Регенерация и трансформация ремонтантных форм малины
Диссертация
Объектом исследований в настоящей работе были ремонтантные формы малины, полученные с использованием межвидовой гибридизации на Кокинском опорном пункте ВСТИСП чл.- корр. РАСХН И. В. Казаковым, Ремонтантные формы отличаются способностью формировать урожай на однолетних побегах в конце лета — начале осени, при этом они не повреждаются основными вредителями и болезнями. При использовании… Читать ещё >
Список литературы
- Армитидж Ф., Уолден Р., Дрейпер Дж. Агробактериальные трансформирующие векторы растений. // Генная инженерия растений., М.: Мир, 1991, с. 11−83.
- Белоногова М. А., Ралдугина Г. Н., Кубрак С. А. Побегообразование на семядольных эксплантах различных генотипов льна обыкновенного {Linum usitatissimum) Тезисы докладов V Съезда общества физиологов растений России. Пенза 2003.
- Бурдейная Т. В. Агробактериальная трансформация малины красной (Rubus ideus). Сборник тезисов. Саратов 2003, с. 59.
- Бутенко Р. Г Состояние и перспективы изучения морфогенеза растений // В Сб. Всесоюз. Общества физиологов растений. 1990. Вып.8 С. 5−8
- Бутенко Р. Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. М., 1975. С.48−65
- Бутенко Р. Г. Клеточные и молекулярные аспекты морфогенеза растений in vitro II1 Чайлахян. Чтения. Пущино: Пущинский Н Ц, 1994. С.7−26.
- Бутенко Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999.
- Бутенко Р. Г. Использование культуры тканей растений в сельскохозяйственной науке и практике. // Сельскохозяйственная биология. 1979, Т. 14, № 3, С. 306−315.
- Вовк В В. Оптимизация селекционного процесса и ускоренное размножение межвидовых ремонтантных форм малины методом in vitro II Дисс. Канд. с.-х. наук. Брянск., 2000.
- Высоцкий В. А., Упадышев М. Т., Соломонова Ф. Н. Особенности регенерации растений изолированными пыльниками и листовыми дисками ягодных культур in vitro II Сельскохозяйственная биология. 1998, № 3, С. 44−50.
- Высоцкий В. А. особенности клонального микроразмножения некоторых форм ремонтантной малины // плодоводство и ягодоводство России / Сб. научных трудов ВСТИСП. М., 1996. ТЗ.С. 90−95
- Доспехов Б.А. Методика полевого опыта.- М.: Колос, 1979,416 с.
- Казаков И. В. Проблемы и перспективы создания сортов малины ремонтантного типа // Селекционно-генетические проблемы развития садоводства в средней полосе европейской части России. Мичуринск. 1995. с. 26−29
- Казаков И. В. Проблемы и перспективы создания сортов малины ремонтантного типа. // Селекционно-генетические проблемы развития садоводства в средней полосе европейской части России. Мичуринск. -1995. с. 26−29.
- Казаков И. В., Рожнов Н. И., Евдокименко С. Н. Совершенствование исходных форм малины ремонтантного типа. // Генетика и наследование важнейших хозяйственных признаков плодовых растений. Мичуринск.-1994, с. 64−69
- Казаков И. В. Перспективное направление селекции малины // Материалы международной научно-практической конференции молодых ученых Брянск 2001 С. 85
- Каляева М. А., Захарченко Н. С., Бурьянов Я. И. Способность однодольных растений индуцировать процессинг агробактериальной Т-ДНК. // Физиология и биохимия культурных растений. 2000. Т. 32. № 3. С. 209−218.
- Колесниченко В. М. Генетическая инженерия древесных растений. // Лесоведение. 1989. № 6. С. 73−83.
- Кучук Н. В. Генетическая инженерия высших растений. Киев. Науко-ва думка. 1997.
- Лутова Л. А., Бондаренко Л. В., Бузовкина И. С., Левашина Е. А., Тихо деев О. Н., Ходжайова Л. Т., Шарова Н. В., Шишкова С. О., Влияние генотипа растения на регенерационные процессы. // Генетика. Т. 3, № 8, с. 1065−1074.
- Матвеева Т. В., Лутова Л. А., Нестер Ю. Опухолеобразование у растений. // Генетика. 2001. Т. 32. № 9. с. 1188−1197.
- Машкина О. С., Буторина А. К. Генетическая инженерия лесных древесных растений. // Генетика. 2003. Т. 39. № 3. С. 309−317.
- Меркулов СМ. Разработка методов генетической трансформации груши (Pyrus communis L.) с использованием обезоруженных штаммов Agrobacterium tumefaciens II II Росс. Симп. «Новые методы биотехнологии растений», 18−20 мая 1993 г. Пущино-на-Оке, 1993. С. 32.
- Меркулов С. М., Бартиш И. В., Глеба Ю. Ю. Регенерация адвентивных побегов из листовых тканей груши (Pyrus communis L.) II Физиология и биохимия культурных растений. 1993. Е. 25. № 4. С. 375−380.
- Меркулов С. М., Бартиш И. В., Долгов С. В., Пастернак Т. П., Мак-хьюген А. Генетическая трансформация груши (Pyrus communis L.) с помощью Agrobacterium tumefaciens. II Генетика. 1998, Т. 34, № 3, с. 373−378.
- Монзави- Карбасси Б., Голденкова И. В., Дарбинян Н. С., Василенко
- B. Т., Кобец Н. С., Пирузян Э. С., Эффективная секреция бактериальной {3- глюканазы в межклеточное пространство трансгенных растений табака Nicotiana tabacum // Генетика. 1998. Т. 34. С. 475−479.
- Монзави- Карбасси Б., Голденкова И. В., Кобец Н. С., Мусийчук К. А., Волкова Л. В., Пирузян Э. С. Гетерологическая экспрессия гена licB Clostridium thermocellum в протопластах табака//Генетика. 1997. Т. 33.1. C. 904−910.
- Муратова С. А. Регенерация адвентивных побегов из листовых экс-плантов сливы (Prunus domestica). Сборник тезисов. Саратов 2003.с. 219.
- Мусийчук К. А. Бифункциональные репортерные системы для про- и эукариот на основе делеционного варианта термостабильной лихеназы Clostridium thermocellum. Автореферат дисс. М.: 2001.
- Муромцев Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О. Н., Гамбург К. 3. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агро-промиздат, 1987,383 с.
- Новоселя Т. В, Дейнеко Е. В., Шумный В. К. Стабильность экспрессии гена nptll у трансгенных растений табака {Nicotiana tabacum) с множественными инсерциями Т-ДНК. // Генетика. 2000 Т. 36. № 3. с. 427.
- Пирузян Э. С., Андрианов В. М. Плазмиды агробактерий и генетическая инженерия растений. // М. Наука. 1985. 279 с.
- Ралдугина Г. Н., Малышенко С. И. Тюлькина Л. Г., Зверева С. Д. Ген GFP в качестве маркерного гена при создании трансгенных растений Brassica campestris L .Материалы Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых. Санкт-Петербург. 2001.
- Сковородников Д. Н. Особенности клонального микроразмножения in vitro и ускорение селекции новых ремонтантных форм малины Дисс. Канд. с.-х. наук. Брянск., 2004
- Тиссера Б. Эмбриогенез, органогенез и регенерация растений. // В кн.: Биотехнология растений: культура клеток. М., 1989. С. 97−127.
- Туровская Н. И. Микроклональное размножение яблони и груши in vitro II Садоводство и виноградарство.- 1994.- N 1, — С. 10−12.
- Туровская Н. И., Стрыгина О. В., Формирование адвентивных почек на эксплантах малины. // Сортоизучение и селекция плодовых и ягодных культур. Сборник научных трудов НИИ им. И. В. Мичурина. Мичуринск. 1992. с. 82−84.
- Упадышев М. Т. Высоцкий В. А. Регенерационная способность экс-плантов рода Rubus в зависимости от длительности культивирования in vitro. И Сельскохозяйственная биотехнология. 1995. № 1. С. 85−88.
- Упадышев М. Т. Клональное микроразиножение некоторых нетрадиционных культур рода Rubus. И Ягодоводство в Нечерноземье. 1993.
- Хамукова Ф. Н. Регенерация растений земляники и малины из экс-плантов различного происхождения. // Автореф. Дисс. Канд. с. -х. наук. М., 1994. 22с.
- Хасси Г. Размножение сельскохозяйственных культур in vitro. IIВ кн.: Биотехнология сельскохозяйственных растений. М., 1987. С. 105−133.
- Шевелуха В. С., Калашникова Е. А., Дегтярев С. В., Кочиева Е. 3., Прокофьев М. И., Новиков Н. Н., Ковалев В. М, Калашников Д. В. Сельскохозяйственная биотехнология. М.: Высшая школа. 1998. 416 с.
- Юсуфов А. Г. Регенерация высших растений М., 1982. с. 176
- Яцина А. А., Концевая И. И. Культура тканей трех видов рода Rubus. // Абстракты VIII интернациональной конференции. Биология растительных клеток in vitro и биотехнология. Саратов 9−13 сентября 2003 г.
- Abhaya M. Dandekar, Gale h. McGranaham et al. Engineering for apple and walnut resistance to codling moth. // Brighton crop protection conference. 1992.
- AmbroziS Turc B., Swartz H. J., Zimmerman R. H. Adventitious shoot regeneration from in vitro-cultured leaves of Rubus genotypes. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1994. V.38. P. 11−17.
- An G. Development of plant promoter expression vectors and their use for analysis of differential activity of nopaline synthase promoter in transformed tobacco cells. // Plant Physiology. 1986. V. 81. P. 86−91.
- Anderson W. C. Tissue culture propagation of red and black raspberries, Rubus ideus and Rubus occidentalis. /7 Acta Horticulturae. 1980. N. 112. P. 13−20.
- Bagyan I. L., Revenkova E. V., Pozmogova G. E. 5-Regulatory region of Agrobacterium tumefaciens T-DNA gene 6b direct organ-specific, wound-inducible and auxin-inducible expression in transgenic tobacco. // Plant Mol. Biol. 1996.V. 29. P. 1299−1304.
- Baker B. S., Bhatia S. K. Factors affecting adventitious shoot regeneration from leaf explants of quince (Cydonia oblonga) II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1993. N.35 P. 273−277.
- Barcelo M., El-Mansouri I., Mercado J. A., Quesada M. A., Alfaro F. P. Regeneration and transformation via Agrobacterium tumefaciens of the strawberry cultivar Chandler. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1998. N. 54 P. 29−36.
- Bartish I. V., Merkulov S. M., Korchovoy V. I. Genetic transformation of apple and pear cultivars mediated by Agrobacterium tumefaciens, strain A281 // Idid. Kiev, 1994. P. 42.
- Billings S. G., Chin C. K., Jelenkovic G. Regeneration of blueberryplant-lets from leaf segments // Horticular Science. 1988. N. 23 P.763−766
- Binns A. N., Thomashow M. F. Cell biology of Agrobacterium infection and transformation of plants. // Ann. Rev. Microbiol. 1988. V.42. P.575−606.
- Brishbane P. G., Kerr A. Selective media for three biovars of Agrobacte-rium II J. Appl. Bacteriol. 1983. V. 54. P. 425−431.
- Caplan A., Herrerra-Estrella L., Inze D., Van Haute E., Van Montagu M., Schell J., Zambryzki P. Introduction of genetic material into plant cells. // Science. 1983. N. 222. P. 21−815.
- Cassells A. C., Morrish F. M. Growth measurement of Begonia rex Putz 'Lucille Closon' as a consequence cell ontogeny, callus ageing, recycled ax-enic leaves and callus. // Scientia Hort. 1985. V. 27. P. 113−121.
- Chevreau E., Skirvin R., Abu-Qaoud H. A., Korban S. S., Sullivan J. G., Adventitious shoot regeneration from leaf tissue of three pear (Pyrus sp.) cultivars in vitro. II Plant Cell Reports., 1989 V. 7 P.688−91.
- Cousineau J. C., Donnely D. J. Adventitious shoot regeneration from leaf explants of tissue cultured and greenhouse-grown raspberry. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1991. N.27 P. 249−255.
- D’Amato F. Chromosome number variation in cultured cells and regenerated plants. In: T. A. Thorpe (Ed.) Frontiers of plant tissue culture, International Association of Plant Tissue Culture, U. of Calgary, Canada. 1987. p. 278−295.
- Dandekar A. M. Transformation. In: Hammerschlag FA & Litz RE (Eds) Biotechnology of Perennial Fruit Crops 1992. P. 141−168. C. A. B International, Wallingford, UK
- Dandekar A. M., Martin L. A., McGranahan G. H Genetic transformation and foreigh gene expression in walnut tissue. // Am. Soc. Horticular Science., 1988. V. 113. P. 945−949.
- De Block M. Factors influencing the tissue culture and the Agrobacterium tumefaciens- mediated transformation of hybrid aspen and poplar clones. // Plant Physiology. 1990. N.93. P. l 110−1116.
- De Bondt A., Eggermont K., Penninckx I. et al. Agrobacterium-mediated transformation of apple (Malus domestica Borkh.): an asessement of factorsaffecting regeneration of transgenic plants. // Plant Cell Reports. 1996. V. 15. № 7. p. 549−554.
- Deca P. C., Sen S. K. Differentiation in calli originated from isolated protoplasts of rice (Oryza sativa L.) through plating technigue. // Molec. Gen. Genet. 1976. V. 145. P.239.
- DeFaria M. J. S. S., Donnelly D. J., Cousineau J. C. Adventitious shoot regeneration and Agrobacterium — mediated transformation of red raspberry. Arquivos de biologia Etechnicologia. 1997. N. 40(3). P. 32−529.
- Depicker A., Stachel S., Dhaese P., Zambryski P., Goodman H. Nopaline synthase transcript mapping and DNA sequence. // Mol. Appl. Genet., 1982. V. l.P. 561.
- Drummond M. H., Gordon M. P., Nester E. W., Chilton M. D. Foreigh DNA of bacterial plasmid origin is transcribed in crown gall tumors. // Nature. 1977. V. 269. P. 535.
- Economou A. S., Read P. E. Effect of benzyladenine pretreatments shoot proliferation from Petunia leaf segments cultured in vitro. // Proc plant Growth regulators working Group. 1980 N.7 P. 96−103.
- Elobeidy A., Korban S. S. The effect of thidiazuron on shoot regeneration from apple leaf discs. // Horticular Science. 1988. N. 23 P.755
- Engler G., Depicker A., Maenhaut R. et al Physical mapping of DNA base sequence homologies between an octopine and nopaline tiplasmid of Agro-bacterium tumefaciens. // Mol. Biol. 1981. V. 152. P. 183−208.
- Eriksson O., Bremer B. Genet dynamics of the clonal plant Rubus saxatilis. II Journal of Ecology. 1993. V. 81. P.41−533.
- Fasolo F., Zimmermann R. H., Fordham I. Adventitious shoot formation on excised leaves of in vitro grown shoots of apple cultivars. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1989 V. 16 P.75−87.
- Feldmann K. A., Marks M. D. Agrobacterium-medited transformation of germinating seeds of Arabidopsis thaliana: A non-tissue culture approach. // Mol. Gen. Genet. 1987. V. 208. P. 1−9.
- Fiola J. A., Hassan M., Swartz H. J., Bors R., McNicol R. J. The effect of thidiazuron, light fluence rate and kanamycin on shoot regeneration from excised Rubus cotyledons and in vitro leaves. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture (in press) 1989.
- Fiola J. A., Swartz H. J. Somatic embryogenesis, organogenesis and proliferation In vitro from Rubus embryos. // Acta- Horticulturae 1986. N. 183. P. 91−98.
- Gasser C. S., Fraley R. T. Genetically engineering plants for crop improvement. // Science. 1989 244. 1293−1299.
- Gingas V. M., Stokes B. D. Rubus plant regeneration via asexual embryogenesis. // Horticular Science. 1993. N. 28. P. 58.
- Glenn T. Howe, Barry Goldfarb & Steven H. Strauss. Agrobacterium-mediated transformation of hybrid poplar suspension cultures and regeneration of transformed plants. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1994. V.36. P.59−71.
- Godwin I., Gordon T., Ford-Lloyd B., John Newbury H. The effects of acetosyringone and pH on Agrobacterrium-mediated transformation vary according to plant species.// Plant Cell Reports., 1991 V. 9 P.671−675.
- Graham J., Gordon S. C., McNicol R. J. The effect of the CpTi gene in strawberry against attack by vine weevil (Otiorhynchus sulcatus F. Coleoptera: Curculionidae). // Ann. appl. Biol., 1997 N.131. P. 133−139.
- Graham J., Iasi L., Millam S. Genotype- specific regeneration from a number of Rubus cultivars. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1997. N. 48 P. 167−173.
- Graham J., McNicol R. J. An examination of the ability of RAPD markers to determine the relationships within and between Rubus species. // Theor. Appl. Gen. 1995. N. 90. P. 1128−1132.
- Graham J., McNicol R. J., Greig K. Towards genetic based insect resistance in strawberry using the Cowpea trypsin inhibition gene. // Ann. appl. Biol., 1995 N.127 P. 163−173.
- Graham J., McNicol R. J. An examination of the ability of RAPD markers to determine the relationships within and between Rubus species. // Theoretical and Applied Genetics. 1995. V. 90. P. 32−1128.
- Graham J., McNicol R. J., Kumar A. Use of the GUS gene as selectable marker for Agrobacterium- mediated transformation of Rubus. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1990. N.20 P. 9−35.
- Haccius B. Question of unicellular origin of nonzygotic embryos in callus cultures. // Phytomorphology. 1978. V. 28.P. 47−81.
- Hall H. K., Quazi M. H., Skirvin R. M. Isolation of a pure thornless Lo-ganberyy by meristem tip culture. // Euphytica. 1986. N. 35. P.44−1039.
- Hammerschlag F. A., Bauchan G., Scorza R. Regeneration of peach plants from callus derived from immature embryos. // Theor Appl Genet. 1985. V. 70. P. 248−251.
- Hassan M. A., Swartz H. J., Inamine G. Mullineaux P. Agrobacterium tumefaciens -mediated transformation of several Rubus genotypes and recovery of transformed plants. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1993. N. 33 P. 9−17.
- Hess K. M., Lynn M. W., Joerger R. D., Binns A. N., Mechanism of phenolic activation of Agrobacterium virulence genes: Development of aspecific inhibitor of bacterial sensor | respons systems. // Plant Mol. Biol., 1991. V.17., 1013−1021
- Hoepfher A. S., Nestby R., Nybom H. Genetic deviation initiated by adventitious shoot regeneration from tissue cultured raspberry. // Horticular Science. 1996. V. 71. P. 71−9.
- Horsch R. B., Fry J., Hoffmann N., Rogers S. G., Fralev R. T., A simpl and general method for transferrung genes into plants. // Science. 1985. V.227. P.1229−1231.
- Howard E., Citovsky V. The emerging structure of the Agrobacterium T- DNA transfer complex. // Bio. Essays. 1990. V. 12. P. 103−108.
- James D. J., Passey A. J., Barbara D. J., Bevan M. W. Genetic transformation of apple (Malus pumila Mill.) using a disarmed Ti-binary vector. // Plant Cell Reports 1989 V. 7, P. 658−661.
- James D. J., Passey A. J., Rugini E. Factors affecting high frequency plant regeneration from apple leaf tissues cultured in vitro. // Plant Physiology. 1988. N. 132. P.148−154.
- James D.J., Mackenzie KAD, Malhotra S. B. Organogenesis in callus derived from stem and leaf tissues of apple and cherry rootstocks // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1984. V.3. P.333−341.
- James D.J., Mackenzie KAD, Malhotra S. B., The induction of hexap-loidy in cherry rootstocks using regeneration techniques. // Theor Appl Gen 1987. V. 73. P. 589−594.
- James D.J., Passey A. J., Barbara D.J., Agrobacterium-mediated transformation of the cultivated strawberry (Fragaria x ananassa Duch) using disarmed binary vector. // Plant Science. 1990. N. 69. P. 79−94.
- Kado C. I. Molecular mechanisms of crown gall tumorigenesis. // Grit. Revs. Plant Science. 1991. V. 10N. 1 P. 1−32.
- Kerns H. R, Meyer M. M., Tissue culture propagation of Acer x-Freemanii using thidiazuron to stimulate shoot tip proliferation. // Horticular Science. 1986. N. 21. P. 1209−1210.
- Klee H. J., Gordon M. P., Nester E. W. Complementetion analysis of Agrobacterium tumefaciens Ti-plasmid mutation affecting oncogenicity. // Bacteriol. 1982 V. 150. P. 327−331.
- Korban S. S., O’Connor P. A., Elodeidy A. Effects of thidiazuron, naphthaleneacetic acid, dark incubation and genotype on shoot organogenesis fromMalus leaves. // Horticular Science. 1992. N. 67. P. 341−349.
- Kouider M., Skirvin R. M., Korban S. S. Widholm J. M. Hauptmann R. Adventitious shoot formation from Red Delicious apple cotyledons in vitro II Horticular Science. 1984. N. 59. P. 295−302
- Lane W. D., Cossio F. Adventitious shoots from cotyledons of immature cherry and apricot embryos. // Can J. Plant Science. 1986. N. 66. P. 953−959.
- Larkin P. M., Scowcroft W. R. Somaclonal varion — a novel source of variability from cell culture for plant improvement. // Theor. Appl. Genet. 1981. V. 60. P. 197−214.
- Leblay C., Cheveau E., Raboin L. M. Adventitious shoot regeneration from in vitro leaves of several pear cultivars (Pyrus communis L.J. II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1991. V.25. P.99−105.
- Leemans J., Deblaere R., Willmitzer L., De Greve H., Hernalsteens J. P., Van Montagu M., Schell J. Genetic identification of functions of Tl-DNA transcripts in octopine crown galls. // EMBO 1982. V. 1. P.147.
- Lindsey K., Jones M. G. K., Elektroporation of cells. // Physiol. Plant., 1990. V. 79. P. 168−172.
- Liu J. R., Sink K. C., Dennis F. G. Plant regeneration from apple seedling explants and callus culture // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1983. V.2. P.293−304.
- Lui Z. R., Sanford J. C., Plant regeneration by organogenesis from strawberry leaf and runner tissue. // Horticular Science. 1988 23. P. 10 571 059.
- Machado da Camara M. L., Machado C. A. Regeneration of transgenic plants of Prunus armeniaca containing the coat protein gene of Plum Pox Virus // Plant Cell Reports. 1992. V. 11.1 P. 25−29.
- Maheswaran G., Williams E. G. Uniformity of plants regenerated by direct somatic embryogenesis from zugotic embryos of Trifolium repens. // Annals of Botany. 1987. V. 59. P. 93−97.
- Mante S., Cornell U., Morgens P., Scorza R., Cordts J., Callahan A. Agrobacterium -mediated transformation of plum (Prunus domestica) hypo-cotul segments and regenetation of transgenic plants. // Bio. Technology. 1991. V. 9. P.853−857.
- Mante S., Scorza R., Cordts J. M. Plant regeneration from cotyledons of Prunus persica, Prunus domestica, and Prunus cerasus. II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1989. N. 19 P. 1−11.
- Mante S., Scorza R., Cordts J. Plant regeneration from mature plum (Prunus domestica) cotyledons. In vitro cellular dev. // Boil. 1988. N. 24. P. 39.
- Mathews H., Wagoner W., Cohen C., Kellogg J., Bestwick R. Efficient genetic transformation of red raspberry, Rubus ideus. I I Plant Cell Reports., 1995 V. 14 P.6−471.
- McGranahan G. H., Leslie C. A., Uratsu S. L., Dandekar A. M. Im-pruved efficiency of the walnut somatic embrio gene transfer system. // Plant Cell Reports. 1990. V. 8. 10. P. 512−516.
- McGranahan G. H., Leslie C. A., Uratsu S. L., Martin L. A., Dandekar A. M. Agrobacterium- mediated transformation of walnut somatic embryos and regeneration of transgenic plants. // Bio technology, 1988. V. 6. P. 800 804.
- McNicol R. J., Graham J. Genetic manipulation in Rubus and Ribes. // Acta- Horticulturae. 1989. N. 262. P. 41−46.
- McNicols R. J., Graham J. In vitro regeneration of Rubus from leaf and stem segments. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1990. N. 21 P. 45−50.
- Meins F. Heritable variation in plant cell culture. // Ann. Rev. Plant Physiology. 1983. V. 34. P. 327−343.
- Millan-Mendoza B. Regeneration of Rubus in vitro using forchlor-fenuron (CPPU). // Rev. Fac. Agron. (LUZ). 1998. V. 15. P. 242−248.
- Millan-Mendoza B., Graham J. Organogenesis and micropropagation in red raspberry using forchlorfenuron. // Horticultural science & biotechnology. 1999. N. 74(2). P. 219−223.
- Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bio-assay with tobacco tissue cultures. // Physiologia plantarum. 1962. N 15. P. 473−497.
- Nehra N. S., Chibbar R. N., Kartha K. K., Datla R. S., Crosby W. L., Stushnoff C. Genetic transformation of strawberry by Agrobacterium tumefaciens using a leaf disk regeneration system. // Plant Cell Rep., 1990, N.9., P.293−289.
- Nehra N. S., Chibbar R. N., Kartha K. K., Datla R. S. S., Crosby W. L., Stushnoff C. Agrobacterium- mediated transformation of strawberry calli and recovery of transgenic plants. // Plant Cell Rep., 1990. V. 9. P. 10−13.
- Nieuwkirk K., Fordham I., Zimmerman R.H. Thidiazuron stimulation of apple shoot proliferation in vitro. // Horticular Science. 1987. N. 21. P. 516−518.
- Nishi S., Ohsawa K. Mass production method of virufree strawberry plants through meristem callus. JARQ. 1973. V. 7, P. 3
- Nyman M., Wallin A., Improved culture technique for strawberry (Fragaria *ananassa Duch.) protoplasts and the determination of DNA content in protoplast derived plants. // Plant Cell Tissue Organ Cult., 1992. V. 30. P. 127−133.
- Ochatt S. J., Caso O. H. Shoot regeneration from leaf mesophyll protoplasts of wild pear (Pyrus communis var. pyraster L.) // Plant Physiology. 1986. V. 122., P. 243−249.
- Ochatt S. J., Power J. B. An alternative approach to plant regeneration from protoplasts of sour cherry (Prunus cerasus L.). // Plant Science, 1988. V. 56. P. 75−79.
- Owens C. Y De Novoa. Empirical evaluation of in vitro media components for cell growth and shoot regeneration from rubus explants. // New Zealand Natural Sciences. 1992. N. 19. P. 79−86
- Owens y de Novoa C., Conner A. J., Comparison of in vitro shoot regeneration protocol from Rubus leaf explants. // N. Z. J. Crop. Horticular Science. 1992. N. 20 P. 471−476.
- Parent J. G., Fortin M. G., Page D. Identification of raspberry cultivars by random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis. // Plant Science. 1993. V. 73. P. 22−1115.
- Patat-Ochatt E. M., Ochatt S. J., Power J. B., Plant regeneration from protoplasts of apple rootstocks and scion varieties (Malus *dom estica Borkh.).// Plant Physiology 1988. V. 133. P. 460−465.
- Pena A., Lozz H., Shell J. Transgenic rye plants obtained by injection DNA into young floral tillers. // Nature. 1987. V. 325. P.274−276.
- Petersen S., Stummann B., Olesen P., Henningsen K. Structure and function of root-inciding (Ri) plasmids and their relation to tumour inducing (Ti) plasmids // 1989. V. 77. P. 427−435.
- Pierik R. L. M. In vitro culture of higher plants. Dordrecht etc.- Ni-jhoff., 1987. V.5.P.344.
- Piruzian E. S., Monzavi- Karbassi B., Darbinian N. S., Goldenkova I. V., Kobets N. S., Mochulsky A. V., The Use of Termoactive p-Glucanase Gene from Clostridium thermocellum as a Reporter Gene in Plant. // Mol. Gen. Genet. 1998. V. 257. P. 561−567.
- Pollock K., Bartield D. G., Robinson S. J., Shields R. Transformation of protoplast-derived cell colomies and suspension cultures by Agrobacte-rium tumefaciens. // Plant Cell Reports., 1985. V. 4 P. 202−205.
- Predieri S., Malavasi F. F. F., Passey A. J., Ridont M. S., James D. J. Regeneration from in-vitro leaves of «Conference» and other pear cultivars (Pyrus communis L.). // Horticular Science., 1989 N.64. P.553−559.
- Preece J. E., Huetteman C. A., Puello C. H., Neuman M. C., Influence of thidiazuron on in vitro culture of woody plants. // Horticular Science. 1988. V. 22. P.1071.
- Read P. E., Yang G., Auko C. O. Effectiveness of thidiazuron and CPPU as cytokinin-like compounds. In Vitro. 1992. V. 28 (2). P. 57.
- Rout G. R., Debata B. K., Das P. In vitro regeneration of shoots from callus cultures of Rosa hybrida L. cv. Landora. // Indian Journal of Experimental Biology. 1992. N. 30 P. 15−18.
- Rubluo A., Kartha K. K., Mroginski L. A., Dyck J. Plant regeneration from plant pea leaflets cultured In vitro and genetic stability of regenerants. // Plant Physiology 1984. V. 117. P. l 19−130.
- Rubos A. C., Pryke J. A. Morphogenesis in embryonic tissue cultures of apple. // Horticular Science., 1984 N.59. P.469−475.
- Salomon F., Deblaere R., Leemans J., Hernalsteens J. P., Van Montagu M., Schell J. Genetic identification of functions of Tr-DNA transcripts in octopine crown galls. // EMBO 1984.V. 3. P.141.
- Schuerman P.L., Dandekar A. M. Transformation of temperate woodycrops: progress and potentials. // Scientia Horticulturae. 1993. V. 55 P. 101−124.
- Scott R. J., Draper J. Transformation of carrot tissues derived from proembryogenie suspension cells: A useful model system for gene expression snudies in plats. // Plant. Mol. Biol. 1987. V.8. P.265−274.
- Sheikholeslam S.N., Weeks D.P., Acetosyrengone promotes high efficiency transformation of Arabidopsis thaliana explants by Agrobacterium tumefaciens. II Plant. Mol. Biol. 1987. V.8. P.291−298-
- Skirvin R. M. Natural and induced variation in tissue culture. // Euphytica. 1987. V. 27. P. 66−241
- Skirvin R.M. Natural and induced variation in tissue culture. // Euphytica.- 1978.- V.27.- P. 241−66.
- Sorvari S., Ulvinen S., Hietaranta T., Hiirsalmi H. Preculture medium promotes direct shoot regeneration from micropropagated strawberry leaf disks. // Horticular Science. 1993 N.28(1). P. 55−57.
- Spencer P. A., Towers G. H. N. Specificity of signal compounds detected by Agrobacterium tumefaciens. // Phytochemistry. 1988. N. 27. P. 2933−2937.
- Sriskandarajah S., Goodwin P. B., Speirs J. Genetic transformation of the apple scion cultivar «Delicious» via Agrobacterium tumefaciens II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1994. V.36. P.317−329.
- Stachel S. E., Messens E., Van Montagu M., Zambryski P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens. II Nature. 1985 N.318 P.624−629.
- Stachel S. E., Zambrysky P. C. Vir A and VirG controlthe plant-induced activation of the T-DNA transfer process of A. tumefaciens. II Cell. 1986. V. 46. P. 325−333.
- Sunderland N. Nuclear cytology. In Plant Tissue and Cell Culture, ed. H. E. Street, 1977.- P. 177−205. London: Blackwell Scientific Publications.
- Swartz H. J., McNicols R., Hyman B. The use of Agrobacterium as a genetic vector in Rubus. // Annu Rep Scottish Crop Rep Inst 1987 V. 7. P. 85−86.
- Swartz H. J., Bors R., Mohamed F., Naess K. The effect of in vitro pretreatments on subsequent shoot organogenesis from excised Rubus and Malus leaves. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1990. N. 21. P. 179 184.
- Swartz H.J., Galetta G.J., Zimmerman R.H. Field performance and phenotypic stability of tissue culture-propagated strawberries. // Am. Hor-ticular Science. 1981.-V. 106.-P. 667−675.
- Taryono, Zoglauer K., Thiel J. Stable stage-specific expression of the
- Tepfer D. Transformation of several species of higher plants by Agrobacterium rhizogenes: Sexual transmission of the genotype and phenotype. // Cell. 1984. V. 37. P. 959−967.
- Theiler-Hedtrich C. & Theiler-Hedtrich R. Influence of TDZ and BA on adventitious shoot regeneration from apple leaves. // Acta- Horticulturae. 1990. N 280. P. 195−199.
- Tinland B. The integration of T-DNA into plant genomes. // Trend in plant science. 1996. V.l. P. 178−184.
- Trifonova A., Madsen S., Olesen A. Agrobacterium- mediated transgene delivery and integration into barley under a range of in vitro culture conditions. //Plant science. 2001. V.161. P. 871−880.
- Turk B. A., Swartz H.J. & Zimmerman R. H. Adventitious shoot regeneration in vitro-cultured leaves of Rubus genotypes. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1994. N. 38 P. 11−17.
- Van Nieuwkerk J. P., Zimmerman R. H., Fordham I. Thidiazuron stimulation of apple shoot proliferation in vitro. II Horticular Science. 1986. N. 21. P. 516−518.
- Vansil V. Vasil I. K. The ontogeny of somatic embryos of Pennisetum americanum (L.) K. Schum. L. in cultured immature embryos. // Bot. Gaz. 1982. V. 143. P. 454−456.
- Von Arnold S. & Eriksson T. Induction of adventitious buds on embryos of Norway spruce grown in vitro. // Physiologia Plantarum.- 1978.-V. 44.- P. 283−7.
- Wabiko H., Minemura M. Exogenous phytohormone-independent growth and regeneration of tobacco plants transgenic for the 6b gene of
- Agrobacterium tumefaciens AKE10. // Plant Physiology 1996. V. 112. p.939−951.
- Wang D., Wergin W. P., Zimmerman R- H. Somatic embryo genesis and plant regeneration from immature embryos of strawberry. // Horticular Science. 1984. N. 19P.71−72.
- Wang K., Herrera-Estrella L., Van Montagu M, Zambryski P. Right 25 bp terminus sequence the nopaline T-DNA is essential for and determines direction of DNA transfer from Agrobacterium to the plant genom. // Cell. 1984. V.38.P.455.
- Welander M In vitro of culture of raspberry (R. ideus) for mass propagation // Horticular Science.- 1985.- V. 60, N 4.- P. 493−499.
- Welander M. In vitro culture of raspberry (Rubus ideaus) for mass propagation. // Horticular Science. 1985. N. 60 (4). P. 493−499.
- Welander M. Plant regeneration from leaf and stem segments of shoots raised in vitro from mature apple trees // Plant Physiology 1988. V 132. P. 738−744.
- Welander M., Maheswaran G. Shoot regeneration from leaf explants of dwarfing apple rootstocks. // Plant Physiology. 1992 N.140 P.8−223.
- Willmitzer L., Beukeller M. de, Lemmers M. et al. DNA from Ti-plasmid is present in the nucleus snd absens from the plastids of crown gall plant cells. // Nature. 1980 V. 287. P. 359−361.
- Winans S. C. Two-way chemical signaling in Agrobacterium-plant interactions 11 Microbiol. Rev. 1992. V.56. P. 12−31.
- Winans S. C., Kerstetter R. A., Nester E. W., Transcriptional regulation of the vir A and vir G genes of Agrobacterium tumefaciens // Bacterid. 1988. V. 170. N. 9. P. 4047−4054.
- Wooi K. C., Wong C. H. Y., Corley R. H. V. Genetic stability of oil palm callus cultures. In: A. Fujiwara (d). Plant tissue culture. The Japanese Association for Plant Tissue Culture. 1982. Tokyo. P. 794−750.
- Yao J.-L., Cohen D., Atkinson R. et al. Regeneration of transgenic plants from the commercial apple cultivar Royal Gala // Plant Cell Reports. 1995. V. 14 № 7 P.402−412.
- Zieg R. G., Outka D. A. The isolation, culture and callus formation of soybean pod protoplasts. // Plant Sciens Lett. 1980. V. 18. P. 105.
- Zhou J. Y., Guo F. X., Luo X. T. Effect of Thidiazuron on somatic embryogenesis of Cayratia japonica. II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1994. N. 36 P. 73−79.
- Zhu L. H., Welander M. Adventitious shoot regeneration of two dwarfing peat rootstocks and the development of a transformation protocol. // Journal of Horticultural Science & Biotechnology. 2000 N.75 6 P. 745 752.
- Zong R. L., Sanford J. C. Plant regeneration by organogenesis from strawberry leaf and runner tissue. // Horticular Science. 1988. N.23(6) P. 1057−1059.
- Cheveau E., Leblay C. The effect of mother plant pretreatment and explant choice on regeneration from in vitro pear leaves. // Acta Horticul-turae. 1993. V. 336. P. 6−263.
- Chilton M. D., Drummond M. H., Merlo D. J. et al Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: The molecular basis of crown gall tumorgenesis. // Cell. 1977. V. 11 P. 263−271.
- Uematsu C., Murase M., Ichikawa H., Imamura J. Agrobacterium-mediated transformation and regeneration of kiwi fruit. I I Plant Cell Rep., 1991 V. 10. P. 286−290.
- Uratsu S. L., Ahmadi H., Bringhurst R. S., Dandekar A. M., Relative virulence of Agrobacterium strains on strawberry (Fragaria vasca). // Horticular Science. 1990. V. 26. P. 196−199.