaeodactylum tricornutum: interaction with photosynthesis and with uptake of other ions // Mar. Biol. 1982. V. 69. P. 21−30.
  276. Terry K.L., Hirata J., Laws E. A. Light-limited growth of two strains of marine diatom
  277. Phaeodactylum tricornutum Bohlin: chemical composition, carbon partitioning and diel periodicity of physiological processes // J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 1983. V. 68. P. 209−227.
  278. Thomas W.H. Surface nitrogenous nutrient and phytoplankton in the northeastern tropical Pacific Ocean//Limnol. Oceanogr. 1966. V. 11. P. 393−400.
  279. Thomas R.J., Hipkin C.R., Syrett P.J. The interaction of nitrogen assimilation withphotosynthesis in nitrogen-deficient cells of Chlorella II Planta. 1976. V. 133. P. 9−13.
  280. Thompson P.A., Levasseur E., Harrison P.J. Light-limited growth on ammonium vs. nitrate: What is the advantage for marine phytoplankton? // Limnol. Oceanogr. 1989. V. 34. P. 1014−1024.
  281. Thompson P.A., Harrison P.J., Parlow J.S. Influence of irradiance on cell volume and carbon quota for ten species of marine phytoplankton // J. Phycology. 1991. V. 27. P. 351 360.
  282. Tilman D. Resource competition between plankton algae: an experimental and theorethical approach // Ecology. 1977. V. 58. P. 338 348.
  283. Tilman D. Test of resource competition theory using four species of Lake Michigan algae // Ecology. 1981. V. 62. P. 802 815.
  284. Tilman D. Resource competition and community structure. Princeton: Princeton Univ. Press, 1982. 296 p.
  285. Timperley M.H., Vigor-Brown R. J., Kawashima M., Ishigami M. Organic nitrogen compounds in atmospheric precipitation: their chemistry and availability to phytoplankton //Can J. Fish. Aquat. Sci. 1985. V. 42. P. 1171−1177.
  286. Tischner R. The regulation of the nitrate metabolism in Chlorella sorokiniana И Ber. Dt. Bot. Ges. 1981. V. 94S.P. 635−645.
  287. Turley C.M. Biological studies in the vicinity of a shallow-sea tidal mixing front. IV. Seasonal and spatial distribution of urea and its uptake by phytoplankton // Philosophical transactions of the Royal society of London. 1985. V. 310. P. 471−500.
  288. Turner M.F. A note on the nutrition of Rodella II Br. Phycol. J. 1970. V. 5. P. 15−18.
  289. Turner M.F. Nutrition of some microalgae with special reference to vitamin requirements and utilization of nitrogen and carbon sources // J. Mar. Biol. Assoc. UK. 1979. V. 59. P. 535−552.
  290. Turpin D.H. Ammonium induced photosynthetic suppression in ammonium limited Dunaliella tertiolecta (Chlorophyta) //J. Phycology. 1983. V. 19. P. 70−76.
  291. Turpin D.H. Effect of inorganic N availability on algal photosynthesis and carbon metabolism // J. Phycology. 1991. V. 27. P. 14−20.
  292. Turpin D.H., Elrifi I.R., Birch D.G., Weger H.G., Holmes J.J. Interactions between photosynthesis, respiration, and nitrogen assimilation in microalgae // Can. J. Bot. 1988. V. 66. P. 2083−2097.
  293. Uchida T. Excretion of ammonia by Prorocentrum micans Ehrenberg in urea-grown cultures // Jap. J. Ecology. 1976. V. 26. P. 43−44.
  294. Van Lerberghe G.C., Huppe H.C., Vlossak K.D., Turpin D.H. Activation of respiration to support dark NO3″ and NH4+ assimilation in the green alga Selenastrum minutum II Plant Physiol. 1992. V. 99. P. 495−500.
  295. Van Liere L., Walsby A.E. Interactions of cyanobacteria with light // The biology ofcyanobacteria. Eds. Carr N.G., Whitton B.H. Oxford: Blackwell Science Publications, 1982. P. 9−45.
  296. Vechtel В., Pistorius E. K., Ruppel H. G. Occurrence of secondary carotenoids in PS I1. complexes isolated from Eremosphaera viridis De Bary (Chlorophyceae) // Z.
  297. Г Naturfosch. 1992. V. 47. P. 51−56.
  298. P. S., Chemeris Y.K., О John Heck. Regulation of the quantum yield of photosystem 2 reactions by products of CO2 fixation in Chlorella II Photosynthetica. 1989. V. 23. P. 281−287.
  299. Viera A.A.H., Klaveness D. The utilization of organic nitrogen compounds as sole nitrogen source by some freshwater phytoplankters // Nordic Journal of Botany. 1986. V. 6. P. 9397.
  300. Wallen D.G., Allan R Utilization of amino acids by blue-green alga Synechococcus AN (Anacystis nidulans) // Canadian J. Botany. 1987. V. 65. P. 1133−1136.
  301. Ward A.K., Wetzel R.G. Interactions of light and nitrogen source among planktonic blue-green algae//Arch. Hydrobiol. 1980. V. 90. P. 1−25.
  302. Watt W.D. Release of dissolved organic material from the cells of phytoplankton populations //Proc. R. Soc. Lond. Ser. B. 1966. V. 164. P. 521 551.
  303. Webb K.L., Haas L.W. The significance of urea for phytoplankton nutrition in the York River, Virginia // Estuarine Processes. V. 1. Ed. Wiley M. N.Y.: Academic Press, 1976. P. 90−102.
  304. Webb K.L., Johannes R.E. Studies of the release of dissolved free amino acids by marine zooplankton//Limnol. Oceanogr. 1967. V. 12. P. 376−382.
  305. Webb K.L., Johannes RE. Do marine crustaceans release dissolved amino acid? // Сотр. Biochem. Physiol. 1969. V. 29. P. 875−878.
  306. Wheeler P. A. Phytoplankton nitrogen metabolism // Nitrogen in the Marine Environment Eds. Carpenter E.G., Capone D.G. N. Y.: Academic Press, 1983. P. 309−346.
  307. Wheeler P. A., Stephens G.C. Metabolic segregation of intracellular free amino acid in Platymonas (Chlorophyta) // J. Phycology. 1977. V. 13. P. 193−197.
  308. Wheeler P.A., North B.B., Stephens G.C. Amino acid uptake by marine phytoplankters // f Limnol. Oceanogr. 1974. V. 19. P. 249−258.
  309. Wheeler P. A., North B.B., Litter M., Stephens G. Uptake of glycine by natural phytoplankton communities // Limnol. Oceanogr. 1977. V. 22. P. 900−910.
  310. White A.W. Uptake of organic compounds by two facultativeli heterotrophic marine centric diatoms // J. Phycology. 1974. V. 10. P. 433−438.
  311. Willemoes М., Monas E. Relationship between growth irradiance and the xanthophyll cycle in the diatom Nitzschiapalea II Physiol. Plant. 1991. V. 83. P. 433−456.
  312. Williams S.K., Hodson R.C. Transport of urea at low concentrations in Chlamydomonas reinhardtii I I J. Bacterid. 1977. V. 130. P. 266−273.
  313. Wolfstein K., de Brounwer J.F.C., Stal L.J. Biochemical partitioning of photosyntheticallyfixed carbon by bentic diatoms during short-term incubations at different irradianes // Mar. Ecol. Prog. Ser. 2002. V. 245. P. 21−31.
  314. Wyatt J.T., Lawley G.G., Barnes R.D. Blue-green algal responces to some organic-nitrogen substrates //Naturwissenschaften. 1971. V. 58. P. 570−571.
  315. Yamada N., Arai Y., Tsuruta A., Yoshida Y. Utilization of organic nitrogenous compounds as nitrogen source by marine phytoplankton // Bull. Jap. Soc. Scient. Fish. 1983. V. 49. P. 1445−1448.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!