Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Особенности действия повышенной температуры и ионизирующей радиации на перекисный гомеостаз и фотохимические реакции в хлоропластах гороха

Диссертация: Особенности действия повышенной температуры и ионизирующей радиации на перекисный гомеостаз и фотохимические реакции в хлоропластах гороха
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

ТШ и ИО влияли на мембраны сходным образом: их действие, затрагивавшее разные компоненты системы ПО-АО баланса, в конечном итоге приводило к усилению продукции АФК. Воздействие, оказываемое этими двумя стрессорами также и на метаболизм эндогенных пероксидов, позволяет предположить, что одновременно ?1 усилением окислительных процессов воздействию стрессора подвергались и непосредственно… Читать ещё >

Особенности действия повышенной температуры и ионизирующей радиации на перекисный гомеостаз и фотохимические реакции в хлоропластах гороха (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Системы поддержания прооксидантно-антиоксидантного баланса растительной клетки
    • 1. 2. Влияние неблагоприятных факторов среды на прооксидантно-антиоксидантный статус растений
  • 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объект исследований и постановка опытов
    • 2. 2. Анализ продукции активных форм кислорода и накопления продуктов липопероксидации
    • 2. 3. Определение активности антиоксидантных ферментов и уровня низкомолекулярных антиоксидантов
    • 2. 4. Определение интегральных показателей ПО-АО гомеоста- 52 за
    • 2. 5. Определение фотохимической активности и пигментного со- 53 става хлоропластов
    • 2. 6. Статистическая обработка данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Сравнение влияния внешних факторов различной природы на состояние систем поддержания перекисного гомеостаза в хлоро-пластах гороха
      • 3. 1. 1. Влияние теплового шока, экзогенного пероксида водорода и фотодинамического гербицида параквата на про- и антиоксидант-ные процессы в хлоропластах гороха
      • 3. 1. 2. Действие теплового шока и ионизирующего излучения на прооксидантно-антиоксидантный статус хлоропластов гороха
    • 3. 2. Функциональное состояние хлоропластов при ионизирующем облучении
      • 3. 2. 1. Фотохимические реакции и пигментный состав хлоропластов при облучении суспензии пластид
      • 3. 2. 2. Фотохимические реакции и пигментный состав хлоропластов при облучении целых растений гороха

Актуальность проблемы. Растения в ходе своего существования подвергаются воздействию различных внешних факторов, нередко оказывающих неблагоприятное влияние. Эти факторы вызывают сдвиги в нормальных физиологических процессах и, в то же время, активируют системы адаптации к изменившимся условиям существования. Значительное влияние на жизнедеятельность растений оказывают такие внешние факторы как повышенная температура и ионизирующее облучение (Курганова и др., 1999; Евсеева и др., 2008).

Среди крайне важных для устойчивости растения процессов можно назвать поддержание прооксидантно-антиоксидантного (ПО-АО) баланса, то есть динамического равновесия между продукцией прооксидантов в организме и их утилизацией антиоксидантными (АО) системами. При действии неблагоприятных факторов в данной системе возникают изменения, характеризуемые как окислительный стресс (Мерзляк, 1989). В фототрофных тканях окислительный стресс в первую очередь связан с хлоропластами, а именно, с функционированием фотосинтетической ЭТЦ, ответственной за генерацию значительной части АФК в растительной клетке (Мерзляк, 1989; Foyer et al, 1997, Diaz-Vivancos et al., 2008). Увеличение продукции АФК приводит к активации окислительных процессов, в том числе ПОЛ (Владимиров, Арчаков, 1972; Барабой и др. 1992; Весапа, Moran, Iturbe-Ormaetxe, 1998). Интенсификация ПОЛ способна привести к изменению свойств липидного матрикса мембран и модификации метаболизма всей клетки, однако его уровень сдерживается АО-системами, включающими в себя ферменты и низкомолекулярные соединения (Меныцикова, Зенков, 1993; Alscher, Donahue, Cramer, 1997; Noctor, Foyer, 1998). Взаимодействие процессов ПОЛ и нейтрализующих их АО-процессов определяет функционирование локализованных в мембранах процессов клеточного метаболизма, к которым относятся, например, дыхание и фотосинтез. Это позволяет использовать исследования систем поддержания i t.

ПО-АО гомеостаза для изучения «быстрых» реакций растений на различные воздействия извне. Кроме того, колебаниям ПО-АО равновесия и непосредственно связанному с ними redox-статусу клетки в настоящее время приписывается сигнальная роль в развитии общей адаптивной реакции растений (Курганова и др., 1999; Пелевина и др., 2007; Sun, Oberley, 1996; Hidalgo, Ding, Demple, 1997; Finkel, 2000; Tausz, Sircelj, Grill, 2004). Все вышеизложенное позволяет рассматривать состояние ПО-АО равновесия при действии внешних факторов как показатель, адекватно отражающий общую стратегию приспособления растительной клетки к изменяющимся условиям среды.

Изучению влияния различных факторов на ПО-АО равновесие посвящено большое количество работ (Загорская и др., 2008; Леи, 2008; Генерозо-ва, Маевская, Шугаев, 2009; Dat et al., 1998; Iturbe-Ormaetxe et al., 1998; Iannelli et al., 1999; Clarke et al., 2002). Однако остается открытым вопрос о характере воздействия таких внешних факторов как ТШ и ИО, для которых показан обширный перечень затрагиваемых систем и которые изменяют ПО-АО равновесие более неспецифично, в отличие от химических факторов, таких как перекись водорода и паракват, являющихся непосредственными про-оксидантами.

Цель и задачи исследования

.

Цель работы состояла в установлении особенностей действия повышенной температуры и ионизирующей радиации как неспецифических факторов физической природы на окислительное равновесие и фотохимические реакции в хлоропластах.

Для достижения поставленной цели были поставлены следующие задачи: 1. Определить содержание продуктов ПОЛ, эндогенных пероксидов и состояние основных компонентов антиоксидантной системы в хлоропластах гороха при действии ТШ по сравнению с химическими стрессорами, оказывающими прямое прооксидантное воздействие (пероксид водорода, паракват).

2. Установить состояние систем, поддерживающих ПО-АО гомеостаз, и содержание эндогенных пероксидов в клетках и хлоропластах листьев гороха при действии ТШ и ИО.

3. Исследовать протекание фотосинтетических реакций, общее и относительное содержание пигментов и состояние систем ПО-АО-гомеостаза в хлоропластах гороха при действии ИО как на целые растения, так и непосредственно на пластиды.

Научная новизна.

Впервые показаны особенности действия повышенной температуры и ионизирующего облучения на количественный и качественный состав продуктов ПОЛ. ТШ и ИО преимущественно влияли на образование АФК, тогда как химические стрессоры Н2О2 и паракват действовали на более поздние этапы окислительных процессов в мембранах.

Впервые показано наличие тесной взаимосвязи между реакциями ПО-АО систем и фотосинтетического аппарата (скорость протекания фотохимических процессов и пигментный состав) на действие ионизирующего облучения и повышенной температуры.

Теоретическая и практическая значимость.

Полученные результаты важны для понимания механизмов восприятия стрессового воздействия у растений. Исследование реакции хлоропластов на действие радиоактивного излучении я показало, что пластиды крайне чувствительны к ионизирующему облучению и могут рассматриваться как одна из основных мишеней для данного стрессора. Полученные данные могут способствовать разработке новых подходов к проблеме повышения устойчивости растений к действию негативных факторов среды, в частности, радиоактивного излучения. Основные выводы и результаты работы могут быть использованы в учебном и научном процессе биологических факультетов университетов, сельскохозяйственных и педагогических вузов.

Апробация работы. Основные результаты работы доложены на 7-й, 8-й, 9-й и 10-й Пущинских школах-конференциях молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2003, 2004, 2005, 2006), 8-й, 9-й, 10-й и 11-й Нижегородских сессиях молодых ученых (Нижний Новгород, 2003, 2004, 2005, 2006), Ш Всероссийской молодежной научной конференции по фундаментальным проблемам радиохимии и атомной энергетики (Нижний Новгород, 2004), I (IX) Международной Конференции молодых ботаников в Санкт-Петербурге (Санкт-Петербург, 2006), Всероссийской школе молодых ученых «Сигналомика растений» (в рамках Международного симпозиума «Сигнальные системы клеток растений: роль в адаптации и иммунитете») (Казань, 2006), Школе студентов и молодых ученых «Физиология растений — фундаментальная основа современной фитобиотехнологии» (в рамках Годичного собрания общества физиологов растений России) (Ростов-на-Дону, 2006), The 35 annual meeting of the European Radiation research society, (European radiation research 2006, The 4 annual* meeting of the Ukranian Society for Radiation Biology) (Kyiv, Ukraine, 2006).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано и направлено в печать 14 работ.

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, методов исследований, результатов и их обсуждения, заключения, выводов и списка литературы (435 источников, в том числе 279 иностранных). Работа изложена на 160 страницах, содержит 26 рисунков и 6 таблиц.

ВЫВОДЫ.

1. Действие ТШ, в отличие от действия Н202 и параквата, сказывалось в первую очередь на повышении скорости образования АФК и содержании низкомолекулярных антиоксидаыгов. Экзогенный пероксид водорода, преимущественно влиял на активность АО-ферментов.

Введение

параквата приводило к повышению уровня продуктов ПОЛ и активации работы ферментов АО-защиты^ прежде всего СОД.

2. Ионизирующее облучение и повышенная температура сходным образом влияли на интегральные показатели ПО-АО баланса мембран хлоропла-стов, усиливая прежде всего продукцию свободных радикалов, причем действие одного фактора сопровождалось развитием устойчивости к последующему действию другого.

3. Ионизирующее облучение оказывало значительное влияние на фотохимические процессы^ вызывая комплекс, характерных стрессовых изменений, прежде всего усиление окислительных процессов в мембранах, переключение электронных потоков, изменения пигментного состава. Подобное действие отмечалось при облучении как целых растений, так и пластид.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Обобщая полученные результаты, можно заключить, что вызванные использованными стрессорами изменения в функциональном состоянии мембран хлоропластов и в протекании фотохимических реакций происходили в тесной взаимосвязи. Воздействие ТШ, 10 мМ Н202, 500 мкМ параквата и ИО вызывало смещение ПО-АО равновесия, обуславливая тем самым развитие окислительного стресса в клетках. Характерные стрессовые реакции, вызванные тк усилением окишштельяого лрессинга. яа мембраны^ так и включением защитных механизмов, наблюдались в липидном метаболизме (процессы ПОЛ), в функционировании АО-систем, в протекании фотохимических реакций и состоянии пигментного аппарата хлоропластов. Основное негативное действие 1Ш осуществлялось путем усиления продукции активных молекулярных форм в мембранах, что может быть обусловлено сопровождающим ТШ повышением скорости спонтанных рекомбинаций, которое приводит к общему увеличению продукции, свободных: радикалов. Это главное, отличие действия ТШ на хлоропласты от действия прямых окислителей Н202 и параквата, влиявших на более поздние этапы окисления в мембранах.

ТШ и ИО влияли на мембраны сходным образом: их действие, затрагивавшее разные компоненты системы ПО-АО баланса, в конечном итоге приводило к усилению продукции АФК. Воздействие, оказываемое этими двумя стрессорами также и на метаболизм эндогенных пероксидов, позволяет предположить, что одновременно ?1 усилением окислительных процессов воздействию стрессора подвергались и непосредственно АО-системы, что сказывалось на общем протекании стресс-реакции в клетке. Результатом этого двойственного влияния может быть нелинейный ответ на действие внешних факторов, отмеченный для многих стрессоров. Данные, полученные при облучении как растений, так и изолированных хлоропластов гороха, также показали, что облучение вызывало комплекс характерных защитных реакций фотосинтетического аппарата.- Важным представляется тот фактх что. хлородт-сты продемонстрировали высокую чувствительность к действию ионизирующей радиации, реагируя на облучение в меньших дозах путем запуска защитных реакцийчто приводило к ослаблению негативного воздействия при облучении в больших дозах. Этим может объясняться феномен высокой устойчивости растений к радиоактивному облучению.

Сходная картина последствий, вызванных в хлоропластах при действии XIII в ИО+ лозводяет объединить данные стресеорыв общую группу неспецифических факторов физической природы. В качестве основной «мишени», < через которую реализуется воздействие данных факторов на метаболизм растений, может выступать скорость генерации в. мембранах активированных молекул (например, таких, как АФК) и продуктов непосредственного окисления ими липидно-белкового матрикса мембран, тогда как использованные химические стрессоры (Н202, паракват) влияли на более поздние участки окислительного метаболизма, пластид.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.В., Балагурова Н. И., Титов А. Ф. Влияние локального прогрева на тепло-, холодо- и солеустойчивость клеток листа и корня растений // Физиол. раст., 1999. — Т. 46, № 1. — С. 119−123.
  2. A.B., Пальмина Н. П. Роль липидов в функциональной активности и биосинтезе ДНК в нормальных и опухолевых клетках // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии / Под ред. АЛ Журавлева. М.: Наука, 1982. — а 84−89.
  3. И.М. Роль механических свойств мембран В' динамике поведения мембранных систем в растительных клетках // Физиол. раст., 1993. Т. 40, № 3. — С. 475−484.
  4. Бак 3., Александер П. Основы радиобиологии. М.: И.Л., 1963. 500 с.
  5. И.В. Изменение прооксидантно-антиоксидантного статуса хлоропластов гороха при действии* стрессирующих факторов среды: Дисс.. канд. биол. наук: 03.00.12, 03.00.16/ И: В. Балалаева. Н. Новгород, 2004. -192 с.
  6. Барабой В-А Механизмы стресг&и. дерекисное. окисление. липидов // Усп. совр. биол., 1991. -Т. 111, № 6. -С. 923−932.
  7. В.А., Брехман H.H., Голотин В. Г., Кудряшов Ю. Б. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. — 148 с.
  8. P.M., Гусейнова Е. Е. Фотосинтез и фотоокислительные процессы //Физиол. раст., 1986.-Т. 33, вып. 1.-С. 171−184.
  9. Ю.Богатыренко Т. Н., Редкозубова Г. П., Конрадов A.A. и др. Влияние органических пероксидов. на. рост культивируемых: клеток высших, растений. Биофизика, 1989. Т. 34, С. 327−329.
  10. П.Боднарчук H.A. Гипотеза о механизме индукции адаптивного ответа при облучении клеток млекопитающих в малых дозах. // Радиационная биология. Радиоэкология, 2002. Т. 42, № 1. С. 36−43.
  11. В., Флиднер Т., Аршамбо Д. Радиационная гибель млекопитающих. Нарушение кинетики клеточных популяций. / Пер. с англ. М.: Атомиздат, 1971.320 с
  12. З.Браун А. Д., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. JH.: Наука, 1987. — 232 с.
  13. Е.Б., Архипова Г. В., Голощапов А. Н., Молочкина Е. М., Хохлов А. Г. Мембранные липиды как переносчики информации // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии / Под ред. А. И. Журавлева. М.: Наука, 1982а. — С. 74−83.
  14. Е. Б. Греченко Т.Н., Соколов E.H., Терехова С. Ф. Влияние ингибиторов радикальных реакций окисления липидов. на электрическую активность изолированного нейрона виноградной улитки. Биофизика, 1986. Т. 3 ЬЖ С 921−923,
  15. БурлаковаЕ.Б., Голощапов А. Н., Горбунова Н. В. и др. Особенности биологического действия малых доз облучения // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. т. 36. вып. 4. С. 610−631.
  16. БурлаковаЕ.Б., Голощапов А. Н., ЖижинаГ.П., Конрадов A.A. Новые аспектызакономерностей, облучения. в мальтх дозах. Радиационная, биология. Радиоэкология. 1999, т. 39, № 1, с. 26−33.
  17. Е.Б., Михайлов В. Ф., Мазурик В. К. Система окислительно-восстановительного гомеостаза при радиационно-индуцируемой нестабильности генома. // Радиационная биология. Радиоэкология, 2001. Т. 41, № 5. С. 489−499.
  18. Н.Г., Буше Н., Карпантье Р. Последействие кратковременного теплового шока на фотохимические реакции в листьях ячменя // Физиол. раст., 1997. Т. 44, № 4. — С. 605−612.
  19. Н.Г., Джибладзе Т. Г. Влияние повышенных температур на фотосинтетическую активность у интактных листьев ячменя при низких и высоких освещенностях. // Физиол. раст.^ 2002. Т. 49,. Ж3 С 3.71−375
  20. И.Б., Степанов Р. П., ФедорцеваР.Ф. Особые долговременные изменения клеток при воздействии радиации в малых дозах. Радиационная биология. Радиоэкология, 2002. Т. 42, № 1. С.20−35.
  21. .Ф. Апоптоз у растений // Усп. биол. хим., 2001. Т. 41. — С. 3−38.
  22. Л.С. Супероксиддисмутаза // Белки и пептиды: В 2 т. М.: Наука, 1995. — Т. I — С. 89−95.
  23. И. М. Действие ионизирующих излучений на растения. М., 1962. 120 с.
  24. А.П. Математическая модель возможного триггера обратимого включения режима стресса у растений // Физиол. раст., 2001. Т. 48, № 1. — С. 124—131.
  25. В.А. О роли биоантиоксидантов в устойчивости растений к неблагоприятным условиям существования // Биоантиокисттитеди. в. регуляции метаболизма в норме и патологии / Под ред. А. И. Журавлева. -М.: Наука, 1982. С. 150−162.
  26. ЗО.Владимиров Ю. А., Литвин Ф. Ф. Исследование сверхслабых свечений в биологических системах //Биофизика, 1959, Т. 4, № 5. С. 601−605.3¡-.Владимиров Ю. А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. -М.: Наука, 1972. -252 с.
  27. В.Ф., Жигалова Т. В. Большой практикум по фотосинтезу. -М.: Издат. центр «Академия», 2003. 256 с.
  28. И.Г., Упоров И. В., Чубаров Т. А., Фечина В. А., Мареева Е. А., Лагримини Л. М. Влияние рН на стабильность анионной пероксидазы табака и ее взаимодействие с перекисью водорода // Биохимия, 1998. Т.708.715.
  29. И.А., Юпобин И. В. Перекись водорода как сигнальная молекула // Цитология, 1996. Т. 38, № 12. — С. 1233−1247.
  30. И.П., Маевская С.Н.,. Шугаев А. П. Ингибирование метаболической активности митохондрий этиолированных проростков гороха, подвергнутых водному стрессу // Физиология растений, 2009, т.56, № 1, С. 45−52:
  31. С. Медико-биологическая статистика. М.: Практика, 1998. — 459 с.
  32. Е.Н., Кудряшов Ю. Б. Гипотеза эндогенного фона радиорезистентности. М.:. Изд-во МГУТ 1980. 176 е.
  33. Д. Рак, вызываемый облучением в малых дозах: независимый анализ проблемы. Пер. с англ. под редакцией Е. Б. Бурлаковой, В. Н. Лысцова. Т. 1,2. М., Социально-экономический союз. 1994.
  34. Р. Действие малых доз ионизирующего излучения. Эффект Петко. // Ядерная энциклопедия. М.: Благотв. Фонд Ярошинской, 1996. С. 387−394.
  35. Д. Э. Радиобиология, М., 1966. 324 с.
  36. Д.М. Надежность- растительных систем. Киев: Наукова думка, 1983. -386 с.
  37. И.ff. Клеточные механизмы пострадиационного восстановления растений. Киев.: Наукова думка, 1985. 224 с.
  38. А.К., Байсоглов Г. Д. Лучевая болезнь человека. М. г Медицина, 1970. 333 с.
  39. Р., Эллиот Д., Эллиот У., Джонс. К. Справочник биохимика. М.: Мир, 1991.-544 с.
  40. Л.Ф. Цитохром bj и токоферол обеспечивают функционирование липидно-радикальных циклов и преобразование энергии в мембранах//Биохимия, 1998. Т. 63, вып. 10. — С. 1447−1450.
  41. Е.Е., Салтыкова Л. А., Ефимова Л. Ф. Активность и изоферментный спектр супероксиддисмутазы эритроцитов и плазмы крови человека // Лаб. дело, 1983. С. 30−33
  42. Т.И., Гераськин С. А. Майстренко Т.А., Белых Е. С. Проблемы количественной оценки биологических эффектов- совместного действия факторов радиационной и химической природы // Радиационная.биология. Радиоэкология. 2008, Т 48, № 2, С. 203−211.
  43. Р.П., Волков И. М., Чудинова В. В. Витамин Е как универсальный антиоксидант и стабилизатор биологических мембран // Биол. мембраны, 1998. Т. 15, вып. 2. — С. 119−131.
  44. C.B., Родичев Б. С., Волков С. Н., Конторщикова К. Н. ЦНИЛ НГМА Н.Новгород- Кузьмина Е. И. «ИМБИО» Н. Новгород http://www.medozons.ru/rus/products/bhl-07.html
  45. В.Д. Восстановление и радиорезистентность клетки. Л.: Наука, 1968. 351 с.
  46. А.И. Развитие идей Б.И. Тарусова о роли цепных процессов в биологии // Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии / Под ред. А. И. Журавлева. М.: Наука, 1982. — С. 3−36.
  47. В.А., Бакиева Л. Е., Александрушкина Н. И., Ванюшин Б. Ф. Апоптоз в первом листе у этиолированных проростков пшеницы: влияние антиоксиданта ионола (ВНТ) и перекисей // Биохимия, 2002. — Т. 67, № 2. -С. 253−264.
  48. .И. Восстановление кислорода в хлоропластах и, аскорбатный цикл // Биохимия, 1998. Т. 63, вып. 2. — С. 165−170.
  49. С.А., Булгакова Г. П. Радиационная- химия в- ядерном топливном цикле. Москва, 1997. — 154 с.
  50. Ю. Е. Балахнина Т.И., Закржевский Д. А. Эффект почвенной гипоксии на активацию кислорода и систему защиты от окислительной деструкции в корнях и листьях Hordeum vulgare II Физиол. раст., 1994. Т. 41.-С. 583−588.
  51. A.B., Радюкина H.JI., Иванов Ю. В., Пашковский П. П., Шевякова Н. И., Кузнецов Вл.В. Роль систем антиоксидантной защиты при адаптации дикорастущих видов растений к солевому стрессу // Физиол. Раст., 2008, Т. 55, № 4, С. 516−522.
  52. М.В., Лукаш А. И., Гуськов Е. П. Роль низкомолекулярных антиоксидаыгов при окислительном, стрессе. // Усл. совр бжш^ 1993. X. 113, № 4.-С. 456−471.
  53. И.М., Буболо Л. С., Васьковский М. Д. Увеличение длины и количества мембран тилакоидов в хлоропластах листьев пшеницы в результате теплового шока. // Физиол. раст., 1997. Т. 44, № 1. С. 39−44.
  54. И.М., Буболо Л. С., Быков О. Д., Каменцева И. Е., Шерстнева O.A. Защитное и повреждающее действие видимого света на фотосинтетический, аппарат лшеншды лрж гипертермии // Физиол. Раст., 2008, Т. 55, № 5, С. 681−689.
  55. Л.С., Кулинский В. И. Глутатионтрансферазы // Усп. совр. биол., 1989. Т. 107, вып. 2. — С. 179−194.
  56. И.К. Немонотонность зависимости доза-эффект в области малых доз ионизирующей радиации // Радиационная биология. Радиоэкология. 2003. Т. 43, № 2. С. 179−181.
  57. Комиссаров ГХ^ Птицик Г .А. Влияние, пероксида. водорода, на. фотосинтетическое выделение кислорода // ДАН СССР, 1993. Е. 329, № 5. С. 661−663.
  58. Г. Г. Фотосинтез: взгляд с новых позиций. // Хим. физика, 1995. Е. 14, № 1. С. 20−28.
  59. М.Н. Отрицательные ионы и АФК // Биохимия, 1999. Е. 64, № 3, С. 430−432.
  60. В.И., Корогодина В. JI. Нарушения хромосом и радиостимуляция растений. // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. Т. 36, № 6. С. 883−887.
  61. А.Н., Филиппович И. Н. Радиоадаптивный ответ in vitro нестимулированных лимфоцитов крыс по металлотинеиновому тесту. // Радиационная биология. Радиоэкология, 2002. TAl^WL CL 528−530.
  62. А. П. Гатилова Г. Д., Гродзинский Д. М. Динамика образования цитогенетических аномалий в меристеме проростков при хроническом облучении семян // Радиационная биология. Радиоэкология, 2008, Т. 48, № 3, С. 313−317.
  63. A.A., Парамонова Л. И. Взаимодействие синглетного кислорода с каротиноидами: константы скорости физического и химического тушения // Биофизика, 1983, Т. 28,. вып. 5. — CL 725−729.
  64. A.A. Синглетный кислород: механизмы образования и пути дезактивации в биологических системах // Биофизика, 1994. Т. 39, № 2. С. 236−250.
  65. Ю.Б. Радиационная биофизика (ионизирующие излучения), М., Физмат лит^2004.
  66. A.M. Радиационная биохимия, М., 1962. 250 с.
  67. A.M. Стимулирующее действие ионизирующего излучения на биологические процессы: к проблеме биологического действия малых доз. М.: Атомиздат, 1977. 284 с.
  68. Кузин A. M*. Идеи радиационного гормезиса в атомном веке. М., Наука, 1994. 158 с.
  69. E.H., Нешобин A.C., Щенникова М. К. Применение индуцированной хемилюминесценции для оценки свободнорадикальных реакций в биологических субстратах. // Межвузовский сборник биохимии и биофизики микроорганизмов. Горький, 1983. — С. 179−183.
  70. .И. Оценка активности молекулярных шаперонов в тест-системах, основанных на подавлении^ агрегации белков // Усп. биол. химии, 2002. Т. 42. — С. 89−138.
  71. Л. Н., Веселов А. П., Гончарова Т. А., Синицына Ю. В. Перекисное окисление липидов и антиоксидантная система защиты в хлоропластах гороха при тепловом шоке // Физиол. раст., 1997. Т. 44, № 5.-С. 725−730.
  72. Л.Н., Веселов А. П., Синицына Ю. В., Елшсова Е. А. Продукты перекисного окисления липидов как возможные посредники между воздействием повышенной температуры и развитием стресс-реакции у растений // Физиол. раст., 1999. Т. 46, № 2. — С. 218−222:
  73. В.П., Гайворонская Л. М., Аверьянов A.A. Возможное участие АФК в двойной индукции противоинфекционных реакций растения // Физиол. раст., 2000. Т. 47, № 1. — С. 160−162.
  74. Л ей Я. Физиологические ответы Populus przewalskii на окислительный стресс, вызванный засухой // Физиол. Раст., 2008, Т. 55, № 6, С. 945−953.
  75. Лиу Ю-, Пан Ц. Х., Ян Х. Р., Лиу Ю. Ю. Хуан В.Д. Взаимосвязь между Н2О2 и жасмоновой кислотой в ответной реакции листьев гороха на поранение // Физиолог. Раст., 2008, Т. 55, № 6, С. 851−862.
  76. A.B. Роль перекисного окисления липидов в регуляции систем поддержания клеточного гомеостаза у растений при стрессовых воздействиях: Автореф. .канд. биол. наук: 03.00.12 / А. В. Лихачева. -Н.Новгород, 2002.-22 с.
  77. Е.Л., Вартанян Л. С. Супероксиддисмутаза: определение активности по ингибированию фотосенсибжпизированной хемилюминесценции глицилтриптофана // Биохимия, 2000. Т. 65, № 5. -С. 704−708.
  78. A.C., Левина Е. Е. Влияние экзогенных модификаторов перекисного окисления на холодовое повреждение листьев огурца // Физиол. раст., 1997. Т. 44, № 3. — С. 397−403.
  79. A.C. Вклад окислительного стресса в развитие холодового повреждения в листьях тешюдюбивых. растений. L Образование активированных форм кислорода при* охлаждении' растений // Физиол. раст., 2002. Т. 49, № 5. — С. 697−702.
  80. Н.В., Куликова В. Г. Влияние предварительного облучения мышей на их последующую радиорезистентность. // Доклады АН СССР, 1956. Т. 110. С. 109−113.
  81. М.И., Тихонов Н. Л. Влияние высокой температуры на процессы электронного тршиаюрта.// Биофизика, 1981. Т. вып. X. С. 284−287.
  82. М.И., Каменцева И. Е. Структурная и функциональная термостабильность ферредоксин-НАДФ-редуктазы из листьев огурца и дыни // Физиол. раст., 1996. Т. 43, № 3. — С. 46266.
  83. Я.В., Кабаков А. Е. Предрадиационная индукция БТШ повышает клеточную радиорезистентность // Радиационная биология. Радиоэкология, 2007. Т. 47, № 3, С. 273−279.
  84. С.С. Электрофизиология растений. СПб.: Изд-во СПбГУ, 1998−180 с.
  85. Е.Б., Зенков Н. К. Антиоксиданты и ингибиторы радикальных и окислительных процессов // Усп. совр. биол., 1993. Т. 133, № 3.-С. 286−296.
  86. М. Н. Активированный кислород и окислительные процессы в мембранах растительной клетки // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Физиология растений, 198.9. Т. 6. — 16.8. а.
  87. Методы биохимического исследования растений. Под ред. А. И. Ермакова. Л.: Агропромиздат, 1987. 430 с.
  88. В.М., Ляхович В. В. Дисмутаза 02″: физико-химические свойства, каталитический механизм и биологическое значение // Усп. совр. биол., 1976. Т. 82, вып. 3 (6). — С. 338−355.
  89. А.Т., Гавриленко В.Ф.1, Жигалова Т. В. Фотосинтез. Физиолого-экологические и биохимические аспекты. Под ред. И. П. Ермакова. М., Академия, 2006. 436 с.
  90. Москалев, А А. Генетические, исследования влияния, ионизирующей, радиации в малых дозах на продолжительность" жизни // Радиационная биология. Радиоэкология. 2008, Т. 48, № 2, с. 139−145.
  91. Дж.Р., Джафаров Э. С. некоторые особенности накопления природных радионуклидов в различных органах растений, произрастающих в зоне повышенного радиационного фона // Радиационная биология. Радиоэкология, 2007. Т. 47, № 2, С. 241−249.
  92. Осипов AHlt Азизова 0А. Т Владимиров КХА Активные, формы кислорода и их роль в организме // Усп. биол. хим., 1990. Т. 31. — С. 1180−1208.
  93. В.Н. Основные положения современной теории стресса и неспецифический адаптационный синдром у растений // Цитология, 1995. -Т. 37, №½.-С. 66−91.
  94. В.Н., Чернов И. А. Некоторые особенности индуктивной фазы неспецифического адаптационного синдрома растений // Изв. Акад. Наук, 1996. 6. С. 705−715.
  95. И.И., Саенко A.C., Готлиб В .Я., Сынзыныс Б. И. Выживаемость облученных клеток и репарация ДНК. М. Энергоатомиздат, 1985. 120 с.
  96. И.И., Алещенко A.B., Антощина М. М. Реакция популяции клеток на облучение в малых дозах. Радиационная биология. Радиоэкология. 2003. Т. 43, № 5. С. 161−166.
  97. A.B., Столяров С. Д. Окислительный стресс как критерий оценки окружающей среды // Известия АН СССР. Сер. биологич., 1994. -№ 4.-С. 588−594.
  98. A.B. Роль кислородных радикалов, образующихся при функционировании мембранных редокс-цепей, в повреждении ядерной ДНК // Биохимия, 1996. Т. 61, № 1. — С. 65−71.
  99. Р.В. Иммунология острого лучевого поражения. М.: Госатомиздат, 1962. 268 с.
  100. O.A., Шарпатый В. А. Свободнорадикальный механизм радиационной деструкции хитозана и проблемы химической противолучевой защиты // Радиационная биология. Радиоэкология, 2007, Т. 47, № 6, с. 717−721.
  101. ОТ. Растительная клетка и активные формы кислорода. Учебное пособие. Под ред. И. П. Ермакова. М., КДУ, 2007! 140 с.
  102. .И., Конев В. В., Попов Г. А. Биофизические аспекты радиационного поражения биомембран. М. Энергоатомиздат, 1990. 160 с.
  103. М.Д., Рамайя Л. Х. Предварительное облучение как фактор, изменяющий эффективность лучевого воздействия на организм. // М.: Изд-во АН СССР, 1962. С.91−106.
  104. В.А. Фенольные антиоксиданты: реакционная способность и эффективность. Mi: Наука, 1988: — 248 с.
  105. Рождественский Л.М. Pro и Contra пороговости/бесиороговости мутагенного (канцерогенного) действия ионизирующего излучения низкого уровня // Радиационная биология: Радиоэкология- 2001. Е. 41, № 5. С. 580−588.
  106. Рябченко Н И. Радиация и ДНК. М., Атомиздат. 1979. 192 с.
  107. Радиобиология. Радиоэкология, 1991. Т. 31. С. 716−717.
  108. В.Д. Биохимия программированной клеточной смерти (апоптоза) у животных // Соросовский образовательный журнал, 2001. Т. 7, № 10 (71). С. 18−25.
  109. Севанькаев AJEL, Насонов A2L Калибровочные дозовые кривые хромосомных аберраций лимфоцитов человека. Мед. Радиология, 1978. Т. 23, № 6, С. 26−33.
  110. A.B. Радиочувствительность хромосом лимфоцитов человека в митотическом цикле. М. Энергоатомиздат, 1987. 160 с.
  111. JI.H., Крашенинникова Г. А., Вахнина JI.B. Этиленобразующий фермент растений // Биохимия, 1995. Т. 60, вып. 7. -С. 1005−1016.
  112. Ю.В. Фотохимическая активность и перекисный гомеостаз вхлоропластах растений при. гипертермическом воздействии: Диссканд.биол. наук: 03.00.12 / Ю. В. Синицына. Н. Новгород, 2002. — 157 с.
  113. В.П. О биохимических механизмах эволюции и роли кислорода//Биохимия, 1998. Т. 63, № 11. — С. 1570−1585.
  114. В.П. Явления запрограммированной смерти. Митохондрии, клетки и органы: роль активных форм кислорода // Сорос, образоват. журнал, 2001. Т. 7, № 6. — С. 4−10.
  115. И.Д. Метод определения диеновой конъюгации ненасыщенных высших жирных кислот // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. — С. 63−64.
  116. И.Д., Гаришвили Т. Г. Метод определения малонового диальдегида с помощью тиобарбитуровой кислоты // Современные методы в биохимии / Под ред. В. Н. Ореховича. М.: Медицина, 1977. — С. 66−68.
  117. К., Костецка-Гугала А., Латовски Д. Каротиноиды растений и стрессовое воздействие окружающей среды: роль модуляции физических свойств мембраны каротиноидами // Физиол. раст., 2003. -Т. 50, № 2.- С. 188−193.
  118. .Н. Сверхслабое свечение живых организмов. М.: Знание, 1972.275 с.
  119. И. А. Регуляторная роль деградации биополимеров и> липидов // Физиол. раст., 1992. Т. 39, № 6. — С. 1215−1223.
  120. И.А. Элиситор-индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие // Физиол. раст., 2000. Т. 47, вып. 2. — С. 321−331.
  121. И.А. Метаболизм растений при стрессе (избранные труды). Казань: Фэн, 2001. — 448 с.
  122. М.И. Супероксиддисмутаза: свойства и функции // Усп. совр. биол., 1976.-Т. 81, вып. З.-С. 341−354.
  123. Физиология растений. Под ред. И. П. Ермакова. М., Издательский центр «Академия», 2005. 640 с.
  124. A.A., Скоробогатова И. В., Карсункина Н. П., Зайнуллин В. Г. Гормональные и генетические эффекты, индуцируемые облучением в малых дозах у Tradescantia (клон 02) // Радиационная биология. Радиоэкология, 2007 т Т. 47Т№ 5Г С. 578−583L
  125. Д., Рао К. Фотосинтез. М., 1983. 134 с.
  126. Н.Н. Глутатионредуктаза // Белки и пептиды: В 2 т. М.: Наука, 1995.-Т. 1.-С. 78−83.
  127. Шаяхметов И. LLL, Трунова Т. И., Цыдендамбаев В. Д., Верещагин А. Г. Роль липидов клеточных мембран в криозакаливании листьев и узлов кущения озимой пшеницы // Физиол. раст., 1990. Т. 37, № 6. — С. 1186— 1195.
  128. .Ю., Смирнова Е. Г., Ягужинский JI.C., Ванюшин Б. Ф. Необходимость образования супероксида для развития этиолированных проростков пшеницы // Биохимия, 2000. Т. 65, № 12. — С. 1612−1617.
  129. JI.X. О едином механизме инициации различных эффектов малых доз ионизирующих излучений // Радиационная биология. Радиоэкология. 1996. т. 36, вып. 6, С. 874−882.
  130. Эйдус JLX Мембранный. механизм действия малых, доз. Ж ИТЭБ,. 2001(a). 81 с.
  131. JI.X. Мембранный механизм биологического действия малых доз. Новый взгляд на проблему. М.: ООО «Типография ФНПР», 2001(6). 81 с.
  132. JI.X. О механизме неспецифической реакции клеток на действие повреждающих агентов и природе гормезиса. Биофизика, 2005, т. 50, вып. 4, с. 693−703.
  133. Abdul Karim M., Fracheboud Y., Stamp P. Photosynthetic activity of developing leaves of Zea mays is less affected by heat stress than that of developed leaves //Physiol. Plant., 1999. Vol. 105. — P. 685−693.
  134. Alexieva V., Ivanov S., Sergiev I., Karanov E. Interaction between stresses // Bulg. J. Plant Physiol., 2003. Special issue. — P. 1−17.
  135. Allen R.D., Webb R.P., Schake S. Use of transgenic plants to study antioxidant defenses // Free Rad. Biol. Med., 1997. Vol. 23, № 3. — P. 473 479.
  136. Allen J.D., Ort D.R. Impacts of chilling temperatures on photosynthesis in warm-climate plants // Trends Plant Sci., 2001. V.6, № 1. -P. 36−42.
  137. Alscher R.G., Donahue J.L., Cramer C.L. Reactive oxygen species and antioxidants: relationships in green cells // Physiol. Plant., 1997. Vol. 100. -P. 224−233.
  138. Alper T. The role of membrane damage in radiation-induced cell death. In Membrane toxicity (eds) M W. Miller and A E. Sham oil. 1997y (New York: Plenum) P. 139.
  139. Anderson J. M, Park Y.-I., Chow W. S. Unifying model for the photoinactivation of photosystem II in vivo under steady-state photosynthesis // Photosynth. Res., 1998. -V. 56. P. 1−13.
  140. Anderson M. D., Chen Z., Klessig D. F. Possible involvement of lipid peroxidation in salicylic acid-mediated induction of PR-1 gene expression // Phytochem., 1998. Vol. 47, № 4. — P. 555−566.
  141. Arnon D.L., Allen M.B., Whatley L.B. Photosynthesis by isolated chloroplasts. Genetic concept and comparison of free photochemical reactions // Biochim. Biophys. Acta, 1956. Vol. 20, № 2. — P. 449.
  142. Aro E.-M., Virgin I., Andersson B. // Photoinhibition of photosystem 33. Inactivation, protein damage and turnover. Biochim. Biophys. Acta, 1994. V. 1143. P 113−3 4
  143. Asada K. The water-water cycle in chloroplasts: scavenging of active oxygens and dissipation of excess photons // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol, 1999. Vol. 50. — P. 601−639.
  144. Asada K. The water-water cycle as alternative photon and electron sinks // Phil. Trans. R. Soc. Lond. B, 2000. Vol. 355. -P. 1419−1431.
  145. Backhausen J. E, Kitzmann C, Horton P, Scheibe R. Electron acceptors in isolated spinach chloroplasts. act hierarchically to, prevent over-reduction, and competition for electrons //Photosynth. Res, 2000. № 64, P. 1−13.
  146. Baier M, Dietz K.-J. Chloroplasts as source and target of cellular redox regulation: a discussion on chloroplast redox signals in the context of plant physiology // J. Exp. Bot, 2005, Vol. 56, № 416, P. 1449−1462.
  147. Bao Y., Williamson G., Mannervik B., Jemth P. Reduction of thymine hydroperoxide by phospholipid hydroperoxide glutathione peroxidase and glutathione transferases // FEBS Letters, 1997. Vol. 410, № 2−3. — P. 210 212.
  148. Barber M.J., Kay C.J. Superoxide production of molecular oxygen by assimilatory nitrate reductase.// Arch. Biochem. Biophys^ 1996. VoL 326, №. 2.-P. 227−232.
  149. Baudouin E., Charpenteau M., Ranjeva R., Ranty B. Involvement of active oxygen species in the regulation of a tobacco defence gene by phorbol ester // Plant Sci., 1999. Voh 142. — P. 67−72.
  150. Becana M., Moran J.F., Iturbe-Ormaetxe I. Iron-dependent oxygen free radical generation in plants subjected to environmental stress: toxicity and antioxidant protection // Plan! and Soil, 1998 VoL 201. — P. 137−147.
  151. Beckman K.B., Amest B.N. Oxidative decay of DNA // J. Biol. Chem., 1997. Vol. 272, № 32. -P. 19 633−19 636.
  152. Beffagna N., Lutzu I. Inhibition of catalase activity as an early response of Arabidopsis thaliana cultured cells to the phytotoxin fusicoccin // J. Exp. Bot., 2007, vol. 58, № 15−16. P! 4183−4194.
  153. Beligni M.V., Lamattina L. Nitric oxide protects against cellular damage produced by methylviologen herbicides in potato plants // Nitric Oxide, 1999. -Vol. 3,№ 3.-P. 199−208.
  154. Benavides M.P., Gallego S.M., Comba M.E., Tomaro M.L. Relationship between polyamines and paraquat toxicity in sunflower leaf discs // Plant GrowthRegul., 2000. Vol. 31. -P. 215−224.
  155. Berczi A., Mmller I.M. Redox enzymes in the plant plasma membrane and their possible roles //Plant, Cell and Environ., 2000. Vol. 23. — P. 1287−1302.
  156. Berlett BJS, Standtman EJR. Protein oxidation in aging, disease, and oxidative stress // J. Biol. Chem., 1997. Vol. 272, № 33. -P. 20 313−20 316.
  157. Biemelt S., Keetman U., Mock H.-P., Grimm B., Expression and activity of isoenzymes of superoxide dismutase in wheat roots in response to hypoxia and anoxia // Plant Cell Environ., 2000. Vol. 23. — P. 135−144.
  158. Bilang J., Macdonald H., King P.J., Sturm A. A soluble auxin-binding protein from Hyoscyamus muticus is a glutathione S-transferase // Plant Physiol^ 1993.-VoL 102-P 29−34,
  159. Bilang J., Sturm A. Cloning and characterization of glutathione S-transferase that can be photolabeled with 5-azido-indole-3-acetic acid // Plant Physiol., 1995. Vol. 109. — P. 253−260.
  160. Biological effects of low radiation doses Models, mechanisms and uncertainties. Report to the General assembley,. 48 Session of UNSCEAR. Vienna, April 12−16,1999.
  161. Blokhina O.B., Chirkova T.V., Fagerstedt K.V. Anoxic stress leads to hydrogen peroxide formation in plant cells // J. Exp. Bot., 2001. Vol. 52, № 359.-P. 1179−1190.
  162. Blumwald E., Aharon G. S., Lam B. C.-H. Early signal' transduction pathways in plant-pathogen interactions // Tr. Plant Sci., 1998. Vol. 3, № 9. -P. 342−346.
  163. Bowler C., Fluhr R. The role of calcium and activated oxygens as signals for controlling cross-tolerance // Tr. Plant Sci., 2000. Vol. 3, № 6. — P. 241−244.
  164. Burke J.I., Oliver M.J. Differential temperature sensitivity of pea superoxide dismutases//Plant Physiol, 1992.-Vol. 100.-P. 1595−1598.
  165. Burlakova E.B. Some specific effects of low-intensity irradiation. In Radiobiological disaster consequences of accidents at nuclear power station. 19. Nova Science Publishers^ New York^ 1995.
  166. Burner U., Obinger C. Transient-state and steady-state kinetics of the oxidation of aliphatic and aromatic thiols by horseradish peroxidase // FEBS Letters, 1997. Vol. 411. -P. 269−274.
  167. Calabrese E.J. Hormesis: changing view of the dose-response, a personal account of the history and current status // Mutat. Res., 2002. V. 511. P. 181 189.
  168. Calabrese E.J., Baldwin L.A. Radiation hormesis: its historical foundation as a biological hypothesis //BELLE newsletter. 1999a, V. 8. P. 2−37.
  169. Calabrese E.J., Baldwin L.A. Radiation hormesis: its historical foundations as a biological hypothesis // BELLE (Biological Effects of Low Level Exposures) newsletter, 19 996. V. 8. P. 47−66.
  170. Camp W.V., Montagu M.V., Inze D. H202 and NO: redox signals in disease resistance // Tr. Plant Science, 1998. Vol. 3, № 9. — P. 330−334.
  171. Carol R.J., Dolan L. The role of reactive oxygen species in cell growth: lessons from root hairs //J. Exp. Bot., 2006, Vol. 57, № 8. P. 1829−1834.
  172. Casano L.M., Martin M., Sabater B. Sensitivity of superoxide dismutase transcript levels and activities to oxidative stress is lower in mature-senescent than in young barley leaves // Plant Physiol., 1994. Vol. 106, № 3. — P. 10 631 069.
  173. Casano L.M., Zapata J.M., Martin M., Sabater B. Chlororespiration and poising of cyclic electron transport. Plastoquinone as electron transporter between thylakoid NADH dehydrogenase andperoxidase // J. Biol. Chem., 2000. -Vol. 275, №. 2. P. 942−948.
  174. Chaitanya K.V., Sundar D., Masilamani S., Ramachandra Reddy A. Variation in heat stress-induced antioxidant enzyme activities among three mulberry cultivars // Plant Growth Reg., 2002. Vol. 36, № 2. — P. 175−180.
  175. Chamnongpol S., WillekensH., Moeder W., Langebartels C., Sandermann Jr. H., Van Montagu M., Inze D., Van Camp W. Defense activation and enhanced pathogen tolerance induced by H202 in transgenic tobacco // PNAS, 1998. -Vol. 95.-P. 5818−5823.
  176. Charry J.M., Kvet R. Air Ions: physical and biological aspects. Boca Raton, CRC Press, Inc., FL. 198 p.
  177. Chen Z., Silva H., Klessig D.F. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid // Science, 1993. Vol. 262. -P. 1883−1886.
  178. Chen W. P., Li P.H. Chilling-induced Ca 2+ overload enhances production of active oxygen species in maize {Zea mays L.) cultured cells: the effect of abscisic acid treatment//Plant, Cell Environ., 2001. Vol. 24. — P. 791−800.
  179. Chemikova T., Robinson J.M., Lee E.H., Mulchi C.L. Ozone tolerance and antioxidant enzyme activity in soybean cultivars // Photosynth. Research, 2000. -Vol. 64.-P. 15−26.
  180. Conklin P.L. Vitamin C: a new pathway for an old antioxidant // Tr. Plant Sci., 1998. Vol. 3, № 9. — P. 329−330.
  181. Coppola S., Chibelli S. GSH extrusion and the mitochondrial pathway of apoptotic signaling //Biochem. Soc. Trans., 2000. Vol. 28. — P. 56−61.
  182. Corpas F.J., Palma J.M., Sandalio L.M., Lopes-Huertas F., Romero-Puertas M.C. Barroso J.B., del Rio L.A. Purification of catalase from pea leaf peroxisomes: identification of five different isoforms // Free Radic. Res., supplement 1999. P. 235−241.
  183. Corpas F. J, Barroso J. B, del Rio L.A. Peroxisomes as a source of reactive oxygen species and nitric oxide signal molecules in plant cells // Tr. Plant Sci, 2001. Vol. 8, № 4. — P. 145−150.
  184. Crompton N.E.A, Ozsahin M, Schweizer P, Larsson B, Luetolf U.M. Theory and practice of predictive assays in radiation therapy // Strahlenther Oncol, 1997. V. 173, Pr 58−67
  185. Crompton N.E.A. Programmed cellular response to ionizing radiation // Acta Oncologics 1998. V. 37, P. 129−142.
  186. Croteau D. L, Bohr V.A. Repair of oxidative damage to nuclear and mitochondrial DNA in mammalian cells // J. Biol. Chem, 1997. Vol. 272, № 41.-P. 25 409−25 412.
  187. Dat J. F, Lopez-Delgado H, Foyer C. H, Scott I. M: Parallel changes in TI202 production and catalase during thermotolerance induced by salicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings // Plant Physiol, 1998. Vol. 116. — P. 1351−1357.
  188. Dat J. F, Vandenabeele S, Vranova E, Van Montagu- Mi, Inze D, Van Breusegem F. Dual action of the active oxygen species during plant stress responses // CMLS, Cell. Mol. Life Sci, 2000. Vol. 57. — P. 779−795.
  189. Davies K.J.A. Protein damage and degradation by oxygen radicals. I. General aspects // J. Biol. Chem, 1987. Vol. 262, № 20. — P. 9895−9901.
  190. Davies K.J.A, Lin S. W, Pacifici R.E. Protein damage and degradation by oxygen radicals. TV. Degradation of denatured protein//J. Biol. Chem, 1987. -Vol. 262, № 20. -P. 9914−9920.
  191. Dean R. T, Fu S, Stocker R, Davies M.J. Biochemistry and pathology of radical-mediated protein oxidation // Biochem. J.^ 1997^ VoL 3.24: — P 1−18^
  192. Del Rio L.A., Pastori G.M., Palma J.M., Sandalio L.M., Sevilla F., Corpas F.J., Jimenez A., Lopez-Huertas E., Hernandez J.A. The activated oxygen role of peroxisomes in senescence // Plant Physiol., 1998. Vol. 116. — P. 11 951 200.
  193. Delledonne M., Zeier J., Marocco A., Lamb C. Signal interactions between nitric oxide and reactive, oxygen intermediates in the. plant hypersensitive disease resistance response // PNAS, 2001. Vol. 98, № 23. — P. 13 454−13 459.
  194. Desikan R., Hancock J.T., Coffey M.J., Neill S.J. Generation of active oxygen in elicited cells of Arabidopsis thaliana is mesiated by a NADPH oxidase-like enzymes // FEBS Lett., 1996. Vol. 382, P. 213−217.
  195. Desikan R., Neill S.J., Hancock J.T., Hydrogen peroxide-induced gene expression in Arabidopsis thaliana II Free Rad. Biol. Med., 2000. Vol. 28, № 5.-R 773−778.
  196. Desikan R., A.-H.-Mackerness S., Hancock J.T., Neil S.J. Regulation of the Arabidopsis transcriptome by oxidative stress // Plant Phisiol., 2001. Vol. 127.-P. 159−172.
  197. De Vita Jr Vt, Samuel H., Rosenberg SA. 1993. Cancer, principles and practice of oncology. 4th edn. Philadelphia: Lippincott Co.
  198. De Vos C.H.R., Kraak L.H., Bino R.J. Aging of tomato seeds involves glutathione oxidation// PhysioL Plants 1994, — VoL 91.-P. 131−139.
  199. Dixit V., Pandey V., Shyam R. Differential antioxidative responses to cadmium in roots and leaves of pea (Pisum sativum L. cv. Azad) // J. Exp. Bot., 200 L VoL 52, JMk358 — P. 1101−1109.
  200. Donahue J.L., Okpodu C.M., Cramer C.L., Grabau E.A., Alscher R.G. responses of antioxidants to paraquat in pea leaves // Plant Physiol., 1997. -Vol. 113-P. 249−257.
  201. Durnford D.G., Falkowski P.G. Chloroplast redox regulation of nuclear gene transcription during photoacclimation // Photosynth. Res., 1997. Vol. 53. -P. 229−241.
  202. Eckardt N.A. Oxylipin signaling in plant stress response // The Plant Cell, 2008, Vol. 20, P. 495−497.
  203. Edwards R^ Dixon DJP^ Walbot. V Plant, glutathione. S.-transferases: enzymes with multiple functions in sickness and’in health // Tr. Plant Sci., 2000. Vol. 5, № 5. — P. 193−198.
  204. Eidus L. Kh. Hypothesis regarding a membrane-associated mechanism of biological action due to low-dose ionizing radiation // RadiatEnviron. Biophys., 2000. -V. 39, P. 189−195.
  205. Filek M., Baczek R., Niewiadomska E., Pilipowicz M., Koitcielniak J. Effect of high temperature, treatment of Vicia faba roots on the oxidative stress enzymes in leaves //ActaBioch. Polonica., 1997. Vol. 44- № 2.-P. 315−322.
  206. Finkel T. Redox-dependent signal transduction // FEBS Letters, 2000. -Vol. 476. P. 52−54.
  207. Flury T., Wagner E., Kreuz K. An inducible glutathione S-transferase in soybean hypocotyl is localized in the apoplast // Plant Physiol., 1996. Vol. 112.-P. 1185−1190.
  208. Foyer C. H., Lopez-Delgado H., Dat J.F., Scott I.M. Hydrogen peroxide- and glutathione-associated mechanisms of acclimatory stress tolerance and signalling//Physiol. Plant., 1997. Vol. 100. — P. 241−254.
  209. Foyer C.H., Theodoulou F.L., Delrot S. The functions of inter- and intracellular glutathione transport systems in plants // Tr. Plant Sci, 2001. -Vol. 6, № 10.-P. 486−492.
  210. Foyer C.H., Noctor G. Redox sensing and signalling associated with reactive oxygen in chloroplasts, peroxisomes and mitochondria J J PhisioL Plant, 2003. — Vol. 119.-P. 355−364.
  211. Foyer C.N., Noctor G. Oxidant and antioxidant signalling in plants: a reevaluation of the concept of oxidative stress in a physiological context. Plant, Cell and Environment. Vol. 28, 2005. P. 1056−1071.
  212. Fridovich I. Superoxide radical and superoxide dismutases // Annu. Rev. Biochem., 1995. Vol. 64. — P. 97−112.
  213. Fa J, Huang B. Involvement of antioxidants, and lipid peroxidation in the. adaptation of two cool-season grasses to localized drought stress // Environ. Exp. Bot., 2001. Vol. 45. -P. 105−114.
  214. Galatro A., Simontacchi M., Puntarulo S. Free radical generation and antioxidant content in chloroplasts from soybean leaves exposed to ultraviolet-B //Physiol. Plant., 2001. Vol. 113. -P. 564−570.
  215. Gechev T., Gadjev I., Van Breusegem F., Inze D, Dukiandjiev S., Toneva V, Minkov L Hydrogen peroxide, protects tobacco from oxidative, stress by inducting a set of antioxidative enzymes // CMLS, Cell. Mol. Life Sci., 2002. -Vol. 59.-P. 708−714.
  216. Giannopolitis C.N., Ries S.K. Superoxide dismutases 1. Occurence in higher plants //Plant Physiol, 1977. -Vol. 59.-P. 309−314.
  217. Giles G. I, Tasker K. M, Jacob C. Hypothesis: the role of reactive sulfur species in oxidative stress // Free Rad. Biol: Med, 2001. Vol. 31, № 10. -P. 1279−1283
  218. Gray G. R, Boese S. R, Huner KP.A. A comparison of Tow temperature growth vs low temperature shifts to induce resistance to photoingibition in spinach (Spinacia oleracea). Physiol. Plant, 1994. — Vol. 90. — P. 560−566.
  219. Grene R. Oxidative stress and acclimation mechanisms in plants // The Arabidopsis Book (TAB), ISSN: 1543−8120, 2002. http://www.aspb.org/publications/arabidopsis/index.cfm.
  220. Guan L. M, Scandalios J.G. Hydrogen peroxide-mediated catalase gene expression in response to wounding // Free Rad. Biol. Med, 2000. Vol. 28, № 8.-P. 1182−1190.
  221. Gullner G, Dodge A.D. Effects of singlet oxygen generating- substances in the ascorbic acid and glutathione content in pea leaves // Plant Sci, 2000. -Vol. 154.-P. 127−133.
  222. Habig W. H, Pabst M. V, Jacobi W.B. Glutathione S-transferases // J. Biol. Cheni., 1974. VoL 249, — R 7130−7135.
  223. Hancock J, Desikan R, Harrison J, Bright J, Hooley R, Neill S. Doing the unexpected: proteins involved in hydrogen peroxide perception // J". Exp. Bot, 2006, Vol 57, № 8, P. 1711−1718.
  224. Harding S. A, Roberts D.M. Incompatible pathogen infection results in enhanced reactive oxygen and*, cell, death responses in transgenic tobacco expressing a hyperactive mutant calmodulin // Planta, 1998. Vol. 206. — P. 253−258.
  225. Havaux M. Carotenoids as membrane stabilizers in chloroplasts // Tr. Plant Sci, 1998. Vol. 3, № 4. -P. 147−151.
  226. Hegedts A, Erdei S, Horvath G. Comparative studies of H2O2 detoxifying enzymes in green and. greening, barley seedlings, under cadmium stress // Plant Sci, 2001. Vol. 160. — P. 1085−1093
  227. Henle E. S, Linn S. Formation, prevention, and repair of DNA damage by iron/hydrogen peroxide // J. Biol. Chem, 1997. Vol. 272, № 31. — P. 1 909 519 098.'
  228. Henmi T., Miyao M., Yamamoto Y. Release and reactive-oxygen-species-mediated damage of the oxygen-evolving complex subunits of PSII during photoinhibition // Plant Cell Physiol., 2004, Vol. 45, № 2, P. 243−250.
  229. Hernandez J.A., Jimenez A., Mulleniaux P.M., Sevilla F. Tolerance of pea (Pisum sativum L.) to long-term salt stress is associated with induction of antioxidant defenses // Plant Cell Environ., 2000,. VoL 23L — P 853−862
  230. Hernandez J.A., Ferrer M.A., Jimenez A., Barcelo A.R., Sevilla F. Antioxidant systems and 02 7H202 production in the apoplast of pea leaves. Its relation with salt-induced necrotic lesions in minor veins // Plant Physiol., 2001. -Vol. 127.-P. 817−831.
  231. Hernandez J.A., Almansa M.S. Short-term effects of salt stress on antioxidant systems and leaf water relations of pea leaves // Physiol. Plant., 2002. VoL 115, — 251—257.
  232. Hidalgo E., Ding H., Demple B. Redox signal transduction via iron-sulfur clusters in the SoxR transcription activator // TIBS, 1997. Vol. 22. — P. 207 210.
  233. Hideg E., Ogawa K., K61ai T., Hideg K. Singlet oxygen imaging in Arabidopsis thaliana leaves under photoinhibition by excess photosynthetically active radiation//Physiol. Plant, 2001. Vol. 112. — P. 10−14
  234. Hideg E., Kos P.B., Schreiber U. Imaging of NPQ and RQS- formation in tobacco leaves: heat inactivation of the water-water cycle prevents down-regulation of PSn // Plant Cell Physiol, 2008, Vol. 49, № 12, P. 1879−1886.
  235. Honda S.R. The salt respiration and phosphate contens of barley roots // JBIC, 1956. -V. 31, № 2. -P. 62−76.
  236. Horemans N, Foyer C. H, Asard H. Transport and action of ascorbate at the plant plasma membrane // Tr. Plant Sci, 2000. Vol. 3, № 6. — P. 263−267.
  237. Hu X, Zhang A, Zhang J, Jiang M. Abscisic acid is a key inducer of hydrogen peroxide production in leaves of maize plants exposed to water stress // Plant Cell PhysioL, 2006, VoL 47, JN®. llr P. 1484−1495.
  238. Huang C., He W., Guo J., Chang X., Su P., Zhang L. Increased sensivity to salt stress in an ascorbat-deficient Arabidopsis mutant // J. Exp. Bot., 2005, Vol. 56, № 422, P. 3041−3049.
  239. Huner N.P.A., Xquist G., Hurry V., Krol M., Falk S., Griffith M. Photosynthesis, photoinhibition and low temperature acclimation in cold tolerant plants //Photosynth. Res., 1993. Vol. 37. — P. 19−39.
  240. Huner N. P.A., Oquist G., Sarhan F. Energy balance and acclimation to light and cold // Trends Plants Sci., 1998. V.3, № 6. — P. 224 — 230.
  241. Ianelli M.A., Van Breusegem F., Van Montagu M., Inze D., Massacci A. Tolerance to low temperature and paraquat-mediated oxidative stress in two maize genotypes // J Exp BotT 1999 Vol 50T № 3.33. — P. 523−532
  242. Iavata J., Tanaka U. Glutathione reductases «positive» spectro-photometre assays // Colled. Cresh. Chem. Commun., 1977. Vol. 42. № 3. — P. 10 861 089.
  243. Ikishima T. Chromosomal responses to ionizing radiation reminiscent of an adaptive response in culture Chinese hamster cells. // Mutat. Res. 1987, V.180. P., 215−221.
  244. Irishimovich V-, Shapiro M. Glutathione redox potential modulated, by reactive oxygen species regulates translation of Rubisko large subunit in the chloroplasts. //J. Biol. Chem., 2000.-V. 275,№ 21.-P: 16 289−16 295.
  245. Iturbe-Ormaetxe I., Escuredo P.R., Arrese-Igor C., Becana M. Oxidative damage in Pea plants exposed to water deficit or paraquat // Plant Physiol., 1998.-V. 116.-P. 173−181.
  246. Jabs T. Reactive oxygen intermediates as mediators of programmed cell> death in plants and animals // Bio chem. Pharmacol,. 1999- VoL 57 r № 3 -P. 231−245.
  247. Jones A.M. Auxin-binding proteins // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1994. Vol. 45. — P. 393−420.
  248. Jones A. Does the plant mitochondrion integrate cellular stress and regulate programmed cell death? // Tr. Plant Sci., 2000. Vol. 5, № 5. — P. 225−230.
  249. Joo J.H., Bae Y.S., Lee J.S. Role of auxin-induced reactive oxygen species in root gravitropism// Plant Phisiol., 2001. Vol. 126. — P. 1055−1060.
  250. Jubany-Mari T., Munne-Bosch S., Lopez-Carbonell M., Alegre L. Hydrogen peroxide is involved in the acclimation of the. Mediterranean shrub,. Cistus albidus L., to summer drought // J. Exp. Bot., 2009, Vol. 60, № 1, P. 107−120.
  251. Jung J.-Y., Shin R., Schachtaman D.P. Ethylene mediates response and tolerance to potassium deprivation in Arabidopsis // The Plant Cell, 2009, Vol. 21, P. 607−621.
  252. Kass G.E., Orrenius S. Calcium signaling and cytotoxicity // Environ. Health Perspect., 1999. Vol. 107, № i. p. 25−35.
  253. Kasuga M^ Liu. Qi^ Miura. S,^ Yamaguchi-Shinozaki Shinozaki EL Improving plant drought, salt and freezing tolerance by gene transfer of a single stress-inducible transcription factor // Nature Biotech., 1999. Vol. 17. — P. 287−289.
  254. Kliebenstein D.J., Monde R.A., Last R.L. Superoxide dismutase in Arabidopsis: an eclectic enzyme family with disparate regulation and protein localization//Plant Physiol., 1998. Vol. 118, № 2. -P. 637−650.
  255. Kocsy G., Galiba G., Brunold C. Role of glutathione in adaptation and signalling during chilling and cold, acclimation in plants J J PhysioL Plants 200L -Vol. 113.-P. 158−164.
  256. Koppenol W. H. The basic chemistry of nitrogen monoxide and peroxynitrite // Free Rad. Biol. Med., 1998. Vol. 25, № 4/5. — P. 385−391.
  257. Kosenko E. A, Kaminsky Y. G, Stavrovskaya I. G, Sirota T. V, Kondrashova M.N. The stimulatory effect of negative air ions and hydrogen peroxide on the activity of superoxide dismutase // FEBS Letters, 1997. -Vol. 410.-P. 309−312.
  258. Krieger-Liszkay A, Trebst A. Tocopherol is the scavenger of singlet oxygen produced by the. triplet. states of chlorophyll in the. PSH reaction center // J Exp Bot, 2006, Vol. 57, № 8. P. 1829−1934.
  259. Kidk J. Concepts and direction of induced systemic resistance in plants and its application//Eur. J. Plant Pathol, 2001. Vol. 107 -P. 7−12.
  260. Kumar G. N, Knowles N.R. Oxidative stress results in increased sink for metabolic energy during aging and spouting of potato seed-tubers // Plant Physiol, 1996.-Vol. 112.-P. 1301−1313.
  261. Kurepa J, Herouart D, Van Montagu M, Inze D. Differential expression of Cu, Zn- and Fe-superoxide dismutase genes of tobacco during development, oxidative stress and hormonal treatments // Plant Cell Physiol, 1997. Vol. 38. -P. 463−470.
  262. Lamb C, Dixon R.A. The oxidative burst in plant disease resistance // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol, 1997. Vol. 48. -P. 251−275.
  263. Larkindale J, Knight M.R. Protection against heat stress-induced oxidative damage in Arabidopsis involves calcium, abscisic. acid, ethylene, and salicylic acid // Plant Physiol, 2002. Vol. 128. — P. 682−695.
  264. Lee B.-H, Won S.-H, Lee H.-S, Miyao M, Chung W.-I, Kim I.-J, Jo J. Expression of the chloroplast-localized small heat shock protein by oxidative stress in rice // Gene, 2000. Vol. 245. — P. 283−290.
  265. Lidon F. C, Loureiro A. S, Bilho E. A, Nobre P, Costa R. Photoinhibition in chilling stressed wheat and maize // Photosynthenica, 2001. V39, № 2. P. 161−166
  266. Liochev S. I, Fridovich I. On- the role of bicarbonate in peroxidations catalyzed by Cu, Zn superoxide dismutase // Free Rad. Biol. Med, 1999. Vol. 27, № 11/12. — P. 1444−1447.
  267. Loggini B, Scartazza A, Brugnoli E, Navari-Izzo F. Antioxidative defense system, pigment composition, and photosynthetic efficiency in two wheat cultivars subjected to drought // Plant Physiol, 1999. Vol. 119. — P. 10 911 099.
  268. Lopez-Delgado H, Dat J. F, Foyer C. H, Scott I.M. Induction of thermotoleran. ce in potato microplants by acetylsalicylic. acid. and. H2O2 // J-Exp. Bot, 1998. Vol. 49, № 321. — P. 713−720.
  269. Lowry O. N, Rosenbrough N. J, Tarr A. L, Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem, 1951. Vol. 193, № l.-P. 265−275.
  270. Lu C, Zhang J. Effects of water stress on photosystem II photochemistry and its thermostability in wheat plants // J. Exp. Bot, 1999. Vol. 50, № 336. -P-1199−12.06.
  271. Mackenzie S, Mcintosh L. Higher plant mitochondria // The Plant J, 1999. -Vol. 11.-P. 571−595.
  272. Mahalingam R, Fedoroff N. Stress response, cell death and signalling: the many faces of reactive oxygen species // Phisiol. Plant, 2003. Vol. 119. — P. 56−68.
  273. Marrs K.A. The function and regulation of glutathione S-transferase in plants // Annu Rev. Plant PhysioL PlantMol BiolT 1996 VoL 47. — P. 127 158.
  274. Matsuda Y, Okuda T, Sagisaka S. Ragulation of protein synthesis by hydrogen peroxide in crowns of winter-wheat // Biosci. Biotech. Biochem, 1994, V. 58, P. 906−909.
  275. Mehdy M.C. Active oxygen species in plant defense against pathogens // Plant Physiol, 1994. Vol. 105, № 2. — P. 467−472.
  276. Melis A Photosystem II damage, and repair cycle, in chloroplasts:. what modulates the rate of photo damage in v/vo? // Trends Plants Sci, 1999. V. 2, № 2.-P. 130−135.
  277. Miao Y, Lv D, Wang P, Wang X.-C, Chen J, Miao C" Song C.-P. An Arabidopsis glutathione peroxidase functions as both a redox transducer and a scavenging in abscisic acid and drought stress responses // The Plant Cell, 2006, Vol. 18, P. 2749−2766.
  278. Mitlmfer A, Daxberger A, Fromhold-Treu D, Ebel J. Involvement of an NAD (P)H oxidase in the elicitor-inducible oxidative burst of soybean // Phytochem, 1997. Vol. 45, № 6. — P. 1101−1107.
  279. Morel Y, Barouki R. Repression of gene expression by oxidative stress // Biochem. J, 1999. Vol. 342. — P. 481−496.
  280. Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance // Tr. Plant Sci, 2002. Vol. 7, № 9. — P. 405−410.
  281. Mtnller I.M. Plant mitochondria and oxidative stress: electron transport, NADPH turnover and metabolism of reactive oxygen species // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol, 2001. Vol. 52. -P. 561−591.
  282. Munnik T, Irvine R. F, Musgrave A. Phospholipid signaling in plants // Biochim. Biophys. Acta, 1998. Vol. 1389. — P. 222−272.
  283. Murphy T. M, Auh C.-K. The superoxide synthases of plasma membrane preparation from cultured rose cells // Plant Physiol, 1996. Vol. 110. — P. 621−629.
  284. Neil S.J., Desikan R., Clarke A., Hurst R.D., Hancock J.T. Hydrogen peroxide and nitric oxide as signalling molecules in plants // J. Exp. Bot., 2002. -Vol. 53, № 372. -P. 1237−1247.
  285. Noctor G. Foyer C.H. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1998. Vol. 49. -P 249−279.
  286. Noctor G., Arisi A.-C.M., Jouanin L., Kunert K.J., Rennenberg H., Foyer C.H. Glutathione: biosynthesis, metabolism and relationship to stress tolerance explored in transformed plans // J. Exp. Bot., 1998. Vol. 49, № 321. — P. 623 647.
  287. Noctor G., Arisi A.-C.M., Jouanin L., Foyer C.H. Photorespiratory glicine enchanses glutathione accumulation in both the chloroplastic and cytosolic compartments 7/X Exp. Bot, 1999.- V.50.-R. 1157−1167.
  288. Noctor G., Veljovic-Jovanovic S., Foyer C.H. Peroxide processing in photosynthesis: antioxidant coupling and redox signalling // Phil. Trans. R. Soc. Lond. B, 2000. Vol 355. — P. 1465−1475.
  289. Noctor G., Gomez L., Vanacker H., Foyer C.H. Interaction between biosynthesis, compartmentation and, transport in the control of glutathione homeostasis and signalling // J. Exp. Bot., 2002. Vol 53, № 372: — P. 12 831 304.
  290. Nurnberger T., Scheel D. Signal transmission in the plant immune response // Tr. Plant Sei., 2001. Vol. 6, № 8. -P. 372−379.
  291. Oberbaum M., Kambar J. Hormesis: Dose-dependent reverse effect of low and’very low doses. // Ultra High Dilution. Physiology and Physics. /Ed. P. S. Endler, J. Shulte. Boston, Dordrecht, London: Kluwer Academic, 1994. 321 p.
  292. Osmond C. B, Grace S.C. Perspective on photoinhibition and photorespiration in the field: quintessential inefficiencies of the. light and dark, reactions of photosynthesis? //J. Exp. Bot, 1995. V. 46, P. 1351−1362.
  293. Palatnik. J. F, Valle E. M, Carrillo N. Oxidative stress causes ferredoxin-NADP+ reductase solubilization from the thylakoid membranes in methyl viologen-treated plants // Plant Physiol, 1997. Vol. 115, № 4. — P. 17 211 727.
  294. Palma J. M, Lopez-Huertas E, Corpas F. J, Sandalio L. M, Gomez M, del Rio L.A. Peroxisomal manganese superoxide dismutase: Purification and properties of the isozyme from pea leaves // Physiol. Plant, 1998. Vol. 104. -P, 720−726.
  295. Papadakis A. K, Roubelakis-Angelakis K.A. The generation of active oxygen species differs in tobacco and grapevine mesophyll protoplasts // Plant Physiol, 1999.-Vol. 121.-P. 197−206.
  296. Pastori G. M, Mullineaux P.M., Foyer C.H. Post-transcriptional regulation prevents accumulation of glutathione reductase protein and activity in the bundle sheath cells of maize // Plant Physiol, 2000. Vol. 122. — P. 667−675.
  297. Pastori G. M, Foyer C.H. Common components, networks, and pathways of cross-tolerance to stress. The central role of «redox» and abscisic acid-mediated controls //Plant Physiol., 2002. Vol. 129. — P. 460−468.
  298. Paul M. J, Foyer C.H. Sink regulation of photosynthesis // J. Exp. Bot, 2001. Vol. 52, № 360. — P. 1383−1400.
  299. Petkau A. Radiation affection of model phospholipids membranes. // Acta PhysioL Scand^ 1980. V,. 492. P. 81−90,.
  300. Petkau A, Chelak W.S. Radioprotective effect of SOD on model phospholipid membranes //Biochem. Biophys. Acta, 1976. V. 433, № 3. P. 111 127.
  301. Pfannschmidt T, Allen J. F, Oelmtller R. Principles of redox control in photosynthesis gena expression II Physiol. Plant,. 2D0.li. Vol 112. — P. l-9
  302. Piquery L, Huault C, Billard J.-P. Ascorbate-glutathione cycle and H2O2 detoxification in elongating leaf bases of ryegrass: effect of inhibition of glutathione reductase activity on foliar regrowth // Physiol. Plant, 2002. -Vol 116.-P. 406−415.
  303. Polidoros A. N, Scandalios J.G. Role of hydrogen peroxide and different classes of antioxidants in the regulation of catalase and glutathione S-transferase gene expression in maize. (Zea mays L) // Physiol Plants 1999. -Vol 106.- P. 112−120.
  304. Polie A. Dissecting the superoxide dismutase-ascorbate-glutathione-pathway in chloroplasts by metabolic modeling. Computer simulations as a step towards flux analysis //Plant Physiol., 2001. Vol. 126. — P. 445−462.
  305. Potters G., Horemans N., Cauberg R.J., Asard. H. Ascorbate and dehydroascorbate influence cell cycle progression in a tobacco cell suspension // Plant Physiol., 2000. Vol. 124. — P. 17−20. '
  306. Pou S., Rosen G.M. Generation of thiyl radicals by nitric oxide: a spin trapping study 7/X Chem Soc^ Perkin Trims.2^ 199&.-R. 1507−15.12.
  307. Prasad T.K., Anderson M.D., Martin B.A., Stewart C.R. Evidence for chilling-induced oxidative stress in maize seedlings and a regulatory role for hydrogen peroxide // Plant Cell- 1994. V. 6, P. 65−74.
  308. Prasad T.K., Anderson M. Dl, Stewart C.R. Localization and characterization of peroxidases in mitochondria of chilling-acclimated maize seedlings // Plant Physiol., 1995. V. 108, P. 1597−1605.
  309. Price A.H., Taylor A., Ripley S, J, Griffiths-A, Trewavas- A. J, Knight M.R. Oxidative signals in tobacco increase cytosolic calcium // The Plant Cell, 1994. -Vol. 6.-P. 1301−1310.
  310. Purvis A.C., Shewfelt R.L., Gegogeine J.W. Superoxide production by mitochondria isolated from green bell pepper fruit-// Physiol. Plant., 1995. -Vol. 94.-P. 743−749.
  311. Robertson A. D, Grutsch I.F. Biphasic responses, quantal signal and cellular behavior. J. Theor. Biol, 1987, V. 25, № 1. P. 41−47
  312. Cadmium causes the oxidative modification of proteins in pea plants // Plant, Cell Environ, 2002. Vol. 25. — P. 677−686.
  313. Rubinstein B. Regulation of cell death in flower petals // Plant Mol. Biol, 2000. Vol. 44. — P. 303−318.
  314. Ryter S. W, Tyrrell R.M. Singlet molecular oxygen C^)'- a possible effector of eukaryotic gene expression // Free Rad. Biol. Med, 1998. Vol. 24, № 9. -P. 1520−1534.
  315. Sagi M, Fluhr R. Superoxide production by plant homologuen of the gp91phox NADPH oxidase. Modulation of activity by calcium and by tobacco mosaic virus infection//Plant Phisiol, 2001.-Vol. 126.-P. 1281−1290.
  316. Sagripanti J.-L, Kraemer K.H. Site-specific oxidative DNA damage at polyguanosines produced by copper plus hydrogen peroxide // J. Biol. Chem, 1989. Vol. 264, № 3. — P. 1729−1734.
  317. Sairam R. K, Srivastava G.C. Induction of oxidative stress and antioxidant activity by hydrogen peroxide treatment in tolerant and susceptible wheat genotypes // BioL Plant, 2000. VoL. 43, №.3. — P. 381−386.
  318. Salvador M. L, Klein U. The redox state regulates RNA degradation in the chloroplast of Chlamidomonas reinhardtii I I Plant Phisiol, 1999. Vol. 121. — P. 1367−1374.
  319. Samuilov V. D, Oleskin A. V, Lagunova E.M. Programmed cell death // Biochem. (Mosc.), 2000. Vol. 65, № 8. — P. 873−887.
  320. Sang Y, Cui D, Wang X. Phospholipase D and phosphatidic acid-mediated generation of superoxide in Arabidopsis J J Plant PhisioL, 2001. Vol 126. -P. 1449−1458.
  321. Scandalios J.G. Molecular genetics of superoxide dismutases in plants // Oxidative stress and the molecular biology of antioxidant defenses / ed. J.G. Scandalios. New York: Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1997. — P. 527 568.
  322. Schafer F. Q, Buettner G.R. Redox environment of the cell as viewed through the redox state of the glutathione, disulfide/glutathione couple. // Free Rad. Biol. Med, 2001. Vol. 30, № 11. -P. 1191−1212.
  323. Scioli J. R, Zilinskas B.A. Cloning and characterization of a cDNA encoding the chloroplastic copper/zinc superoxide dismutase from pea // PNAS, 1988. -Vol. 85.-P. 7661−7665.
  324. Shalata A, Neumann P.M., Exogenous ascorbic acid (vitamin C) increases resistance to salt stress and reduced lipid peroxidation // J. Exp. Bot, 2001. -VoL52yJN°364 P2207−221L
  325. Shicanai T, Takeda T, Yamauchi H, Sano S, Tomizava K.-I, Yokota A, Shigeoka S. Inhibition of ascorbate peroxidase under oxidative stress in tobaccohaving bacterial catalase in chloroplasts I IFEBS Letters, 1998. Vol. 428. — P. 47−51.
  326. Shinozaki K, Yamaguchi-Shinozaki K. Gene expression and signal transduction in water-stress response // Plant Physiol., 1997. Vol. 115. — P. 327−334.
  327. Sies HL Glutathione, and. its role. in. cellular functions // Free. Rad. Biol. Med., 1999. Vol 27, № 9/10. — P. 916−921.
  328. Someisalo S^. Kraiisa G.H. Effects of feezing anAsubsequenllightstress on photosynthesis of spinach leaves // Plant Physiol Biochem, 1990. Vol 28. -P. 467−475.
  329. Soyka F., Edmonds A. The Ion effect. Bantam, New York, 1978. 235 p.
  330. Standtman E.R. Oxidation of free amino acids and amino acid residues in proteins by radiolysis and by metal-catalyzed reactions //Annu. Rev. Biochem., 1993. Vol 62. — P. 797−821.
  331. Stevens R.G., Creissen G.P., Mullineaux P.M. Cloning and characterisation of a cytosolic glutathione reductase cDNA from pea (Pisum sativum L.) and its expression in response to stress // Plant Mol. Biol, 1997. Vol 35. — P. 641 654.
  332. Stnhr C., Stremlau S. Formation and possible roles of nitric oxide in plant roots // J. Exp. Bot., 2006, Vol 57, № 3, P. 463−470.
  333. Sun Y., Oberley L.W. Redox regulation of transcriptional activators // Free Rad. BioL Med^ 1996. Vol 21^ J^.3. — P335−348.
  334. Surpin M., Larkin R.M., Chory J. Signal transduction between the chloroplast and the nucleus // The Plant Cell, suppl. 2002. P. 327−338.
  335. Suzuki Y. J, Forman H. J, Sevanian A. Oxidants as stimulators of signal transduction // Free Rad. Biol. Med, 1997. Vol. 22, № ½. — P. 269−285.
  336. Tang Y, Chevone B. I, Hess J.L. Ozone: responsive proteins in a tolerant and sensitive clone of white clover (Trifolhim repens) H Environ. Poll, 1999. -Vol. 104.-P. 89−98.
  337. Tausz M, JLircelj H, Grill D. The glutathione system as a stress marker in plant ecophysiology: is a stress-response concept valid? // J. Exp. Bot, 2004. VoL 1955−1962,
  338. Teicher H. B, Scheller H.V. The NAD (P)H dehydrogenase in barley thylakoids is photoactivatable and uses NADPH as well as NADH // Plant Physiol, 1998. -V. 117. P. 525−532.
  339. Thordal-Christensen H, Zhang Z, Wei Y, Collinge D.B. Subcellular localization of H202 in plants. H202 accumulation in papillae and hypersensitive response during the barley-powdery mildew interaction // The Plant J^ 1997,-Vol. ll^JNoA -P" 1187−1194,.
  340. Tjus S. E, Scheller H. V, Andersson B, Moller B.L. Active oxygen produced during selective excitation of Photosystem I is damaging not only to Photosystem I but also to Photosystem II // Plant Physiol, 2001. V. 125. — P. 2007−2015.
  341. Tsang E. W, Bowler G, Herouart D, Van Camp W, Villarroel R, Genetello C, Van Montagu M, Inze D. Differential regulation-of superoxide dismutases in plants exposed to environmental stress JJ The. Plant Cell^ 199 L-VoL 3.- P 783−792.
  342. Ulmasov T, Ohmiya A, Hagen G, Guilfoyle T. The soybean GH2/4 gene that encodes a glutathione S-transferase has a promoter that is activated by a wide range of chemical agents //Plant Physiol, 1995. Vol 108. -P: 919−927.
  343. Van Breusegem F, Vranova E, Dat J, Inze D: The role of oxygen species in plant signal transduction//Plant Sci, 2001. Vol 161. — P. 405−414.
  344. Vranova E, Inze D, Van Breusegem F. Signal- transduction during- oxidative stress //J. Exp. Bot, 2002. Vol 53, № 372. — P. 1227−1236.
  345. Vermaas W.F.J. Molecular-biological approaches to analyze photosystem II structure and function // Ann. Reviews Plant Physiol. Plant Mol. Biol, 1993. V. 44, P. 457−481.
  346. Wang C, Jarlfors U, Hildenbrand D.F. Regulation and subcellular localization of auxin-induced lipoxygenases // Plant Sci, 1999. Vol. 148. -P. 147−153.
  347. Wang W, Vinocur B, Altaian A. Plant responses to drought, salinity and extreme temperatures: toward genetic, engineering for stress tolerance.// Planta, 2003.-Vol. 218.-P. 1−14.
  348. Warm E, Laties G.G. Quantification of hydrogen peroxide in plant extracts by the chemiluminescence reaction with luminol // Phytochemistry, 1982. -Vol. 21, P 827−831.
  349. Weber H, Chetelat A, Reymond P, Farmer E.E. Selective and powerful stress gene expression in Arabidopsis in response to malondialdehyde // The PlantX, 2.004 Vol.3.4,. — P. 8.77−888.
  350. Wen F, Xing D, Zhang L. Hydrogen peroxide is involved in high blue light-induced chloroplast avoidance movements in Arabidopsis // J. Exp. Bot, 2008, Vol. 59, № 10, P. 2891−2901.
  351. Wendehenne D, Pugin A, Klessig D. F, DumerJ. Nitric oxide: comparative synthesis and signaling in animal and plant cells // Tr. Plant Science, 2001. -Vol. 6, № 4.-P. 177−183.
  352. Whetten Setoff R. Ligmn biosynthesis 1J Plant Cell, 1995. — V. 7. -P. 1001−1013.
  353. White D. A, Zilinscas B.A. Nucleotide sequence of a complementary DNA encoding pea cytozolic copper/zinc superoxide dismutase // Plant Physiol, 1991. Vol. 96. -P. 1391−1392.
  354. Willekens H, ChamnongpolS, Davey M, Schraudner M, Langebartels C, Van Montagu- M, Inze D, Van Camp W. Catalase is a sink for H202 and' is indispensable for stress, defence, in C3. plants.// The. EMB, Q J., 1997. Vol. 16, № 16.-P. 4806−4816.
  355. Wojtaszek P. Oxidative burst: an early plant response to pathogen infection //Biochem. J., 1997. Vol. 322. -P. 681−692.
  356. Wolucka B. A, Goossens A, Inze D. Methyl jasmonate stimulates the de novo biosynthesis of vitamin C in plant cell suspension // J. Exp. Bot, 2005, Vol. 56, № 419, P. 2527−2538.
  357. Xiang C, Miao Z.-H, Lam E. Coordinated activation of as-1-type elements and a tobacco glutathione S-transferase gene by auxins, salicylic acid, methyl-jasmonate and hydrogen peroxide // PlantMol Biol, 1996. Vol. 32. — P. 415 426,
  358. Xiang C, Oliver D.J. Glutathione metabolic genes coordinately respond to heavy metals and jasmonic acid in Arabidopsis // The Plant Cell, 1998. Vol. 10.-P. 1539−1550.
  359. Xiang C, Werner B. L, Christensen E. M, Oliver D.J. The biological functions of glutathione revisited in Arabidopsis transgenic plants with altered glutathione levels //Plant Phisiol, 2001. Vol. 126. — P. 564−574.
  360. Xiong. L, Shumaker K.S.,. Zhu. J.-EL Cell signalling, during cold, drought, and salt // The Plant Cell, suppl. 2002. P. 165−183
  361. Yamaguchi T, Tanabe S, Minami E, Shibuya N. Activation of phospholipase D induced by hydrogen peroxide in suspension-cultured Rice Cells //Plant Cell Physiol, 2004, Vol 45, № 9, P. 1261−1270.
  362. Ye B,' Gressel J. Transient, oxidant-induced antioxidant transcript and enzyme levels correlate with greater oxidant-resistance in paraquat-resistant Conyza bonariensis // Planta^2000. Vol. 21L. — P 5 0.-6.L.
  363. Yin D, Kuczera K, Squier T.C. The sensitivity of carboxyl-terminal methionines in calmodulin isoforms to oxidation by H202 modulates the ability to activate the plasma membrane Ca-ATPase // Chem. Res. Toxicol, 2000. -Vol. 13, № 2.-P. 103−110.
  364. Yoshida k, Terashima I, Noguchi K. Distinct roles of the cytochrome pathway and alternative, oxidase in leaf photosynthesis // Plant Cell PhysioL, 2006, Vol. 47, № 1, P. 22−31.
  365. Young T. E, Gallie D.R. Programmed cell death during endosperm development//PlantMol. Biol, 2000. Vol. 44. -P. 283−301.
  366. Zhao R, Lind J, Merenyi G, Eriksen T.E. Significance of the intramolecular transformation of glutathione thiyl radicals to 2-aminoalkyl radical. Thermochemical and biological implications // J. Chem. Soc, Perkin Trans. 2, 1997. P. 569−574.
  367. Zhang N, Portis Jr. A.R. Mechanisms of light regulation of Rubisco: A specific role for the larger Rubisco activase isoform involving reductive activation by thioredoxin-f// Plant Biol, 1999. Vol. 96, № 16. — P. 94 389 443.
  368. Zhang L, Paakkarienen V, Van Wijk K. J, Aro E.M. Biogenesis of the chloroplast-encoded D1 protein: regulation of translation elongation, insertion, and assembly into pkotosystem II // Plant Cell, 2.000. Vol. 12. — P. 17 691 781.
  369. Zhou W, Leul M. Uniconasole-induced tolerance of rape plants to heat stress in relation to changes in hormonal levels, enzyme activities and lipid peroxidation//Plant Growth Regul, 1999. Vol. 27. — P. 99−104.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!