Применение электрохимически активированных растворов натрия хлорида в технологическом процессе переработки птицы

Актуальность темы

Поиск новых эффективных экологически безопасных дезсредств остается актуальным для ветеринарной науки и практики.

Современные цеха убоя птицы представляют собой, как правило, высокомеханизированные предприятия, насыщенные техническими и технологическими средствами, сложными механизмами, измерительной аппаратурой и инструментами, поверхность которых часто чувствительны к коррозионному и деструктивному действию некоторых дезинфицирующих растворов. Кроме того, поверхность оборудования, воздух помещений, технологическая вода имеют тесный контакт с пищевыми продуктами. В наличие имеют место техногенные загрязнители (кровь, жир и пр.) оборудования. Сказанное и определяет собой строгие требования к дезинфицирующим раствором для указанных ветеринарных объектов. Главными из этих требований являются: слабая токсичность, широкий спектр антимикробного действия, отсутствие запаха и маркости, способность быстро разрушатся во внешней среде (Поляков A.A., 1964; Бошьян Г. М., 1968; Тржецецкая Т. А., 1970; Иванова В. И., 1975; Закомырдин A.A., 1981 и др.).

Для практического применения предложен широкий арсенал традиционных и новых химических дезсредств (гидрооксиды, кислоты, альдегиды, хлорсодержащие и пр.), однако большинство из них мало пригодны для дезинфекции объектов, имеющих контакт с пищевыми продуктами.

Перспективным направлением в поиске доступных санирующих препаратов является использование биоцидов, которые созданы на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов: анолит кислый (АК), анолит нейтральный (АН), анолит нейтральный катодный (АНК), а также щелочной католит (К). Эти электролиты синтезируются в проточных электрохимических реакторах ПЭМ-3 (Бахир В.М., Задорожний Ю. Г., 1982; Бахир В. М., Задорожний Ю. Г., Леонов В. И., Прилуцкий В. И.,.

Паничева С.И., 1990). Эти технические системы электрохимического синтеза активированных растворов разработаны Бахир В. М. и другими (1978).

Установлено, что электрохимически активированные анолиты обладают высокой окислительной, бактерицидной, вирулицидной и фунгицидной активностью (Вахидов В. В, 1978; Бахир В. М, 1978; Алехин С. А., 1978).

Применительно к практике ветеринарной санитарии первые исследования ЭХА растворов, практически одновременно (1982;1983 гг.) были начаты во ВНИИВСГЭ (Ваннер Н.Э.) и ВНИИТИП (Богатова О.В.). В настоящее время ЭХА растворы применяются в целом ряде отраслей народного хозяйства. Так, растворы нейтрального анолита АНК официально разрешены Минздравом РФ для применения в качестве моющих, дезинфицирующих и стерилизующих средств на объектах здравоохранения. В 1997 г. ВНИИМП (Костенко Ю.Г.) разработал нормативный документ по применению АНК для дезинфекции мясного оборудования. Вместе с тем, многие аспекты применения анолита АНК на объектах ветеринарного надзора, в том числе на мясоперерабатывающих предприятиях, нуждаются в дополнительных исследованияхактуальной проблемой для этих предприятий остается санация кожного покрова потрошеных тушек кур, а также дезинфекции оборудования цехов убоя птицы.

Целью исследований является научное обоснование и разработка эффективных режимов и технологии санации тушек птицы (на примере возбудителей сальмонеллеза птиц) и обеззараживания оборудования цехов их переработки с применением нейтрального анолита АНК, электрохимически синтезированного на установках типа СТЭЛ и Аквахлор.

Для достижения цели на разрешение были поставлены следующие задачи: 1. Изучение бактерицидных свойств нейтрального анолита АНК с различными физико-химическими показателями (Сах, рН, ОВП) на примере возбудителей сальмонеллеза и колибактериоза, а также вирулицидности в отношении вируса ньюкаслской болезни птиц.

2. Разработка эффективных режимов влажной дезинфекции различных поверхностей, контаминированных возбудителями сальмонеллеза и колибактериоза, раствором нейтрального анолита АНК, получаемого на установках СТЭЛ-60−03 АНК и СТЭЛ-1 ОН-120−01 и Аквахлор.

3. Разработка режима аэрозольной дезинфекции помещений с применением аэрозольного генератора ЦАГ-«Джет» и нейтрального анолита АНК, получаемого на установке СТЭЛ-60−03-АНК.

4. Разработка режима и технологии санитарной обработки наружных и внутренних поверхностей потрошеных тушек птицы с применением растворов нейтрального анолита АНК, получаемых на установках СТЭЛ-60−03 АНК, СТЭЛ-1 ОН-120−01 и Аквахлор.

5. Изучить санитарно-микробиологические показатели цехов убоя и бактериальной обсемененности тушек птиц в технологическом процессе их переработки.

6. Проведение производственных испытаний по применению нейтрального анолита АНК для дезинфекции поверхностей оборудования цеха убоя и при санитарной обработке тушек птицы.

7. Изучение качественных показателей тушек птиц обработанных нейтральным анолитом АНК.

8. Провести технико-экономическую оценку применения анолита АНК и разработать рекомендации по использованию ЭХА растворов в птицеперерабатывающей промышленности.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Глава 1. Ветеринарная санитария в убойных цехах птицеперерабатывающей промышленности.

Современные задачи производства продуктов питания для человека требуют широкого внедрения высокоэффективных средств ветеринарно-санитарной обработки на предприятиях птицеперерабатывающей промышленности. Согласно данным литературы, для обеззараживания объектов мясоперерабатывающих предприятий используют различные химические препараты — щелочи, кислоты, органические соединения, и физические препараты — температура, свет, ультрафиолет, озон и др.

Убой птицы производят, как правило, на механизированных предприятиях, насыщенных техническими и технологическими средствами, сложными механизмами, поверхность которых часто чувствительны к коррозионному и деструктивному действию некоторых дезинфицирующих растворов. Кроме того, поверхность оборудования, воздух помещений, технологическая вода имеют тесный контакт с пищевыми продуктами. В наличие имеют место техногенные загрязнители (кровь, жир и пр.) оборудования. Сказанное и определяет собой строгие требования к дезинфицирующим раствором для указанных ветеринарных объектов. Главными из этих требований являются: слабая токсичность, широкий спектр антимикробного действия, отсутствие запаха и маркости, способность быстро разрушатся во внешней среде (Поляков A.A., 1964; Закомырдин A.A., 1981).

Дезинфекция убойных цехов преследует две главные целипредотвращение возможного распространения инфекционного начала и получения мяса птицы высокого санитарного качества. Практически повседневную угрозу предприятиям представляют такие инфекции, как колибактериозы, сальмонеллезы, микозы и некоторые другие (Онегов А.П. 1978; Бессарабов Б. Ф., 1983; Ярных B.C., 1987 и пр.).

Ветеринарная практика располагает широким арсеналом традиционных и новых химических дезсредств (гидрооксиды, кислоты, альдегиды, хлорсодержащие и пр.), однако большинство из них мало пригодны для дезинфекции объектов, имеющих контакт с пищевыми продуктами. Наиболее пригодными в этом плане являются растворы перекиси водорода, некоторые надперекисные и хлороксидные соединения, которые быстро разрушаются во внешней среде, но для практики они пока малодоступны (Дудницкий И.А., 1982; Бутко М. П., 1984 и др.). В частности, для дезинфекции убойного зала, холодильников и пр. применяются 2% горячий раствор едкого натрия, 4% горячий раствор капоцида, осветленный раствор хлорной извести или гипохлор, содержащий 2% активного хлора- 0,5% раствор трихлоризоциануровой кислоты (Лукашев В.В. 1991).

Мясо птицы — полноценный пищевой продукт, который занимает достойное место в меню человека. Мясо птицы содержит биологически полноценные белки, витамины и другие компоненты, обладает хорошими вкусовыми достоинствами.

При переработке и хранении пищевого сырья может происходить его контаминирование патогенными микроорганизмами. Наличие микроорганизмов приводит к изминению физико-химических показателей, а иногда и к порче продуктов, что может вызвать пищевые отравления.

В течение последних несколько лет постоянно возрастал интерес к микробиологическому качеству, содержанию дезинфицирующих средств, гормональных стимуляторов роста и др. компонентов в мясе птицы. (Смирнов A.M., 2003) Это можно объяснить тем, что употребление в пищу мяса птицы нередко приводит к заболеваниям. (Marenzi Ch., 1983).

Сальмонеллы остаются наиболее распространенными микроорганизмами, вызывающие пищевые токсикоинфекции. Чаще всего они передаются от животных человеку. Основным источником сальмонелл является больная птица, а также продукт (мясо, яйца, меланж) и сырье (пух, перо).

Современные технологические процессы в птицеперерабатывающей промышленности не могут исключить загрязнения тушек птиц и оборудование от сальмонелл и других микроорганизмов.

Для предотвращения преждевременной порчи и сохранения пищевой ценности продуктов питания необходимо прекратить или замедлить жизнедеятельность микроорганизмов.

Микробную обсеменненость тушек птицы в процессе их обработки можно уменьшить несколькими методами — физическими (ионизирующее, УФЛ, гамма облучение) и химическими (водные растворы ПАВ, полифосфаты, сорбат калия, углекислый газ, ацетат натрия, хлорированная вода, озон, сода, перекись водорода, молочная, уксусная, надуксусная, аскорбиновая кислоты) (Козак С.С., Гусев A.A. и др. 1992).

Одним из перспективных направлений в поиске новых санирующих препаратов является использование биоцидов, которые созданы на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов: анолит кислый (АК), анолит нейтральный (АН), анолит нейтральный катодный (АНК), а также щелочной католит (К). Эти электролиты синтезируются в проточных электрохимических реакторах ПЭМ-3 установок СТЭЛ, и реакторах ПЭМ-7 установок Аквахлор (Бахир В.М., Леонов В. И., Задорожний Ю. Г., Паничева С. И. 1990; Бахир В. М. 2004).

ЭХА представляет собой совместное электрохимическое и электрофизическое воздействие на воду или водо-солевые растворы в двойном электрохимическом слое поляризованного электрода электрохимической системы (Бахир В.М., 1982).

Глава 2. Технические средства и технология получения электрохимически активированных растворов.

Из истории развития науки по созданию технических средств для электрохимической активации (ЭХА), известны сведения об использовании трех типов диафрагменных электролизеров: статических, погружных и проточных (СредАзНИИГаз, 1980). По техническим, технологическим и функциональным показателям наибольшее признание получили проточные аппараты. Начало широким работам в области электрохимической активации было положено в 1972 году исследованиями инженера Бахира В. М. в Ташкентском НИИ Природного Газа Министерства Газовой Промышленности СССР (СредАзНИИГаз). После первых успешных испытаний электрохимических методов регулирования свойств буровых растворов и воды в технологических процессах бурения нефтяных и газовых скважин В. М. Бахиром и инженером Ю. Г. Задорожним были созданы лабораторные и промышленные установки для электрохимической анодной и катодной (униполярной) обработки воды и водных растворов. За период с 1973 по 1981 годы коллективом исследователей из СредАзНИИГаза было получено более 200 авторских свидетельств на изобретения в области электрохимической активации. Результаты исследований привлекли к этим работам внимание многих исследователей из различных отраслей.

Первые установки для электрохимической активации воды (УЭВ-6), промышленный выпуск которых в 1978 г. освоил Кокандский (Узбекистан) завод «Большевик» Мингазпрома СССР, имели максимальную производительность 20 000 л/ч при потребляемой электрической мощности 30 кВА. Диапазон минерализации составлял от 5 до 50 г/л. Разработанная В. М. Задорожним установка ЭЛХА-003 имела производительность до 1000 л/ч и могла обеспечивать эффективную униполярную электрохимическую обработку воды и водных растворов с минерализацией от 0,3 до 300 г/л. Потребляемая установкой электрическая мощность составляла 1 кВА.

Уменьшение производительности установок с одновременным повышением их экономичности было обусловлено тем, что широкое практическое применение технологии электрохимической активации (ЭХА) возможно только при наличии технических электрохимических систем с малым удельным расходом электроэнергии, обеспечивающих максимальную степень метастабильности растворов в результате униполярного электрохимического воздействия, допускающих работу в разнообразных гидравлических системах без конструктивных изменений и имеющих значительный ресурс непрерывной работы.

Усовершенствование электрохимических устройств шло по линии создания долговечных, экономичных, экологически чистых, токсикологи чески безопасных, удобных в эксплуатации реакторов стационарного и проточного типа, позволяющих включать их без каких-либо сложных промежуточных согласующих систем в современные различные технологические процессы. Такие системы в виде проточных электрохимических модульных элементов ПЭМ были созданы В. М. Бахиром и Ю. Г. Задорожним во ВМНИИМТ в 1989 г. На их основе были разработаны проточные электрохимические реакторы РПЭ, использованные в первых опытных образцах установок СТЭЛ для синтеза электрохимически активированных стерилизующих, дезинфицирующих и моющих растворов. При обработке водных сред в модуле ПЭМ все продукты электрохимических реакций, включая высокозаряженные метастабильные частицы, полностью поступают в протекающую водную среду и насыщают ее, равномерно распределяясь по всему объему. В результате из анодной и катодной камер выходят раздельно анолит и католит с физико-химическими характеристиками, определяемыми величиной тока, объемной подачей водной среды и ее минеральным составом. К настоящему времени разработаны четыре модификации элемента ПЭМ (ПЭМ-1, ПЭМ-2, ПЭМ-3, ПЭМ-4).

Установки типа СТЭЛ для электрохимического синтеза дезинфицирующих средств из слабых и концентрированных растворов поваренной соли выпускают ряд предприятий:

• ОАО «НПО «Экран», ВНИИИМТ МЗ РФ — разработали и изготовляют СТЭЛ-1 ОН-120−01 (базовая модель) и типо-размерный ряд СТЭЛ с производительностью от 20 до 1000 л/ч, а также установки «Аквахлор

I 50″, «Аквахлор-100» и «Аквахлор-500»;

• АООТ НПО «Химавтоматика» изготовляет СТЭЛ-60−03-АНК и «Аквабиоцид" — автоматизированные установки;

• ООО «Экомед» изготовляет установки СТЭЛ-1 ОН-120−01 — универсальные (производят АНК, АК, К).

Ф Все установки СТЭЛ сертифицированы Госсанэпидемнадзором МЗ.

России по линии применения их в здравохраненииустановки СТЭЛ, производящие анолит кислый и католит рекомендованы для ветеринарной # практики Департаментом ветеринарии МСХ РФ (Закомырдин А.А., 1999).

Ф 2.1 Факторы, определяющие физико-химическую активность электрохимически активированных сред.

На основании экспериментов ряда авторов (Бахир В.М., Задорожний * Ю.Г., Прилуцкий В. И., Панина С. И., Лиакумович А. Г., Огаджанян С. И. и др.).

• по ЭХА сделаны некоторые обобщения относительно свойств электрохимически активированных растворов. Выделены группы факторов, обусловливающих их физико-химическую активность (по Бахиру В. М., 1998):

1) стабильные продукты электрохимических реакций, стабильные кислоты, ^ основания и т. д.;

2) высокоактивные неустойчивые продукты электрохимических реакций с периодом существования до десятков часов (в том числе свободные радикалы);

• 3) долгоживущие квазиустойчивые структуры, сформированные в области объемного заряда у поверхности электрода, как в виде свободных структурных комплексов, так и гидратированных оболочек ионов, молекул, радикалов, атомов.

Факторы первой группы определяют в основном кислотные и щелочные свойства ЭХА-сред. Факторы второй группы усиливают окислительные (электроноакцепторные) свойства анолита, а также восстановительные (электронодонорные) свойства католита, обуславливающие аномальные характеристики окислительно-восстановительного потенциала (ОВП). Факторы третьей группы придают ЭХА-средам каталитические (в том числе биокаталитические) свойства.

Факторы 2-й и 3-й групп могут быть получены только в условиях электрохимического синтеза. Имитация их иным путем невозможна, т.к. они возникают у поверхности электродов в электрическом поле напряженностью до нескольких миллионов вольт на сантиметр.

В упрощенной форме основные процессы, происходящие при получении ЭХА растворов можно представить следующим образом (по В.М. Бахиру):

1. Процесс электрохимической обработки в реакторе РПЭ (элемент ПЭМ) в катодной камере протекает следующим образом: 2Н20 + 2Ыа+ + 2е 2ЫаОН + Н2 2Н20 + 2е —> Н2 + 20Н" Н20 + 0Н'~Н202' 02 + е —> 02″ .

02″ + ьГ но2.

02 + Н20 + 2е —> Н02″ .

02 + 2Н2 + 2е —> Н202 + 20Н" .

Ы + е ^ Н*.

Н* + Н'-> Н2.

Н* + Н20-> ОН' + Н2.

0Н' + 0Нв-^Н202.

Н202<-*Н^ + Н02″ Н202+0Н" ->Н02″ +Н20 0Н' + Н02'^022' + Н20 022″ + Н202 -" 02″ + ОН- + он он + н2о2-*н2о.

2. В дальнейшем происходит образование нейтрального анолита АНК в анодной камере следующим образом (Практически анолит получают из ф католита):

2СГ — 2е С12 2Н20 — 4е ^ 4Н+ + 02 ф С12+Н2О^НСЮ + НС1.

НС1 + ЫаОН^ЫаС1 + Н2 ф СГ + 20Н' - 2е СЮ" + Н20.

ЗОН- - 2е НО2- + Н20 НО?" - е —" НО? ОН" - е ОН* т ОН*+ОН* Н202 нею + Н202 -> НС1 + 02 + Н20 * СЮ" + Н202 -> 'О? + СГ + Н20.

Схематически это можно представить на рисунке 1. АНК — электрохимический активированный анолит нейтральный (рН -7,2+0,5 ед.- ОВП+250. + 1000 мВ, — Ст- 100−500 мг/л (0,01−0,05%)). Активные 0 компоненты: НС10 (хлорноватистая кислота), СЮ" (гипохлорид-ион), НО?" (пероксид анион), Н02 (супероксид водорода), ОН* (гидроксил радикал), Н202 (перекись водорода), '02 (синглетный кислород), Оз (озон), С1″ (хлор радикал).

Рис. 1. Схема синтеза нейтрального анолита АНК.

Примечание:

1. Состав анолита АНК: НСЮ, СЮ", Н02″, Н02, Н202, о3, '02,С1*, 0Н*.

2. рН получаемого анолита 7,2±0,5 3. Нейтральность анолита обеспечивается за счет сопряженности кислых (НСЮ) и щелочных (СЮ", Н02″) фракций 4. На поверхностях происходит самопроизвольная нейтрализация анолита в течение от 30 до 120 мин 5. Концентрация компонентов анолита АНК: хлорактивныех (НСЮ, СЮ", СГ) — 80−95%- гидропероксидных (Н02, Н202, 03, '02) — 20−5%. Как видно из представленных данных, процент активного хлора в получаемом растворе анолита АНК, ничтожно мал. Согласно ГОСТу 2874−82 ПДК хлоридов (СГ) в воде должно быть не более 350 мг/л. Несмотря на то, что хлорноватистая кислота является наиболее сильным окислителем в ряду СЮ" .

Католит.

ХАЛ зкатолит.

С12<�НС10, наибольшей окислительной активностью обладают растворы активного хлора со значениями рН ~ 7,3. 7,8. Это объясняется тем, что при таких значениях рН концентрации НС10 и СЮ" примерно одинаковы, так как они являются сопряженными кислотой и основанием. Кроме того, реакции, протекающие в средах близких к нейтральным, катализируются ионами ОН" и Н4″, т. е. все реакции протекающие в растворах активного хлора в среде с рН ~ 7,3. 7,8, являются катализируемыми.

Наличие в анолите достаточного количества сильных окислителей и свободных радикалов превращает его в раствор с сильно выраженными бактерицидными свойствами. При изучении химического состава анолита АНК установлено, что при концентрации оксидантов 100−500 мг/л содержание хлорактивныех компонентов (НС10, СЮ", СЮ2, С1″) составляет 80−95%- гидропероксидных компонентов (Н02, Н202, 03, '02) составляет 20−5% (Бахир В.М. и др., 2001).

ВЫВОДЫ.

1. Бактериальная обсемененность поверхностей оборудования и тушек птиц механизированного убойного цеха птицефабрики, оборудованного голландской линией фирмы «Stork» в процессе технологического цикла составляет:

• На поверхностях различного технологического оборудования (линия, столы и др.): по S. enteritidis — от 2 до б КОЕ/см, Е. coliот 10 до.

8,2−103 КОЕ/см2;

• На наружных поверхностях тушек бройлеров: S. enteritidis — от 2 до 4 КОЕ/см2- Е. coli — от 8 до 3,02−103 КОЕ/см2.

2. Установлено, что критическими контрольными точками (ККТ) по уровню бактериальной обсемененности оборудования и тушек птиц в технологическом процессе первичной переработки являются точки навески живой птицы, процесс нутровки, отделения потрохов от кишечника и ванна охлаждения, что следует учитывать при ветеринарно-санитарном контроле процесса убоя и переработки птицы.

3. Определено, что нейтральный анолит АНК, получаемый на установках СТЭЛ, в суспензионном тесте инактивирует:

• при Сах 200 мг/л (без белковой защиты): S. enteritidis (полевой штамм) и S. dublin, Е. coli (шт. 1257), St. aureus (шт. 209-Р), Pr. vulgaris в течение 3 мин.- при наличии белковой защиты S. enteritidis и S. dublin, Е. coli, Pr. Vulgaris — 10 мин., St. aureus — 15 мин.;

• при Сдх 500 мг/л (с белковой защитой): S. enteritidis, Е. coli — 3 мин., St. aureus — 5 мин., Вас. cereus — 180 мин.;

• при Сах 200−500 мг/л: вирус болезни Ньюкасла (штаммы — вакцинный «Ла-Сота» и полевой) — 30 мин.

4. Растворы оксидантов, получаемые на установках Аквахлор-50, -100, -500:

• при Сах 2000 мг/л инактивируют споры Вас. cereus в течение 30 мин.;

• при Сах 2000;3500 мг/л, после хранения в течение 23 суток (срок наблюдения) могут быть использованы в различных разведениях, сохраняя бактерицидные свойства в отношении вегетативной микрофлоры (на примере сальмонелл и стафилококков).

5. Установлено, что поверхности тест-объектов (дерево, оцинкованное железо, бетон и др.), контаминированные Б. етегШсИэ (с белковой защитой), обработанные раствором нейтрального анолита АНК обеззараживаются: у.

• при применении анолита с Сах 200 мг/л из расчета 600−800 мл/м" (двукратно, по 300−400 мл с интервалом 20 мин) и экспозиции 60 мин при контроле по сальмонеллам — на 100% и по естественному уровню микрофлоры — кишечной палочке на 62,0−100%;

• при применении анолита с С^ 500 мг/л при прочих равных условиях, но при экспозиции 90 мин, при контроле по сальмонеллам и кишечной палочке — на 100%.

6. Поверхности оборудования (конвейерная линия, столы и пр.) убойного цеха, по завершении технологического цикла, обработанные раствором нейтрального анолита АНК с С^ 200 мг/л, двукратно (с интервалом 30 у мин, половинной дозой и общем расходе анолита 800 мл/м), а сильно зажиреные, загрязненные белковой массой объекты (машина для потрошения, ванна охлаждения) трехкратно (1/3 частью дозы 800 мл/м при каждом нанесении раствора), обеззараживаются при экспозиции 2 часа после последнего нанесения при контроле по сальмонеллам — на 100% и кишечной палочке — 90,0−98,0%).

При обработке нейтральным анолитом АНК с Сах 500 мг/л, однократно в дозе 600−800 мл/м, а сильно зажиреные объектыдвукратно (половинной дозой с интервалом 30 мин) последние обеззараживаются при экспозиции 2 часа после последнего нанесения при контроле по сальмонеллам — на 100% и кишечной палочке — 91,0−99,0%).

7. Обработка поверхностей помещения для содержания птицы и оборудования аэрозолями нейтрального анолита АНК (С^ 500 мг/л) при расходе раствора 100 мл/м3 и экспозиции 90 мин обеспечивает их обеззараживание при контроле по сальмонеллам и кишечной палочкена 100%.

8. Поверхности потрошеных тушек птиц (бройлеров), контаминированные S. enteritidis, обеззараживаются путем погружения их в раствор нейтрального анолита АНК с Сах 200 мг/л в течение 30 мин при контроле по сальмонеллам — на 100% и кишечной палочке — 98,8%- при аналогичной обработке тушек анолитом АНК с С^ 500 мг/л обеззараживание достигается в течение 15 мин — по сальмонеллам — на 100% и по кишечной палочке — 99,9%.

В производственных условиях обработка тушек птицы анолитом АНК (Сах 500 мг/л) в ванне охлаждения в течение 15 мин обеспечивает обеззараживание их поверхности и раствора воды при контроле по сальмонеллам на 100% и кишечной палочке соответственно — 100 и 99,9%.

9. Установлено, что тушки птиц, обработанные анолитом АНК (С^ 500 мг/л), по органолептическим и физико-химическим показателям сохраняются без изменений, оставаясь свежими в течение 24 часов хранения при температуре воздуха +18°С.

Мясо тушек птиц, обработанных по указанному режиму анолитом АНК в опытах с применением тест-организмов тетрахимена пириформис и при постановке биологической пробы на белых мышах, было безвредным.

10. Проведенной технико-экономической оценкой затрат на синтез анолита АНК и его применения установлено, что стоимость получения 1л анолита на установках СТЭЛ с учетом материальных и трудовых затрат составляет 13 коп, а стоимость дезинфекции 1м" объекта — 0,09 руб., что в десятки раз дешевле в сравнении с другими дезинфектантами (Септодор, Гигасепт-Ф, Хлорамин, Аламинол и др.).

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ.

Технология и режимы применения электрохимически активированных растворов натрия хлорида в птицеперерабатывающей промышленности включены:

• по пп. 3.1.1, 3.2.3 в «Методические рекомендации по применению электрохимически активированных растворов в мясоперерабатывающей промышленности» (Утв. ВНИИВСГЭ 10.05.2002 и согласованы с ОАО НПО «Экран» 09.05.2002).

• по пп. 4, 5, 11 в «Инструкции по применению электрохимически активированных растворов натрия хлорида анолита (АНК) и католита, получаемых на установках типа СТЭЛ, для мойки и дезинфекции объектов ветеринарного надзора» (одобрены Отделением ветеринарной медицины Россельхозакадемии 1 июня 2005 г. и представлены в Федеральную службу по ветеринарному и фитосанитарному надзору РФ 19.10.2005 г., № 1−7/459).

• по п. 12 в «Инструкцию по санитарной обработке технологического оборудования и производственных помещений на предприятиях птицеперерабатывающей промышленности», которая представлена для утверждения в Федеральную службу по ветеринарному и фитосанитарному надзору РФ 13.10.2005 г., № 34/548.