Сомаклональная изменчивость растений и возможности ее практического использования: На примере кукурузы

Список литературы

1. Бабаева С.А., Петрова Т. Ф., Гапоненко А. К. Полиплоидия и политения культивируемых in vitro клеток злаков // Генетика, 1995, т. 31, с. 678−683.
2. Бабаева С.А., Гапоненко А. К., Петрова Т. Ф. Цитогенетический анализ IB-хромосомы сомаклона мягкой пшеницы, измененного по компонентному составу глиадинов // Докл. АН СССР, 1991, т. 320, с. 1251−1253.
3. Белянская С.Л., Шамина З. Б., Кучеренко Л. А. Морфогенез в- резистентных клонах риса // Физиология растений, 1994, т.41, с.573−577.
4. Богу нова В. Г. Физиологическая и генетическая регуляция морфогенеза и регенерации кукурузы in vitro. Диссерт. на соиск. ученой степени канд. биол. наук, Москва, 1993.
5. Бутенко Р.Г. Экспериментальный морфогенез и дифференциация в культуре клеток растений. XXXV Тимирязевские чтения, М.: Наука, 1975, с. 45−48
6. Внучкова В.А., Неттевич Э. Д., Чеботарева Т. М., Хитрова Л. М., Молчанова JI.M. Использование методов in vitro в селекции? ячменя на устойчивость к токсичности кислых почв // Доклады ВАСХНИЛ, 1989, № 7, с.2−5.
7. Внучкова В.А., Хитрова Л. М., Аш О.А., Чеботарева Т. М. j Получение растений-регенерантов зерновых культур наIселективных средах. Тезисы Междунар. конф. Биологияткультивируемых клеток и биотехнология, Новосибирск, 1988, | с. 183.
8. Гамбург К.З. Биохимия ауксина и его действие на клетки растений, Новосибирск: Наука, 1976, 278 с.
9. Гапоненко А.К., Петрова Т. Ф., Искаков А. А., Созинов А.А.j
10. Цитогенетика культивируемых in vitro соматических клеток ирастений-регенерантов злаков. Сообщение 1. Hordeum vulgare L.
11. Генетика, 1987, т. 23, с. 2036−2046. • 319т
12. Гаионенко А.К., Шаяхметов И. Ф., Бабаева С. А., Охрименко Г. П. Анализ изоферментного состава эстеразы, АДГ, ГДГ и ГОТ сомаклонов твердой и мягкой пшеницы // Генетика, 1993, т. 29, с. 323−328.
13. Гладков Е.А., Долгих Ю. И., Бирюков В.В: Отбор солеустойчивых газонных трав с помощью методов биотехнологии // Биотехнология, 2003, № 5, 380−385.
14. Гладков Е.А., Гладкова О. Н., Долгих Ю. И., Бирюков В. В. Получение газонных трав, толерантных к солям меди. Матер. Междун. конф. Стратегия адаптивной селекции полевых культур в связи с глобальным изменением климата, Саратов, 2004, с. 310 314.
15. Гостимский С.А., Багрова A.M., Ежова Т. А. Обнаружение и цитогенетический анализ изменчивости, возникающей при регенерации растений из культуры тканей посевного гороха // Докл. АН СССР, 1985, т. 283, с. 1007−1011.
16. Гостимский С.А. Генетическая изменчивость клеток растений при культивировании // Успехи совр. генетики, вып. 14, М: Наука, 1987, с. 48−63.
17. Генкель П.А. Физиология жаро- и засухоустойчивости. М., Наука, 1982, 280 с.
18. Губарь Е.К., Кунах В. Л. Кариотипическая изменчивость культивируемых клеток скерды (Crepis capillaries L. Wallr) // Генетика, 1992, т.28, с. 51−61.
19. Денебаева М.Г., Бишимбаева Н. К. Цитоанатомическое изучениетдействия 2,4-Д на- состав клеточных популяций рыхлогоIэмбриогенного каллуса- ячменя // Биотехнология. Теория- иj практика, 2001, № 3−4, с. 54−60.
20. Денисова Э.В., Мазяркина Т. В. Изменчивость по содержанию жирных кислот и глюкозинолатов в линиях из сомаклонов? ярового рапса (Brassica napus L.). Тезисы докл. VII межд. конф. т
21. Биология клеток: растений in vitro, биотехнология- и сохранение генофонда, Москва, 1997, с. 2131
22. Долгих Ю.И., Шамина З. Б. Генетическая изменчивость в популяции клеток женьшеня // Генетика, 1986, т. 22, с. 2820−2824.
23. Дридзе И.Л., Хадеева Н. В., Майсурян А. Н. Характеристика ш регенерантов табака, устойчивых к воздействию стрессовых:факторов II Физиология растений, 1992, т. 39, с.1027−1033.
24. Ежова Т.А., Тихвинская Н. С., Багрова A.M., Васильев И. Р., Маторин Д. Н., Гостимский С. А. Получение толерантных к гербицидам форм гороха методом селекции in vitro // Доклады АН СССР, 1990, т.310, № 4, с.987−990.
25. Ежова Т.А., Багрова A.M., Хартина Г. А., Гостимский С.А.
26. Цитогенетический? анализ длительно культивируемых каллусов и1.321тполученных нз них регенерантов гороха (Pisum sativum L.)¦// Цитология и генетика, 1988, т. 22, с. 22−26.
27. Забродина М. В-, Хавкин Э. Е. Органоспецифичные спектры эстераз у проростков кукурузы // Докл. АН СССР, 1992, т. 323, с. 988−991.
28. Загорска Н.А., Шамина З. Б., Бутенко Р. Г. Изучение растений-регенерантов, полученных в культуре тканей табака // Генетика, 1971, т. 7, с. 23−35.
29. Зауралов О.А., Лукаткин А. С. Тканевые и клеточные аспекты холодоустойчивости и холодового повреждения теплолюбивых растений // Успехи современной биологии, 1996, т. 116, вып.4, с.418−431.
30. Захарин А.А. О некоторых особенностях солевого обмена гликофитов при засолении среды // Агрохимия, 1980, № 8, с. 139 146.
31. Игнатова С.А., Белоусов А. А., Сидоренко Л. В. Генотипическая специфичность морфогенетических процессов в культуре соматических тканей кукурузы // Цитология и генетика, 1993, т. 27, с. 39−44.
32. Исаева Н.А., Бородько А. В. Изучение морфологической изменчивости в растениях-регенерантах ячменя // Цитология и генетика, 1988, т. 22, с. 27−31.
33. Искаков А.Р. Селекционная ценность растений ячменя, регенерированных из культуры соматических тканей- Матер. Республиканской конф- Проблемы теоретической? и прикладной генетики в Казахстане, Алма-Ата, 1990, с.111—115.
34. Карабаев М.К., Джардемалиев Ж. К. Культивируемые клетки пшеницы и кукурузы морфогенез и устойчивость // Физиологияj растений, 1994, т. 41, с. 807−814:
35. Карабаев М.К., Сидоренко О. И., Майчекина P.M., Кошанова
36. К.Ш., Ушарова Г. П. Первичные процессы фотосинтеза у сомаклональных вариантов озимой пшеницы // Изв. АН КазССР, 1. Щсер. биол., 1990, № 5, с. 27−30.
37. Керимов Ф., Кузнецов? Вл.В., Шамина- З. Б. Организменный и клеточный уровни солеустойчивости? двух сортов хлопчатника // Физиология растений, 1993, т.40, с.128−132.
38. Козырева О.Г., Дунаева С. Е. Генетика регенерации в культуре in т vitro злаков // Генетика, 1994, т. 30, с. 1432−1440.
39. Козыренко М.М., Артюкова Е. В., Лауве Л. С., Журавлев Ю. Н., Реунова Г. Д. Генетическая- изменчивость каллусных линий? женьшеня Panax ginseng 11 Биотехнология, 2001, № 1, c.19−26.
40. Кокаева З.Г., Боброва B.K., Петрова Т. В., Гостимский С.А.,
41. Троицкий А.В. Генетический полиморфизм сортов, линий и мутантов гороха по данным RAPD-анализа // Генетика, 1998, т. 34, с. 771−777.j1.323
42. Кокаева З.Г., Боброва В. К., Вальехо-Роман К.М., Гостимский С. А., Троицкий АВ. RAPD-аиализ сомаклональной и межсортовой изменчивости гороха // Докл. Акад. Наук., 1997, т. 355, с. 134−136.•1
43. Константинов Ю.М., Ривкин М. И. Возможный свободнорадикальный механизм возникновения сомаклональной изменчивост у растений- Матер. VII Всес. Сими. Молекулярныеj механизмы генетических процессов, М: Наука, 1991, с. 127−130-
44. Копертех Л.Г., Бутенко P.F. Нативные фитогормоны в эксплантах пшеницы в связи соспособностью к морфогенезу in vitro // Физиология растений, 1995, т. 42, с. 555−559.
45. Костюк А.Н., Остаплюк А. Н., Левенко Б. А. Ответная реакция растений на солевой стресс // Физиология и биохимия культурных растений, 1994, т.26, с.525−544.
46. Кучеренко Л.А. Индуцированный морфогенез в культуре тканей риса и его использование для создания исходного селекционногоматериала: В кн. Культура клеток растений и биотехнология, М: Наука, 1986, с. 211−213.
47. Кучеренко JI.A. Каллусогенез, выход и характеристика регенерирующих растений риса в культуре тканей в зависимости от гормонального состава индукционной среды // Докл. РАСХН, 1993, № 4, с. 3−6.
48. Лутова Л.А., Левашина Е. А., Бондаренко Л. В., Байрамова Н. Л., Андронова Е. В., Инге-Вечтомов С.Г. Мутанты высших растений по биосинтезу стеринов // Генетика, 1992, т.28, с. 129−137.
49. Лутова Л.А., Проворов Н. А., Тиходеев О.Н-, Тихонович И. А., Ходжайова Л. Т., Шишкова С. О. Генетика развития растений (ред. Инге-Вечтомов С.Г.). С.-Петербург: Наука, 2000, 539 с.
50. Марьяхина И.Я., Бутенко Р. Г. Соматическая редукция в культуре тканей капусты // Цитология и генетика, 1974, т. 8, с. 267−269.
51. Мезенцева О.Ю. Использование тканевых и клеточных культур в селекции на- устойчивость к фитопатогенам // Селекция и- семеноводство, 1990- с.59−62.
52. Михайлова-Крумова А.Б., Гаврилюк И. П., Азаркович М. И., Бутенко Р. Г. Исследование сомаклональных- вариаций белков семян гороха // Физиология растений- 1991, т. 38, с. 521−529.
53. Молотковский F.X. Явление полярности и смещения- пола у кукурузы // Докл. АН СССР, 1957, т. 114, с. 434−437.
54. Никифирова И.Д., Чернов В. А., Швидченко В. К., Бутенко Р. Г. Рост и морфогенез клеток яровых пшениц в стрессовых условиях и отбор устойчивых вариантов. Тезисы Междунар- конф. Билогия культивируемых клеток и биотехнология, Новосибирск, 1988, с.178−179.
55. Новожилов О.В., Левенко Б. А. Получение клеточных линий люцерны, устойчивых к тиазолидинкарбоновой кислоте // Цитология и генетика, 1990,1 т.24, с.28−31.
56. Орлов П.А., Маврищева Е. Б., Палилова А. Н. Взаимодействие генома и плазмона при индукции морфогенетических реакций растений пшеницы в культуре пыльников // Генетика, 1994, т. 31, с. 385−389.
57. Паназян Н.Д., Тимофеева А., Ишин А. Г. Реализация морфогенеза в культуре соматических клеток кукурузы. Тезисы III Всероссийской конф. Генная и клеточная инженерия, 1992, с. 36.
58. Подобед Н.И., Яковлева Г. А. Вариабельность сомаклонов- из культуры тканей картофеля ранней группы. Матер. II междунар. научной конф. Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии, Москва- 2000, с.26−27.
59. Полевой В.В., Саламатова T.G. Физиология роста и развития- растений. Ленинград: Изд-во Ленинградского университета, 1991, 239 с.
60. Пустовойтова Т.Н., Жданова Н. Е., Жолкевич В. Н. Повышение засухоустойчивости растений под воздействием эпибрассинолида // Доклады Акад. Наук, 2001, т.376, № 5, с.697−700.
61. Пустовойтова Т.Н., Жолкевич- В.Н- Основные направления в: изучении влияния засухи на физиологические процессы- у растений // Физиология и биохимия культ. Растений, 1992, т. 24, с. 14−26.
62. Ралдугина Г. Н., Соболькова Г. И. Генотипические различия при действии абсцизовой кислоты на каллусные культуры Brass icanapus L. II Физиология растений, 1994, т. 41, с. .702−706.
63. Сайб Л.Р., Савин В. Н., Карабаев М. К., Сейфуллин Я. Л., Юнусов HJI.-0. Влияние генотипа на- формирование морфогенного каллуса и регенерацию растений- кукурузы в- культуре in vitro // Известия АН КазССР, сер. биол., 1991, № 6, с. 33−37.
64. Сергеева Л: Е., Левенко Б. А. Солеустойчивость потомства' растений-регенерантов, полученных из солеустойчивых клеточных линий табака. Тезисы VI съезда Украинского общества генетиков и селекционеров им. Н. И. Вавилова, Киев, 1992, с. 134 135.
65. Соловьян В.Т., Спиридонова Е. В., Кунах В. А. Геномные перестройки в культивируемых клетках Rauvolfia serpentina. Связь с межвидовой изменчивостью // Генетика, 1994, т. 30, с. 399−404.
66. Степанова А.Ю., Полякова Л. И., Долгих Ю. И., Вартапетян Б. Б. Реакция культивируемых клеток сахарного тростника на аноксию и отбор устойчивой клеточной линии // Физиология растений, 2002, т. 49, с. 315−323.
67. Строганов Б.П. Метаболизм растений в условиях засоления. ХХХНГТимирязевские чтения. М.: Наука, 1973, 52 с.
68. Строганов Б.П., Кабанов В. В., Шевякова Н. И. и др. Структура и функция клеток растений при засолении. М.: Наука, 1970, 318 с.
69. Тухбатулина JI.K., Шамина З. Б. Получение и характеристика резистентного к pFFA клона мака. Тезисы IV Всес. конф. Культура клеток растений и биотехнология, Кишинев, 1983, с. 167.
70. Удовенко Г. В. Солеустойчивость культурных растений. Л.: «Колос», 1977, 215 с.
71. Упелниек В.П., Новосельская А. Ю., Шутка Е., Талиба Г., Метаковский Е. В. Анализ изменчивости электрофоретических спектров запасных белков зерна у регенерантов пшеницы // Генетика, 1991, т. 27, с. 1597−1604.
72. Фролова Л.В. Особенности популяций культивируемых клеток. В кн. Культура клеток растений (ред. Р.Г.Бутенко), М: Наука, 1981, с. 5−16.
73. Хавкин Э.Е., Забродина М. В. Органоспецифичные спектры пероксидаз у кукурузы // Физиология растений, 1995, т. 42, с. 281 289.
74. Хавкин Э.Е., Забродина М. В. Наследуемые изменения в спектрахпероксидаз и эстераз у сомаклонов кукурузы // Физиологиярастений, 1994, т. 41, с. 859−867.w
75. Хадеева H.B., Дридзе И. Л., Майсурян А. Н. Выделение солеустойчивых форм риса путем прямой и непрямой селекции в культуре ткани // Биотехнология, 2000, № 3, с.27−37.
76. Хадеева Н.В., Майсурян А. Н., Дридзе И. Л. // Физиология растений, 1987, т.34, с. 157−162:
77. Хвырлева Ц.Д., Рыжик М. В., Ананьев Е. В., Гапоненко А. К., Искаков А. Р., Созинов А. А. Деметилирование рДНК в каллусной ткани ячменя, культивируемой in vitro // Докл. АН СССР, 1986, т. 290, с. 1249−1252:
78. Хромова Л.М. К вопросу о методологии- клеточной- селекции in vitro. В кн. Использование клеточных технологий в селекции картофеля. Научные труды НИИ картофельного хозяйства, Москва, 1987, с.40−46.
79. Чайлахян М.Х., Хрянин В. Н. Гормональная регуляция проявления пола у растений//Ботанический журнал, 1980, т. 65, с. 153−165.
80. Чернышева В.Г., Шамина З. Б. Влияние ЦМС на индукцию эмбриогенной каллусной ткани кукурузы // Генетика, 1990, т. 26, с. 1435−1439.
81. Чеченева Т.Н., Труханов В. А. Генетическая обусловленность каллусообразования и регенерационной способности у кукурузы // Цитология и генетика, 1994, т. 28, с. 46−49.
82. Шамина З.Б. Методические указания по клеточной селекции. Москва, 1984. 36 с.
83. Шамина З.Б. Стратегия получения: мутантных штаммов клеток растений-продуцентов биологически активных веществ // Физиология растений, 1994, т. 41- с. 879−884.
84. Шарова А.П., Давыдова: Ю.В., Мелик-Саркисов О.С., Аветисовт
85. В. А. Новые подходы к конструированию устойчивого к: инфекционному стрессу картофеля//Биотехнология, 1996, № 7, j с. 18−22.
86. Шаяхметов: И.Ф., Шакирова Ф. М. Формирование соматических эмбриоидов в суспензионной культуре клеток пшеницы- в присутствии АБК // Физиология растений, 1996, т. 43, с. 101−103-
87. Шевякова Н.И. Международная конференция: по полиаминам- в естественных науках// Физиология растений, 1987, т. 34, с. 543 545.
88. Шевякова Н.И. Метаболизм и физиологическая роль пролина в растениях при водном и солевом стрессе // Физиология растений, 1. 1983, т. 30, с. 768−779.
89. J 97. Шевякова Н. И., Кирьян И. Г. Особенности регуляции биосинтезаметионина в солеустойчивых клетках Nicotiana sylvestris L. II Физиология растений, 1995, т.42, с.94−100. s 98. Шевякова Н. И., Ракитин В. Ю., Музычко JI.M., Кузнецов Вл. В!
90. Стресс-индуцируемая аккумуляция пролина в связи с солеустойчивостью интактных растений и изолированных клеток
91. Прикладная биохимия и микробиология, 1998^ т. 34, с. 320−325.i 331
92. Хавкин Э.Е., Ко Э.Х. Организация регулирующих рост генов- у кукурузы. 2. Локусы количественных признаков // Физиология растений, 1995, т. 42, с. 629−646.
93. Abdullah R., Thompson J.A., Khush G.S., Kaushik R.P., Cocking E.C. Protoclonal- variation in- the seed progeny of plants regenerated from rice protoplasts // Plant Sci., 1989, v. 65, p. 97−101.
94. Adkins S.W., Shiraichi Т., McComb J.A., Ratanopol Ri, Kupkanchanakul Т., Armstrong L.J., Schultz A.L. Somaclonal variation in rice submergence tolerance and other agronomic characters // Physiol. Plantarum, 1990, v. 80, p. 647−654.
95. Ahoowalia B.S. Plant regeneration from meristem culture of corn, Zea mays L. Abstr.6 Intern. Congr. Plant Tissue Cell Culture, Minneapolis, 1986, p. 445.
96. Al-Zahim M.A., Ford-Lloyd B.V., Newbury H.J. Detection of somaclonal variation in garlic {Allium sativum L.) using RAPD and cytological analysis // Plant Cell Rep., 1999, v. 18, p. 473−477.
97. Anderson M.D., Prasad Т.К., Martin B.A., Stewart C.R. Differential gene expression in chilling-acclimated maize seedlings and evidencefor the involvement of abscisic acid in chilling tolerance // Plant Physiol., 1994, v. 105, p.331.
98. Armstrong C.L., Green C.E., Phillips R.L., Stucker R.E. Genetic controls of plant regeneration from maize: tissue- cultures // Maize Genet. Coop. Newslett., 1985- v. 59, — p. 92−93.
99. Armstrong C.L., Phillips R.L. Genetic and cytogenetic variation in plants regenerated from organogenic and friable embryogenic tissue cultures of maize // Crop Sci., 1988, v. 28, p. 363−369.
100. Armstrong K.C., Nakamura G., Keller W.A. Karyotype instability in tissue culture regenerants of tritical (X Triticosecale Wittmack) cv. «Welsh» from 6-month-old callus cultures // Z. Pflanzenzuchtg., 1983, v. 91, p. 233−245.
101. Arnoldt-Schmitt B. Physiological aspects of genome variability in tissue culture. II. Growth phase-dependent quantitative variability ofrepetitive Bst N1 fragments of primary cultures of Daucus carota L. II Theor. Appl. Genet, 1995, v. 91, p. 816−823.
102. Ashmore S.E., Shapcott A.S. Cytogenetic studies of Haplopappus- gracilis in both callus and suspension cell cultures // Theor. Appl. j Genet., 1989, v. 78, p. 249−259.I
103. Bajji M, Kinet J.M., Bouharmont J. Characterization of progenies issued from draught tolerant plants of durum wheat selected in vitro. Froc. Intern. Congr. Integrated Study on Drought Tolerance of Higher Plants, 1995, Montpellier, France, VII2.
104. Bao P.H., Granata S., Castiglione S. et al. Evidence for genomic•эchanges in transgenic rice (Oryza sativa L.) recovered from protoplasts 11 Transgenic Res., 1996, v. 5, p. 97−103/
105. Bartkowiak E. Tissue culture of maize. 4. Hormonal, environmental and genotypic influences on plant regenemton /7 Genet. Polon, 1983, v.24, p. 299−304.
106. Bayliss M.W. Chromosomal variation in plant tissue culture // Int. Rev. Cytol., 1980, v. 11 A, p. 113−143.
107. Beckert M., Qing C.M. Results of a diallel trial and a breeding experiment for in vitro aptitude in maize // Theor. Appl. Genet., 1984, s v. 68, p. 247−251.
108. Benetzen J.L., Adams T.L. Selection and characterization of cadmiumresistant suspension cultures of the wild tomato Lycopersiconperuvianum // Plant Cell Rep., 1984, v. 3, p. 258−261.
109. Bennici A., Cionini P.G., D’Amato F. Callus formation from suspensor of Phaseolus coccineus in hormone-free medium: a cytological and DNA cyto-photometric study // Protoplasm, 1976, v. 89, p. 251−261.
110. Bentrup F.-W. Cellular polarity. In: Cellular Interactions (Linskens H.F., Heslop-Harrison J. eds) berlin et al., 1984, p- 473−490.
111. Benzion G., Phillips R.L. Cytogenetic stability of maize tissue culture: a cell line pedigree analysis // Genome, 1988, v. 30, p. 318−325-
112. Benzion G., Phillips R.L., Rines H.W. Case histories of genetic variability in. vitro: oats and maize. In: Cell Culture and Somatic Cell Genetics: of Plants, v.3 (Vasil I.K. ed.), Acad- Press., New York, London, 1986, p. 435−448.
113. Bertin P., Busogoro J.P., Tilquin J.P., Kinet J.M., Bouharmont J. Field-evaluation and selection of rice somaclonal variants at different altitudes // Plant Breeding, 1996, v. 115, p. 183−188.
114. Bertin P., Klnet J.M., Bouharmont J. Heritable chilling tolerance improvement in rice through somaclonal- variation and cell-line selection//Australian J. Bot., 1996, v. 44, p. 91−105.
115. Bingham E.T., Saunders J.W. Chromosome manipulation in alfalfa: scaling the cultivated tetraploid to seven ploidy levels // Crop Sci., 1974, v.14, p. 474−477.
116. Binh D.Q., Heszky L.E. NaCl stimulates and prolongs regeneration capacity of tissue and cell culture in rice (Oryza sativa L.). Abstr. VII Intern. Congr. Plant Tissue Cell Cult., Amsterdam, 1990- p. 18.
117. Blum A. Crop responses to drought and the interpretation of adaptation // Plant Growth Regulation, 1996, V. 20, c. 135−148.
118. Bobisud C.A., Martin S.P., Sekioka T.T. Field testing bacterial wilt-resistant tomato somaclones // J.Amer.Soc.Horticultural Sci., 1996, v. 121, p. 384−387.
119. Bogani P., Simoni A., Lio P., Germinario A., Buiatti M. Molecular variation in plant cell populations evolving in vitro in different physiological contexts // Genome, 2001, v. 44, p. 549−558.
120. Bogani P., Simoni A., Lio P., Scialpi A., Buiatti // Genome flux intomato cell clones cultured in vitro in different physiologicalequilibria. II. A RAPD analysis of variability // Genome, 1996, v. 39, p. 846−853.
121. Bolanos J., Edmeades G.O. Eight cycles of selection for drought tolerance in lowland tropical maize. II Responses in reproductive behaviour // Field Grop Res., 1993, v. 31, p. 253−268.
122. Bozorgipour R., Snape J.W. An assessment of somaclonal variation as a breeding tool for generating herbicide-tolerant genotypes ins wheat {Triticum aestivum L.) // Euphytica, 1997, v. 94, p. 335−340.
123. Bray E.A. Molecular responses to water deficit// Plant Physiol., 1993^ v. 103, p. 1035−1040.
124. Brears TV, Curtis G. J-, Lonsdale D.M. A specific rearrangement of mitochondrials DNA induced by tissue culture // Theor. Appl. Genet., 1989, v. 77, p. 620−624.
125. Brettel R.J.S., Thomas E., Ingram D.S. Reversion of Texas male-sterile cytoplasm of maize in culture to give fertile T-toxin-resistant plants //Theor. Appl. Genet., 1980, v. 58, p. 55−58.
126. Brettell R.I.S., Dennis E.S., Scowcroft W.R., Peacock W.J. Molecular analysis of a somaclonal mutant of maize alcohol dehydrogenase // Mol. Gen. Genet., 1986, v. 202, p. 235−239.
127. Brettell R.J.S., Pallotta M.A., Gustafson J.P., Appels R. Variation at the Nor loci in triticale derived from tissue culture I I Theor. Appl. Genet., 1986, v. 71, p. 637−643.
128. Brewbaker J.L., Nagai C.H., Liu E.H. Genetic polymorphism of 13 maize peroxidases // J: Hered., 1985, v. 76, p. 159−167.
129. Browley S.H., Wetherell D.F., Robinson K.R. Electrical polarity in embryos of wild carrot preceeds cotyledon differentiation // Proc. Natl. Acad. Sci., 1984, v. 81, p. 6064−6067.
130. Brown C., Brooks F.J., Pearson D., Mathias R.J. Conrol of embryogenesis and organogenesis in immature wheat embryo callus using increased medium osmolarity and abscisic acid // J. Plant Physiol., 1989, v. 133, p. 727−733.
131. Brown P.T.H. DNA methylation in plants and its role in tissue culture // Genome, 1989, v. 31, p. 717−729.
132. Brown P.T.Hi The spectrum of molecular changes associated with somaclonal variation // Newsletter, 1991, №. 66, p. 14−25.
133. Brown P.T.H., Gobel E., Lorz H. RFLP analysis of Zea mays callus cultures and their regenerated plants // Theor. Appl- Genet., 1991, v. 81, p. 227−232.
134. Carness M.G., Wright M.S. Endogenous hormone levels of immature corn kernels of A188, Missouri-17 and Dekalb XL-12 // Plant Sci., 1988, v. 57, p. 195−203.
135. Cassells A.C., Curry R.F. Oxidative stress and- physiological- epigenetic and5genetic variability in plant tissue culture: implications for micropropagators and genetic engineers // Plant Cell Tissue Organ Culture, 2001- v. 64, p. 145−157.
136. Cheeseman J.M. mechanisms of salinity tolerance in plants // Plant Physiol., 1988, v. 87, p.547−550.
137. Chowdari K.V., Ramakrishna W., Tamhankar S.A. et al. Identification of minor DNA variations in rice somaclonal variants // Plant Cell Rep., 1998, v. 18, p. 55−58.
138. Chowdhuri M.K.U., Schaefer G.W., Smith? R.L. et al. Molecular analysis of organelle DNA of different subspecies of rice and the genomic stability of mtDNA in tissue cultured cells of rice // Theor. Appl. Genet., 1988, v. 76, p. 533−539.
139. Chu C.C., Wang C.C., Sun C.S., Hsu C., Yin K.C., Chu C.Y., Bi F.J.
140. Establishment of an efficient medium for anther culture of rice throughcomparative experiments of the nitrogen sources // Sci. Sin., 1975, v. 18, p. 658−659.
141. Cogalniceanu G., Mihai R., Brezeanu F. Electrostimulaton of Nicotiana tabacum callus growth by very weak dynamic electric current. Abstr. VIII Int. Congr. Plant Tissue and Cell Cult., Florence, Italy, 1994, p. 22 °F.
142. Komamine A., Nomura K. Molecular mechanisms of somatic embryogenesis // GMJCN, 1985, v. 1, p. 56−57.
143. Cooper D.B., Sears R.G., Lookhart G.L., Jones B.L. Heritable somaclonal variation in gliadin proteins of wheat plants derived fromimmature embryo callus culture // Theor. Appl: Genet., 1986, v. 71, p. 784−790.
144. Cowen N.M., Thompson S.A., Wilkinson T.C. Culture associated variation in maize inbreds // Plant Breed., 1990, v. 104, p. 134−143.
145. Craig A., Millam S. Modification of oilseed rape to produce oils for industrial use by means of applied tissue culture methodology // Euphytica, 1995- v. 85, p. 323−327.
146. Cummings D.P., Green C.E., Stuthman D.D. Callus induction and plant regeneration in oats // Crop Sci., 1976, v. 16, p. 465−470.
147. Cuzzoni E., Ferretti L., Giordani C., Galli M.G., Raimondi E., Castiglione S., Sala F. Extrachromosomal amplification of a repeated DNA sequence in cultured rice (Oryza sativa L.) cells // G. Bot. Ital. y 1989- v. 123, № 1 -2, Suppl. 2, p. 160−161.
148. D’Amato F. Cytogenetics of plant cell and tissue cultures and their regenerates // CRC Critical Reviews in Plant Sciences, 1985, v. 3, p. 73−112.
149. Davies P.A., Palotta M.A., Ryan S.A., Scowcroft W.R., Larkin P.J. Somaclonal variation in wheat: genetic and cytogeneticcharacterization of alcohol dehydrogenase I mutants // Theor. Appl. Genet., 1986, v. 72, p. 644−653.
150. Degreef В., Jacobs Mi Evidence for ТатЗ activity in transgenic Arabidopsis thaliana // In Vitro Cell. Devel. Biol. Plant, 1996, v. 32, p. 241−248.
151. Demarly Y. Experimental and theoretical approach of in vitro variations. In: Somaclonal-Variation and Crop Improvement (Semal J. ed.), Dordrecht, Nijhoff, 1986, p. 84−99.
152. Dewey R.E., Tomothy D.H., Levings C.S. A mitochondrial protein associated with cytoplasmic male-sterility in the T cytoplasm of maize // Proc. Natl- Acad. Sci. USA, 1987, v. 84, p. 5374−5378.
153. Dewey R.E., Tomothy D. Hi, Levings C.S. Novel recombinations in the maize mitochondrial genome produce a unique transcriptional unit in the Texas male-sterile cytoplasm // Cell, 1986, v. 44, p. 439−444.
154. Diedrick T.J., Frisch D.A., Gengenbach B.G. Tissue culture isolation of a second mutant locus for increased threonine accumulation inmaize // Theor.Appl.Genet., 1990, v. 79, p. 209−215.
155. Dijak Mi, Smith D.L., Wilson T.J., Brown- D.C.W. Stimulation of direct embryogenesis from mesophy 11 protoplasts of Medicago sativa // Plant Cell-Rep., 1986, v. 5, p. 468−470.
156. Dikalova A., Kubalakova M., Dikalov S., Salganic R. Oxygen radical generation and somaclonal- variation in plant cells. Abstr. VIII Int. Congr. Plant Tissue and Cell Cult., Florence, Italy,, 1994, p. 112.
157. Dolezel J., Novak F.J. Effect of plant tissue culture media on the frequency of somatic mutations in Tradescantia? stamen hairs // Z. Pflanzenphysiol., 1984, v. 114, p. 51−58.
158. Domazlicka E., Opatrny Z. The effect of cadmium on tobacco cell culture and the selection of potentially Cd-resistant cell lines // Biol.Plant., 1989, v. 31, p. 19−27.
159. Dorffling K., Dorffling H., Lesselich G. In vitro-selection and regeneration of hydroxyproline-resistant lines of winter wheat with increased proline content and- increased frost tolerance // J. Plant Physiol., 1993, v. 142, p. 222−225.
160. Dragiiska R., Radeva V., Denchev P., Atanassov A., Djilianov D. In vitro selection for drought tolerance in alfalfa. Proc. Intern. Congr.1.tegrated Study of Drought Tolerance of Higher Plants, 1995, Montpellier, France, VIII 3 7.
161. Duncan D.R., Widholm J.M. Approaches for the development of cold tolerance in maize through regenerable callus culture. In Biotechnology in Agriculture and Forestry. V.25 Maize 9Y.P.S. Bajaj ed.). Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 1994, p. 331−343.
162. Duncan D.R., Widholm J.M. Proline accumulation and its implication in cold tolerance of regenerable maize callus // Plant Physiol., 1987, v. 83, p. 703−708.
163. Duncan D. R, Widholm J.M. Proline is not the primary determinant of chilling tolerance induced by mannitol or abscisic acid in regenerable maize callus cultures // Plant Physiol., 1991, v. 95, p. 1284−1287.
164. Duncans D.R., Williams M.E., Zehr B.E., Widholm J.M. The production of callus capable of plant regeneration from immature embryos of numerous Zea mays genotypes // Planta, 1985, v. 165, p. 322−332.
165. Dutta R. Studies on the mechanism of electrically induces growth and differentiation in plants in vitro: the cytomorphological profile. Abstr. VIIT Intern. Congr. «Plant Tissue and Cell1 Culture», Florence, Italy, 1994, p. 49.
166. Earle E.D., Kuehnle A.R. Somaclonal variation- in maize. In: Biotechnology in Agriculture and Forestry, v. 11 Somaclonal Variation in Crop Improvement I (Y.P.S.Bajaj ed.), Springer-Verlag, Berlin Heidelberg. 1990, p.326−351.
167. Edallo S., Zucchinali C., Perenzin M., Salamini F. Chromosomal variation and frequency of spontaneous mutation associated with in vitro culture and plant regeneration in maize // Maydica, 1981, v. 26, p. 39−56.
168. Egerton-Warburton L.M., Balsamo R.A., Close T.J. Temporal accumulation and ultrastructural localization of dehydrins in Zea mays // Physiol. Plantarum, 1997, v. 101, p. 545−555.
169. Elkonin L.A., Enaleeva N.K., Tsvetova M.J., Belyaeva E.V., Ishin A. G. Partially fertile line with apospory obtained from tissue culture of male sterile plant of sorghum (iSorghum bicolor L. Miench) // Ann. Bot., 1995, v. 76, p. 359−365.
170. Escorial M.C., Sixto H., Garciabaudin J.M., Chueca M.C. In vitro culture selection increases glyphosate tolerance in barley // Plant Cell: Tissue Organ Culture, 1996, v. 46, p. 179−186.
171. Evans D.A., Sharp W.R. Application of somaclonal variation // Bio/technology, 1986, v. 4, p. 528−532.
172. Fahey J.W., Reed J.N., Readdy T.L., Pace G.M. Somatic embryogenesis from three commercially important inbreds of Zea mays II Plant Cell Rep., 1986, v. 5, p. 35−38.
173. Fauron C. M-R., Abbot A.G., Brettel R.I.S. Maize mitochondrial DNA-rearrangements between the normal type, the Texas male sterile cytoplasm and a fertile revertant cms-T-regenerated plant //Current Genet., 1987, v. 11, p. 339−346.
174. Fedak G., ArmstrongK.C., Handyside RJ. Chromosome instability in wheat plants regenerated from suspension culture // Genome, 1987, v. 29, p. 627−629.
175. Fluminhan A., Kameya T. Behavior of chromosomes in anaphase cells in embryogenic callus cultures of maize (Zea mays L.) // Theor. Appl. Genet., 1996, v. 92, p. 982−990.
176. Freeling M., Woodman J.C., Cheng D.S.К. Developmental potentials of maize tissue cultures // Maydica, 1976, v. 21, p. 97−112.
177. Gai M., Kucharska M., Maluszynski M., Polok K. Isozyme variation in callus culture of Arabidopsis thaliana (L.) Heynh- // Genetica Polonica, 1991, v. 32, p. 217−225.
178. Galiba G., Erdei L., Sarkadi L., Salgo A., Koscy G. Genotype dependent responses of wheat varieties to water and salt stresses in vitro. Abstr. VII Intern. Congr. Plant Tissue and Cell Culture, Amsterdam, 1990, p. 13-
179. Galiba G., Sutka J- Frost resistance of somaclones derived from Triticum aestivum L. winter wheat calli // Plant Breed!, 1989, v. 102, p. 101−104.
180. Galiba G., Yamada Y. A novel method for increasing the frequency of somatic embryogenesis in wheat tissue culture by NaCl and KC1 supplementation // Plant Cell Rep., 1988, v. 7, p. 55−58.
181. Gathercole P.W.E., Street H.E. A p-fluorophenylalanine-resistant cell line of sycamore with increased contents of phenilalanine, tyrosine and phenolics // Z. Pflanzenphysiol., 1978, v. 89, p. 283−287.
182. Gaut B.S., Doebley J.F. DNA sequence evidence for the segmental allotetraploid origin of maize // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1997, v. 94, p. 6809−6814.
183. Gengenbach- B.G., Connelly J.A., Pring D.R., Conde M.F. Mitochondrial DNA variation in maize plant regenerated during tissue culture selection // Theor. Appl. Genet., 1981, v. 59, p. 161−167.
184. Gengenbach B.G., Green C.E. Selection of T-cytopIasm maize callus- cultures resistant to Helminthosporinm maydis race T pathotoxin // Crop Sci., 1975, v. 15, p. 645−649.
185. Gengenbach B.G., Green C.E., Donovan C.M. Inheritance of selected pathotoxin resistance in maize plants regenerated from cell cultures V/ Proc. Natl- Acad- Sci., 1977, v. 74, p. 5113−5117.
186. Godwin I.D., Sangduen N., Kunanuvatchaidach R, Piperidis G., Adkins S.W. RAPD ро1утофЫзт among variant and phenotypically normal1 rice {Oryza sativa var. indica) somaclonal? progenies II Plant Cell Rep., 1997, v. 16, p. 320−324.
187. Goldsworthy A. The electric compass of plants // New Sci., 1986, № 16 p. 22−23.
188. Goldsworthy A., Mina M.G. Electrical patterns of tobacco cells in media containing indole-3-acetic acid or 2,4-dichlorphenoxyaceticacid // Planta, 1991, v. 183, p. 368−373.
189. Golds worthy A., Rathor K.S. The electrical control of growth in plant tissue cultures: the polar transport of auxin//J. Exper. Bot., 1985, v. 36, p. 1134−1141.
190. Gonzales A. L, Pelaez M. T, Ruiz M.L. Cytogenetic variation in somatic tissue cultures: and? regenerated plants of barley {Hordeum vulgare L.) // Euphytica, 1996, v. 91, p. 37−43.
191. Graybosch R.A., Edge M.E., Delannay X. Somaclonal variation- in soybean plants regenerated from the cotyledonary node tissue culture system // Crop Sci., 1987, v. 27, p. 803−806.
192. Green- C.E., Phillips R.L. Plant regeneration from tissue culture of maize // Crop Sci., 1975, v. 15, p. 417−421.
193. Grisvard J., Sevignac M., Chateau Mi,. Branchard Mi Changes in repetitive DNA sequence during callus: culture of Cucumis melo II Plant Sci., 1990, v. 72, p. 81−91.
194. Groose R.W., Bingham E.T. An unstable anthocyanin mutation recovered: from tissue culture of alfalfa (Medicago sativa). I. High frequency of reversion upon reculture // Plant Cell Rep., 1986, v. 5, p. 104−110:
195. Gu Mingguang. Cytogenetic stability and variability of calli and cell clones originated from maize pollen and their regenerated plants. In: Haploids of higher plants in vitro (Ни H., Yang H. eds.), Springer-Verlag, 1986, p. 79−90.
196. Gupta S.L., Nanda К. Plant regeneration from seedlings leaf tissue of Zea mays L. Abstr.6 Intern. Congr. Plant Tissue Cell Culture, Minneapolis, 1986- p. 444-
197. Hall A.J., Lemcoff J.H., Trapani N. Water stress before and during: flowering in maize and its effects on yield, its components, and their determinants // Maydica, 1981, v. 26, p. 19−38.
198. Halushkova J., Cellarova E. RFLP-analysis of Hipericum perforatum L. somaclones and their progenies // Euphytica, 1997, v. 95, p. 229 235-
199. Handa A.K., Bressan R.A., Handa S., Hasegawa P.M. Clonal variation for tolerance to? polyethylene glycol-induced- water stress in cultured tomato cells // Plant Physiol., 1983, v. 72, p. 645−653-
200. Harms C.T., Lorz H., Potrykus I. Regeneration of plants from callus cultures of Zea mays L. H Z. Pflanzenzuecht., 1976, v. 77, p. 347−351.
201. Hartmann C., Henry Y., De Buyser J. et al. Identification of new mitochondrial genome organization in- wheat plants regenerated from somatic tissue cultures // Theor. Appl. Genet., 1989, v. 77, p. 169−175.
202. Hasegawa P.M., Bressan R.A., Handa A.K. Cellular mechanisms of salinity tolerance // Hort Sci-, 1986, v. 21, p. 1317−1319.
203. Hashim Z.N., Campbell W.F., Carman J.G. Morphological analyses of spring wheat (CIMMYT cv. PCYT-10) somaclones // Plant Cell Tissue Organ Cult., 1990, v. 20, p. 95−99.
204. Heinz D.J. Sugarcane improvement through induced mutations using vegetative prorogation and cell culture techniques. In: Induce Mutations in Vegetatively Propagated Plants, Int. Atomic Energy Agency, Vienna, 1973, p. 53−59.
205. Henke R.R., Mansur M.A., Constantino M.J. Organogenesis and plantlet formation from organ and seedling-derived calli of rice (Oryza sativa) // Phusiol. Plantarum, 1978- v. 44- p. 11−14.
206. Henry I., Vain P., De Beyser J. Genetic analysis of in vitro plant tissue culture responses and regeneration capacities // Euphytica, 1994, v. 79, p. 45−58.
207. Hernandez P., Martin A., Dorado G. Development of SCARs by direct sequencing of RAPD products: a practical- tool- for the introgression and marker-assisted selection of wheat // Mol. Breeding, 1999, v. 5, p. 245−253.
208. Hibberd K.A., Walter Т., Green C.E., Gengenbach B.G. Selection and characterization of a feedback-insensitive tissue culture of maize // Planta, 1980, v. 148, p. 183−187.
209. Hirochika H. Retrotransposons of rice their regulation and use forgenome analysis // Plant Mol- Biol., 1997, v. 35, p. 231−240.
210. Hodges Т.К., Kamo К.К., Becwar M.R., Schroll S. Regeneration of maize. In: Biotechnology in Plant Science (Zaitlin M- et al! eds.), New York, Acad.Press., 1985, p. 15−33.
211. Hodges Т.К., Kamo K.K., Becwar M.R., Schroll S. Regeneration of maize. In: Biotechnology in plant science: relevance to agriculture in the eighties (Zaitlin M-, Day P., Hollaender A. eds.), Acad. Press, New York, London, Orlando, 1985, p. 15−33.
212. Hodges Т.К., Kamo K.K., Imbrie G.W., Becwar M. R: Genotype specificity of somatic embryogenesis and regeneration in maize // Bio/technology, 1986, v. 4, p. 219−223:
213. Hossain Z., Kalam A., Mandal A., Shukla R., Datta S.K. NaCl stress -its chromotoxic effects and antioxidant behavior in roots of Chrysanthemum morifolium Ramat // Plant Sci., 2004, v. 166, p. 215 220.
214. Huang В., Hatch E., Goldsbrough P.B. Selection and characterization of cadmium tolerant cells in tomato // Plant Sci., 1987, v.52, p. 211 221.
215. Hughes D.W., Galau G.A. Developmental and environmental induction of Lea and Lea A mRNAs and postabscission program during embryo culture // The Plant Cell, 1991, v. 3, p. 605−618.
216. Ibarra-Caballero J., Villanueva-Verduzco C., Molina-Galan J., Sanchezde-Jimenez E. Proline accumulaton as a symptom of drought stress in maize: a tissue differentiations requirement // J. Exper. Bot., 1988, v. 39, p. 889−897.
217. Irisb E.E., Nelson T.M. Development of maize plants from cultured shoot apices // Planta, 1988, v. 175, p. 9−12.
218. Ivanov P., Atanassov Z., Milkova V., Nikolova L. Culture selected somaclonal variation in 5 Triticum aestivum L. genotypes // Euphytica, 1998, v. 104, p. 167−172.
219. Ivanova A, Velcheva M., Denchev P., Atanassov A., Van Onckelen H.A. Endogenous hormone levels during somatic embryogenesis in Medicago falcata II Physiol. Plantarum, 1994, v. 92, p. 85−89.
220. Jackson P.J., Roth E.J., McClure P.R., Naranjo C.M. Selection, isolaton and characterization of cadmium-resistant Datura innoxia suspension culture // Plant Physiol., 1984, v. 75- p. 914−918.
221. Jaffe L.F. Electrophoresis along cell membranes // Nature, 1977, v. 265, p. 600−602.
222. Jaffe L.F., Nuccitelli R. Electrical control of development // Ann- Rev. Biophys. Bioeng., 1977, v. 6, p. 445−476.
223. Jaffe L.F., Robinson K.R., Nuccitelli R. Local cation entry and self-electrophoresis as an intracellular localization mechanism // Ann.N.-Y. Acad. Sci., 1974, v. 238, p. 372−389.
224. James M.G., Stadler J. Molecular characterization of Mutator systems in maize embryogenic callus cultures indicates Mu element activity in vitro //Theor. Appl: Genet., 1989, v. 77, p. 383−393.
225. Jan V.V., Demacedo C.C., Kinet J.M., Bouharmont J. Selection of Al-resistant plants from a sensitive rice cultivar using somaclonal variation, in-vitro and hydroponic cultures // Euphytica, 1997, v. 97, p. 303−310.
226. Janowiak F., Dorffling K. Effect of cool soil conditions on abscisic acid and cytokinin contents in maize seedlings // Acta Physiol. Plantarum, 1999, v. 21, p. 13.
227. Kaeppler S.M., Kaeppler H.F., Rhee Y. Epigenetic aspects of somaclonal variation in plants // Plant Mol. Biol., 2000, v. 43, p. 178 188.
228. Kaeppler S.M., Phillips R.L. Tissue culture-induced DNA methylation variaton in maize // Proc. Natl. Acad. Sci: USA- 1993, v. 90, p. 87 738 776.
229. Kamo K.K., Becwar M.R., Hodges Т.К. Regeneration of Zea mays L. from embryogenic callus // Bot. Gaz., 1985, v. 146, p. 327−334.
230. Kang K.K., Kameya T. Selection and characterization of a 5-methyl-tryptophan resistant mutant in Zea mays L. // Euphytica, 1993, v. 69, p. 95−102.
231. Karp A. On the current understanding: of somaclonal variation // Oxford Surveys of Plant Mol. and Cell Biol., 1991, v. 7, p. 1−58.
232. Karp A. Somaclonal! variation as a tool for crop improvement // Euphytica, 1995, v. 85, p. 295−302.
233. Karp A., Bright S.W.J. On the causes and origins of somaclonal variation // Oxford Surv. Plant Mol. Cell. Biol., 1985, v. 2, p. 199−234.
234. Karp A., Maddock S.E. Chromosome variation in wheat plants regenerated! from cultured immature embryos // Theor. Appl: Genet., 1984, v. 67, p. 249−255:
235. Karp A., Steele S.H., Parmar S., Jones M.G.K., Shewry PR., Breiman A. Relative stability among barley plants regenerated from cultured immature embryos // Genome, 1987, v. 29, p. 405−412.
236. Karp A., Wu Q.S., Steel H.S., Jones M.G.K. Chromosome variation in dividing protoplasts and cell suspension of wheat // Theor. Appl.
237. Genet.,. 1987, v. 74, p. 140−146.
238. Karunaratne S., Santha S., Kovoor A. An in vitro assay for drought-tolerant coconut germplasm // Euphytica, 1991, v. 53, p. 25−30.
239. Kawahara R., Komamine A. Molecular basis of somatic embryogenesis. In Biotechnology in Agriculture and Forestry. V.30 Somatic Embryogenesis and Synthetic Seeds (Y.P.S. Bajaj ed.). Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 1995- p. 30−40.
240. Kiesselbach T.A. The: structura and reproduction of corn. Lincoln, Univ. of Nebraska Press USA, 1980,1 p.45−56.278: Kikushi K., Terauchi K., Wada M., Hirano H.-Y. The plant MITE mPing is mobilized-in anther culture // Nature, 2003, v. 421, p. 167 170.
241. Kinane J.T., Jones P.W. Isolation of wheat mutants with increased resistance to powdery mildew from small induced variant populations //Euphytica, 2001, v. 117, p. 251−260.
242. Kishinami I., Widholm J.M. Selection of copper and zinc resistant Nicotiana plumbaginifolia cell suspension cultures // Plant Cell Physiol., 1986, v. 26, p. 1263−1268.
243. Kishor R., Kavi R.B., Reddy G.M. Regeneration of plants from long-term cultures of Oryza sativa L. H Plant Cell Rep., 1986, v. 5, p. 391 393.
244. Kita N., Toyoda H., Shimizu K., Ouchi S. Selection of high quality strains of tomato from callus-derived regenerants and their self-polinated progenies // Plant Tissue Cult. Lett., 1987, v. 4, p. 71−74.
245. Klee H., Estelle M. Molecular genetic approaches to plant hormone biology 11 Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1991, v. 42, p. 529−551.
246. Koinuma K., Mochizuki N., Inoue Y. Embryoid and callus induction and plant regeneration by anther culture of Japanese local varienties of maize (Zea mays L.) II Bull. Nat. Grassland Res. Inst., 1990- № 43- p. 13−22.
247. Komamine A., Nomura K. Molecular mechanisms of somatic embryogenesis // GMICN, 1985, v. 1, p. 56−57.
248. Kott L.S., Flach S., Kasha K.J. A comparative study of initiation and development of embryonic callus from haploid embryos of several barley cultivars. II. Cytophotometry of embryos and callus // Can/ J/ Bot., 1986, v. 64- p. 2107−2112.
249. Koyro H.-W., Stelzer R. Ion concentration in the cytoplasm and vacuoles of rhisodermis cells from NaCl treated Sorghum, Spartina and Puccinellia plants // J. Plant Physiol., 1988, v. 133, p. 441−443.
250. Krishnamurthi M., Tlaskal J. Fiji disease resistant Saccharum officinarum var. Pindar subclones from tissue cultures // Proc. Int.Soc.Sugar Cane Technol., 1974, v. 15, p. 130−137.
251. Kuehnle A.R., Earle E.D. In vitro selection for methomyl resistance in cms- T maize // Theor. Appl. Genet., 1989, v. 78, p. 672−682.
252. Kumar V., Sharma D.R. Isolation and characterization of sodium chloride resistant callus culture of Vigna radiata (L.) Wilczek var. radiata II J. Exper. Bot., 1989, v. 40, p- 143−147.
253. Kumar V., Sharma D.R. Selection and characterization of an L-thiazolidine-4-carboxylic acid resistant callus culture of Vigna radiata (L.) Wilczek var. radiata И Plant Cell Rep., 1989, v. 7, p. 648−651.
254. Kwok S., Kellog D.E., McKinney N., Spasic D., Goda L., Levenson C., Sninsky J. J- Effects of primer-template mismatches on the polimerase chain reaction: Human immunodeficiency virus type 1 model studies.// Nucl- Acids Res., 1990, v.18- p. 999−1005.
255. La Rue C.D. Growth and regeneration of the endosperm of maize in culture // Amer. J. Botany, 1949, v. 34, p. 585−586.
256. Landi P., Tuberosa R., Lucchese C., Frascaroli E. Direct and: correlated responses to recurrent selection for regeneration capacity in maize callus cultures. Abstr. VIII Int. Congr. Plant Tissue and Cell Culture, Florence, Italy, 1994, p. 19.
257. Landsmann J., Uhrig H. Somaclonal variation in Solanum tuberosum detected at the molecular level // Theor. Appl- Genet., 1985, v. 71, p. 500−505.
258. Lapitan N.L.V., Sears R.G., Gill B.S. Amplification of repeated DNA sequences in wheat x rye hybrids regenerated from tissue culture // Theor. Appl. Genet., 1988, v. 75, p. 381−388.
259. Larkin PJ., Ryan S.A., Brettell RT.S., Scowcroft W.R. Heritable somaclonal variation in wheat // Theor. Appl. Genet., 1984, v. 67, p. 443−455.
260. Larkin P.J., Scowcroft W.R. Somaclonal- variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement // Theor. Appl. Genet., 1981, v. 60, p. 197−214.
261. Larque-Saavedra A., Wain R.Z. Abscisic acid levels in relation to drought tolerance in varieties of Zea mays L. I I Nature, 1974, v. 251, p. 716−717.
262. Leal M.R., Maribona R.H., Ruiz A., Korneva SM Canales E., Dinkova T.D., Izquierdo F., Coto O., Rizo D. Somaclonal variation as a source of resistance to eyespot disease of sugarcane // Plant Breed., 1996, v. 115, p. 37−42.
263. Lebreton C., Lazic-Jancic V., Steed A., Pekis S., Quarrie S.A. Identification of QTL for drought responses in maize and their use in testing causal relationships between traits // J. Exper. Bot., 1995, v. 46, p. 853−865.
264. Lee M., Phillips R.L. Genetic variants in progeny of regenerated maize plants // Genome, 1987, v. 29, p. 834−838.
265. Lee M., Phillips R.L. The chromosomal basis of somaclonal variation // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 1988, v.39, p. 413−437.
266. Lee S.H., Shon Y.G., Kim C.Y., Chun H.J., Cheong Y.H., Kim Z.H.,
267. Lee T.M., Lur H.S., Chu C. Role of abscisic acid in chilling tolerance of rice (Oryza sativa L.) seedlings. I Endogenous abscisic acid levels // Plant Cell Environment, 1993, v. 16, p. 481−490.
268. Levenko B.A., Pasternak E.Yu., Sidorova- N.V. Selection for resistance to water and salt stress in wheat. Abstr. VII Intern. Congr. Plant Tissue and Cell Culture, Amsterdam, 1990, p.37.
269. Lewis J., Bird A. DNA methylation and chromatin structure // FEBS Letters, 1991, v. 285, p. 155−159.
270. Lima-De-Faria A. DNA replication and gene: amplification in: heterochromatin. In: Handbook of Molec.Cytol. (Lima-de-Faria A. ed.), Amsterdam/London: North Holland, 1969, p. 234−282.
271. Ling D., Chen W., Chen M., Ma Z. Chromosome variation in plants regenerated 5 from cultured somatic cells of rice indica // Acta Genet. Sin., 1987, v. 14, p. 247−254.
272. Liu C.-M., Hu Z.-H., Chua N.-H. Auxin polar transport is essential for the establishment of bilateral symmetry during early plant embryogenesis // The Plant Cell, 1993, v. 5, p. 621−630.
273. Lo Schiavo F., Pitto L., Giuliano G., Torti G., Nuta-Ronchi V.,
274. Marazziti D., Vergara R., Orselli S., Terzi M. DNA methylation ofembryogenic carrot cell- cultures and its variation as caused: bymutation, differentiation, hormones and hypomethylating drugs I I Theor. Appl. Genet., 1989, v. 77, p. 325−331.
275. Lo Shiavo F. Early events in embryogenesis. In: Biotechnology in Agriculture and Forestry, v. 30 Somatic Embryogenesis and Synthetic Seeds (Bajaj Y.P.S. ed.), Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 1995, p. 20−29.
276. Locy R.D., Chang Ch.-Ch., Nielsen B.L., Singh N.K. Photosynthesis in salt-adapted heterotrophic tobacco cells and regenerated plants // Plant Physiol., 1996, v. 110, p. 312−328.
277. Lowe K., Barnes T.D., Ryan P., Paterson K.E. Plant regeneration via organogenesis and embryogenesis in the maize inbred line B73 // Plant Sci., 1985, v. 41, p. 125−132.
278. Lu C., Vasil I.K., Ozias-Akins P. Somatic embryogenesis in Zea mays //Theor. Appl. Genet., 1982, v. 62, p. 109−112.
279. Lu C., Vasil V., Vasil I.K. Improved efficiency of somatic embryogenesis and plant regeneration in tissue culture of maize (Zea mays) II Theor. Appl. Genet., 1983, v. 66, p. 285−289.
280. Lupotto E. In vitro culture of isolated somatic embryos of maize {Zea mays L.)//Maydica, 1986, v. 31, p. 193−201.
281. Lupotto E., Locatelli F., Lusardi M.C. In vitro selection for salt tolerance in maize. In Biotechnology in Agriculture and Forestry, v. 25 Maize (Bajaj Y.P.S. ed.), Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 1994, p. 314−330.
282. Ma Hi, Gu M., Liang G.H. Plant regeneration from cultured immature embryos of Sorghum bicolor (L.) Moench. //Theor. Appl. Genet., 1987, v. 73, p. 389−394.
283. Mandal A.B., Pramanic S.C., Chowdhury В., Bandyopadhyay А.К. Salt tolerant Pokkali somaclones performance under normal and saline soils in Bay Islands // Field Crops Research, 1999, v. 61, p. 1321.
284. Maralappanavar M.S., Kuruvinashetti M.S., Harti C.C. Regeneration, establishment and evaluation of somaclones in Sorghum bicolor (L.) Moench- II Euphytica, 2000, v. 115, p. 173−180.
285. Mascarenhas A.F., Sayagaver B.M., Jagannathan V. Studies on the growth of callus culture: of Zea mays L. In: Tissue Culture (Ramakrishna С/V/ ed.). Junk, The Hague, 1965, p. 283−291.
286. Matzke M.A., Matzke A.J.M. Differential inactivation and methylation of transgene in plants by two suppressor loci containing homologous sequences // Plant Mol. BioL, 1991, v. 16, p. 821−830.
287. McCaig T.N., Romagosa I. Water status measurements of excised wheat leaves: position and age effects // Crop Sci., 1991, v. 31, p. 1583−1588.
288. McCain J.W., Hodges Т.К. Anatomy of somatic embryos from maize embryo cultures // Bot. Gaz., 1986, v. 147, p. 453−460.
289. McCain J. W., Kamo K.K., Hodges Т.К. Characterization of somatic- embryo development and plant regeneration from friable maize callus cultures // Bot. Gaz., 1988, v. 149, p. 16−20.
290. McCoy T.J. Characterization of alfalfa (Medicago sativa L.) plants regenerated from selected NaCl tolerant cell- lines // Plant Cell Rep., 1987, v. 6, p.417−422.
291. McCoy T.J., Phillips R.L., Rines H. W. Cytogenetic analysis of plants regenerated^from oat {Avena sativa) tissue cultures- high frequency of partial chromosome loss I I Can. J. Genet. Cytol., 1982, v. 24, p. 37−50.
292. Messenguer R., Ganal M.W., Steffens J.C., Tanksley S.D. Characterization of the level- target sites and- inheritance of cytosine methylation in tomato nuclear DNA// Plant Mol. Biol., 1991- v. 16, p. 753−770-
293. Miao S., Duncan D.R., Widholm J. Selection of regenerable maize callus cultures resistant to 5-methyl-DL-tryptophan, S-2-aminoethyl-L-cysteine and high levels of L-lysine plus L-threonine // Plant Cell: Tissue Organ Culture, 1988, v. 14, p. 3−14.
294. Miller S.A., Williams G.R., Medina-Filho H.P., Evans D.A. A somaclonal variant of tomato resistant to race 2 of Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici II Phytopathol., 1985, v.75, p. 1354.
295. Mishiba K.-I., Okamoto Т., Mii M. Increased ploidy level in cell suspension cultures of Doritaenopsis by exogenous application of 2,4364dichlorophenoxyacetic acid // Physiol. Plantarum, 2001, v. 112, p. 142−148.
296. Mohmand A.S., Nabors M.W. Somaclonal variant plants of wheat derived from mature embryo explants of three genotypes // Plant Cell Rep., 1990, v. 8, p. 558−560-
297. Molnar S. JJ, Gordon P. N-, Rice T.B. Initiation of totipotent corn tissue cultures from undeveloped axillary and" secondary ears // Can. J. Genet. Cytol., 1980, v. 22, p. 671 672.
298. Morocz S., Donn G., Nemeth J., Dudits D. An improved system to obtain fertile regenerants via maize protoplasts isolated from a highly embryogenic suspension culture // Theor. AppL Genet., 1990, v.80, p. 721−726.
299. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plantarum, 1962, v.15, p. 473−497.
300. Murata M. Effect of auxin and cytokinin on induction of sister chromatid exchanges in cultured cells of wheat {Triticum aestivum L.) II Theor. Appl: Genet., 1989, v. 78, p. 521−524.
301. Murata M., Orton T. J, Chromosome structural changes in cultured celery cells // In Vitro, 1983, v. 19, p. 83−89.
302. Nabors M.W., Daniels A., Nadolny L., Brown C. Sodium chloride tolerant lines of tobacco cells // Plant Sci.Lett., 1975, v.4, p. 155−159.
303. Nagarajan P., Walton P.D. Evaluation of R| alfalfa somaclones for herbage yield and morphological characteristics I I Plant Breed., 1989, v. 102, p. 333−337.
304. Narasimhulu S.B., Chopra V.L., Prakash S. The influence of cytoplasmic differences on shoot morphogenesis in Brassica carinata A.Br. // Euphytica, 1989, v. 40, p. 241−243.
305. Nishibayashi S., Hayashi Y., Kyozuka J., Shimamoto K. Chromosome variations in protoplast-derived calli and in plants regenerated from calli of cultivated rice //Jap. J. Genet., 1989, v. 64, p. 355−361.
306. Novak F.J. The changes of caryotypes in callus cultures of Allium sativa L. // Caryology, 1974, v. 27, p. 45−54.
307. Novak F. J,. Doleselova M., Nesticky M., Piovarci A. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Zea mays L. // Maydica, 1983, v. 28, p. 381−390.
308. Novak F.J., Hermelin Т., Daskalov S., Nesticky M. In vitro mutagenesis in vaize. In: Genetic Manipulation in Plant Breeding (Horn W., Jensen C.J., Odenbach W., Schieder O. eds.), DeGruyter, Berlin, New York, 1986, p.563−576.
309. Novak F.J., Opatrny Z., Rovenska В., Nesticky M. Studies on the morphogenetic response of maize tissue cultures of different origin // Biol. Plantarum, 1979, v.21, p. 418−426.
310. Oono K. Putative homozygous mutations in regenerated plants of rice // Мок Gen. Genet., 1985, v. 198, p. 377−384.355- Orton T.J. Chromosomal variability in tissue culture and regenerated plants inHordeum//Theor. Appl- Genet., 1980, v. 56, p. 101−112.
311. Orton T.J. Comparision of salt tolerance between Hordeum vulgare and H. jubatum in whole plants and callus- cultures // Z. Pflanzenphysiol., 1980- v.98, p. 105−118.
312. Ostry M.E., Ward? K.T. Field- performance of Populus expressing somaclonal variation- in resistance to Septoria musiva II Plant Sci., 2003, v. 164, p. 1−8.
313. Palit R., Reddy G.M. Selection of callus resistant to Pyricularia oryzae and regeneration of plants in rice (Oryza sativa L.) // Indian J. Exp. Biol., 1990, v. 28, p. 928−931.
314. Palmer J.D., Shields C.R. Tripartite structure of the Brassica campestris mitochondrial genome //Nature, 1984, v. 307, p. 437−440.
315. Paran I., Michelmore R.W. Development of reliable PCR-based markers linked to downy mildew resistance genes in lettuce. Theor. Appl. Genet., 1993, v. 85, p. 985−993.
316. Pareddy D.R., Petolino J.F. Somatic embryogenesis and plant regeneration from immature inflorescences of several elite inbreds of maize // Plant Sci., 1990, v. 67, p. 211−219.
317. Parker W.B., Somers D.A., Wyse D.L., Keith- R.A., Burton J.D., Gronwald J.W., Gengenbach B.G. Selection and- characterization of sethoxydim-tolerant maize tissue cultures // Plant: Physiol., 1990, v. 92, p. 1220−1225.
318. Parrot W.A., Вouton J.H. Aluminum toIerance in alfalfa as expressed: in tissue culture // Crop Sci., 1990, v.30, p. 387−389!
319. Peschke V.M., Phillips: R.L., Gengenbach- B.G. Discovery of transposable element activity among progeny of tissue culture-derived maize plants // Science, 1987, v. 238, p. 804−807.
320. Phillips R-L., Peschke V.M. Discovery of Ac activity among progeny of tissue culture-derived maize plants. In: Proc. Int. Symp. Plant Transposable Elem., Madison, Wise., New York, London, 1988, p. 305−315.
321. Phillips R.L., Somers D.A., Hiberd K.A. Cell/tissue culture and invitro manipulation. In: Corn and Corn Improvement Agronomy
322. Monograph 18- (Sprague G.F., Duddley J.W. eds) Am. Soc. Of Agronomy, Madison, WI, 1988, p. 345−387.
323. Pickering R.A. Plant regeneration and variants from calli derived from immature embryos of diploid barley {Hordeum vulgare L.) and H. vulgare L. x H. bulbosum L. crosses // Theor. Appl- Genet., 1989, v. 78, p. 105−112.
324. PlanckaertF., Walbot V. Molecular and genetic characterization ofMu transposable elements in Zea mays: behavior in callus culture and regenerated plants // Genetics, 1989, v. 123, p. 567−578.
325. Pluhar S.A., Erickson L., Pauls K.P. Effects of tissue culture on a highly repetitive DNA sequence (E180 satellite) in Medicago sativa II Plant Cell Tissue Organ Cult., 2001, v. 67, p. 195−199.
326. Powell W., Caligari P.D.S. The in vitro genetics of barley {Hordeum vulgare L.) — detection and analysis of reciprocal differences for cultureresponse to 2,4-dichlorophenoxyacetic acid 11 Heredity, 1987, v. 59, p. 293−299.
327. Pua E.-C., Thorpe Т.А. Differential Na2S04 tolerance in tobacco plants regenerated? from Na2S04-grown- callus // Plant Cell- Environ., 1986, v. 9, p. 9−16.
328. Quatrano R.S. Development of cell polarity // Ann. Rev. Plant Physiol., 1978, v. 29, p. 487−510.
329. Rahman M.M., Kaul K. Differentiation of sodium chloride tolerant cell lines of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.): cv. Jet Star // J. Plant Physiol., 1989, v. 133, p.710−712.
330. Raman K., Walden D.B., Greyson R.I. Propagation of Zea mays L. by shoot tip culture: a feasibility study // Ann. Bot., 1980, v. 45, p. 183 189.
331. Rapela M.A. Organogenesis and somatic embryogenesis in tissue culture of Argentine maize (Zea mays Al.) 11 J. Plant Physiol., 1985, v. 121- p. 119−122.
332. Rathor K.S., Hodges Т.К., Robinson K.P. A refined technique to apply electric currents to callus cultures // Plant Physiol., 1988, v. 88- p. 515 517.
333. Rathore K.S., Goldsworthy A. Electrical control of shoot regeneration in plant tissue culture // Bio/technology, 1985, v. 3, p. 1107−1109.
334. Rhoades M.M., Dempsey E. On the mechanism of chromatin loss induced by the В chromosome of maize // Genetics, 1971, v. 71, p. 7396.
335. Rice T.B. Tissue culture induced genetic variation in regenerated maize inbreds. In: Proc. 37th Annu. Corn and Sorghum Res. Conf., Chicago, 1982, p. 148−162:
336. Ristic Z., Cass D.D. Dehydration avoidance and damage to the plasma and thylakoid membranes in lines of maize differing in endogenous levels of abscisic acid//J. Plant Physiol., 1993, v. 142, p. 759−764.
337. Rowland. G.G., McHughen A., Gusta L.V., Bhatty R.S., MacKenzie S.L., Taylor D.C. The application of chemical mutagenesis and biotechnology to the modification of linseed (Linum usitatissimum L.) // Euphytica, 1995, v.85, p. 317−321.
338. Ryan S.A., Scowcroft W.R. A somaclonal variant of wheat with additional 13-amilase isozymes // Theor. Appl. Genet., 1987, v. 73, p. 459−464.
339. Sachs M.M., Tuan-Hua, Ho D. Alteration of gene expression during environmental stress in plants // Annu. Rev. Plant Physiol-, 1986, v. 37, p. 363−376.
340. Sacristan M.D. Karyotypic changes in callus culture from haploid and diploid plants of Crepis capillaries L. // Chromosoma, 1971, v. 33, p. 273−283.
341. Sacristan M.D., Wendt-Gallitelli M.F. Transformation to auxin-autotrophy and its reversibility in a mutant line of Crepis capillaris callus culture // Mol. Gen. Genet., 1971, v. 110, p. 355−360.
342. Saitou N, Nei M. The neibor-joining method: a new method- for reconstructing phylogenetic trees // Mol. Biol. Evol., 1987 v. 4, p. 406−425-
343. Saleh N.M., Gupta H.S., Finch R.P. Stability of mitochondrial DNA in tissue-cultured cells of rice//Theor. AppK Genet., 1990, v. 79, p. 342 346.
344. Salvi N.D., George L., Eapen S. Plant regeneration from leaf base callus of turmeric and random amplified polymorphic DNA analysis of regenerated plants // Plant Gell Tissue Organ Cult., 2001, v. 66, p. 113 119.
345. Saneoka H., Nagasaka C., Hahn D.T., Yang W.-J., Premachandra G.S., Joly R.J., Rhodes D. Salt tolerance of glycine-betaine-deficient and containing maize lines // Plant Physiol., 1995, v. 107, p. 631−638.
346. Sasaki K., Schimomura K., Kamada H., Harada H. IAA metabolism in embryogenic and non-embryogenic carrot cells // Plant and Gell Physiol., 1994, v. 35, p. 1159−1165.
347. Schmidt M., Walz C., Hesemann C.U. Somaclonal variation of the mitochondrial ATPase subunit-6 gene region in regenerated triticale shoots and full-grown plants // Theor. Appl. Genet., 1996, v. 93, p. 355−360.
348. Scowcroft W.R., Larkin P.J., Brettel R.I.S. Genetic variation! from tissue culture. In: Use of Tissue Culture and Protoplasts in Plant Pathology, Acad. Press, Australia, 1983, p. 121−133.
349. Sebestiani L., Lenzi A., Pugliesi C., Fambrino M. Somaclonal variation for resistance to Verticillum danliae in potato (Solanum tuberosum L.) plants regenerated from callus // Euphytica, 1994, v. 80, p. 513−515.
350. Semal J., Lepoivre P. Application of tissue culture variability to crop improvement. In Plant Tissue Culture: Applications and Limitations. (Bhojwani S.S. ed.), 1990, Amsterdam et al., p- 301−315.
351. Shepard J.F., Bidney D., Shalin E. potato Protoplasts in crop improvement//Science, 1980- v. 208- p. 17−24.
352. Sheridan W.E., Clark J.K. Maize embryogeny: a promising experimental system//Trends Genet., 1987, v. 3, p. 3−6.
353. Shi Y., Liu J. Establishment of somatic embryoid-clone and plant regeneration of forage maize // GMICN, 1986, v. 2, p. 8−12.
354. Shinozaki K., Yamaguchi-Shinozaki K. Molecular responses to drought stress. Abstr. Intern. Workshop «Molecular Biology of Drought Tolerance in Crop Plants», Varna, Bulgaria, 1998, p. 5−6.
355. Shirzadegan M., Christey M., Earl E.D. et al. Rearrangement, amplification and assortment of mitochondrial DNA molecules in cultured cells of Brassica campestris U Theor. Appl. Genet., 1989, v. 77, p: 17−25.
356. Smith M.K., McComb J.A. Selection for NaCl-tolerance ins cell? cultures of Medicago sativa and recovery of plants from a NaCl-tolerant cell line // Plant Cell Rep., 1983, v. 2, p. 126−128.
357. Smith R.H., Bhashkaran S., Miller F.R. Screening for drought tolerance in sorghum using cell culture // In Vitro Cell and Dev. Biol., 1985, v. 21, p.541−543.
358. Smulders M.J.M., Rus-Kortekaas W., Vosman B. Tissue culture-induces DNA methylation? polymorphisms in repetitive DNA of tomato calli and regenerated plants // Theor. Appl. Genet., 1995, v. 91, p. 1257−1264.
359. Somers D.A., Anderson P.C. In vitro selection for herbicide tolerance in maize. In Biotechnology in Agriculture and Forestry, v. 25 Maize (Bajaj Y.P.S. ed.), Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 1994, p. 293 313.
360. Songstad D.D., Duncan D.R., Widholm J.M. Effect of 1-aminocyclopropane-l-carboxylic acid, silver nitrate and norbornadiene on plant regeneration from maize callus cultures // Plant Cell Rep., 1988, v. 7, p. 262−265.
361. Songstad D.D., Duncan D.R., Widholm J. M- Proline and polyamine involvement in chilling tolerance of maize suspension cultures // J. Exper. Bot., 1990, v.41, p.289−294.
362. Songstad D.D., Petersen W.G., Armstrong C.G. Establishment of friable embryogenic (type II) callus from immature tassels of Zea mays (Poacea) // Amer. J. Bot., 1992, v. 79, p. 761−764.
363. Sorenson J.C. The structure and expression of nuclear genes in higher plants // Adv. Genet., 1984, v. 22, p. 109−144.
364. Springer W.D., Green C.E., Kohn K.A. A histological examination of tissue culture initiation from immature embryos of maize // Protoplasma, 1979, v. 101, p. 269−281.
365. Srivastava D.K., Gupta V.K., Sharma D.R. Regeneration in water stress tolerant callus cultures of tomato (Lycopersicon esculentum L. cv. Solan Gold). Abstr. VIII Intern. Congr. «Plant Tissue and Cell Culture», Florence, Italy, 1994, p. 124.
366. Sun Z.X., Zhao C.Z., Zheng K.L., Qi X.F., Fu Y.P. Somaclonal genetics of rice Oryza sativa L. // Theor. Appl. Genet., 1983, v. 67, p. 67−73.
367. Sung Z.R., Smith I., Signer E.R. Quantitative mutagenesis in soybean suspension culture. In: Genetic Manipulation with Plant Material, 1975, p. 53−58.
368. Suprasanna P., Kao K.V., Reddy G.M. Plantlet regeneration from glume calli of maize (Zea mays L.) 11 Theor. Appl. Genet., 1986, v. 72, p. 120−122.
369. Swanson E.B., Herrgesell M.J., Arnoldo M-, Sippell D.W., Wong R.S.C. Microspore mutagenesis and selection: Canola plants with field tolerance to imidazolinones // Theor. Appl. Genet., 1989, v. 78, p. 525 530.
370. Swedlund Bi, Vasil Т.К. Cytogenetic characterization of embryogenic callus and regenerated plants of Pennisetum americanum (L.) K. Schun. // Theor. Appl- Genet., 1985, v. 69, p. 575−581.
371. Tantau H., Dorffling К. In vitro-selection of hydrozyproline-resistant cell: lines, of wheat (Triticum aestivum): accumulation: of proline, decrease in osmotic potential, and increase in frost tolerance // Physiol.Plant., 1991, v. 82, p. 243−248.
372. Taylor C.B. knox-on effects on leaf development // The Plant ^ Cell, 1997, v. 9, p. 2101−2105.
373. Taylor P.W.J., Fraser T.A., Ко H.-L., Henry R.J. RAPD analysis of sugarcane during tissue culture. In: Current Issue in Plant Molec. and Cell Biol (Terzi M., Cella R., Falavigna A. eds.), Kluwer Acad. Publ.,
374. Dirdrecht et al., 1995, p. 241−246.
375. Teichmann Т., Guan C., Kristoffersen P., Muster G., Tietz O., Palme K. Cloning and biochemical characterization of an anionic peroxidasefrom Zea Mays // Eur. J. Biochem., 1997, v. 247, p. 826−832.
376. Thamitong P., Furusawa I., Yamamoto M. Resistant tobacco plants from protoplast-derived calluses selected for their resistance to Pseudomonas and Alternaria toxins // Theor. Appli Genet., 1983, v. 66, p. 209−215.
377. Thompson A.J., Gunn RJE., Jellis G.I., Boulton RJE., Lacey С .NT). The evaluation of potato somaclones. In: «Somaclonal Variations and Crop Improvement» (Semal J. ed.), Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht et al., 1986, p. 236−243.
378. Todd J., Cooke R., Racusen H., Cohen J.D. The role of auxin in plant embryu&eiiesis H The Plant Cell- 1993, v. 5, p. 1494−1495.
379. Todorovska H., Trifonova A., Petrova M. et al. Agronomic performance and molecular assessment of tissue culture-derived barley lines // Plant Breed-, 1997, v. 116, p. 511−517.
380. Tomes D.T., Smith O.S. The effect of parental genotype on initiation of embryogenie callus from elite maize {Zea mays L.) germplasm // Theor. Appl. Genet., 1985, v. 70, p. 505−509-
381. Tome J.M., Santos M.A., Pons A., Blanco M. Regeneration of plants from mesocotyl tissue cultures of immature embryos of Zea mays L. // Plant Sci., 1980, v. 17, p. 339−344.
382. Tuberosa R., Lucchese C. Long-term totipotent callus cultures in the maize inbred B79 // Agr. Med., 1989, v. 119, p. 412−416.
383. Tuberosa R., Sanguineti M.C., Landi P., Salvi S., Maccaferri M.,
384. Umbeck P.F., Gengenbach B.G. Reversion of male-sterile T-cytoplasm maize to male fertility in tissue culture // Crop Science, 1983, v.23, p.584−588.
385. Vain P., Flament P., Soudain P. Role of ethylene in embryogenic callus initiation and regeneration in Zea L. // J. Plant Physiol., 1990, v. 135, p. 537−540.
386. Vain P., Yean H., Flament P. Enhancement of production and regeneration of embryogenic type II callus m Zea mays L. by AgNC>3 // Plant Cell Tissue Organ Cult., 1989, v. 18, p. 143−151.
387. Van der Bulk R.W. Application of cell and tissue culture and in vitro selection for disease resistance breeding a review // Euphytica, 1991, v. 56, p. 269−285.1. T>
388. Vasil V., Chin Yu.L., Vasil Т.К. Histology of somatic embryogenesis in cultured immature embryos of maize (Zea mays L.) // Protoplasma, 1985, v. 127, p. 1−8.
389. Vasil V., Vasil I.K., Lu C. Somatic embryogenesis in long-term calluscultures of Zea mays L. (Gramineae) // Amer. J. Bot., 1984, v. 71, p. 158−161.
390. Vyskot В-, Gardova В., Siroky J. Methylation pattern of two repetitive DNA sequences in tobacco tissue culture and their regenerants // Biol. Plantarum, 1993, v. 35, p. 321−327.
391. Wang W.C., Marshall D- Genomic rearrangement in long-term shoot competent cell cultures, of hexaploid wheat // In Vitro Cell. Devel. Biol. Plant, 1996, v. 32, p. 18−25.
392. Wang X., Wang Q., Song M., Zheng E. Effect stimulation with weak electric currents on in vitro culture of cabbage // Acta Bot. Sinica, 1993, v. 35, Suppl., p. 66−70.
393. Watmough S.A., Dickinson N.M. Multiple metal resistance and Co-resistance in Acer pseudoplatanus L. (Sycamore) callus cultures I I Ann. Botany, 1995, v. 76, p. 465−473.
394. Weigel R., Wolf M., Hesemann C.U. Mitochondrial DNA variation in plants regenerated from embryogenic callus cultures of cms triticale // Theor. Appl. Genet., 1995, v. 91, p. 1237−1241.
395. Weisenseel M.H., Dorn A., JafFe L.F. Natural H+ currents traverse growing roots and root hairs of barley (Hordeum vulgare L.) // Plant Physiol., 1979, v. 64, p. 512−518.
396. Wersuhn G. Obtaining mutants from cell cultures I I Plant Breed., 1989, v. 102, p. 1−9.
397. West M.A.L., Harada J.J. Embryogenesis in the higher plants: an overview//The Plant Cell, 1993, v. 5, p. 1361−1369.
398. Widholm J.M. Cultured- carrot cell mutants: 5-methyltryptophan-resistance trait carried from cell- to plant and- back // Plant Sci. Lett., 1974, v. 3, p. 323−330-
399. Widholm J.M. Selection and characterization of Daucus carota L. cell line resistant to four amino acid analogues// Ji Exper. Bot., 1978, v. 29, p. 1111−1116.
400. Wilkinson T.C., Thompson S.A. Genotype, medium- and genotypexmedium effects on the establishment of regenerable maize callus // Maydica, 1987, v. 32, p. 89−105.
401. Willman M.R., Schroll S.M., Hodges Т.К. Inheritance of somatic embryogenesis and plantlet regeneration from primary (type I) callus in maize // In vitro Cell and Dev. Biol., 1989, v. 25, p. 95−100.
402. Winicov I. Characterization of salt tolerant alfalfa (Medicago sativa L.) plants regenerated from salt tolerant cell lines // Plant Cell Rep., 1991, v. 10, p. 561−564.
403. Woodward B.R., Furze M.J., Cresswell C.F. Callus initiation and somatic embryogenesis in root cultures of the maize inbred line 21A-6 // S. Afr. J. Bot., 1990, v. 56, p. 695−699.
404. Wright J., Reilley A., Labriola J., Kut S., Orton T. Petaloid male-sterile plants from carrot cell cultures // Hortscience, 1996, v. 31, p. 421−425.
405. Wright T.R., Penner D. Cell selection and inheritance of imidazolinone resistance in sugarbeet {Beta vulgaris) II Theor. Appl. Genet., 1998, v. 96, p. 612−620.
406. Xie: Q.J., Rush M.C., Linscombe S.D. Inheritance of homozygous somaclonal variation in rice // Crop Sci., 1996, v. 36, p. 1491−1495.
407. Yang H., Tabei Y., Kamada H-, Kayano Т., Takaiwa F. Detection of somaclonal variation in cultured rice cells using digoxigenin-based random amplified ро1утофЫс DNA // Plant Cell Rep., 1999, v. 18, p. 520−526.
408. Yang H., Tabei Y., Kamada H., Kayrano Т., Takaiwa F. Detection of somaclonal variation in cultured rice cells using digoxigenin-based random amplified polymorphic DNA // Plant Cell Rep., 1999, v. 18, p. 520−526.
409. Ye J. M-, Kao K.N., Harvey B.L., Rossnagel B.G. Screening salt-tolerant barley genotypes via F (-anther culture in salt stress media // Theor. Appl. Genet., 1987, v. 74, p. 426−429.
410. Yeo A. Molecular biology of salt tolerance in the context of whole-plant physiology// J. Exper. Bot., 1998, v. 49, p. 915−929.
411. Yeoman M.M. The mitotic cycle in higher plants. In: The Gell Cycle (Japess P.C.L. ed.), Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1981, p. 161 184.
412. Zabrodina M.V., Karyagina A.S., Khavkin E.E., Shilov I.A. A188 inbred and its somaclones do not differ in lengths of amplified fragments of the anionic peroxidase gene ZmAP 1 // Maize Genet. Coop. Newslett., 1999, № 73, p. 69−70.
413. Zaghmout O.M.-F., Oliver M.J. Differential modulation- of root formation in wheat embryogenic callus culture- by indoleacetic acid-degrading compounds //J. Exper. Bot., 1995, v.46, p. 155−159.
414. Zagorska N.A., Shamina Z.B., Butenko R.G. The relationship of morphogenetic potency of tobacco tissue culture and its cytogenetic features // Biol. Plantarum, 1974, v. 16, p. 262−274.
415. Zehr B.E., Williams M.E., Duncan D.R., Widholm J.M. Somaclonal variation in the progeny of plants regenerated from callus cultures of seven inbred lines of maize // Can.J.Botany, 1987, v.65, p.491−499.
416. Ziauddin A., Kasha K.J. Long-term callus cultures of diploid barley (Hordeum vulgare). II. Effect of auxins on chromosomal status of cultures and regeneration of plants // Euphytica, 1990, v. 48, p. 279 286.
417. Zorinyants S.E., Nosov A.V., Badaeva E.D., Smolenskaya I.N., Badaev N.N. Cytogenetic analysis of a long-term Triticumtomopheevii (Zhuk.) Zhuk. Cell suspension culture // Plant Breed, 1995, v. 114, p. 219−225.