Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Индукция роста, образования антибиотиков и морфологической дифференцировки при межвидовых взаимодействиях бактерий

Диссертация: Индукция роста, образования антибиотиков и морфологической дифференцировки при межвидовых взаимодействиях бактерий
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Была выделена грамотрицательная палочковидная бактерия (штамм № 35), для которой наблюдалось достоверное увеличение числа КОЕ при концентрации А-фактора в среде культивирования в диапазоне 2−7 мкг/мл. Полученные данные согласуются с тем, что при высеве почвенного образца на агаризованную среду, содержащую А-фактор в концентрации 2, 7, 28 мкг/мл, достоверное увеличение общего числа КОЕ прокариот… Читать ещё >

Индукция роста, образования антибиотиков и морфологической дифференцировки при межвидовых взаимодействиях бактерий (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Коммуникативные сигналы бактерий
      • 1. 1. 1. Реакции кворум-сенсинга у грамположительных бактерий
      • 1. 1. 2. Реакции кворум-сенсинга у грамотрицательных бактерий
      • 1. 1. 3. Кворум-сенсинг в многоклеточных образованиях
      • 1. 1. 4. Межвидовые взаимодействия микроорганизмов
      • 1. 1. 5. Бактериальные цитокины
    • 1. 2. Эндогенные регуляторы развития актиномицетов
      • 1. 2. 1. Пептидные ауторегуляторы
      • 1. 2. 2. Низкомолекулярные ауторегуляторы различной химической природы
      • 1. 2. 3. А-фактор
        • 1. 2. 3. 1. Открытие А-фактора
        • 1. 2. 3. 2. Регуляторы группы А-фактора
        • 1. 2. 3. 3. Влияние А-фактора на морфогенез и биосинтетические процессы у различных мутантов 8&ер (отусе$ цгдаяз
        • 1. 2. 3. 4. Генетическое детерминирование А-фактора
        • 1. 2. 3. 5. Молекулярные основы действия А-фактора
  • ГЛАВА 2. Материалы и методы
    • 2. 1. Штаммы микроорганизмов
    • 2. 2. Образцы почвы
    • 2. 3. Обработка образцов почвы суспензиями бактерий
    • 2. 4. Питательные среды
    • 2. 5. Условия культивирования и хранения микроорганизмов
    • 2. 6. Микроскопирование
    • 2. 7. Описание выделенного штамма №
    • 2. 8. Определение антимикробной активности
    • 2. 9. Биологический метод выявления регуляторов группы А-фактора
    • 2. 10. Методы математической статистики
  • ГЛАВА 3. Результаты работы и обсуждение
    • 3. 1. Влияние грамположительных бактерий на выделение актиномицетов из почвы
      • 3. 1. 1. Изменение соотношения числа КОЕ актиномицетов и немицелиальных прокариот после добавления суспензий Staphylococcus aureus и Leuconostoc mesenteroides к образцам почв
      • 3. 1. 2. Антимикробная активность и таксономическое положение выделенных культур актиномицетов
    • 3. 2. Поиск А-факторзависимых вариантов в популяциях актиномицетов
      • 3. 2. 1. Поиск продуцентов регуляторов группы А-фактора и тест-штаммов, реагирующих на внесение А-фактора изменением морфологических признаков среди морфологических вариантов актиномицетов разных видов
      • 3. 2. 2. Влияние А-фактора на А-факторзависимые варианты S. griseus, «S. citreofluorescens», «S. viridovulgaris subsp. albomarinus'''
    • 3. 3. Действие А-фактора на прорастание спор стрептомицетов
    • 3. 4. Действие А-фактора на число КОЕ почвенных прокариот на агаризованной среде
      • 3. 4. 1. Влияние различных концентраций А-фактора на число КОЕ прокариот в посевах образца почвы
      • 3. 4. 2. Изменение соотношения числа КОЕ актиномицетов и немицелиальных прокариот под действием А-фактора в посевах образца почвы
      • 3. 4. 3. Соотношение грамположительных и грамотрицательных бактерий, образующих КОЕ на среде, содержащей А-фактор, и среде, не содержащей данного регулятора
      • 3. 4. 4. Влияние А-фактора на грамотрицательные бактерии
      • 3. 4. 5. Характеристика выделенной грамотрицательной бактерии (штамм № 35), отвечающей на внесение А-фактора в среду культивирования возрастанием числа КОЕ и изменением морфологических признаков
      • 3. 4. 6. Антимикробная активность штамма №
      • 3. 4. 7. Влияние на число КОЕ различных концентраций А-фактора в среде культивирования в зависимости от возраста штамма №

В настоящее время все больше возрастает интерес к существующим в природе межвидовым взаимоотношениям представителей царства прокариот. Кроме теоретического значения, изучение механизмов «общения», посредством которых осуществляются коммуникативные взаимодействия между различными группами бактерий, является актуальной задачей для специалистов в области микробиологии, биотехнологии, медицины. Для синтеза факторов вирулентности, антибиотиков, формирования биопленок бактерии часто используют реакции кворум-сенсинга. Расшифровка механизмов таких реакций открывает новые возможности для предупреждения и лечения болезней, вызванных микробными агентами, а также позволяет оценить всю сложность комплекса межвидовых бактериальных взаимодействий, имеющих место в природных местах обитания микроорганизмов.

Целью работы было выявление межвидовых взаимодействий бактерий, влияющих на рост, образование антибиотиков и изменение морфологической дифференцировки.

Для выполнения основной цели данной работы были поставлены следующие конкретные задачи:

1. Изучить воздействие искусственно привнесенных грамположительных бактерий на выделение из образцов почвы актиномицетов.

2. На основе коллекции аспорогенных, олигоспоровых и нокардиоподобных вариантов актиномицетов провести поиск продуцентов и штаммов-реципиентов регуляторов группы А-фактора.

3. Изучить роль регулятора дифференцировки & %г1хет А-фактора в прорастании спор стрептомицетов.

4. Исследовать А-фактор в качестве регулятора численности колониеобразующих единиц актиномицетов и немицелиальных прокариот при высеве почвы на агаризованную среду.

5. Определить у выделенных штаммов прокариот способность к проявлению антимикробной активности.

Новизна полученных результатов. впервые обнаружено увеличение численности актиномицетов с возрастанием доли редких родов в ответ на внесение в почву суспензии штамма ЬеисопоМос теьеЫегопЗе* УКРМ В-4177- среди штаммов, относящихся к трем видам стрептомицетов: «V. ^гаег», «8. сИгеоАиогеясет», «5. уп’иклпй^аг^н зиЬэр. аЪотагтт» впервые обнаружены А-фактор-зависимые варианты, восстанавливающие способность к морфологической дифференцировке под воздействием А-фактора, выявлена новая функция актиномицетного ауторегулятора А-фактора, заключающаяся в стимуляции прорастания спор стрептомицетоввпервые изучено воздействие А-фактора на сообщество почвенных прокариот и показано стимулирующее действие этого регулятора как на актиномицеты, так и на грамотрицательную бактерию.

Основное положение диссертационной работы, выносимое на защиту, заключается в том, что соотношение выделяемых из почвы микроорганизмов разных таксономических групп, их рост и дифференцировку можно регулировать добавлением суспензии клеток ЬеисопояЮс mesenteroid. es к образцам почвы, а также внесением актиномицетного регулятора дифференцировки — А-фактора в среду культивирования. 8.

Автор выражает глубокую признательность за предоставление темы, руководство и ценные консультации члену-корреспонденту РАМН, профессору Ю. В. Дуднику, за постоянное внимание, ценные консультации и руководство кандидату биологических наук О. В. Ефременковой, за большую помощь в работе научным сотрудникам И. Г. Сумаруковой и В. Ф. Васильевойза помощь в таксономическом определении выделенных культур O.A. Галатенко и Л. П. Тереховойза плодотворное сотрудничество в изучении химической природы и выделении антибиотиков профессору Г. С. Катрухе, кандидатам биологических наук В. А. Зенковой, И. В. Толстых, М. И. Резниковойза помощь в электронной микроскопии и фотографии к.б.н. О. В. Камзолкиной и к.б.н. Э. Р. Переверзевойза помощь в изучении признаков штамма № 35 к.б.н. И. Н. Скворцовой.

ВЫВОДЫ.

1. Внесение в образцы почвы суспензий грамположительных бактерий Staphylococcus aureus и Leuconostoc mesenteroides позволяет повысить число выделяемых актиномицетов. Внесение в образцы почвы суспезии L. mesenteroid. es можно рекомендовать в качестве метода выделения из почвы актиномицетовпродуцентов антибиотиков, активных в отношении грамположительных бактерий, включая метициллинрезистентный стафилококк.

2. Среди 28 слабодифференцированных вариантов 23 видов актиномицетов обнаружено три А-факторзависимых штамма, принадлежащие к трем видам стрептомицетов: S. griseus, «S. citreofluorescens», «S. viridovulgaris subsp. albomarinus», причем для максимального проявления признаков (интенсивность развития воздушного мицелия, спорообразование и выделение растворимого пигмента) необходимо вносить различные концентрации А-фактора: так, для S. giiseus КЗ826 требовалось 10 мкг/мл, для «S. citreofluorescens» К3506 — 1 мкг/мл, для «S. viridovulgaris subsp. albomarinus» К3865 — 1 мкг/мл. Данные штаммы могут быть использованы в качестве тест-штаммов при поиске регуляторов группы А-фактора.

3. Обнаружена новая регуляторная функция А-фактора, заключающаяся в стимулировании прорастания спор штаммов стрептомицетов — продуцентов регуляторов группы А-фактора. При внесении в среду культивирования А-фактора в концентрации 10 мкг/мл прорастание спор штамма S. griseus 773 увеличивается на 67%. Меньшие концентрации не оказывают воздействия на число растущих колоний. Для штамма S. coelicolor A3(2) концентрация А-фактора, вызывающая увеличений числа проросших спор на 75%, была равна 1 мкг/млменьшие концентрации, так же,.

95 как и концентрация 10 мкг/мл, были не эффективны. В условиях данного эксперимента не было обнаружено какого-либо действия А-фактора на прорастание спор & ауегтШИз 1СМ5070 — стрептомицета, не образующего регуляторов группы А-фактора.

4. При посеве образца почвы на среду, содержащую А-фактор, число КОЕ прокариот возрастает более чем в 1,6 раз при концентрации А-фактора в среде, составляющей 2 мкг/мл, и более чем в 2,1 раза при концентрации А-фактора в среде, составляющей 7 мкг/мл и не меняется на среде, содержащей А-фактор в концентрации 28 мкг/мл.

5. Из образца почвы выделена бактерия (штамм № 35), относящаяся к грамотрицательным палочкампри концентрации А-фактора в среде, составляющей 2 мкг/мл и 7 мкг/мл число КОЕ данной бактерии возрастало примерно в два разаА-фактор в концентрации 28 мкг/мл не оказывал влияния на образование КОЕ бактерии. Кроме изменения в числе КОЕ, на среде с А-фактором наблюдались также и морфологические изменения колоний выделенной грамотрицательной бактерии, а именно: уменьшение размеров колоний и длины бактериальных клеток.

6. В процессе работы были выявлены продуценты антибиотиков: шартрезина, митрамицина, фузидина. Вещество, обладающее антимикробной активностью, было выделено также из грамотрицательной бактерии штамм № 35, уровень продуктивности антибиотика не зависел от внесения А-фактора в среду.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

С целью изучения индукции роста, образования антибиотиков и морфологической дифференцировки при межвидовых взаимодействиях бактерий была проведена серия опытов.

На первом этапе работы было показано, что предварительное внесение в почву суспензий грамположительных бактерий S. aureus INA 761 и L. mesenteroides VKPM В-4177 приводит к увеличению в посевах доли актиномицетов, являющихся продуцентами антибиотиков, эффективных в отношении грамположительных бактерий. Использование суспензии L. mesenteroides VKPM В-4177 для внесения в образцы почвы можно рекомендовать в качестве метода выделения из почвы актиномицетов — продуцентов антибиотиков.

Ввиду того, что антимикробная активность у суспензий штаммов S. aureus INA 761 и L. mesenteroides VKPM В-4177 не была обнаружена, влияние предварительного внесения в почву суспензий бактерий на выделение актиномицетов, по-видимому, нельзя объяснить их антибиотическим действием на почвенные микроорганизмы. По-видимому, внесение клеток бактерий инициирует отбор микроорганизмов с наиболее выраженными антагонистическими свойствами, т. е. актиномицетов. В пользу последнего предположения говорит тот факт, что обнаруженное нами увеличение численности актиномицетов после внесения в почву суспензии грамположительных бактерий происходило преимущественно за счет возрастания количества штаммов, активных в отношении грамположительных тест-бактерий. Однако увеличение количества выделенных культур актиномицетов произошло в разной степени под воздействием лейконостока и стафилококка, поэтому не исключен и тот факт, что внесенные бактерии могут выделять специфические вещества, стимулирующие прорастание спор актиномицетов.

На втором этапе работы, при изучении взаимодействия актиномицетов на уровне популяции, было обнаружено влияние сигнальной молекулы актиномицетов — А-фактора на минорные варианты и варианты основного типа в популяциях актиномицетов. Среди 28 слабодифференцированных вариантов 23 видов актиномицетов обнаружено три А-факторзависимых штамма, принадлежащие к трем видам стрептомицетов: ^'/.ш/я, сИгео/1иогехсет", «5. пг1(1оп11%апъ зиЬэр. аНютаг’тия». Эти штаммы могут быть использованы в качестве тест-штаммов при поиске регуляторов группы А-фактора.

При изучении действия А-фактора на прорастание спор у вариантов основного типа обнаружена новая регуляторная функция А-фактора, заключающаяся в стимуляции прорастания спор штаммов стрептомицетов — продуцентов регуляторов группы А-фактора (5. ^¡-вет 773 и? соеИсо1ог АЗ (2)).

При изучении влияния А-фактора на минорные варианты в популяциях актиномицетов и на прорастание спор вариантов основного типа выявлена закономерность, выражающаяся в том, что описываемые эффекты наблюдаются только в определенном диапазоне концентраций А-фактора, что подтверждается и другими исследованиями при изучении влияния А-фактора на биосинтез антибиотиков [Анисова с соавт., 1984; Бушуева ссоавт., 1991].

На третьем этапе работы при изучении влияния А-фактора на почвенное микробное сообщество было отмечено достоверное увеличение общего числа КОЕ прокариот при определенных концентрациях А-фактора в среде. Такое увеличение произошло за счет статистически достоверного увеличения числа КОЕ немицелиальных бактерий. Нами не было обнаружено достоверного увеличения числа КОЕ актиномицетов при внесении в среду культивирования А-фактора, в то время как число КОЕ немицелиальных бактерий практически удвоилось при посеве образца почвы на агаризованную среду, содержащую А-фактор в концентрации 2мкг/мл и.

7мкг/мл. Таким образом, концентрационно-зависимая закономерность действия А-фактора была выявлена и при изучении роли А-фактора в сообществе почвенных микроорганизмов.

Была выделена грамотрицательная палочковидная бактерия (штамм № 35), для которой наблюдалось достоверное увеличение числа КОЕ при концентрации А-фактора в среде культивирования в диапазоне 2−7 мкг/мл. Полученные данные согласуются с тем, что при высеве почвенного образца на агаризованную среду, содержащую А-фактор в концентрации 2, 7, 28 мкг/мл, достоверное увеличение общего числа КОЕ прокариот наблюдалось при содержании А-фактора в среде в концентрации 2 и 7 мкг/мл. Вероятно, такое увеличение числа КОЕ происходило за счет стимуляции А-фактором образования колоний штамма № 35, хотя нельзя исключить и существование других бактерий, отвечающих на внесение А-фактора увеличением числа КОЕ.

Тот факт, что в данной работе впервые было обнаружено действие А-фактора на бактерию, не относящуюся к группе актиномицетов, дает повод полагать, что данный регулятор может быть отнесен к сигнальным молекулам межвидового общения между грамположительными и грамотрицательными бактериями. До настоящего времени был охарактеризован только один такой регулятор — фактор AI-2, который обнаружен и у грамположительных и у грамотрицательных бактерий [Miller, Bassler, 2001]. Это вещество по строению отличается от А-фактора. Фактор АГ-2 представляет собой борный диэфир фуранозы [Chen et al., 2002]. Молекулы гомосеринлактонов, при помощи которых осуществляются внутривидовые коммуникативные взаимодействия у грамотрицательних бактерий, по своему строению напоминают молекулу А-фактора, поэтому нельзя исключить тот факт, что выделенная грамотрицательная бактерия (штамм № 35) может воспринимать А-фактор как некий аналог собственной гомосеринлактонной сигнальной молекулы, возможно, играющей важную роль в регуляции морфологической дифференцировки у данного микроорганизма. Это предположение подтверждается данными, представленными в недавно опубликованной работе [O'Toole, 2003]: белок, играющий важную роль в кворум-зависимом процессе дифференцировки (формировании биопленки) у P. aeruginosa, является гомологом белка AdpA, необходимого для формирования воздушного мицелия у S. griseus [Ohnishi et al., 1999].

В пользу выдвинутого предположения также говорит тот факт, что действие А-фактора на изменение морфологической дифференцировки и увеличение числа КОЕ на агаризованной среде у штамма № 35 проявляется при добавлении очень низких концентраций А-фактора, по величине сходными с концентрациями, необходимыми для проявления признаков у А-факторзависимых минорных вариантов актиномицетов (раздел 3.2.2.) и для стимуляции прорастания спор у вариантов актиномицетов основного типа (раздел 3.3.).

У грамотрицательной бактерии — патогена растений Erwinia carotovora под контролем гомосеринлактонного ауторегулятора находится синтез антибиотика карбапенема [Winans, Bassler, 2002]. Попытки индуцировать синтез данного антибиотика путем внесения в среду культивирования Е. carotovora различных концентраций А-фактора не привели к желаемому результату [Chhabra et al., 1993].

Результаты, свидетельствующие о том, что представитель грамотрицательных бактерий (штамм № 35) отвечает изменением морфологических признаков и увеличением числа КОЕ на внесение в среду культивирования актиномицетного ауторегулятора А-фактора, еще раз указывают на сложность и многообразие взаимоотношений микроорганизмов в сообществах, определяющихся влиянием множества факторов.

Выявленные в данной работе закономерности могут служить основой биотехнологических процессов, связанных с выделением из природных мест обитания микроорганизмов — продуцентов антибиотически активных веществ.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.О., Воскун С. Е., Панова Л. А., Смирнов С. Г. Гетерогенность популяции Escherichia coll в процессе индуцированного автолиза // Микробиология 1990. Т.59. С.283−288.
  2. Анисова J1.H., Блинова И. Н., Ефременкова О. В., Козьмин Ю. П., Оноприенко В. В., Смирнова Г. Н., Хохлов А. С. Регуляторы развития Streptomyces coelicolor А3(2) // Изв. АН СССР. Сер. Биол. 1984. С. 98−108.
  3. Л.Н., Блинова И. Н., Ефременкова О. В., Смирнова Г. Н., Хохлов А. С. Регуляторы дифференцировки Streptomyces cyaneofuscatus II Микробиология 1984. Т. 53. С. 890−895.
  4. Определитель бактерий Берджи.В.2-х т. Пер. с англ./ Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уилльямса. М.: Мир 1997. 798с.
  5. О.А., Ефременкова О. В., Горин С. Е., Бартошевич Ю. Э. Влияние низкомолекулярных регуляторов на биосинтез рифамицина В штаммами Amycolatopsis mediterranei // Антибиотики и химиотерапия 1991. Т. 36. № 3. С. 11−15.
  6. Т.И., Товарова И. И., Хохлов А. С. Влияние А-фактора на уровень аденилатов у Streptomyces griseus II Прикладная биохимия и микробиология 1983. Т. 19. Вып.З. С, 356−361.
  7. О.И., Товарова И. И., Хохлов А. С. Активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы различных штаммов Actinomyces streptomycini И Биоорган, химия 1975.Т.1.№ 7. С. 985−990.
  8. О.И., Товарова И. И., Хохлов А. С. Механизм вызываемой А-фактором инактивации глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы в Actinomyces streptomycini И Биоорган, химия 1978. Т.4. № 11. С. 1538−1546.
  9. Г. Ф. Лекции по антибиотикам М.:МЕДГИЗ 1959. 355 с.
  10. Ф. Методы общей бактериологии М.:Мир 1983. Т.1 536 с.
  11. Т.Д., Стефанишин Е. Е., Полищук JI.B., Ефременкова О. В., Анисова Л. Н. Красильникова О.Л., Хохлов A.C., Мацелюх Б. П. Идентификация плазмидной ДНК у Streptomyces griseus II Микробиологический журнал 1982. Т.44. Вып. 4. С.3−8.
  12. Т.Г., Лысак Л. В., Зенова Г. М., Звягинцев Д. Г. Бактериальное разнообразие почв: оценка методов, возможностей, перспектив // Микробиология 2001. Т. 70. № 2. С. 149−167.
  13. В.И., Пронин C.B., Эль-Регистан Г.И., Капрельянц A.C., Митюшина Л. Л. Образование покоящихся рефрактивных клеток Bacillus cereus под влиянием ауторегуляторного фактора// Микробиология 1982. Т.51. № 1. С.77−81.
  14. Ю.В. Перспективы создания препаратов, активных в отношении устойчивых форм бактерий // Антибиотики и химиотерапия 1999. Т. 44. № 12. С. 15−18
  15. Н.С. Микробы антагонисты и биологические методы определения антибиотической активности. М.: Высшая школа, 1965. С. 20−43.j
  16. О.В., Анисова Л. Н., Бартошевич Ю. Э. Регуляторы дифференциации актиномицетов (обзор) // Антибиотики и медицинская биотехнология 1985. № 9. С. 687 707.
  17. О.В., Анисова Л. Н., Камзолкина О. В., Дмитриева C.B., Горин С. Е., Бартошевич Ю. Э. Образование регуляторов типа А-фактора представителями рода Micromonospora // Антибиотики и медицинская биотехнология 1987. Т.32. № 9. С.643−648.
  18. О.В., Анисова Л. Н., Хохлов A.C. Выделение различными актиномицетами веществ, вызывающих споруляцию у аспорогенного мутанта Streptomyces griseus II Микробиология 1979. Т.48. № 6. С.999−1003.
  19. О.В., Анисова Л. Н., Хохлов A.C. Гибридизация А-факторнедостаточных мутантов Streptomyces griseus путем слияния протопластов // Антибиотики и химиотерапия 1988. Т.ЗЗ. № 10. С.723−726.
  20. О.В., Анисова J1.H., Хохлов A.C. Новый тип регуляции спорообразования и биосинтеза стрептомицина у вторичных мутантов Streptomyces griseus И Известия АН СССР, сер. биологическая. 1981. № 4. С. 573−582.
  21. О.В., Анисова Л. Н., Хохлов A.C. Регуляция спорообразования у мутантов Streptomyces galbus II Микробиология 1980. Т.49. № 1. С.88−92.
  22. Калакуцкий J1.B., Агре Н. С. Развитие актиномицетов. М.: Наука, 1977. 287 с.
  23. Е.М., Оноприенко В. В., Плинер С. А., Сойфер B.C., Хохлов A.C. Синтез рацемата А-фактора биорегулятора из Streptomyces griseus {Actinomyces streptomycini). Биоорганическая химия 1977. Т.З. С. 424−426.
  24. Е.М., Плинер С. А., Сойфер B.C., Оноприенко В. В., Балашова Т. А., Розынов Б. В. Хохлов A.C. Строение А-фактора-биорегулятора из Streptomyces griseus II Биоорган, химия 1967. Т.2. С. 1142−1147.
  25. Е.Я., Товарова И. И., Хохлов A.C. Изучение образования А-фактора различными актиномицетами // Микробиология 1976. Т. 45. № 2. С. 302−305.
  26. В.Д. Гомологические ряды наследственной изменчивости актиномицетов // Антибиотики 1973. № 7. С. 579−586.
  27. В.Д. Изучение изменчивости актиномицетов продуцентов антибиотиков и других биологически активных веществ //Антибиотики 1972. № 7. С. 666 671.
  28. Ли Ю.В., Лихачева A.A., Алферова И. В. Применение сукцессионного подхода для выделения из почвы антибиотически активных культур актиномицетов // Почвоведение 2002. № 8. С. 997−1001.
  29. A.B., Ботвинко И. В., Цавкелова Е. А. Колониальная организация и межклеточная коммуникация у микроорганизмов // Микробиология 2000. Т.69. № 3. С.309−327.
  30. А. А Феромоны компетентности у бактерий // Микробиология 2001. Т.70. № 1. С.5−14.
  31. К.Д., Кривошеин Ю. С. Микробиология, М.: Медицина 1980. С. 94−101.
  32. Ю.М., Гинцбург АЛ. Цитокины возможные активаторы роста патогенных бактерий // Вестник РАМН 2000. № 1. С. 13−17.
  33. И.Ю., Ботвинко И. В. Межклеточный матрикс Bacillus subtilis 271: полимерный состав и функции // Микробиология 1998. Т.67. № 1. С.55−60.
  34. В.А., Эль-Регистан Г.И., Романова А. К., Дуда В. И. Характеристики ауторегуляторного фактора ai, вызывающего автолиз клеток Pseudomonas carboxydoflava и Bacillus cerens II Микробиология 1983. T.52. № 1. C.33−38.
  35. C.B. Метициллинрезистентные стафилококки II Антибиотики и химиотерапия 1995. Т. 40. № 11−12. С. 57−69.
  36. Е.П. Трегалоза, стресс и анабиоз // Микробиология 1992. Т. 61. № 5. С.739−753.
  37. A.C. Низкомолекулярные микробные ауторегуляторы. М.: Наука, 1988. 270 с.
  38. Дж. А. Бактерии как многоклеточные организмы // В мире науки 1988. № 8. С 46−54
  39. Alloing G., Martin В., Granadel G., Claveris J. Development of competence in Streptococcus pneumoniae: pheromone autoinduction and control of quorum-sensing by the oligopeptide permease//Mol. Microbiol. 1998. V.9. № 1. P. 75−83.
  40. Barcina I., Lebaron P., Vives-Rego J. Survival of allochthonous bacteria in aquatic systems: a biological approach // FEMS Microbiol. Ecol. 1997. V.23. P. 1−9.
  41. Bassler B., Wright M., Silverman M. Multiple signalling systems controlling expression of luminescence in Vibrio harveyi: sequence and function of genes encoding a second sensory pathway //Mol. Microbiol. 1994. V.13. P. 273−286.
  42. Bermudez L., Petrofsky M. Regulation of the expression of Mycobacterium avium complex proteins differs according to the environment within host cells II Immunology and Cell Biology. 1997. V.75. P.35−40.
  43. Beumer R., Devries J., Rombouts F. Campylobacter jejuni nonculturable coccoid cells // International Journal of Food Microbiology 1992. V.15. P. 153−163.
  44. Branda S., Gonzalez-Pastor J., Ben-Yehuda S., Losick R., Kolter R. Fruiting body formation by Bacillus subtilis II Proc. Natl. Acad. Sci. 2001. V.98. № 20. P.11 621−11 626.
  45. Byers J., Lucas C., Salmond G., Welch M. Nonenzymatic turnover of an Erwinia carotovora quorum-sensing signaling molecule//J. Bacteriol. 2002. V. 184. № 4. P. 1163−1171.
  46. Calfee M., Coleman J., Pesci E. Interference with Pseudomonas quinolone signal synthesis inhibits virulence factor expression by Pseudomonas aeruginosa // Proc. Natl. Acad. Sci. 2001.V.98. № 20. P. 11 633−11 637.
  47. Cellini L., Hui P., Leung K., Chow J., Kwok F., Ng C. Coccoid Helicobacter pylori not culturable in vitro reverts in mice // Microbial Immunology 1994. V.38. P.843−850.
  48. Chen X., Schauder S., Potier N., Dorsselaer A., Pelczer I., Bassler B., Hughson F. Structural identification of a bacterial quorum sensing signal containing boron // Nature 2002. V. 415. P. 545−549.
  49. Chhabra S., Stead P., Bainton N., Salmond G., Stewart G., Williams P., Bycroft B. Autotegulation of carbapenem biosynthesis in Erwinia carotovora by analogues of N-(3-oxohexanoyl)-. homoserine lactone// J. Antib. 1993. V.46. № 3. P.441−454.
  50. Conway B.-A., Venu V., Speert D. Biofilm formation and acyl-homoserine lactone production in the Burkholderici cepacia complex // J. Bacteriol. 2002. Y.184. № 20. P.5678−5685.
  51. Davies D., Parsek M., Pearson J., Iglewski B., Costerton J., Greenberg E. The involvement of cell-to-cell signals in the development of a bacterial biofilm // Science 1998. V.280. P.295−298.
  52. Domingue G., Ghoniem G., Bost K., Fermin C., Human, L. Dormant microbes in interstitial cystitis//J. Urology 1995. V. 153. P.1321−1326.
  53. Domingue G., Woody H. Bacterial persistence and expression of disease. // Clinical Microbiology Reviews 1997. V10. P.320−328.
  54. Dong Y., Wang L., Xu J., Zhang H, Zhang X., Zhang L. Quenching quorum-sensing-dependent bacterial infection by an A^-acyl homoserine lactonase //Nature 2001. V.411. P.813−817
  55. Dong Y., Xu J., Li X., Zhang L. AiiA, an enzyme that inactivates the acylhomoserine lactone quorum-sensing signal and attenuates the virulence of Erwinia carotovora // Proc. Natl. Acad. Sci. 2000.V.97. № 7. P.3526−3531.
  56. Duncan S., Glover L., Killham K., Prosser, J. Luminescence-based detection of activity of starved and viable but nonculturable bacteria // Appl. Environ. Microb. 1994. V.60. P. 13 081 316.
  57. Eritt I., Grafe U., Fleck W.F. A screening method for autoregulators of anthracycline-producing streptomycetes//Z. allg. Microbiol. 1982. Bd. 22. S. 91−96.
  58. Frias J., Olle E., Alsina M. Periodontal pathogens produce quorum sensing signal molecules//Infect. Immun. 2001. V.69. P. 3431−3434.
  59. Fuqua W.C., Winans S., Greenberg E. Quorum sensing in bacteria: the Lux R-Lux I family of cell density-responsive transcriptional regulators // J. Bacteriol. 1994. V.176. № 2. P. 269−275.
  60. Gallagher L., McKnight S., Kuznetsova M., Persci E., Manoil C. Functions required for extracellular quinolone signaling by Pseudomonas aeruginosa /1 J. Bacteriol. 2002. V.184. № 23. P.6472−6480.
  61. Gangadharam P. Mycobacterial dormancy // Tubercle Lung Disease 1995. V.76. P.477−479.
  62. Grafe U., Errit I., Fleck W. Evidence against a general role of NADP-glycohydrolase in differentiation of Streptomycesgriseus II J.Antib. 1981. V.34. № 10. P.1385−1387.
  63. Greenberg E., Winans S., Fuqua C. Quorum-sensing by bacteria // Ann.Rev. Microbiol. 1996. V.50. P.727−751.
  64. Gygi D., Rahmen M., Lai H., Carlson R., Guard-Petter J., Hughes C. A cell surface polysaccharide that facilitates rapid population migration by differentiated swarm cells of Proteus mirabilis // Mol.Microbiol. 1995. V.17. P. l 167−1175.
  65. Handwerger S., Pucci M.J., Volk K.J., Liu J., Lee M.S. Vancomycin-resistant Leuconostoc mesenteroides and Lactobacillus casei synthesize cytoplasmic peptidoglycan precursors that terminate in lactate // J. Bacteriol. 1994. V. 176. № 1. P. 260−264.
  66. Hara O., Beppu T. Mutants blocked in streptomycin production in Streptomyces griseus the role of A-factor // J. Antib. 1982. V.35. № 3. P.349−358.
  67. Hara O., Horinouchi S., Vozumi T., Beppu T. Genetic analysis of A-factor synthesis in Streptimyces coelicolor A3(2) and Streptomyces griseus II J. Gen. Microbiol. 1983. V. 129. № 9. P.2939−2944.
  68. Hardie D. Biochemical messengers hormones, neurotransmitters and growth factors. // Chapman and Hall. 1991. V.34. P. 124−133.
  69. Hastings J., Nealson K. Bacterial bioluminescence // Annu. Rev. Microbiol. V.31. P.549−595.
  70. He X., Chang W., Pierce D., Seib L., Wagner J., Fuqua C. Quorum-sensing in Rhisobium sp. strain NGR234 regulates conjugal transfer (tra) gene expression and influences growth rate//J. Bacteriol. 2003. V.185. № 3. P.809−822.
  71. Heim S., Lleo M., Bonato B., Guzman C., Canepari P. The viable but nonculturable state and starvation are different stress responses of Enterococcus faeccilis, as determined by proteome analysis//J. Bacteriol. 2002. V.184. № 23. P.6739−6745.
  72. Hirsch C., Yoneda T., Averiii L., Ellner J., Toossi Z. Enhancement of intracellular growth of Mycobacterium tuberculosis in human monocytes by transforming growth-factor-b-1 //J. Infection Disease 1994.V.170. P.1229−1237.
  73. Hoang T., Schweizer H. Characterization of Pseudomonas aeruginosa enoyl-acyl carrier protein reductase (FabI): a target for the antimicrobial triclosan and its role in acylated homoserine lactone synthesis // J. Bacteriol. 1999. V. 181. P.5489−5497.
  74. Hopwood D. Genetic recombination in Streptomyces coelicolor II J. Gen. Microbiol. V.16. P.2−3.
  75. Horinouchi S., Kumada Y., Beppu T. Unstable genetic determinant of A-factor biosynthesis in streptomycin-producing organisms: cloning and characterization // J. Bacteriol. 1984. V. 158. № 2. P.481−487.
  76. Horinouchi S., Suzuki H., Nishiyama M., Beppu T. Nucleotide sequence and transcriptional analysis of the Streptomyces griseus gene (afsA) responsible for A-factor biosynthesis//! Bacteriol. 1989. V.171. № 2. P. 1206−1210.
  77. Hosoya H., Matsuoka T., Hosoya N., Tkahashi T., Kosaka T. Presence of a Tetrahymena growth promoting activity in fetal bovine serum. // Development Growth Differ. 1995. V.37. P.347−353.
  78. Jacobson M., Burne J., King M., Miyashita T., Reed J., Raff M. Bcl-2 blocks apoptosis in cells lacking mitochondrial DNA. // Nature 1993. V.28. P.365−379.
  79. Ji G., Beavis R., Novick R. Bacterial interference caused by autoinducing peptide variants// Science 1997. V.276. P. 2027−2030.
  80. Jiang M., Shao M., Perego M., Hoch J. Multiple histidine kinases regulate entry into stationary phase and sporulation in Bacillus subtilis /7 Mol. Microbiol. 2000. V.38. P. 535 542.
  81. Kohler T., Van Delden C., Curty L., Hamzehpour M., Pechere J.-C. Overexpression of the MexEF-OprN multidrug efflux system affects cell-to cell signaling in Pseudomonas aeruginosa // J. Bacteriol. 2001. V.183. № 18. P.5213−5222.
  82. Kaplan H., Piamann L. Myxococcus xanthus cell density-sensing system required for multicellular development//FEMS Microbiol. Lett. 1996. V. 139. P.89−95.
  83. Kato J., Suzuki A., Yamazaki H., Ohnishi Y., Horinouchi S. Control by A-factor of a metalloendopeptidase gene involved in aerial mycelium formation in Streptomyces griseus II J. Bacteriol. 2002. V.184. № 21. P.6016−6025.
  84. Kell D., Kaprelyants A., Graefen A. Pheromones, social-behavior and the functions of secondary metabolism in bacteria. // Trends In Ecology & Evolution 1995. V. 10. P. 126−129.
  85. Khomenko A. The variability of Mycobacterium tuberculosis in patients with cavitary pulmonary tuberculosis in the course of chemotherapy // Tubercle Lung Disease 1987. V.68. P.243−253.
  86. Kinoshita H., Tsuji T., Ipposhi H., Nihira T., Yamada Y. Characterization of binding sequences for butyrolactone autoregulator receptors in streptomycetes // J. Bacteriol. 1999. V.181. № 16. P.5075−5080.
  87. Kolenbrander P., Andersen R, Blehert D., Egland P., Foster G., Palmer R. Communication among oral bacteria // Microb. and Molecular Biology Rev. 2002. Y.66. № 3. P. 486−505.
  88. Kusters J., Gerrits M., Van Strijp J., Vandenbroucke G., Grauls C. Coccoid forms of Helicobacter pylori are the morphologic manifestation of cell death // Infection and Immunity 1997. V.65. P.3672−3679.
  89. Leadbetter J., Greenberg E. Metabolism of acylhomoserine lactone quorum-sensing signals by Variovoraxparadoxus II J. Bacteriol. 2000. V.182. P.6921−6926.
  90. Lee S., Park S., Lee J., Yum D., Koo B., Lee J.-K. Genes encoding the A^-acyl homoserine lactone-degrading enzyme are widespread in many subspecies of Bacillus thuringiensis. //Appl. Environ. Microbiol. 2002. V.68. № 8. P.3919−3924.
  91. Levine J., Lukawski-Trubish D. Extraintestinal considerations in inflammatory bowel disease. // Gastroenterology Clinical North America 1995. V.24. P.633−646.
  92. Matson M., Armitage J., Hoch J., Macnab R. Bacterial locomotion and signal transduction // J. Bacteriol. 1998. V.180. № 5. P.1009−1022.
  93. Meighen E. Molecular biology of bacterial bioluminescence // Microbiol. Rev. 1991. V.55. № 1. P. 123−142.
  94. Miller M., BasslerB. Quorum sensing in bacteria// Annu. Rev. Microbiol. 2001. V.55. P. 165−199
  95. Mukamolova G., Kapreilyants A., Young D., Young M., Kell D. A bacterial cytokine // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V.95. P.8916−8921.
  96. Ohnishi Y., Kameyama S., Onaka H., Horinouchi S. The A-factor regulatory cascade leading to streptomycin biosynthesis in Streptomyces griseits: identification of a target gene of the A-factor receptor // Mol. Microbiol. 1999. V.34. P. 102−111.
  97. Onaka H., Ando N., Nihira T., Yamada Y., Beppu T., Horinouchi S. Cloning and characterisation of the A-factor receptor gene from Streptomyces griseus // J. Bacteriol. 1995. V. 177. № 21. P.6083−6092.
  98. Onaka H., Horinouchi S. DNA-binding activity of the A-factor receptor protein and its recognition DNA sequences // Mol. Microbiol. 1997. V.24. P.991−1000.
  99. Onaka H, Nikagawa T., Horinouchi S. Involvement of two A-factor receptor homologues in Streptomyces coelicolor A3(2) in the regulation of secondary metabolism and morphogenesis //Mol. Microbiol. 1998. V.28. P.743−753.
  100. Onaka H., Sugiyama M., Horinouchi S. A mutation at proline -115 in the A-factor receptor protein of Streptomyces griseus abolishes DNA-binding ability but not ligand-binding ability // J. Bacteriol. 1997. V.179. P.2748−2752.
  101. Otto M., Sussmuth R., Vuong C., Jung G., Gotz F. Inhibition of virulence factor expression in Staphylococcus aureus by the Staphylococcus epidermidis agr pheromone and derivatives// FEBS Lett. 1999. V.450. P.257−262.
  102. O’Toole G. To build a biofilm//J. Bacteriol. 2003. V.185. № 9. P.2687−2689.
  103. Parsek M., Greenberg P. Acyl-homoserine lactone quorum sensing in gram-negative bacteria: a signaling mechanism involved in associations with higher organisms // Proc. Natl. Acad. Sci. 2000. V.97. № 16. P.8789−8793.
  104. Pearson J., Delden C., Iglewski B. Active efflux and diffusion are involved in transport of Pseudomonas aeruginosa cell-to-cell signals II J. Bacteriol. 1999. V.181. P.1203−1210.
  105. Pestova E., Havarstein L., Morrison D. Regulation of competence for genetic transformation in Streptococcus pneumoniae by an auto-induced peptide pheromones and a two-component regulatory systems// Mol. Microbiol. 1996. V.21. № 4. P. 853−862.
  106. Revenchon S., Bouillant M., Salmond G., Nasser W. Integration of the quorum-sensing system in the regulatory networks controlling virulence factor synthesis in Envinia chrysanthemii II Mol. Microbiol. 1998. V.29. P. 1407−1418.
  107. Salmond G., Bycroft B., Stewart C., Williams P. The bacterial «enigma»: cracking the code of cell-cell communication//Mol. Microbiol. 1995. V.16. № 4. P.615−624.
  108. Stock J.B., Ninfa A.J., Stock A. N. Protein phosphorilation and regulation of adaptive responses in bacteria//Microbiol. Rev. 1989. V.53. № 4. P.450−490.
  109. Takano E., Chakraburtty R., Nihira T., Yamada Y., Bibb M.J. A complex role for the gamma-butyrolactone SCB1 in regulating antibiotic production in Streptomyces coelicolor A3(2) //Mol.Microbiol. 2001. V.41. № 5. P.1015−1028. '
  110. Ueda K., Oinuma K., Ikeda G., Hosono K., Ohnishi Y., Horinouchi S., Beppu T. Amis, an extracellular peptidic morphogen in Streptomyces griseus // J. Bacteriol. 2002. V. 184. № 5. P.1488−1492.
  111. Van de Sande K., Pawlowski K., Czaja I., Wieneke U., Schell J. Modification of phytohormone response by a peptide encoded by ENOD40 of legumes and a nonlegume. // Science 1996. V.273. P.370−373.
  112. Waldburger C, Gonzalez D., Chambliss G. H Characterization of a new sporulation factor in Bacillus subtilis // J. Bacteriol. 1993. V.175. P.6321−6327.
  113. Wayne L. Dormancy of Mycobacterium tuberculosis and latency of disease // European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases 1994. V. 13. P.908−914.
  114. Wayne L., Hayes L. An in vitro model for sequential study of shiftdown of Mycobacterium tuberculosis through 2 stages of nonreplicating persistence // Infection and Immunity 1996. V.64. P.2062−2069.
  115. Wilson D.J., Xue Y., Reynolds A., Sherman D. Characterization and analysis of the Pik D regulatory factor in the picromycin biosynthetic pathway of Streptomyces venezuelae II J. Bacteriol. 2001. V.183. № 11. P.3468−3475.
  116. Winans S.C., Bassler B.L. Mob psychology // J. Bacteriol. 2002. V.184. № 4. P. 873 883.
  117. Woods D., Jones A., Hill P. Interaction of insulin with Pseudomonas pseudomalle II Infection and Immunity 1993. V. 61. p.4045−4050.
  118. Writh R., Muscholl A., Wanner G. The role of pheromones in bacterial interactions // Trends Microbiol. 1996. V.4. № 3. P.96−103.
  119. Xu H., Roberts N., Singleton F., Attwell R., Grimes D., Colwell R. Survival and viability of nonculturable Escherichia coli and Vibrio hholerae in the estuarine and marine environment//Microbial Ecology 1982. V.8. P.313−323.
  120. Yamazaki H., Ohnishi Y., Horinouchi S. An A-factor-dependent extracytoplasmatic function sigma factor (oAdsA) that is essential for morphological development in Streptomyces griseus //J. Bacteriol. 2000. V.182. № 16. P.4596−4605.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!