Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Роль ПЦР-диагностики в проблеме верификации диагноза краснухи

Диссертация: Роль ПЦР-диагностики в проблеме верификации диагноза краснухи
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В периоде разгара заболевания и периоде ранней реконвалесценции присутствие низкоавидных антител класса IgG могут в совокупности с другими маркерами использоваться для верификации диагноза краснухи, особенно в случае парадоксально рано появившихся антител класса Ig G и/или длительной персистенции антител класса lg М. Специфические антитела к вирусу краснухи класса Ig М и IgG в сыворотке крови… Читать ещё >

Роль ПЦР-диагностики в проблеме верификации диагноза краснухи (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Актуальность темы
  • Цель исследования
  • Научная новизна
  • Практическая значимость
  • Апробация работы и внедрение в практику
  • Часть I. Обзор литературы
  • Глава 1. Современные представления о эпидемиологии, этиологии и патогенезе краснухи
    • 1. 1. Современное представление об этиологии и патогенезе краснухи
    • 1. 2. Эпидемиологические особенности краснухи
  • Глава 2. Клиническая и лабораторная диагностика различных форм краснухи
    • 2. 1. Клинические проявления краснухи
    • 2. 2. Возможные осложнения, прогноз и иммунопатогенез краснухи
  • Глава 3. Клинико-лабораторная диагностика краснухи на различных этапах заболевания
  • Часть И. Собственные наблюдения
  • Глава 1. Материалы и методы исследования
    • 1. 1. Объем исследования
    • 1. 2. Специальные методы исследования
      • 1. 2. 1. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
      • 1. 2. 2. Методы ИФА для определения специфических антител классовМ и к антигену вируса краснухи
      • 1. 2. 3. Метод ИФА диагностики для определения авидности антител класса к антигенам вируса краснухи в сыворотке и плазме крови человека
  • Глава 2. Клинико-лабораторная характеристика больных
    • 2. 1. Общая характеристика обследованных больных I группы с направительным диагнозом краснуха
    • 2. 2. Клинико-лабораторная характеристика больных I группы с направительным диагнозом краснуха в период разгара заболевания
    • 2. 3. Общая характеристика обследованных больных II группы с различными направительными диагнозами
    • 2. 4. Клинико-лабораторная характеристика обследованных больных II группы с различными направительными диагнозами в период разгара заболевания

    2.5. Сравнение результатов молекулярно — генетических методов (ПЦР) исследования направленных на выявление РНК Rubella virus в различном клиническом материале (плазма, лейкоциты периферической крови, слюна, мазки из носо- и ротоглотки) и данных серологических исследований вирусоспецифических антител классов IgM и IgG 87 (100%) больных.

    Глава 3. Анализ результатов молекулярно-генетического исследования методом ПЦР с данными обследования на специфические серологические маркеры у 76 больных краснухой в различные фазы инфекционного процесса.

    3.1. Общая клинико — лабораторная характеристика 76 больных с подтвержденным в результате комплексных исследований диагнозом краснухи.

    3. 2. Анализ результатов молекулярно-генетического исследования методом ПЦР и данных специфического серологического обследования на вирусоспецифические антитела классов IgM и IgG у 76 больных с подтвержденным диагнозом краснухи.

    3.3. Роль молекулярно-генетического метода (ПЦР) в дифференциальной диагностике экзантемных инфекционных заболеваний.

ВЫВОДЫ:

1. Методом ПЦР установлена персистенция РНК вируса краснухи в различных биологических средах (плазма, клетки крови (лейкоциты), слюна, мазки из носоглотки и ротоглотки).

2. РНК вируса краснухи выявлялось в различных биологических средах в зависимости от дня появления сыпи, с 1 до 10 дня.

3. Наиболее раннее и продолжительное выявление РНК вируса краснухи наблюдалось в, слюне пациентов (до 10 дня после появления сыпи), в то время как в плазме и клетках крови — только до 6 дня после появления сыпи.

4. Молекулярно-генетическое исследование (ПЦР) является основным методом для верификации диагноза краснухи в ранние сроки у диагностически неясных больных, учитывая полиморфизм клинических проявлений краснухи.

5. Специфические антитела к вирусу краснухи класса Ig М и IgG в сыворотке крови выявлялись начиная со 2 дня от появления сыпи на низком уровне, и в дальнейшем прослеживалась тенденция к нарастанию титра данных антител, достигая максимума к 5−6 суткам после появления сыпи.

6. В периоде разгара заболевания и периоде ранней реконвалесценции присутствие низкоавидных антител класса IgG могут в совокупности с другими маркерами использоваться для верификации диагноза краснухи, особенно в случае парадоксально рано появившихся антител класса Ig G и/или длительной персистенции антител класса lg М.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

В диагностически неясных случаях у больных с симптомами краснухи целесообразно применять метод молекулярно-генетического исследования (ПЦР), который позволяет в короткие сроки при однократном исследовании подтвердить диагноз краснухи, особенно в случае проведения дифференциально-диагностического поиска. В раннем периоде заболевания краснухой можно использовать информативный и неинвазивный метод лабораторной диагностики — исследование слюны на наличие РНК Rubella virus вместо серологических методов исследования. Для уточнения давности заболевания в случае дифференциально-диагностически неясных случаев можно рекомендовать определение авидности антител класса IgG к антигенам R. virus, что позволяет дифференцировать первичную инфекцию от перенесенной.

1. Анджапаридзе О. Г., Червонский Г. И. Краснуха.-М.:Медицина, 1975.

2. Билибин А. Ф. Семиотика и диагностика инфекционных болезней. -М.:Медгиз, 1950.-С.275.

3. Брико Н. И., Лыткина И. Н., Миронова В. Ф. и др. Проблема и перспективы профилактики краснухи, кори и паротита в Москве.// Лечащий врач. -2000. -№ 10. С.3−9.

4. Букринская А. Г. Вирусология. М.: Медицина, 1986. — С.336.

5. Воробьев A.A., Быков A.C., Пашков Е. П. и др. Микробиология: Учебник для вузов. М.: Медицина, 1998. С. 261−262.

6. Гайдамович С .Я., Ткаченко A.B., Ларичев В. Ф. и др. Показатели гуморального иммунитета к вирусу краснухи у жителей Москвы в 1998;1999. // Иммунология.-С.26−29.

7. Десятскова Р. Г. Вакцинопрофилактика краснухи // Вакцинация: Информ. бюллетень. ноябрь-декабрь.- 2004.

8. Десятскова Р. Г., Заргарьянц А. И., Степанов A.B., Зверев В. В. Авидность иммуноглобулина G к вирусу краснухи при поствакцинальном и постинфекционном иммунитете // Микробиология, эпидемиология и иммунобиология. 2007. — № 4. — С.6−11.

9. Десятскова Р. Г., Мальцева H.H. Сероэпидемиологический надзор за постнатальной и врожденной краснухой // Биопрепараты. — 2001.-№ 2. С.2−5.

10. Ю. Жданов В. М., Гайдамович С. Я., Логинова Н. В. Общая и частная вирусология: Т.2. М.: Медицина, 1982. — С.518.

11. Заргарьянц А. И., Селезнёва Т. С., Титова Н. С. и др. Актуальность вакцинопрофилактики краснухи // Эпидемиология и инфекционные болезни. -2002. -№ 3.-С. 16−20.

12. Зверев В. В. Средства профилактики краснухи и их экономический эффект//Вакцинация: Информ. бюллетень.-1999.-№ 1 (январь февраль).-С.9.

13. Зверев В. В., Десятскова Р. Г. Врожденная краснуха. // Вакцинация: Информ. бюллетень. 2004. № 6.

14. Коротяев А. И., Бабичев С. А. Медицинская микробиология, иммунология и вирусология: Учебник для медицинских вузов.- СПб: Специальная литература, 2008.

15. П. Кузнецова Э. А., Гнетецкая В. А., Шипулина О. Ю. и др. Иммунологические и молекулярно-биологические методы диагностики краснухи у беременных женщин, плодов и новорожденных //Акушерство и гинекология. 2007. — № 4. — С.37−40.

16. Лисукова Т. Е., Чекалина К. И. Краснуха и её профилактика // Клиническая медицина. -2000. № 2. С. 11−13.

17. Лаврентьева И. Н., Семериков В. В., Жебрун А. Б. Краснуха в России: изменчивость возбудителя в период вакцинопрофилактики инфекции// Микробиология.- № 3.-С.26−31.

18. Малкова Е. М., Петрова И. Д., Смердова М. А. и др. Клинико-иммунологическая характеристика краснухи в западно-сибирском регионе// Микробиология.- 2007. № 2. — С.44−48.

19. Носов С. Д. Инфекционные болезни у детей. -М.: Медицина, 1966. 22.0нищенко Г. Г. В рамках национального проекта «Здоровье"//.

20. Пиксасова О. В., Гнетецкая В. А., Домоиова Э. А. и др. Молекулярная диагностика парвовируса В19 у беременных: Сб. трудов 6-й Всероссийской научно-практической: конференции с международным участием: Т. 3. М., 2007.-С. 339−343.

21. Покровский В. И., Пак С. Г., Бри ко H.H. и др. Инфекционные болезни и эпидемиология: Учебник для вузов. Mi: Геотар-мед, 2004. С. 813.

22. Поляков В. Е., Смирнова Т. Н., Казакова С. И. и др. Краснушная инфекция в современных условиях //Эпидемиология и инфекционные болезни. 2004; - № 1. — С.59−6 Г.

23. Поляков В. Е., Смирнова Т. Н., Казакова С. И. и др. Современная диагностика' и! специфическая профилактика' краснухи// Эпидемиология и инфекционные болезни. 2004. — № 5. — С.62−64.

24. Семенов В-М., Астапов A.A., Дмитраченко Т. И. Краснушная инфекция.-Минск.:Оракул, 1994. С.26т 107.

25. Смердова М. А., Гришаев М. П. Краснуха и её диагностика//Новости Вектор-Бест. 2002: — № 1(23).

26. Скрипченко Е. Ю., Тимченко В. Н., Гузева В. И. Краснушная инфекция в системе «Мать-плод-ребенок». // Детские инфекции. 2009. — № 4. С.58−63.

27. Таточенко В. К. Политика ВОЗ в отношении вакцинации против краснухи //Вакцинация: Информ. бюл-нь. 1999. — № 1.

28. Тюников Г. И., Петров B.C., МалковаЕ.М. Клинические особенности и иммунный ответ при краснушной инфекции в условиях крупного промышленного города// Эпидемиология и инфекционные болезни. — 2007. -№ 4. С.27−30.

29. Учайкин В. Ф., Деконенко Е. П., Мартыненко И. Н. Патогенез краснушного энцефалита у детей // Эпидемиология и инфекционные болезни.- 2001, № 2. — С.28−30.

30. Фисенко Ю. Ю., Фисенко В. А., Тихонова Н. Т. Краснуха: клинико-иммунологический аспект // Педиатрия. 2000 г. — № 6. — С.91−94.

31. Шувалова Е. П. Инфекционные болезни. М.: Медицина, 1995.

32. Шувалова Е. П., Змушко Е. И. синдромальная диагностика инфекционных заболеваний. СПб.: Питер, 2001. С. 312.

33. Ющук Н. Д., Венгеров Ю. Я. Лекции по инфекционным болезням: В 2-х т. М., 1999.

34. Юминова Н. В. Диагностика краснухи в Российской Федерации// Вакцинация: Информ. бюллетень. -2004, — № ноябрь декабрь.

35. Элиминация кори и краснухи и предупреждение врожденной краснушной инфекции: Стратегический план Европейского региона ВОЗ 2005;2010 гг. Копенгаген, 2005; 31.

36. Руководство ВОЗ по лабораторной диагностике кори и краснухи. Вторая редакция. Женева, 2007. С. 115.

37. Extract of Regional Committee document of Health 21. EUR/RC 48/10 (extract) 5 November 1998.

38. Abemathy E., Cabezas C. Confirmation of rubella within 4 days of rash onset: comparison of rubella virus RNA detection in oral fluid with immunoglobulin M detection in serum or oral fluid // J. Clin. Microbiol. 2009.-N47(1). — P. 182−188.

39. Akingbade D., Cohen B.J., Brown D.W. Detection of low-avidity immunoglobulin G in oral fluid samples: new approach for rubella diagnosis and surveillance // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003. — N10(1). — P.189−190.

40. Alonso A., Distefano A., Carlino O. et al. Exanthematous outbreak caused by human parvovirus В19 in a school in Banderalo, Argentina.// Rev. Argent. Microbiol. -2003. № 35(3). P.171−174.

41. Andrade J.Q., Bunduki V., Curti S.P. et al. Rubella in pregnancy: intrauterine transmission and perinatal outcome during a Brazilian epidemic // J. Clin. Virol. -2006. № 35(3).- P.285−291.

42. Banatvala J.E., Brown D.W. Rubella //Lancet. 2004. — V.363 (9415). -P.1127−1137.

43. Bosma T.J., Corbett K.M., Eckstein M.B. et al. Use of PCR for prenatal and postnatal diagnosis of congenital rubella // J. Clin. Microbiol. 1995. -N33(11).-P.2881−2887.

44. Bosma T.J., Corbett K.M., O’Shea S. et al. PCR for detection of rubella virus RNA in clinical samples//J.Clin. Microbiol-1995. N33(5). — P. 1075−1079.

45. Cooray S., Warrener L., Jin L. Improved RT-PCR for diagnosis and epidemiological surveillance of rubella.// J. Clin. Virol. 2006. -№.35. P.73−80.

46. Date M., Gondoh M., Kato S. et al. A case of rubella encephalitis: rubella virus genome was detected in the cerebrospinal fluid by polymerase chain reaction // No To Hattatsu. 1995. N27(4). — P.286−290.

47. Denne C., Kleines M., Dieckhofer A. et al. Intrathecal synthesis of antiviral antibodies in pediatric patients // Eur. J. Paediatr. Neurol. 2007, — № 11(1).-P.29−34.

48. Eggerding F.A., Peters J., Lee R.K. Detection of rubella virus gene sequences by enzymatic amplification and direct sequencing of amplified DNA// J. Clin. Microbiol.- 1991. № 29(5).- P.945−952.

49. Eichler R., Prostko J., Fischer C. et al. Evaluation of the new ARCHITECT Rubella IgM assay. //J. Clin. Virol. 2007. № 39(3). -P. 182−187.

50. Hamkar R., Jalilvand S., Abdolbaghi M.H. et al. Distinguishing between primary infection and reinfection with rubella vaccine virus by IgG avidity assay in pregnant women // East Mediterr. Health J. 2009. — N15(1). — P.94−103.

51. Hamkar R., Jalilvand S., Mokhtari-Azad T. et al. Assessment of IgM enzyme immunoassay and IgG avidity assay for distinguishing between primary and secondary immune response to rubella vaccine // J. Virol. Methods. 2005. -N130(1−2). P.59−65.

52. Hamkar R., Jalilvand S., Mokhtari-Azad T. et al. Evaluation of immunity against rubella in Iranian after mass campaign for measles-rubella vaccination on December 2003//Am. J. Infect.Control.-2006.-N34(9). -P.588−592.

53. Hofmann J., Kortung M., Pustowoit B. Persistent fetal rubella vaccine virus infection following inadvertent vaccination during early pregnancy //J. Med. Virol. 2000. — N61(1). — P.155−158.

54. Hofmann J., Liebert U.G. Significance of avidity and immunoblot analysis for rubella IgM-positive serum samples in pregnant women. // J, Virol. Methods.- 2005. № 130(1−2). -P. 66−71.

55. Ho-Terry L., Terry G.M., Londesborough P. Diagnosis of foetal rubella virus infection by polymerase chain reaction.// J. Gen. Virol. -1990. № 71(Pt 7).-P.1607−1611.

56. Jin L., Thomas B. Application of molecular and serological assays to case based investigations of rubella and congenital rubella syndrome // J. Med. Virol. -2007. N79(7). — P.1017−1024.

57. Jin L., Vyse A., Brown D. W. G. The role of RT-PCR assay of oral fluid for diagnosis and surveillance of measles, mumps and rubella// Bulletin of the World Health Organization 2002. № 80(1). -P. 76−77.

58. Katow S. Rubella virus genome diagnosis during pregnancy and mechanism of congenital rubella// Intervirology.- 1998. № 41(4−5). P.163−169.

59. Kaneko M., Sameshima H., Ikenoue T. et al. Rubella outbreak on Tokunoshima Island in 2004: serological and epidemiological analysis of pregnant women with rubella //J. Obstet. Gynaecol. Res. 2006. — N32(5). — P.461−467.

60. Karapanagiotidis T., Riddell. M., Kelly H. Detection of rubella immunoglobulin M from dried venous blood spots using a commercial enzyme immunoassay //Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2005. № 53(2).- P. 107−111.

61. Korhonen M.H., Brunstein J., Haario H. et al. new method with general diagnostic utility for the calculation of immunoglobulin G avidity.// Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1999.№ 6(5).- P.725−728.

62. Labouret N., Cecille A., Wendling M.J. et al. Prenatal diagnosis of viral infections. A two year study in Strasbourg.// Pathol. Biol. (Paris).- 1999. -№ 47(5).- P.526−530.

63. Mace M., Cointe D., Six C. et al. Assessment of the diagnostic value of RT-PCR on amniotic fluid for prenatal diagnosis of congenital rubella infection // Pathol. Biol. (Paris).- 2004.-N52(9). -P.540−543.

64. Boyd A.S. Laboratory testing in patients with morbilliform viral eruptions.//Dermatol. Clin. 1994. № 12(1). -P. 69−82.

65. Marret H., Golfier F., Di Maio M. et al. Rubella in pregnancy. Management and prevention// Presse Med. 1999. № 28(38).- P.2117−2122.

66. Medici M.C., Martinelli M., Albonetti V. et al. Evaluation of rubella virus immunoglobulin G (IgG) and IgM assays with the new Vidia instrument// J. Clin. Microbiol. 2008. — № 46(5). — P. 1847−1849.

67. Mosquera Mdel M., de Ory F., Moreno M. et al. Simultaneous detection of measles virus, rubella virus, and parvovirus B19 by using multiplex PCR // J. Clin. Microbiol. -2002. N40(1). — P. l 11−116.

68. Mosquera Mdel M., Sanz J.C., Echevarria J.E. et al. Diagnostic performance of specific IgM detection and genomic amplification in rubella // Enferm Infecc Microbiol. Clin.- 2006. N24(4). — P.251−253.

69. Mubareka S., Richards H., Gray M. et al. Evaluation of commercial rubella immunoglobulin G avidity assays // J. Clin. Microbiol. 2007. — N45(1). -P.231−233.

70. Murphy J., Bustin S.A. Reliability of real-time reverse-transcription PCR in clinical diagnostics: gold standard or substandard? // Expert Rev. Mol. Diagn. -2009.-N9(2).-P. 187−97.

71. Nakayama T. Laboratory diagnosis of measles and rubella infection.// Vaccine. 2009. — № 27(24). — P. 3228−9.

72. Nedeljkovic J., Jovanovic Т., Oker-Blom C. Maturation of IgG avidity to individual rubella virus structural proteins // J. Clin. Virol. 2001. — N22(1). -P.47−54.

73. Patou G., Ayliffe U. Evaluation of commercial enzyme linked immunosorbent assay for detection of B19 parvovirus IgM and IgG // J. Clin. Pathol. 1991. — N44(10). — P.831−834.

74. Plotkin S.A., Oreinstein W.A. (пер. с англ. Логинова А.В.) Вакцинация против краснухи, опыт применения // Вакцинация: Информ. бюллетень. -1999. № 1 (январь-февраль).

75. Pu X., Zhang D. Development and clinical trial of fluorescence real time PCR to detect rubella virus // Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi. -2007. -№ 24(6).-P. 1352−1356.

76. Rajasundari T.A., Chandrasekar K., Vijayalakshmi P. Immune status of health care personnel & post vaccination analysis of immunity against rubella in an eye hospital.// Indian J. Med. Res. 2006. -N124(5). — C.553−8.

77. Reef S.E., Frey T.K., Theall K. et al. The changing epidemiology of rubella in the 1990s: on the verge of elimination and new challenges for control and prevention // J.A.M.A. 2002. — N 287(4). — P.464−472.

78. Revello M.G., Sarasini A., Baldanti F. et al. Use of reverse-transcription polymerase chain reaction for detection of rubella virus RNA in cell cultures inoculated with clinical samples // New Microbiol. 1997. — N20(3). -P. 197−206.

79. Revello M.G., Baldanti F., Sarasini A. et al. Prenatal diagnosis of rubella virus infection by direct detection and semiquantitation of viral RNA in clinical samples by reverse transcription-PCR//J.Clin.Microbiol.-1997.-N35(3).-P.708−713.

80. Ruokonen P.C., Metzner S., Ucer A. et al. Intraocular antibody synthesis against rubella virus and other microorganisms in Fuchs' heterochromic cyclitis.//Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 2010. № 248(4).-P.565−571.

81. Sanz J.C., Mosquera M., Ramos B. et al. Assessment of RNA amplification by multiplex RT-PCR and IgM detection by indirect and capture ELISAs for the diagnosis of measles and rubella // APMIS. -2010. № 118(3).-P.203−209.

82. Seno A., Tada J., Matsuura H. et al. Congenital rubella syndrome with rubella virus-associated generalized brownish macules, indurated erythemas, papules, and pigmentation// J. Dermatol. 1994.-№ 21(5). — P. 323−328.

83. Segondy M., Boulot P. RT-PCR in the prenatal diagnosis of rubella. Report of 2 cases// J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. (Paris). 1998. -№ 27(7). -P.708−713.

84. Schalk J.A., de Vries C.G., Jongen P.M. Potency estimation of measles, mumps and rubella trivalent vaccines with quantitative PCR infectivity assay.//Biologicals. -2005. № 33(2).- C.71−79.

85. Shyamala G., Malathi J., Moses Y.S. et al. Nested reverse transcription polymerase chain reaction for the detection of rubella virus in clinical specimens// Indian J. Med. Res. -. 2007. -№ 125(1). P.73−78.

86. Tanemura M., Suzumori K., Yagami Y. et al. Diagnosis of fetal rubella infection with reverse transcription and nested polymerase chain reaction: a study of 34 cases diagnosed in fetuses // Am. J. Obstet. Gynecol. 1996. N174(2). — P.578−582.

87. Thant K.Z., Myint T.T., Shwe T.N. et al. Active surveillance for congenital rubella syndrome in Yangon, Myanmar.// Bull. World Health Organ. -2006.-№ 84(1).-P.12−20.

88. Thomas H.I., Barrett E., Hesketh L.M. et al. Simultaneous IgM reactivity by EIA against more than one virus in measles, parvovirus B19 and rubella infection // J. Clin. Virol. 1999. — N14(2). — P.107−118.

89. Thomas H.I., Aird H.C. Maintenance of high-avidity rubella-specific IgG antibody and titres in recent HIV seroconvertors and in patients progressing to the AIDS-related complex and AIDS// J. Med. Virol.-1999. № 58(3). P.273−279.

90. Ushida M., Katow S., Furukawa S. Congenital rubella syndrome due to infection after maternal antibody conversion with vaccine// Jpn. J. Infect. Dis.-2003.-№ 56(2).-P. 68−69.

91. Vauloup-Fellous C., Ursulet-Diser J., Grangeot-Keros L. Development of a rapid and convenient method for determination of rubella virusspecific immunoglobulin G avidity // Clin. Vaccine Immunol.-2007.-Nl4(11).-P.1416−1419.

92. Vauloup-Fellous C., Grangeot-Keros L, Humoral immune response after primary rubella vims infection and after vaccination // Clin. Vaccine Immunol. 2007. — N14(5). — P.644−647.

93. Vyse A J, Jin L. An RT-PCR assay using oral fluid samples to detect rubella virus genome for epidemiological* surveillance // Mol. Cell’Probes. 2002,-N16(2).-P. 93−97.

94. Wilson K.M., Di Camillo C., Doughty L. et al. Humoral immune response to primary rubella virus infection // Clin. Vaccine Immunol. 2006. -N13(3). — P.380−386.

95. Xue Y.L., Wang Z.Y., Wang X.F. Molecular epidemiological study on rubella virus// Zhonghua Shi Yan He Lin Chuang Bing Du Xue Za Zhi.- 2004. -№ 18(4). P.337−340.

96. Yu’B.B., Feng Y., Xu C.P. Simultaneous detection of measles and rubella virus by multiplex real-time RT-PCR with an internal control// Bing Du Xue Bao. -2010. № 26(2).- P. 109−114.

97. Zhao L.H., Ma Y.Y., Wang H. et al. Establishment and application of a TaqMan real-time quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction assay for rubella virus RNA // Acta Biochim. Biophys. Sin (Shanghai). 2006.-, N38(10). -P.731−736.

98. Zhao L., Ma Y., Zhao S. et al. Armored RNA as positive control and standard for quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction assay for rubella virus.// Arch. Virol.-2007.-№ 152(1).-C.219−24.

99. Zheng F., Du J., Hu Y. A study of rubella virus infection during pregnancy.// Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi.- 2002.-№ 37(7). P.391−394.

100. Zhu Z., Xu W., Abernathy E.S. et al. Comparison of four methods using throat swabs to confirm rubella virus infection// J. Clin. Microbiol. -2007.-№ 45(9).-P .2847−2852.

Показать весь текст
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!