Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Популяционная структура и принципы охраны можжевельника казацкого (Juniperus sabina L.) на Южном Урале

Диссертация: Популяционная структура и принципы охраны можжевельника казацкого (Juniperus sabina L.) на Южном Урале
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Цель и задачи исследований. Цель данной работы — исследование популяционной структуры можжевельника казацкого Juniperns sabina и разработка принципов его охраны на Южном Урале. Для ее выполнения решались следующие задачи: 1) выявить полиморфные аллозимные локусы, информативные при описании структуры популяций- 2) исследовать популяционную структуру и факторы ее формирования, поддержания… Читать ещё >

Популяционная структура и принципы охраны можжевельника казацкого (Juniperus sabina L.) на Южном Урале (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ПРОБЛЕМЫ ИЗУЧЕНИЯ И СОХРАНЕНИЯ РЕСУРСОВ 8 РАСТЕНИЙ НА ПОПУЛЯЦИОННОЙ ОСНОВЕ
    • 1. 1. Состояние проблемы сохранения растительных ресурсов
    • 1. 2. Молекулярные маркеры в решении проблем сохранения 12 генофонда растений
    • 1. 3. Молекулярные маркеры в изучении можжевельников
  • ГЛАВА 2. РЕГИОН, ОБЪЕКТ, МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДИКА 30 ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Характеристика района исследований
    • 2. 2. Объекты исследований
    • 2. 3. Материал и методы исследований
  • ГЛАВА 3. ПОПУЛЯЦИОННАЯ СТРУКТУРА JUNIPERUS 61 SABINA L. НА ЮЖНОМ УРАЛЕ
  • ГЛАВА 4. ПРИНЦИПЫ СОХРАНЕНИЯ РЕСУРСОВ JUNIPERUS 77 SABINA L. НА ЮЖНОМ УРАЛЕ
  • ВЫВОДЫ

Актуальность проблемы. Популяционный уровень является наименее разработанным в области сохранения биоразнообразия (Миркин, Наумова, 1998; Fallon, 2007) — проблемы, отнесенной в последние десятилетия в разряд глобальных (Розенберг, 1998). По этой причине актуальным является исследование факторов, определяющих формирование и поддержание популяционных структур во времени и в пространстве. Древесно-кустарниковые растения в этом отношении выделяются своей спецификой (Политов и др., 2006), что необходимо учитывать при разработке мер сохранения природных популяций методами ex situ и in situ (Мамаев и др., 1994). У каждого вида в течение многих поколений под влиянием комплекса биоэкологических и средовых факторов складывается определенная структура внутривидовой изменчивости, игнорирование чего может привести к множеству отрицательных последствий (Алтухов, 1995).

Обитающие на Южном Урале виды можжевельника, ранее практически не изученные в популяционно-экологическом отношении, являются важными компонентами чрезвычайно уязвимых природных экосистем региона и имеют огромное значение для сохранения их целостности (Мулдашев, Кучеров, 2005). Среди них особо выделяется можжевельник казацкий — реликт Южного Урала, образующий, как и другие виды можжевельников (Коропачинский, 1983), множество морфологических и экологических форм. Ранее он был включен во 2-е издание Красной книги Республики Башкортостан.

Цель и задачи исследований. Цель данной работы — исследование популяционной структуры можжевельника казацкого Juniperns sabina и разработка принципов его охраны на Южном Урале. Для ее выполнения решались следующие задачи: 1) выявить полиморфные аллозимные локусы, информативные при описании структуры популяций- 2) исследовать популяционную структуру и факторы ее формирования, поддержания и устойчивости на популяционном уровне- 3) изучить клоновый состав в местообитаниях древовидной формы- 4) разработать принципы сохранения ресурсов можжевельника казацкого на Южном Урале на популяционной основе.

Научная новизна работы. Выявлены полиморфные изоферментные системы Juniperus sabina L., J. sibirica Burgsd. и J. communis L., являющиеся информативными маркерами популяционного разнообразия данных видов. Установлено, что можжевельник казацкий в пределах Южного Урала обладает сравнительно высоким уровнем популяционного разнообразия. Его местообитания' обладают относительно невысокой межпопуляционной дифференциацией по частотам аллелей и сравнительной близостью аллельных частот в пределах исследованного региона. Популяционные структуры сформированы под влиянием состава и величины клонов, имеющихся в местообитаниях.

Практическая значимость работы. Полученные результаты могут быть использованы в качестве научного обоснования практических мер по сохранению видов можжевельника на Южном Урале, в том числе в качестве базы для разработки соответствующих нормативных документов в области охраны природы ведомствами Республики Башкортостан. Материалы диссертации используются при ведении образовательной деятельности в Сибайском институте (филиале) Башкирского государственного университета и Зауральском филиале Башкирского государственного аграрного университета по дисциплинам «Экология», «Ботаника», «Популяционная генетика», «Экологическая генетика».

Основные положения, выносимые на защиту: 1. Аллозимные маркеры являются эффективным средством при решении проблем изучения, сохранения и рационального использования растительных ресурсов видов можжевельника на Южном Урале — выявления популяционных структур, клонового разнообразия, идентификации генотипов.

2. Можжевельник казацкий на Южном Урале характеризуется относительно высоким сходством популяционных структур.

3. Уровни популяционного разнообразия и дифференциации популяций определяются в первую очередь составом клонов и долей их участия в местообитаниях.

4. Местообитания с наибольшим клоновым разнообразием представляют первоочередной интерес при выборке объектов сохранения генофонда in situ и при отборе образцов для сохранения ресурсов вида ex situ. Актуальна охрана и рациональное использование отдельных уникальных объектов, а для повышения эффективности этих работ — изучение популяционной структуры и факторов, ее формирующих.

Обоснованность выводов и достоверность результатов работы обеспечены достаточно большими объемами полевого материала и проведенных лабораторных экспериментов, использованием современных методов исследований, адекватных поставленным задачам и применением современных методов статистического анализа.

Личное участие автора. Работа выполнялась с 2005 года по 2009 г. г. в рамках плановой научно-исследовательской деятельности Сибайского филиала Академии наук Республики Башкортостан, по гранту АН РБ «Изучение генофонда можжевельника казацкого в Башкирском Зауралье и разработка мер по его сохранению» (2006;2007 г. г.). Автором лично проведены полевые и лабораторные исследования, осуществлены анализ и обобщение результатов.

Апробация работы. Основные результаты диссертации были представлены на международной научно-практической конференции «Современные проблемы природопользования, охотоведения и звероводства» (Киров, 2007), всероссийской научно-практической конференции «Проблемы и перспективы развития инновационной деятельности в агропромышленном комплексе» (Киров, 2007), международной конференции «Биоразнообразие и биоресурсы Урала и сопредельных территорий» (Оренбург, 2008), региональных конференциях «Неделя науки» (Сибай, 2005, 2006, 2007, 2008, 2009), международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы дендроэкологии и адаптации растений», посвященной 80-летию со дня рождения профессора Ю. З. Кулагина (Уфа, 2009).

Публикации. Основные результаты диссертации приведены в 10 печатных работах, в т. ч. 2 — в изданиях, рекомендованных ВАК РФ для публикации результатов диссертационных работ.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, 4 глав, выводов, списка литературы, включающего 219 наименований публикаций, в том числе 165 — зарубежных авторов. Основной текст изложен на 125 страницах, включает 10 таблиц и 22 рисунка.

100 выводы.

1. Для описания структуры популяций Juniperus sabina L. информативными маркерами являются аллозимы полиморфных локусов Gdh-1, Dia-1, Dia-2, Est-1, Fdh-1, Lap-1, Lap-2, Skdh-1 и 6Pgdh-l.

2. Популяции видов можжевельника на Южном Урале обладают высоким уровнем разнообразия аллозимных локусов. Наибольший полиморфизм (в среднем на полиморфный локус выявлены 3.4±0.4 аллелей) выявлен у Juniperus sabina L., по составу и встречаемости аллозимов он существенно отличается от Juniperus communis L. и Juniperus sibirica Burgsd.

3. Для Juniperus sabina L. характерна относительно невысокая межпопуляционная дифференциация — коэффициент межвыборочной подразделенности /^.=0.113, значения расстояния М. Нея D между парами популяций изменяются от 0.002 до 0.058. По частотам аллозимов вид существенно отличается от Juniperus communis L. (F?r=0.555, D=0.878), различия которого с Juniperus sibirica Burgsd. не выходят за пределы межпопуляционного уровня.

4. Популяционное разнообразие Juniperus sabina L. в отдельных местообитаниях испытывает большое влияние состава, встречаемости и размеров клонов. Существуют популяции с высоким генотипическим разнообразием, перспективные для охраны в природных условиях и рационального использования ресурсов растения ex situ.

5. Генофонд популяций Juniperus sabina L. на Южном Урале находится в относительно благополучном состоянии и не требуется принятия срочных мер по его охране на видовом уровне — полученные данные свидетельствуют о правомерности решения об исключении вида из последнего издания Красной книги Республики Башкортостан. Достаточным является проведение работ по выделению и охране в природных местообитаниях эталонных участков и популяций с наиболее высоким полиморфизмом в форме малых оопт.

6. Сохранение ресурсов Juniperus sabina L. необходимо в первую очередь осуществлять на популяционном уровне — в популяциях с нетипичным генофондом, а также в местообитаниях с уникальным формовым разнообразием, что отчетливо выявлено в случае с древовидным можжевельником казацким.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.

1. Муллагулова Э. Р., Редькина Н. Н., Муллагулов Р. Ю. Генетическая дифференциация разновысотных выборок можжевельника казацкого // Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Проблемы и перспективы развития инновационной деятельности в агропромышленном производстве». — Киров, 2007. — С. 216−218.

2. Муллагулова Э. Р., Байрамгулова З. Х., Редькина Н. Н. и др. О необходимости генетической инвентаризации для охраны редких и исчезающих видов растений // Вестник Башкирского университета. — 2007. № 1. — С. 45−46.

3. Муллагулова Э. Р., Редькина Н. Н., Муллагулов Р. Ю. К определению ресурсов можжевельника казацкого на хребте Ирандык // Материалы междунар. науч.-практич. конф. «Современные проблемы природопользования, охотоведения и звероводства». (Киров, 22−25 мая 2007 г.).-2007.-С. 305.

4. Муллагулова Э. Р., Муллагулов Р. Ю., Яхина Ю. Р., Тагиров И. Б. Сравнение таксономических единиц рода Juniperus L. // Научные доклады региональной конференции «Неделя науки — 2006» (г. Сибай, 3−7 апреля 2006 г.) 4.1. / Издание Сибайского института БашГУ. — Сибай, 2007. — С. 84 — 87.

5. Муллагулов Р. Ю., Редькина Н. Н., Янбаев Ю. А., Муллагулова Э. Р. Клоновый состав у можжевельника казацкого на краю ареала // Материалы международной конференции «Биоразнообразие и биоресурсы Урала и сопредельных территорий» (Оренбург, 29−31 мая 2008 г.). — Оренбург. — 2008. -С. 140−143.

6. Муллагулова Э. Р., Байрамгулова З. Х., Музафаров A.M., Редькина Н. Н., Муллагулов Р. Ю. Принципы сохранения генофонда растений и их зависимость от биоэкологических свойств видов // Известия Оренбургского аграрного университета. — 2008. — С. 160 — 162.

7. Муллагулова Э. Р., Султангареева Л. А., Муллагулов Р. Ю. Уникальная древовидная форма можжевельника казацкого на территории Кугарчинского района Башкортостана // Материалы Республиканской научно-практической конференции «Социально-экономические проблемы Уральского региона Республики Башкортостан». — Уфа: РИЦ БашГУ, — 2008. 4.1. — С. 199−201.

8. Муллагулов Р. Ю., Редькина Н. Н., Муллагулова Э. Р., Мулдашев А. А. Полиморфизм можжевельника обыкновенного в нетипичном местообитании в Башкирском Зауралье // Материалы Республиканской научно-практической конференции «Проблемы и перспективы конкурентоспособного воспроизводства в Башкирском Зауралье». — Уфа: РИЦ БашГУ, 2008. — Ч.З. — С. 119−123.

9. Муллагулов Р. Ю., Муллагулова Э. Р. Ботанические особенности естественных местообитаний видов можжевельника Juniperus L. на Южном Урале // Научные доклады региональной конференции «Неделя науки -2009» (г. Сибай, 1−10 марта 2009 г.) 4.1. / Издание Сибайского института БашГУ. — Сибай, 2009. — С. 16−18.

10. Муллагулова Э. Р., Янбаев Ю. А. Изучение генетического разнообразия древовидной формы можжевельника казацкого на западном макросклоне Южного Урала // Башкирский экологический вестник. — 2009. № 2 (21). — С. 24−25.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Агроклиматические ресурсы Башкирской АССР. Л.: Гидрометеоиздат. -1976.-235 с.
  2. Ю.П. Аллозимная гетерозиготность, скорость полового созревания и продолжительность жизни // Генетика. 1998. — Т. 34. — № 7. -С. 908−919.
  3. Ю.П. Внутривидовое генетическое разнообразие: мониторинг и принципы сохранения // Генетика. 1995. — Т. 31. — С. 1333−1357.
  4. Ю.П., Крутовский К. В., Духарев В. А. и др. Биохимическая генетика популяций лесных древесных растений // Матер, межд. симп. «Лесная генетика, селекция и физиология древесных растений» (25−30 сентября 1989, г. Воронеж) М. — 1989. — 222 с.
  5. Аши М. И. Биология, экология и фитоцитологическая роль можжевельника обыкновенного в Верхневолжье: Автореф. дисс. канд. биол. наук. -М. 1991. -13 с.
  6. Е.Г. Лесообразующие хвойные СССР. Л.: Наука. — 1978. -188с.
  7. С.В. Молекулярно-генетический анализ генофондов редких и исчезающих видов растений Пермского края: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. Уфа. — 2009. — 46 с.
  8. Н.В. Определитель растений Советского Дальнего Востока. -М.: Наука. -1982. -72 с.
  9. П.И. Сравнительная морфология, анатомия и ультраскульптура семян и шишек видов рода Juniperus L. в связи с их систематикой: Автореф. дисс. док. биол. наук. С-Пб. — 2002. — 69 с.
  10. Животовский Л. А. Популяционная биометрия.- М.: Наука. 1991.- 271с.
  11. Жизнь растений. //Под ред. Грушвицкого И. В. и Жилина С. Г. -Т.4. Голосеменные растения. -М.: Просвещение. -1978. 350 с.
  12. В. А., Молодкин В. Ю. Проблемы консервации in vitro генетических ресурсов растений // Достижения и перспективы развития криобиологии и криомедицины. Харьков, 1988. — С. 67.
  13. Н.Н. Таксономическая заметка о J. exelsa (Cupressaceae) // Ботанический журнал. 1990. — № 3. — С.402−409.
  14. А.И. Актуальные проблемы лесной генетики и селекции // Лесоведение. 1987. — № 3. — С. 3−10.
  15. А.Р., Муллагулов Р. Ю., Янтурин С. И. Растительность горного массива Иремель: синтаксономия и вопросы охраны. Уфа: Принт. -1996. — 106 с.
  16. И.П., Тайчинов С. Н. Условия почвообразования на территории Башкирии и его провинциальные черты // Почвы Башкортостана. -Уфа. 1973.-Т. 1.-С. 7−15.
  17. С.Г. Изменчивость и морфоструктура природных популяций можжевельника сибирского {Junuperus sibirica Burgsd.): Автореф. дисс. канд. биол.наук. Красноярск. — 2000. — 21 с.
  18. В.Л. Определитель растений Дальневосточного края. Л.: Изд-воАНСССР. 1934. -473 с.
  19. И.Ю. Древесные растения Сибири. -Новосибирск: Наука. -1983. -384 с.
  20. Л.И., Серов О. Л., Пудовкин А. И. и др. Генетика изоферментов. М.: Наука. -1977. — 275 с.
  21. И.И., Николаева А. В. Генетический контроль аллозимов можжевельника высокого (Juniperus exelsa Bieb.) в Крыму. Донецк. 2007.
  22. Красная книга Башкирской АССР. Редкие растения и животные. Проблемы их охраны. Уфа: Башк.книж.изд. 1987. — 212 с.
  23. Е.В., Мулдашев А. А., Галеева А. Х. Ботанические памятники природы. Уфа. -1991. 144 с.
  24. Р. Генетические основы эволюции М.: Мир, 1978. — 351 с.
  25. Э. Популяции, виды, эволюция. М.: Мир. -1974. — 460 с.
  26. С.А. Формы внутривидовой изменчивости древесных растений (на примере семейства Pinaceae). М.: Наука. — 1973. — 284 с.
  27. С.А., Семериков Л. Ф., Махнев А. К. О популяционном подходе в лесоводстве // Лесоведение. 1988. — № 1. — С. 3−9.
  28. В.Б., Соломещ А. И., Жирнова Т. В. Леса Башкирского государственного природного заповедника. Синтаксономия и природоохранная значимость. Уфа: «Гилем». 2003. — 200 с.
  29. А.К. Внутривидовая изменчивость и популяционная структура берез секции Albae и Nanae. М.: Наука. — 1987. — 128 с.
  30. Л.И. Особенности краевых популяций древесных растений // Экология популяций. М.: Наука. — 1991. — С.86−97
  31. .М., Наумова Л. Г. Наука о растительности (история и современное состояние основных концепций). Уфа: Гилем. -1998. — 413 с.
  32. Н.А., Муратова Е. Н. Кариологические исследования двух популяций Juniperus communis L. в Западной Сибири // Цитология. 2005. -Т. 47 (8). — С. 747−752.
  33. А.Х. Введение в изучение биогеоценозов Южного Урала. -Уфа. 1986.- 132 с.
  34. А.А., Кучеров С. Е. Древовидный можжевельник. Табигат. — 2005. — № 1. — С.24−25.
  35. К.Д. Арча. М.: Лесная промышленность. 1980. — 94 с.
  36. Д.В., Белоконь М. М., Белоконь Ю. С. и др. Генетика популяций кедровых сосен // Генетика в России и в мире. 2006. — 156 с.
  37. Г. В. Леса Башкирии. Уфа: Башк. кн. изд-во, 1980. — 144 с.
  38. В.П. Популяционная структура и сохранение генофонда хвойных видов на Урале: Автореф. дис. .докт. биол. наук. Красноярск. -2000. — 48 с.
  39. Л.М. Технология выращивания саженцев можжевельника казацкого методом осеннего укоренения стеблевых черенков. Методические рекомендации. Новосибирск: Сибирское отделение ВАСХНИЛ. -1982. -13 с.
  40. Л.Ф. Популяционная структура дуба черешчатого (Quercus robur L.) // Исследование форм внутривидовой измечивости растений. — М.: Наука. 1981. — С.25−51
  41. В.Л. и др. О структуре эколого-генетической изменчивости сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) и сибирской (Pinus sibirica Du Tour) в западной Сибири // Экология. 1993. — № 6. — С. 34−40.
  42. В.М. Сравнительная морфология и анатомия семян голосеменных. Сыктывкар: КНЦ УрОРАН. — 1995. — 243 с.
  43. Н.И. Aconitum L. и Delphinium L. на Южном Урале: внутривидовая структура, закономерности содержания алкалоидов, оптимизация ресурсного использования: Автореф. дис.. д-ра биол. наук. — Уфа. 2006. — 46 с.
  44. Флора СССР / Под редакцией В. Л. Комарова. 1934. -Т.З. — 239 с.
  45. А.А. Горы Иремель (Южный Урал), физико-географический очерк. Уфа, Географическое общество СССР. Башкирский филиал. — 1960. -82 с.
  46. Ю.А. эколого-популяционные аспекты адаптации лесообразующих видов к условиям природной и техногенной среды: Автореф. дис. докт. биол.наук. Тольятти: ИЭВБ РАН. — 2002. -35 с.
  47. Ю.А., Редькина Н. Н., Муллагулов Р. Ю. Аллозимная изменчивость можжевельника казацкого (Juniperus sabina L.) на Южном Урале // Хвойные бореальной зоны. 2007. — Т. 24. — № 2−3. — С. 325−330.
  48. Adams R.P. Geographic variation in leaf essential oils and RAPDs of Juniperus polycarpos K. Koch in central Asia // Biochem. Syst. Ecol. 2001. — V. 29(6).-P. 609−619.
  49. Adams R.P. Systematics of Juniperus section based on leaf essential oils and random amplified polymorphic DNAs (RAPDs) // Biochem. Syst. Ecol. 2000. -V. 28(6). — P. 515−528.
  50. Adams R.P. Systematics of Juniperus section Juniperus based on leaf essential oils and random amplified polymorphic DNAs (RAPDs) // Biochem. Syst. Ecol. 2000. — V. 28(6). — P. 515−528.
  51. Adams R.P. Systematics of the one seeded Juniperus of the eastern hemisphere based on leaf essential oils and random amplified polymorphic DNAs (RAPDs) // Biochem. Syst. Ecol. 2000. — V. 28(6). — P. 529−543.
  52. Adams R.P. The serrate leaf margined Juniperus (Section Sabina) of the western hemisphere: systematics and evolution based on leaf essential oils and Random Amplified Polymorphic DNAs (RAPDs) // Biochem. Syst. Ecol. 2000. -V. 28(10).-P. 975−989.
  53. Adams R.P., Hsieh C.-H., Murata J. et al. Systematics of Juniperus from eastern Asia based on random amplified polymorphic DNAs (RAPDs) // Biochem. Syst. Ecol. 2002. — V. 30. — C. 231−241.
  54. Alberto F., Arnaud-Haond S., Duarte C.M. et al. Genetic diversity of a clonal angiosperm near its range limit: the case of Cymodocea nodosa at the Canary Islands // Marine ecology progress series. 2006. — V. 309. — P. 117−129.
  55. Alberto F., Gouveia L., Arnaud-Haond S., et al. Within-population spatial genetic structure, neighbourhood size and clonal subrange in the seagrass Cymodocea nodosa // Mol. Ecol. 2005. — V. 14. — P. 2669−2681.
  56. Albrecht V., Barone J., Einsweiler R. C et al. Managing land as ecosystem and economy // Cambridge, Massachusetts, USA. — 1995.
  57. Alden, J., Loopstra C. Genetic diversity and population structure of Picea glauca on an altitudinal gradient in interior Alaska // Can. J. Forest Res. 1987. -V. 17. — P. l519−1526.
  58. Allendorf F.W., Knudsen K.L., Blake G.M. Frequencies of null alleles at enzyme loci in natural populations of ponderosa and red pine // Genetics. 1982.-V. 100.-P. 497−504.
  59. Allnut T.R., Newton A.C., Lara A. et al. Genetic variation in Fitzroya cupressoides (alerce), a threatened South American conifer // Mol. Ecol. 1999. -V. 8. — P. 975−987.
  60. Alvarez-Buylla E.R., Chaos A., Pinero D., Garay A.A. Demographic genetics of a pioneer tree species: patch dynamics, seed dispersal, and seed banks // Evolution. 1996. — V. 50. — P. 1155−1166.
  61. Auge H., Neuffer В., Erlinghaben F. et al. Demographic and random amplified polymorphic DNA analyses reveal high levels of genetic diversity in a clonal violet //Mol.Ecol. -2001. -V. 10. -P.1811−1819.
  62. Bartish J.V., Jeppsson N., Nybom H. Population genetic structure in the dioecious pioneer plant species Hippophae rhamnoides investigated by random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers // Mol.Ecol. -1999. -V.8. -P.- 791 802.
  63. Balloux F., Lehmann L., de Meeus T. The population genetics of clonal and partially clonal diploids. // Genetics. 2003. — V. 164. — P. 1635−1644.
  64. Berg E.E., Hamrick J.L. Fine-scale genetic structure of a turkey oak forest // Evolution. 1997. — V. 49. — P. 110−120.
  65. Bergmann A. Unterscheidung von pappelklonen mit hilfe von isoenzym-mustern // Die holzcchucht. 1981. — P.24−27.
  66. Bradshaw A.D. Ecological significance of genetic variation between populations. Sinauer, Sunderland, Mass.-1984. — P. 213−228.
  67. Brown A.H.D., Briggs J.D. Sampling strategies for genetic variation in ex situ collections of endangered plant species // Genetics and Conservation of Rare Plants. Oxford University Press, New York, USA. 1991. — P. 99−119.
  68. Bucci G., Vendramin G.G., belli L., Vicario F. Assessing the genetic divergence of Pinus lencodermis Ant. endangered populations: use of molecular markers for conservation purposes // Theor. Appl. Genet. 1997. — V. 95. — P. 1138−1146.
  69. Bush R.M., Smouse. P.E. Evidence for the adaptive significance of allozymes in forest trees // New Forests. 1992. — №. 6. — P. 179−196.
  70. Cardoso M.A., Provan J., Powell W. et al. High genetic differentiation among remnant populations of the endangered Caesalpinia echinata Lam. {Leguminoseae-Caesalpinioideae) II Mol. Ecol. 1998. — V. 7. — P. 601−608.
  71. Caujape-Castells J., Pedrola-Monfort J. Designing ex-situ conservation strategies through the assessment of neutral genetic markers: application to the endangered Androcymbium gramineum // Conservation Genetics. 2004. — V. 5. -P. 131−144.
  72. Chaisurisi К., El-Kassaby Y.A. Genetic diversity in a seed production population vs natural populations of sitka spruce // Biodiv. Conserv. 1994. — V. 3. -P. 512−523.
  73. Cheliak W.M., Murray G., Pitel J.A. Genetic effect of phenotypic selection in white spruce // Forest Ecol. Manag. 1988. — V. 24. — P. 139−149.
  74. Cheng Y.P., Chien C.T., Chen H.W. et al. Allozyme variation of Cyclobalanopsis championii (Fagaceae), a narrowly distributed species in southern Taiwan // J. Hered. 2001. — V. 92. — P. 65−70.
  75. Chowdari K.V., Kumar S., Reddy A.P. et al. Use of three different marker systems to estimate genetic diversity of Indian elite rice varieties // Genetica. -2000.-V. 108.-P. 269−284.
  76. Chung J.M., Lee B.C., Kim J.S. et al. Fine-scale genetic structure among genetic individuals of the clone-forming monotypic genus Echinosophora koreensis (.Fabaceae). И Ann Bot (Lond). 2006. — V. 98. — P. 165−173.
  77. Chung M.G., Epperson B.K. Clonal and spatial genetic structure in Eurya emarginata (Theaceae). II Heredity. 2000. — V. 84. — P. 170−177.
  78. Chung M. Y., Chung G.M., Chung M.G. et al. Spatial genetic structure in populations of Cymbidium goeringii (Orchidaceae) И Genes &Genet.Syst. -1998. -V.73. P.281−285.
  79. Chung M.Y., Suh Y., Lopez-Pujol J. et al. Clonal and fine-scale genetic structure in populations of a restricted korean endemic, Hosta jonesii (Liliaceae) and the implications for conservation // Ann. Bot. 2005. — V. 96. — P.279−288.
  80. Collevatti R.G., Grattapaglia D., Hay J.D. Population genetic structure of the endangered tropical tree species Caryocar brasiliense, based on variability at microsatellite loci //Mol. Ecol. 2001. — V. 10. — P. 349−356.
  81. Conservation of plant genes: DNA banking and plant genes (R/Е/ Adams, J.E. Adams, eds.). Academic press. — 1992. — 345 P.
  82. Cui G.H., Chen M., Huang L.Q. et al. Study on genetic diversity of natural and cultivated Cistanche tubulosa II Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2006. — V. 31. -P. 1227−1230.
  83. Dangi R.S., Lagu M.D., Choudhary L.B. et al. Assessment of genetic diversity in Trigonella foenum-graecum and Trigonella caerulea using ISSR and RAPD markers //BMC Plant Biol. 2004. — V. 30. — P. 13.
  84. Davis B.J. Disc electrophoresis. 11. Methods and application to human serum proteins // Ann. New York Acad. Sci. 1964. — V. 121. — P. 404−427.
  85. Dayanandan S., Dole J., Bawa K., Kesseli R. Population structure delineated with microsatellite markers in fragmented populations of a tropical tree, С агара guianensis (Meliaceae) И Mol. Ecol. 1999. — V. 8. — P. 1585−1592.
  86. Degen В., Scholz F. Spatial genetic differentation among populations of European beech (Fagus sylvatica L.) in Western Germany as identified by geostatistical analysis // Forest Genetic., 1998. N 5(3). — P. 191−199.
  87. Dje Y., Ater M., Lefebvre C., Vekemans X. Patterns of morphological and allozyme variation in Sorghum landraces of Northwestern Morocco // Genetic Resources and Crop Evolution. 1998. — V. 45. — P. 541−548.
  88. El-Kassaby Y.A. Associations between allozyme genotypes and quantative traits in Douglas-fir (Pseudotsuga menziesii Mirb. Franco) // Genetics. 1982. — V. 101.-P. 103−115.
  89. El-Kassaby Y.A. Repeated relation between allozyme variation and a quantative trait in Douglas-fir // Egypt. J. Genet.Cytol. 1983. — V. 12. — P. 329 344.
  90. England P.R., Usher A.V., Whelan R.J. et al. Microsatellite diversity and genetic structure of fragmented populations of the rare, fire-dependent shrub Grevillea macleayana II Mol. Ecol. 2002. — V. 11. — P. 967−977.
  91. Esselman E.J., Crawford D.J., Brauner S. et al. RAPD marker diversity within and divergence among species of Dendroseris (Asteraceae: Lactuceae) И Amer. J. Bot. 2000. — V. 87. — P. 591−596.
  92. Etisham-Ul-Haq M., Allnut Т. R., Smith-Ramirez С.С. et al. Patterns of genetic variation in in and ex situ populations of the threatened Chilean Berberidopsis corallina, detected using RAPD markers // Ann. Bot. 2001. — V. 87.-P. 813−821.
  93. Fallon S.M. Genetic Data and the Listing of Species Under the U.S. Endangered Species Act // Conservation Biology. 2007. — V. 21 (5). — P. 1186— 1195.
  94. Farwig N., Bohning-Gaese K., Bleher B. Enhanced seed dispersal of Primus africana in fragmented and disturbed forests // Oecologia. 2006. — V. 147. — P. 238−252.
  95. Frankel O.H., Brown A.H.D., Burdon J.J. The conservation of plant biodiversity // Cambridge University Press. 1995.
  96. Fu C., Qiu Y., Kong H. RAPD analysis for genetic diversity in Changium smyrnioides (Apiaceaej, an endangered plant // Bot. Bull. Acad. Sin. 2003. -V.44. — P.13−18.
  97. Ge X.J., Liu M.H., Wang W.K. et al. Population structure of wild bananas, Musa Balbisiana, in China determined by SSR fingerprinting and cpDNA PCR-RFLP //Mol. Ecol. 2005. — V. 14. — P. 933−944.
  98. Gillet E. GSED: Genetic Structures from Electrophoresis Data. Computer program and user’s manual // http://www.uni-forst.gwdg.de/forst/fg/software.htm, 1998.
  99. Govindaraju D.R., Dancik B.P. Relationship between allozyme heterozygosity and biomass production in jack pine (Pinus banksiana L.) under different environmental conditions // Heredity. 1986. — V. 57. — N.2. — P. 145−148.
  100. Gregorius H.R. The concept of genetic diversity and its formal relationship to heterozygosity and genetic distance // Math. Biosci. 1978. — V. 41. — P. 253 271.
  101. Gregorius H.-R. Genetischer Abstand zwischen Populationen. 1. Zur Konzeption der genetischen Abstandsmessung // Silvae Genetica. 1974. — V. 23. — P. 22−27.
  102. Guarino L., Jarvis A., Hijmans R.J. et al. Geographic information systems (GIS) and the conservation and use of plant genetic resources. 2002.
  103. Guries R.P., Ledig F.T. Genetic structure of populations differentiation in forest trees // Proc. of symp. on isozymes of North American forest trees and forest insects (July 27, 1979, Berkeley, Calif, gen. tech. Rep.). 1981. — P. 42−47.
  104. Hamrick J. L., Godt M.J.W. Allozyme diversity in plant species // Plant population genetics, breeding and genetic resources (Brown H.D., Clegg M.T., Kahler A.L., Weir B.S. eds.). -1989.- P.43−63.
  105. Hamrick J. L., Godt M.J.W., Sherman-Broylers S.L. Factors influencing levels of genetic diversity in woody plant species // New Forest. 1992. — № 6. — P. 95−124.
  106. Hamrick J.L. The distribution of genetic variation within and among natural plant populations // Genetics and conservation (Schonewald-Cox C.M., Thomas W.L., eds.). Benjamin, Cummings, London, UK. — 1983. — P.335−348.
  107. Hamrick, J.L. et al. Correlation between species traits and allozyme diversity: Implication for conservation biology // Genetics and conservation of rare plants (Falk, D.A. and K.E. Holsinger, eds). Oxford University Press, Oxford, UK. — 1991.-P. 75−86.
  108. Hangelbroek H.H., Ouborg N.J., Santamaria L. et al. Clonal diversity and structure within a population of pondweed Potamogeton pectinatus foraged by Bewicks Swans//Mol.Ecol. -2002. V. l 1. — P.2137−2150/
  109. Нао В., Li W., Linchun M., Li Y. et al. A study of conservation genetics in Cupressus chengiana, an endangered endemic of China, using ISSR markers // Biochem. Genet. 2006. — V. 44. — P.31−45.
  110. Hertel H., Kaetzel R. Susceptibility of Norway spruce clones (Picea abies (L.) Karst.) to insects and roe deer in relation to genotype and foliar phytochemistry // Phyton-Horn. 1999. — V. 39. — P. 65−72.
  111. Hertel H., Kohlstock N. Different genetic structures of two morphological types of Scots pine {Pinus sylvestris L.) // Silvae Genetica. 1994. — V. 43. — P. 268−271.
  112. Hertel H., Zaspel I. Investigations on vitality and genetic structure in oak stands // Ann. Sci. For. 1996. — V. 53. — P. 761−773.
  113. Hodgkin T. Managing the populations: some general considerations // Conservation. 1997.
  114. Jacquemyn H., Brys R., Honnay O. et al. Sexual reproduction, clonal diversity and genetic differentiation in distributed populations of the temperate forest herb Paris quadrifolia (Trilliaceae) II Oecologia. -2006/ V.147. -P.434−444.
  115. Jimenez J.F., Sanchez-Gomez P., Guemes J. et al. Genetic variability in a narrow endemic snapdragon {Antirrhinum subbaeticum, Scrophulariaceae) using RAPD markers // Heredity. 2002. — V. 89. — P. 387−393.
  116. Kang M., Ye Q., Huang H. Genetic consequence of restricted habitat and population decline in endangered Isoetes sinensis (.Isoetaceae) II Ann. Bot. 2005. — V. 96.-P. 1265−1274.
  117. Karvonen P., Karhu A., Hurme P. et al. Variability patterns of molecular markers and an adaptive trait in Scots pine // Somatic cell genetics and molecular genetics of trees. 1995.
  118. Kelleher C.T., Hodkinson T.R., Douglas G.C., Kelly D.L. Species distinction in Irish populations of Quercus petraea and Q. robur: morphological versus molecular analyses // Ann. Bot. 2005. — V. 96. — P. 1237−1246.
  119. Kelley W.A., Adams R.P. Analysis of isozyme variation in natural populations of Juniperus asheill Rhadora. 1978. — V. 80 (821). — P. 107−134.
  120. Kelley W.A., Adams R.P. Preparation of extracts from Juniper leaves for electrophoresis //Phytochemistry. 1977. — V. 16. — P. 513−516.
  121. Kelley W.A., Adams R.P. Seasonal variation of isozymes in Juniperus scopulorum: systematic significance // Am. J. Bot. 1978. — V. 64 (9). — P. 10 921 096.
  122. Kery M., Matthies D., Spillmann H. Reduced fecundity and offspring performance in small populations of the declining grassland plants Primula veris and Gentiana lutea I I J. Ecol. 2000. — V. 88. — P. 17−30.
  123. Kleinschmit J.R.G., Bacilieri R., Kremer A. et al. Comparision of morphological and genetic traits of pendeculate ouk (Q. robur L.) and sessile oak (iQ. petraea (Matt.) Liebl.) I I Silvae Genetica. 1995. — V. 44. — P. 256−269.
  124. Knowles R., Mitton J.B. Genetic heterozygosity and radial growth variability in Pinus contorta II Silvae Genet. 1980. — V. 29. — P. 114−118.
  125. Krakowski J., Aitken S.N., El-Kassaby Y.A. Inbreeding and conservation genetics in whitebarc pine // Conservation Genetics. 2003. — V. 4. — P. 581−593.
  126. Kreher S.A., Fore S.A., Collins B.S. Genetic variation within and among patches of the clonal species, Vaccinium stamineum L. // Mol.Ecol. -2000. -V.9. -P. 1247−1252/
  127. Kremer A., Petit RJ. Gene diversity in natural populations of oak species // Ann. Sci. For. 1993. — V. 50. Suppl. 1. — P. 186−202.
  128. Q., He Т., Xu Z. Genetic evaluation of the efficacy of in situ and ex situ conservation of Parashorea chinensis (Dipterocarpaceae) in Southwestern China //Biochem Genet. 2005. — V. 43. — P.387−406.
  129. Man K.H., Hong W.H. Genetic diversity and population structure of Juniperus rigida (Cupressaceae) and Juniperus coreana II Evolutionary ecology. -2000.-V. 14.-P. 87−98.
  130. Manly B.F.J. Randomization, Bootstrap and Monte Carlo Methods in Biology. Chapman & Hall, London. 1997.
  131. Marshall D.R., Brown A.H.D. Optimum sampling strategies in genetic conservation // Crop genetic resources for Today and Tomorrow (O.H.Frankel, J.G.Hawkes, eds). Cambridge: Cambridge University Press. — 1981.
  132. Mattila A., Pakkanen A., Vakkari P., Raisio J. Genetic variation in english oak (
  133. Mayes S.G., McGinley M.A., Werth C.R. Clonal population structure and genetic variation in sand-shinnery oak, Quercus havardii (Fagaceae) //Am.J.Bot.-1998.V.85. -P.1609−1617
  134. Meloni M., Perini D., Filigheddu R. et al. Genetic variation in five Mediterranean populations of Juniperus phoenicea as revealed by inter-simplesequence repeat (ISSR) markers // Ann. Bot. (Lond). 2006. — V. 97(2). — P. 299 304.
  135. Merwe M.V., Winfield M.O., Arnold G.M. et al. Spatial and temporal aspects of the genetic structure of Juniperus communis populations I I Mol. Ecol. -2000. V. 9 (4). — P. 379−86.
  136. Millar СЛ., Westfall R.D. Allozyme markers in forest genetic conservation // New forests. 1992. — V. 6. — P. 347−371.
  137. Mittermeier R.A., Patricio Robles Gil P.R., Hoffman M. et al. Hotspots Revisited: Earth’s biologically richest and most threatened terrestrial ecoregions. Conservation International, Washington DC, USA. 2005.
  138. Mitton J.B., Grant M.C. Observations on the ecology of quaking aspen Populus tremuloides, in the Colorado Front Range // Am. J. Bot. 1980. — V. 67. -P. 202−209.
  139. Morgante M., Vendramin G.G., Rossi P. et al. Selection against inbreds in early life-cycle phases in Pinus leucodermis Ant. I I Heredity. 1993. — V. 70. — P. 622−627.
  140. Muller-Starck G. Protection of genetic variability in forest trees // Forest Genetics. 1995.- №. 2(3). — P. 121−124.
  141. Murawski D. A, Hamrick J.L. Local genetic and clonal structure in the tropical terrestrial bromeliad, Aechmea magdalenae II Am. J.Bot. 1990. -V.77. -P.1201−1208.
  142. Myers N. The biodiversity challenge: extended hot-spots analysis. // Environmentalist. 1990. — V. 10. — P. 243−256.
  143. Myers N. Threatened biotas: 'hotspots' in tropical forests // Environmentalist. 1988.
  144. Narula A., Kumar S., Bansal K.C. et al. Biotechnological approaches tovard improvement of medicinal plants // Plant biotechnology and molecular markers/ Anamaya Publishers, New Delhi, 2004. P. 78−116.
  145. Namroud M.C., Park A., Tremblay F. et al. Clonal and spatial genetic structures of aspen (Populus tremuloides Michx.) // Mol.Ecol. -2005. -V.14. -P.2969−2980.
  146. Nei M. F-statistics and analysis of gene diversity in subdivided populations //Ann Hum Genet. 1977. — V. 41. — P. 225−233.
  147. Nei M. Genetic distance between populations // Am. Nat. 1972. — V. 106. -N. 949. — P. 283−292.
  148. Nybom H. Comparison of different nuclear DNA markers for estimating intraspecific genetic diversity in plants // Mol. Ecol. 2004. — V. 13. — P. 11 431 155.
  149. Oddou-Muratorio S., Demesure-Musch В., Pelissier R., Gouyon P.H. Impacts of gene flow and logging history on the local genetic structure of a scattered tree species, Sorbus torminalis L. Crantz // Mol. Ecol. 2004. — V.13 — P. 3689−3702.
  150. Oostermeijer G.B., van Eijck M.W., van Leeuwen N.C. et al. Analysis of the relationship between allozyme heterozygosity and fitness in the rare Gentiana pneumonanthe L. //J. Evol. Biol. 1995. — V. 8. — P. 739−759.
  151. Ornstein L. Disc-electrophoresis. I. Background and theory // Ann. New York Acad. Sci. 1964. — V. 121. — P. 321−349.
  152. Papa R., Attene G., Barcaccia G. et al. Genetic diversity in landrace populations of Hordeum vulqare L. from Sardinia, Italy, as revealed by RAPDs, isozymes and morphophenoloqical traits // Plant Breed. 1998. — V. 117. — P. 523 530.
  153. Parks J.C., Werth C.R. A study of spatial features of clones in a population of bracken fern, Pteridium aquilinum (Dennstaedtiaceae) II Am.J.Bot. -1993.-V.80. -P.537−544.
  154. Pei Y.L., Zou Y.P., Yin Z. et al. Preliminary report of RAPD analysis in Paeonia suffruticosa subsp. spontanea and P. rockii. // Acta Phytotaxon. Sin. -1995.-V. 33.-P. 350−356.
  155. Perez-Collazos E., Catalan P. Palaepolyploidy, spatial structure and conservation genetics of the narrow steppe plant Vella pseudocytisus subsp. Paui {Vellinae, Cruciferae) И Ann. Bot. 2006. — V. 97. — P. 635−647.
  156. Persson H.A., Gustavsson B.A. The extent of clonality and genetic diversity in ligonberry (Vaccinium vitis-idaea L.) reveled by RAPDs and leaf-shape analysis // Mol.Ecol. 2001. -V.10. — P.1385−1397.
  157. Pluess A.R., Stocklin J. Genetic diversity and fitness in Scabiosa columbaria in the Swiss Jura in relation to population size 11 Conserv. Genet. 2004. — V. 5. -P. 145−156.
  158. Pons O., Chaouche K. Estimation, variance and optimal sampling of gene diversity. II. Diploid locus // Theor. Appl. Genet. 1995. — V. 91. — P. 122−130.
  159. Prentice H.C., Malm J.U., Mateu-Andres I. et al. Allozyme and chloroplast DNA variation in island and mainland poputation of rare Spanish endemic, Silene hifacensis (Caryophyllaceae) II Conserv. Genet. 2003. — V. 4. — P. 543−555.
  160. Prober S., Tompkins C., Moran G., Bell J.C. The conservation genetics of Eucaliptus paliformis and E. parvifolia, two rare species from south-eastern Australia // Austr. J. Bot. 1990. — V. 38. — P. 79−95.
  161. Qiu Y.X., Huang A.J., Fu C.X. Studies on genetic diversity in Changium smyrnioides Wolff (Umbelliferae) II Acta Phytotaxon. Sin. 2000. — V. 38. — P. 111−120.
  162. Raspe O., Saumitou-Laporade P., Cuquen J. et al. Chloropiast DNA haplotype and population differentiation in Sorbus aucuparia L. {Rosaceae: Maloideae) II Mol. Ecol. 2000. — V. 9. — P. l 113−1122.
  163. Reiseberg L.H. Saving California’s rarest tree 11 Center for plant conservation newsletter. 1988. — V.3. — P.1−8.
  164. Reusch T.B.H., Hukriede W., Stam W.T., Olsen J.L. Differentiating between clonal growth and limited gene flow using sparial autocorrelation of microsatellites //Heredity. -1999. -V.83. P.120−126.
  165. Robertson A., Newton A.C., Ennos R.A. Multiple hybrid origins, genetic diversity and population genetic structure of two endemic Sorbus taxa on the Isle of Arran, Scotland // Mol. Ecol. 2004. — V. 13. — P. 123−134.
  166. Samuel R., Pinsker W., Ehrendorf F. Electrophoretic analysis of genetic variation within and between populations of Quercus cerris, Q. pubescens, Q. petraea and Q. robur (Fagaceae) from eastern Austria 11 Bot. Acta. 1995. V. 108. — P. 290−299.
  167. Schnabel A., Hamrick J.L. Comparative analysis of population genetic structure in Quercus macrocarpa and Q. gambelii 11 Syst. Bot. 1990. — V. 15. — P. 240−251.
  168. Setsuko S., Ishida K., Tomaru N. Size distribution and genetic structure in relation to clonal growth within a population of Magnolia tomentosa Thunb. (Magnoliaceae). II Mol. Ecol. 2004. — V. 13. — P. 2645−2653.
  169. Shaffer M.L. Minimum population sizes for species conservation // Bioscience. 1981. — V. 31. — P. 131−134.
  170. Shnabel A., Krutovskii K.V. Conservation genetics and evolutionary history of Gleditsia caspica: inferences from allozyme diversity in populations from Azerbaijan // Conserv. Genet. 2004. — V. 5. — P. 195−204.
  171. M.E. (Ed.). Viable populations for conservation. Cambridge Univ. Press, Cambridge. — 1987.
  172. Su Y.J., Wang Т., Zheng B. et al. Genetic differentiation of relictual populations of Alsophila spinulosa in southern China inferred from cpDNA trnL-F noncoding sequences 11 Mol. Phylogenet. Evol. 2005. — V. 34. — P. 323−333.
  173. Sun G.L., Diaz О., Salomon В. et al. Genetic diversity in Elymus caninus as revealed by isozyme, RAPD, and microsatellite markers 11 Genome. 1999. — V. 42.-P. 420−431.
  174. Sutherland, W.J. The Conservation Handbook: Research management and policy. Blackwell Science, Oxford, UK. 2001.
  175. Swofford D.L., Selander R.B. BIOSYS-1: a FORTRAN program for the comprehensive analysis of electrophoresis data in population genetics and systematics // J. Heredity. 1981. — V.72. — P.281−283.
  176. Szmidt A.E., Wang X.R., Lu M.Z. Empirical assessment of allozyme and RAPD variation in Pinus sylvestris L. using gaploid tissue analysis // Heredity. -1996.-V. 76-P. 412−420.
  177. Terry R.G., Nowak R.S., Tausch R.J. Genetic variation in chloroplast and nuclear ribosomal DNA in Utah juniper {Juniperus osteosperma, Cupressaceae): evidence for interspecific gene flow // Am. J. Bot. 2000. — V. 87(2). — P. 250−258.
  178. Tomimatsu H., Hoya A., Takahashi H., Ohara M. Genetic diversity and multilocus genetic structure in the relict endemic herb Japonolirion osense (Petrosaviaceae) II J. Plant Res. 2004. — V. 117. — P. 13−18.
  179. Torimaru Т., Tomaru N. Fine-scale clonal structure and diversity within patches of a clone-forming dioecious shrub, Ilex leucoclada (Aquifoliaceae) II Ann.Bot. -2005. V.95. — P.295−304.
  180. Torres E., Iriondo J.M., Perez C. Genetic structure of an endangered plant, Antirrhinum microphyllum (Scrophulariaceae): allozyme and RAPD analysis // Am. J. Bot. 2003. — 90. — P. 85−92.
  181. Vendramin G.G., Michelozzi M., Lelli L. et al. Genetic variation in Abies nebrodensis: a case study for a highly endangered species // Forest Genetics. -1995.-V. 2.-P. 171−175.
  182. Vicario F., Vendramin G.G., Rossi P. et al. Allozyme, chloroplast DNA and RAPD markers for determining genetic relationships between Abies alba and the relic population of Abies nebrodensis II Theor. Appl. Genet. 1995. — V. 90. — P. 1012−1018.
  183. Volkaert H. Polymorphic DNA sequences in Larix spp. and their use for paternity analysis // PhD thesis, University of Maine, USA. 1995.
  184. Von Wuehlisch G., Krusche D. Single and multilocus genetic effects on diameter growth in Picea abies (L.) Karst. // Biohemical markers in the population genetics of forest trees. 1991. — P. 77−86.
  185. Wang Z.S., An S.Q., Lui H. et al. Genetic structure of the endangered plant Neolitsea sericea (Lauraceae) from the Zhoushan archipelago using RAPD marcers // Ann.Bot. 2005. — V. 95. — P. 305−313.
  186. Waples, R.S. Evolutionarily significant units, distinct population segments, and the Endangered Species Act: reply to Pennock and Dimmick // Conserv. Biology.- 1998.- V. 12(3).-P. 718−721.
  187. Waycott M. Assessment of genetic variation and clonality in the seagrass Posidonia australis using RAPD and allozyme analysis // Mar. Ecol. Prog. Ser. -1995.-V. 116.-P. 289−295.
  188. Widen В., Cronberg N., Widen M. Genotypic diversity, molecular markers and spatial distribution of genet in clonal plants, a literature survey // Folia Geobotanica Phytotaxonomica. -1994. V.29. — P.245−263.
  189. Wright S. Evolution and genetics of populations // Chikago: Univ. Chikago press, 1969.-V. 2.-511 p.
  190. Yan R., Zhong M., Wang H.X. et al. Study on DNA diversity of Liaodong population at Dongling mountain region. // Acta Bot. Sin. 1998. — V. 40. — P. 169−175.
  191. Yeeh Y., Kang S.S., Chung H.G. et al. Genetic and clonal diversity in Korean populations of Vitex rotundifolia (Verbenaceae) II J. Plant Res. 2006. — V. 109.-P. 161−168.
  192. Yu G.Q., Bao Y., Shi C.H. et al. Genetic diversity and population differentiation of Liaoning weedy rice detected by RAPD and SSR markers // Biochem. Genet. 2005. — V. 43. — P. 261−70.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!