Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Культура тканей in vitro короткостебельной мягкой и твердой пшеницы

Диссертация: Культура тканей in vitro короткостебельной мягкой и твердой пшеницы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Для повышения эффективности методов культуры пыльников и незрелых зародышей in vitro использовать генотипы пшеницы, содержащие ген Rht-Blc. В качестве дополнительного маркера морфогенетической активности каллусов мягкой пшеницы использовать пролиферативный антиген инициалей. Применять (-Н) гидротартрат в концентрации 1 и 10 мг/л для модификации индукционной питательной среды Линсмайера-Скуга для… Читать ещё >

Культура тканей in vitro короткостебельной мягкой и твердой пшеницы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ДЕТЕРМИНАЦИЯ АНДРОГЕНЕЗА, СОМАТИЧЕСКОГО ЭМБРИОИДОГЕНЕЗА И ОРГАНОГЕНЕЗА IN VITRO ЯРОВОЙ МЯГКОЙ И ТВЕРДОЙ ПШЕНИЦЫ
    • 1. 1. Преимущества и проблемы использования методов культуры пыльников и незрелых зародышей in vitro в селекции яровой мягкой и твердой пшеницы
    • 1. 2. Влияние генотипа на андрогенез в культуре пыльников in vitro яровой мягкой и твердой пшеницы
    • 1. 3. Влияние генотипа на соматический эмбриоидогенез и органогенез в культуре незрелых зародышей in vitro яровой мягкой и твердой пшеницы
    • 1. 4. Влияние Rht-генов на комплекс хозяйственно-биологических и морфофизиологических признаков яровой мягкой и твердой пшеницы
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ, МЕТОДИКА И УСЛОВИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТОВ
    • 2. 1. Изучаемый материал
    • 2. 2. Методика и условия проведения экспериментов
      • 2. 2. 1. Изучение влияния генетической системы Rht на андрогенез в культуре пыльников in vitro яровой мягкой и твердой пшеницы
      • 2. 2. 2. Изучение влияния генетической системы Rht на соматический эмбриоидогенез и органогенез в культуре незрелых зародышей in vitro яровой мягкой и твердой пшеницы
  • ГЛАВА 3. АНДРОГЕНЕЗ В КУЛЬТУРЕ ПЫЛЬНИКОВ IN VITRO У ЛИНИЙ ЯРОВОЙ МЯГКОЙ И ТВЕРДОЙ ПШЕНИЦЫ, РАЗЛИЧАЮЩИХСЯ АЛЛЕЛЯМИ Rht-ГЕНОВ
    • 3. 1. Влияние Rht-генов на андрогенез в культуре пыльников in vitro яровой мягкой и твердой пшеницы
    • 3. 2. Технологические аспекты культивирования пыльников in vitro яровой мягкой и твердой пшеницы

Характерной особенностью селекции последнего десятилетия является использование методов культуры тканей in vitro, в том числе культуры пыльников и незрелых зародышей. Этими методами создан ряд сортов важнейших сельскохозяйственных культур, в том числе яровой мягкой пшеницы. Но широкому вовлечению данных методов в селекционный процесс препятствуют имеющиеся у них ограничения. До сих пор не создано технологии, позволяющей получать растения-регенеранты в массовом количестве у любых генотипов. На эффективность культивирования тканей in vitro влияет большое количество факторов, из которых наиболее важным, и в тоже время наименее изученным, является генотип донорных растений.

Научная новизна исследований заключается в том, что впервые изучено влияние генов Rht-Blb, Rht-Blc и Rhtl4 в генофоне мягкой и твердой пшеницы на эффективность культивирования пыльников и незрелых зародышей in vitro. Впервые выявлена связь высокомолекулярного маркера пролифера-тивного антигена инициалей (ПАИ) с морфогенетическими процессами в соматических каллусах яровой мягкой пшеницы. Изучена росторегулирующая и морфогенетическая активность гидротартратов пирролидиния «1385», «1386», «1387» in vivo и in vitro у пшеницы.

Целью исследований являлось совершенствование методов культуры пыльников и незрелых зародышей для использования в селекционном процессе пшеницы. Для достижения поставленной дели определены следующие задачи:

— изучить влияние системы Rht-генов на культуру тканей in vitro короткосте-бельной мягкой и твердой пшеницы;

— определить роль предобработок колосьев донорных растений химическими и физическими факторами в эффективности гаплопродукции in vitro;

— исследовать влияние гидротартратов пирролидиния «1385», «1386», «]387» на морфогенетическую активность соматических каллусов мягкой пшеницы- 5.

— изучить возможность использования ПАИ в качестве маркера морфогенеза в культуре незрелых зародышей мягкой пшеницы.

Основными положениями, выносимыми на защиту являются:

— роль генетической системы Rht в культуре тканей in vitro пшеницы;

— оптимизация технологических аспектов культивирования тканей in vitro пшеницы;

— возможность использования ПАИ в качестве дополнительного маркера морфогенеза в культуре тканей in vitro пшеницы.

Научная и практическая значимость работы заключается в выявлении роли Rht-генов в культуре тканей in vitro пшеницы, что позволяет более целенаправленно подбирать генотипы с повышенной регенерационной способностью. Показано, что использование традиционной холодовой предобработки донорных растений не является обязательным приемом для переключения микроспор с гаметофитного на спорофитный путь развития. Предложено использовать представленную модификацию метода культуры соматических тканей in vitro на основе введения (+) гидротартрата [1,5-диметил-2(1-окси-3-пропил)пирролидиния], в состав инициальной питательной среды в биотехнологических и селекционных исследованиях по пшенице. Рекомендуется применять метод ПАИ-диагностики для контроля морфогенетической активности каллусной ткани пшеницы.

106 ВЫВОДЫ:

1. Установлена роль системы Rht-генов в культуре тканей in vitro мягкой и твердой пшеницы. Влияние Rht-генов на этапы культивирования тканей in vitro различно по степени и направлению и зависит от уровня плоидности генотипа.

2. В генофоне мягкой пшеницы существенный положительный эффект на все этапы андрогенеза in vitro оказывает ген Rht-Blc. Ген Rht-Blb достоверно увеличивает выход растений-регенерантов, а ген Rhtl4 оказывает существенное отрицательное влияние на показатели «выход морфогенных пыльников» и «выход новообразований».

3. В генофоне твердой пшеницы ген Rht-Blb не влияет на этапы культивирования пыльников in vitro, а ген Rhtl4 оказывает положительное влияние на показатели «выход регенерантов, по отношению к количеству морфогенных пыльников» и «выход регенерантов, по отношению к количеству новообразований».

4. В культуре незрелых зародышей in vitro в генофоне мягкой пшеницы ген Rht-B 1 b не влияет на регенерационную способность каллусов и уменьшает выход морфогенных каллусов в первом пассаже. Ген Rht-Blc существенно увеличивает выход морфогенных каллусов на инициальной питательной среде и в процессе пассирования, способствует поддержанию морфогенетиче-ской активности каллусов в процессе пассирования и увеличивает выход растений-регенерантов во втором пассаже. Ген Rhtl4 не влияет на регенерационную способность каллусов, но оказывает положительное влияние на формирование морфогенных каллусов.

5. В культуре незрелых зародышей in vitro в генофоне твердой пшеницы гены Rht-Blb и Rhtl4 не влияют на регенерационную способность каллусов, но увеличивают выход морфогенных каллусов в некоторых пассажах.

6. Ген Rht-Blc положительно влияет на гаплоидном и диплоидном уровне на морфогенез в культуре тканей in vitro мягкой пшеницы.

7. Предобработка донорных растений пониженной положительной температурой не является обязательным индуктором переключения микроспор с гаметофитного на спорофитный путь развития.

8. Пролиферативный антиген инициалей может использоваться в качестве маркера морфогенетической активности каллусов мягкой пшеницы, позволяющего выявлять генотипы, обладающие повышенной регенерационной способностью в культуре тканей in vitro.

9. У мягкой пшеницы изученные гидротартраты пирролидиния обладают росторегулирующей и морфогенетической активностью. Эти вещества не обладаю самостоятельной дедифференцирующей способностью в отношении тканей пшеницы.

10. В культуре незрелых зародышей мягкой пшеницы in vitro (-Н) гидро-тартрат [1,5-диметил~2(1-окси-3-пропил)пирролидиния] в концентрации 1 и 10 мг/л в составе индукционной питательной среды повышает регенерацион-ную способность каллусов на 52,7%.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

Для повышения эффективности методов культуры пыльников и незрелых зародышей in vitro использовать генотипы пшеницы, содержащие ген Rht-Blc. В качестве дополнительного маркера морфогенетической активности каллусов мягкой пшеницы использовать пролиферативный антиген инициалей. Применять (-Н) гидротартрат [1,5-диметил-2(1-окси-3-пропил)пирро~ лидиния] в концентрации 1 и 10 мг/л для модификации индукционной питательной среды Линсмайера-Скуга для культивирования незрелых зародышей in vitro мягкой пшеницы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А. с. СССР № 1 036 306. Способ получения растений пшеницы из пыльцы в культуре пыльников. Авторы: В. М. Суханов, В. С. Тырнов, Н. Н. Салтыкова. Заявл. 01. 04. 1981 г. Опубл. 23. 08. 1983 г. Бюл. № 31.
  2. Т. Б. Хлебное зерно: Атлас. Л: Наука, 1987. 103 с.
  3. Л. А. Селекция полукарликовых сортов озимой мягкой пшеницы. // Дис. в виде науч. докл.. д-ра с.-х. наук. Краснодар: Краснодар, гос. агр. ун-т, 1998. 50 с.
  4. Р. Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. 272 с.
  5. Р. Г. Технология in vitro в сельском хозяйстве. // С.-х. биотехнология, 1983. № 5. С. 3−7.
  6. Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. / Учеб. пособие. М.: ФБК — ПРЕСС, 1999. 160 с.
  7. С. В. Влияние генотипа яровой мягкой пшеницы на андроге-нез в культуре in vitro. // Материалы Всесоюзной научной конференции посельскохозяйственной биотехнологии: Тезисы докл. Целиноград, 1991. С. 6162.
  8. А. Д. Иммунохимический анализ в изучении теоретических и практических проблем физиологии растений. // Новые исследования в физиологии растений. Под ред. Курсанова A. JI. -Москва: Наука. С. 47−61.
  9. А. Д., Курушина Н. В., Романовская О. И. Антигенный состав клеток апикальной меристемы ржи при торможении у нее ростовых процессов эгефоном. // Физиология растений, 1986. Т. 33. вып. 1. С. 116−119.
  10. А. Д., Чаянова С. С., Хебер У., Халлиер У. В., Шмитт Ю. Определение содержания ферментных белков с помощью иммунохимиче-ской тест-системы. // Физиология растений, 1979. Т. 26. вып. 1. С. 71−74.
  11. С. И., Волощук А. Д., Гирко В. С. Скрининг in vitro генотипов пшеницы на устойчивость к патогенным грибам. // Физиология и биохимия культурных растений, 1999. Т. 31. № 6. С. 453−460.
  12. В. Ю. Андрогенез in vitro у яровой мягкой пшеницы. // Ав-тореф. дис.. д-р биол. наук. Санкт-Петербург: БашГПИ, 2000. 48 с.
  13. В. Ю., Круглова Н. Н., Потапова Н. Н. Эмбриоидогенез в культуре пыльников пшеницы: цитолого-гистологические аспекты. Часть 1. ВНЦ УрО АН СССР. Уфа. 1992. 64 с.
  14. К. С. Карликовые пшеницы. // Пер. с англ. Н. Б. Ронис и Г. Л. Ячевской- Под ред. и с предисл. В. А. Пухальского. М.: Колос, 1984. 184 с.
  15. И. В. Проявление у гибридов F. мягкой пшеницы способности к андрогенезу in vitro. // II Российский симпозиум «Новые методы биотехнологии растений». Пущино, 1993. С. 195.
  16. И. В. Влияние обработки колосьев низкими температурами на андрогенез в культуре пыльников мягкой пшеницы. // Генетика, 1994. Т. 30. Прил. С. 32.
  17. В. П. Эффективность использования гаплоидов в гетерозисной селекции. // IV Съезд генетиков и селекционеров Украины. Киев, 1981. С. 134−135.
  18. Джое Лети, Калашникова Е. А. Влияние генотипа и условий культивирования зародышей яровой пшеницы на процессы каллусогенеза и морфогенеза. / Изв. ТСХА, 1998. № 3. С. 94−99.
  19. . А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований). 5-е изд., доп. и перераб. М.: Агро-промиздат, 1985. 351 с.
  20. П. А., Дьячук Т. И., Кудашкина С. В., Сафронова Н. Ф., Давыдов С. Д. Получение гаплоидных растений мягкой яровой пшеницы саратовских сортов в культуре пыльников. // Доклады ВАСХНИЛ, 1986. № 10. С. 34.
  21. Т. И., Дьячук П. А. Методические рекомендации по получению гаплоидных растений мягкой пшеницы в культуре пыльников. // Всероссийское отделение ВАСХНИЛ. НПО «Элита Поволжья». Москва, 1989. 36 с.
  22. Т. И., Столярова С. В., Носова О. Н. Культура пыльников межвидовых гибридов пшеницы и тритикале. // Биологические основы селекции / Саратов, 1991. С. 35−41.
  23. Т. И. Культура пыльников и формообразовательный процесс у яровой мягкой пшеницы. // Генетика, 1994. Т. 30. Прил. С. 45.
  24. К. В., Петрик С. А., Банникова В. П. Изменение антигенного состава зародышей пшеницы в ходе созревания и каллусогенеза. // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. С. 247 251.
  25. Калинин Ф. JL, Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Метод культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова думка, 1980. 399 с.
  26. М. К., Джардемалиев Ж. К., Бегалиев М. К., Курбаков О. И., Санабаева Б. А., Шевченко Е. Л. Культура пшеницы in vitro. // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М.: Наука, 1991. С. 252 256.
  27. М. К., Джардемалиев Ж. К. Культивируемые клетки пшеницы и кукурузы. Морфогенез и толерантность. // Физиология растений, 1994. Т. 41. № 6. С. 807−814.
  28. Ф. Г., Литвиненко Н. А., Пыльнева В. М. Длина колеоптиля у короткостебельных сортов и мутантов озимой мягкой пшеницы. // Докл. ВАСХНИЛ, 1978. № 7. С. 5−7.
  29. Л. Г., Лапикова В. П. Особенности роста и ауксинового обмена культуры ткани пшеницы разных сортов. // Сельскохозяйственная биология, 1984. № 3. С. 21−25.
  30. В. А., Лобачев Ю. В. Гены низкорослости и их проявление у пшеницы (обзор). // Сельскохозяйственная биология, 1988. № 2. С. 118−124.
  31. В. А., Цапайкин А. П., Лобачев Ю. В., Ишина Г. Ф. Компоненты урожая и качество зерна короткостебельной яровой твердой пшеницы в Поволжье. // Докл. ВАСХНИЛ, 1990. № 2. С. 2−4.
  32. Я. Селекция пшеницы. Теория и практика. М.: Колос, 1980. 384 с.
  33. Ю. В. Изогенный анализ короткостебельности пшеницы. // I Всесоюзное совещание «Использование изогенных линий в селекционно-генетических экспериментах»: Тезисы докл. Новосибирск: ИЦИГ, 1990, С. 63−65.
  34. Ю. В. Низкоросл ость и взаимосвязь селекционно-ценных признаков у пшеницы. // Вопросы генетики и селекции зерновых культур на Юго-Востоке России: Сб. науч. тр. Саратов: СХИ, 1993. С. 40−43.
  35. Ю. В. Влияние уровня илоидности пшеницы на эффекты гена низкорослости. // Генетика, 1994а. Т. 30. Прил. С. 90.
  36. Ю.В. Проблемы селекции пшеницы на короткостебельность. И Вопросы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур на Юго-Востоке Европейской части России: Сб. науч. тр. Саратов: СГСХА, 19 946. С. 11−17.
  37. Ю. В. Эффекты серии Rht-генов на высоту растений мягкой пшеницы. // Вопрсы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур на Юго-Востоке Европейской части России: Сб. науч. тр. Саратов: СГСХА, 1994 В, С. 57−61.
  38. Ю. В. Проявление Rht-генов у мягкой пшеницы в Поволжье и других регионах планеты. // Вопросы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур в Поволжье: Сб. науч. тр. Саратов: СГСХА, 1996. С. 29−32.
  39. Ю. В. Влияние одиннадцати Rht-генов на урожайность зерна яровой мягкой пшеницы. // Вопросы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур в Поволжье: Сб. науч. тр. Саратов: СГСХА, 1997. С. 21−24.
  40. Ю. В. Проявление генов низкорослости у яровых пшениц в Нижнем Поволжье. // Под общ. ред. и с предисл. В. А. Крупнова. Саратов: Сарат. гос. агр. ун-т, 2000. 264с. 100 табл., 39 рис., 425 библ.
  41. Ю. В., Крупнов В. А., Вьюшков А. А. Резервы повышения урожайности зерна у яровой мягкой пшеницы в Поволжье. II Вопросы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур в Поволжье: Сб. науч. тр. Саратов: СГСХА, 1997. С. 16−20.
  42. Ю. В., Крупнов В. А., Цапайкин А. П. Влияние гена Rhtl на урожайность яровой твердой пшеницы. // Вопросы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур в Поволжье: Сб. науч. тр. Саратов: СГСХА, 1997. С. 25−28.
  43. И. П. Использование генов короткостебельности в селекции яровой мягкой пшеницы. // Автореф. дис.. канд. с.-х. наук. СПб., 1996. 18 с.
  44. С. Ф., Игнатова С. А. Метод гаплоидии в селекции зерновых культур. // Сельскохозяйственная биология, 1983. № 5. С. 8−15.
  45. С. Ф., Ериняк Н. И. Связь признака карликовости у пшениц с особенностями проростания семян и полевой всхожестью. // Докл. ВАСХ-НИЛ, 1979. № ю. С. 6−8.
  46. С. Ф., Ериняк Н. И., Федченко В. П., Бунговский Р. П. Селекция интенсивных сортов озимой мягкой пшеницы полукарликового типа. // Селекция пшеницы на юге Украины: Сб. науч. работ. Одесса: ВСГИ, 1980. С. 19−32.
  47. В. С., Юсухно Т. В., Пастернак Т. П. Количественная оценка способности к каллусообразованию и регенерации трех сортов яровой пшеницы. // Современные методы и подходы в селекции растений. Кишенев: Инт генет. АН Респ. Молдова, 1991. С. 71−76.
  48. В. Н. Сорта яровой пшеницы саратовской селекции и методы их выведения. // Вестник сельскохозяйственной науки, 1977. № 12. С. 3239.
  49. А. Разведение и селекция растений: перспективная технология. // Бюл. Международного агентства по атомной энергии, 1985. Т. 27. № 4. С. 66−68.
  50. Н., Володарский А., Бутенко Р. Выявление антигенов-маркеров стеблевой меристемы табака. // Физиология растений, 1979. Т. 26. вып. 3. С. 479−484.
  51. Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии": Тезисы докл. Москва, 2000. С. 88−89.
  52. А. А. Аномальные спорогенные клетки возможный источник образования андроклинных регенерантов пшеницы. // 2 Съезд Вави-ловского общества генетиков и селекционеров: Тезисы докл. Санкт-Петербург. 2000. Т. 1. С. 157−158.
  53. М. В., Клочкова И. Н., Сорокин Н. Н. Насыщенные азотосо-держащие гетероциклы. // Химия гетероциклических соединений, 1990. № 2. С. 117−121.
  54. М. В., Сорокин Н. Н., Клочкова И. Н. Исследование стерео-химических особенностей оксиалкилпирролидинов методом спектроскопии13
  55. ЯМР С. // Химия гетероциклических соединений, 1993. № 1. С. 1201−1204.
  56. М. В., Клочкова И. Н., Суслова Т. А., Хатаева Л. Ю. Синтез на основе фурфурола новых гетероциклических соединений, обладающих росторегулирующей и иммунизирующей активностью. // Лесное хозяйство Поволжья. Саратов, 1999. вып. 3. С. 285−293.
  57. О. Н. Использование раствора 2,4-Д для повышения эффективности получения гаплоидов в культуре пыльников тритикале. // II Российский симпозиум «Новые методы биотехнологии растений»: Тезисы докл. Пущино, 1993. С. 160.
  58. Н. В., Кузеванов В. Я., Котова Л. Г., Саляев Р. К. Электрофо-ретическое изучение белков в морфогенных и неморфогенных каллусах яровой пшеницы. // Физиология и биохимия культурных растений, 1995. Т. 27. № 4. С. 254−258.
  59. Н. А., Гвоздев А. В. Использование изогенных линий для изучения каллусообразования и регенерации. II I Всесоюзное совещание «Использование изогенных линий в селекционно-генетических экспериментах»: Тезисы докл. Новосибирск, 1990. С. 96−98.
  60. П. А., Мавришева Е. Б., Михалевич Е. А. Реципрокные эффекты по отзывчивости к культивированию пыльников растений пшеницы. // Генетика, 1994. Т. 30. Прил. С. 113−114.
  61. Паушева 3. П. Практикум по цитологии растений. 4-е изд., перераб. и доп. М.: Агропромиздат, 1988. 271 с.
  62. Н. С., Дарканбаева Г. Т., Айташева 3. Г., Карабаев М. К. Биохимические изменения в культурах тканей растений. // Материалы Всесоюзной научной конференции по сельскохозяйственной биотехнологии: Тезисы докл. Целиноград, 1991. С. 35−36.
  63. Л. А. Реакция короткостебельных сортов мягкой пшеницы на обработку семян гибберелловой кислотой. // Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 1984. Т. 85. С. 50−56.
  64. Л. В. К генетике короткостебельности пшеницы. // Автореф. дис.. канд. биол. наук. Л., 1975. 22 с.
  65. И. И. Получение гаплоидных растений из пыльцевых зерен мягкой пшеницы ТгШсит аезйуит. // Труды по прикладной ботанике, ге-нетпке и селекции, 1980. Т. 67. № 3. С. 75−79.
  66. Пшеницы мира. / В. Ф. Дорофеев, Р. А. Удачин, JI. В. Семенова и др.- Под ред. акад. В. Ф. Дорофеева- Сосг. П. А. Удачин. 2-е изд., перераб. и доп. Л.: ВО Агропромиздат, Ленингр. отд-ние, 1987. 560 с.
  67. Л. В. Прилюк Л.В. Гормональный состав и реакция на гиббе-реллин короткостебельных пшениц различного происхождения. // Сельскохозяйственная биология, 1975. Т. 10. № 5. С. 750−755.
  68. Руководство по апробации полевых культур в Поволжье. / Под ред. Ю. Д. Козлова и В. А. Морозова. Саратов: Приволж. кн. изд-во, 1980. 120 с.
  69. Н. Ф., Ермолаева О. В., Дьячук Т. И. Технология получения гаплоидов ячменя методом культуры пыльников. // Вопросы генетики, селекции и семеноводства сельскохозяйственных культур в Поволжье: Сб. науч. работ. Саратов: СГСХА, 1997. С. 72−75.
  70. Ю. Е. Изучение генетической изменчивости признаков в связи с андрогенезом in vitro у мягкой пшеницы. // Автореф. дис.. канд. биол. наук. Санкт-Питербург, 1996. 18 с.
  71. Л. Ф., Бадаев Н. С., Швидченко В. К. Сомаклональная изменчивость в потомстве растений-регенерантов. // Материалы Всесоюзной научной конференции по сельскохозяйственной биотехнологии: Тезисы докл. Целиноград, 1991. С. 38−40.
  72. Л. В., Денисов Д. П. Размер колеоптиля в оценке высоты растений. // Селекция и семеноводство, 1975. № 6. С. 13−14.
  73. С. В. Культура тканей in vitro при межвидовой гибридизации пшеницы. // Автореф. дис.. канд. с.-х. наук. Саратов, 1998. 18 с.
  74. С. В., Дьячук Т. И. Метод культуры пыльников в межвидовой гибридизации пшеницы. // Материалы Всесоюзной научной конференциипо сельскохозяйственной биотехнологии: Тезисы докл. Целиноград, 1991. С. 54−55.
  75. В. М. К использованию андроклинных растений в селекции пшеницы. //Доклады ВАСХНИЛ, 1982. Т. 11. С. 7−8.
  76. Н. В. К природе короткостебельности пшеницы. // Селекция и семеноводство, 1985. № 3. С. 24−25.
  77. Л. Г., Козырева О. Г. Каллусогенез и регенерация в культуре тканей пшеницы. // Генетические механизмы устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды: Тезисы сообщ. Иркутск. Новосибирск, 1991. С. 110.
  78. Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка. М.- Мир, 1984. 512 с.
  79. В. Н., Евсеева Н. В., По дольный В. 3., Володарский А. Д. Изучение функционального состояния апикальных меристем пшениц, различающихся по отзывчивости к длине дня. // Доклады РАН, 1992. Т. 327. С. 284−288.
  80. П. П., Шкловский В. И. Использование метода культуры пыльников в ускорении селекционного процесса. // Доклады ВАСХНИЛ, 1982. № 9. С. 24−25.
  81. JI. В., Ермишин А. П. Изучение генетической регуляции кал-лусообразования и стеблевого органогенеза из каллуса у пшеницы. // 3-я Всесоюзная конференция «Культура клеток растений»: Тезисы докл., 1979. С. 180
  82. Шамина 3. Б. Мутагенез и селекция на уровне соматических клеток растений. // Биотехнология. М, 1984. С. 260−266.
  83. Н. В. Влияние условий выращивания донорных растений пшеницы на эффективность пыльниковой гаплопродукции. // Материалы всесоюзной научной конференции по сельскохозяйственной биотехнологии: тезисы докл. Целиноград, 1991. С. 57−58.
  84. Н. В. Особенности гаплопродукции разных генотипов пшеницы в культуре пыльников. // Автореф. дис.. канд. биол. наук. Одесса: ВСГИ, 1993. 19 с.
  85. Abd El-Maksound М. М., Bedo Zoltan. Genotypes and genotyp/medium interaction effects on androgenic haploid production in wheat (Triticum aestivum L.). //Cereal Res. Commun, 1993. 21. № 1. P. 17−24.
  86. Agache S., Bachelier В., de Buyser J., Henry Y., Snape J. Genetic analisis of anther culture response in wheat using aneuploid, chromosome substitution and translocation lines. // Theor. Appl. Genet., 1989. 77. P. 7−11.
  87. Agache S., de Buyser J., Henry Y., Snape J. W. Studies on the genetic relationship between anther culture and somatic tissue culture abilities in wheat. // Plant. Breed., 1988. 100. P. 26−33.
  88. Aldemita R. R., Lapata F. J. Anther cultur of rice: effect of radiation and media components on callus induction and plant regeneration. // Pap. 2nd
  89. FAO/JAEA Res.Coord. Meet. Use induced mutat. Connect. Haploids and heterosis cereals. Katowice, 1991. 19. № 1−2. P. 9−32.
  90. Allen S. G., Taylor G. A., Marthin J. M. Agronomic characterization of «Yogo» hard red winter wheat plant height isolines. // Agron. J., 1986. V. 78. № 1. P. 63−66.
  91. Allan R. E., Vogel O. A., Craddock J. C. Comparative response to gibberel-lic acid of dwarf, semi-dwarf and standart short tall winter wheat varieties. // Agron. J., 1959. V. 51. № 12. P. 737−740.
  92. Allan R. E., Vogel O. A., Peterson C. J. Inheritance and differentiation of semidwarf culm-length of wheat. // Crop Science, 1968. V. 8. № 6. P. 701−704.
  93. Baenzinger D. S., Kudirka D. T., Schaeffer G. W., Lazar M. D. The significance of doubled haploid variation. // Gene manipulation in plant improvement: XVI Stadler genet. Symp. Columbia, 1984. P. 385−414.
  94. Bajaj Y. P. S., Gosal S. S. Biotechnology in wheat improvement. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin., 1986. V. 2. P. 3−25.
  95. Bajaj Y. P. S. Somaclonal variation origin, induction, cryopreservation and implications in plant breeding. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin., 1989. V. 11. P. 3−48.
  96. Bajaj Y. P. S. Biotechnology in wheat breeding // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 3−23.
  97. Bebeli P. J. Cytoplasmic effects on tissue culture response in wheat. // Genet, and Breed., 1995. 49. № 3. p. 201−208.
  98. Ben Amer I. M, Borner A. Effect of cytoplasm on immature embryo culture in wheat (Triticum aestivum L.). // Cereal Res. Commun., 1997. 25. № 2. P. 135 140.
  99. Bernard S. In vitro androgenesis in hexaploid triticale determination of physical conditions increasing embryoid and green production. // Pflanzenzuch-tung, 1980. 85. P. 308−321.
  100. Brojevic K., Stanislav S. The use of in vitro anther culture techniques in a wheat breeding program. //Collog. impact, biotechnol. dans seeteur vrg. agroaliment. amicus, 1989//Bull. soc. bot. Tr. Aetual. bot., 1990. 137. № 3−4. P.145.
  101. Calfaneo M., Qiao Y. M. Anther culture in Italian wheat cultivars and Fi hybrids: genotype and culture medium effects on callus development and plantlet regeneration. // Genet, and Breed., 1991. 45. № 3. P. 197−205.
  102. Carman J. G. Improved somatic embryogenesis in wheat by partial simulation of the in-ovulo oxygen, growth-regulator and desiccation environments. // Planta, 1988. 175. P. 417−425.
  103. Carman J. G., Campbell W. F. Factors affecting somatic embryogenesis in wheat. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin., 1990. V. 13. P. 66−87.
  104. Chaemi. M., Sarrafi A. Pollen derived plants from Fi hexaploid/tetraploid wheats. // Genet, and Breed., 1994a. 48. № 4. P. 87−93.
  105. Chaemi M., Sarrafi A. The effect of the «D» genom from synthetic wheat lines in anther culture responses. // Plant Breed., 1994b. 112. № l.P. 76−79.
  106. Chaemi M., Sarrafi A., Morris R. Reciprocal substitutions analysis of em-bryoinduction and plant regeneration from anther culture in wheat (Triticum aestivum L.). //Genome, 1995. 38. № l.P. 158−165.
  107. Charmet G., Bernard S. Diallel analysis of androgenetic plant production in hexaploid triticale (Triticosecale. Wittmack). // Theor. Appl. Genet., 1984. 69. P. 55−61.
  108. Chi-Chang Chen, Hsin-Sheng Tsay, Chien-Rong Huang. Rice (Oryza sativa L.): factors affecting androgenesis. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin., 1986.2. P. 123−138.
  109. Choo T. M. Doubled haploids for studying the inheritance of quantitative characters. // Genetics, 1981. V. 99. № 3−4. P. 525−540.
  110. Chowdry A. R., Allan R. E. Inheritance of coleoptile lenght and seedling height and their relation to plant height of four winter wheat crosses. // Crop Science, 1963. V. 3.P. 53−58.
  111. Chowdry A. R., Allan R. E. Culm lenght and differential development of three foliar leaves of nea isogenic wheat lines. // Crop Sience, 1966. V. 6. P. 28−31.
  112. Chu Chih-Ching, Weng Ching-Chu. Establishment of an efficient medium for anther culture of rice through comparative experiment of nitrogen sources. // Sci. Sinica, 1985. № 5. P. 699−668.
  113. Chuang C. C., Ouang J. W. A set of Potato medium for wheat anther culture. // Proc. Symp. Plant Tissue Culture. Science Press, Peking, 1978. P. 51−56.
  114. Day A., Ellis T. Chloroplast DNA deletions associated with wheat plants regenerated from pollen: possible basis for maternal inheritance of chloroplasts. // Cell, 1984.39. P. 359−368.
  115. Dudits D., Bogre L., Gyorgyey J. Molecular and cellular approaches to the analysis of plant embryo development from somatic cells in vitro. // Cell Science, 1991. 99. P. 473−482.
  116. Dunford R., Walden R. M. Plastid genome structure and plastid-related tras-cipt levels in albino barley plant derived from anther culture. // Curr. Genet., 1991. 20. P. 339−347.
  117. Dunwell J. M. Anther and ovary culture. H Cereal tissue and cell culture. Pordrecht. Nijhoft, 1985. P. 1−44.
  118. Durvey N. L. Duobled haploid technology: an interactive model for germ-plasm enhancement. // Proceeding of the 9th International Wheat Genetics Symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. P. 148−151.
  119. Eapen S., Rao P. S. Plant regeneration from callus cultures of durum and emmer wheat. // Plant. Cell. Rep., 1982. 1. P. 215−218.
  120. Ekiz H., Konzak C. F. Preliminary diallel analysis of anther culture response in wheat (Triticum aestivum L.). // Plant Breed., 1994. 113. № 1. P. 47−52.
  121. Eudes F., Collin J., Rioux S., Comeau A. In vitro selection for resistance to Fusarium head blight in wheat anther culture. // Proceeding of the 9th International Wheat Genetics Symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. P. 5−7.
  122. Fang G. W., Liang H. M. Influence of cold pretreatment of the efficiency anther culture of rice. // Acta phytophysiol. sin., 1985. V. 11. № 4. P. 366−380.
  123. Flintham J. E., Gale M. D. The Tom Thumb dwarfing gene Rht3 in wheat. 2. Effects on height yield and grain quality. // Theor. and Appl. Genet., 1983. V. 66. № 3−4. P. 249−256.
  124. Gale M. D. High alpha-amylase-breeding and genetical aspects of the problem. // Cereal Ress. Commun, 1976. № 4. P. 231−243.
  125. Gale M. D., Hoogendoorn J., Salter A. M. The effect of dwarfing genes of wheat on cell size and cell numbers. //Ann. Rep. 1985. Plant breeding institute. Cambridge, 1986. P. 69.
  126. Gale M. D., Law C. N. Semi-dwarf wheats induced by monosomy and associated changes in gibberellin levels. //Nature, 1973. V. 241. P. 211−212.
  127. Gale M. D., Law C. N. Norin 10 based semidwarfism. // Genetic diversity in plant, 1977. 133 p.
  128. Gale M. D., Law C. N, Marshall G., Worland A. J. Location of GA insensi-tivity gene in Minister Dwarf. //EWAC Newsletter, 1974. № 4. P. 14−15.
  129. Gale M. D., Law C. N., Marshall G., Worland A. J. The genetic control of gibberellic acid insensitivity and coleoptile length in a «dwarf» wheat. // Heredity, 1975. V. 34. № 3. P. 393−399.
  130. Gale M. D., Marshall G. A. Dwarf wheat and gibberellins. // Proc. 4th Intern. Wheat Genet. Sympos. Columbia. USA, 1973a. P. 827−842.
  131. Gale M. D., Marshall G. A. Insensitivity to gibberellin in dwarf wheat. // Ann. Bot., 1973b. V. 37. № 152. P. 729−735.
  132. Gale M. D., Marshall G. The nature and genetic control of gibberellin insensitivity in dwarf wheat grain. //Heredity, 1975. V. 35. P. 55−65.
  133. Gale M. D., Marshall G., Gregory P. S., Quick J. S. Norin 10 semidwarfism in tetraploid wheat and associated effects on yield. // Euphytica, 1981. V. 30. № 2. P. 347−354.
  134. Gale M. D., Marshall G., Rao M. V. A classification of the Norin 10 and Tom Thumb dwarfing genes in British, Mexican, Indian and other hexaploid bread wheat varieties. //Euphytica, 1981. V. 30. № 2. P. 355−361.
  135. Greco B., Tanzarella O. A., Blanco A. Plant regeneration from leaf base callus in durum wheat (Triticum Durum Desf.). // Cereal Res. Commun., 1984. 12. P. 171−177.
  136. Han Hu, Shui Hao. The present status of investigation of plant tissue and cell culture in China. // Plant cell culture: results and perspectives. Amsterdam, 1980., P. 89−104.
  137. Handiger M. A., Heberle-Bors E. Pollen plant production in Triticum tur-gidum ssp. durum. // Gen. manipulat. plant breed.: Proc. Int. symp. Berlin, New York, 1986. P.303−305.
  138. Hansen N. J. P., Andersen S. B. Efficient production of doubled wheat plants by in vitro treatment of microspors with trifluralin or ARM. // Hypertension, 1998. 32. № 6. P. 401−405.
  139. Harada H., Sato T., Asaka D., Matsukawa I. Ladescale deletions of rise plastid DNA in anther culture. // Theor. Appl. Genet., 1991. 81. P. 157−161.
  140. He D., Ouyang J. Callus and plantlet formation from cultured wheat anthers at different development stages. // Plant Sci. Lett., 1984. 33. P. 71−79.
  141. He D. G., Tanner G., Scott K. J. Somatic embryogenesis and morphogenesis in callus derived from the epiblast of immature embryos of wheat (Triticum aesti-vum). //Plant Sci., 1986. V. 45. P. 119−124.
  142. He D. G., Yang Y. M., Dahler G., Scott K. J. A comparison of epiblast callus and scutellum callus induction in wheat: the effect of embryo age, genotype and medium. // Plant Sci., 1988. 57. P. 225−233.
  143. Heberle-Bors E. In vitro haploid formation from pollen: a critical review. // Theor. Appl. Genet., 1985. 71. № 3. P. 361−374.
  144. Heberle-Bors E., Reinert J. Androgenesis in isolated pollen cultures of Nicotiana tabacum dependence upon pollen development. // Protoplasma, 1979. 99. P. 237−245.
  145. Henry Y., de Buyser J., Guenegou T., Ory C. Wheat microspore embryogenesis during in vitro anther culture. // Theor. Appl. Genet., 1984. 67. № 2. P. 439−442.
  146. Henry Y., de Buyser J. Effect of the 1B/1R translocation on anther culture ability in wheat (Triticum aestivum L.). //Plant Cell Rep., 1985. 4. P. 307−310.
  147. Henry Y. De Buyser J. Wheat anther culture: agronomic performance of doubled haploid lines and the release of a new variety «Florin». // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. Y. 13. P. 283−352.
  148. Henry Y., Maircotte J. L., de Buyser J. Nuclear gametophytic genes from chromosome arm IRS improve regeneration of wheat microspore-derived embryos. // Genome, 1993. 36. № 5. P. 808−814.
  149. Henry Y., Vain P., de Buyser J. Genetic analysis of in vitro plant tissue culture responses and regeneration capacities. // Euphytica. 1994. 79. № 1−2. P. 45−58.
  150. Hu Han. Genetic stability and variability of pollen derived plants. // Int. Symp. «Plant cell culture in crop improvement». Calcutta, 1981. P. 145−157.
  151. Hu Han. Crop improvement by anther culture. // XV Int. Congr. Genet. New Delhi, 1983. P. 121−122.
  152. Hu Han. Wheat: improvement through anther culture. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1986. 2. P. 55−72.
  153. Hu H., Huang B. Application of pollen-derived plants to crop improvement. // Intern, review of cytology. Pollen: cytology and development, 1987. V. 107. P. 293−313.
  154. Hu Han, Xi Liying, Jing Lang, Wang Xingzhi. Production of aneuploids and heteroploids of pollen-derived plant. // Proc. V Int. congress plant tissue cell culture. Tokyo. 1982. Plant tissue, 1982. P. 421−424.
  155. Hu D., Tang Y., Yuan Z., Wang J. The induction of pollen sporophyte of winter wheat and the development of the new variety Jinghua no. 1. // Sci. Agric. Sin., 1983. l.P. 29−35.
  156. Hu Daofen, Yuan Zhendong, Tang Yunlian, Liu Tianping. Jinghua No. l A winter wheat variety derived from pollen sporophytic. // Scientia Sinica (series B), 1986. V. XXIX. № 7. p. 733−745.
  157. Huang B. Wheat anther culture: effect of temperature. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 403−415.
  158. Kaleikan E. K., Seara R. J., Gill B. S. Control of tissue culture response in wheat (Triticum aestivum L.). // Theor. Appl. Genet., 1989. 78. № 6. P. 783−787.
  159. Karp A., Maddock S. E. Chromosome variation in wheat plant regenerated from cultured immature embryos. // Theor. Appl. Genet., 1984. 67. № 2−3. P. 249 255.
  160. Kasha K. J., Hu T. C., Simon E., Oro R. Cytological development of wheattilmicrospores in culture. // Proceeding of the 9 International wheat genetics symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. V. 1. P. 152−155.
  161. Keller B., Winzeler H., Winzeler M., Fried D. M. Differential sensitivity of wheat embryos against extracts containing toxing of septoria nodorum: first steps towards in vitro selection. //Phytopathologi, 1994. 141. № 3. P. 23 240.
  162. Koba T., Simada T., Otani M. Diallels analysis of the performances on pollen embryo formation and plant regeneration in anther culture of common wheat. Triticum aestivum L. //Bull. Res. Inst. Agr. Resour., Ishikawa Agr. Coll., 1993. № 3.P. 8−13.
  163. Kondic A., Sesek S., Dencic S. Genetic aspects of in vitro wheat anther culture. // Proceeding of the 9th International wheat genetics symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. Y. 3. P. 195−197.
  164. Konzak C. F., Woo S. C., Dickey J. An induced dominant semidwarf plant height mutation in spring wheat. // Wheat Informat Service, 1969. V. 28. P. 10.
  165. Kudirka D. G., Schaeffer G. W. Wheat: genetic stability and variability. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1986. 2. P. 39−54.
  166. Kusmenko A. J., Djatchouk T. I. Saratovscaya 64, a new spring wheat variety created by combining conventional and haploid breeding. // Annual Wheat Newsletter., 1997 V. 43. P. 199−200.
  167. Lange C. E., Fedizzi L. C., Carvalho F. I. F., Tavares M. J. C. M. S., Dornelles L. C., Handel C. L. Genetic analysis of somatic embryogenesis and plant regeneration of wheat (Triticum aestivum L.). // Genet, and Breed., 1995. 49. № 3. P. 195−199.
  168. Larkin P. J., Ryan S. A., Brettell R. I. S., Scowcroft W. R. Heritable so-maclonal variation in wheat. // Theor. Appl. Genet., 1984. 67. P. 443−456.
  169. Lazar M. D., Collins G. B., Vian W. E. Genetic and environmental effects on the growth and differentiation of wheat somatic cell cultures. // Herd., 1983. 74. № 5. P. 353−357.
  170. Lazar M. D., Baenziger P. S., Schaeffer G. W. Combining abilities and heritability of callus formation and plantlet regeneration in wheat (Triticum aestivum L.) anther culture. // Theor. Appl. Genet., 1984. 68. P. 131−134.
  171. Lazar M. D., Schaeffer G. W., Baenziger P. S. Cultivar and culti-var/environment effects on the development of callus and polyhaploid plants from anther cultures of wheat. // Theor. Appl. Genet., 1984. 67. № 2−3. P. 273−277.
  172. Lobachev Yu. V. Influence of wheat ploidy level on quality and quantity effects of Rht-genes. // Proceeding of the 9th International wheat genetics symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. V. 2. P. 281−282.
  173. Machnovskaya M., Ignatova S., Litvinenko N., Babayants L. Anther culture in breeding common wheat for stress resistance. // Proceeding of the 9th International wheat genetics symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. V. 3. P. 198−199.
  174. Mackinnon C. Nabors M. W. Somatic embryogenesis from mature wheat embryos. // Proc. 3rd Int. symp. Plant cult, and tissue cult. «Tissue cult, forest and agric.». Knoxville, 1985. P. 334.
  175. Maheshwari S. C., Rashid A., Jyagi A. K. Haploids from pollen grains-retrospect and prospect. // Amer. J. Bot., 1982. 69. № 5. P. 865−879.
  176. Maheshwari S. C., Rashid A., Jyagi A. K., Charyal A. K. Recent advances in the physiology of induction of pollen haploids. // 3rd Int. symp. on haploidy- 1st Int. symp. on somatic cell genetics in crops. Beying. China, 1984. P. 2.
  177. Maddock S. E., Lancaster V. A., Risiott R., Franklin J. Plant regeneration from cultured immature embryos and inflorescences of 25 cultivars of wheat (Triticumaestivum). //Exp. Bot., 1983. 34. P. 915−926.
  178. Maroti M., Bognar J. Effect of toxic metals inhibiting the growth of plant callus tissues. //Act. agron. Hung., 1991. 40. № 1−2. P. 36−47,
  179. Mathias R. J., Fukui K. The effect of specific chromosome and cytoplasmic substitutions on the tissue culture response of wheat (Triticum aestivum) callus. // Theor. Appl. Genet., 1986. 71. P. 797−800.
  180. Mathias R. J., Atkinson E. In vitro expression of genes affecting whole plant phenotype the effect of Rht/Gai alleles on the callus culture response of wheat (Triticum aestivumL. em. Thell). // Theor. Appl. Genet., 1988. 75. P. 474−479.
  181. Mathias R. J. Factors affecting the establishment of callus cultures in wheat. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 24−45
  182. Matthews B. F., Schaeffer G. W. Agricultural applications of in vitro plant cultivation. // Advances in cell culture, 1982. V. 2. P. 267−303.
  183. Mcintosh R. A., Hart G. E., Devous K. M., Gale M. D., Rogers W. J. Catalogue of gene symbols for wheat. // Proceeding of the 9th International wheat genetics symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. V. 5. 236 p.
  184. Mcneal F. H., Berg M. A., Klages M. C. Evolution of semi-dwarf selections from a spring wheat breeding program. // Agron. J., 1960. V. 52. № 12. P. 710 712.
  185. Milkova V., Ivanov P., Aleksandrov T. Anther and callus culture responsiveness in several durum wheat genotypes (T. durum Desf.). // 5th International wheat conference. Ankara. Turkey. 1996. P. 380−381.
  186. Moieni A., Sarrafi A. Genetic analysis for haploid-generation responses of hexaploid-wheat anther cultures. // Plant breeding, 1995. 114. № 3. P. 247−249.
  187. Morris R., Schmidt J. W., Johnson V. A. Chromosomal location of a dwarfing gene in Tom Thumb wheat derivatives by monosomic analysis. // Crop science, 1972. V. 12. № 2. P. 247−249.
  188. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. // Physiol, plantamm, 1962. V. 15. P. 473−497.
  189. Nabors M. W. Stress resistant plants from cell culture. // Tissue culture for crops. Department of botany and plant pathology Colorado state university and agency for international development, 1982. 25 p.
  190. Nitsch C. Pollen culture a new technics for mass production of haploid and homozygous plant. // Haploids in higher plants — advances and potential. University of Guelph. Guelph, 1974. P. 123−135.
  191. Omelianchuk N. A., Dobrovolskaja O. B., Koval S. F., Shumny V. K. Plant regeneration from immature embryo-derived calli of wheat isogenic lines. // Heriditas, 1992. 116. № 3. P. 311−314.
  192. Orlov P. A., Mavrisheva E. B., Palilova A. N. Analysis of the effect of nucleus and cytoplasm interactions on the anther culture efficiency in wheat. // Cereal Res. Commun., 1997. 25. № 4. P. 883−890.
  193. Ou G., Wang W. C., Nguyen H. T. Inheritance of somatic embryogenesis and organ regeneration from immature embryo cultures of winter wheat. // Theor. Appl. Genet, 1989. 78. P. 137−142.
  194. Ouang J. W, Jhou S. M, Jia S. E. The response of anther culture to culture temperature in Triticum aestivum. //Theor. Appl. Genet., 1983. 66. P. 101−109.
  195. Ouyang S. E, Jia S. E., Jhou S. M, He D. G., Feng G. H. Genotypic variation in anther culture of wheat. // 3rd Int. symp. on haploidy- 1st Int. symp. on somatic cell genetics in crops. Beijing. China, 1984. P. 1.
  196. Ozias-Akins P, Vasil I. K. Plant regeneration from cultured immature embryos and inflorescences of Triticum aestivum L. (wheat): evidence for somatic embryogenesis. // Protoplasma, 1982. 110. P. 95−105.
  197. Palada-Nicolau Magdalena. Fenomene de morfogeneza si regenerare a plantei din calus la griusi orz. // Probl. genot. teor. siapl, 1981. 13. № 3. P. 145 174.
  198. Phillips I. D. J. Apical dominance. // Wilkins M. B. (ed.) Physiology of plant growth and development. Me Graw-Hill. New York, 1969. P. 165−202.
  199. Pauk J. Z., Kertesz B., Beke L., Bona M., Sosz C., Matuz J. New winter wheat variety: «GK Delibub» developed via combining conventional breeding and in vitro androgenesis. // Cereal Res. Commun., 1995. 23. P. 251−256.
  200. Picard E., de Buyser J., Henry Y. Technique de production d’haploids deble par culture d’antheres in vitro. II Selec. Franc., 1978. № 26. P. 25−37.
  201. Picard E. Significant improvement of androgenetic haploid and doubled haploid induction from wheat plant treated with a chemical hybridization agent. // Theor. Appl. Genet., 1987. 74 (3). P. 289−297.
  202. Piri Kh., Angeau C., Seilleur P. Amelioration des techniques androgeni gues par modification des conditions de crissance des plantes donneuses d antheres cher Triticum aestivum L. em. THEU. //Bull. rech. agron. Gembloux, 1989. 24. 2. P. 213−217.
  203. Piri Kh., Angeau C. Improved embryogenesis from anther culture of Triticum aestivum cv. Sabine in liquid medium. // (Pap.) Collog. impact, biotechnol. dans secteur veg agroaliment. Amiens. / Bull. Soc. bot. Tr. Actual, bot., 1990. 137. № 3−4. P. 134.
  204. Radley M. Comparison of endogenous gibberellins and response to applied gibberellin of some dwarf and tall that cultivars. // Planta., 1970. V. 92. P. 292 300.
  205. Rines H. W. Oat anther culture: genotype effects on callus initiation and the production of a haploid plant. // Crop Sci., 1983. Y. 23. № 2. P. 268−272.
  206. Rode A., Hartman C., Dron M. Organelle genome stability in anther-derived doubled haploids of wheat (Triticum aestivum L.). // Theor. Appl. Genet., 1985. V. 71. № 2. P. 320−324.
  207. Ryschka Ulrich. Morfogenese bei kallus kulturen des Weizens. // Tagunsgsber. Akad. Landwirtschaftswiss. DDR, 1983. № 207. P. 15−22.
  208. Sagi L., Barnabas B. Evidence for cytoplasmic control of in vitro microspore embryogenesis in the anther culture of wheat (Triticum aestivum L.). // Theor. Appl. Genet., 1989. 78. № 6. P. 867−872.
  209. Sears R. G., Deckard E. L. Tissue culture variability in wheat: callus induction and plant regeneration. // Crop. Sci., 1982. 22. P. 546−550.
  210. Scarascia Mugnozza G. T., Porceddu E. Genetic studies of coleoptile length in T. durum. // Proc. 4th Int. wheat genet, symp. Columbia. USA, 1973. P. 301−308.
  211. G. W., Sharpe F. T. (jr.), Gregan P. B. Variation for improved protein and yield from rice anther culture. // Theor. Appl. Genet., 1984. V. 67. № 5. P. 385−390.
  212. Scott K. J., He D. G., Yang Y. M. Somatic ernbryogenesis in wheat. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 46−67.
  213. Sharma G. C., Wen Chug Wang, Sapra V. T. Effect of genotype, media and temperature pretreatment of callus initiation in triticale, wheat and rye anther cultures. // Cereal Res. Commun., 1982. 10. № 3−4. P. 143−150.
  214. Shimada T., Makino T. In vitro culture of wheat. Ill Anther culture of the A genome aneuploids in common wheat. // Theor. Appl. Genet., 1975. 46. № 8. P. 407−410.
  215. Smid J., Keller E. R. Improved androgenetic response in wheat (Triticum aestivum L.) as a result of gametocide application to anther donor plants. // Abstr. of the 4th Int. congr. plant tissue culture. University of Minnesota, 1986. P. 146.
  216. Shimada T. Embryo culture of wheat regenerative tissue culture system. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 250−261.
  217. Shimada T., Otani M., Hatanaka K. Genetic factors of the anther culture response in Japanese winter wheat cultivars. // Bull. bres. inst. agr. resour. // Ishi-kawa agr. coll., 1993. № 3. P. 1−7.
  218. Sibikeeva Yu. E., Sibikeev S. N. Genetic analysis of anther culture response in wheat earring alien translocations. // Theor. Appl. Genet., 1996. 92. P. 782−785.
  219. Simpson E., Snape J. W. The use of doubled haploids in winter barley program. // Proc. IV Int. barley genet, symp. Edynburg, 1981. P. 140.
  220. Singhal N. S., Jain K. B. L., Singh M. P. Genetic analysis of coleoptile length in bread wheat. // Cereal Res. Commun., 1985. V. 13. № 2−3. P. 231−237.
  221. Snape J. W., Simpson E. The genetical expectations of doubled haploid lines derived from different filial generation. // Theor. Appl. Genet., 1981. V. 60. P. 123−128.
  222. Straub J. Theoretical aspects of haploid techniques. // Proc. 1st Int. congr. «Plant tissue cult, and its biotechnol. appl.». Med. plant press. Sect. B. Munich, 1976. Berlin, 1977. P. 335−340.
  223. Szarejko J., Kasha K. J. Induction of anther culture derived doubled haploids in barley. // Cereal Res. Commun., 1991. 19. № 1−2. P. 219−237.
  224. Tanserella O. A., Greco B. Clonal propagation of wheat. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 98−108.
  225. Tkachenko O. V., Djatchouk T. I., Lobachev Yu. V. The influence of Rht genes on wheat anther culture. // Annual Wheat Newsletter, 1998. V. 44. P. 169.
  226. Tkachenko O. V., Djatchouk T. I., Lobachev Yu. V. Genes Rht influence on an androgenesis in vitro of spring breed wheat and durum wheat lines. // Journal of Huarhong agricultural university, 2000. V. 19. № 3. P. 219−222.
  227. Tokei K. M., Toth L. K., Kertesz B., Pauk J., Heszky L. E. Cytogenetic studies of anther-culture derived doubled haploid wheat varieties. // 5th Int. wheat conference. Ankara. Turkey, 1996. P. 402−403.
  228. Torp A. M., Hansen A. L., Holme I. B., Andersen S. B. Genetic markers for haploid formation in wheat anther culture. // Proceeding of the 9th International wheat genetics symposium. Saskatoon. Saskatchewan. Canada, 1998. V. 3. P. 159 161.
  229. Tuberosa R., Deambrogio E., Lucciiese C., Ravaglia S., Rirol A., Jenabzadeh P. In vitro response and somaclonal variation in bread wheat. // Bull. Soc. Bot. Fr. Actual, bot., 1990. 137. № 3−4. P. 148.
  230. Tuvesson L. K. D., Pedersen S., Andersen S. B. Nuclear genes affecting albinism in wheat (Triticum aestivum L.) anther culture. // Theor. Appl. Genet., 1989. 78. № 6. P. 879−883.
  231. Xi Liying, Jing Jiankang, Hu Han. Production of pollen aneuploids of common wheat (Triticum aestivum). // Annual Report of the Institute of Genetics Academia Science, 1982. P. 26.
  232. Xingzhi Wang, Han Hu. The chromosome constitution of plants derived from pollen of hexaploid triticale/common wheat Ft hybrids. // Theor. Appl. Genet., 1985. 70. № 1. P. 92−96.
  233. Varshney A., Kant T., Sharma Vieudra K., Pao A., Kotari S. L. High frequency plant regeneration from immature embryo cultures of Triticum aestivum and Triticum durum. // Ceral Res. Commun., 1996. 24. № 4. P. 409−416.
  234. Wernicke W., Milkovits L. The regeneration potential of wheat shoot meristems in the presence and absence of 2,4-dichlorphenoyacetic acid. // Protoplasma, 1986. 131.P. 131−141.
  235. Yamomoto K., Miura H. Influence of the semidwarf genes, Rhtl and Rht2 upon embryoid induction from anther culture of wheat. II Wheat. Inform. Serv., 1995. № 81"C". P. 6−12.
  236. Youliang Zhoo, Xianchang He, Jinlian Wang, Wenxuan Liu. Anther Culture 28 A new disease-resistant and high-yielding variety of winter wheat. // Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, 1990. V. 13. P. 353−362.
  237. Zeng Junzhi. Application of anther culture technique to crop improvement in China. II Int. Symp. «Plant Cell Cult. Crop Improvement Groc.» Calcutta. 1981. New York-London, 1983. P. 351−363.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!