Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Использование иммуноферментного анализа для выявления вируса инфекционного ринотрахеита и антител к нему у крупного рогатого скота

Диссертация: Использование иммуноферментного анализа для выявления вируса инфекционного ринотрахеита и антител к нему у крупного рогатого скота
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Диагностические исследования, проведенные в ряде зарубежных стран и у нас, показали широкое распространение в промышленных комплексах крупного рогатого скота так называемых «пневмо-энтеритов», наносящих значительный экономический ущерб (47, 106). Одним из агентов, участвующих в формировании «пневмоэнтеритов телят», является вирус инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (ИРТ). Майский… Читать ещё >

Использование иммуноферментного анализа для выявления вируса инфекционного ринотрахеита и антител к нему у крупного рогатого скота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Краткие сведения об инфекционном ринотрахеите
    • 1. 2. Диагностика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота
    • 1. 3. Новые методические подходы в лабораторной диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота
      • 1. 3. 1. Использование иммуноферментного анализа для выявления локализации антигенов (гистохимический вариант)
      • 1. 3. 2. Иммуноферментный анализ с использованием твердой фазы
      • 1. 3. 3. Методы твердофазного иммуноферментного анализа (ELISA)
  • СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • ГЛАВА II. ПОЛУЧЕНИЕ ШШУНОПЕРОКСИДАЗНЫХ КОНЬЮГАТОВ И ОТРАБОТКА ПОСТАНОВКИ ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА ПЛ. Литературная справка
  • П. 1.1. Ферменты и субстраты, используемые в иммуноферментном анализе
  • ПЛ. 2. Методы получения инмунопероксидазных коньюга
  • П. 2. Материалы и методы
  • П.З. Результаты исследований
  • П. 3.1. Получение специфической сыворотки. Выделение гамма-глобулинов
  • П. 3.2. Очистка пероксидазы и получение иммунопероксидазных коньюгатов
  • П. 3.3. Сравнительное изучение различных субстратов для пероксидазы
  • П. 3.4. Определение активности, специфичности, чувствительности полученных коньюгатов, отработка elisa -теста для выявления вируса
  • ГЛАВА III. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ТВЕРДОФАЗНОГО ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ ВИРУСА ИРТ И АНТИТЕЛ К НЕМУ
    • 111. 1. Литературная справка
  • Ш. 2. Материалы и методы
  • Ш. З. Результаты исследований
  • Ш. 3.1. Выявление вируса ИРТ иммуноферментным методом при использовании в качестве твердой фазы культуры клеток

Ш. 3.2. Использование elisa-теста для обнаружения вируса ИРТ в материале от экспериментально-зараженных животных и в полевом материале 62 Ш. 3.3. Использование метода elisa для определения антител к вирусу ИРТ крупного рогатого скота.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

ВЫВОДЫ.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЩОШИЯ.

Майский (1982 г.) Пленум ЦК КПСС принял Продовольственную программу СССР на I98I-I985 и на период до 1990 года, являющуюся важнейшей составной частью экономической стратегии партии на ближайшее десятилетие, в ней определены четкие задачи ветеринарной науки и практики нашей страны — сохранить и приумножить поголовье продуктивных животных, повысить качество животноводческой продукции.

Эти задачи могут быть решены при наличии своевременной и правильной диагностики инфекционных и неинфекционных болезней сельскохозяйственных животных.

Диагностические исследования, проведенные в ряде зарубежных стран и у нас, показали широкое распространение в промышленных комплексах крупного рогатого скота так называемых «пневмо-энтеритов», наносящих значительный экономический ущерб (47, 106). Одним из агентов, участвующих в формировании «пневмоэнтеритов телят», является вирус инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота (ИРТ).

Успех борьбы с этой инфекцией в значительной степени зависит от надежной и своевременной диагностики. Классическая реакция нейтрализации (РН) для идентификации полевых изолятов и специфических антител высокоспецифична, обеспечивает достоверный лабораторный диагноз, но, к сожалению, трудоемка и малодоступна для практических ветеринарных врачей областных, краевых и республиканских лабораторий, поскольку для ее проведения необходимо иметь чувствительную культуру клеток.

Реакция непрямой гемагглютинации, разработанная в отделе вирусологии Московской ветеринарной академии в настоящее время проходит стадию внедрения в биофабричную и ветеринарную практику. В случае успешного завершения этого этапа оправдаются надежды практических врачей относительно широких серологических обследований больших групп скота.

Метод флуоресцирующих антител, широко применяющийся для выявления специфического антигена вируса ИРТ, к сожалению, так же не лишен недостатков — главным образом субъективизма в учете результатов.

В последние годы все большее внимание вирусологов и эпизо-отологов привлекает метод иммуноферментного анализа (ЙФА) для обнаружения специфического антигена и антител (192, 193). Иммуно-ферментный метод диагностики обладает высокой чувствительностью и специфичностью, не уступающей радиоиммунному методу (192).

Во-первых, процедура проведения этой реакции может быть почти полностью автоматизирована, что позволяет серологически обследовать большие группы животных. Во-вторых, иммуноферментный анализ позволяет выявлять бактериальные и вирусные агенты, вызывающие болезни животных, проводить санитарный контроль продуктов животноводства и окружающей среды и др. Поэтому не случайно Государственный комитет СССР по науке и технике б января 1983 года принял постановление № 6 «О расширении научно-исследовательских работ в области создания диагностических препаратов и оборудования для иммуноферментного анализа и их применения в медицине, сельском хозяйстве, промышленности и научных исследованиях? а министр сельского хозяйства СССР 5 марта 1984 года издал соответствующий приказ (Мг 39), определяющий порядок внедрения данного метода в ветеринарную практику, защиту растений и животноводство.

Учитывая все возрастающий интерес к иммуноферментной диагностике со стороны ученых в области ветеринарии, медицины, паразитологии мы поставили целью изучить возможность использования этого метода для выявления антигена вируса ИРТ крупного рогатого скота и антител к нему, В соответствии с этой целью мы наметили следующие задачи собственных исследований:

1. Получить иммуно-перокеидазные конъюгаты и отработать методы постановки ИФА.

2. Изучить возможность использования твердофазного ИФА для выявления вируса ИРТ и антител к нему.

Новым в диссертации является:

1) Получение иммунопероксидазных конъюгатов с использованием гамма-глобулина крупного рогатого скота.

2) Выявление вируса инфекционного ринатрахеита крупного рогатого скота в иммуноферментном анализе при использовании в качестве твердой фазы культуры клеток.

3) Использование иммуноферментного анализа для обнаружения и идентификации вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.

На защиту выносятся результаты исследований:

1. По получению иммуноферментных коньюгатов, используемых для обнаружения индентификации вируса ИРТ и антител к нему.

2. По изучению возможности использования иммуноферментного анализа для обнаружения и идентификации вируса ИРТ крупного рогатого скота и антител к нему в материале от экспериментально зараженных и естественно больных животных.

ВЫВОДЫ.

1. Одноступенчатая хроматография на колонке с КМ-целлю-лозой позволяет очистить пероксидазу до RZ = 3,1. Полученный препарат фермента пригоден для приготовления иммуноферментного коньюгата.

2. Коньюгаты, полученные перйодатным методом, более активны и специфичны, чем коньюгаты, полученные глутаральдегид-ным методом.

3. Гистохимический вариант ИФА с использованием коньюгата, полученного по методу Avrameas S. (1969), позволяет выявлять антиген вируса ИРТ в культуре клеток через 27−30 часов после их заражения.

4. Разработана модификация метода ИФА с использованием в качестве твердой фазы культуры клеток, позволяющая выявлять вирус ИРТ через 8−10 часов после их заражения.

5. Чувствительность полученных коньюгатов при выявлении вируса ИРТ в elisa составляет 4- lg ТЦД50.

6. Методом elisa (в общепринятом исполнении) можно выявить вирус в носовых экскретах экспериментально зараженных телят с 3 по 10 день, в конъюнктивальных смывах — с 3 по 5 день. Данный метод может быть использован для выявления вируса при экспериментальной естественной инфекции.

7. Метод elisa позволяет выявлять вирус ИРТ в те же сроки, что и выделение в культуре клеток.

8. Непрямой elisaметод пригоден для обнаружения антител к вирусу ИРТ. Результаты применения его совпадают с данными реакции нейтрализации.

9. Метод elisa является чувствительным, специфическим и воспроизводимым методом для выявления вируса ИРТ и антител к нему.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Метод ИФА рекомендуется для выявления вируса ИРТ в экскретах экспериментально зараженных животных и при естественном течении инфекции.

2. Непрямой методelisa рекомендуется для обнаружения специфических антител у реконвалесцентов и вакцинированных животных.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Р.Д., Рязанова Г. Л. Использование иммунопероксидаз-ного метода для идентификации энтеровирусов. Лабораторное дело, 1977, to 8, с. 486−488.
  2. И.В., Угарова Н. Н., Киршенгольц В. Н. Влияние просте-тической группы пероксидазы из хрена на стабильность фермента. Биохимия, 1975, to 2, с. 297−301.
  3. Л.И., Цветкова Н. В. Иммуноферментный метод, его настоящее и будущее: /Обзор/ Иммунология, 1980, to 2, с.13−19.
  4. А.В. Использование метода радиального гемолиза в геле для обнаружения антител к вирусу инфекционного рино-трахеита крупного рогатого скота. Сб. науч. трудов /Моск. вет.акад., им. К. И. Скрябина, 1980, т. 113, с. 61−65.
  5. А., Бидуэлл Д., Бартлет А. Иммуноферментативные реакции в диагностической медицине. Бюл. ВОЗ, 1977, 53, to I, с. 38−48.
  6. Временное Наставление по лабораторной диагностике инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, М., 1973, 20 с.
  7. Вспышка инфекционного ринотрахеита у племенного скота после транспортировки /В.С.Иванов, З. Ф. Зудилина, Г. А. Надточей, Н. Н. Крюков. Бюл.Всесоюз. ин-та эксперим. ветеринарии, 1972, вып.14, с.16−17.
  8. Выделение вируса ИРТ в культурах перевиваемых клеток /Н.Н. Крюков, Т. И. Козыренко, Г. А. Надточей и др. Ветеринария, 1977, to 9, с. 46−47.
  9. Выявление антигена вируса болезни Ауески в культуре клеток иммуноферментным методом /Н.Н.Козлова, А. В. Балмасов, Е. Г. Реутова и др. В кн.: Актуал.вопр. вет. вирусологии: Тезисы докл. У Всесогоз.вет.вирусологич.конф. Казань, 1980, с. 41.
  10. Е.М., Дзантиев Б. Б., Егоров A.M. Получение и свойства иммунопероксидазных комплексов. Биохимия, 1979, вып. 9, т. 44, с. I6I4-I622.
  11. П.С., Грандиен М., Мак-Куиллин Д. Сравнение иммуно-флуоресцентного и иммунопероксидазного методов вирусологического диагноза на большом расстоянии: совместное исследование ВОЗ. Бюл. ВОЗ, 1978, Ш 56, с. 67−74.
  12. Герпетическая инфекция быков-производителей /Е.В.Андреев, Н. П. Чечеткина, О. Д. Дудник и др. Ветеринария, 1977, № 9, с. 56−57.
  13. А.С., Назаров В. А. Идентификация вируса ИРТ методом иммунофлуоресценции. Ветеринария, 1976, № 3, с. II2-II3.
  14. А.А. Вирусемия в иммунном организме при герпесе и клещевом энцефалите: Автореф. Дис.. канд.биол.наук. — М., 1981. — 10 с.
  15. Д.А. Цитопатогенное действие вирусов инфекционного ринотрахеита и парагриппа-3 в культуре клеток: Автореф. Дис.. канд. вет.наук. М., 1981. 19 с.
  16. Динамика накопления преципитиногенов при экспериментальном ринотрахеите крупного рогатого скота /Ю.В.Фомин, И. А. Петрова, Г. А. Иванова и др. В кн.: Тезисы докл. Всесоюз. меж-вуз. науч. конференции по вет. вирусологии, М., 1973, ч. I, с. I2I-I22.
  17. З.Ф., Крюков Н. Н., Надточей Г. А. Выделение и идентификация двух штаммов вируса инфекционного ринотрахеита. -Бюл. Всесоюз. ин-та эксперим. ветеринарии, 1971, й II, с. 29−30.
  18. Иммуноферментный анализ /В.С.Авилов, Л. А. Мникова, В. К. Сологуб и др. Ветеринария, 1981, № 8, с. 33−35.
  19. Использование антител, меченых пероксидазой и ФИТЦ для экспресс-диагностики гриппа /Е.С.Кетиладзе, Н. Н. Жилина, Х. Херрман и др. Вопросы вирусологии, 1978, й 6, с. 695 699.
  20. Использование метода иммунофлуоресценции при диагностики инфекций крупного рогатого скота /А.М.Игнатьев, Ю. В. Моин, Р. А. Бабикова, И. А. Петрова. Сб. науч. трудов /Моск. вет. акад., 1973, т. 70, с. II8-II9.
  21. И., Игнатов Г. Диагнозирование на инфекциозния ринотрахеит по говедата., Ветер. Сбирка, 1979, ffi 2, с. II-12.
  22. Н.Н., Семенихин А. Л. Реакция непрямой гемагглюти-нации при лабораторной диагностике инфекционного ринотра-хеита крупного рогатого скота. Бюл. Всесоюз. ин-та эк-сперим. ветеринарии, 1970, й 8, с. 48−53.
  23. Н.Н. Инфекционный ринотрахеит /пустулезный вуль-вовагинит/ крупного рвгатого скота. Сб. научн. трудов Всесоюз. ин-та эксперим. ветеринарии, 1970, т. 37, с. 146 149.
  24. Н.Н. Инфекционный ринотрахеит-пустулезный вуль-вовагинит крупного рогатого скота. В кн.: Инфекционные болезни при промышленном скотоводстве., М., 1980, т. 13, с. 32−113.
  25. Л.И. Цит. по Н. Н. Крюкову. В кн.: Инфекционные болезни при промышленном скотоводстве., М., 1980, т.13, с. 32−113.
  26. Лабораторная диагностика вирусных болезней животных /В.Н. Сюрин, Г. А. Иванова, Е. А. Краснобаев, Ю. В. Фомин. М., Колос, — 416 с.
  27. А.Д. Бляшкообразующие свойства вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. Бюл. Всесоюз. ин-та эксперим. ветеринарии, 1972, т. 14, с. 28−29.
  28. А.Д., Кашкинбаев К. А. Выделение вируса и клинико-морфологические особенности ИРТ у телят раннего возраста. -Ветеринария, 1977, У&- 3, с. 54−55.
  29. Морфологические изменения в органах телят при инфекционном ринотрахеите /С.Ф.Чевелев, Ф. П. Курченко, Н. И. Архипов и др.-В кн.: Тезисы докл. Всесоюз.науч. конференции по вет. вирусологии, М., MBA, 1973, ч. 2, с. 38−39.
  30. Определение антител иммуноферментным методом /Л.А.Мникова, B.C. Авилов, М. М. Гоголев и др. Ветеринария, 1983, № 4, с. 65−66.
  31. Патоморфология при инфекционном ринотрехеите телят /В.А.Шубин, З. Ф. Зудилина, Н. Н. Крюков и др. Ветеринария, 1972,12, с. 58−60.
  32. И.А. Изучение экспериментального инфекционного рино-трахеита крупного рогатого скота и усовершенствование методов лабораторной диагностики этого заболевания: Автореф. Дис.. канд.вет.наук., Тарту, 1973. 19 с.
  33. Респираторное заболевание откормочных телят /З.Ф.Зудилина, В. А. Шубин, В. А. Сергеев и др.- Бюл. Всесоюз. ин-та экспе-рим. ветеринарии, 1972, с. 14−15.
  34. Е.Г. Иммуноферментный метод диагностики вирусных болезней. Ветеринария, 1980, 1° 7, с. 25−27.
  35. Н.А., Мальцева Н. Н., Хабахпашева Н. А. Применение иммунопероксидазного метода для быстрой индикации некоторых тогавирусов, ортопоксвирусов и антител к ним. Вопросы вирусологии, 1980, !й 5, с. 31−35.
  36. Г. А., Линник С. А. В кн.: Защита животных от инфекционных болезней в комплексах Молдавии., Кишинев, 1980, с. 27−31.
  37. .В., Фомин Ю. В., Абдулла Нияз. О бляшкообразующей способности вируса инфекционного ринотрахеита. В кн.: Тезисы докл. Всесоюз. межвузов. науч. конференции по вет. вирусологии, М., 1973, ч. I, с. 36−37.
  38. .В. Некоторые биологические свойства вируса и специфическая профилактика инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. Дис-. канд. вет.наук. М., 1976, — 386 с.
  39. .В., Бехтерев С. И. Современные проблемы специфической профилактики инфекционного ринотрахеита. Сельское хозяйство за рубежом, 1980, Ш 2, с. 50−53.
  40. Сравнительная оценка методов лабораторной диагностики ИРТ «крупного рогатого скота /И.А.Петрова, Ю. В. Фомин, Л. В. Цепаева и др. Тезисы докл. Всесоюз. межвузов, науч. конференции по вет. вирусологии, М., 1973, ч. I, с. 85−87.
  41. Сравнительные данные при использовании прямого иммунопероксидазного и иммунофлуоресцентного методов в диагностикехронической герпетической инфекции /А.А.Давыдова, А.К.Шублад' зе, Н. А. Захарова и др. Вопросы вирусологии, 1980, № I, с. 100−103.
  42. В.Н., Еуненков В. В. Актуальная проблема ветеринарной вирусологии. Ветеринария, 1977, № 4, с. 45−48.
  43. В.Н., Фомина Н.В.,.Частная Ветеринарная вирусология, М.: Колос, 1979. 472 с.
  44. X. Мукозна болеет и заразен ринотрахеит по гове-дата. Нац. Центр науч. и техн.информ. сел. хоз-ва при ССА.- София, 1975, 132 с.
  45. Химическая модификация Е- групп остатков лизина в пероксидазе из хрена. Доступность этих групп различным модифицирующим агентам /Н.Н.Угарова, Г. Д. Рожкова, Т. Е. Васильева, И. В. Березин. Биохимия, 1978, вып. 5, т.43, с.793−797.
  46. Г., Перейра М. Радиальный гемолиз, новый метод определения антител к гемагглютинину гриппа. Бюл. ВОЗ, 1976, 52, й I, с. 47−54.
  47. О.Х. Инфекции крупного рогатого скота, вызываемые вирусами герпеса. М.: Колос, 1981. — 207 с.
  48. Bachmann P. Isolierung und Identificierung vor Rotaviren als Durchfallerreger bei Perkeln und deren verbreitung beim Schwein in der Bundesrepublik Deuschland.- Tierarztl. Umsch., 1979, 34, 12, p. 825−828.
  49. Bagdadi M., Martin J. Uber das vorcommen von meningoen-zephalitis im verlaufe von IRR-infectionen bei Kalbern und Jung-rinden.- Monatshr. Veterinarmed., 1974, 29, 7, s. 253−257.
  50. Bartha A., Kisary J., Belak s. The general febrile respiratory from of infectious bovine rhinotracheitis in calves.- Acta Vet. Acad. Sci. Hung., 1974, 24, 1−2, p. 77−83.
  51. Bergmann H., Hahnefeld H. Immunofluoreszenz studien mit viren der infectiosen bovinen Rhinotracheitis und des Blaschen-ausschlages des Rindes in Kalbern encellkulturen.- Arch. Exp. Veterinermed., 1967, 21, N.3, p. 801−808.'
  52. Bindrich H. Untersuchungen ubcr die virusarten der Rhinotracheitis und des Exanthema Coitale vesiculosum Bovis mittels der Fluorescenzmicroskopie.- Zbl. Baceriol., 1963, 189, p. 135−146.
  53. Bommeli W., Kihm U. ELISA-the nucleus of the IBR/IPV control programm in Switzerland.-In: Current Topics in Vet. Med. and Anim. Sci., vol.22, 1981, p. 242−251.
  54. Bowes N.D., Nisnovich L., Morgavi M. Experimental production of bovine infectious rhinotracheitis.-Gac. Vet. /В. Aires/, 32, 1970, p. 181−186.
  55. Bowling C.P., Goodheart C.R., Plummer G. Oral and Genital bovine herpesviruses.- J. Virol., 1969, 3, N 1, p. 95−97.
  56. Briaire J. An enzyme-linked immunosorbent assay /ELISA/ for the detection of antibody against Aujeszky’s disease virus in pig sera.- Zbl. Veter. Med. R.B., 1979, 26, 76−81.
  57. Bruskova M., Svandova E, Syrucek L. Detection of serum antibodies to respirators'1 syncytial virus by ELISA.-Acta Virol., 1981, 25, 1, p. 41−47.
  58. A comparative study of different techniques for the detection of rotaviruses in stools / R. Gevenini, F. Rumpia-nesi, m. Donati, E. Facieri et al. Microbiologica, 1982, 5, IT 2, p. 131−135.
  59. Chasey D.A. A simple and rapid immunoperoxidase test for the detection of viruses antigens in tissue culture.- Vet. Rec., 1980, 106, N.24, p. 506−507.
  60. Chia W.K., Savan M. Electron microscopic observationson infectious bovine rhinotracheitis virus in bovine fetal trahe-al organ cultures.- Arch. Ges. Virusforsch., 1974, 45, ИЗ, p.185−198.
  61. Chow T.L., Deem A.W., Jensen L.A. Infectious rhinotrache-itis in cattle. 2. Experimental reproduction.- Proc. U.S. Livestock San. A., 1955, p. 168−172.
  62. Chun P.W., Pried M., Ellis E.F. Use of watern -soluble polymers for the isolation and purification of human immunoglobulins.- Anal. Biochem., 1967, 19, 3, p. 481−487.
  63. Comparison of viral isolation direct immunofluorescence and indirect immunoperoxidase techniques for detection of genital herpes simplex virus infection /R.S.Moseley, L. Corey, D. Benjamin et al.- J Clin. Microbiol., 1981, 13, IT 5, 913−918/
  64. Crook 1T.E., Payne C.C. Comparison of three methods of ELISA for baculoviruses.- J.Gen. Virol., 1980, 46, 1, 29−37.
  65. Crowther J., Abu Elzein E.M.E. Detection and quantification of foot and mouth disease virus by enzime labelled immunosorbent assay techniques.- J. Gen. Virol., 1979, 42, Ж 3, 597−602.
  66. Darcell C.Q. The prevalence of neutralizin antibodies to infectious bovine rhinotracheitis /IBR/ in cattlein Alberta.-- Can. Vet.J., 1973, 17, 7, 167−169.
  67. De Pauli F.G., Sabina L.R. Studies of infectious bovine rhinotracheitis virus. Aminoacid requiremens for viral replication.--Arch. ges. Virusforschung., 1972, 36, N ¾, p. 380−390.
  68. Durham P.J.K. Infectious bovine rhinotracheitis virus and its role in bovine abortion.- II. Zeland. Vet. J., 1974, 22, H 10, p. 175−180.
  69. Engvall E., Jonssen K., Perlmann P. Enzyme-linked immnnosor-bent assay. 11. Quantitative assay of protein antigen, immunoglobulin G, by means of enzyme-labelled antigen and antibody-coated tubes.--Biochim., Biophys. Acta, 1971, 25, 427−435*
  70. Engvall E., Perlmann P. Enzyme-linked immunosorbent assay /ELISA/: Quantitative assay of immunuglobulin G.-Immunochemistry, 1971, 8, p. 871−874.
  71. Enzyme-linked immunosorbent assay /ELISA/ for detection of human reovirus-like agent of infantile gastroenteritis. /R.H.Yolken, H.W.Kim, T. Clem et al.- Lancet, 1977, 2, 8032,263.266.
  72. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of respiratory syncitial virus infection: application to clinical samples/ K. Mcintosh, M. Hendry, M.L.Pahnestock et al.-J.Clin. Microbiol., 1982, v, 2, p. 329−333.
  73. Estela L.A. Application of the agar gel technique jg the diagnosis of infectious bovine rhinotracheitis. Amer. J. vet. Res., 1967, 28, 1903−1904.
  74. Ferrari M., Gualandi G.L., Castrucci G. Susceptility of cell line cultures of bovine kidney origin to infectious bovine rhinotracheitis and parainfluenza-3 viruses.- Сотр. Immunol. Microbiol, and Infect. Diseases, 1981, 4, Ж 3−4, 301−306.
  75. Pink В., Lapfe E. Immunoperoxidase technique for the rapid diagnosis of methanol-H202 labile viral antigens in clinical material.- Experientia, 36,4, 496−498, 1980.
  76. French E.L. A specific virus encephalitis of calves isolation and characterisation of the casual agent.- Austral. Vet. J., 1962, 38, p. 216−221.
  77. Gerna G., Achilli G., Chambes R. Determination of neutralizing antibody and IgG antibody to varicella-zoster virus and IgG antibody to membrane antigens by the immunoperoxidase technique.- J. Infec. Diseases, 1977, 135, N. 6, p. 975−979.
  78. Ghose L.h., Schlagl R.D., Holmes J.H. Comparison of an enzyme linked immunosorbent assay for quantitation of rotavirus antibodies with complement fixation in an epidemiological survey.- J. Clin. Microbiol., 8, p. 268−276.
  79. Gibbs E.P.J., Rweymamu M.H. Bovine Herpesviruses. Part 1. Bovine herpesviruses 1.-Yet. Bull., 1977, N 5, p. 317 343.
  80. Gracham R.G., Kamozski II.J. The early stages of aa-sorbtion of injected horseradish peroxidase in the proximal tubules of mouse kidnei: ultrastructural cytochemistry by a new technique.- J. Histochem. Cytochem., 1966, 14, p. 291−302.
  81. Grillner L., Landquist M. Enzyme-Linked immunosorbent assay for detection and typing of herpes simplex virus.-Eur.
  82. J. Clin. Microbiol., 1983, N 1, p. 39−42.109» Grocham D., Estes M. Comparison of methods for immu-nocytochemical detection of rotavirus infections.- Infect, and Immun., 1979, 26, Ж 2, p. 686−689.
  83. Halkin G.H., Sarov I. Immunoperoxidase antibody to human cytomegalovirusinduced membrane antigen assay in the absen-ceof interfering immunoglobulin G receptors.- Intervirolagy, 1980, 14, H 3−4, p. 155−156.
  84. Halkin H., Leventon K., Sarov L. Antibody to varicella-zoster virus induced membrane antigen: immunoperoxidase assay with air-dried targent cells.- Infect. Diseases, 1979, 140, II 4, p. 601−604.
  85. Hendry R.M., Herrman J.E. Immobilization of antibodies on nylon for use in enzyme-linked immunoassay.- J. Immunol. Methods 35, 1980, 285−286.
  86. Hendry R.M., Mclntoch K. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of respiratory syncytial virus infection: development description.- J.Clin. Microbiol., 1982, 16, 2, 324−328.
  87. Herring A.J., ITettleton P.P., Burrels C. A micro-enzyme-linked immunosorbent assay for the detection of antibodies to infectious bovine rhinotracheitis virus.- Vet. Rec., 1980, 107, 155−156.
  88. Herrman J.E., Hendry R, M., Collins M.P. Factors involved in enzyme-linked immunoasaay of viruses and evaluation of the method for identification of enteroviruses.- J.Clin. Microbiol., 1979, Ю, 2, 210−217.
  89. Herrman J.E., Morse S.A., Collins M.P. Comparison of techniques and immunoreagents used for indirect immunofluorescence and immunoperoxidase identification of enterovirus.- Infect. Immun. 1974, 10, 220−226.
  90. Huck R.A., Millar P.G., Woods D.G. Experimental infectious of maiden heifers by the vagina with IBR/IPV virus. An experimental study.- J. Сотр. Pathol., 1973, 83, 2, 271−279.
  91. Hugles J.P., 01ander H.J., Wada M. Keratoconjunctivitis associated with infectious bovine rhinotraceitis.- J. Amer. Vet. Med. Assoc., 1964, 145, IT 1, 32−39.
  92. Hubschle O.J.В., Lorenz R.J., Mathena M.D. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of bluetongue virus antibodies.-- Am. J. Vet. Res., 1981, 42, 1, 61−65.
  93. Immuno-perozydase. Houvelle technique specifique de mise en evidence de I’antigene rabique intra et extracellulare en mic-roscopie optique/ P. Atanasiu, P. Dragonas, H. Tsiang, A.Harbi.-Annls. Inst. Pasteur, Paris, 1971, 121, 2, 247−251.
  94. Impiegodella tecnica immunoenzimatica /ELISA/ per la diagnos delle malatie del polio adenovirus /L.Battistacci, P. Vivo-li, T. Prescura, L. Giallerri.- Clin. Vet., 1982, 105, IT 9−10, 289- 296.
  95. Ivanov Л.P., Bashkirtsev V.H., Tcachenko E.A. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of arenaviruses.- Arch. Virol., 1981, 67, 1, 71−74.
  96. Jasty V., Chang P.W. Infectious bovine rhinotracheitis virus in. bovine kidney cells: sequence of viral prodaction, cellular changes, and localization of viral nucleuc acid and protein.-Am. J. Vet. Res., 1969, 30, II 8, 1325−1332.
  97. Lis Jeune J.M., Hart L.T., barson A.D. Microijnmunodiffusion test for detection of antibodies to IBR virus in bovine serum. Amer. J. Yet. Res., 1977, 38, it 4, 459−463.
  98. Kachrs R.P. Infectious bovine rhinotracheitis. A review and update.- J.AM. Vet. Med. Assoc., 1977, 171, II 10, 1055−1064.
  99. Kibry P.D., Martin H.T., Ostler O.C. An indirect haem-agglunation test for the detection and assay of antibody to bovine rhinotraheitis virus.- Vet. Rec., 1974, 94, H 6, 361−362.
  100. Kodama Y., Ogata, M, Schimizy Y. Serum immunoglobulin A antibody response in svine TGS virus, as determined by ELISA.-Am. J. Vet. Res. 42, 3, 437−442, 1980.
  101. Kondorosi E., HHgy G., Denes P. Optimal condition for the separation of ratt lymfhocjtes on anti-immunoglobulin-immunoglobulin affinity columns.- J. Immunol. Methods, 1977, 16, 1, 1−7.
  102. Kraai^eveld C.A., Madge M.H., Machnaughton M.R. Enzyme -linkedimmunosorbent assay for coronaviruses HCV 229E, MHV3.--J.Gen. Virol., 1980,49, 1, p.83−89.
  103. Krishnaswamy S., Keshavamurthy B.S., Sundararajan S.-The use of the direct immunoperoxidase test to detect the multiplication of rinderpest virus in bovine kidney cell culture.- Vet. Microbiol., 1981, 6, IT 1, p. 23−29.
  104. Kurstak E. The immunoperoxidase technique: lokalization of viral antigens in cells.-In.: Methods in Virology, 1971, vol5, 423−444.
  105. Madin S.H., York C.J. Isolation of the infectious bovine rhinotracheitis virus.- Science, 1956, 19, 124, 721−722.139″ Marel P., van der Wezel A.L. Quantitative determination of rabies antigen by ELISA.- Devel. Biol. Stand., 1982,50, 267−273*
  106. McKercher D.G., Wada E.M., Straub O.C. Distribution and persistence of infectious Bovine Rhinotracheitis virus in experimentally infected cattle.- Am. J. Vet. Res., 1963, 24, 100, p.510−514.
  107. McKercher D.G. A comparison of the viruses of infectious Bovine Rhinotracheitis /IBR/, Infectious Bovine Vulvovaginitis /IPV/ and Rindpest. Part 2. Plaque assay.- Can. J. Сотр. Med. Vet. Sci., 1964, 28, p. 113−120.
  108. Micro indirect hemagglutination test for detecting antibody infections rhinotracheitis virus/Y.Schimizu, Y. Isayama, Y. Kawakami et al.-Hat. Inst. Anim. Health. Quart., 1972, 12, 1.p. 1−7.
  109. Mockett A.P.A., Darbyschire J.H. Comparative studies with an enzyme-linked immunosorbent assay /ELISA/ for antilpgdies to avian infectious bronchitis virus.- Avian Patol., 1981, p.1−10.
  110. Mohanty S.B., Lillie M.G. Relationship of infectious bovine keraticonjunctivitis virus to the virus of infectious bovine rhinotracheitis.- Cornell. Vet., 1970, 60, H 2, p. 3−9″
  111. Mollelo J.A., Owen H., Jensen R. Placental pathology.Y. Placental lesions of cattl experimentally infected with infection bovine irhinotracheitis virus.- Am. J. Vet. Res., 1966, 27, 119, p. 907−915.
  112. Moyniham M., Ladefoged P., Mathiesen L. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of poliovirus antigen and antibody.- Proc. 3 rd.Gen. Meet.Eur.Soc. Anim. Cell. Technol. Oxford., 1979, Basel e.a., p. 203−205.
  113. Hakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labelled antibody: A new method of conjugation.- J. Histochem. Cytochem., 1974, 22, p. 1084−1091.
  114. Uakane P.K., Pierce G.B. Enzyme-labelled antibodies: preparation and application for the localization of antigens.-J. Histochem. Cytochem., 1966, 14, p. 929−931.
  115. Hakane P.K., Pierce G.B. Ezyme-labelled antibodies for the light and electron microscopie localization of tissue antigens.--J. Cill.Biol., 1967, 33, p. 307−318.
  116. Hew enzyme immunoassay for measurement of influenza A /Victoria/ 3/75 virus in nasal wasches/R.A.Berg, J. Rennard, B.R. Murphy et al.- Lancet, 1980, 8173, p. 851−853.
  117. O’Beirne A.J., Cooper H.R. Heterogeneous Enzyme Immunoassay.- J. Histochem. Cytochem., 1979, 27, 1148−1162.
  118. Occurence of encephalitis caused Ъу infectious bovine rhinotracheitis virus in calves in Hungary/A. Bartha, G. Hajdu, P. Aldary et al.- Acta Vet. Acad. Scientiarum Hungaricae., 1969, 19 /2/, p. 145−151.
  119. Prtfikaz protilatek proti viru infebcni bovinni rhinotra-cheitidy /IBR/ v ranem a pozdnim postinfefccnim obdobi/ J. Mensik, A.6epica, M. hajkova et al.- Vet. Med., 1975, 20, N 10−11,p. 595−608.
  120. A rapid enzyme immunoassay for detection of antibodies ti varicella-zoster virus/ H. Halkin, S. Leventon-Kriss, R. Joffeet al.- Int. Virol., lY.Abstr., 4th Int. Congr.Virol., Hague, 1978,. Y/ageningen, 1978,635*
  121. Recent developments in upper respiratory diseases of cattle/D.G. McKercher, J.E.Moulton, J.W.Kendrick et al.-Proc. 59 Ann. Meet. U.S.Livestock San. Ass., 1955, p. 152−167.
  122. Recherche des anticorps contre le virus de la rhinotrach ite bovine infectieuse par la methode ELISA/ M. Solsona, B. Perrin, M. Perrin, A Moussa.- Bull. Acad. Vet. de Prance, 1980, 53, p.215--225.
  123. Revappa K.L., Ramachandra R.U., Radhavan R. Pathogenesis of Marek’s disease-distribution of viral antigens in infected chickens as detected by immuno- peroxidase test.- Indian Vet., J., 1979, 56, IT 4, p. 257−261 .
  124. Rosner S.F. Infectious bovine rhinotracheitis: clinical review, immunity and control.- J.Am. Vet. Med. Ass., 1968, 153,1. 12, p. 1631−1638.
  125. Ruitenberg E.J., Brosi B.J. Automation in Enzyme-immunoassay.- Scand.J.Immunol., 1978, 8, /suppl 7/, p. 63−72.
  126. Scherrer R., Bernard S. Application of enzyme-linked ims. munosorbent assay /ELISA/ to the detection of calf rotavirusand rotavirus antibodies.- Ann. Microbiol., 1977, 128A, p. 499- 5Ю.
  127. Schmidt IT.J., J.Dennis., Lennete E.H. Comparison of immunofluorescence and immunoperoxidase straining for identification of rubella virus isolates.- J.Clin. Microbiol., 1978,7, N 6, p. 576−583.
  128. Schmidt N.J., Helen H., Chin J. Application of immunoperoxidase staining to more rapid detection and identifi-catian of rubella virus isolates.- J. Clin. Microbiol., 1981, 13, N 4, p. 627−630.
  129. Schroeder R.L., Moys M.D. An acute uppern respiratory infection of dairy cattle.- J. Am. Vet. Ned. Ass., 1954,125,p. 471−472.
  130. Sela Ы., Fuchs S.S. Preparation of syntetic antigens. In: Ilandboock of experimental Immunology, Oxford, 1978, p. 10−30.
  131. Shanon Ъ., Kay E., Lev/ J. Purification of horseradish peroxidase.
  132. J. Biol. Chem., 1966, 241, p. 2166−2172.
  133. Skaug K. Application of the passive haemolysis test for the determination of rubella virus antibody.- Acta pathol. microbiol. Scand., 1975, Sect.B. 83, p. 367−372.
  134. Sheffy B.E., Davis D.H. Reactivation of a bovine herpesvirus after corticosteroid treatment.- Proc. Soc. exptl. Biol. Med., 1972, 140, 3, p. 974−976.
  135. Shimizy Y."Isayama Y., Kawakami Y. A micro indirect hemagglutionation test for detecting antibody against infectious bovine rhinotraheitis virus. Hat. Inst. Anim. Helth.Quart. 1972., 12., 1−7.
  136. Solid Phase enzyme-immunoassay for detection of hepatitis В surface antigen3/ G. V/olters, L. Kuijpers, J. Kacaki, et al.- J.Clin. Pathol., 1976, 29, p. 873−879.
  137. Steinhoff Ы.С., Hall C.B., Schnabel K.C. Respiratory sincytial virus serology by a simplified enzyme- linked immunosorbent assay.- J. Clin. Microbiol., 1980, 12, 3, p. 447−450.
  138. Straub O.C., Bohm H.O. Untersuchungen ilber die Localisation und Persistenz der Virus der infectiosen Rhinotrache-itis und des Blaschenausschlages in experimentell infizieren Rindern .- Berl. und Munch. Tierarztl. Wchschr., 1964, 77. 23, s. 458−462.
  139. Strauss II. Phenylhydrasine as inhibitor of horseradish peroxidase for use in immunoperoxidase procedurs.- J. Histo-chem. Cytochem., 1972, 20, p. 249−251.
  140. Swanepoel R., Blackburg U.K., Y/ilson A. A comparison methods for demonstrating antibodies to the virus of infectious bovine rhinotraheitis /infectious pustular vulvovaginitis /. Brit. Vet. J., 1976, 4, p. 423−427.
  141. Toma B. Recherche des anticorps anti-virus de la ma-ladie d’Aueszky par la technique ELISA.- Rec. Med. Veter., 1979, 155, 5, p. 455−463.
  142. Ultrastruktural localization by immunoperoxidase techniques of influenza virus antigens in abortive infection of L cells.-/Acta Virol., 1981, 25, JJ 6, p. 381−389--F.Ciampor, E.V. Sidorenlco, IT.V.Taikova et al.
  143. Use of immunoenzsnne technique for the detection of Au^eszky's disease virus in cell culture /J. Roszkov/ski, M. Bar-toszcze, J. Zadura at all- Yet. Rec., 1978, 102, p. 462−463.
  144. Voller A., Bartlett A., Bidvell D. Enzyme immunoassays with reference to ELISA techniques.- J. of Clin. Pathol., 1978, 31, 6, p. 507−520.
  145. Voller A., Bidvell D., Bartlett A. Microplate enzyme immunoassays for the immunodiagnosis of virus infections. In: -Am. Soc. Microbiol., 1976, p. 506−512.
  146. Vyuziti komplexni virologiche teclmiky к primemu pru-kazu PI-3 a IBR v organech infikovanych telat /J. Memsik, J. Pospisil, A. Suchankova et al.- Vet. Med. /CSSR/, 1975, 20,1. 10−11, p. 609−622.
  147. Watanabe H., Malkenzie J.S. The detection of influenza A viruses antigens in cultured cells by enzyme-linked immunosorbent assay.- Arch. Virol., 1981, 67, 1, p. 31−43.
  148. Wellemans G., Leunen J. Le tropism digestif du virus IBR. 2. part. Examens virologiques.- Ann. Med. Vet. 1974, 118, 4, p. 243−251.
  149. Wicker R., Avrameas S. Localization of virus antigens by enzyme-labelled antibodies.- J. Gen. Virol., 1969 a, 4, p. 465−471.
  150. Yolken R.H., Stopa P.J. Comparison of seven enzyme immunoassay sistems for measurement of citomegalovirus.-J. Clin. Microbiol., 1980, 11, 6, p. 546−551.
  151. Zuffa J., Rajaani J., Matis J. Replication of infectious bovine rhinotracheitis virus in calf kidney cells studied by immuno and acridine orange fluorescence.- J. Acta Virol., 1970, 14, N. 6, p. 459−466.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!