Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Механизмы модулирования медленных натриевых каналов (Nav1.8) сердечными гликозидами и производными гамма-пиридонов

Диссертация: Механизмы модулирования медленных натриевых каналов (Nav1.8) сердечными гликозидами и производными гамма-пиридонов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Основные положения работы доложены и обсуждены на: Политехническом симпозиуме «Молодые ученыепромышленности Северо-Западного региона» (Санкт-Петербург, 2006), Всероссийском форуме студентов, аспирантов и молодых ученых «Наука и инновации в технических университетах» (Санкт-Петербург, 2007), конференции «Механизмы регуляции и взаимодействия физиологических систем организма… Читать ещё >

Механизмы модулирования медленных натриевых каналов (Nav1.8) сердечными гликозидами и производными гамма-пиридонов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. ПОТЕНЦИАЛОЗАВИСИМЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ
    • 1. 2. ПОТЕНЦИАЛОЗАВИСИМЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ Navl
    • 1. 3. Na+, К±АТФ-аза
    • 1. 4. СЕРДЕЧНЫЕ ГЛИКОЗИДЫ
  • ОУАБАИН — СПЕЦИФИЧЕСКИЙ ЛИГАНД Na+, К±АТФ-азы
    • 1. 5. у-ПИРИДОНЫ
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. МЕТОД КРАТКОСРОЧНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ДИССОЦИИРОВАННЫХ СЕНСОРНЫХ НЕЙРОНОВ
    • 2. 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ РАСТВОРЫ
    • 2. 3. РЕГИСТРАЦИЯ ИОННЫХ ТОКОВ И УПРАВЛЕНИЕ ПРОГРАММОЙ ЭКСПЕРИМЕНТА
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ
    • 3. 1. ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ 5-ГИДРОКСИ-2-ГИДРОКСИМЕТИЛ- у-ПИРИДОНА И 5-ГИДРОКСИ-1 -МЕТИЛ-у-ПИРИДОН-2-КАРБОНОВОЙ КИСЛОТЫ НА МЕДЛЕННЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ
    • 3. 2. ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ СЕРДЕЧНЫХ ГЛИКОЗИДОВ НА МЕДЛЕННЫЕ НАТРИЕВЫЕ КАНАЛЫ
      • 3. 2. 1. ДЕЙСТВИЕ ОУАБАИНА
      • 3. 2. 2. ЭФФЕКТ ОУАБАГЕНИНА
      • 3. 2. 3. ДЕЙСТВИЕ ДИГОКСИНА
  • Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ
    • 4. 1. МЕХАНИЗМЫ ДЕЙСТВИЯ у-ПИРИДОНОВ
    • 4. 2. МЕХАНИЗМЫ ДЕЙСТВИЯ СЕРДЕЧНЫХ ГЛИКОЗИДОВ

В основе многих физиологических процессов (передача электрических и химических сигналов, сокращение, секреция) лежит работа ионных каналов биологических мембран. Ионным каналам свойственны избирательная проницаемость для ионов и способность открываться и закрываться при различных воздействиях на мембрану. Несколько упрощенно ионные каналы можно разделить на лиганд-управляемые и потенциалозависимые. Эта классификация, однако, постоянно требует уточнения в связи с обнаружением как новых каналов, так и новых молекулярных механизмов их модуляции. В этом отношении большой интерес представляет способность мембранных рецепторов, расположенных вблизи ионных каналов, регулировать функциональную активность последних. Выяснение физиологической роли таких новых молекулярных структур, образующих единую систему мембранный рецептор — ионный канал, представляется весьма актуальным.

Физиологически активные вещества, воздействуя на систему мембранной сигнализации мембранный рецептор — ионный канал, могут иметь несколько «рецептирующих» зон, представляющих собой части аминокислотных последовательностей макромолекул рецептора и канала. В последнем случае применима гипотеза о так называемом «модулированном рецепторе» (Strichartz, 1973; Hille, 1977; Можаева и др., 1980). В первом случае, когда центром связывания атакующей молекулы служит мембранный рецептор, включаются трансдукторные процессы, усиливающие на порядки молекулярный рецепторный сигнал и передающие его на мембранный ионный канал. Воздействия на указанные трансдукторные процессы открывают новые возможности модулирования возбудимости ионного канала, что должно иметь важные физиологические последствия на системном уровне. Такой подход особенно интересен в практическом отношении при исследовании механизмов ноцицепции.

Потенциалозависимые натриевые каналы (Navl.l — Nav1.9) являются важнейшими молекулярными структурами, обеспечивающими возбудимость. Большой интерес представляет исследование роли натриевых каналов в передаче ноцицептивной информации. Существует две причины, по которым потенциалозависимые натриевые каналы считаются перспективными мишенями для исследования антиноцицептивного эффекта. Во-первых, они лежат в основе генерации потенциалов действия, в результате выключения этих каналов полностью блокируется передача нервных импульсов и, тем самым, прерываются все сигналы, включая ноцицептивные. Во-вторых, представляется особенно перспективным осуществление рецептор-опосредованной модуляции возбудимости ответственных за кодирование ноцицептивных ответов медленных натриевых каналов (Nav1.8). Подход такого рода позволит сохранить способность передачи ноцицепторами сигналов других модальностей (тактильных и температурных), избирательно выключив высокочастотную компоненту их импульсной активности, кодирующую болевой сигнал при возникновении хронической боли.

Медленные тетродотоксиннечувствительные (ТТХГ5 Nav1.8) натриевые каналы определяют процесс кодирования ноцицептивных сигналов в афферентах и сенсорных нейронах (Borovikova et al., 1997; Cardenas et al.5 1997). Модуляторы активности этих каналов являются субстанциями, применение которых представляется перспективным с точки зрения разработки новых аналгетических лекарственных препаратов.

В 1999 году был предложен новый механизм (Крылов и др., 1999) модулирования возбудимости медленных натриевых (Nav1.8) каналов, связанный с активацией опиоидоподобных рецепторов. Трансдукторную функцию в этом случае выполняет Na+, К±АТФаза. Механизмы этой модуляции исследуются в настоящей работе при непосредственном воздействии на мембранный рецептор производными гамма-пиридонов (все воздействия устранялись неспецифическими блокаторами опиоидных рецепторов налоксоном, налтрексоном) и при воздействии на Na+, К±АТФазу сердечными гликозидами.

Многие у-пиридоны широко используются в различных областях медицины для лечения заболеваний, вызванных избыточным содержанием в плазме крови различных микроэлементов (Thompson et al., 2006). Благодаря своим свойствам у-пиридоны представляют интерес как перспективный материал для создания аналгетиков нового поколения, мембранной мишенью действия которых могут служить опиоидоподобные рецепторы.

В клинической практике и в физиологических экспериментах сердечные гликозиды используют для специфического ингибирования активности Na+, К+.

АТФазы — натриевого насоса, утилизирующего энергию гидролиза АТФ для активного транспорта ионов Na+ и К+ через мембраны клеток. Эта насосная функция Na+, К±АТФазы хорошо известна. Она необходима для поддержания мембранного потенциала клетки в строго определенном диапазоне.

В настоящей работе исследуется дополнительная — трансдукторная — функция натриевого насоса. Она была обнаружена при исследовании сенсорных нейронов (Крылов и др. 1999), кардиомиоцитов (Xie and Askari, 2002). В настоящее время эта функция интенсивно исследуется в клетках разных тканей (Mohammadi et al., 2001; Lencesova et al., 2004; Zhang et al., 2006). Важно, что трансдукторная функция Na+, К±АТФазы может активироваться оуабаином (Xie and Askari, 2002; Liang et al., 2007). Поскольку очень низкие (наномолярные) концентрации оуабаина были обнаружены в системном кровотоке (Schoner and Schiener-Bobis, 2005) представляется важным исследование физиологической роли трансдукторной функции Na+, К±АТФазы, при воздействии указанных очень низких концентраций сердечного гликозида. Можно предположить, что эндогенный оуабаин может вызывать антиноцицептивный эффект.

Учитывая тот факт, что специфическое рецептор-опосредованное или трансдуктор-опосредованное модулирование характеристик медленных натриевых каналов остается малоизученным, можно предположить, что результаты, полученные в этой области, окажутся востребованными при разработке новых фармакологических подходов к решению проблемы хронической периферической боли (Gold, 2008).

Цель и задачи исследования

:

Целью работы было исследование механизма системы мембранной сигнализации: опиоидоподобный рецептор — Ыа+, К±АТФаза — медленные натриевые каналы (Nav1.8) сенсорных нейронов. В ходе исследования были поставлены и решены следующие задачи:

1. Выяснить возможные молекулярные механизмы действия у-пиридонов на медленные натриевые каналы (Nav1.8).

2. Изучить возможные механизмы воздействия ряда представителей сердечных гликозидов на модулирование возбудимости медленных натриевых каналов (Nav1.8).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. С помощью метода локальной фиксации потенциала (patch-clamp method) получены доказательства, свидетельствующие о рецептор-опосредованном действии у-пиридонов на мембрану сенсорного нейрона.

2. Установлено, что представители сердечных гликозидов — оуабаин, дигоксин и кардиотонический стероид оуабагенин различаются на порядки по своей эффективности модулировать трансдукторную функцию Ыа+, К±АТФазы путем снижения потенциалочувствительности активационной воротной системы медленных натриевых каналов Nav 1.8. '.

3. Полученные результаты свидетельствуют о том, что кроме сайта связывания сердечных гликозидов, ответственного за ингибирование насосной функции, в молекуле №+, К±АТФазы присутствует еще один сайт, специфическое связывание гликозидов с которым модулирует трансдукторную функцию №+, К±АТФазы.

Научная новизна. Впервые было показано, что 5-гидрокси-2-гидроксиметил-у-пиридон (АК1) и 5-гидрокси-1-метил-у-пиридон-2-карбоновая кислота (АК2) способны уменьшать потенциалочувствительность натриевых каналов Nav1.8, причем наблюдаемый эффект устранялся при предварительном приложении в наружный раствор неспецифического блокатора опиоидных рецепторов налоксона в концентрации 50 мкмоль/л и блокатора Na+, K±АТФазы оуабаина в концентрации 200 мкмоль/л. Это свидетельствует о возможном участии опиодоподобных рецепторов в специфическом связывании этих сигнальных молекул и также подтверждает важную роль №+, К±АТФазы в процессе передачи ноцицептивного сигнала на активационное воротное устройство Nav1.8 канала. Нами впервые было показано, что приложение оуабаина в низких (эндогенных) концентрациях способно модулировать возбудимость медленных натриевых каналов Nav1.8. Указанный эффект не устранялся при предварительном приложении в наружный раствор блокатора опиоидных рецепторов налтрексона в концентрации 50 мкмоль/л. В данном случае, вероятно, мишенью атакующей молекулы служит дополнительный сайт связывания оуабаина, являющийся частью аминокислотной последовательности молекулы №+, К±АТФазы. Специфическое связывание гликозидов с этим сайтом модулирует трансдукторную функцию Na+, K+.

АТФазы, что должно приводить, в свою очередь, к аналгетическому эффекту на системном уровне.

Теоретическое и практическое значение работы. Полученные данные представляются важными для понимания молекулярных механизмов действия у-пиридонов и сердечных гликозидов на мембрану сенсорных нейронов. Результаты и выводы работы могут быть использованы для чтения учебных курсов по молекулярной биологии и нейробиологии, а также в медицине и фармакологии при создании новых аналитических лекарственных препаратов.

Апробация работы. Основные положения работы доложены и обсуждены на: Политехническом симпозиуме «Молодые ученыепромышленности Северо-Западного региона» (Санкт-Петербург, 2006), Всероссийском форуме студентов, аспирантов и молодых ученых «Наука и инновации в технических университетах» (Санкт-Петербург, 2007), конференции «Механизмы регуляции и взаимодействия физиологических систем организма человека и животных в процессах приспособления к условиям среды» (Санкт-Петербург — Колтуши, 2007), конференции с международным участием «Нейрохимические механизмы формирования адаптивных и патофизиологических состояний мозга» (Санкт-Петербург — Колтуши, 2008), 2-ой Санкт-Петербургской конференции фонда А. Гумбольдта: «Технологии 21-го века: биологические, физические, информационные и социальные аспекты» (Санкт-Петербург, 2008).

ВЫВОДЫ.

1. 5-гидрокси-2-гидроксиметил-у-пиридон (АК1) и 5-гидрокси-1-метил-у-пиридон-2-карбоновая кислота (АК2) в концентрации 1 мкмоль/л снижают возбудимость медленных натриевых каналов Кау1.8. Эффекты указанных у-пиридонов полностью устраняются налоксоном и высокими концентрациями оуабаина, что свидетельствует о взаимодействии АК1 и АК2 с опиодоподобными рецепторами, связанными с медленными натриевыми каналами, и об участии Ыа+, К±АТФазы в передаче ноцицептивного сигнала.

2. Зависимость величины эффективного заряда от концентрации оуабаина носит и-образный характер, что обусловлено двумя различными механизмами лиганд-рецепторного связывания указанного агента. Трансдуктор-опосредованный механизм взаимодействия описан уравнением Хилла, причем его константа диссоциации составляет 3 нмоль/л. Этот механизм связан с активацией дополнительного сайта связывания оуабаина, являющегося частью аминокислотной последовательности молекулы К±АТФазы.

3. Оуабагенин в концентрации 100 нмоль/л снижает эффективный заряд. Дигоксин в концентрации 100 нмоль/л не влияет на потенциалочувствительность медленных натриевых каналов. Особенности химического строения указанных молекул определяют их способность к модулированию возбудимости медленных натриевых каналов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Нами разрабатывается новый фундаментальный механизм модуляции активности медленных натриевых каналов за счет специфического взаимодействия агентов непептидной природы с мембранными рецепторами, связанными с медленными натриевыми каналами, ответственными за генерацию болевого сигнала. Этот механизм позволяет по-новому подойти к созданию препаратов с аналгетическим действием. Исследованные в представленной работе вещества обладают высоким сродством к рецепторам, которые модулируют ноцицептивные ответы медленных натриевых каналов. Нами было установлено, что физиологически активные вещества у-пиридоны, а также сердечный гликозид оуабаин и кардиотонический стероид оуабагенин взаимодействуя с мембраной сенсорного нейрона, модулируют основные характеристики медленных натриевых каналов. Для у-пиридонов АК1 и АК2 изучаемый нами антиноцицептивный эффект обусловлен специфическим взаимодействием указанных молекул с активным центром опиоидоподобного мембранного рецептора, снижающего потенциалочувствительность медленных натриевых каналов. Оуабаин и оуабагенин модулируют медленные натриевые каналы, взаимодействуя с Ыа+, К±АТФазой. Этот трасдуктор — опосредованный механизм связан с активацией дополнительного сайта связывания оуабаина, являющегося частью аминокислотной последовательности молекулы 1Ча+, К±АТФазы.

Современные данные, относящиеся к поиску специфических блокаторов тетродотоксиннечувствительных натриевых каналов, указывают на наличие принципиальных сложностей, возникающих на этом пути. Основная проблема заключается в том, что любое взаимодействие фармакологического агента с мембранным ионным каналом является неспецифическим. Другими словами, очень сложно подобрать субстанцию, которая взаимодействовала бы, например, только с медленными натриевыми каналами и не взаимодействовала бы с быстрыми натриевыми каналами. Разработанный нами способ модуляции ответов медленных натриевых каналов благодаря активации связанных с ними мембранных рецепторов позволяет реализовать принципиально новый подход и решить отмеченные выше проблемы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Aizman O., Uhlen P., Lai M., Brismar H., Aperia A. Ouabain, a steroid hormone that signals with slow calcium oscillations // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2001. V. 98. N 23. P. 13 420−13 424.
  2. Akimova O.A., Lopina O.D., Hamet P., Orlov S.N. Search for intermediates of Na+, K±ATPase-mediated Na+.i/[K+]i-independent death signaling triggered by cardiotonic steroids // Pathophysiology. 2005. V.12. N 2. P. 125−135.
  3. Akopian A.N., Sivilotti L., Wood J.N. A tetrodotoxin-resistant voltage-gated sodium channel expressed by sensory neurons // Nature. 1996. V. 379. N 18. P. 257 262.
  4. Albers R.W. Biochemical aspects of active transport // Annu Rev. Biochem. 1967. V. 36. P. 727−756.
  5. Aimers W., Levinson R. Tetrodotoxin binding to normal and depolarized frog muscle and conductance of a single sodium channel// J. Physiol. 1975. V. 247. N 2. P. 483−509.
  6. Armit J.W., Nolan T.J. CCCCXIX.—Derivatives of kojic acid // J. Chem. Soc. 1931. P. 3023−3031.
  7. Aydemir-Koksoy A., Abramowitz J., Allen J.C. Ouabain-induced signaling and vascular smooth muscle cell proliferation // J. Biol. Chem. 2001. V. 276. N 49. P. 46 605−46 611.
  8. Aytemir M.D., Uzbay T., Erol D.D. New 4(lH)-Pyridinone Derivatives as Analgesic Agents // Arzneim. Forsch. Drug Research. 1999. V. 49. N 3. P. 250−254.
  9. Bagrov Y.Y., Manusova N.B., Egorova I.A., Fedorova O.V., Bagrov A.Y. Endogenous digitalis-like ligands and Na/K-ATPase inhibition in experimental diabetes mellitus // Front. Biosci. 2005. V. 10. P. 2257−2262.
  10. Beguin P., Hasler U., Beggah A., Horisberger J.D., Geering K. Membrane integration of Na, K-ATPase alpha-subunits and beta-subunit assembly // J. Biol. Chem. 1998. V. 273. N 38. P. 24 921−24 931.
  11. Beguin P., Wang X., Firsov D., Puoti A., Claeys D., Horisberger J.D., Geering K. The gamma subunit is a specific component of the Na, K-ATPase and modulates its transport function // EMBO J. 1997. V. 16. N 14. P. 4250−4260.
  12. Bielefeldt K., Ozaki N., Gebhart G.F. Mild gastritis alters voltage-sensitive sodium currents in gastric sensory neurons in rats // Gastroenterology. 2002. V. 122. N 3. P. 752−761.
  13. Blanco G., Mercer R.W. Isozymes of the Na-K-ATPase: heterogeneity in structure, diversity in function // Am. J. Physiol. 1998. V. 275. N 5. Pt. 2. P. 633−650.
  14. Blaustein M.P., Zhang J.,. Chen L., Hamilton B.P. How does salt retention raise blood pressure? // Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2006. V. 290. N 3. P. 514−523.
  15. Boardman L., Huett M., Lamb J.F., Newton J.P., Poison J.M. Evidence for the genetic control of the sodium pump density in HeLa cells // J. Physiol. 1974. V. 241. N 3. P. 771−794.
  16. Caffrey J.M., Eng D.L., Black J.A., Waxman S.G., Kocsis J.D. Three types of sodium channels in adult rat dorsal root ganglion neurons // Brain Res. 1992. V. 592. N 1−2. P. 283−297.
  17. Cantiello H.F. Actin filaments stimulate the Na (+)-K (+)-ATPase // Am. J. Physiol. 1995. V. 269. N 5 Pt.2. P. 637−643.
  18. Cantrell A.R., Catterall W.A. Neuromodulation of Na+ channels: an unexpected form of cellular plasticity // Nat. Rev. Neurosci. 2001. V. 2. N 6. P. 397 407.
  19. Cardenas C.G., Del Mar L.P., Cooper B.Y., Scroggs R.S. 5HT4 receptors couple positively to tetrodotoxin-insensitive sodium channels in a subpopulation ofcapsaicin-sensitive rat sensory neurons // J. Neuroscience. 1997. V. 17. N 19. P. 7181−7189.
  20. Carrier G.O., Ikeda S.R. TTX-sensitive Na channels and Ca channels of the L- and N-type underlie the inward current in acutely dispersed coeliac-mesenteric ganglia neurons of adult rats // Pflugers Arch. 1992.V. 421. N 1. P. 7−16.
  21. Caterall W.A., Perez-Reyes E., Snitch T.P., Striessnig J. International Union of Pharmacology. XLVIII. Nomenclature and structure-function relationships of voltage-gated calcium channels // Pharmacol Rev. 2005. V. 57. N 4. P. 411−425.
  22. Catterall W.A. From ionic currents to molecular mechanisms: the structure and function of voltage-gated sodium channels // Neuron. 2000. V. 26. N 1. P. 13−25.
  23. Chen Y., Yu F.H., Surmeier D.J., Scheuer T., Catterall W.A. Neuromodulation of Na+ channel slow inactivation via cAMP-dependent protein kinase and protein kinase C // Neuron. 2006. V. 49. N 3. P. 409−420.
  24. Chueh S.C., Guh J.H., Chen J., Lai M.K., Teng C.M. Dual effects of ouabain on the regulation of proliferation and apoptosis in human prostatic smooth muscle cells//J. Urol. 2001. V. 166. N 1. P. 347−353.
  25. Cohen S.A., Barchi R.L. Voltage-dependent sodium channels // Int. Rev. Cytol. 1993. V. 137C. P. 55−103.
  26. Contreras R.G., Shoshani L., Flores-Maldonado C., Lazaro A., Cereijido M. Relationship between Na (+), K (+)-ATPase and cell attachment // J. Cell Sci. 1999. V. 112. Pt. 23. P. 4223−4232.
  27. Cutler C.P., Sanders I.L., Cramb G. Isolation of six putative P-type ATPase beta subunit PCR fragments from the brain of the European eel (Anguilla anguilla) // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1997. V. 834. P. 123−125.
  28. De Wardener H.E. The natriuretic hormone // Proc. Eur. Dial. Transplant. Assoc. 1973. V. 10. N 0. P. 3−19.
  29. Derbenev A.V., Krylov B.V., Shurygin A.Ya. Effects of meconic and comenic acids on slow sodium channels of sensory neurons // Membr. Cell Biol. 2000. V. 13. N3. P. 379−387.
  30. Devarajan P., Scaramuzzio D.A., Morrow J.S. Ankyrin binds to two distinct cytoplasmic domains of Na, K-ATPase alpha subunit // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1994. V. 91. N 8. P. 2965−2969.
  31. Dexter D.T., Carter C.J., Wells F.R., Javoy-Agid F., Agid Y., Lees A., Jenner P., Marsden C.D. Basal lipid peroxidation in substantia nigra is increased in Parkinson’s disease // J. Neurochem. 1989. V. 52. N 2. P. 381−389.
  32. Done S.C., Leibiger I.B., Efendiev R., Katz A.I., Leibiger B., Berggren P.O.,
  33. Pedemonte C.H., Bertorello A.M. Tyrosine 537 within the Na+, K±ATPase alpha-subunit is essential for AP-2 binding and clathrin-dependent endocytosis // J. Biol. Chem. 2002. V. 277. N 19. P. 17 108−17 111.
  34. Donnet C., Arystarkhova E., Sweadner K.J. Thermal denaturation of the Na, K-ATPase provides evidence for a—a oligomeric interaction and c subunit association with the C-terminal domain // J. Biol. Chem. 2001. V. 276. N 10. P. 7357−7365.
  35. Doris P.A., Jenkins L.A., Stocco D.M. Is ouabain an authentic endogenous mammalian substance derived from the adrenal? // Hypertension. 1994. V. 23. N 5. P. 632−638.
  36. Dostanic-Larson I., Van Huysse J.W., Lorenz J.N., Lingrel J.B. The highly conserved cardiac glycoside binding site of Na, K-ATPase plays a role in blood pressure regulation // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A'. 2005. V. 102. N 44. P. 1 584 515 850.
  37. Elliott A.A., Elliott J.R. Characterization of TTX-sensitive and TTX-resistant sodium currents in small cells from adult rat dorsal root ganglia // J. Physiol. (Lond.). 1993. V. 463. N l.P. 39−56.
  38. Enna S.J., Maggie A. Biochemical pharmacology of GABAergic agonists // Life Sci. 1979. V. 24. N 19. P. 1727−1737.
  39. Erol D.D., Yulug N. Synthesis and Antimicrobial Investigation of Thiazolinoalkyl-4(1 H)-Pyridones // Eur. J. Med. Chem. 1994. V. 29. N 11. P. 893 897.
  40. Fagan M.J., Saier M.H. Jr. P-type ATPases of eukaryotes and bacteria: sequence analyses and construction of phylogenetic trees // J. Mol. Evol. 1994. V. 38. Nl.P. 57−99.
  41. Fambrough D.M., Lemas M.V., Hamrick M., Emerick M., Renaud K.J., Inman E.M., Hwang B., Takeyasu K. Analysis of subunit assembly of the Na-K-ATPase // Am. J. Physiol. 1994. V. 266. N 3. Pt. 1. P. 579−589.
  42. Ferrandi M., Salardi S., Tripodi G., Barassi P., Rivera R., Manunta P.,
  43. Goldshleger R., Ferrari P., Bianchi G., Karlish S.J. Evidence for an interaction between adducin and Na (+)-K (+)-ATPase: relation to genetic hypertension // Am. J. Physiol. 1999. V. 277. N 4. Pt. 2. P. 1338−1349.
  44. Fishman M.C. Endogenous digitalis-like activity in mammalian brain // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1979. V. 76. N 9. P. 4661−4663.
  45. Fitzgerald E.M., Okuse K., Wood J.N., Dolphin A.C., Moss S.J. cAmp-dependent phosphorylation of the tetrodotoxin-resistant voltage-dependent sodium channel Sns // J. Physiol (Lond). 1999. V. 516. Pt. 2. P. 433−446.
  46. Geering K., Delprat B. Bibert S. FXYD proteins: new regulators of Na-K-ATPase FXYD proteins: novel regulators of Na, K-ATPase.// Am. J. Physiol. Renal. Physiol. 2006. V. 290. N 2. P. 241−250.
  47. Glynn I.M. Annual review prize lecture. «All hands to the sodium pump» // J. Physiol. 1993. V. 462. P. 1−30.
  48. Gold M.S. Na (+) channel blockers for the treatment of pain: context is everything, almost // Exp Neurol. 2008. V. 210. N 1. P. 1−6.
  49. Gold M.S., Levine J.D., Correa A.M. Modulation of TTX-R INa by PKC and PCA and their role in PGE2-induced sensitization of rat sensory neurons in vitro (In Process Citation) // J. Neurosci. 1998a. V. 18. N 24. P. 10 345−10 355.
  50. Gold M.S., Reichling D.B., Hampl K.F., Drasner K., Levine J.D. Lidocaine toxicity in primary afferent neurons from the rat // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1998b. V. 285. N2. P. 413−421.
  51. Gold M.S., Reichling D.B., Shuster M.J., Levine J.D. Hyperalgesic agents increase a tetrodotoxin-resistant Na+ current in nociceptors // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1996. V. 93. N 3. P. 1108−1112.
  52. Goldstein I., Levy T., Galili D., Ovadia H., Yirmiya R., Rosen H., Lichtstein D. Involvement of Na (+), K (+)-ATPase and endogenous digitalis-like compounds in depressive disorders // Biol. Psychiatry. 2006. V. 60. N 5. P. 491−499.
  53. Haas M., Askari A., Xie Z. Involvement of Src and epidermal growth factor receptor in the signal-transducing function of Na+/K±ATPase // J. Biol. Chem. 2000. V. 275. N 36. P. 27 832−27 837.
  54. Hamada K., Matsuura H., Sanada M., Toyoda F., Omatsu-Kanbe M., Kashiwagi A., Yasuda H. Properties of the Na+/K+ pump current in small neurons from adult rat dorsal root ganglia // Br J Pharmacol. 2003. V. 138. N 8. P. 1517−1527.
  55. Hamill O.P., Marty A., Neher E., Sakmann B., Sigworth F. Improved patch-clamp techniques for high-resolution current recording from cells and cell-free membrane patches// Pflugers Arch. 1981. V. 391. N 2. P. 85−100.
  56. Hamlyn J., Blaustein M.P., Bova S., DuCharme D.W., Harris D.W., Mandel F., Mathews W.R., Ludens J.H. Identification and characterization of ouabain-like
  57. Heyns K.5 Vogelsang G. Uber y-Pyrone und y-Pyridone, II. Mitteil.: Darstellung und Eigenschaften einiger substituierter y-Pyridone // Chem. Ber. Bd. 1954. V. 87. N 9. P. 1377−1384.
  58. Hille B. Local anesthetics: Hidrophilic and hydrophobic pathways for the drug-receptor reaction // J. Gen. Physiol. 1977. V. 69. N 4. P. 497−515.
  59. Hodgkin A.L., Huxley A.F. A quantitative description of membrane current and its application to conduction and excitation in nerve // J. Physiol. 1952c. V. 117. N 4. P. 500−544.
  60. Hodgkin A.L., Huxley A.F. Currents carried by sodium and potassium ions through the membrane of the giant axon of Loligo // J. Physiol. 1952a. V. 116. N 4. P. 449−472.
  61. Hodgkin A.L., Huxley A.F. The dual effect of membrane potential on sodium conductance in the giant axon of Loligo // J. Physiol. 1952b. V. 116. N 4. P. 497−506.
  62. Hwang D.R., Proctor G.R., Driscoll J.S. Pyridones as potential antitumor agents II: 4-Pyridones and bioisosteres of 3-acetoxy-2-pyridone // J. Pharm. Sei. 1980 V. 69. N9. P. 1074−1076.
  63. Isom L.L. Sodium channel beta subunits: anything but auxiliary // Neuroscientist. 2001. V. 7. N 1. P. 42−54.
  64. Jeftinija S. The role of tetrodotoxin-resistant sodium channels of small primary afferent fibers // Brain Res. 1994. V. 639. N 1. P. 125−134.
  65. Jin X., Gereau R.W.t. Acute p38-mediated modulation of tetrodotoxin-resistant sodium channels in mouse sensory neurons by tumor necrosis factor-alpha // J. Neurosci. 2006. V. 26. N 1. P. 246−255.
  66. Kalinowski D.S., Richardson D.R. The evolution of iron chelators for the treatment of iron overload disease and cancer // Pharmacol. Rev. 2005. V. 57. N 4. P. 547−583.
  67. Kaplan J.G. Membrane cation transport and the control of proliferation of mammalian cells // Annu. Rev. Physiol. 1978. V. 40. P. 19−41.
  68. Kaplan J.H. Biochemistry of Na, K-ATPase // Annu. Rev. Biochem. 2002. V. 71. P. 511−535.
  69. Kawamura A., Guo J., Itagaki Y., Bell C., Wang Y., Haupert G.T. Jr., Magil S., Gallagher R.T., Berova N., Nakanishi K. On the structure of endogenous ouabain // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. N 12. P. 6654−6659.
  70. Kim M., Jung J., Park C.S., Lee K. Identification of the cofilin-binding sites in the large cytoplasmic domain of Na, K-ATPase // Biochimie. 2002. V. 84. N 10. P. 1021−1029.
  71. Kostyuk P.G., Krishtal O.A., Pidoplichko V.I. Effect of internal fluoride and phosphate on membrane currents during intracellular dialysis of nerve cells // Nature. 1975. V. 257. N 5528. P. 691−693.
  72. Kostyuk P.G., Veselovsky N.S., Tsyndrenko A.Y. Ionic currents in the somatic membrane of rat dorsal root ganglion neurons.// Neuroscience. 1981. V. 6. N 12. P. 2423−2430.
  73. Kraemer D., Koob R., Friedrichs B., Drenckhahn D. Two novel peripheral membrane proteins pasin 1 and pasin 2, associated with Na+, K (+)-ATPase in various cells and tissues//J. Cell. Biol. 1990. V. 111. N6. Pt. l.P. 2375−2383.
  74. Kuroki D.W., Minden A., Sanchez I., Wattenberg E.V. Regulation of a c-jun amino-terminal kinase/stress-activated protein kinase cascade by a sodium-dependent signal transduction pathway // J. Biol. Chem. 1997. V. 272. N 38. P. 23 905−23 911.
  75. Lai J., Porreca F., Hunter J.C., Gold M.S. Voltage-gated sodium channels and hyperalgesia//Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2004. V. 44. P. 371−397.
  76. Lencesova L., O’Neil A., Resneck W.G., Bloch R.J., Blaustein M.P. Plasma membrane-cytoskeleton-endoplasmic reticulum complexes in neurons and astrocytes // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. N 4. P. 2885−2893.
  77. Li S., Wattenberg E.V. Differential activation of mitogen-activated protein kinases by palytoxin and ouabain, two ligands for the Na+, K±ATPase // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1998. V. 151. N 2. P. 377−384.
  78. Liang M., Cai T., Tian J., Qu W., Xie Z.J. Functional characterization of Src-interacting Na/K-ATPase using RNA interference assay // J. Biol. Chem. 2006. V. 281. N28. P. 19 709−19 719.
  79. Liang M., Tian J., Liu L., Pierre S., Liu J., Shapiro J., Xie Z.J. Identification of a pool of non-pumping Na/K-ATPase // J. Biol. Chem. 2007. V. 282. N 14. P. 1 058 510 593.
  80. Lichtstein D. Na +, K (+)-ATPase and heart excitability // Adv. Exp. Med. Biol. 1995. V.382.P. 23−30.
  81. Lichtstein D., Samuelov S. Endogenous «ouabain-like» activity in rat brain I I Biochem. Biophys. Res. Commun. 1980. V. 96. N 4. P. 1518−1523.
  82. Lingrel J., Moseley A., Dostanic I., Cougnon M., He S., James P., Woo A., O’Connor K., Neumann J. Functional roles of the alpha isoforms of the Na, K-ATPase // Ann. N.Y. Acad. Sci. 2003. V. 986. P. 354−359.
  83. Liu C., Cummins T.R., Tyrrell L., Black J.A., Waxman S.G., Dib-Hajj S.D. CAP-1A is a novel linker that binds clathrin and the voltage-gated sodium channel Na (v)1.8 // Mol. Cell Neurosci. 2005. V. 28. N 4. P. 636−649.
  84. Liu C.J., Dib-Hajj S.D., Black J.A., Greenwood J., Lian Z., Waxman S.G. Direct interaction with contactin targets voltage-gated sodium channel Nal.9/NaN to the cell membrane // J. Biol. Chem. 2001. V. 276. N 49. P. 46 553−46 561.
  85. Liu L., Li J., Liu J, Yuan Z., Pierre S.V., Qu W., Zhao X., Xie Z. Involvement of Na+/K±ATPase in hydrogen peroxide-induced hypertrophy in cardiac myocytes // Free Radic. Biol. Med. 2006. V. 41. N 10. P. 1548−1556.
  86. Ma Y., Luo W., Quinn P.J., Liu Z., Hider R.C. Design, Synthesis, Physicochemical Properties, and Evaluation of Novel Iron Chelators with Fluorescent Sensors // J. Med. Chem. 2004. V. 47. N 25. P. 6349−6362.
  87. Martin W.R. Opioid antagonists // Pharmacol Rev. 1967. V. 19. N 4. P. 463 521.
  88. Masugi F., Ogihara T., Hasegawa T., Tomii A., Nagano M., Higashimori K., Kumahara K., Terano Y. Circulating factor with ouabain-like immunoreactivity in patients with primary aldosteronism // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1986. V. 135. N l.P. 41−45.
  89. Matsuda Y., Yoshida S., Yonezawa T. Tetrodotoxin sensitivity and Ca component of action potentials of mouse dorsal root ganglion cells cultured in vitro // Brain Res. 1978. V. 154. N 1. P. 69−82.
  90. Melero C.P., Medarde M., San Feliciano A. A Short Review on Cardiotonic Steroids and Their Aminoguanidine Analogues // Molecules. 2000. V. 5. N 1. P. 5181.
  91. Mercer R.W., Biemesderfer D., Bliss D.P. Jr., Collins J.H., Forbush B. 3rd Molecular cloning and immunological characterization of the gamma polypeptide, a small protein associated with the Na, K-ATPase // J. Cell Biol. 1993. V. 121. N 3. P. 579−586.
  92. Mohammadi K., Kometiani P., Xie Z., Askari A. Role of protein kinase C inthe signal pathways that link Na+/K±ATPase to ERK½ // J. Biol. Chem. 2001. V. 276. N45. P. 42 050−42 056.
  93. Mohler P.J., Davis J.Q., Bennett V. Ankyrin-B coordinates the Na/K ATPase, Na/Ca exchanger, and InsP3 receptor in a cardiac T-tubule/SR microdomain // PLoS. Biol. 2005. V. 3. N 12. P. 2158−2168.
  94. Mohler P.J., Gramolini A.O., Bennett V. Ankyrins // J. Cell. Sci. 2002. V. 115. Pt. 8. P. 1565−1566.
  95. Molenda J.J., Jones M.M., Basinger M.A. Enhancement of iron excretion via monoanionic 3-hydroxypyrid-4-ones. //J. Med. Chem. 1994. V. 37. N 1. P. 93−98.
  96. Murata Y., Matsuda T., Tamada K., Hosoi R., Asano S., Takuma K., Tanaka K., Baba A. Ouabain-induced cell proliferation in cultured rat astrocytes // Jpn. J. Pharmacol. 1996. V. 72. N 4. P. 347−353.
  97. Nguen A.N., Wallance D.P., Blanco G. Ouabain binds with high affinity to Na, K-ATPase in human polycystic kidney cells and induces extracellular signalregulated kinase activation and cell proliferation // J. Am. Soc. Nephrol. V. 18. N 1. P. 46−57.
  98. Noda M., Suzuki H., Numa S., Stuhmer W. A single point mutation confers tetrodotoxin and saxitoxin insensitivity on the sodium channel II // FEBS Letters. 1989. V. 259. N l.P. 213−216.
  99. Okuse K., Malik-Hall M., Baker M.D., Poon W.Y., Kong H., Chao M.V., Wood J.N. Annexin II light chain regulates sensory neuron-specific sodium channel expression //Nature. 2002. V. 417. N 6889. P. 653−656.
  100. Osipchuk Y.V. Timin E.N. Electrical measurements on professed cells / Intracellular perfusion of excitable cells // London. 1984. Eds. P.G. Kostyuk and O.A. Kryishtal. P. 103−129.
  101. Overbeck H.W., Pamnani M.B., Akera T., Brody T.M., Haddy F.J. Depressed function of ouabain-sensitive sodium-potassium pump in blood vessels from renal hypertensive dogs // Circ. Res. 1976. V. 38. N 6. Suppl. 2. P. 48−52.
  102. Oztiirk G., Erol D.D., Aytemir M.D., Uzbay T. New analgesic and antiinflammatory agents 4(lH)-pyridinone derivatives // Eur. J. Med. Chem. 2002. V. 37. N10. P. 829−834.
  103. Oztiirk G., Erol D.D., Uzbay T., Aytemir M.D. Synthesis of 4(lH)-pyridinone derivatives and investigation of analgesic and antiinflammatory activities // II-Farmaco. 2001. V. 56. N 4. P. 251−256.
  104. Parenti M., Tirone F., Giagnoni G., Pecora N., Parolaro D. Pertussis toxin inhibits the antinociceptive action of morphine in the rat // Eur. J. Pharmacol. 1986. V. 124. N 3. P. 357−359.
  105. Post R.L., Hegyvary C., Kume S. Activation by adenosine triphosphate in the phosphorylation kinetics of sodium and potassium ion transport adenosine triphosphatase // J. Biol. Chem. 1972. V. 247. N 20. P. 6530−6540.
  106. Pressley T.A. Ion concentration-dependent regulation of Na, K-pump abundance // J. Membr. Biol. 1988. V. 105. N 3. P. 187−195.
  107. Renton T., Yiangou Y., Plumpton C., Tate S., Bountra C., Anand P. Sodium channel Nav 1.8 immunoreactivity in painful human dental pulp // BMC Oral Health. 2005. V. 5. N l.P.5.
  108. Ringer S. An Experimental Investigation to ascertain the Action of Veratria on a Cardiac Contraction // J. Physiol. 1885. V. 6. N 4−5. P. 150−153. 292−1-292−2.
  109. Roy M.L., Narahashi T. Differential properties of tetrodotoxin-sensitive and tetrodotoxin-resistant sodium channels in rat dorsal root ganglion neurons // J. Neurosci. 1992. V. 12. N 6. P. 2104−2111.
  110. Scheiner-Bobis G. The sodium pump. Its molecular properties and mechanics of ion transport // Eur. J. Biochem. 2002. V. 269. N 10. P. 2424−2433.
  111. Schoner W. Ouabain, a new steroid hormone of adrenal gland and hypothalamus // Exp. Clin. Endocrinol Diabetes 2000. V. 108. N 7. P. 449−454.
  112. Schoner W., Schiener-Bobis G. Endogenous cardiac glycosides: hormones using the sodium pump as signal transducer // Semin. Nephrol. 2005. V. 25. N 5. P. 343−551.
  113. Shah B.S., Rush A.M., Liu S., Tyrrell L., Black J.A., Dib-Hajj S.D., Waxman S.G. Contactin associates with sodium channel Nav 1.3 in native tissues and increases channel density at the cell surface // J. Neurosci. 2004. V. 24. N 33. P. 7387−7399.
  114. Sivilotti L., Okuse K., Akopian A.N., Moss S., Wood J.N. A single serine residue confers tetrodotoxin insensitivity on the rat sensory-neuron-specific sodium channel SNS // FEBS Lett. 1997. V. 409. N 1. P. 49−52.
  115. Skou J.C. Nobel Lecture. The identification of the sodium pump // Biosci. Rep. 1998. V. 18. N4. P. 155−169.
  116. Skou J.C. The influence of some cations on adenosinetriphosphatase from peripheral nerves. 1957. // Biochim. Biophys. Acta. 1989. V. 1000. P. 439−446.
  117. Skou J.C., Esmann M. The Na, K-ATPase // J. Bioenerg. Biomembr. 1992. V. 24. N3. P. 249−261.
  118. Sophocleous A., Elmatzoglou I., Souvatzoglou A. Circulating endogenous digitalis-like factor (s) (EDLF) in man is derived from the adrenals and its secretion is ACTH-dependent // J. Endocrinol. Invest. 2003. V. 26. N 7. P. 668−674.
  119. Stewart T., Beyak M.J., Vanner S. Ileitis modulates potassium and sodium currents in guinea pig dorsal root ganglia sensory neurons // J. Physiol. 2003. V. 552. Pt. 3. P. 797−807.
  120. Strichartz G.R. The inhibition of sodium currents in myelinated nerve by quaternary derivatives of lidocaine // J. Gen. Physiol. 1973. V. 62. N 1. P. 37−57.
  121. Takeda K., Noguchi S., Kawamura M. Significance of the beta-subunit in the biogenesis of Na+/K (+)-ATPase // Biosci. Rep. 1997. V. 17. N 2. P. 173−188.
  122. Terness P., Navolan D., Dufter C., Kopp B., Opelz G. The T-cell suppressive effect of bufadienolides: structural requirements for their immunoregulatory activity // Int. Immunopharmacol. 2001. V. 1. N 1. P. 119−134.
  123. Therien A.G., Blostein R. Mechanisms of sodium pump regulation // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2000. V. 279. N 3. P. 541−566.
  124. Thompson K. H., Barta C. A., Orvig C. Metal complexes of maltol and close analogues in medicinal inorganic chemistry. // Chem. Soc. Rev. 2006. V. 35. N 6. P. 545−556.
  125. Tian J., Cai T., Yuan Z., Wang H., Liu L., Haas M., Maksimova E., Huang X.Y., Xie Z.J. Binding of Src to Na+/K±ATPase forms a functional signaling complex // Mol. Biol. Cell. V. 17. N 1. P. 317−326.
  126. Tian J., Gong X., Xie Z. Signal-transducing function of Na±K±ATPase is essential for ouabain’s effect on Ca2+.i in rat cardiac myocytes // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2001. V. 281. N 5. P. 1899−1907.
  127. Timeus F., Valle P., Rosso P., Ruggieri L., Gabutti V., Ramenghi U. Effect of desferoxamine and hydroxypyridones on hemopoietic progenitors and neuroectodermal tumor cells // Am. J. Hematol. 1994. V. 47. N 3. P. 183−188.
  128. Vakkuri O., Arnason S.S., Joensuu P., Jalonen J., Vuolteenaho O., Leppaluoto J. Radioiodinated tyrosyl-ouabain and measurement of circulating ouabain-like compound// Clin. Chem. 2001. V. 47. N 1. P. 95−101.
  129. Wang H., Haas M., Liang M., Cai T., Tian J., Li S., Xie Z. Ouabain assembles signaling cascades through the caveolar Na+/K±ATPase // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. N 17. P. 17 250−17 259.
  130. Warren C.A., Mok L., Gordon S., Fouad A.F., Gold M.S. Quantification of neural protein in exterpated tooth pulp // J. Endod. 2008. V. 34. N 1. P. 7−10.
  131. Weidemann H. Na/K-ATPase, endogenous digitalis like compounds and cancer development -a hypothesis // Front. Biosci. 2005. V. 10. P. 2165−2176.
  132. Williams W.R.H. Synthesis of some 4-pyranones and 4-pyridones structurally related to isoproterenol // Can. J. Chem. 1976. V. 54. N 21. P. 3377−3382.
  133. Wittmack E.K., Rush A.M., Hudmon A., Waxman S.G., Dib-Hajj S.D. Voltage-gated sodium channel Nav 1.6 is modulated by p38 mitogen-activated protein kinase // J. Neurosci. 2005. V. 25. N 28. P. 6621−6630.
  134. Xie Z., Askari A. Na+/K±ATPase as a signal transducer // Eur. J. Biochem. 2002. V. 269. N 10. P. 2434−2439.
  135. Xie Z., Kometiani P., Liu J., Li J., Shapiro J.I., Askari A. Intracellular reactive oxygen species mediate the linkage of Na+/K±ATPase to hypertrophy and its marker genes in cardiac myocytes // J. Biol. Chem. 1999. V. 274. N 27. P. 1 932 319 328.
  136. Yamada K., Goto A., Hui C., Yagi N., Nagoshi H., Sasabe M., Sugimoto T. Role of ouabainlike compound in rats with reduced renal mass-saline hypertension // Am. J. Physiol. 1994. V. 266. N 4. Pt. 2. P. 1357−1362.
  137. Yamane H., de Groat W.C., Sculptoreanu A. Effects of ralfinamide, a Na+ channel bloker, on firing properties of nociceptive dorsal root ganglion neurons of adult rats // Exp. Neurol. 2007. V. 208. N 1. P. 63−72.
  138. Yoshimura N., de Groat W.C. Increased excitability of afferent neurons innervating rat urinary bladder after chronic bladder inflammation // J. Neurosci.1999. V. 19. N 11. P. 4644−4653.
  139. Yu F.H., Catterall W.A. The VGL-chanome: a protein superfamily specialized for electrical signaling and ionic homeostasis // Sci. STKE. 2004. V. 253. re 15.
  140. Zhang S.B., Malmersjo S., Li J., Ando H., Aizman O., Uhlen P., Mikoshiba K., Aperia A. Distinct Role of the N-terminal Tail of the Na, K-ATPase Catalytic Subunit as a Signal Transducter // J. Biol. Chem. 2006. V. 281. N 31. P. 2 195 421 962.
  141. Zhang Y.H., Vasko M.R., Nikol G.D. Ceramide, a putative second messenger for nerve growth factor, modulates the TTX-resistant Na (+) current and delayed rectifier K (+) current in rat sensory neurons // J. Physiol. 2002. V. 544. Pt. 2. P. 385 402.
  142. В. Воротные токи и движение зарядов в возбудимых мембранах // Мембраны: ионные каналы /М., «Мир». 1981. С. 129−236.
  143. Н.С., Костюк П. Г., Цындренко А. Я. Разделение ионных токов, ответственных за генерацию потенциалов действия в соматической мембране нейронов новорожденных крыс // Доклады АН СССР. 1979. Т. 249. № 6. С. 1466−1469.
  144. Е. А., Катина И. Е., Плахова В. Б., Подзорова С. А., Кулов М. А., Иванов В. К., Крылов Б. В. Возможный механизм кодирования ноцицептивных сигналов: роль медленных натриевых каналов // Сенсорные системы. 2008. Т. 22. № 3. С. 257−270.
  145. .В., Вилин Ю. Ю., Подзорова С. А., Чалисова Н. И. Натриевые каналы сенсорных нейронов как возможная молекулярная мишень действия этанола // Сенсорные системы. 1996. Т. 10. № 4. С. 52−66.
  146. .В., Дербенев A.B., Подзорова С. А., Людыно М. И., Кузьмин A.B., Изварина H.JI. Морфин уменьшает чувствительность к потенциалу медленных натриевых каналов // Физиол. журнал. 1999. Т. 85. № 2. С. 225−236.
  147. Е.В., Пеннияйнен В. А., Рогачевский И. В., Крылов Б. В. Фармакологическая модуляция трансдукторной функции Na+, К±АТФазы. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008. Т. 145, № 10. С. 1673−1683.
  148. Г. Н., Наумов А. П., Носырева Е. Д. Кинетика спада натриевого тока при реполяризации аксональной мембраны в норме и в присутствии токсина скорпиона// Нейрофизиология. 1980. Т. 12. № 5. С. 541−549.
  149. В.А., Крылов Б. В., Чалисова Н. И., Малевская И.И Влияние оуабаина на рост нейритов чувствительных нейронов в органотипической культуре ткани // Цитология. 2003. Т. 45. № 4. С. 377−379.
  150. И.В., Плахова В. Б. Квантовохимическое исследование равновесной геометрии и электронного строения ряда производных у-пирона. // Журнал общей химии. 2006. Т. 76. № 11. С. 1904−1918.
  151. И.В., Плахова В. Б., Домнин И. Н., Подзорова С. А., Крылов Б. В. Физиологическая роль гамма-пиронов // Клиническая патофизиология. 2006. № 1.С. 15−24.
  152. И.В., Плахова В. Б., Лопатина Е. В., Крылов Б. В. Технология создания новых лекарственных препаратов на основе производных гамма-пирона // Новые технологии и их применение. 2007. № 2. С. 46−53.
  153. И.В., Плахова В. Б., Шелых Т. Н. Квантовохимическое исследование электронного строения и механизмов лиганд-рецепторного связывания ряда производных у-пиридона и у-пирона // Журнал общей химии. 2009. Т. 79. № 1. С. 106−119.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!