Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Гепатопротекторная активность милиацина при метотрексат-индуцированном повреждении печени (экспериментальное исследование)

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Исходя из полученных в работе данных о способности милиацина восстанавливать экспрессию гена глутатионредуктазы, подавленную МТХ, нам представляется, что антиоксидантный эффект тритерпеноида мог быть связан с его активирующим воздействием на регуляторный сайт — ARE (antioxidant responsive element), под контролем которого находится функционирование этого гена. Основанием для такого предположения… Читать ещё >

Гепатопротекторная активность милиацина при метотрексат-индуцированном повреждении печени (экспериментальное исследование) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список основных сокращений
  • Глава I. Обзор литературы
    • 1. 1. Гепатотоксичность антибластомных химиопрепаратов. Проявления и механизмы гепатотоксичности
    • 1. 2. Метотрексат. Антиметаболическая активность и участие в формировании токсических поражений печени
    • 1. 3. Гепатопротекторы. Основные механизмы защитного действия
    • 1. 4. Гепатопротекторная активность тритерпеноидов
  • Глава II. Материалы и методы исследований
  • Глава III. Гепатопротекторная активность милиацина при токсическом поражении печени метотрексатом
    • 3. 1. Защитное влияние милиацина при метотрексат-индуцированном поражении паренхимы печени
    • 3. 2. Защитное влияние милиацина при метотрексат-индуцированном нарушении клиренсной функции макрофагальной системы печени
    • 3. 3. Сравнительная оценка эффективности защитного действия милиацина и карсила при метотрексат-индуцированной гепатотоксичности
    • 3. 4. Обсуждение результатов
  • Глава IV. Влияние милиацина на фармакокинетику метотрексата и его противоопухолевую активность
    • 4. 1. Влияние милиацина на параметры фармакокинетики метотрексата
    • 4. 2. Влияние милиацина на противоопухолевую эффективность метотрексата на модели перевиваемой карциномы легких Льюис LLC
    • 4. 3. Обсуждение результатов
  • Глава V. Антиоксидантная активность милиацина как основа реализации его гепатопротекторного влияния
    • 5. 1. Влияние милиацина на выраженность окислительного стресса и экспрессию генов сур-2е1 и глутатионредуктазы у мышей, подвергнутых воздействию метотрексата
    • 5. 2. Обсуждение результатов

Структурно-функциональные поражения печени, наряду с нефротоксич-ностыо и угнетением костно-мозгового кроветворения, являются наиболее распространенным и тяжелым осложнением противоопухолевой терапии [45- 58- 131- 241]. Данное обстоятельство служит серьезным препятствием к достижению должного лечебного эффекта, поскольку определяет необходимость увеличения интервалов между курсами химиотерапии и снижения дозировки препаратов, вплоть до их полной отмены. В связи с этим изучение механизмов медикаментозных поражений печени и разработка на этой основе подходов к предупреждению и (или) ограничению таких поражений является одной из актуальных задач, имеющих отчетливое прикладное значение [40- 72- 126- 227- 246].

Это положение в полной мере относится и к метотрексату, химиотера-певтический эффект которого обусловлен его антиметаболической активностью, тогда как гепатотоксичность цитостатика связывают с интенсификацией процессов свободно-радикального окисления [218- 219- 222]. Исходя из этих представлений, очевидно, что протекция гепатотоксического действия метотрексата может быть эффективной на основе использования средств, обладающих антиоксидантной активностью. В настоящее время арсенал таких средств достаточно широк и представлен как синтетическими, так и природными антиоксидантами [55]. Среди последних все более важное значение преобретают препараты растительного происхождения [7], доступность, безопасность и биологическая активность которых определили их широкое использование в медицинской практике, включая протекцию повреждений печени в условиях применения антибластомных лекарственных средств [39- 52].

Интерес к дальнейшему поиску гепатопротекторов не ослабевает, что связано с необходимостью повышения избирательности защиты печени от ксенобиотиков, оптимизации репаративно-регенераторных процессов в поврежденном органе и сокращения сроков восстановления его функциональной активности.

В последние годы в рамках решения этой проблемы внимание исследователей привлекают тритерпеноиды и их производные, демонстрирующие значительную антиоксидантную активность [63- 123- 151- 193- 194- 247- 248] и способность ограничивать повреждения печени при действии различных токсических факторов [31- 59- 98- 105- 161- 192], в том числе — антибластом-ных лекарственных препаратов [36- 106- 148]. К числу этих веществ относится и милиацин — пентациклический тритерпеноид растительного происхождения, защищающий гепатоциты при отравлении СС14 [99] и проявляющий мембранопротекторную активность [128- 141]. Вместе с тем вопрос о защитном влиянии милиацина в отношении гепатотоксичности метотрексата оставался открытым.

Актуальность данной работы определяется тем, что до начала ее выполнения не была проведена оценка защитного эффекта милиацина при метот-рексат — индуцированном повреждении печенине было установлено влияние тритерпеноида на фармакокинетику метотрексата и его противоопухолевую активностьне был определен механизм протективного действия милиацина, связанный с его влиянием на интенсивность окислительного стресса и экспрессию генов, контролирующих продукцию прои антиоксидантных факторов. Отсутствие ясности в этих вопросах не позволяло оценить перспективы использования милиацина в качестве гепатопротектора, что с учетом его доступности, крайне низкой токсичности (ЬО50 > 1000 мг/кг) и отсутствия побочных эффектов в широком диапазоне доз [144] могло бы иметь важное прикладное значение.

Цель и задачи исследования

.

Целью настоящей работы являлась экспериментальная оценка милиаци-на как гепатопротектора при токсическом поражении печени метотрексатом.

В соответствии с поставленной целью были сформулированы следующие задачи:

1. Изучить влияние милиацина на структурно-функциональную реорганизацию печени и динамику восстановления органных нарушений у мышей, подвергшихся воздействию метотрексата.

2. Провести сравнительный анализ эффективности защитного действия милиацина и официального гепатопротектора — карсила.

3. Определить особенности фармакокинетики метотрексата в условиях его сочетанного применения с милиацином.

4. Оценить влияние милиацина на противоопухолевый эффект метотрексата (на модели эпидермоидной карциномы легких Льюис).

5. Установить механизм протективного действия милиацина путем изучения его влияния на интенсивность оксидативного стресса и экспрессию генов {сур 2е1 и glured), контролирующих редокс-баланс клетки, в условиях применения метотрексата.

Научная новизна исследования.

Впервые определено протективное влияние милиацина в отношении ге-патотоксичности метотрексата. В экспериментах на мышах (СВА х G^B^Fi установлена способность тритерпеноида ограничивать метотрексат индуцированные дистрофические и некротические изменения гепатоцитов, ослаблять гиперферментемию (АлАТ, АсАТ, у-ГТ), снижать частоту выявления и выраженность нарушений пигментного обмена, отменять депрессию кли-ренсной функции печеночных макрофагов. Показан позитивный эффект милиацина на процесс восстановления структурных повреждений печени и нормализацию показателей пигментного обмена.

Установлено, что гепатопротекторная активность милиацииа не связана с нарушением фармакокинетики метотрексата и с ослаблением его антибла-стомной активности. Впервые показана способность милиацина повышать терапевтическую эффективность метотрексата по показателям торможения роста опухоли и увеличения продолжительности жизни животных с перевиваемой карциномой Лыоиса. Впервые определен механизм протективного влияния милиацина, реализуемый на уровне регуляции экспрессии генов сур 2е1 и фи’ей.

Теоретическое значение работы Полученные данные расширяют представления о диапазоне протективного влияния милиацина и раскрывают новые аспекты его биологического действия. Отсутствие влияния милиацина на фармакокинетику метотрексата исключает возможность рассмотрения данного механизма в реализации протективного действия тритерпеноида. Сведения о способности милиацина отменять метотрексат — индуцированную экспрессию гена прооксидантного белка сур 2е1 и восстанавливать экспрессию гена, кодирующего один из ведущих факторов антиоксидантной защиты glured, существенно углубляют знания о механизмах реализации антиоксидантного эффекта тритерпеноида.

Практическое значение работы Результаты работы определяют новые возможности ограничения побочного действия цитостатической терапии и повышения эффективности реабилитации больных после ее проведения на основе использования милиацина или его аналогов. Установленные в работе способность милиацина повышать противоопухолевую активность метотрекста и отсутствие влияния тритерпеноида на фармакокинетику химиопрепарата позволяют рассматривать три-терпеноид в качестве эффективного гепатопротектора. По материалам работы получен патент на изобретение РФ № 2 411 947 «Средство, повышающее противоопухолевый эффект метотрексата».

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Тритерпеноид растительного происхождения милиацин оказывает защитный эффект при метотрексат — индуцированном поражении печени, предотвращая падение массы органа, минимизируя повреждения гепатоцитов, снижая частоту выявления и выраженность нарушений пигментного обмена, отменяя депрессию клиренсной функции печеночных макрофагов и ускоряя восстановление структуры органа.

2. Протективное влияние милиацина не связано с нарушением фармакокине-тики метотрексата и со снижением его противоопухолевой активности.

3. Милиацин повышает терапевтическую эффективность метотрексата по показателям торможения роста опухоли и продолжительности жизни животных.

4. Механизм протективного влияния милиацина обусловлен его способностью предотвращать окислительный стресс, индуцируемый метотрексатом, и нормализовать экспрессию генов сур 2е1 и %1игес{ в печени, контролирующих редокс — баланс клетки.

Апробация работы Основные положения диссертации доложены и обсуждены на региональных научно-практических конференциях молодых ученых и специалистов, Оренбург, 2005, 2011; региональной научно-практической конференции «Актуальные вопросы теоретической, экспериментальной и клинической онкологии», Оренбург, 2006; V и IX конференциях иммунологов Урала, Оренбург, 2006; Челябинск, 2011; IX Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Отечественные противоопухолевые препараты», Нижний Новгород, 2010; III Международном симпозиуме «Взаимодействие нервной и иммунной систем в норме и патологии», Санкт-Петербург, 2011; XI Международном конгрессе «Современные проблемы аллергологии, иммунологии и иммунофармакологии», Москва, 2011.

Декларация личного участия автора Автором определены цель, задачи и объем исследования, сформирована и использована методическая база проведения запланированных экспериментов, самостоятельно проведен анализ литературы по профилю диссертации. Определяющим является вклад автора в выполнении всех разделов работы, включая экспериментальную реализацию поставленных задач (85%), статистическую обработку и анализ полученных результатов (100%), а также подготовку научных публикаций, в которых доля личного участия автора составляет не менее 80%.

Материалы диссертации обобщены в 14 научных работах, в том числе в 4 статьях, опубликованных в рецензируемых научных журналах. Получен патент на изобретение РФ № 2 411 947 «Средство, повышающее противоопухолевый эффект метотрексата».

121 Выводы.

1. Однократное внутрибрюшинное введение метотрексата (10 мг/кг) мышам (СВАхС57В16)Р1 приводит к развитию токсического гепатита, проявляющегося снижением массы органа, формированием в нем дистрофических и некротических процессов, гиперферментемии (АлАТ, АсАТ, у-ГТ) и нарушением пигментного обмена. Токсичность метотрексата в отношении клеток Купфера проявлялась угнетением их клиренсной функции.

2. Динамика токсического поражения печени под влиянием метотрексата характеризуется постепенным нарастанием явлений дистрофии и некроза гепатоцитов с достижением их максимальной выраженности к 14 суткам после введения цитостатика. Регенераторные процессы в органе в виде возрастания числа двуядерных клеток и увеличения плоидности ядер регистрируются к концу 3 недели наблюдения. При этом нормализация активности ферментов (АлАТ, АсАТ) к указанному сроку отсутствует.

3. Милиацин в разовой дозе 2 мг/кг при трехкратном последовательном (на протяжении 3 дней) внутрибрюшинном введении после применении метотрексата ослабляет гепатотоксический эффект, предотвращая падение массы органа, минимизируя морфологические показатели повреждения гепатоцитов, ослабляя гиперферментемию, снижая частоту выявления и выраженность нарушений пигментного обмена, отменяя депрессию клиренсной функции печеночных макрофагов и обеспечивая восстановление структуры печени к концу 3 недели наблюдения.

4. Гепатопротекторная эффективность милиацина (2 мг/кг) превосходит гепатопротекторную эффективность карсила (6 мг/кг) по ограничению гиперферментемии (АлАТ, АсАТ) и соответствует эффективности карсила (б мг/кг) по ограничению нарушений пигментного обмена.

5. Протективное влияние милиацина не сопровождается нарушением скорости всасывания и биораспределения метотрексата в сыворотке крови, ткани печени и селезенки и, таким образом, не связано с нарушением фарма-кокинетики химиопрепарата.

6. Протективное влияние милиацина не сопровождается снижением противоопухолевой активности метотрексата. Милиацин повышает терапевтическую эффективность метотрексата: их сочетанное применение вызывает высокое торможение роста LLC в течение 12 дней после введения цитостатика (ТРО=91−84%), обеспечивает сохранение статистически значимого ТРО в течение длительного срока наблюдения (на 19 сутки ТРС)=60%) и увеличивает продолжительность жизни мышей с LLC на 36%, в то время как метотрексат в монотерапии — на 9%.

7. Механизм протективного влияния милиацина связан с его способностью предотвращать окислительный стресс, индуцированный метотрексатом, и нормализовать экспрессию генов, кодирующих изоформу сур 2е1 цитохро-ма Р — 450 и глутатионредуктазу в печени.

Заключение

.

Главное положение, вытекающее из проведенных исследований, заключается в том, что тритерпеноид растительного происхождения милиацин снижает гепатотоксичность метотрексата, не влияя при этом на фармакоки-нетику последнего и его антибластомную активность. Изучение механизма такого протективного действия милиацина позволило установить, что в его основе лежит ограничение тритерпеноидом выраженности окислительного стресса, индуцированного метотрексатом, который рассматривается как ведущее звено повреждающего действия цитостатика на печень [219- 222].

Как известно, окислительный стресс обусловливает нарушение редоксбаланса клетки, определяемого как соотношение ее прооксидантных и анти-оксидантных систем [56]. Прооксидантные системы (прооксиданты) — системы генерации активных форм кислорода (АФК), представляющих собой продукты неполного восстановления его молекул: свободные радикалы, перекиси и другие метаболиты, обладающие высокой реакционной способностью. Благодаря этой способности АФК выполняют ряд важных физиологических функций [113], включая синтез биологически активных веществ (лейкотрие-ны, простагландины), цитотоксичность в отношении патогенов и опухолевых клеток, репрограммирование процессов клеточной дифференцировки, пролиферации и апоптоза. В настоящее время в клетках млекопитающих установлено более 20 т.н. «редокс-чувствительных» транскрипционных факторов [134- 224], отвечающих на изменение редокс-баланса, в том числе NF-kB, АР-1, р-53, Nrf, служащих ключевыми элементами жизнеобеспечения и клеточной функции.

Необходимость АФК для жизнедеятельности клеток связывают также с образованием при их участии электронно-возбужденных состояний биомолекул — триггеров всех последующих биоэнергетических реакций. Колебательный режим таких реакций способствует ритмичному протеканию биохимических процессов на более высоком уровне [118].

Наконец, АФК обеспечивают обновление и функциональную лабильность мембран клеток и субклеточных структур, определяя такие жизненно важные процессы, как проницаемость, ионный транспорт, энергетику, синтез белка и др. Подобное обеспечение обусловлено способностью АФК инициировать активацию перекисного окисления липидов (ПОЛ) при взаимодействии с входящими в состав клеточных мембран полиненасыщенными жирными кислотами. Представляя собой саморазвивающуюся цепную реакцию, ПОЛ постоянно протекает в клетке, поскольку является нормальным процессом метаболизма и служит необходимым звеном её жизнедеятельности, включая адаптационные реакции. Благодаря ПОЛ, реализуемому в клеточных мембранах, меняется их липидный состав, а тем самым — активность ли-пидзависимых мембранных ферментов. Таким образом, образование АФК и инициируемое ими свободнорадикальное окисление являются естественным физиологическим процессом, постоянно протекающим в организме.

Иная ситуация складывается при избыточном уровне АФК в живой клетке, когда они могут выступать как повреждающий фактор, нарушающий структуру и функционирование внутриклеточных компонентов (липидов, белков, ДНК), что сопровождается развитием патологии [30- 50- 75- 94]. При этом деструктивная роль АФК зачастую связана не столько с их прямым действием на клеточные структуры, сколько с избыточной активацией каскада процессов свободнорадикального окисления, сопровождающихся образованием продуктов (гидроперекиси ненасыщенных жирных кислот, альдегиды, кетоны), повреждающих клеточные структуры [51]. Возможность такого развития событий предполагает необходимость существования в клетке сдерживающих механизмов (антиоксидантной системы, антиоксидантов), лимитирующих образование АФК и защищающих клетку от несвоевременной и бесконтрольной активации свободнорадикальных процессов. Т. е. антиоксидант-ная система (система антиоксидантной защиты) — «многокомпонентная система, которая позволяет поддерживать интенсивность свободнорадикальных процессов на оптимальном уровне, без угрозы их резкой активации и участия в развитии различных патологических состояний» [113]. Очевидно, что атрибутивным условием функционирования такой системы также является ограничение ее избыточности, поскольку в противном случае она будет препятствовать реализации физиологической роли АФК.

Таким образом, сбалансированное (равновесное) соотношение между прооксидантами и антиоксидантами, т. е. редокс-баланс клетки имеет основополагающее значение в ее жизнедеятельности. Изменение этого баланса служит отправной точкой в развитии различных форм патологии. Такое изменение может быть достигнуто избыточным образованием АФК, дефицитом факторов антиоксидантной защиты либо путем сочетанной реализации обоих сдвигов.

Основным источником образования АФК в клетке служат ее ферментные системы: митохондриальная цитохром-С-оксидаза, НАДФН-оксидаза фагоцитов, ксантиноксидаза и микросомальные монооксигеназы [30- 125]. Поскольку ксантиноксидаза принимает непосредственное участие в биотрансформации MTX, ее роль как механизма индукции АФК под влиянием цитостатика представляется достаточно очевидной. Используя молекулярный кислород в качестве акцептора электронов, этот фермент способствует образованию супероксид-анион-радикала (02~), перекиси водорода Н202, а также (в отдельных случаях) — гидроксильного радикала (ОН'). Роль ксантиоокси-дазы в генерации АФК может также быть обусловлена способностью этого фермента повышать уровень свободного железа путем его мобилизации из ферритина печени [195].

Вместе с тем, известно, что для печени главным источником АФК и в частности, 02~, служат микросомы [170]. Однако до проведения настоящего исследования вопрос о роли микросомальных монооксигеназ в формировании окислительного стресса под влиянием MTX оставался открытым. Такое положение в значительной степени было обусловлено хорошо известным фактом о непричастности системы цитохрома Р450 к биотрансформации MTX, а также о незначительной способности последнего модулировать экспрессию и активность различных изоформ этой системы в культуре гепато-цитов. Установленное в нашей работе стимулирующее влияние MTX на экспрессию гена важнейшей прооксидантной Цх Р450-зависимой монооксигена-зы — сур 2е1с большой вероятностью может свидетельствовать о ее вовлеченности в механизм формирования окислительного стресса под действием MTX. Есть основание полагать, что такая активация генной экспрессии носит опосредованный характер и сопряжена с изменением редокс-состояния клетки как следствия генерации АФК при участии ксантиноксидазы, и (или) с прямым действием АФК на фактор транскрипции соответствующего гена.

МТХ-опосредованная индукция прооксидантных систем (ксантиноксидазы и сур 2е1) способна приводить к избыточной генерации АФК и активации свободнорадикального окисления, регистрируемого в наших исследованиях в виде повышения содержания в ткани печени ТБК-реагирующих продуктов на 4 сутки после введения цитостатика. Негативные последствия такой активации в соответствии с существующими представлениями [173- 204- 222- 250] реализуются через окисление тиоловых (сульфгидрильных) групп белков, накопление продуктов липопероксидации и уменьшение стабильности липидного бислоя мембран. В свою очередь окисленные белки легко подвергаются деградации под влиянием протеаз, а окисление фосфолипидов увеличивает их подверженность гидролизу фосфолипазой А2 в результате возрастания сродства к ферменту. Таким образом формируется определенная последовательность включения механизмов повреждения биомембран, при которой активация ПОЛ обеспечивает действие фосфолипаз, после чего нарушения в мембранном бислое происходят уже независимо от уровня ПОЛ и даже при его подавлении [113].

Указанные нарушения определяют утрату функциональной активности клеточных белков (ферментов, встроенных в мембрану), формирование энергетического дефицита, избыточное накопление в клетке ионов Са2+, а в конечном счете — электрический пробой мембраны, цитолиз и гибель клетки. В наших экспериментах показателем деструкции мембран гепатоцитов служило увеличение активности в сыворотке крови индикаторных ферментов (АлАТ, АсАТ, уГТ) этого процесса, а также билирубинурия и уробилино-генурия. Повреждение мембран под действием MTX затрагивало как сарколемму, так и, по-видимому, мембраны внутриклеточных структур: эндоплаз-матического ретикулума, митахондрий и микросом. На это указывает возрастание активности АсАТ (являющейся не только цитозольным, но и митохон-дриальным ферментом), обнаружение в моче прямого билирубина (образующегося в гладком эндоплазматическом ретикулуме) и уробилиногена (как проявление несостоятельности микросомального окисления мезобилиноге-на). Выявленные нарушения носили не только выраженный, но и продолжительный характер, о чем свидетельствует сохранение деструктивных изменений в органе и гиперферментемии на протяжении трех недель наблюдения.

В контексте обсуждаемой проблемы важно отметить, что липиды печени легко окисляются и имеют более высокую чувствительность к АФК-индуцированному окислению по сравнению с другими органами [113], хотя именно печень является эндогенном депо витамина Е и, следовательно, должна обладать наибольшей защитой от свободнорадикального окисления. Парадоксальность данной ситуации обусловлена тем, что гепатоциты в отличие от других клеток, хотя и запасают витамин Е в микросомальных мемеб-ранах, не используют его как антиоксидант [214], а поставляют через кровоток в другие органы для предупреждения их АФК-опосредованного повреждения [256]. Такая избирательно высокая чувствительность паренхиматозных клеток печени к липопероксидации по всей видимости определяет возможность более раннего (на 4 сутки) выявления их структурно-функциональных нарушений по сравнению с клетками Купфера, депрессия функциональной активности (поглотительной способности) которых выявлялась нами в более поздний период (на 10−14 сутки) после введения MTX. Не исключено участие в этой депрессии свободных жирных кислот, концентрация которых в условиях катаболизма глицерофосфолипидов должна закономерно возрастать. Правомерность такой оценки обоснована данными о способности жирных кислот не только подавлять хемотаксис и фагоцитарную активность макрофагов [183], но и индуцировать их гибель [176]. При этом строгого соответствия между цитотоксичностыо жирных кислот и числом двойных связей в их молекулах не обнаружено.

Что касается последствий нарушения функциональной активности печеночных макрофагов, то, как отмечалось выше (глава 3), эти нарушения могли иметь непосредственное отношение к замедлению репаративных процессов в органе, в регуляции которых клеткам Купфера отводится центральная роль [81]. Эта роль способна реализоваться в нескольких направлениях, включая продукцию и секрецию различных факторов роста: ТФР Р (трансформирующий фактор роста (3) и ИФР-I (инсулиноподобный фактор роста I) — нейтральных протеиназ (эластазы, коллагеназы), отменяющих эффект контактного торможения и повышающих чувствительность клеток-мишеней к факторам ростафибронектина — центральной адаптерной молекулы самосборки тканей [87]. С репаративной функцией печеночных макрофагов связана их способность к рекрутированию в орган и к активации лимфоцитов, оказывающих стимулирующее воздействие на пролиферацию паренхиматозных клеток печени, в том числе при действии гепатотропных токсинов [15].

Патогенез органных нарушений при избыточной активации ПОЛ мог быть связан и с запуском апоптотического каскада с участием его «митохон-дриального» механизма. Основу этого процесса составляет последовательное развитие внутриклеточных событий, включающих окислительную модификацию кардиолипина под действием продуктов ПОЛ [78], приводящую к утрате его молекулярного взаимодействия с цитохромом Свыход цитохрома С в цитозоль вследствие повышения проницаемости внешней мембраны митохондрий при участии проапоптотических белков (Вах, Bad, Bid и др.) — вовлечение цитохорома С в формирование апоптосомы — APAF-1 (апоптотический протеазо-активирующий фактор), активацию каспазы 9 и трансдукцию сигнала на терминальную каспазу 3. Не исключается также развитие апоптоза и при участии Fas/APO-1 механизма, о чем свидетельствует высокая чувствительность гепатоцитов к CD 95-опосредованному сигналу [16]. При этом существенно, что апоптоз клеток печени в ответ на воздействие различных факторов, включая мембраноактивные соединения, не является синхронным процессом. Его продолжительность может составлять до 7 суток [77], внося свой вклад в динамику структурно-функциональных нарушений органа, достигавших своего максимума на 10 — 14 сутки после введения МТХ.

Поражение печени МТХ не носило изолированный характер и реализо-вывалось на фоне системных проявлений токсического действия цитостатика в виде снижения массы тела, редукции органов системы иммуногенеза (тимуса, селезенки), и развития анемии. Представляется, что эти нарушения могли оказывать усугубляющее действие на выраженность поражения печени, в том числе, через развитие вторичного иммунодефицита [54] и гемиче-ской гипоксии.

Как показали результаты нашего исследования, среди механизмов, индукции метотрексатом окислительного стресса и активации свободноради-кальных процессов важное место могло принадлежать способности цитостатика подавлять экспрессию гена глутатиоредуктазы (glured). Этот фермент является одним из компонентов глутатионовой антиоксидантной системы, обеспечивающей (совместно с НАДФН) поддержание в клетке должного уровня восстановленного глутатиона (GSH). Последний, будучи главным водорастворимым антиоксидантом [271], участвует в работе ряда ферментов, в том числе глутатионпероксидазы (локализована в цитозоле и матриксе митохондрий) и многофункциональных белков — глутатионтрансфераз (локализованы преимущественно в цитозоле клеток) в качестве донора протонов, переходя при этом в окисленную форму (GSSG). Коныогаты GSH с токсическими метаболитами, включая и МТХ, облегчают их MRP-1 (multidrug resistance protein — 1) — зависимый транспорт из клетки. Таким образом, в условиях ок-сидативного стресса GSH, обеспечивая инактивацию гидроперекисей и других токсических продуктов окисления путем их восстановления и глутатио-нилирования, защищает клеточные структуры и белки от повреждений [56].

Очевидно, что подавление метотрексатом экспрессии гена глутатионредукта-зы, как возможного проявления гепатотоксичности избыточного образования АФК, формирует дефицит данного фермента, способный привести к истощению внутриклеточного пула GSH и, как следствие — к ослаблению функционирования одной из важнейших внутриклеточных систем антиоксидантной защиты. Подобное развитие событий усугубляется прямым ингибирующим влиянием MTX на активность глутатионредуктазы, равно как и на активность у-глутамилцистеинсинтетазы, участвующей в клеточном синтезе самого глу-татиона [219].

Изучение влияния милиацина на гепатотоксичность MTX позволило установить что тритерпеноид обеспечивал ослабление структурных повреждений гепатоцитов, снижение выраженности гиперферментемии и нарушений пигментного обмена, а также предотвращение депрессии клиренсной функции печеночных макрофагов. Указанные сдвиги имели место на фоне ослабления и системных проявлений токсичности MTX в виде ограничения падения массы тела, гипоплазии лимфоидных органов (тимуса, селезенки) и анемии. Эти результаты могли иметь в своей основе, как минимум, два различных механизма. Во-первых, они могли являться отражением нарушения под влиянием милиацина фармакокинетики метотрексата и (или) непосредственного ингибирующего влияния тритерпеноида на биологическую активность цитостатика. В пользу этого предположения свидетельствуют данные [128- 141] о мембраностабилизирующем действии милиацина, которое могло повлиять на процессы абсорбции, биораспределения и выведения MTX из организма. Второй механизм позитивного действия милиацина мог быть связан с его ограничивающим влиянием на цитотоксичность MTX без воздействия на фармакокинетику и (или) специфическую антиметаболическую активность последнего, определяющих лечебный эффект химиопрепарата.

Как показали наши исследования, милиацин не влиял на фармакокине-тические параметры MTX, и не только не ослаблял, но, напротив, усиливал его противоопухолевую активность. Такое усиление выражалось повышением терапевтической эффективности МТХ при его совместном применении с милиацином в виде высокого торможения роста эпидермоидной карциномы Льюиса и увеличения продолжительности жизни животных. Эти результаты позволили прийти к заключению, что ограничение милиацином структурных, биохимических и функциональных нарушений, индуцируемых МТХ, демонстрирует именно протективный эффект тритерпеноида в отношении локальной (гепатопротекция) и системной токсичности цитостатика.

Оценка механизмов протективного эффекта милиацина позволила установить их связь с антиоксидантными свойствами тритерпеноида. Следует отметить, что антиоксидантная активность является одной из достаточно распространенных биологических характеристик тритерпеноидов [220- 231], которая определена у ряда из них, включая агликон глицирризина: 18р-глицирретиновую кислоту [194], каффеоловую кислоту [268], азиатскую кислоту [216], уросоловую и олеаноловую кислоты [240- 258], дипептид бету-лоновой кислоты [64] и др. Проявлением такого защитного влияния служит уменьшение степени падения внутриклеточного пула восстановленного глу-татиона и лимитирование снижения активности ферментных систем антиок-сидантной защиты: супероксиддисмутазы, каталазы, глутатион-8-трансфера-зы, глутатионредуктазы, глутатионпероксидазы [215] снижение накопления в клетке вторичных радикалов (липидных перекисей) и диеновых конъюгатов [247], уменьшение генерации и активности супероксид-анион-радикала: Ф [194- 217] и гидроксильного радикала: ОН' [193]. О потенциальной мощности антиоксидантной активности тритерпеноидов свидетельствует возможность проявления их ингибирующего действия даже в отношении АФК (Ф и Н202), индуцированных в лейкоцитах при стимуляции последних форбол-12-миристат-ацетатом [161].

Исходя из полученных в работе данных о способности милиацина восстанавливать экспрессию гена глутатионредуктазы, подавленную МТХ, нам представляется, что антиоксидантный эффект тритерпеноида мог быть связан с его активирующим воздействием на регуляторный сайт — ARE (antioxidant responsive element), под контролем которого находится функционирование этого гена. Основанием для такого предположения служат сведения об индуцирующем влиянии на ARE синтетического аналога олеановой кислотыCDDO [189- 228- 234- 235- 261]. Как известно, ARE наряду с Nf-kB и АР -1 относится к числу редокс-чувствительных элементов, но в отличие от последних, отвечающих на внешние сигналы, участвующим в поддержании внутриклеточного гомеостаза при апоптозиндуцирующих [185], канцерогенных [196] и стрессорных воздействиях. Регионы ARE выявлены в промотор-ных участках многих генов, продукты которых выполняют или непосредственно защитную роль (микросомальная гемооксигеназа, тиоредоксин, селеновая глутатионпероксидаза-2, глутатионредуктаза), или восполняют уровень расходуемых низкомолекулярных интермедиатов (цистин-глутамат-транспортная система), или обеспечивают репаративную функцию важнейших макромолекул в клетке в ситуациях с нарушением клеточного редокс-баланса. Последнее, в частности, проявляется участием системы Nrf-2 — ARE в регуляции транскрипции митохондриальной ДНК, стабилизации транскрипта и инициации репликации в условиях действия эндогенных и экзогенных повреждающих агентов [35]. Посредством индукции синтеза MRP-1 -ключевого белка АТФ-зависимого транспорта ксенобиотиков из клеток, ARE может участвовать и в регуляции множественной лекарственной резистентности [272]. Именно поэтому контролируемая сеть ARE-регулирующих генов рассматривается как универсальная система клеточной защиты в условиях окислительного стресса.

В связи с изложенным допустимо полагать, что активация ARE под влиянием милиацина могла бы служить существенным звеном в реализации его антиоксидантного эффекта. Что касается конкретных механизмов такой активации, то существующие представления о них прежде всего связаны с мобилизацией фактора транскрипции Nrf-2 (NF-E2 — related factor 2). Последняя обеспечивается индуцибильной или усиливающейся конститутивной деградацией комплекса Nrf-2 — Кеар-1, в котором Кеар-1 (Kelch-like ECH associating protein-1) отводится роль негативного регулятора (супрессора). Такой эффект установлен, в частности, для CDDO [189]. Следует однако отметить, что необходимым условием разрушения комплекса Nrf-2 — Кеар-1 в любом случае служит изменение конформации Кеар-1 в результате окислительной модификации его молекулы. Поскольку милиацин ослабляет выраженность окислительного стресса, такой механизм его влияния на высвобождение Nrf-2 представляется маловероятным. Однако это не исключает возможного индуцирующего действия милиацина на активность трансляции белка Nrf-2, установленного для других антиоксидантов [237]. Это повышает свободный (мобильный) пул данного фактора транскрипции в цитозоле, транслоци-рующегося в ядро для последующего связывания с рецепторным сайтом ARE. Другой механизм активации ARE милиацином мог быть сопряжен с его прямым индуцирующим влиянием на ARE, установленным в отношении многих ароматических или гетероциклических соединений растительного происхождения, включая тритерпеноиды [184].

Отменяя MTX — индуцированную супрессию гена glured, милиацин мог способствовать возрастанию внутриклеточного пула GSH и, соответственно, повышению эффективности всей глутатионзависимой системы антиокси-дантной защиты. При этом может осуществляться еще один механизм активации ARE, определяемый соотношением окисленных и восстановленных тиолов, в поддержании баланса которых глутатиону (наряду с тиоредокси-ном и пероксиредоксином) принадлежит центральная роль [56].

Очевидно, что снижение милиацином выраженности окислительного стресса способно положительно влиять на экспрессию и других факторов ан-тиоксидантной защиты, в том числе — через ослабление генотоксического эффекта АФК с одновременным снижением АФК — индуцируемой активации экспрессии генов проапоптотических факторов, включая ген сур 2е1. Угнетение последнего могло быть обусловлено и прямым действием милиацина, установленным, как отмечалось выше (глава 5), в отношении других тритер-пеноидов.

Наряду с влиянием на экспрессию генов ведущих факторов поддержания редокс-баланса клетки, защитный эффект милиацина при активации окислительного стресса, как было показано ранее [101], опосредуется также повышением устойчивости клеточных мембран к повреждающему действию АФК и продуктов липопероксидации. Такой эффект тритерпеноида связан с его гидрофобностыо, обеспечивающей возможность встраивания в липидный бислой мембраны. Подобное встраивание способно экранировать полиненасыщенные жирные кислоты от атаки радикал-частицами и (или) укреплять прочность упаковки фосфолипидов мембран, противодействуя детергентопо-добным эффектам [141]. В результате ограничиваются нарушения фосфоли-пидного состава мембран в виде уменьшения содержания в них наиболее метаболически активной фракции фосфотидилсерина, снижения доли фосфати-дилхолина и фосфатидилэтаноламина и возрастания метаболически инертного сфингомиелина [87]. Таким образом, оказывая модифицирующее воздействие на липидные компоненты мембран, милиацин выступает и как «структурный мембранопротектор», способный в условиях генерации АФК поддерживать жидкостные характеристики мембран на уровне, обеспечивающем необходимую активность мембраносвязанных процессов.

В рамках данной работы определенный интерес представляет вопрос о влиянии милиацина и на процесс восстановления структурных, биохимических и функциональных параметров клеток печени после воздействия MTX. Полученные результаты свидетельствуют о том, что использование тритерпеноида обусловливало меньшую продолжительность этого процесса. При анализе такой ситуации безусловного внимания заслуживает оценка изначальной выраженности формирующихся нарушений, которые у животных, подвергавшихся воздействию MTX без последующего применения милиацина, были более глубокими, чем в условиях его применения. Соответствующий вывод заключается в том, что меньшая степень депрессии исследуемых показателей определяла в последующем и меньшую продолжительность их восстановления. Вместе с тем не исключается, что интенсивность подобной регенерации" при использовании милиацина обусловливалась и его непосредственным влиянием на восстановление клеточных популяций в органе. В основе такого прямого эффекта милиацина могла лежать известная способность тритерпеноидов к пренилированию белков (путем присоединения с помощью пренилтрансфераз к белковым молекулам пренильной группы фарнезила или геранилгеранильного остатка), обеспечивающая последним приобретение липофильных свойств, встраивание в мембрану и реализацию функциональной активности [103]. Спектр этой активности достаточно широк и включает модуляцию сигнальных систем, в том числе ответственных за рост и диференцировку клеток [157].

Полученные результаты о гепатопротекторном влиянии милиацина и об антиоксидантном механизме этого влияния поставили перед необходимостью оценки эффективности защитного действия тритерпеноида по сравнению с официальными гепатопротекторами растительного происхождения с антиоксидантными свойствами. Выполнение этого раздела работы с использованием карсила, содержащего флавоноиды расторопши, позволило установить что милиацин в используемой разовой дозе (2 мг/кг) при трехкратном внутрибрюшинном введении превосходит карсил по способности ограничивать МТХ-индуцируемую гиперферментемию. В отношении ограничения нарушений пигментного обмена эффективность милиацина соответствовала эффективности карсила в разовой дозе 6 мг/кг.

В целом, результаты работы, отражающие защитное влияние милиацина в отношении гепатотоксичности MTX, раскрывают новый аспект биологического действия тритерпеноида и определяют возможность его использования в комбинации с MTX при химиотерапии опухолей.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Г. Г. Морфометрия в патологии. М.: Медицина, 1973. -248с.
  2. Активность антиоксидантных ферментов крови при хронических поражениях печени / Б. Н. Матюшин, А. С. Логинов, Г. II. Якимчук, В. Д. Ткачев // Вопросы медицинской химии. 1995. — Т. 41, № 4. — С. 54 -56.
  3. , А. С. Тритерпеноиды растений родов Glycyrrhiza L. и Meristo-tropis Fisch, et Mey / А. С. Амосов, В. И. Литвиненко // Химико фармацевтический журнал. — 2003. — Т. 37, № 2. — С. 31 — 42.
  4. , Л. И. Модификация метода определения перекисей липидов в тесте с тиобарбитуровой кислотой / Л. И. Андреева, Л. А. Кожемякин, А. А. Кишкун //Лабораторное дело. 1988. — № 11. — С. 41 — 43.
  5. Антиоксидантная активность полифенолов из дальневосточного растения тиса остроконечного / М. В. Веселова, С. А. Федореев, Н. А. Василевская, В. А. Денисенко, А. В. Герасименко // Химико-фармацевтический журнал. 2007. — Т. 41. — С. 29 — 34.
  6. Антиоксидантные свойства лекарственных растений / В. Ф. Громовая, Г. С. Шаповал, И. Е. Миронюк, Н. В. Нестюк // Химико-фармацевтический журнал. 2008. — Т. 42, № 1. — С. 26 — 28.
  7. , Э. Б. Временная организация деятельности иммунной системы и участие в ней эпифиза / Э. Б. Арушанян, Э. В. Бейер // Успехи физиологических наук. 2006. — Т. 37, № 2. — С. 3 — 10.
  8. , Э. Б. Участие эпифиза в антистрессовой защите мозга // Успехи физиологических наук. 1996. — Т. 27, № 3. — С. 31 — 46.
  9. , А. И. Микросомальное окисление. М.: Наука, 1975. — 326 с.
  10. , И. П. Нейрохимия / И. П. Ашмарин, А. Е. Антипенко, В. В. Ашапкин. М.: Изд-во Института биомедицинской химии РАМН, 1996. — 470 с.
  11. , А. Г. Единство и противоположность цитогенетической активности лимфоцитов и их антителообразующей функции при восстановительных процессах в органах // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1999а. — Т. 128, № 11. — С. 484 — 490.
  12. , А. Г. Прошлое, настоящее и будущее проблемы лимфоидной регуляции пролиферации нелимфоидных клеток // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1995. — Т. 124, № 5. — С. 230 — 234.
  13. , А. Г. Репаративные процессы и иммунитет // Известия АН. Сер. Биология. 1999.6. — № 6. — С. 261 — 269.
  14. , А. Г. Роль лимфоцитов в оперативном изменении программы развития тканей / А. Г. Бабаева, Н. М. Геворкян, Е. А. Зотиков. М.: Изд-во РАМН, 2009. — 108 с.
  15. , А. Ю. Иммунологические проблемы апоптоза / А. Ю. Барышников, Ю. В. Шишкин. М.: Эдиториал УРСС, 2002. — 320 с.
  16. , Н. Н. Молекулярные основы патологии апоптоза / Н. Н. Бе-лушкина, С. Е. Северин//Архив патологии. 2001. -№ 1.- С. 51−60.
  17. , Т. Т. Фолиевая кислота / Т. Т. Березов, Б. Ф. Коровкин // Биологическая химия. 3-е изд., перераб. и доп. — М.: Медицина, 1998. -С.230−232.
  18. , О. А. Возможные механизмы антиоксидантной активности глицирризиновой кислоты / О. А. Бескина, А. Ю. Абрамов, А. Г. Габдулханова, А. В. Миллер, В. Г. Сафронова, М. В. Замараева // Биомедицинская химия. 2006. — Т. 52, вып. 1. — С. 60 — 68.
  19. Биокинетические параметры показателей токсичности высоких доз ме-тотрексата / Т. В. Плетнева, Н. С. Степанова, В. II. Байкова, К. А. Ко-шечкин // Вестник Российского ун-та дружбы народов. Сер. Медицина. -2008, — № 3. С. 10−13.
  20. , Т. А. Влияние индукции и ингибирования монооксигеназ печени на токсическое и лечебное действие винкристина / Т. А. Богуш, С. М. Сигдикова, А. Б. Сыркин // Антибиотики. 1986. — № 4. — С. 265 — 268.
  21. , Т. А. Монооксигеназы печени и действие противоопухолевых препаратов: автореф. дис.. докт. мед. наук. М., 1985. — 31с.
  22. , Т. А. Скорость метаболизма антипирина у онкологических больных при проведении специфической терапии / Т. А. Богуш, Г. Я. Цейлин, А. Ф. Бухпы // Вопросы онкологии. 1992. — Т. 38, № 4. — С. 1288 — 1293.
  23. , Т. А. Уменьшение токсичности противоопухолевых препаратов путь к повышению эффективности лечения злокачественных опухолей Т. А. Богуш, Е. А. Богуш // Вопросы онкологии. 1995. — Т. 41, № 2. — С. 52−53.
  24. Введение в фармакотерапию злокачественных опухолей / М. Л. Герша-нович, В. А. Филов, М. А. Акимов, А. А. Акимов. СПб.: Сатис, 1999. -70 с.
  25. , А. И. Гепатопротекторы, содержащие фосфолипиды, ослабляют иммунодепрессивный эффект преднизалона при экспериментальном хроническом гепатите // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2004. — Т. 67, № 4. — С. 50 — 53.
  26. , А. И. Механизм гепатопротекции при экспериментальном токсическом гепатите / А. И. Венгеровский, А. С. Саратиков // Фармакология и токсикология. 1988. — Т. 51, № 1. — С. 89 — 93.
  27. , Т. В. Ранние и отдаленные последствия токсического действия на печень противоопухолевого препарата платины / Т. В. Ветошкина, Т. 10. Дубская, В. Е. Гольдберг // Экспериментальная и клиническая фармакология. 1997. — Т. 60, № 4. — С. 57 — 59.
  28. Владимиров, 10. А. Свободные радикалы и антиоксиданты // Вестник РАМН. 1998.-№ 7.-С. 43−51.
  29. , В. В. Препараты, обеспечивающие переносимость цитостати-ков и улучшающие качество жизни больных в процессе химиотерапии / В. В. Высоцкая, Н. О. Попова, И. О. Недавняя // Сибирский онкологический журнал. 2004. — № 1. — С. 51 — 54.
  30. , А. И. Повреждение митохондриального генома и пути его сохранения / А. И. Газиев, Г. О. Шайхаев // Генетика. 2008. — Т. 44, № 4. — С. 437 — 455.
  31. Гепатопротекторы / С. В. Оковитый, Н. Н. Безбородкина, С. Г. Улейчик, С. Н. Шуленин. М.: ГЕОТАР — Медиа, 2010. — 112 с.
  32. Гепатотоксическое действие лекарственных препаратов некоторых фармакологических групп / Ю. А. Кинзирская, Т. А. Богуш, Н. В. Остапчук, В. Г. Фисенко // Клиническая медицина. 2003. — Т. 66, № 4. — С. 56 — 59.
  33. Гепатотоксичность противоопухолевых препаратов / Г. В. Карпова, Т. И. Фомина, Т. В. Ветошкина, Т. Ю. Дубская, Л. А. Ермолаева, А. А. Чурин // Вестник РАМН. 2009. — № 11. — С. 17 — 20.
  34. Глицам как средство повышения эффективности химиотерапии и хирургического метода лечения экспериментальных опухолей / Т. Г. Разина, Е. П. Зуева, Е. Н. Амосова, В. В. Жданов // Вопросы онкологии. 1999. -Т. 45, № 5. — С. 554 — 556.
  35. , В. В. Опыт применения гептрала в лечении диффузных заболеваний печени / В. В. Горбаков, В. П. Галик, С. М. Кириллов // Терапевтический архив. 1998. — Т. 70, № 10. — С. 82 — 86.
  36. , В. М. Осложнения противоопухолевой терапии // Гематология и трансфузиология. 1998. — Т. 43, № 1. — С. 11 — 15.
  37. , О. Р. Протективное действие энтеросгеля на лизосомы печени крыс при введении комплекса цитостатических препаратов / О. Р. Грек, С. В.
  38. , А. Б. Пупышев // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2002. — Т. 134, № 10. — С. 413 — 417.
  39. , Е. В. Применение непараметрических критериев статистики в медико биологических исследованиях / Е. В. Гублер, А. А. Генкин. -Л.: Медицина, 1973.- 141с.
  40. , Т. Введение в биохимию растений: пер. с англ. / Т. Гудвин, Э. Мерцер. М.: Мир, 1986. — Т. 2. — С. 42 — 106.
  41. , А. Клиническая фармакология. Кн. 3. Антиметоболиты: пер. с англ. / А. Гудман, А. Г. Гилман. М.: ППП, 2006. — Гл. 52, разд. И. — С. 1079- 1083.
  42. , И. Г. Влияние системы фагоцитирующих мононуклеаров на регенерацию тканей с разной восстановительной способностью: авто-реф. дис.. докт. биол. наук. Екатеринбург, 2006. — 50с.
  43. Друзья или враги. Активные формы кислорода и азота / Д. Б. Зоров, С. Ю. Банникова, В. В. Белоусов, М. Ю. Высоких, JI. Д. Зорова, Н. К. Исаев, Б. Ф. Красников, Е. Ю. Плотников // Биохимия. 2005. — Т. 70, № 2. -С. 265 — 272.
  44. , Е. Е. 4-гидрокси-транс-2-ноненаль в функциональной активности клеток / Е. Е. Дубинина, В. А. Дадали // Биохимия. 2010. — Т. 75, вып. 9.-С. 1189−1212.
  45. Ермолаева, J1. А. Гепатотоксичность противоопухолевых препаратов растительного происхождения паклитаксела и этопозида и ее фармакологическая коррекция: автореф. дис.. канд. мед. наук. Томск, 2008. а -26 с.
  46. , А. Д. Экспериментальное обоснование применения милиацина для коррекции иммуиосупрессии, индуцированной метотрексатом: автореф. дис.. канд. мед. наук. Пермь, 2010. — 22с.
  47. , II. К. Некоторые принципы и механизмы редокс-регуляции / Н. Н. Зенков, Е. Б. Меньшикова, В. О. Ткачев // Кислород и антиоксиданты. -2009.-Вып. 1.-С. 3−64.
  48. , Р. П. Методы гематологических исследований // Лабораторные методы исследования в клинике: справочник / В. В. Меньшиков, Л. Н. Делекторская, Р. П. Золотницкая- под ред. В. В. Меньшикова. М.: Медицина. — 1987. — Разд. 3.2 — С. 107−109.
  49. , А. А. Влияние модифицированных витаминов с антиоксидант-ным действием на эффективность и токсичность противоопухолевой терапии в эксперименте: автореф. дис.. канд. мед. наук. Томск, 2010. -25 с.
  50. К вопросу о механизме антиоксидантной активности пептидных производных бетулоновой кислоты / И. Н. Цимбал, H. М. Сторожок, Н. И. Петренко, Г. А. Толстиков // Биоантиоксидант: тез. докл. VI междунар. конф. М., 2002. — С. 607 — 609.
  51. , А. Н. Проблемы гепатотоксичности при проведении химиотерапии онкологических заболеваний и методы ее коррекции / А. Н. Казюлин, Л. 3. Вельмер, И. А. Королева // Фарматека. 2010. — № 17. — С. 82 -90.
  52. , Я. Макрофаги. Обзор ультраструктуры и функции: пер. с англ. -М.: Медицины. 1978. — 188 с.
  53. , А. В. Иммунотропная активность милиацина: автореф. дис.. канд. мед. наук. Пермь, 2004. — 22 с.
  54. , В. II. Суперсемейства скавенджер-рецепторов // Очерки о врожденном иммунитете СПб.: Наука, 2006. — Гл. 2.3. — С. 15 — 18.
  55. , С. И. Ограничение алкогольных поражений печени и сердца адаптацией к периодической гипоксии: автореф. дис.. докт. мед. наук. Челябинск, 1995. — 40 с.
  56. , В. Г. Клиническая фармакология цитостатиков / В. Г. Кукес, А. К. Стародубцев // Клиническая фармакология и фармакотерапия: учебник для вузов. М.: ГЭОТАР-МЕДИА, 2003. — С. 441- 442.
  57. , В. И. Биологическая роль глутатиона / В. И. Кулинский, Л.
  58. С. Колесниченко // Успехи современной биологии. 1990. — Т. 110, вып. 1(4).-С. 20−33.
  59. , И. А. Лекарственное поражение печени при лечении онкоге-матологических заболеваний // Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика. 2010. — Т. 3, № 1. -С. 60 — 67.
  60. , С. А. Основы токсикологии. СПб., 2002. — 342с.
  61. , Г. Ф. Биометрия: учеб. пособие для спец. вузов. 4-е изд., пере-раб. и доп. — М.: Высшая школа, 1990. — 352с.
  62. , В. 3. Свободнорадикальные процессы в норме и при заболеваниях сердечно-сосудистой системы / В. 3. Ланкин, А. К. Тихадзе, Ю. Н. Беленков. М., 2000. — 69 с.
  63. , В. Б. Гепатотоксичность лекарственных препаратов у онкологических больных / В. Б. Ларионова, Э. Г. Горожанская, О. А. Коломейцев // Вестник интенсивной терапии. 2004. — № 3. — С. 1 — 10.
  64. , Е. Ф. Морфология клетки (Апоптоз) / Е. Ф. Лушников, А. Ю. Абрамов. М.: Медицина, 2001. — 192 с.
  65. Лю, Б. Н. Кислородно-перекисная концепция апоптоза: повышение уровня аргументации и развития / Б. Н. Лю, М. Б. Лю // Успехи современной биологии. 2005. — Т. 125, № 6. — С. 567 — 578.
  66. , X. Наглядная фармакология: пер. с нем. / X. Люльман, К. Мор, Л. Хайн. М.: Мир, 2008. — С. 308 — 310.
  67. , М. Д. Лекарственные средства: пособие по фармакотерапии для врачей. 10 изд. — М.: Медицина, 1987. — Т. 2. — С. 451- 452.
  68. , А. Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге / А. Н. Маянский, Д. Н. Маянский. Новосибирск: Наука, 1983. — 254 с.
  69. , Е. Н. Амосова, Е. П. Зуева, Т. Г. Разина, С. Г. Крылова, П. С. Зориков // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008 -Т. 145, № 2. -С. 213−217.
  70. , С. В. Морфофункциональное исследование цитопротектор-ного действия аланинамидных производных бетулоновой кислоты на модели цитотоксического повреждения органов: автореф. дис.. докт. биол. наук. Новосибирск, 2007 а. — 39 с.
  71. , А. М. Механизмы биологической активности гликозидов женьшеня: сравнение с гликозидами голотурий // Вестник ДВО РАН. 2006. -№ 6.-С. 92- 104.
  72. Предотвращение Ы-ацетил-Ь-цистеином апоптоза тимоцитов, вызванного УФС-облучением / В. А. Долгачев, В. Н. Афанасьев, Н. Н. Долгачева, В. А. Печатников // Иммунология. 2000. — № 4. — С. 37−38.
  73. Роль цитокинов в патогенезе и терапии опухоли // Цитокины / С. А. Кетлинский, А. С. Симбирцев. СПб.: Фолиант, 2008. — Гл. 20. — С. 534−550.
  74. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / под ред. чл.-корр. РАМН проф. Р. У. Хаб-риева. М.: Медицина, 2005. — 832 с.
  75. , Т. Г. Значение баланса прооксидантов и антиоксидантов -равнозначных участников метаболизма / Т. Г. Сазонтова, Ю. В. Архи-пенко // Патологическая физиология и экспериментальная терапия.2007.- № 3. С. 2 — 18.
  76. , А. С. Новые гепатопротекторы природного происхождения / А. С. Саратиков, А. И. Венгеровский // Экспериментальная и клиническая фармакология. 1995. — Т. 58, № 1. — С. 8 — 11.
  77. , А. С. Коррекция гепатопротекторами структурно-метаболических нарушений в печени при интоксикации О-галактозамином / А. С. Саратиков, А. И. Венгеровский, И. II. Седых // Фармакология и токсикология. 1990. — Т. 53, № 2. — С. 38 — 40.
  78. , Е. С. Биохимия: учебник / под ред. Е. С. Северина. 2-е изд., испр. — М: ГЭОТАР-МЕДИА, 2004. — 784 с.
  79. , Р. Д. Антиоксиданты / Р. Д. Сейфулла, Е. А. Рожкова, Е. К. Ким // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2009. — Т. 72, № 3. — С. 60−64.
  80. Семейство интерлейкина 12 // Цитокины / С. А. Кетлинский, А. С. Сим-бирцев. СПб.: Фолиант, 2008. — Гл. 8. — С. 234−252.
  81. , Т. В. Эпифиз: современные данные о физиологии и патологии Т. В. Семичева, А. Ю. Гарибашвили // Проблемы эндокринологии. -2000. Т. 46, № 4.-С. 38−44.
  82. , С. В. Цитохром Р 450 и иммунная система / С. В. Сибиряк, В. А. Вахитов, Н. Н. Курчатова. Уфа: Гилем, 2003. — 211 с.
  83. Синтез и фармакологическая активность диникотината бетулина / О. Б. Флехтер, Л. Т. Карачурина, Л. Р. Нигматулина, Т. А. Сапожникова, Л. А.
  84. Ф. С. Зарудий // Биоорганическая химия. 2002. — Т. 28, № 6. -С. 543 — 550.
  85. , Н. П. Экспериментальная фармакотерапия поражений печени, вызванных индометацином / Н. П. Скакун, Е. В. Климшок // Фармакология и токсикология. 1990. — Т. 53, № 6. — С. 52 — 54.
  86. , В. П. Эволюция, митохондрии и кислород // Соросовский образовательный журнал. 1999. — № 9. — С. 4 — 10.
  87. Справочник по клинической фармакологии и фармакотерапии / ред.: проф. И. С. Чекман, проф. А. П. Полещук, проф. О. А. Пятак. Киев: Здоров’я, 1986. — С. 482 — 483.
  88. Средство, стабилизирующее биологические мембраны: а. с. № 1 043 860 СССР: А 61 К 35/78 / А. Н. Чернов, М. М. Павлова, Л. Е. Олифсон. -М.: 1983. 5с.
  89. , А. А. Механизмы лекарственной устойчивости опухолевых клеток // Канцерогенез / под ред. Д. Г. Заридзе. М.: Медицина, 2004.-Гл. 13.-С. 558 -574.
  90. Структурная реорганизация печени крыс при цитотоксическом действии доксорубицина / О. П. Молодых, Е. Л. Лушникова, М. Г. Калинникова, Л. М. Непомнящих // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2006. — Т.141, № 5. — С. 579 — 585.
  91. , К. В. Теория функциональных систем: постулаты и принципы построения организма человека в норме и при патологии // Патологичеекая физиология и экспериментальная физиология. 2007. — № 4. — С. 2 -11.
  92. , К. Т. Активные формы кислорода и регуляция экспрессии генов (обзор) // Биохимия. 2002. — Т. 67, вып. 3. — С. 339 — 353.
  93. , В. Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. М.: Медицина, 1975. — 295 с.
  94. , Г. Д. Иммуносупрессивные средства // Иммуносупрес-сивная терапия: пер. с нем. / под ред. Д. Нелиуса- ред. пер. чл.-корр. АМН СССР В. А. Насонова. М.: Медицина, 1984. — С. 46 — 52.
  95. , А. А. Особенности метаболизма разных лекарственных средств с участием изоферментов цитохрома Р 450 / А. А. Филимонова, А. У. Зиганшин, Л. С. Зиганшина // Экспериментальная и клиническая фармакология. — 2007. — Т. 70, № 3. — С. 66 — 77.
  96. , Дж. В. Физиология кислотно-щелочного состояния в норме и при патологии // Ранняя диагностика болезней обмена веществ: пер. с англ. / Р. М. Кон, К. С. Рот. М.: Медицина, 1986. — Гл. 3. — С.75 — 105.
  97. , И. С. Система мононуклеарных фагоцитов. М.: Медицина, 1984.-272 с.
  98. , Б. А. Милиацин как мембранопротектор. Защитное действие милиацина при детергент-индуцированной иммуносупрессии / Б. А. Фролов, А. В. Кириллова // Российский аллергологический журнал.2011. № 4, вып. 1. — С. 402 — 403.
  99. Функциональная активность сфингомиелинового цикла печени крыс при хроническом токсическом гепатите / В. Ю. Серебров, Д. И. Кузьменко, П. Г. Буров, С. В. Новицкий // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. — Т. 146, № 12. — С. 634 — 637.
  100. Функциональное состояние печени в процессе регенерации и его иммунологическая регуляция / В. А. Черешнев, И. Г. Данилова, Б. Г. Юшков, М. Т. Абидов // Вестник Уральской академической науки. 2005. — № 3. — С. 85 — 88.
  101. Химическая природа и биологическая активность милиацина / JI. Е. Олифсон, Н. Д. Осадчая, Б. Г. Нузов, К. Г. Галкович, М. М. Павлова // Вопросы питания. 1991. — № 2. — С. 57 — 59.
  102. , Ю. С. Современные представления о роли иммунной системы в регуляции регенераторных процессов: автореф. дис.. канд. биол. наук. Екатеринбург, 2004. — 22 с.
  103. Цитокиновая регуляция биотрансформации ксенобиотиков и эндогенных соединений / С. В. Сибиряк, В. А. Черешнев, А. С. Симбирцев, Д. С. Сибиряк, Т. В. Гаврилова. Екатеринбург: УрО РАН, 2006. — 160 с.
  104. Цитокины, регулирующие созревание и функции лимфоцитов // Цито-кины / С. А. Кетлинский, А. С. Симбирцев. СПб.: Фолиант, 2008. — Гл. 9. — С. 253−325.
  105. , И. В. Влияние производных бетулина на антиоксидантный го-меостаз и метаболизм ксенобиотиков в печени при экспериментальной полихимиотерапии: автореф. дис.. канд. мед. наук. Томск, 2009. — 24 с.
  106. , Ю. О. Лекарственные поражения печени // Врач. 2010. -Спец. вып. — С. 4 — 8.
  107. Энтеросорбенты усиливают гепатозащитное действие эплира при экспериментальном токсичекском гепатите / А. И. Венгеровский, Е. Л. Головина, В. Н. Буркова, А. С. Саратиков // Экспериментальная и клиничеекая фармакология. 2001. — Т. 64, № 1. — С. 46 — 48.
  108. , Б. Г. Влияние иммуномодуляторов на регенерацию печени / Б. Г. Юшков, И. Г. Данилова, Ю. С. Храмцова // Экспериментальная и клиническая фармакология. 2006. — Т. 69, № 1. — С. 53 — 55.
  109. , В. В. Иммунокорректоры: руководство для врачей и провизоров / В. В. Юшков, Т. А. Юшкова, А. В. Казьянин. Екатеринбург: ИРА УТК, 2002. — 255 с.
  110. , Э. П. Хронические заболевания печени: диагностика и лечение / Э. П. Яковенко, П. Я. Григорьев // Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2002. — № 5. — С. 40 — 44.
  111. , А. А. Моноциты и макрофаги // Иммунология: учебник. М.: ГЭОТАР-МЕДИА, 2010. — Гл. 2.1.5. — С. 63 — 71.
  112. Alam, S. S. Protective role of taurine against genotoxic damage in mice treated with methotrexate and tamoxfine / S. S. Alam, N. A. Hatiz, A. H. Abd
  113. EI Rahim // Environ Toxicol Pharmacol. — 2011. — Vol. 31. — P. 143 — 152.
  114. Anticancer activity of 2a, 3a, 190, 23P Nentahydroxyurs-12-en-28-oic acid (THA) a novel triterpenoid isolated from Sinojackia sarcocorpa / O. Wand, S. Liu, J. Zou, L. Lu, L. Chen, S. Qiu, H. Li, X. Lu // Plos One. — 2011. — Vol. 6, № 6.-P. 21 130.
  115. Antihistaminic and antieicosanoid effects of oleanolic and ursolic acid fraction from Helichrysum picardii / R. C. Santos, G. M. D. Garcia, R. M. T. Saenz, V. R. de la Puerta // Pharmazie. 2007. — Vol. 62, № 6. — P. 459 — 462.
  116. Antioxidant and hepatoprotective actions of medicinal herb, Terminalia ca-tappa L. from Okinawa Island and its tannin corilagin / S. Kinoshita, Y. Inoue, S. Nakama, T. Ichiba, Y. Aniya // Phytomedicine. 2007. — Vol.14, № 11. -P. 755 — 762.
  117. Antitumor activity and mechanisms of action of total glucosides from aerial part of Gimicifuga dahurica targeted against hepatoma / Z. Tian, J. Si, Q. Chang, I. Zhou, S. Chen, P. Xiao, E. Wu // BMC Cancer. 2007. — № 7. — P. 237.
  118. Anti-tumor and and cancerogenic activities of triterpenoid, beta bos wellic acid / M. T. Huang, V. Badmaev, Y. Ding, Y. Liu, J. G. Xie, C. T. Ho // Bio-factors. — 2000. — Vol. 13. — P. 225 — 230.
  119. Apoptotic body engulfment by a human stellate cell line is profibrogenic / A. Canbay, P. Taimr, N. Torok, H. Higuchi, S. Friedman, G. J. Gores // Lab. Invest. 2003. — Vol. 83. — P. 655 — 663.
  120. Beta-glucan ameliorates methotrexate-induced oxidative organ injury via its antioxidant and immunomodulatory effects / G. Sener, E. Ek§ ioglu-Demiralp, M. Cetiner, F. Ercan, B.C. Yegen // Eur. J. Pharmacol. 20 066. — Vol. 542, № 1−3.-P. 170- 178.
  121. Biochemical mechanisms in drug-induccd liver injury: certainties and doubts / I. Grattagliano, L. Bonfrate, C. V. Diogo, H. H. Wang, D. Q. Wang, P. Portin-casa // World J. Gastroente rol. 2009. — Vol. 15, № 39. — P. 4865 — 4876.
  122. Biswal, B. K. Differential usage of the transport Systems for Folic acid methotrexate in Normal Human T-Lymphocytes and Leukemic Cells / B. K. Biswal, R. S. Verma // J. Biochem. 2009. — Vol. 146, № 5. — P. 690 — 703.
  123. Bondy, S. C. Contribution of hepatic cytochrome P450 systems to the generation of reactive oxygen species / S. C. Bondy, S. Naderi // Biochem Pharmacol. 1994. — Vol. 48, № 1. — P. 155 — 159.
  124. Cederbaum, A. I. Nrf 2 and antioxidant defense against CYP2 El toxicity // Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 2009. — Vol. 5, № 10. — P. 1223 — 1244.
  125. Chan, H. T. Inhibition of glycyrrhizic acid on aflatoxin Bl-induced cytotoxicity in hepatoma cells / H. T. Chan, C. Chan, J. W. Ho // Toxicology. -2003. Vol. 188, № 2 — 3. — P. 211 — 217.
  126. Chladek, J. An in vitro stady on methotrexate hydroxyiation in rat and human liver / J. Chladek, J. Martinkova, L. Sispera // Physiol. Res. 1997. — Vol. 46, № 5.-P. 371 -379.
  127. Comparative toxicity of fatty acids on a macrophage cell line (J774) / T. Martins de Lima, M. F. Cury-Boaventura, G. Giannocco, M. T. Nunes, R. Curi // Clin Sci (Lond). 2006. — Vol. 111, № 5. — P. 307 — 317.
  128. Davydov, D. Microsomal monooxygenasis in apoptosis: another target for cytochrome C signaling // Trends Biochem Science. 2001. — Vol. 26. — P. 155 — 160.
  129. Doxorubicin: the good, the bad and the ugly effect / C. Carvalho, R. X. Santos, Cardosos, S. Correia, P. J. Oliveira, M. S. Santos, P. I. Moreina // Curr. Med. Chem. 2009. — Vol. 16, № 25. — P. 3267 — 3285.
  130. Drug related hepatotoxicity / M. E. Mc. Donnell, L. E. Braverman, K. P. Pa-tel, K. Mc. Lntyre, M. Madoriaga // N. Engl. J. Med. — 2006. — P. 2191 — 2193.
  131. Effect of docosahexacnoic acid on macrophage functions of rats / M. Bulbul, R. Tan, B. Gemici, G. Hacioglu, A. Agar, V. N. Izgut-Uysal // Immunobiolo-gy. 2007. — Vol. 212, № 7. — P583 — 587.
  132. Natl. Acad. Sci. USA. 2005. — Vol.102, № 12. — P. 4584 — 4589.
  133. Finley, J. W. The antioxidant responsive element (ARE) may explain the protective effects of cruciferous vegetables on cancer / Nutr. Rev. 2003. — Vol. 61, № 7-C. 250−254.
  134. Fotoohi, A. K. Mechanisms of antifolate resistance and methotrexate efficacy in leukemia cells / A. K. Fotoohi, F. Alherxioni / / Leuk. Lymphoma. 2008.- Vol. 49, № 3.- P. 410 -426.
  135. Garattini, S. Pharmacokinetics in cancerchemotherapy // Europe an Journal of concen. 2007. — Vol. 43. — P. 271 — 282.
  136. Glycyrrhizin and Licorice Signiticantly Affect the Pharmacokinetics of Methotrexate in Rats / S-P. Lin, S-Y. Tsai, Y-C. Hou, C. P-P. Lee // J. Agric Food Chem. 2009. — Vol. 57, № 5. — P. 1854 — 1859.
  137. Hemeida, R. A. Curcumin attenuates methotrexate-induced hepatic oxidative damage in rats / R. A. Hemeida, O. M. Mohafez // J. Egypt. Natl. Cane. Inst.- 2008. Vol. 2.-P. 141 — 148.
  138. Hepatoprotection of oleanolic acid is related to its inhibition on mitochondrial permeability transition / K. H. Tang, J. Cao, F. Fang, J. Chen, L. Z. Xu, X. N. Zhao, O. Xu // Am J. Chin Med. 2005. — Vol. 33, № 4. — P. 627 — 637.
  139. Hepatoprotective activity of Terminalia catappa L. leaves and its two triterpe-noids / J. Gao, X. Tang, H. Dou, Y. Fan, X. Zhao, Q. Xu // J. Pharm. Pharmacol. 2004. — Vol. 56, № 11. — P. 1449 — 1455.
  140. Hong, S. S. Enharced systemic availability of methotrexate in the presence of morin in rats / S. S. Hong, M. J. Jin, H. K. Han // Biopharm. and Drug Dispos. 2008. — Vol. 29, № 4. — P. 189 — 193.
  141. Identification and categorization of liver toxicity markers induced by a related pair of drugs / C. W. Chang, F. A. Beland, T. Hines, J. Chen // Int. Mol. Sci. -2011.-Vol. 12, № 7.-P. 4609−4624.
  142. Involvement of multidrug resistance-associated protein 1 in intestinal toxicity of methotrexate / S. Kato, K. Ito, Y. Kato, T. Wakayama, Y. Kubo, S. Iseki, A. Tsuji // Pharm. Res. 2009. — Vol. 26, № 6. — P. 1467 — 1476.
  143. Jeong, H. G. Suppression of constitutive and inducible cytochrome P-450gene expression by alpha-hederin in mice // Biochem. Mol. Biol. Int. 1998. — Vol. 46, № 5. — P. 1019 — 1026.
  144. Jeong, H. G. Inhibition of cytochrome P 450 2Ej expression by oleanolic acid: hcpatoprotective effects against carbon tetrachloride induced hepatic injury // Toxical. Lett. — 1999. — Vol. 105, № 3. — P. 215 — 222.
  145. Lack of effect of methotrexate on the expression of constitutive hepatic cytochromes P-450 in the male rale / R. L. Cheung, C. Lee, E. J. Jones, D. S. Riddick // Xenobiotica. 1996. — Vol. 26, № 5. — P. 503 — 514.
  146. Lateef, O. Methotrexate pulmonary toxicity / O. Lateef, N. Shakoor, R. A. Balk // Expert. Opin. Drug. Saf. 2005. — Vol. 4, № 4. — P. 723 — 730.
  147. Lieber, C. S. Aotiology and pathogenesis of alcoholic liver disease // Bail-lieres. Clin. Cacrtoenterol. 1993. — Vol. 7, № 3. — P. 581 — 608.
  148. Lieber, C. S. Herman Award Lecture, 1993: a personal perspective on alcohol, nutrition, and the liver // Am. J. Clin. Nutr. 1993. — Vol. 58, № 3. — P. 430 -442.
  149. Lindros, K. D. Zonation of cytochrome P 450 expression. Drug metabolism and toxicity in liver// Gen. Pharmacol. 1997. — Vol. 28, № 2. — P. 191 — 196.
  150. Liver function studies in children with acute lymphocytic leukemia after cessation of therapy / F. Bessho, H. Kinumaki, S. Yokota, Y. Hayashi, M. Ko-bayashi, S. Kamoshita // Med. Pediatr. Oncol. 1994. — Vol. 23, № 2. — P. Ill — 115.
  151. Lobo, D. Pharmakinetic Pharmacodynamic modeling of methotrexate — induced toxicity in mice / D. Lobo, J. P. Balthasan // Journal of pharmacentical sciences. — 2003. — Vol. 92, № 8. — P. 1654 — 1664.
  152. Lymrhocytehcpatic stellate cell proximity suggests a direct interaction / N. Muhanna, A. Horani, S. Doron, R. Safadi // Clin, and Exp. Imminol. 2007. -Vol. 148, № 2. — P. 338 — 347.
  153. Manna, P. Protection of arsenic induced hepatic disorder by arjunolic acid / P. Manna, M. Sinha, P. C. Sil // Basic Clin Pharmacol Toxicol. — 2007. — Vol. 101, № 5.-P. 333 — 338.
  154. Mechanism underlying mitochondrial protection of asiatic acid against hepa-totoxicity in mice / J. Gao, J. Chen, X. Tang, L. Pan, F. Fang, L. Yu, X. Zhao, Q. Xu // J. Pharm. Pharmacol. 2006. — Vol. 58, № 2. — P. 227 — 233.
  155. Mechanisms of hepatoprotection of Terminalia catappa L. extract on D-Galactosamine-induced liver damage / X. H. Tang, L. Gao, J. Gao, Y. M. Fan, L. Z. Xu, X. N. Zhao, Q. Xu // Am. J. Chin. Med. 2004. — Vol. 32, № 4. — P. 509−519.
  156. Melatonin prevents methotrexate-induced hepatorenal oxidative injury in rats / N. Jahovic, H. Cevik, A. O. Sehirli, B. C. Yegen, G. Sener// J. Pineal. Res. -2003. Vol. 34, № 4. — P. 282 — 287.
  157. Methotrexate, pentose cycle and oxidative stress / R. M. Babiak, A. P. Cam-pello, E. G. Carnieri, M. B. Oliveira // Cell. Biochem. Funct. 1998. — Vol. 16, № 4. — P. 283 — 293.
  158. Monoketocholate can decrease transcellular permeation of methotrexate across Caco-2 cell monolayers and reduce its intestinal absorption in rat / G. Chen, J. P. Fawcett, M. Mikov, I. G. Tucker // J. Pharm. Pharmacol. 2009. -Vol. 61, № 7.-P. 953 -959.
  159. Moscow, J. A. Methotrexate transport and resistance // Leuk. Lymphoma. -1998. Vol. 30, № 3−4. — P. 215 — 224.
  160. N-acetylcysteine ameliorates methotrexate-induced oxidative liver damage in rats / A. Cetinkaya, E. Bulbuloglu, E. B. Kurutas, B. Kantarceken // Medical, science monitor. 2006. — Vol. 12, № 8. — P. 274 — 278.
  161. Neves, C. The network of methotrexate toxicity / C. Neves, R. Jorge, A. Bar-celos // Acta. Reumatol. Port. 2009. — Vol. 34, № 1. — P. 11 — 34.
  162. Oxidants selectively reverse TGF-P suppression of proinflammatory mediator production / Y. Q. Xiao, C. G. Freire-dc-Lima, W. J. Janssen, K. Morimoto, D. Lyu, D. L. Bratton, P. M. Herson // J. Immunol. 2006. — Vol. 176, № 2. -P. 1209- 1217.
  163. Parke, D. The rolt of the cytochrome P 450 in the dctoxication and activation of drugs and other chemicals / D. Parke, C. Ioannides, D. Lewis // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1991. — Vol. 69. — P. 537 — 549.
  164. Perry, M. C. Chemotherapeutic agents and hepatotoxicity // Semin. Oncol. -1992.-P. 551 -553.
  165. Pessaux, P. Chemotherapy’s hepatotoxicity: what is the impact on surgery?. //J. Chir (Paris). 2010. — Vol. 147, № 1.-P.7- 11.
  166. Pharmacokinetics of glucarpidase in subjects with normal and impaired renal function / M. Phillips, W. Smith, G. Balan, S. Ward // J. Clin Pharmacol.2008. Vol. 48, № 3. — P. 279 — 284.
  167. Pharmacokinetics of intravenous methotrexate in mutant nagase analbumine mic rats / Y. H. Choi, Sk. Bal, J. M. Oh, S. O. Kim, M. G. Lee // Biopharm. and Drug Dispos. 2007. — Vol. 28, № 7. — P. 385 — 392.
  168. Pharmacological and toxicological studies of Drimys angustifolia Miers. (Winteraceae) / A. Witaicenis, E. F. Roldao, L. N. Seito, N. P. Rocha, L. C. Di Stasi // J. Ethnopharmacol. 2007. — Vol. 111, № 3. — P. 541 — 546.
  169. Prolonged survival of renal allograft in rats by methotrexate-albumin conjugates as immunosuppressive therapy / H. Hickstein, D. Wolff, J. Stange, E.
  170. Frei, G. Hartung // Transplant. Proc. 2008. — Vol. 40, № 10. — P. 3725 -3727.
  171. Purdom-Dickinson, S. H. Translational control of Nrf2 protein in activation of antioxidant response by oxidants / S. E. Purdom-Dickinson, E. V. Sheveleva, H. Sun, Q. M. Chen // Mol. Pharmacol. 2007. — Vol. 72, №. 4. — P. 1074 -1081.
  172. Ramadori, G. Effects of systemic chemotherapy on the liver / G. Ramadori, S. Cameron //Ann. Hepatol. 2010. — Vol. 9, № 2. — P. 133 — 143.
  173. Regulation of CYP2 B6 in primary human hepatocytes by prototypical inducens / S. R. Faucette, H. Wang, G. A. Hamilton, D. Gilbert, S. Jolley
  174. S., C. Lindley // Drug Metab. Dispos. 2004. — Vol. 32, № 3. — P. 348 — 358.
  175. Rodrignez-Frias, E. A. Cancer chemotherapy I: hepatocellular injury / E. A. Rodrignez-Frias, W. M. Lee // Clin Liver Dis. 2007. — Vol. 11, № 3. — P. 641 — 662.
  176. Rubbia-Brandt, L. Hepatic lesions induced by systemic chemotherapy for digestive cancer // Ann Pathol. 2010. — Vol. 30, № 6. — P. 421 — 425.
  177. Saravanan, R. Impact of ursolic acid on chronic ethanol-induced oxidative stress in the rat heart / R. Saravanan, V. Pugalendi // Pharmacol. Repts. -2006a. Vol. 58, № 1. — P. 41 — 47.
  178. Saravanan, R. Protective effect of ursolic acid on ethanol-mediated experimental liver damage in rats / R. Saravanan, P. Viswanathan, K.V. Pugalendi // Life Sci. 20 066. — Vol. 78, № 7. — P. 713 — 718.
  179. Schmiegelow, K. Advances in individual prediction of methotrexate toxicity: a review // Br. J. Haematol. 2009. — Vol. 146, № 5. — P. 489 — 503.
  180. Shihata, S. Chemistry and cancer preventing activities of ginserg saponins and some related triterpenoid compounds // J. Korean Med. Sci. 2001. — Vol. 16.-P. 28−37.
  181. Six new triterpenoid saponins from the leaves of Ilex oblonga and their inhibitory activities against TMV replication / Z.-J. Wu, M.-A. Ouyang, C.-Z. Wang, Z.-K. Zhang // Chem. and Pharm. Bull. 2007. — Vol. 55, № 3. — P. 422 — 427.
  182. Sporn, M. B., Chemoprevention of cancer / M. B. Sporn, N. Suh // Carcinogenesis. 2000. — Vol. 21. — P. 525 — 530.
  183. Stankiewicz, A. Effects of amifostine on liver oxidative stress caused by cyclophosphamide administration to rats / A. Stankiewicz, E. Skrzydlewska, M. Makiela // Drug Metabol Drug Interact. 2002 — Vol. 19, № 2. — P. 67 — 82.
  184. Suppression of the hydrazine-induced formation of megamitochondria in the rat liver by alpha-tocopherol / J. Antosiewicz, Y. Nishizawa, X. Liu, J. Usuku-ra, T. Wakabayashi // Exp Mol Pathol. 1994 — Vol. 60, № 3 — P. 173 — 187.
  185. The effect of 10 triterpenoid compounds on experimental liver injury in mice / J. Liu, Y. Liu, Q. Mao, S. D. Klaassen // Fundam. Appl. Toxicol. 1994. -Vol. 22, № l.-P. 34−40.
  186. The synthetic triterpenoids, CDDO and CDDO-imidazolide, are potent inducers of heme oxygenase-1 and Nrf2/ARE signaling / K. Liby, T. Hock, M. M.
  187. Yore, N. Suh, A. E. Place, R. Risingsong, C. R. Williams, D. B. Royce, T. Honda, Y. Honda, G. W. Gribble, N. Hill-Kapturczak, A. Agarwal, M. B. Sporn // Canccr Res. 2005. — Vol. 65, № 11. — P. 4789 — 4798.
  188. Toxic liver injuries-a current view on pathogenesis. Part I. / M. Bak, M. Czer-niak, M. Kicinska-Krogulska, A. Michowicz, A. Krakowiak // Med Pr. -2011.-Vol. 62.-P. 47−55.
  189. Tree new triterpenoids from Peganum nigellastrum / Z. Z. Ma, Y. Hano, T. Nomura, Y. J. Chen // J. Nat. Prod. 2000. — Vol. 63. — P. 390 — 392.
  190. Trinchiery, G. Interleukin-12 and the regulation of innate resistance and adaptive immunity // Nature Rev Immunol. 2003. — Vol. 3. — P. 133 — 148.
  191. Triterpenoid saponins from acacia victroriae (Bentham) decrease tumor cell proliferation and induce apoptosis / K. Mujoo, V. Haridas, J. J. Hoffmann, G.
  192. A. Wachter, L. K. Hutter, Y. Lu, M. E. Blake, G. S. Jayatilake, D. Bailey, G.
  193. B. Mills, J. U. Guhermann // Cancer Res. Port. 2001. — Vol. 61. — P. 5486 -5490.
  194. Triterpenoid saponins from Androsace umbellata and their anti-proliferative activities in human hepatoma cells / Y. Wang, D. Zhang, W. Ye, Z. Yin, K. P. Fung, S. Zhao, X. Yao // Planta Med. 2008. — Vol. 74, № 10. — P. 1280 -1284.
  195. Trypanocidal activity of triterpenes from Arrabidaea triplinervia and derivatives / J. P. V. Leite, A. B. Oliveira, J. A. Lombardi, J. D. S. Filho, E. Chiari // Biol, and Pharm. Bull. 2006.-Vol. 29, № 11. — P. 2307 — 2308.
  196. Two Bioactive Pentacyclic Triterpene Esters from the Root Bark of Hibiscus syriacus / Y. Bong-Sik, R. In-Ja, L. In-Kyoung, P. Kyu-Hwan, C. Dong-Ho, H. Kyou-Hoon, Y. Ick-Dong // J. Nat. Prod. 1999. — Vol. 62, № 5. — P. 764 -766.
  197. Vincent, H. K. Oxidative stress and potential interventions to reduce oxidative stress in overweight and obesity / H. K. Vincent, K. E. Innes, K. R. Vincent // Diabetes, Obesity Metab. 2007. — Vol. 9, № 6. — P. 813 — 839.
  198. Wu, C.-A. Induction of cell deatch by saponin and antigen delivery purpose / C.-A. Wu, Y.-W. Yang // Pharmaccutinal Res. 2004. — Vol. 21. — P. 271 -277.
  199. Xu, C. Induction of phase 1, II and III drug metabolism/transport by xenobio-tics / C. Xu, C. Y Li., A. N. Kong // Arch. Pharm. Res. 2005. — Vol. 28, № 3.- P. 249−268.
  200. Yokooji, T. Site-specific contribution of proton-coupled folate transporter / haem carrier protein 1 in the intestinal absorption of methotrexate in rats / T. Yokooji, N. Mori, T. Murakami // J. Pharm. Pharmacology. 2009. — Vol. 61,№ 7.-P.911 -918.
  201. Zimecki, M. Effect of methotrexate on the immune response in selected experimental models / M. Zimecki, J. Artym // Postepy Hig. Med. Dosw. 2004. -№ 58. — P. 226 — 235.
Заполнить форму текущей работой