ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚
АнтистрСссовый сСрвис

ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ синтСз низкомолСкулярных искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, ΠΎΠ±ΡŠΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² своСй структурС Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ±Π½Ρ‹Π΅ ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

ЦСлью настоящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ являлось конструированиС ΠΈ ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· эффСктивных низкомолСкулярных искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, ΠΎΠ±ΡŠΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² ΡΠ²ΠΎΠ΅ΠΉ структурС Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ±Π½Ρ‹Π΅ ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° малостадийных ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² синтСза, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π°Ρ‚ΡŒ искусствСнныС Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹ Π² ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… количСствах. Π’ Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ исслСдования Ρ€Π΅ΡˆΠ°Π»ΠΈΡΡŒ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ: конструированиС искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ синтСз низкомолСкулярных искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, ΠΎΠ±ΡŠΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² своСй структурС Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ±Π½Ρ‹Π΅ ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹ (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • БПИБОК Π‘ΠžΠšΠ ΠΠ©Π•ΠΠ˜Π™
  • ГЛАВА 1. Π’Π—ΠΠ˜ΠœΠžΠ”Π•Π™Π‘Π’Π’Π˜Π• ΠΠ˜Π—ΠšΠžΠœΠžΠ›Π•ΠšΠ£Π›Π―Π ΠΠ«Π₯ ΠžΠ Π“ΠΠΠ˜Π§Π•Π‘ΠšΠ˜Π₯ Π‘ΠžΠ•Π”Π˜ΠΠ•ΠΠ˜Π™ Π‘ Π Π˜Π‘ΠžΠΠ£ΠšΠ›Π•Π˜ΠΠžΠ’Π«ΠœΠ˜ ΠšΠ˜Π‘Π›ΠžΠ’ΠΠœΠ˜ (ΠžΠ‘Π—ΠžΠ  Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«)
    • 1. 1. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Π΅ характСристики РНК ΠΈ Ρ‚ΠΈΠΏΡ‹ мСТмолСкулярных взаимодСйствий
      • 1. 1. 1. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° РНК
      • 1. 1. 2. Π’ΠΈΠΏΡ‹ взаимодСйствий Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ² с Π ΠΠš
        • 1. 1. 2. 1. Π’ΠΎΠ΄ΠΎΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Π΅ связи
        • 1. 1. 2. 2. ЭлСктростатичСскиС взаимодСйствия. ^
        • 1. 1. 2. 3. 7Π“-БтСкингвзаимодСйствия
        • 1. 1. 2. 4. Π“ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ±Π½Ρ‹Π΅ взаимодСйствия
    • 1. 2. Π›ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Ρ‹, Π²Π·Π°ΠΈΠΌΠΎΠ΄Π΅ΠΉΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ с Π ΠΠš
      • 1. 2. 1. Π›ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Ρ‹, ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π²ΠΎΠ΄ΠΎΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Π΅ связи с Π ΠΠš
      • 1. 2. 2. ΠŸΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρ‹
        • 1. 2. 2. 1. ΠŸΠΎΠ»ΠΈΠ°ΠΌΠΈΠ½Ρ‹
        • 1. 2. 2. 2. ΠŸΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Ρ‹ ΠΈ ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄ΠΎΠΏΠΎΠ΄ΠΎΠ±Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρ‹ *
        • 1. 2. 2. 3. ΠœΠ°Π»ΠΎΠ±ΠΎΡ€ΠΎΠ·Π΄ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Ρ‹ Π”ΠΠš
        • 1. 2. 2. 4. Аминогликозиды
      • 1. 2. 3. Π˜Π½Ρ‚Π΅Ρ€ΠΊΠ°Π»ΡΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹
      • 1. 2. 4. Π›ΠΈΠ³Π°Π½Π΄Ρ‹, ΡƒΠ·Π½Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π΄ΠΈΠΎΠ»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Ρ‚
  • ГЛАВА 2. ΠšΠžΠΠ‘Π’Π Π£Π˜Π ΠžΠ’ΠΠΠ˜Π• И Π‘Π˜ΠΠ’Π•Π— Π˜Π‘ΠšΠ£Π‘Π‘Π’Π’Π•ΠΠΠ«Π₯ Π Π˜Π‘ΠžΠΠ£ΠšΠ›Π•ΠΠ— ΠΠ ΠžΠ‘ΠΠžΠ’Π• ΠŸΠžΠ›Π˜ΠšΠΠ’Π˜ΠžΠΠΠ«Π₯ Π‘ΠžΠ•Π”Π˜ΠΠ•ΠΠ˜Π™ (РЕЗУЛЬВАВЫ И
  • ΠžΠ‘Π‘Π£Π–Π”Π•ΠΠ˜Π•)
    • 2. 1. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
    • 2. 2. Π‘ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· ΠΈ Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Π½Π°Ρ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
      • 2. 2. 1. Π‘ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
      • 2. 2. 2. РибонуклСазная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
    • 2. 3. ВыявлСниС ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π΄Π»ΠΈΠ½Ρ‹ алкильного Ρ€Π°Π΄ΠΈΠΊΠ°Π»Π° ΠΈ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Π°
      • 2. 3. 1. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊ
      • 2. 3. 2. РибонуклСазная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊ
      • 2. 3. 3. Π‘ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· ΠΈ Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΡ‚ичСская Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ фторсодСрТащих искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
      • 2. 3. 4. Π‘ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, содСрТащих Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Ρ‹ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ структуры
      • 2. 3. 5. РибонуклСазная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, содСрТащих Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Ρ‹ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ структуры
    • 2. 4. ВлияниС суммарного ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ заряда искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π½Π° ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π° РНК-субстрата
    • 2. 5. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ Π² ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Ρƒ искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
      • 2. 5. 1. Π’Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ Π² ΡΠΎΠ΅Π΄ΠΈΠ½Π΅Π½ΠΈΡ, содСрТащиС ароматичСский Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€
      • 2. 5. 2. ВзаимодСйствиС соСдинСний 86Π°, Π± ΠΈ 87Π°, содСрТащих Π΄Π²ΠΎΠΉΠ½ΡƒΡŽ связь, с Π°ΠΌΠΈΠ½Π°ΠΌΠΈ
    • 2. 6. БиквСнс-ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ расщСплСния РНК ΠΏΠΎΠ΄ дСйствиСм соСдинСний 73 Π’ ΠΈ
    • 2. 7. Антивирусная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·
  • ГЛАВА 3. Π­ΠšΠ‘ΠŸΠ•Π Π˜ΠœΠ•ΠΠ’ΠΠ›Π¬ΠΠΠ― ЧАБВ
  • Π’Π«Π’ΠžΠ”Π« 89 Π‘Π›ΠΠ“ΠžΠ”ΠΠ ΠΠžΠ‘Π’Π˜ ^ Β°
  • БПИБОК Π›Π˜Π’Π•Π ΠΠ’Π£Π Π«
  • ΠŸΠ Π˜Π›ΠžΠ–Π•ΠΠ˜Π•
  • Бписок сокращСний
  • Π’ Π½Π°ΡΡ‚оящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ обозначСния
  • НК — нуклСиновая кислота
  • ПНК — ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎ-нуклСиновая кислота Ρ€Π ΠΠš- рибосомная РНК Ρ‚Π ΠΠš — транспортная РНК
  • DABCO- 1,4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½
  • DOS — дСзоксистрСптамин
  • HIV — вирус ΠΈΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΎΠ΄Π΅Ρ„ΠΈΡ†ΠΈΡ‚Π° Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°
  • RRE — Rev-Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ рСгуляторный элСмСнт (Rev responsive element)
  • TAR — трансактивируСмый рСгуляторный элСмСнт (Trans-Activation Responsive element)
  • SPR — ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ повСрхностного ΠΏΠ»Π°Π·ΠΌΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ рСзонанса (surface plasmon resonance)
  • DBU — 1,8-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[5.4.0]ΡƒΠ½Π΄Π΅Ρ†-7-Π΅Π½
  • Bu — Π±ΡƒΡ‚ΠΈΠ»
  • Hex — гСксил

ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠΉ основой ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΆΠΈΠ·Π½ΠΈ ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ ΡΡ‡ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ ΠΊΠΈΡΠ»ΠΎΡ‚Ρ‹Π”ΠΠš ΠΈ Π ΠΠš, ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ΡΡ отвСтствСнными Π·Π° Ρ…Ρ€Π°Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π½ΠΎΡ гСнСтичСской ΠΈΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ. БоСдинСния, способныС ΠΈΠ·Π±ΠΈΡ€Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ Π²Π·Π°ΠΈΠΌΠΎΠ΄Π΅ΠΉΡΡ‚Π²ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ с ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΌΠΈ кислотами, ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΡŽΡ‚ интСрСс для Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ ряда Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ молСкулярной Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ. НСбольшиС ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρ‹, Ρ€Π°ΡΡ‰Π΅ΠΏΠ»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ фосфодиэфирныС связи Π² Π ΠΠš Π² Ρ„изиологичСских условиях, ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ для исслСдования структуры РНК ΠΈ Π ΠΠš-Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… комплСксов Π² Ρ€Π°ΡΡ‚Π²ΠΎΡ€Π΅ [1]. Π˜ΡΠΊΡƒΡΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹ Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ ΡΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ высокоэффСктивными противовирусными ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°ΠΌΠΈ [2]. Π’Π°ΠΊΠΈΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, синтСз Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· являСтся Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Π΅ΠΉ, Ρ‚Π΅ΠΌ Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ Ρ‡Ρ‚ΠΎ количСство эффСктивных малотоксичных противовирусных ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΎΠ² ΠΎΠ³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅Π½Π½ΠΎ.

Π—Π° ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½Π΅Π΅ врСмя Π±Ρ‹Π»ΠΎ создано большоС число низкомолСкулярных соСдинСний, Π²Ρ‹Π·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… расщСилСниС РНК Π² Ρ„изиологичСских условиях [3]. Одной ΠΈΠ· ΡƒΠ΄Π°Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… стратСгий ΠΏΡ€ΠΈ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ΅ Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² являСтся конструированиС химичСских ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ», Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… каталитичСскиС Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Ρ‹ ΠΈΠ»ΠΈ ΠΈΠΌΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… ' процСссы, ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΊΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ… ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ с Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΠΉ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ Ρ€Π°ΡΡ‰Π΅ΠΏΠ»ΡΡŽΡ‚ фосфодиэфирныС связи Π² Π ΠΠš [4]. Π”Ρ€ΡƒΠ³ΠΎΠΉ пСрспСктивной стратСгиСй ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ ΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒΡΡ синтСз ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… процСссы, происходящиС ΠΏΡ€ΠΈ расщСплСнии Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ·ΠΈΠΌΠ°ΠΌΠΈ — ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ΠΎΡ€Π°ΠΌΠΈ Π½Π΅Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Ρ‹, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ способны ΡƒΡΠΊΠΎΡ€ΡΡ‚ΡŒ Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ· РНК Π·Π° ΡΡ‡Ρ‘Ρ‚ измСнСния Π΅Ρ‘ Π³Π΅ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΠΈ. Π’ ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ основы ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² Ρ‚Π°ΠΊΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π²Ρ‹ΡΡ‚ΡƒΠΏΠ°Ρ‚ΡŒ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρ‹, способныС с Π²Ρ‹ΡΠΎΠΊΠΎΠΉ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ Π²ΠΎΠ·Π΄Π΅ΠΉΡΡ‚Π²ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Π½Π° Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ кислоты Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ взаимодСйствия с ΠΎΡ‚Ρ€ΠΈΡ†Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ заряТСнным' сахаро-фосфатным остовом РНК. Π’Ρ‹Π±ΠΎΡ€ структуры ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Π³ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ» ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ ' ΡΠ΄Π΅Π»Π°Ρ‚ΡŒ исходя ΠΈΠ· Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹ ΠΏΠΎ ΡΠΎΠ΅Π΄ΠΈΠ½Π΅Π½ΠΈΡΠΌ, ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΌ ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ΅Π½Π½Ρ‹ΠΌ сродством ΠΊ Π ΠΠš, ΠΈ Π½Π°ΠΊΠΎΠΏΠ»Π΅Π½Π½ΠΎΠΌΡƒ Π² Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ органичСского синтСза ИΠ₯Π‘Π€Πœ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρƒ ΠΏΠΎ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΡŽ взаимосвязи «ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π°-Ρ€Π°ΡΡ‰Π΅ΠΏΠ»ΡΡŽΡ‰Π°Ρ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ» Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… рядов искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·. Π’Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΏΡ€ΠΈ конструировании Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… соСдинСний Π½ΡƒΠΆΠ½ΠΎ ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚Ρ‹Π²Π°Ρ‚ΡŒ ряд Ρ‚Ρ€Π΅Π±ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΉ, связанных с ΠΈΡ… ΠΏΡ€Π°ΠΊΡ‚ичСским ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ΠΌ: нСвысокая Ρ‚ΠΎΠΊΡΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ, простота синтСза, нСвысокая ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈ Π΄ΠΎΡΡ‚ΡƒΠΏΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ исходных Ρ€Π΅Π°Π³Π΅ΡˆΠΎΠ², химичСская ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ. ' 1.

ЦСлью настоящСй Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ являлось конструированиС ΠΈ ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· эффСктивных низкомолСкулярных искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, ΠΎΠ±ΡŠΠ΅Π΄ΠΈΠ½ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² ΡΠ²ΠΎΠ΅ΠΉ структурС Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΡ„ΠΎΠ±Π½Ρ‹Π΅ ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ‚ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Ρ‹Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° малостадийных ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² синтСза, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π°Ρ‚ΡŒ искусствСнныС Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹ Π² ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… количСствах. Π’ Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ исслСдования Ρ€Π΅ΡˆΠ°Π»ΠΈΡΡŒ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ: конструированиС искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ бис-Ρ‡Π΅Ρ‚Π²Π΅Ρ€Ρ‚ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… солСй 1,4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½Π°, связанных Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ структуры, ΠΎΡ‚Π»ΠΈΡ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ΠΎΡ‚ Ρ€Π°Π½Π΅Π΅ извСстных Π ΠΠšΠ°Π·ΠΎΠΌΠΈΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠΊΠΎΠ² отсутствиСм Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏ, Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… для каталитичСских Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ²Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² синтСза ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊ для выявлСния закономСрностСй Π² ΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠΈ соСдинСний, ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΈΡ… Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Π½ΡƒΡŽ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² синтСза Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ эффСктивных искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·.

Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Бконструирован Π½ΠΎΠ²Ρ‹ΠΉ класс искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ бис-Ρ‡Π΅Ρ‚Π²Π΅Ρ€Ρ‚ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… солСй 1,4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½Π°, соСдинСнных Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π΄Π»ΠΈΠ½Ρ‹ ΠΈ ΠΆΠ΅ΡΡ‚кости, Π½Π΅ ΡΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Ρ‰ΠΈΡ… Π² ΡΠ²ΠΎΠ΅ΠΉ структурС каталитичСски Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹, Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹Π΅ для ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ².

2. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π° ΡƒΠ½ΠΈΠ²Π΅Ρ€ΡΠ°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ стратСгия синтСза ΠΏΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π½Ρ‹Ρ… искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π² ΠΌΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠΎΠ²Ρ‹Ρ… количСствах ΠΈΠ· ΠΌΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π΅Ρ‚Π²Π΅Ρ€Ρ‚ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… солСй 1,4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½Π°. Π‘ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… синтСтичСских ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ΠΎΠ² ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ 20 ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Ρ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊ ΠΈ 30 ΠΈΠ½Π΄ΠΈΠ²ΠΈΠ΄ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… соСдинСний, способных Ρ€Π°ΡΡ‰Π΅ΠΏΠ»ΡΡ‚ΡŒ РНК-субстраты.

3. ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Ρ‘Π½ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· «ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π° — РНК Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·ΡƒΡŽΡ‰Π°Ρ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ» ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ расщСплСния зависит ΠΎΡ‚ Ρ‡ΠΈΡΠ»Π° 1,4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², строСния ΡƒΠ³Π»Π΅Π²ΠΎΠ΄ΠΎΡ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ€Π°Π΄ΠΈΠΊΠ°Π»Π° ΠΈ Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Π°. НаибольшСй Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°ΡŽΡ‚ Ρ‚Π΅Ρ‚Ρ€Π°Π³Π°Π»ΠΎΠ³Π΅Π½ΠΈΠ΄Ρ‹ 1,4-бис-[(4-Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°- 1-Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚ΠΈΠ»)ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»]Π±Π΅Π½Π·ΠΎΠ»Π° ΠΈ 1 -[(4-эти'Π»Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°-1 -Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚ΠΈΠ»)ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»]-4-[(4-Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°-1Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚ΠΈΠ»)ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»]Π±Π΅Π½Π·ΠΎΠ»Π°, 1,5-бис-(4-Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°-1Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚ΠΈΠ»)ΠΏΠ΅Π½Ρ‚Π°Π½Π°, {Π•)-1,4-бис-(4-Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°-1 Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚ΠΈΠ»)Π±ΡƒΡ‚-2-Π΅Π½Π°, содСрТащиС Π² ΡΠ²ΠΎΠ΅ΠΉ структурС Π΄Π²Π° бис-ΠΊΠ²Π°Ρ‚Π΅Ρ€Π½ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… остатка 1,4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½Π°, связанных Π»ΠΈΠ½ΠΊΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ «Π°Ρ€Π°-ксилола, Π½-ΠΏΠ΅Π½Ρ‚Π°Π½Π°, транс-Π±ΡƒΡ‚-2-Π΅ΠΏΠ°, соотвСтствСнно, ΠΈ ΠΎΠ΄ΠΈΠ½ ΠΈΠ»ΠΈ Π΄Π²Π° Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°. ' «.

4. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ расщСплСния РНК ΠΏΠΎΠ΄ дСйствиСм1 «Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· зависит ΠΊΠ°ΠΊ ΠΎΡ‚ ΠΏΡ€ΠΎΡΡ‚ранствСнного строСния РНК, Ρ‚Π°ΠΊ ΠΈ ΠΎΡ‚ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ искусствСнной Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹. Π Π°ΡΡ‰Π΅ΠΏΠ»Π΅Π½ΠΈΡŽ прСимущСствСнно ΠΏΠΎΠ΄Π²Π΅Ρ€Π³Π°ΡŽΡ‚ΡΡ фосфодиэфирныС связи, Π»ΠΎΠΊΠ°Π»ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ Π² ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ях Ρ€Π΅Π·ΠΊΠΈΡ… ΠΈΠ·Π³ΠΈΠ±ΠΎΠ² РНК, Π² Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠ½ΡΡ‚Π²Π΅ случаСв Π² Π‘рА ΠΉ ΠΈΡ€Π, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ Π‘Ρ€Πž ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡΡ…. На ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π΅ структурированного Π΄Π²Π°Π΄Ρ†Π°Ρ‚ΠΈΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎΠ·Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΎΠ»ΠΈΠ³ΠΎΡ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ‚ΠΈΠ΄Π° ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π½ΠΎ ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ основного сайта Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π° Π² Π·Π°Π²ΠΈΡΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΠΈ ΠΎΡ‚ ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ искусствСнной Π ΠΠšΠ°Π·Ρ‹.

5. ΠŸΡ€Π΅Π΄Π²Π°Ρ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ экспСримСнты ΠΏΠΎ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ Ρ€Π΅ΠΏΠ»ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ вируса Π³Ρ€ΠΈΠΏΠΏΠ° Π² ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ствии Ρ‚Π΅Ρ‚Ρ€Π°Π³Π°Π»ΠΎΠ³Π΅Π½ΠΈΠ΄Π° 1,5-бис-(4-Π΄ΠΎΠ΄Π΅Ρ†ΠΈΠ»Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°-1-Π°Π·ΠΎΠ½ΠΈΠ°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ[2.2.2]ΠΎΠΊΡ‚ΠΈΠ»)ΠΏΠ΅Π½Ρ‚Π°Π½Π° ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π»ΠΈ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π΅Π³ΠΎ противогриппозная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ прСвосходит Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ извСстных противовирусных ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ°Π½Ρ‚Π°Π΄ΠΈΠ½Π° ΠΈ Π΄Π΅ΠΉΡ‚ΠΈΡ„ΠΎΡ€ΠΈΠ½Π°.

Π‘Π›ΠΠ“ΠžΠ”ΠΠ ΠΠžΠ‘Π’Π˜ 1″ j.

Автор Π±Π»Π°Π³ΠΎΠ΄Π°Ρ€ΠΈΡ‚ своих ΠΊΠΎΠ»Π»Π΅Π³ ΠΈ ΡΠΎΠ°Π²Ρ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², сотрудников Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ Π±ΠΈΠΎΡ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот ИΠ₯Π‘Π€Πœ Π‘О РАН — Π΄.Π±.Π½. М. А. Π—Π΅Π½ΠΊΠΎΠ²Ρƒ, ΠΊ.Π±.Π½. И. Π›. ΠšΡƒΠ·Π½Π΅Ρ†ΠΎΠ²Ρƒ, H.A. ΠšΠΎΠ²Π°Π»Ρ‘Π²Π° — Π·Π° ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ гидролитичСской активности искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·.

Π‘ΠΎΡ‚Ρ€ΡƒΠ΄Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ иммунобиологичСских ΠΈ Ρ…имиотСрапСвтичСских соСдинСний украинского Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎ-ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΈΠ²ΠΎΡ‡ΡƒΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ института ΠΈΠΌ. Π˜. И. ΠœΠ΅Ρ‡Π½ΠΈΠΊΠΎΠ²Π° (Π³. ОдСсса) ΠΏΠΎΠ΄ руководством ΠΊ.ΠΌ.Π½. Π’. П. Π›ΠΎΠ·ΠΈΡ†ΠΊΠΎΠ³ΠΎ Π·Π° ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΈΠ²ΠΎΠ³Ρ€ΠΈΠΏΠΏΠΎΠ·Π½ΠΎΠΉ активности искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·. i i.

Π‘ΠΎΡ‚Ρ€ΡƒΠ΄Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ физичСских ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² исслСдования НИОΠ₯ Π‘О РАН ΠΊ. Ρ…^Π½. Π’. И. ΠœΠ°ΠΌΠ°Ρ‚ΡŽΠΊΠ°, Π’. Π’. ΠšΠ°Π½Π΄Π°ΡƒΡ€ΠΎΠ²Ρƒ ΠΈ А. Π‘. Π‘ΠΊΠΎΡ€ΠΎΠ²Ρƒ Π·Π° Ρ€Π΅Π³ΠΈΡΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡŽ ЯМР-спСктро'Π², Π’. Π“. Π’Π°ΡΠΈΠ»ΡŒΠ΅Π²Π° Π·Π° Ρ€Π΅Π³ΠΈΡΡ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡŽ масс-спСктров, сотрудников Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° НИОΠ₯ Π‘О РАН Π·Π° ΡΠ»Π΅ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·.

Π‘ΠΎΡ‚Ρ€ΡƒΠ΄Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ органичСского синтСза ИΠ₯Π‘Π€Πœ Π‘О РАН.

Особая Π±Π»Π°Π³ΠΎΠ΄Π°Ρ€Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎΠΌΡƒ Ρ€ΡƒΠΊΠΎΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŽ Π‘ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΈΠΊΠΎΠ²Ρƒ Π’Π»Π°Π΄ΠΈΠΌΠΈΡ€Ρƒ НиколаСвичу Π·Π° ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ ΠΈ Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΠ΅Π½ΠΈΠ΅ Π½Π° Π²ΡΠ΅Ρ… этапах Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Kolchanov, N.A., Titov, I.I., Vlassova, I.E., Vlassov, V.V. Chemical and computer probing of RNA structure // Prog. Nucleic Acid Res. Mol. Biol. 1996. V. 53. P. 131−196.
  2. DNA and RNA cleavers and chemotherapy of Cancer and viral diseases // NATO ASI Ser., Ser. C. 1996. V. 479. 379 p.
  3. Zenkova, M.A. Artificial ribonucleases. In Nucleic Acids and Molecular Biology. Heidelberg Varlag. 2004. V. 13.
  4. , B.H., Власов, B.B. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² для Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ расщСплСния Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот // УспСхи Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ. 2001. Π’. 70. Π‘. 562−580.
  5. Ren, J., Chaires, J.B. Sequence and structural selectivity of nucleic acid binding ligands // Biochemistry. 1999. V. 38. P. 16 067−16 075.
  6. Hermann, T. Strategies for the design of drugs targeting RNA and RNA-protein compexes // Angcw. Chem., Int. Ed. 2000. V. 39. P. 1890−1905.
  7. , Π’. ΠŸΡ€ΠΈΠ½Ρ†ΠΈΠΏΡ‹ структурной ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот. ΠŸΠ΅Ρ€. Ρ Π°Π½Π³Π». Под Ρ€Π΅Π΄. Π‘. К. Π’Π°ΠΉΠ½ΡˆΡ‚Π΅ΠΉΠ½Π°. М.: ΠœΠΈΡ€, 1987. 584 с.
  8. Muller, A., Talbot, F., Leutwyler, S. Hydrogen bond vibrations of 2-aminopyridine*2-pyridone, a Watson-Crick analogue of adenine*uracil // J. Am. Chem. Soc. 2002. V. 124. P. 14 486−14 494.
  9. Chow, C., Bogdan, E.M. A structural basis for RNA-ligand interactions // Chem. Rev. 1997. V. 97. P. 1489−1513.
  10. Hermann, Π’., Westhof, E. RNA as a drug target: chemical, modeling, and evolutionary tools // Curr. Opinion Biotech. 1998. V. 97. P. 66−73.
  11. Afshar, M., Prescott, C.D., Varant G. Structure-based and combinatorial search, for new RNA-binding drugs // Curr. Opin. Biotechnol. 1999. V. 10. P. 59−63. '- Β¦
  12. Wilson, W.D., Li, K. Targeting RNA with small molecules // Curr. Med. Chem. 2000. V. 7. P. 73−98.β€’j *
  13. Charles, I., Xi, H., Arya, D.P. Sequence-specific targeting of RNA with an oligonucleotide-neomycin conjugate// Bioconjugate Chem. 2007. V. 18. P. 160−169.
  14. Venkatesan, N., Kim, B.H. Peptide conjugates of oligonucleotides: synthesis andapplications // Chem. Rev. 2006. V. 106. P. 3712−3761. -i 1 3
  15. Schmidtchen, F.P., Berger, M. Artificial organic host molecules for anions // Chem: Rev. 1997. V. 97. P. 16 099−16 460.
  16. , Π—.А., Π‘ΠΎΠ³Π΄Π°Π½ΠΎΠ², А.А. Π₯имия Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΈΠ½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… кислот ΠΈ ΠΈΡ… ΠΊΠΎΠΌΠΏΠΎΠ½Π΅Π½Ρ‚ΠΎΠ². М.: Π₯имия, 1978. 582 с.
  17. Carlson, Π‘.Π’., Stephens, О.М., Beal, P.A. Recognition of double-stranded RNA by proteins and small molecules//Biopolymers. 2003. V. 70. P. 86−102.
  18. Neidle, S., Nunn, C.M. Crystal structures of nucleic acids and their drug complexes // Natural Product Rep. 1998. V. 15. P. 1−15.
  19. Piantanida, I., Tomisic, V., Zinic, M. 4,9-Diazapyrenium cations. Synthesis, physico-chemical properties and binding of nucleotides in water // J7 Chem. Soc. Perkin Trans. 2. 2000. P. 375−383.
  20. Mertz, E., Mattei, S., Zimmerman, S.C. Synthetic receptors for CG base pairs // Org. Letters. i '2000. V. 2. P. 2931−2934.
  21. Lecubin, F., Benhida, R., Fourrey, J.-L., Sun, J.-S. NMR recognition studies of CG base pairsi’by new easily accessible heterobicyclic systems // Tetrahedron Lett. 1999. V. 40. P. 8085−8088.
  22. Vourloumis, D., Takahashi, M., Simonsen, K.B., Ayida, B.K., Barluenga, S., Winters, G.C., Hermann, T. Solid-phase synthesis of benzimidasole libraries biased for RNA targets // Tetrahedron Lett. 2003. V. 44. P. 2807−2811.
  23. Amemiya, S., Buhlmann, P., Umezawa, Y. Fluoresccnce-mediated sensing of guanosine derivatives based on multitopic hydrogen bonding // Chem. Commun. 1997. P. 1027−1028.
  24. Lin, K.-Y., Jones, R.J., Matteucci, M. Tricyclic 2'-deoxycytidine analogs: syntheses and incorporation into oligodeoxynucleotides which have enhanced binding to complementary RNA Hi. Am. Chem. Soc. 1995. V. 117. P. 3873−3874.
  25. Flanagan, W.M., Wolf, J.J., Olson, P., Grant, D., Lin, K.-Y., Wagner R.W., Matteucci M.D. A cytosine analog that confers enhanced potency to antisense oligonucleotides // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 3513−3518.
  26. Lin, K.-Y., Matteucci, M.D. A cytosine analogue capable of clamp-like binding in helical nucleic acids//J. Am. Chem. Soc. 1998. V. 120. P. 8531−8532.
  27. Frydman, L., Rosomando, P.C., Frydman, V., Fernandez, C.O., Frydman, Π’., Samejima, K. Interactions between natural polyamines and tRNA: an 15N NMR analysis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. P. 9186−9190.
  28. Frydman, B., Westler, W.M., Samejima, K. Spermine binds in solution to the TwC Loop of tRNAphe: evidence from a 750 MHz 'H-NMR analysis // J. Org. Chem. 1996. V. 61. P. 25 882 589. t i
  29. Amarantos, I., Kalpaxis, D.L. Photoaffinity polyamines: interactions with AcPhe-tRNA free in solution or bound at the P-site of escherichia coli ribosomes // Nucleic Acids Res. 2000. V. 28. P. 3733−3742.
  30. Heerschap, A., Walters, J.A., Hilbers, C.W. Influence of the polyamines spermine and spermidine on yeast tRNAPhe as revealed from its imino proton NMR spectrum // Nucleic Acids Res. 1986. V. 14. P. 983−998.
  31. Bibillo, A., Figlerowicz, M., Kierzek R. The non-enzymatic hydrolysis of oligoribonucleotides VI. The role of biogenic polyamines // Nucleic Acids Res. 1999., V. 27. P. 3931−3937.
  32. Komiyama, M., Yoshinari, K. Kinetic analysis of diamine-catalyzed RNA hydrolysis // J. Org. Chem. 1997. V. 62. P. 2155−2160.
  33. Hammann, C., Hormes, R., Sczakiel, G., Tabler, M. A spermidine-induced conformational change of long-armed hammerhead ribozymes: ionic requirements for fast cleavage kinetics // Nucleic Acids Res. 1997. V. 25. P. 4715−4722.
  34. Aguilar, J., Di’az, P., Escarti, F., Garcia-Espana, E., Gil, L., Soriano, C., Verdejo, B. Cation and anion recognition characteristics of open-chain polyamines containing ethyleriic and propylenic chains // Inorg. Chim. Acta. 2002. V. 339. P. 307- 316.
  35. Chand, D.K., Schneider, H.-J., Aguilar, J.A., Escarti, F., Garcia-Espana, E., Luis, S.V. Copper complexes of polyazan. cyclophanes and their interaction with DNA and RNA // Inorg. Chim. Acta. 2000. P. 71−78.
  36. McConnaughie, A.W., Spychala, J., Zhao, M., Boykin, D., Wilson, W.D. Design and synthesis of RNA-specific groove-binding cations: implications for antiviral drug design // J. Med. Chem. 1994. V. 37. P. 1063−1069. «
  37. Lomadze, N., Schneider, H.-J. Reversal of polyamine selectivity for DNA and RNA by steric hindrance // Tetrahedron Lett. 2002. V. 43. P. 4403−4405. «i' i
  38. An, H., Haly, B.D., Cook, P.D. New piperazinyl polyazacyclophane scaffolds. Libraries and biological activities // Bioorg. Med. Chem. Lett. 1998. V. 8. P. 2345−2350.
  39. Hwang, S., Tamilarasu, N., Ryan, K., Huq, I., Richter, S., Still, W.C., Rana, T.M. Inhibition of gene expression in human cells through small molecule-RNA interactions // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 12 997−13 002.
  40. Tamilarasu, N., Huq, I., Rana, T.M. Design, synthesis, and biological activity of a cyclic peptide: an inhibitor of HIV-1 Tat-TAR interactions in human cells // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2000. V. 10. P. 971−974.
  41. Hamy, F., Felder, E.R., Heizmann, G., Lazdins, J., Aboul-ela, F., Varani, G., Karn, J., Klimkait, T. An inhibitor of the Tat/TAR RNA interaction that effectively suppresses HIV-1 replication // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. V. 94. P. 3548−3553. *
  42. Wang, X., Huq, I., Rana, T.M. HIV-1 TAR RNA by an unnatural biopolymer // J. Am. Chem. Soc. 1997. V. 119. P. 6444−6445.
  43. Tamilarasu, N., Huq, I., Rana, T.M. High affinity and specific binding of HIV-1 TAR RNA by a tat-derived oligourca // J. Am. Chem. Soc. 1999. V. 121. P. 1597−1598.
  44. Kesavan, V., Tamilarasu, N., Cao, H., Rana, T.M. A new class of RNA-binding oligomers:'peptoid amide and ester analogues // Bioconjugate Chem. 2002. V. 13. P. 1171−1175.
  45. Tamilarasu, N., Huq, I., Rana, T.M. Targeting RNA with peptidomimetic oligomers in human cells // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2001. V. 11. P. 505−507.
  46. Lawton, G.R., Appella, D.H. Nonionic side chains modulate the affinity and specificity of binding between functionalized polyamines and structured RNA // J. Am. Chem. Soc. 2004. V. 126. P. 12 762−12 763.
  47. Dietrich, B., Fyles, T.M., Lehn, J.M., Pease, L.G., Fyles, D.L. Anion receptor molecules. i
  48. Synthesis and some anion binding properties of macrocyclic guanidinium salts // J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1978. V. 21. P. 934−936.
  49. Galan, A., Pueyo, E., Salmeron, A., De Mendoza, J. Selective complexation of adenosine monophosphate nucleotides by rigid bicyclic guanidinium abiotic receptors // Tetrahedron Lett. 1991. V. 32. P. 1827−1830.
  50. Jubian, V., Dixon, R.P., Hamilton, A.D. Molecular recognition and catalysis. Acceleration of phosphodiester cleavage by a simple hydrogen-bonding receptor // J. Am. Chem. Soc. 1992. V. 114. P. 1120−1121.
  51. He, G.-X., Browne, K.A., Groppe, J.C., Blasko, A., Mei, H.-Y., Bruice, T.C.i .i
  52. Microgontropens and their interactions with DNA. 1. Synthesis of the tripyrrole peptides Dien-Microgontropen-a,-b,-c and characterization of their interactions with dsDNA // J. Am.
  53. Bando, T., Narita, A., Sugiyama, H. Highly efficient sequence-specific DNA interstrand cross-linking by pyrrole/imidazole CPI conjugates // J. Am. Chem. Soc. 2003. V. 125. P. 34 713 485.
  54. Wang, L., Bailly, C., Kumar, A., Ding, D., Bajic, M., Boykin, D.W., Wilson, W.D. Specificj i imolecular recognition of mixed nucleic acid sequences: an aromatic dication that binds in thev '
  55. DNA minor groove as a dimmer // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. P. 12−16.r
  56. Dervan, P.B. Molecular recognition of DNA by small molecules // Bioorg. Med. Chem. 2001. V. 9. P. 2215−2235.
  57. Wilson, W.D., Ratmeyer, L., Zhao, M., Strekowski, L., Boykin, D. The search for structure-specific nucleic acid-interactive drugs: effects of compound structure on RNA versus DNA interaction strength // Biochemistry. 1993. V. 32. P. 4098−4104.
  58. Tanious, F.A., Veal, J.M., Buczak, H., Ratmeyer, L.S., Wilson, W.D. DAPI (4', 6-diamidino-2-phenylindole) binds differently to DNA and RNA: minor-groove binding at AT sites and intercalation at AU sites // Biochemistry. 1992. V. 31. P. 3103−3112.
  59. Rubin, J., Sundaralingam, M. An unexpected major groove binding of netropsin and distamycin A to tRNA (phe) // J. Biomol. Struct. Dyn. 1984. V. 2. P. 165−174.L
  60. Zakrzrewska, K., Pullman, B. Theoretical exploration of netropsin binding to tRNA (Phe).// J. Biomol. Struct. Dyn. 1985. V. 2. P. 737−743.
  61. Bailly, C., Colson, P., Houssier, C., Hamy, F. The binding mode of drugs to the TAR RNA of HIV-1 studied by electric linear dichroism // Nucleic Acids Res. 1996. V. 24. P. 1460−1464.
  62. Sadat-Ebrahimi, S. E., Wilton, A. N., Douglas, K. T. Unique binding site for bis-benzimidazoles on transfer RNA // J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1997. P. 385−386.
  63. Dassonneville, L., Hamy, F., Colson, P., Houssier, C., Bailly, C. Binding of Hoechst 33 258 to the TAR RNA of HIV-1. Recognition of a pyrimidine bulge-dependent structure // Nucleic Acids Res. 1997. V. 25. P. 4487−4492.
  64. Helm, M., Kopka, M.L., Sharma, S.K., Lown, J.W., Giege, R. Rnase activity of DNA minor groove binder with a minimalist catalytic motif from Rnase A // Biochem. Biophys. Res. Comm. 2001. V. 281. P. 1283−1290.
  65. Botto, R.E., Coxon, B. Nitrogen-15 nuclear magnetic resonance spectroscopy of neomycin B and related aminoglycosides // J. Am. Chem. Soc. 1983. V. 105. P. 1021−1028.
  66. Yoshizawa, S., Fourmy, D., Eason, R. G., Puglisi, D. Sequence-specific recognition of the major groove of RNA by deoxystreptamine // Biochemistry. 2002. V. 41. P. 6263−6270.
  67. Recht, M. I., Fourmy, D., Blanchard, S. C., Dahlquist, K. D., Puglisi, J. D. RNA sequence determinants for aminoglycoside binding to an A-site rRNA model oligonucleotide // J. Mol. Biol. 1996. V. 262. P. 421−436.
  68. Nature. 1991. V. 353. P. 368−370.
  69. Hermann, T., Westhof, E. Aminoglycoside binding to the hammerhead ribozyme: a general model for the interaction of cationic antibiotics with RNA // J. Mol. Biol. 1998. V. 276. P. 903 912.
  70. Stage, T.K., Hertel, K.J., Uhlenbeck, O.C. Inhibition of the hammerhead ribozyme by neomycin//RNA. 1995. V. 1. P. 95−101.
  71. Clouet-d'Orval, B., Stage, T.K., Uhlenbeck, O.C. Neomycin inhibition of the hammerheadinribozyme involves ionic interactions // Biochemistry. 1995. V. 34. P. 11 186−11 190.
  72. Hermann, T., Westhof, E. Saccharide-RNA recognition // Biopolymers. 1998. V. 48. P. 155 166.
  73. Zapp, M.L., Stern, S., Green, M.R. Small molecules that selectively block RNA binding of HIV-1 Rev protein inhibit Rev function and viral production // Cell. 1993 V. 74. P. 969−978.
  74. Mei, H.-Y., Galan, A.A., Halim, N.S., Mack, D.P., Moreland, D.W., Sanders, K.B.,' fruong, H., Czarnik, A.W. Inhibition of an HIV-1 Tat-derived peptide RNA by aminoglycoside antibiotics // Bioorg. Med. Chem. Lett. 1995. V. 5. P. 2755−2760.
  75. Wang, S., Huber, P. W., Cui, M., Czarnik, A. W., Mei, H.-Y. Binding of neomycin to the TAR element of HIV-1 RNA induces dissociation of Tat protein by an allosteric mechanism // Biochemistry. 1998. V. 37. P. 5549−5557.
  76. Tassew, N., Thompson, M. Binding affinity and inhibitory potency of neomycin and streptomycin on the Tat peptide interaction with HIV-1 TAR RNA detected by on-line acoustic wave sensor// Org. Med. Biomol. Chem. 2003. V. 1. P. 3268−3270.
  77. Faber, C., Sticht, H., Schweimer, K., Rosch, P. Structural rearrangements of HIV-1 Tat-responsive RNA upon binding of neomycin B // J. Biol. Chem. 2000. V. 275. P. 20 660−20 666.
  78. Kirk, S.R., Tor, Y. Hydrolysis of an RNA dinucleiside monophosphate by neomicine B // Chem. Commun. 1998. V. l.P. 147−148.
  79. Riguet, E., Tripathi, S., Chaubey, B., Desire, J., Pandey, V.N., Dccout, J.-L. A peptide nucleic acid neamine conjugate that targets and cleaves HIV-1 TAR RNA inhibits viral replication // J. Med. Chem. 2004. V. 47. P. 4806−4809.
  80. Earnshaw, D.J., Gait, M.J. Hairpin ribozyme cleavage catalyzed by aminoglycosideantibiotics and the polyamine spermine ih the absence of metal ions // Nucleic Acids Res. V. 26.1. P. 5551−5561.
  81. Griffey, R.H., Hofstadler, S.A., Sannes-Lowery, K.A., Ecker, D.J., Crooke, S.T. Determinants of aminoglycoside-binding specificity for rRNA by using mass spectrometry // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1999. V. 96. P. 10 129−10 133.
  82. Tor, Y., Hermann, T., Westhof, E. Deciphering RNA recognition: aminoglycoside binding to the hammerhead ribozyme // Chem. Biol. 1998. V. 5. P. R277-R283.>
  83. Mikkelsen, N.E., Brannvall, M., Virtanen, A., Kirsebom, L.A. Inhibition of RNase P RNA cleavage by aminoglycosides // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1999. V. 96. P. 6155−6160. β€’
  84. Blount, K.F., Tor, Y. Using pyrene-labeled HIV-1 TAR to measure RNA-small molecule binding // Nucleic Acids Res. 2003. V. 31. P. 5490−5500.
  85. Wang, H., Tor, Y. Electrostatic interactions in RNA aminoglycosides binding // J. Am. Chem. Soc. 1997. V. 119. P. 8734−8735.
  86. Chen, Q., Shafer, R.H., Kuntz, I.D. Structure-based discovery of ligands targeted to the RNA double helix // Biochemistry. 1997. V. 36. P. 11 402−11 407.
  87. Kuntz, I.D., Meng, E.C., Shoichet, B.K. Receptor-based molecular design // Acc. Chem. Res. 1994. V. 27. P. 117−123.
  88. Wallis, M.G., von Ahsen, U., Schroeder, R., Famulok, M. A novel RNA motif for neomycin recognition // Chem. Biol. 1995. V. 2. P. 543−552.
  89. Famulok, M., Huttenhofer, A. In vitro selection analysis of neomycin binding RNAs with a mutagenized pool of variants of the 16S rRNA decoding region // Biochemistry. 1996. V. 35. P. 4265−4270.
  90. Wang, Y., Rando, R.R. Specific binding of aminoglycoside antibiotics to RNA // Chem. Biol. 1995. V. 2. P. 281−290.
  91. Hermann, T. Rational ligand design for RNA: the role of static structure and conformational flexibility in target recognition // Biochimie. 2002. V. 84. P. 869−875.
  92. Michael, K., Wang, H., Tor, Y. Enhanced RNA binding of dimerized aminoglycosides // Bioorgan. Med. Chem. 1999. V. 7. P. 1361−1371.i. .
  93. Litovchick, A., Evdokimov, A.G., Lapidot, A. Aminoglycoside-arginine conjugates that bind TAR RNA: synthesis, characterization, and antiviral activity // Biochemistry. 2000. y. 39. P. 2838−2852.
  94. Baker, T.J., Luedtke, N.W., Tor, Y., Goodman, M. Synthesis and anti-HIV activity of guanidinoglycosides // J. Org. Chem. 2000. V. 65. P. 9054−9058.
  95. Luedtke, N.W., Baker, T.J., Goodman, M., Tor, Y. Guanidinoglycosides: a novel family of RNA ligands // J. Am. Chem. Soc. 2000. V. 122. P. 12 035−12 036.
  96. Edwards, T.E., Sigurdsson, S.T. Electron paramagnetic resonance dynamics signatures of1. H «* ^
  97. TAR RNA-small molecule complexes provide insight into RNA structure and recognition // Biochemistry. 2002. V. 41. P. 14 843−14 847.
  98. Wong, C.-H., Hendrix, M., Manning, D.D., Rosenbohm, C., Greenberg, W.A. A- library approach to the discovery of small molecules that recognize RNA: use of a 1,3-hydroxyamine motif as core // J. Am Chem. Soc. 1998. V. 120. P. 8319−8327.
  99. Hendrix, M., Priestley, E.S., Joyce, G.F., Wong, C.-H. Direct observation of aminoglycoside-RNA interactions by surface plasmon resonance // J Am. Chem. Soc. 1997. V. 119. P.3641−3648.
  100. Wong, C.-H., Hendrix, M., Priestley, E S. Greenberg, W.A. Specificity of aminoglycosideantibiotics for the A-site of the decoding region of ribosomal RNA // Chem. Biol. 1998.V.5. P.1. V ' Β¦ 397.406.'i
  101. Hendrix, M., Alper, P.B., Priestley, E.S., Wong, C.-H. Hydroxyamines as a new motif for the molecular recognition of phosphodiesters: implications for aminoglycoside-RNA interactions //Angew. Chem., Int. Ed. Engl. 1997. V. 36. 95−98.
  102. Wong, C.-H., Bryan, M.C., Nyffeler, P.T., Liu, H., Chapman, E. Synthesis of carbohydrate-based antibiotics // Pure Appl. Chem. 2003. V. 75. P. 179−186.
  103. Ding, Y., Hofstadler, S.A., Swayze, E.E., Griffey, R.H. An efficient synthesis of mimetics of neamine for RNA recognition // Org. Lett. 2001. V. 3. P. 1621−1623.. '
  104. Vourloumis, D., Winters, G.C., Simonsen, K.B., Takahashi, M., Ayida, B.K., Shandrick, S., Zhao, Q., Han, Q., Hermann, T. Aminoglycoside-hybrid ligands targeting the ribosomal decoding site // ChemBioChem. 2005. V. 6. P. 58−65.
  105. Tok, J. B.-H., Rando, R.R. Simple aminols as aminoglycoside surrogates // J. Am. Chem. Soc. 1998. V. 120. P. 8279−8280.
  106. Simonsen, K.B., Ayida, B.K., Vourloumis, D., Winters, G.C., Takahashi, M., Shandrick, S., Zhao, Q., Hermann, T. Piperidine glycosides targeting the ribosomal decoding' !site // ChemBioChem. 2003. V. 4. P. 886−890. '
  107. Alper, P., Hendrix, M., Sears, P., Wong, C.H. Probing the specificity of aminoglycoside-ribosomal RNA interactions with designed synthetic analogs // J. Am. Chem. Soc. 1998. V. 120. P. 1965−1978.
  108. Nunns, C.L., Spence, L.A., Slater, M.J., Berrisford, D.J. Synthesis of neamine libraries for RNA recognition using solution phase chemistry// Tetrahedron Lett. 1999. V. 40. P. 9341−9345.v
  109. Hanessian, S., Tremblay, M., Kornienko, A., Moitessier, N. Design, modeling and synthesis of functionalized paromamine analogs // Tetrahedron. 2001. V. 57. P. 3255−3265.
  110. Haddad, J., Kotra, L.P., Llano-Sotelo, B., Kim, C., Azucena, E.F., Liu, M., Vakulenko, S.B., Chow, C.S., Mobashery, S. Design of novel. antibiotics that bind to the ribosomal acyltransferase site // J. Am. Chem. Soc. 2002. V. 124. P. 3229−3237.
  111. Zhao, M., Janda, L., Nguyen, J., Strekowski, L., Wilson, W.D. The interaction of substituted 2-phenylquinoline intercalators with poly (A)poly (U): classical and:-threading intercalation modes with RNA//Biopolymers. 1994. V. 34. P. 61−73.
  112. Ratmeyer, L., Zapp, M.L., Green, M.R., Vinayak, R., Kumar, A., Boykin, D.W., Wilson, W.D. Inhibition of HIV-1 Rev-RRE interaction by diphenylfuran derivatives // Biochemistry. 1996. V. 35. P. 13 689−13 696.
  113. Li, K., Davis, T.M., Kumar, A., Singh, R., Boykin, D.W., Wilson, W.D. Heterocyclic inhibitor of the Rev-RRE complex binds to RRE as a dimmer // Biochemistry. 2001. V. 40. P. 1150−1158. '
  114. Xiao, G., Kumar, A., Li, K., Rigl, T., Bajic, M., Davis, T.M., Boykin, D.W., Wilsoh, W.D. Inhibition of the HIV-1 Rev-RRE complexformarion by unfused aromatic cations // Biorg. Med. Chem. 2001. V. 9. P. 1097−1113.
  115. Gelus, N., Bailly, C., Hamy, F., Klimkait, T., Wilson, W. D., Boykin, D. W. Inhibition of!
  116. HIV-1 Tat-TAR interaction by diphenylfuran derivatives: effects of the terminal basic side chains // Bioorg. Med. Chem. Lett. 1999. V. 7. P. 1089−1096. ' !
  117. Palm, B.S., Piantanida, I., Zinic, M., Schneider, H.-J. The interaction of new 4,9-diazapyrenium compounds with double stranded nucleic acids // J. Chem. Soc. Perkin Trans. 2. 2000. P. 385−392.
  118. Hamy, F., Brondani, V., Florscheimer, A., Stark, W., Blommers, J.J., Klimkait, T. A new class of HIV-1 Tat antogonist acting through Tat-TAR inhibition // Biochemistry. 1998. V. 37. P. 5086−5095., i
  119. Gelus, N., Hamy, F., Bailly, C. Molecular basis of HIV-1 TAR RNA specific recognitionby an acridine Tat-antagonist // Bioorg. Med. Chem. Lett. 1999. V. 7. P. 1075−1079.. β€’i .
  120. Kirk, S.R., Luedtke, N.W., Tor, Y. Neomycin-acridine conjugate: a potent inhibitor of Rev-RRE binding // J. Am. Chem. Soc. 2000. V. 122. P. 980−981.
  121. Ratmeyer, L., Vinayak, R., Zon, G., Wilson, W.D. An ethidium analog that binds with high specificity to a base-bulged duplex from the TAR RNA region of the HIV-1 genome // J. Med. Chem. 1992. V. 35. P. 966−968. -
  122. Gayle, A.Y., Baranger, A.M. Inhibition of the U1A-RNA complex by an aminaacridine derivative // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2002. V. 12. P. 2839−2842., f
  123. Luedtke, N.W., Liu, Q., Tor, Y. RNA-ligand interactions: affinity and specificity of aminoglycoside dimers and acridine conjugates to the HIV-1 Rev Response Element // Biochemistry. 2003. V. 42. P. 11 391−11 403.
  124. Krishnamurthy, M., Gooch, B. D., Beal, P. A. Peptide quinoline conjugates: a new class of RNA-binding molecules // Org. Lett. 2004. V. 6. P. 63−66.
  125. Carlson, C.B., Beal, P.A. Solid-phase synthesis of acridine-based threading intercalator peptides // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2000. V. 10. P. 1979−1982.
  126. Gooch, B.D., Beal, P.A. Recognition of duplex RNA by helix-threading peptides'.// J. Am. j i
  127. Chem. Soc. 2004. V. 126. P. 10 603−10 610.
  128. Piantanida, I., Palm, B.S., Cudic, P., Zinic, M., Schneider, H.-J. Phenanthridinium cyclobisintercalands. Fluorescence sensing of AMP and selective binding to single-stranded nucleic acids // Tetrahedron Lett. 2001. V. 42. P. 6779−6783.
  129. Morin, G.T., Paugam, M.-F., Hughes, M.P., Smith, B.D. Boronic acids mediate glycoside transport through a liquid organic membrane via reversible formation of trigonal boronate esters Hi. Org. Chem. 1994. V. 59. P. 2724−2728.
  130. James, T.D., Samankumara, K.R.A.S., Shinkai, S. Saccharide sensing with molecular receptors based on boronic acid // Angew. Chem., Int. Ed. Engl. 1996. V. 35. P. 1910−1922.
  131. Riggs, J.A., Hossler, K.A., Smith, B.D., Karpa, M.J., Griffin, G., Duggan, P.J. Nucleotide carrier mixture with transport selectivity for ribonucleoside-5'-phosphates // Tetrahedron Lett. 1996. V. 37. P. 6303−6306.- /
  132. Tung, C., Wei, Z. Leibowitz, M.J., Stein, S. Design of peptide-acridine mimics of1» Vribonuclease activity// Proc. Natl. Acad. Sci USA. 1992. V. 89. P. 7114−7118.
  133. Lorente, A., Espinosa, J.F., Fernandez-Saiz, M., Lehn, J.-M., Wilson, W.D., Zhong, Y.Y. Synthesis of imidazole-acridine conjugates as ribonuclease A mimics // Tetrahedron Lett. 1996. V. 37. P. 4417−4420.
  134. Vlassov V.V., Zuber G., Felden Π’., Behr J.-P., Giege R. Cleavage of RNA with imidazole constructs: a new approach for probing RNA structure // Nucleic Acids Res. 1995. V. 23. P. 3161−3167. .1.'ll»
  135. Hovinen, J., Guzaev, A., Azhayeva, E., Azhayev, A., Lonnberg, H. Imidazole tethered oligodeoxyribonucleotides: synthesis and RNA cleaving activity // J. Org. Chem. 1995. V. 60, 2205−2209.
  136. , H.C., ΠšΡƒΠ·Π½Π΅Ρ†ΠΎΠ²Π°, И.JI., Власов, А.Π’., Бильников, Π’.Н., Π—Π΅Π½ΠΊΠΎΠ²Π°, М.А., Власов, f
  137. Π’.Π’. БинтСтичСскиС Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹. 1. Π‘ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· ΠΈ ΡΠ²ΠΎΠΉΡΡ‚Π²Π° искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·, tсодСрТащих РНК-ΡΠ²ΡΠ·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΉ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ остатков Π»ΠΈΠ·ΠΈΠ½Π° // Π‘ΠΈΠΎΠΎΡ€Π³. Π₯имия. 1999. Π’. 25. Π‘. 723−732.
  138. , Jl.C., Π”ΠΎΠ½ΠΈΠ½Π°, А.А., Π’Π°ΠΌΠΊΠΎΠ²ΠΈΡ‡, Н.Π’., КовалСв, Н.А., Π—Π΅Π½ΠΊΠΎΠ²Π°, М.А.,
  139. , Π’.Н. Π˜ΡΠΊΡƒΡΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹. Π‘ΠΎΠΎΠ±Ρ‰Π΅Π½ΠΈΠ΅ 6. РибонуклСазная Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ1Ρ‚Π΅Ρ‚Ρ€Π°ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄ΠΎΠ² Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ аминокислот, Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… каталитичСский Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ Π ΠΠšΠ°Π·Ρ‹ Π’1 // Изв. АН. Π‘Π΅Ρ€. Π₯ΠΈΠΌ. 2005. Π’. 54. Π‘. 2596−2605.
  140. , Π”.А., Π‘Π΅ΠΊΠΊ, И.Π­., Бильников, B.H., Π—Π΅Π½ΠΊΠΎΠ²Π°, М.А., Шишкин, Π“. Π’.i I
  141. , Π”. А.,. Π‘Π΅ΠΊΠΊ, И. Π­, Шишкин, Π“. Π’., Власов, Π’.Π’., Бильников, Π’. Н. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· искусствСнных Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ 1, 4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ2.2.2.ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½Π° ΠΈ ΠΈΠΌΠΈΠ΄Π°Π·ΠΎΠ»Π° // Изв. АН. Π‘Π΅Ρ€. Π₯ΠΈΠΌ. 2002. Π’. 7. Π‘. 1014−1024.
  142. , М.А., Π§ΡƒΠΌΠ°ΠΊΠΎΠ²Π°, Н.Π›., Власов, А.Π’., ΠšΠΎΠΌΠ°Ρ€ΠΎΠ²Π°, Н.И., Π’Π΅Π½ΡŒΡΠΌΠΈΠ½ΠΎΠ²Π°, А.Π“.,β€’ >
  143. , Π’.Π’., Бильников, Π’.Н. БинтСтичСскиС конструкции, Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΈΠΌΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρƒ, А // Мол. Биология. 2000. Π’. 34. Π‘. 456−460 β€’i '
  144. , Π”.А., ΠœΠΈΡ€ΠΎΠ½ΠΎΠ²Π°, Н.Π›., Π‘Π΅ΠΊΠΊ, И.Π­., Π—Π΅Π½ΠΊΠΎΠ²Π°, М.А., Шишкин, Π“. Π’., Власов, F
  145. Π’.Π’., Бильников, Π’. Н. Π₯имичСскиС Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π·Ρ‹. 4. Анализ Π΄ΠΎΠΌΠ΅Π½Π½ΠΎΠΉ структуры-'НО, химичСских Ρ€ΠΈΠ±ΠΎΠ½ΡƒΠΊΠ»Π΅Π°Π· Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ ΠΊΠΎΠ½ΡŠΡŽΠ³Π°Ρ‚ΠΎΠ² 1, 4-Π΄ΠΈΠ°Π·Π°Π±ΠΈΡ†ΠΈΠΊΠ»ΠΎ2.2.2.ΠΎΠΊΡ‚Π°Π½Π° // Π‘ΠΈΠΎΠΎΡ€Π³.
  146. Π₯имия. 2002. Π’. 28. Π‘. 367−378. β€’ !
  147. Soukup, G.A., Breaker, R.R. Relationship between internucleotide linkage geometry and the stability of RNA // RNA. 1999. V. 5. P. 1308−1325. '>',
  148. McKay, D.B., Wedekind, J.E. Small Ribozymes // The RNA world / Eds Gesteland R.F., Cech T.R., Atkins J.F. New York: Cold Spring Harbor Lab. Press, 1999. P. 265−286.
  149. Tabushu, I., Imuta, J.-I., Seko, N., Kobuke, Y. Highly discriminative binding of nucleoside phosphates by a lipophilic diammonium salt embedded in bicyclic skeleton // J. Am. Chem. Soc. 1978. V. 100. P. 6287−6288.
  150. Narlikar, G.J., Hcrschlag, D. Mechanistic aspects of enzymatic catalysis: lessons from comparison of RNA and protein enzymes // Annu. Rev. Biochem. V. 66. 1997. P. 19−59.
  151. Shan, S.-O., Herschlag, D. The change in hydrogen bond strength accompanying charge rearrangement: implications for enzymatic catalysis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 93. 1996.p. 14 474−14 479.
  152. Katritzky, A.R., Rao, M.S.C., Stevens, J. Compounds with potential 2 -order nonlinear optical-activity// J. Heterocycl. Chem. 1991. V. 28. P. 1115−1119.
  153. Garratt, P. J., Ibbett, A.J., Ladbury, J.E., O’Bien, R., Hursthouse, M.B., Abul Malik, K.M.≤>
  154. Molecular design using electrostatic interections. 1. Synthesis and properties of flexible tripodand tri- and hexa-cations witn restricted conformations. Molecular selection of ferricyanide from ferrocyanide // Tetrahedron. 1998. V. 54. P. 949−968.
  155. Cohen, J.I., Castro, S., Han, J.-a., Behaj, V., Engel, R. Polycations. IX. Polyammonium derivatives of cyclodelxtrins: syntheses and binding to organic oxyanions // Heteroatom Chem. 2000. V. 11. P. 546−555.
  156. Giege, R., Felden, Π’., Silnikov, V.N., Zenkova, M.A., Vlassov, V.V. Cleavage of RNA with synthetic ribonuclease mimics // Methods Enzymol. 2000. V. 318. P. 147−165.. 1
  157. Rogoza, A.V. Superlipophilicity (Xenophilicity) and Microlipophilicity of Perfluorinated
  158. Saturated Groups. Part 1. Qualitative Selection Criteria for Biologically Active Substances
  159. Containing Perfluorinated Fragments // International conference on natural products andiphysiologically active substances (ICNPAS-98). November 30 December 6, 1998. i t
  160. Novosibirsk, Russia. P. 149.
  161. Jakersman, К. J., Tisdale, M., Russell, S. Efficacy of 2'-fluororiboside against influenza A and Π’ virus inferrets // Antimicrobial agents and chemotherapy. 1994. V. 38. P. 1864−1867.
  162. Tisdale, M., Ellis, M., Klumpp, K. Inhibitionof 2'-fluororiboside against influenza A and Π’ virus inferrets // Antimicrobial agents and chemotherapy. 1994. V. 38. P. 1864−1867 —
  163. , И. Π’. N-Π“Π°Π»ΠΎΠ³Π΅Π½Ρ€Π΅Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Ρ‹. N-ГалогСнсукцинимиды Π² ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΎΠΌ синтСзС ΠΈ Π² Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… соСдинСний // Π–ΡƒΡ€Π½. ΠžΡ€Π³. Π₯ΠΈΠΌΠΈΠΈ. 2002. Π’. 38. Π‘. 327−359.
  164. Cerichelli, G., Illuminati, G., Lillocci, C. Structural and mechanistic effects on the rates of ring-opening reactions in the 5−16-membered-ring region // J. Org. Chem. 1980. V. 45. P. 39 523 957.
  165. Zenkova, M., Beloglazova, N., Sil’nikov, V., Vlassov, V.V., Giege, R. RNA cleavage by l, 4-diazabicyclo2.2.2.octane-imidazole conjugates // Methods Enzymol. 2001. V. 341. P. 468 490.
  166. Kierzek, R. Nonenzymatic hydrolysis of oligoribonucleotides // Nucleic Acids Res. 1992. V. 20. P. 5073−5077.
  167. , А., Π€ΠΎΡ€Π΄, P. Π‘ΠΏΡƒΡ‚Π½ΠΈΠΊ Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΊΠ°: ΠΏΠ΅Ρ€. Ρ Π°Π½Π³Π». М.: ΠœΠΈΡ€, 1976. 541 с. '
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ