Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Кинетические закономерности функционирования медиаторных биосенсоров на основе бактерий Gluconobacter oxydans

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

На пятом этапе была исследована селективность микробных биосенсоров, для этого сравнили величины ответов сенсоров на различные углеводы и спирты. Установлено, что природа медиатора переноса электронов оказывает влияние на селективность микробных биосенсоров. По результатам проведенных экспериментов был сделан вывод, что медиаторные биосенсоры на основе бактерий Gluconobacter oxydans благодаря… Читать ещё >

Кинетические закономерности функционирования медиаторных биосенсоров на основе бактерий Gluconobacter oxydans (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИИ
  • ГЛАВА 1. МЕДИАТОРНЫЕ БИОСЕНСОРЫ НА ОСНОВЕ ЦЕЛЫХ КЛЕТОК
    • 1. 1. Механизмы генерации сигнала в микробных биосенсорах
    • 1. 2. Медиаторы, их свойства. Основные требования к медиаторам переноса электронов
      • 1. 2. 1. Ферроцен и его производные
      • 1. 2. 2. Индофенолы
      • 1. 2. 3. Комлексные соединения металлов с переменной валентностью
      • 1. 2. 4. Хиноны
    • 1. 3. Практическое применение медиаторных биосенсоров на основе целых клеток
    • 1. 4. Особенности строения и метаболизма бактерий Gluconobacter oxydans и перспективы их применения в микробных сенсорах
    • 1. 5. Мембранлокализованные глюкозо- и алкогольдегидрогеназы бактерий Gluconobacter oxydans и их применение в биосенсорах

Биосенсоры — аналитические приборы нового поколения, совмещающие в себе идеи и достижения современной биотехнологии, физико-химических методов анализа, электронных технологий. Большинство коммерческих биосенсоров основаны на электрохимическом типе детекции и содержат ферменты в качестве биорецепторного элемента.

Значительный прогресс в создании амперометрических биосенсоров стал возможен благодаря использованию в них соединений, способных к переносу электронов от активных центров ферментов на электрод — медиаторов электронного транспорта.

Медиаторы способны взаимодействовать не только с выделенными ферментами, но и с ферментами в составе бактерий. Использование целых клеток вместо ферментов в биорецепторных элементах имеет ряд преимуществ: микроорганизмы дешевле очищенных ферментовбиосенсоры на основе целых клеток (в частности, бактерий) обладают каталитической активностью по отношению ко многим субстратам, что является преимуществом при определении суммарного содержания органических соединений (определения БПК сточных вод или суммарного содержания углеводов и спиртов в ферментационных средах) — биосенсоры на основе целых клеток во многих случаях характеризуются повышенным сроком эксплуатации.

Известно, что поверхностная локализация ферментов в мембранах бактериальных клеток облегчает их взаимодействие с медиаторами электронного транспорта. Для детекции легкоутилизируемых углеводов и спиртов перспективными могут стать медиаторные биосенсоры на основе бактерий Glu-conobacter oxydans, содержащих мембранлокализованные ферменты.

Электрокаталитическое окисление субстратов бактериями в присутствии медиаторов электронного транспорта мало изучено. Представляется актуальным исследование кинетических особенностей электрокаталитического окисления легкоутилизируемых субстратов бактериями Gluconobacter oxydans в присутствии медиаторов электронного переноса для разработки принципов создания микробных медиаторных биосенсоров.

Цель работы. Выявление кинетических закономерностей функционирования амперометрических медиаторных биосенсорных систем на основе бактерий Gluconobacter oxydans и применение этих закономерностей для разработки макета биосенсора.

Для достижения указанной цели в работе решались следующие задачи:

1. Исследование возможности применения соединений различного строения, обладающих обратимыми окислительно-восстановительными свойствами, в качестве медиаторов в биосенсорах на основе целых клеток микроорганизмов G. oxydans.

2. Определение лимитирующей стадии процессов, протекающих в микробных медиаторных электродах.

3. Сравнение эффективности медиаторов электронного транспорта в биосенсорных системах на основе иммобилизованных бактерий G. oxydans.

4. Создание лабораторного макета амперометрического медиаторного биосенсора на основе бактерий G. oxydans. Определение рабочих параметров функционирования (рН, концентрация солей, концентрация медиатора, масса клеток на электроде) микробных биосеснсоров на основе G. oxydans и различных медиаторов переноса электронов.

5. Применение разработанного макета биосенсора для экспресс-определения БПК.

Научная новизна. Получены новые данные о возможности переноса заряда в системах «иммобилизованные бактерии G. oxydans — ферроцены и хиноны». Впервые показана возможность электрокаталитического окисления глюкозы целыми клетками G. oxydans на электродах, модифицированных ацетилферроценом, ферроценкарбальдегидом, 2,5-дибром-1,4-бензохиноном, 2-метил-1,4-бензохиноном. Предложено использовать такие системы как основу для создания безреагентных микробных биосенсоров.

Моделирование процессов, протекающих в рецепторном элементе микробного медиаторного биосенсора, позволило идентифицировать скоростьопределяющую стадию биоэлектрокаталитического окисления глюкозы иммобилизованными на поверхности графитовых электродов бактериями G. oxydans при участии медиаторов электронного транспорта. На основе анализа процессов, протекающих в микробных медиаторных биосенсорах, в рамках механизма «пинг-понг» получены ряды эффективности медиаторов переноса электронов.

Выявлен эффект изменения субстратной специфичности бактерий G. oxydans при электрокаталитическом окислении углеводов и спиртов в присутствии искусственных (медиаторов) и естественного (кислорода) акцепторов электронов, который имеет существенное значение при создании биосенсорных систем для анализа многокомпонентных смесей.

Результаты создают основы формирующегося в настоящее время нового направления медиаторных клеточных электродов и открывают новые перспективы для создания микробных биосенсоров.

Практическая значимость работы. Выявленные в работе закономерности функционирования медиаторных биосенсоров на основе бактерий Glu-conobacter oxydans могут быть использованы при разработке биосенсоров на основе других микроорганизмов для детекции различных соединений.

Разработан действующий макет безреагентного амперометрического микробного медиаторного биосенсора для определения БПК, который может служить прототипом опытного образца прибора для серийного освоения.

Апробация работы. Результаты работы докладывались на Международной Пущинской школе-конференции молодых ученых «Биология — Наука XXI века» (г. Пущино Московской области) в 2002;2006 гг.- VIII Международном конгрессе по биосенсорам, 24 — 26 мая 2004 г. (г. Гранада, Испания) — Международной конференции студентов и аспирантов по фундаментальным наукам «Ломоносов-2005» (г. Москва) 12−15 апреля 2005 г., Международном конгрессе по аналитическим наукам «ICAS-2006», 25−30 июня 2006 (г. Москва), IV Международной научной конференции «Химия, химическая технология и биотехнология на рубеже тысячелетий», 11−16 сентября 2006 г. (г.

Томск). Исследование поддержано грантом РФФИ «Закономерности функционирования ферментных систем бактериальных клеток в условиях естественного и электрокаталитического окисления субстратов» (№ 01−04−96 023). По теме диссертации опубликовано 6 статей и 10 сообщений в тезисной форме.

ВЫВОДЫ.

1. Установлено, что 2-метил- 1,4-бензохинон, 2,5-дибром-1,4-бензохинон, ацетилферроцен, ферроценкарбальдегид могут служить медиаторами переноса электронов при электрокаталитическом окислении глюкозы иммобилизованными бактериями G. oxydans.

2. Впервые выявлено влияние природы заместителей на медиаторные свойства хинонов и ферроценов. Показано, что введение акцепторных заместителей может ухудшить медиаторные свойства производных ферроцена и 1,4-бензохинона.

3. Проведена оценка лимитирующих стадий процессов, протекающих на микробных медиаторных электродах. Установлено, что при концентрациях глюкозы выше 2 ммоль/л протекающие в микробных биосенсорах процессы лимитирует ферментативная реакция, при концентрациях глюкозы ниже 2 ммоль/л кинетический контроль функционирования биосенсора сменяется на диффузионный.

4. На основе анализа в рамках механизма «пинг-понг» процессов, протекающих в микробных медиаторных биосенсорах в режиме кинетического контроля, получены ряды эффективности медиаторов переноса электронов: гексацианоферрат (III) калия<2,6-дихлорфенолиндофенол<�и-бензохинон (для водорастворимых медиаторов) — 2-метил-1,4-бензохинон<1,1 '-диметилферроцен<�фер-роцен<2,5-дибром-1,4-бензохинон (для иммобилизованных медиаторов).

5. Найдены оптимальные параметры функционирования микробных био-сеснсоров на основе G oxydans и различных медиаторов электронного транспорта (рН среды измерения, концентрация солей буферного раствора, концентрация медиатора, масса бактерий на электроде). Полученные данные использованы для создании макета медиаторного биосенсора для экспресс-определения БПК.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Анализ литературных данных показывает, что использование в биосенсорах целых клеток в сочетании с медиаторами переноса электронов открывает широкие перспективы для детекции различных веществ. Вместе с тем исследования в данной области носят в основном прикладной характер, а протекающие в микробных медиаторных биосенсорах процессы изучены недостаточно.

Бактерии рода Gluconobacter, благодаря мембранной локализации основных ферментов катаболизма спиртов и углеводов — альдози алкогольде-гидрогеназ, а также другим физиолого-биохимическим особенностям, являются удобным объектом для изучения закономерностей биоэлектрокаталити-ческого окисления субстратов в присутствии медиаторов переноса электронов в биосеснсорах.

В связи с изложенным выше, представлялось целесообразным проведение исследований, направленных на выявление кинетических закономерностей функционирования амперометрических медиаторных биосенсорных систем на основе бактерий Gluconobacter oxydans и применение выявленных закономерностей для разработки макета биосенсора. Для этого были предприняты следующие шаги:

1. На первом этапе методом циклической вольтамперометрии была изучена возможность использования некоторых малорастворимых в водных средах ферроценов и хинонов (ферроцен, 1,1'-диметилферроцен, ацетилферроцен, ферроценкарбальдегид, 2,5-дибром-1,4-бензохинон, 2-метил-1,4-бензохинон, 1,2-нафтохинон) в качестве медиаторов переноса электронов в биосенсорах на основе бактерий Gluconobacter oxydans. Выбор данных веществ в качестве потенциальных медиаторов был продиктован необходимостью создания безреагентных биосенсорных систем, т.к. описанные ранее в системах с бактериями Gluconobacter oxydans медиаторы (2,6-дихлорфенолиндофенол, пбензохинон, гексацианоферрат (III) калия) хорошо растворимы в воде и применяются в биосенсорных системах в составе рабочих растворов. Применение вольтамперометрического метода позволило получить новые данные о возможности переноса заряда в системах с бактериями Gluconobacter oxydans в присутствии ферроцена, 1,1'-диметилферроцена, ацетилферроцена, ферроцен-карбальдегида, 2,5-дибром-1,4-бензохинона, 2-метил-1,4-бензохинона. Из полученных вольтамперных зависимостей были определены окислительно-восстановительные потенциалы исследовавшихся медиаторов. Для дальнейшей работы были отобраны четыре медиатора с низкими значениями потенциалов: ферроцен, 1,1'-диметилферроцен, 2,5-дибром-1,4-бензохинон, 2-метил-1,4-бензохинон.

2. На втором этапе было проведено определение лимитирующей стадии процессов, протекающих в микробных медиаторных биосенсорах при биоэлектрокаталитическом окислении глюкозы в присутствии описанных ранее в системах с бактериями Gluconobacter oxydans и отобранных на предыдущем этапе работы медиаторов переноса электронов. Для обработки экспериментальных данных был применен алгоритм для выявления лимитирующей стадии, который позволяет путем математической обработки зависимости генерируемого биосенсором тока от концентрации субстрата определить вклад ферментативных и диффузионных процессов в значение эффективной константы скорости. Данный подход позволил выявить диапазон концентраций глюкозы (более 2 ммоль/л), в котором исследуемые биосенсоры функционируют в режиме кинетического контроля. При концентрациях глюкозы ниже 2 ммоль/л кинетический контроль сменялся на диффузионый.

3. Выявление на предыдущем этапе диапазона концентраций глюкозы, соответствующих кинетическому контролю, позволило перейти к более детальному изучению взаимодействия бактерий с медиаторами переноса электронов. Для этого взаимодействие в системе «бактерии Gluconobacter oxydans — глюкоза — медиатор» рассматривали как двухсубстратную ферментативную реакцию, протекающую по механизму «пинг-понг», что позволило охарактеризовать процесс электрокаталитического окисления глюкозы в присутствии медиаторов переноса электронов с помощью трех параметров: максимального тока электрокаталитического окисления и констант Михаэлиса по субстрату и медиатору. На основе отношения величин максимального тока к константам Михаэлиса по медиатору были построены ряды эффективности медиаторов переноса электронов.

4. Следующий этап заключался в создании лабораторного макета биосенсорной установки и определении рабочих параметров, таких как рН среды измерения, концентрация солей буферного раствора, концентрация медиатора, масса бактерий на электроде, операционная и долговременная стабильность микробных медиаторных биосенсоров.

5. На пятом этапе была исследована селективность микробных биосенсоров, для этого сравнили величины ответов сенсоров на различные углеводы и спирты. Установлено, что природа медиатора переноса электронов оказывает влияние на селективность микробных биосенсоров. По результатам проведенных экспериментов был сделан вывод, что медиаторные биосенсоры на основе бактерий Gluconobacter oxydans благодаря своей биохимической активности по отношению к целому ряду углеводов и спиртов могут быть использованы для определения суммарного содержания этих веществ в анализируемых образцах или для анализа сред, содержащих только одно из определяемых веществ.

6. Завершающий этап исследования состоял в создании лабораторной модели медиаторного биосенсора на основе бактерий Gluconobacter oxydans для экспресс-определения комплексного показателя загрязнения сточных вод — биологического потребления кислорода. В качестве медиатора был выбран ферроцен — один из эффективных медиаторов, обеспечивающих наибольшую долговременную стабильность биосенсора. По результатам эксперимента сделали вывод, что разработанный медиаторный микробный биосенсор можно применять для определения БПК в интервале 40 — 550 мг/л.

Полученные в ходе выполнения работы результаты показали, что выявленные кинетические закономерности в сочетании с определением рабочих параметров и селективности микробных биосенсоров открывают реальную перспективу создания биосенсорных анализаторов, в частности для определения БПК.

Показать весь текст

Список литературы

  1. M.J., 'Biofuel Cells' in: «Methods in Microbiology», J.R. Norris, D.W. Ribbon (Eds.), Academic Press, New York, pp. 247−283 (1972).
  2. M.P., Богдановская B.A., Жутаева Г. В. Электрохимические биосенсоры // Электрохимия. 1993. Т. 296. № 12. С. 15 541 560
  3. Myers C.R., Myers J.M. Localization of cytochromes to the outer membranes of anaerobically grown Shewanella putrefaciens MR-1 // J. Bacteriol. 1992. V. 174. P. 3429−3438.
  4. Kim H.J., Kim H.J., Park H.S., Hyun M.S., Chang I.S., Kim M. Kim
  5. B.H. A mediator-less microbial fuel cell using a metal redusing bacterium, Shewanella putrefaciens // Enzyme and Microbial Technology 2002. V. 30. P. 145−152.
  6. G.M. Delaney, H.P. Bennetto, J.R. Mason, S.D. Roller, J.L. Stirling,
  7. C.F. Thurston. Electron-transfer coupling in microobial fuel cells: 1. Comparison of redox-mediator reduction rates and respiratiry rates of bacteria // J. Chem. Tech. Biotechnol. 1984. V. 34B. P. 3−12.
  8. Katrlik J., Svorc J., Rosenberg M., Miertus S. Whole cell amperomet-ric biosensor based on Aspergillus niger for determination of glucose with enhanced upper linearity limit // Analytica Chimica Acta 1996. V. 331. P. 225−232.
  9. Heim S., Schnieder I., Binz D., Vogel A., Bilitewski U. Development of automated microbial sensor system // Biosensors & Bioelectronics 1999. V. 14. P. 187−193.
  10. Svitel J., Curilla 0., Tkac J. Microbial cell-based biosensor for sensing glucose, sucrose or lactose // Biotechnol. Appl. Biochem. 1998. V. 27. P. 153−158
  11. Subrahmanyam S., Shanmugam K., Subramanian Т. V., Murugesan M., Madhav V. M, Jeyakumar D. Development of Electrochemical Microbial Biosensor for Ethanol Based on Aspergillus niger // Elec-troanalysis. 2001. V. 13. № 11. P. 944−948.
  12. . Химические и биологические сенсоры. Москва: Техносфера, 2005. 336 с.
  13. Биосенсоры: основы и приложения: Пер. с англ./Под. ред. Э. Тернера, И. Карубе, Дж. Уилсона. -М:. Мир, 1992. 616 с.
  14. Chaubey A., Malholtra B.D. Mediated biosensors. Review // Bio-sens.Bioelectron. 2002. V. 17. P. 441−456
  15. Gorton L. Carbon past electrodes modified with enzymes, tissues and cells. Electroanalysis, 1995. V. 7. № 1. P. 23−45
  16. Gorton L. Selective detection in flow analysis based on the combination of immobilized enzymes and chemically modified electrodes / GortonL. //Anal. Chim. Acta. 1991. Vol. 250. P. 203−210.
  17. Fultz M.L., Durst R.A. Mediator compounds for the electrochemical study of biological redox systems: A compilation // Analytica Chimica Acta 1982. V. 140. P. 1−18
  18. Э.Г., Решетова М. Д., Гранберг К. И. // Методы эле-ментоорганической химии. Ферроцен. М: Наука, 1983, 557 стр.
  19. М. Металлоорганические соединения переходных металлов. М.: Мир, 1972.-456 с.
  20. Tkac J., Vostiar I., Sturdik Е. Gemeiner P., Mastihuba V., Annus J. Fructose biosensor based on D-fructose dehydrogenase immobilized on a ferroccene-embedded cellulose acetate membrane // Anal. Chim. Acta 2001. V. 439. P. 39−46
  21. Dicks J.M., Aston W.J., Davis G., Turner A.P.F. Mediated am-perometric biosensors for D-galactose, glycolate and L-amino acids based on a ferrocene-modified carbon paste electrode. Anal. Chim. Acta 1986. V. 218. P. 103−112.
  22. Allen P.M., Hill H.A.O. Watron N.J. Surfase modifiers for the promotion of direct electrochemistry of cytocrome c. J.Electroanal. Chem. 1984. V. 178. P. 69−86.
  23. Smolander M., Livio H.-L. Mediated amperometric determination of xylose and glucose with an immobilized aldose dehydrogenase electrode.// Biosens. Boielectron. 1992. No. 7. P. 637−643.
  24. .И., Попов С. И. Введение в химию и технологию органических красителей, 3 изд., М: 1984. 342 с.
  25. Справочник биохимика: Пер. с англ./ Досон Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс К. М.: Мир, 1991. — 554 с.
  26. Coury L.A., Oliver B.N., Egekeze J.O., Sosnof.C.S., Brumfield J.C., Buck R.P., Murray R.W. Mediated, anaerobic voltammetry of sulfite oxidase // Anal. Chem. 1990. V. 62. P. 452 458
  27. Wang J., Nasser N., Darnall D., Gardea-Torresdey J. Bioaccumulation and quantitation of metals at peat moss-modified electrodes // Electro-analysis. 1992. V. 4. P. 71−75.
  28. Rawson D.M., Willmer A .J., Turner A.P.F. Whole-cell biosensors for enviromental monitorig. Biosensor. 1989. V. 4. P. 299−311
  29. L.P. Hadjipetroul, Т. Gray-Young, M.D. Lilly. Effect of Ferricianide on Energy Production by Escherichia coli // J. gen. Microbiol. 1966. № 45. P. 479−488
  30. N.J. Richardson, S. Gardner, D.M. Rawson. A chemically mediated amperometric biosensor for monitoring eubacterial respiration // Journal of Applied Bacteriology. 1991. № 70. P. 422−426.
  31. J. Tkac, P. Gemeiner, J. Svitel, T. Benikovsky, E. Sturdik, V. Vala, L. Petrus, E. Hrabarova. Determination of total sugars in lignocellulose hydrolysate by a mediated Gluconobacter oxydans biosensor // Analitica Chimica Acta. 2000. № 420. P. 1−7
  32. J. Tkac, I. Vostiar, Lo Gorton, P. Gemeiner, E. Sturdik. Improved selectivity of microbial biosensor using membrane coating. Application to the analysis of ethanol during fermentation // Biosensors and bio-electronics. 2003. № 18. P. 1125−1134
  33. Takayama K. Biocatalyst electrode modified with whole-cells of P. denitrificans for the determination of nitrate // Bioelectrochemistry and Bioenergetics 1998.45. P. 67−72.
  34. К., Vega С.A., Tamamushi R. 591-Mediating effect of ferric Cheleate conpounds in Microbial fuel cells // Bioelectrochemistry and bioenergetics. 1983. № 11. P. 13 5−143
  35. Connor M.P., Wang J., Kubiak W., Smyth M.R. Tissue- and microbe-based electrochemical detectors for liquid chromatography // Anal. Chim. Acta. 1990. V.229. P.139−143
  36. Tkac J., Vostiar I., Gorton Lo, Gemeiner P., Sturdik E. Improved selectivity of microbial biosensor using membrane coating. Application to the analysis of ethanol during fermentation // Biosensors and bio-electronics. 2003. № 18. P. 1125−1134
  37. Tkac J., Vostiar I., Gemeiner P., Sturdik E. Monitoring of ethanol during fermentation using a microbial biosensor with enhanced selectivity // Bioelectrochemistry. 2002. № 56. P. 127−129
  38. J. Tkac, P. Gemeiner, J. Svitel, T. Benikovsky, E. Sturdik, V. Vala, L. Petrus, E. Hrabarova. Determination of total sugars in lignocellulose hydrolysate by a mediated Gluconobacter oxydans biosensor // Analitica Chimica Acta. 2000. № 420. P. 1−7
  39. Katrlik J., Brandsteter R., Svorc J., Rosenberg M., Miertus S. Mediator type of glucose microbial biosensor based on Aspergillus niger // Analitica Chimica Acta. 1997. № 356, P. 217−224
  40. Kubiak W. W., Wang J. Yeast-based carbon paste bioelectrode for ethanol //Analitica Chimica Acta. 1989. № 221. p.43−51
  41. Polak M.E., Rauson D.M., Hagget B.G.D. Redox mediated biosensor incorporating cultured fish cells for toxicity assessment // Biosensor and bioelectronics. 1966. V. 11. № 12. P.1253−1257
  42. Katrlik J., Brandsteter R., Svorc J., Rosenberg M., Miertus S. Mediator type of glucose microbial biosensor based on Aspergillus niger // Analitica Chimica Acta. 1997. № 356. P. 217−224
  43. Skladal P., Morozova NReshetilov., A. Amperometric biosensors for detection of phenol using chemically modified electrodes contaning immibilizid bacteria // Biosensors and Bioelectronics. 2002. № 17. P.867−873
  44. Polak M.E., Rauson D.M., Hagget B.G.D. Redox mediated biosensor incorporating cultured fish cells for toxicity assessment // Biosensor and bioelectronics. 1966. V. 11. № 12. P.1253−1257
  45. Yoshida N., Yano K., Morita Т., McNiven S.J., Nakamura H., Karube I. A mediator-type biosensor as a new approach to biochemical oxygen demand estimation // Analyst. 2000. № 125. P. 2280−2284
  46. Yoshida N., Hoashi J., Morita Т., McNiven Scott J., Nakamura H., Karube I. Impruvement of a mediator-type biochemical oxygen demand sensor for on-site measurement // Journal of Biotechnology. 2001. № 88. P. 269−275
  47. Pasco N., Baronian K., Jeffries C., Hay J. Biochemical mediator demand a novel rapid alternative for measuring biochemical oxygen demand.// Appl Microbiol Biotechnol 2000. 53. P. 613−618.
  48. Pasco N" Baronian K., Jeffries C., Webber J., Hay J. MICREDOX -development of a ferricyanide-mediated rapid biochemical oxygen demand method using an immobilized Proteus vulgaris biocomponent // Biosensors and Bioelectronics. 2004. № 20. P.524−532
  49. Trosok S.P., Driscoll B.T., Luong J.H.T. Mediated microbial biosensor using a novel yeast strain for wastewater BOD measurement // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001. № 56. P. 550−554
  50. Nishikawa S., Saka S., Karube I., Matsunaga Т., Suzuki S. Dye-coupled electrode system for the rapid determination of cell population in polluted water // Applied and Environmental Microbiology. 1982. P. 814−818
  51. Han S., Li. X., Guo G., Sun Y., Yuan Z. Voltammetric measurement of microorganism population // Anal. Chim. Acta. 2000. № 405. P. 115−121.
  52. Minett A.I., Barisci J.N., Wallace G.G. Coupling conduction polymers and mediated electrochemical response for the detection of Listeria.// Anal. Chim. Acta 2003. № 475. P. 37−45.
  53. Ertl P., Wagner M., Corton E., Mikkelsen S.R. Rapid identification of viable Escherichia coli subspecies with an electrochemical screen-printed biosensor array // Biosens. Bioelectron. 2003. № 18. P. 907 916
  54. De Ley J., Frateur J. Bergey’s manual of determinative bacteriology. /Eds. Buchanan H.B., Gibson V.K. Baltimor: Williams and Wilkins Co., 1974. P. 251−253- 276−278.
  55. Asai K. Acetic acid bacteria: classification and biochemical activities. Baltimore: Univ. Park Press, 1968. 343 p.
  56. K.A., Решетилов A.H. // Физиолого-биохимические особенности Gluconobacter oxydans и перспективы использования в биотехнологии и биосенсорных системах. Прикладная биохимия и микробиология. 1998. Т. 34. № 4. С. 339−353.
  57. Matsushita К, Toyama Н, Adachi О. Respiratory chains and bioenergetics of acetic acid bacteria. Adv. Microb. Physiol. 1994 V. 36. P. 247−301
  58. Buchert J. A xylose-oxidizing membrane-bound aldose dehydrogenase of Gluconobacter oxydans ATTC 621 // Journal of Biotechnology 1991. V. 18. P. 103−114
  59. Kulhanek M Microbial dehydrogenations of monosaccharides. // Adv. Appl. Microbiol. 1989. V.34 P. 141−181
  60. Deppenmeier U., Hoffmeister M., Prust C. Biochemistry and biotech-nological applications of Gluconobacter strains Appl Microbiol. Bio-technol. 2002. V. 60. P. 233−242
  61. Ameyama M., Shinagawa E., Matsushita K., Adachi 0. D-glucosedehydrogenase Gluconobacter suboxydans: solubilisation, purification and characterization. Agric. Biol. Chem. 1981. V. 45 P. 851 861.
  62. Ameyama M., Nonobe M., Hayashi M., Shinagawa E., Matsushita K., Adachi O. Mode of binding of pyrroloquinoline quinone to apo-glucose dehydrogenase // Agric. Biol. Chem. 1985. V. 49 P. 12 271 231
  63. Duine J.A., Jongejan J.A. Quinoproteins, Enzymes with pyrroloquinoline quinone as cofactor. // Annu. Rev. Biochem. 1989. V. 58. P. 403−426
  64. Anthony C. The structure of bacterial quinoprotein dehydrogenases // Int. J. Biochem. 1992. Vol. 24. No 1. P. 29−39
  65. Ameyama M., Adachi O. Alcohol dehydrognase from acetic acid bac-teia, membrane-bound // Methods in Enzymology, 1982. V. 89 P. 450 457
  66. T. Ikeda, K. Matsuyama, D. Kobayashi, F. Matsushita. Whole-cell enzyme electrodes based on mediated bioelectrocatalysis // Biosci. Biotech. Biochem. 1992. V. 56. № 8. P. 1359−1360
  67. Mullen W.H., Churchose S.J., Vadgama P.N. Enzyme electrode for glucose based on quinoprotein glucose dehydrogenase // Analyst, 1985. V. 110. № 9. P. 925−928
  68. Cass A.E.G., Davis G., Francis G.D., Hill H.A.O. Ferrocene-mediated enzyme electrode for amperometric determination of glucose// Anal. Chem. 1984. V. 56 № 4. P. 667−671
  69. Kitagawa Y., Kitabatake K., Kubo I., Tamiya E., Karuba I. Alcohol sensor based on membrane bound alcohol dehydrogenase // Anal. Chim. Acta 1989. V. 218 P. 61−68
  70. Smolander M., Buchert J., Vikari L.// Large-scale applicable purification and characterization of a membrane bound PQQ-dependent aldose dehydrogenase //J. Biotech. 1993. V.29. P. 287−297.
  71. Smolander M., Marko-Varga G., Gorton L. Aldose dehydrogenase-modified carbon paste electrodes as amperometric aldose sensors // Anal. Chim. Acta. 1995. V.302. P. 233−240.
  72. Smolander M., Cooper J., Schuhmann W., Hammerle M. Determination of xylose and glucose in a flow-injection system with PQQ-dependent aldose dehydrogenase //Anal. Chim. Acta. 1993. V. 280 P. l 19−127
  73. Albery W.J., Bartlett P.N. Amperometric enzyme electrodes. Part 1. Theory. J. Electroanal. Chem. 1985. V. 194. P. 211−222
  74. С.Д., Гуревич К. Г. Биокинетика: Практический курс. М.: Фаир-Пресс, 1999. 720 с.
  75. Н. Ф. Химия воды и микробиология. М.: Высш. школа, 1979.-361 с.
  76. D’Souza S.F., Microbial biosensors. Biosensors & Bioelectronics 2001. V. 16. P. 337−353
  77. К. Статистика в аналитической химии. Пер. с нем. -М.:Мир, 1994. 268 е., ил.
Заполнить форму текущей работой