Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Разработка технологии биосинтеза фермента лакказы базидиальными грибами рода Trametes

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Лакказа (я-дифенол:кислород оксидоредуктаза, КФ 1.10.3.2) относится к классу оксидаз, восстанавливающих молекулярный кислород непосредственно до воды без образования в качестве промежуточного продукта перекиси водорода или каких либо других кислородных интермедиатов. Голубые лак-казы из базидиальных грибов являются высокопотенциальными ферментами и обладают широкой субстратной специфичностью… Читать ещё >

Разработка технологии биосинтеза фермента лакказы базидиальными грибами рода Trametes (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Источники лакказы в природе
    • 1. 2. Базидиальные грибы как источники ферментов
    • 1. 3. Лигнолитический ферментативный комплекс грибов белой 21 гнили
    • 1. 4. Особенности роста в глубинной культуре и синтеза оксидаз 24 грибами рода Trametes
    • 1. 5. Влияние различных факторов на оксидазную активность
    • 1. 6. Области применения лакказы
  • Глава 2. Объекты и методы исследований
  • Глава 3. Выбор штамма-продуцента лаккказы
    • 3. 1. Определение фенолоксидазной активности штаммов на ага-ризованных средах по методу Бавендамма
    • 3. 2. Сравнение продуктивности штаммов-продуцентов в глубинной культуре в колбах на качалке
    • 3. 3. Сравнение отобранных штаммов в условиях глубинного культивирования в ферментационном аппарате. Выбор промышленного штамма-продуцента
  • Глава 4. Подбор компонентов полусинтетической питательной среды для получения высокой оксидазной активности Т. hirsuta
    • 4. 1. Изучение влияния количества сульфата меди на оксидазную активность
    • 4. 2. Изучение влияния источников углерода на оксидазную активность
    • 4. 3. Изучение влияния источников азота на оксидазную актив ность на средах с сахарозой
    • 4. 4. Изучение влияния источников фосфора на оксидазную активность на средах с сахарозой
  • Глава 5. Подбор компонентов и оптимизация состава комплексной питательной среды для получения высокой оксидазной активности Т. hir- 83 suta
    • 5. 1. Изучение влияния основного сырья на оксидазную активность
    • 5. 2. Изучение влияния источников азота на оксидазную активность на средах с мукой
    • 5. 3. Изучение влияния источников фосфора на оксидазную активность на средах с мукой
    • 5. 4. Изучение влияния ростовых факторов на оксидазную активность на средах с мукой
    • 5. 5. Оптимизация состава промышленной питательной среды
    • 5. 6. Изучение влияния количества сульфата меди на оксидазную активность на средах с мукой
    • 5. 7. Изучение влияния индукторов на оксидазную активность на 101 средах с мукой
  • Глава 6. Изучение влияния условий культивирования на оксидазную активность Т. hirsuta 56 и оптимизация режимных параметров процесса 104 ферментации
    • 6. 1. Влияние рН на оксидазную активность Т. hirsuta
    • 6. 2. Влияние температуры на оксидазную активность Т. hirsuta
    • 6. 3. Влияние интенсивности перемешивания на оксидазную активность Т. hirsuta
    • 6. 4. Влияние аэрации на оксидазную активность Т. hirsuta
    • 6. 5. Сравнение оксидазной активности Т. hirsuta 56 на исходной среде и средах после оптимизации состава и условий культивирования
    • 6. 6. Изучение оксидазной активности Т. ЫпЫа 56 при проведении многоциклических процессов
  • Глава 7. Разработка технологии производства лакказы, проведение опытно-промышленных испытаний и характеристика получаемого фермента
    • 7. 1. Определение критериев масштабирования, разработка промышленной технологии и опытно-промышленного регламента на производство ферментного препарата лакказы
    • 7. 2. Опытно-промышленные испытания технологического процесса
    • 7. 3. Биохимические характеристики препарата лакказы
    • 7. 4. Технико-экономическая оценка 138 ОСНОВНЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ И
  • ВЫВОДЫ
  • Список литературы

Производство ферментных препаратов является одним из ведущих направлений в развитии биотехнологии во всем мире. Ферментные препараты находят широкое применение в самых различных отраслях пищевой и легкой промышленностях, в косметологии, в производстве синтетических моющих средств, в медицине, в аналитических исследованиях, сельском хозяйстве, охране окружающей среды и ряде других областей. В связи с этим возникает задача получения значительных количеств ферментных препаратов с использованием достаточно простых технологических операций.

Лакказа (я-дифенол:кислород оксидоредуктаза, КФ 1.10.3.2) относится к классу оксидаз, восстанавливающих молекулярный кислород непосредственно до воды без образования в качестве промежуточного продукта перекиси водорода или каких либо других кислородных интермедиатов. Голубые лак-казы из базидиальных грибов являются высокопотенциальными ферментами и обладают широкой субстратной специфичностью по отношению к различным органическим и неорганическим соединениям, что делает возможным их использование совместно с медиаторами, являющимися одновременно их первичными субстратами. Применение лакказы перспективно во многих областях промышленности: целлюлозо-бумажной (делигнификации бумажной пульпы) — текстильной (экологически чистое отбеливание тканей) — тонком органическом синтезе (например, синтез электропроводящих полимеров) — пищевой (удаление следов кислорода в продуктах питания для увеличения срока хранения) — косметической (краска для волос, отбеливающая зубная паста) — производстве современных экологически чистых древесно-волокнистых плит (в качестве биосвязующего агента) — производстве моющих средств (отбеливающий агент) — для биодеградация ксенобиотиков, в том числе отравляющих веществэнергетике (кислородный электрод биотопливного элемента) — синтезе лекарственных препаратов (например, антибиотиков) — в биосенсорах (например, анализ фенольных соединений, включая лигнины, в сточных водах промышленных предприятий, определение антиоксидантного статуса вин) — иммуноферментном анализе (в качестве фермента-маркера). В связи с этим работа по созданию технологии производства лакказы является актуальной.

Особый интерес представляют фенолоксидазы, синтезируемые экологической группой дереворазрушающих грибов, вызывающих белую гниль древесины, относящихся к классу Basidiomycetes. Наибольшее значение из них имеют грибы рода Trame tes (Coriolus) (сем. Polyporaceae).

В связи с этим разработка технологии производства лакказы является актуальной задачей биотехнологии. Разработка стадии культивирования является важнейшей частью биотехнологического процесса. Однако наиболее важные этапы, такие как изучение оксидазной активности различных штаммов — потенциальных продуцентов лакказы и выбор штамма-продуцента, выбор и оптимизация компонентов питательной среды, изучение влияния технологических параметров на синтез целевого продукта и выбор оптимальных режимов культивирования в настоящее время недостаточно изучены.

Цель и задачи исследования

Целью настоящей работы была разработка технологии биосинтеза фермента лакказы грибами рода Trametes. Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Провести скрининг коллекционных штаммов грибов рода Trametes в глубинной культуре и на агаризованных средах и выбрать наиболее перспективный в качестве продуцента лакказы штамм;

2. Изучить влияние компонентов полусинтетической питательной среды на оксидазную активность (ОА).

3. Сравнить ОА штамма на комплексных средах из числа возобновляемого сельскохозяйственного сырья и подобрать дополнительные компоненты питательной среды. Изучить влияние индукторов на ОА штамма-продуцента;

4. Оптимизировать по ОА в качестве критерия оптимизации состав питательной среды с применением математических методов планирования эксперимента;

5. В условиях культивирования в ферментационном аппарате изучить влияние на синтез оксидаз рН, температуры, перемешивания и аэрации и определить оптимальные режимы культивирования;

6. На основании полученных результатов разработать технологический процесс стадии культивирования процесса производства лакказы.

Научная новизна работы.

• На агаризованой среде и в условиях глубинного культивирования впервые проведен скрининг 20 штаммов грибов рода Trametes — потенциальных продуцентов высокопотенциальных лакказ, относящихся к 4 видам: Т. versicolor, T. pubescens, T. ochracea, Т.hirsuta. Показано, что штаммовая вариабельность OA в рамках одного вида рода Trametes превышает видовые различия по этому показателю. Диапазон OA составил 0,00 — 0,90 Еоа. Показано, что результаты первичного отбора штаммов, проведенного на основании реакции Бавендамма, зависят от состава питательной среды и субстрата фермента и не совпадают с результатами, полученными в глубинной культуре.

• Показано, что наиболее эффективными для синтеза оксидаз являются сахароза, глюкоза, фруктоза и мальтоза. Продуктивность по OA существенно повышается в присутствии кукурузного экстракта и дрожжевого ав-толизата. Источники азота и фосфора в меньшей степени влияют на OA. Установлено, что содержание 0,03 мМ Си2+ в пересчете на CuS04 в среде достаточно для максимального синтеза лакказы штаммом. Определено сельскохозяйственное возобновляемое сырье, обеспечивающее высокую OA (пшеничная мука).

• Определен режим рН-статирования (4,0) для достижения максимальной активности и продуктивности по оксидазам. Показано, что оптимальная температура для достижения высокой OA (32 °С) не соответствует наиболее благоприятной для роста и накопления биомассы (28−30 °С). Подобран режим перемешивания и аэрации, обеспечивающий достаточную массопередачу кислорода при отсутствии травмирования мицелия и определен соответствующий объемный коэффициент массопередачи кислорода.

Установлена критическая линейная скорость мешалки (3,0−3,2 м-с" 1), при превышении которой происходит механическое воздействие на мицелий гриба, приводящее к снижению ОА.

• Показано, что основным ферментом, продуцируемым штаммом Т. hirsuta 56 на разработанной среде является высокопотенциальная (780±20 мВ) лакказа.

Практическая ценность работы.

На основании проведенных исследований выбран штамм Т. hirsuta 56 для промышленного использования в качестве продуцента лакказы. Проведено более 70 ферментаций в аппарате объемом 30 л. ОА штамма-продуцента за счет оптимизации среды и условий культивирования повышена более, чем в 40 раз. Разработана технология глубинного культивирования штамма-продуцента с получением высокоактивной культуральной жидкости, на основании которой создан проект опытно-промышленного регламента на производство технического препарата лакказы. Проведены технологические испытания на производственной базе ООО «Фирма „Макофарм“» (п. Лотоши-но), показавшие практическую реализуемость и эффективность разработанной технологии. Проведены испытания наработанных образцов и опытной партии технического ферментного препарата в качестве биосвязующего в производстве древесно-волокнистых плит (ЗАО ВНИИДРЕВ) и в тонком органическом синтезе (Институте биохимии им А. Н. Баха РАН), которые подтвердили соответствие полученных препаратов необходимым для производства требованиям. Предварительная технико-экономическая оценка с учетом стадии концентрирования показала, что при годовом объеме производства культуральной среды 4400 м, что составляет потребность одного предприятия при переводе всего производства древесно-волокнистых плит на использование биосвязующих, себестоимость получаемой продукции будет составлять 1339,2 рубля за 1 кг или 13,39 рубля за 1000 МЕ.

Апробация работы. Результаты диссертационной работы докладывались на 1-м (14−18 октября 2002 г.) и 2-м (10−14 ноября 2003 г.) Международных конгрессах «Биотехнология: состояние и перспективы развития», МоскваVI (20−24 мая 2002 г.) и VII (14−18 апреля 2003 г.) Междунар. симпозиумах «Техника и технология экологически чистых производств», Москва- 7-ой (14−18 апреля 2003 г.) и 8-ой (17−21 мая 2004 г.) Пущинской школе-конференции молодых ученых «Биотехнология — наука XXI века», ПущиноV междунар. конфер. «Инженерная защита окружающей среды», Москва, 14 — 15 апреля 2003 г.- 2 Междунар. конфер. «Наука-Бизнес-Образование», 1013 мая 2005, Пущино.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 15 печатных работ и подано 3 заявки на патенты РФ.

Структура и объем работы. Диссертационная работа включает: введение, обзор данных литературы, описание объектов, материалов и методов исследования, 5 глав, в которых изложены результаты экспериментов и их обсуждение, выводы, список цитируемой литературы, содержащий 198 наименований и 8 приложений. Материал изложен на 144 страницах, содержит 73 рисунка и 13 таблиц.

Вывод.

Предприятие «ООО «Фирма «Макофарм»» готово к проведению технологических испытаний и изготовлению опытных образцов ферментного препарата технической лакказы для предварительных испытаний и опытно-промышленной партии ферментного препарата технической лакказы в соответствии с ОПР 2 068 798−01−06 для предварительных испытаний в качестве компонента биосвязующего комплекса при производстве прессованных древесных материалов.

Председатель комиссии Г В. И. Крицкш.

Члены комиссии ЕЕ. Николаева.

О.В. Курбакова.

В.В. Шумилин.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.М. Отбор и культивирование лигноразрушающих грибов Микол. и фитопатол.- 1984.-Т. 18.- Вып. 3.- 210-
  2. В.Г., Стахеев И. В. Изучение условий глубинного культивирования мицелиальных грибов на соломе Микол. и фитопатол.1981.-Т. 15.-ВЫП.
  3. В.Г., Стахеев И. В. Условия биотрансформации соломы в белковый продукт мицелиальными грибами Микол. и фитопатол.-1985.- Т. 19.- № 1.-С. 32-
  4. В.Г., Щерба В. В. Образование биологически активных веществ фибами Coriolus hirsutus на гетерогенных средах Микробиология. 1987. Т. 56. Вып. 4.- 600-
  5. З.Э. Физиология грибов и их практическое использование. М.: Из-во МГУ, 1963.- 168с. Белова Н. В., Яковлева П. С, Псурцева П. В., Кияшко А. А. Продукция лакказ у базидиомицетов при фепментации в различных условиях Успехи медицинской микологии.- Т.9.-М.: Национальная академия микологии. 2007.-С. 144-
  6. В.В. Основы промышленной биотехнологии. М: «КолосС». 2004.-296с. Бирюков В. В., Кантере В. М. Оптимизация периодических процессов микробиологического синтеза-М.: Наука, 1985. -292 с. Болобова А. В., Аскадскнй А. А., Кондращенко В. И., Рабинович М. Л. Теоретические основы биотехнологии древесных композитов. Книга П. Ферменты, модели, процессы. М.: Наука, 2002. 343 с. 145
  7. Порядок Афиллофоровые.-СПб.: Наука, 1998.-390с. Бреславская О. В., Осина М. А. Амперометрический биосенсор для определения фенольных соединений Радиоэлектроника, электротехника и энергетика: 8 Международная научно-техническая конференция студентов и аспирантов, Москва 28 февр.-1 марта, 2002 Тезисы докладов. Т. 2. -М., 2002-С. 135-
  8. А.С. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре Киев: Наукова думка, 1988,-144с. Бухало А. С, Пархоменко Л. П., Марченко М. Н. Влияние различных источников углерода и азота в синтетических средах на рост базидиомицетов Микол. и фитопатол. 1972.- Т. 6.- Вып. 3.-
  9. Вечер А. С, Соломко Э. Ф., Скачков Е. Н., Дудка И. А. Бухало А. С, Паромчик И. И., Пчелинцева Р. К. Концентрат картофельного сока как субстрат для культивирования мицелия высших грибов Докл. АН БССР, 1978.-23.-№ 9.-С 855−858. 146
  10. В. П. Григорьева Н.К. Рост и образование окислительных ферментов дереворазрушающими грибами из рода Coriolus Микол. и фитопатол. 1983. т 17. 2. 127-
  11. В.П., Гусарова Л. А. Биологическое окисление базидиомицетами гидролизной последрожжевой фитопатол.- 1986. т. 20. Вып. 4. 285-
  12. В.П., Королева О. В. бражки Микол. и Перспективы промышленного катализаторов их получения специфических белков и биологических базидиомицетов Современная микология в России: Тез. докл. I Съезда микологов России. М., 2002. 293-
  13. Гаврилова нетрадиционного В.П., Шамолина И. И., Белова в Н. В. Возможности кожевенном и использования базидиомицетов текстильном производстве Биотехнология. 2002. J2 5. 74-
  14. О.Н., Королёва О. В., Ландесман Е. О., Степанова Е, В., Жердев А. В. Индукция биосинтеза лакказы как способ увеличения потенциала детоксификации базидиомицетами //Прикладная биохимия и микробиология. 2006. том 42. 4. 468-
  15. И.М., Кривова А. Ю. Технология ферментных препаратов/ И. М. Грачева, А. Ю. Кривова. 3-е изд., перераб. и доп. М.: Изд-во «Элевар», 2000.-512с. Гусарова Л. А., Низковская О. П., Семушкипа Т. Н., Баранова Т. И., Глущенко П. В. Выращивание и отбор высших мицелиальных грибов, продуцентов белка на гидролизованных средах Сб. тр. ВНИИгидролиза растительных материалов, 1982.-№ 32.-С. 94-
  16. Л.А., Низковская О. П., Семушкина Т. Н., Баранова Т.И. Выращивание высших базидиальных грибов продуцентов белка на гидролизных средах Мицелиальные грибы (физиология, биохимия. 147
  17. Н.И., Семичаевский В. Д., Трутнева И.А. Ферментные системы высших базидиомицетов Киев.: Наукова думка, 1989. 279с. Дворнина А. А., Лиса И. И., Копотиенко Н. Биостимуляторы нри глубинной ферментации базидиомицетов Проблемы культивирования съедобных грибов в СССР: Тез. докл. III Всесоюзного совещания. Пущино, 1991.-C.
  18. Н.П. Природа и биологическая роль нротеаз базидиальных грибов Микол. и фитопатол.- 1984.- т.18.- вын. 2.- 116-
  19. П.П., Алехина И. А. Фибринолитическая активность культур базидиомицетов Микол. и фитонатол.-1987.- т.21.- вын. 5.- 471-
  20. Н.П., Псурцева П. В., Чаргоглян А. А., Аконян Ш. И. Тромболитические ферменты базидиальных грибов Мицелиальные грибы (физиология, биохимия, биотехнология): Тез. докл. Всесоюзной конференции.-Пущино, 1983.-С. 137-
  21. Н.П., Псурцева П. В., Чарчоглян А. А., Ероян А. Г. Культуры высших съедобных грибов перснективные нродуценты тромболитических ферментов и пищевого белка Производство высших съедобных грибов в СССР.-Киев: Наукова думка. 1985.-С. 29-
  22. А. И., Скоробогатько О. В., Степанова Е. В., Яронолов А. И. Иммуноферментный анализ на основе лакказных конъюгатов с флуориметрической детекцией продукта ферментативной реакции// Прикладная биохимия и микробиология. -1995. -том 31. N 1 -С.128-
  23. Л. Г. Трутнева I. А., Опанасенко Т. В. Пектолитична aKTHBHicTb гриб{в роду Coriolus Quel. в культур! Укр. ботан. журн.- 1978.т. 3 5 M l С 66−70. 148
  24. Л.Г., Семичаевский В. Д., Мельничук Г. Г. Влияние рН среды на продуцирование внеклеточных ферментов дереворазрушающими базидиомицетами Микол. и фитонатол.- 1988.- т.22.- вып. 2- 135-
  25. Л.Г., Трутнева И.А. Съедобные агарикальные грибы источник внеклеточных пектолитических ферментов Микол. и фитопатол.1985.-С. 25-
  26. Е.В. Глубинное культивирование высших грибов на пентозном гидролизате древесины /Автореф. дис… канд. техн. наук.- Л, 1989.-20 с. Заварзина А. Г., Заварзин А. А. Активность лакказы и тирозиназы в лишайниках //Микробиология. -2
  27. М.В., Залашко Л. С. Микробный синтез на молочной сыворотке.- Минск: Наука и техника, 1976.- 127с. Землянухина О. А., Евдокимова О. А., Польских СВ. Лигнолитические ферменты базидиомицетов вешенки, шиитаке и кольцевика Современная микология в России: Тезисы докладов I Съезда микологов России. М., 2002.-С. 280-
  28. Ф.Н., Головина Г. И., Сивочуб О.А. Деградация лигнина базидиомицетами Микол. и фитопатол. 1990.-т. 24.-вып. 1.- 38-
  29. Н.Е., Мирчинк Т. Г. Влияние концентрации источников углерода на степень дифференциации грибного мицелия. Микробиология и фитопатология/- 1983. -17, -№ 5, 367-
  30. Д.А., Ревин В. В., Атыкян Н. А. Особенности ферментов лигнолитического комплекса гриба Panus tigrinus ВКМ F-3616 D Современная микология в России: Тезисы докладов I Съезда микологов России.- М., 2002.- 298. 149
  31. А.Н. Изучение физиологических потребностей съедобного дереворазрушающего гриба Panus tigrinus (Fr.) Sing. ИБК-131 при глубинном культивировании на полусинтетических средах Микроорганизмы продуценты биологически активных веществ: Тез. докл. молодю ученых. Рига, 1981.-С. 60-
  32. А.Н., Стахеев И. В. на Выращивание молочной мицелия дереворазрушающих базидиомицетов сыворотке Мицелиалъные грибы (физиология, биохимия, биотехнология): Тез. докл. Всесоюзная конференция.-Пущино, 1983.- 98-
  33. А.Н., Стахеев И. В., Важинская И. С. Рост мицелия Panus tigrinus (Bull.:Fr.)Sing. ИБК-131 в глубинной культуре на полусинтетической среде Производство высших съедобных грибов в СССР.- Киев: Паукова думка, 1985.-С. 128-
  34. А.Н., Бабицкая В. Г., Стахеев И. В. Возможность накопления биомассы базидиомицетами на отходах промышленности в глубинной культуре Becцi АН БССР.- Сер. Биолог.-1980.- 1.-С. 88-
  35. А.Н., Бухало А. С., Стахеев И. В. Изучение роста и синтеза протеина съедобным грибом Panus tigrinus (Fr.)Sing. ИБК-131 на средах с сх отходами Микробиологическая нромышленность: Паучн.-технич. реферат. сборник.-1983.-вып. 1.-С.2-
  36. А.Н., Романовец Е. С., Войт СП. Содержание
  37. А.Н., Щерба В. В., Стахеев И.В. Утилизация углеводов и органических кислот молочной сыворотки базидиомицетом Daedaleopsis 150
  38. А.В., Тарасевич М. Р., Чирков Ю. Г., Богдановская В. А. Активный слой кислородного электрода на основе панокомпозитного материала: дисперсный углеродный носитель лакказа// Электрохимия. 2004.-т. 4 0 9 1049−1
  39. Т. е., Захарченко В. А. Рост и спороношение видов рода Penicillium Link ex Fr. при различной концентрации водородных ионов в среде Микол. и фитопатол.- 1983.- т. 17.- вып. 4.- 310-
  40. О.В., Степанова Е. В., Гаврилова В. П., Яковлева Н. С., Ландесман Е. О., Ярополов А. И. Оптимизация условий глубинного культивирования базидиомицета Coriolus hirsutus продуцента внеклеточной лакказы// Прикладная биохимия и микробиология. -2000. т. 36. Х" 1.- 30-
  41. О.В., Степанова Е. В., Ландесман Е. О., Баронина Т. С., Чеканова А., Телегин Ю. А., Сенькина З. Е., Гаевский В. Ф., Смалько П. Л. Ферментативный метод определения. В сборнике докладов семинара «Современные проблемы виноделия» на VI Международном профессиональном конкурсе вин «Лучшее шампанское, вино и коньяк года». Москва, 18−22 ноября 2002 г. 25-
  42. О.В., Степанова Е. В., Ландесман Е. О., Васильченко Л. Г., Хромоныгина В. В., Жердев А. В., Рабинович М. Л. Иммуноферментный анализ разложения гербицида почвенными и древоразрушающими грибами// Прикладная биохимия и микробиология. 2002. Т. 38, JVb4. 413-
  43. , А. А. Лигниназы базидиомицетов/Дис. докт. биол. наук: Пущино, 2002. -266 с. Лир X. Исследование ингибирующего действия некоторых эндоэнзимов дереворазрушающих грибов Энзимология.- 1961.- Т. 23.- 231−248. 151
  44. Р.А. Влияние различных источников азота на рост дереворазрушающих грибов в кулыуре Микол. и фитопатол.-1969. т.З. вып. 5.-С. 452-
  45. Р.А. Рост и развитие некоторых афиллофоровых грибов на различных питательных средах /Дис… канд.биол.наук.-Л., 1972 Маттисон Н. А., Фалина Н. Н., Якимов П. А. Об активности протеолитических ферментов глубинных культур некоторых базидиальных грибов Продукты биосинтеза высших грибов и их использование.- М.-Л., Наука, 1966а.-С. 31-
  46. Н.Л., Низковская О. П., Милова Н. М. Влияние некоторых условий роста на активность лакказы в культуре гриба Inonotus obliquus (Fr.) Pil. Кормовые белки и физиологически животноводства.-М.-Л.: Наука, 1965 Маттисон Н. Л., Фалина Н. Н., Насскель. Активность активные вещества для целлюлолитических ферментов культуральных фильтратов Fomitopsis annosa (Fr.) Karst. в зависимости от состава питательной среды Продукты биосинтеза высших грибов и их использование.- М.-Л.: Наука, 1966.- 1
  47. Г. Г., Даниляк Н. И., Яковенко В. В. Влияние глюкозы на индуцированный биосинтез целлюлаз у Coriolus versicolor (Fr.) Quel. штамм Б-5 Тез. докл. 7 Делегат, съезда Всесоюзн. ботан. о-ва.- Донецк, 1983.-
  48. Методы экспериментальной микологии. Киев: Наукова думка, 1982. -579с. Морозова Г. Р., Поправко А., Макарова М. А., Спицина Д. П., Горшина Е. С., Кинареевская Т. В., Соколова А. Биоконверсия углеводов грибами для 152
  49. Г. Р., Спицина Д. Н., Макарова М. А., Прокудина Т, А, Аксенова А.А, Получение грибной биомассы пищевого достоинства на основе молочной сыворотки Передовой производственный опыт в медицинской промышленности, рекомендуемый для внедрения: Сборник статей.- М.: ВНИИСЭНТИ, 1990.- вып. 8.- 15-
  50. О. П. и Милова Н.М. К сравнительно-физиологической характеристике грибов из порядков афиллофоровых и агариковых в культуре Кормовые белки и физиологически активные вещества для животноводства.- М.-Л.: Наука, 1965 (а).- 6-
  51. О. П. Рост высших грибов в глубинной культуре Микол. и фитопатол.-1972.- т. 6.- вып. 4.- 306-
  52. О.П., Милова Н. М. Особенности роста иразвития штаммов трутового гриба Inonotus obliquus (Fr.) Pil. в культуре Микол, и фитопатол.-1965.-С. 12-
  53. О.П., Панькова И. М., Кочеткова Г. И., Мануковский Н. С. Окисление лигнина пшеничной соломы базидиомицетами// Микол. и фитопатол. -1984. т 18. -Вып. 2. 133-
  54. , О.П., Федорова Л. М., Дроздова Т.Н. Протеолитическая активность базидиомицетов из порядка Aphyllophorales. Молокосвертывающая активность Микол. и фитопатол.- 1980.- т. 14.- вып. 1.-С. 36-
  55. В.Е., Цивилев О. М., Сорокин А. В. Лакказная и пероксидазная активности некоторых штаммов Lentinus edodes в зависимости от условия выращивания Современная микология в России: Тезисы докладов I Сьезда микологов России. М., 2002.- 284. 153
  56. И.И., Е.Н. Скачков, Е.П. Повстяная. Питательная ценность мицелия высших грибов, выращенных на картофельном сырье Производство высших съедобных грибов в СССР: Тезисы докл. II Всесоюзного совещания. Киев: Наукова думка, 1985.- 19-
  57. Патент № 2 021 371, БИ№ 19, 1
  58. РФ. 2002. 2 000 119 782 Патент РФ. 2003. Ш 22 005
  59. ПатентРФ. 1998. J b 103 031. V Патент РФ. 1994. Х" 2 021 371 Патент США. 2002. М 6 395 534. 154
  60. Патент США. 2003. 6 592 867 Патент США. 2003. 6610
  61. Патент США. 2004. 6 805 718 Патент США. 2004. 6815
  62. Патент Франции. 2002. 2112
  63. В.Д., И.А. Трутнева, Л. В. Нортнова. Культивирование высших дереворазрушающих базидиомицетов на лигноцеллюлозных отходах Нревращение древесины при энзиматическом и микробиологическом воздействиях.-Рига: Зинатне, 1985.-С. 167-
  64. В.Д., Касьянова Л. Н. Ферментативные системы высших базидиомицетов, разлагающих целлюлозу и лигнин Нревращение древесины при энзиматическом и микробиологическом воздействиях.- Рига: Зинатне, 1988.-С. 100-
  65. В.Д. Вплыв оксиду кремню на динам1ку активностей целлюлаз та пол1галактуронидазы Coriolus versicolor (Fr.) Quel. Укр. 6oTaHi4. ж.- 1985.- т. 42.- Х" 1.- 50−52. 156
  66. О.В., Гиндилис А. Л., Троицкая Е. Н., Шустер A.M., Ярополов А, И. Лакказа Coriolus hirsutus новый фермент-маркер для иммуноферментного анализа// Прикладная биохимия и микробиология. 1993.-т. 29.-N3.-С. 354-
  67. О.В., Джафарова А. И., Ярополов А. И. Влияние условий синтеза иммунолакказных конъюгатов на характеристики и состав получаемых соединений// Прикладная биохимия и микробиология. -1994. т. 30.-N3.-С. 477-
  68. О.В., Степанова Е. В., Джафарова А. И., Ярополов А. И. Подбор оптимальных условий синтеза конъюгатов белок А-лакказа и их использование в различпых вариантах иммуноферментного анализа// Прикладная биохимия и микробиология. -1995. т. 31. -N 6. 625-
  69. О.В., Степанова Е. В., Гаврилова В. П., Джафарова А. П., Любимова Н. В., Ярополов А. И. Выделение, очистка и некоторые физикохимические характеристики лакказы из базидиомицета Coriolus zonatusll Прикладная биохимия и микробиология. 1998. т. 34. N 5. 490-
  70. О.В., Тиндилис А. Л., Шустер A.M., Троицкая Е. П., Ярополов А. И. Лакказа Coriolus hirsutus Прикладная биохимия и микробиология.- 1993.-29.-№ 3.-С. 354-
  71. Г. К., Головлева Л. А. Использование микроорганизмов в органическом синтезе.-М.: Наука, 1976.-336с. Смирнов А., Королева О. В., Гаврилова В. П., Белова А. Б., Клячко Н. Л. Лакказы из базидиомицетов: физико-химические характеристики и субстратная специфичность по отношению к метоксифенольным соединениям// Биохимия, -2001. т. 66. Х2 7. 11А-119. 157
  72. Э.Ф., Федоров О. А. Влияние рН среды на кинетику роста Pleurotus ostreatus в глубинной кулыуре Микология и фитопатология.1988,-22.-6.-С. 537-
  73. Л.В., Тарасова П. В. Глубинное культивирование высших грибов Биотехнология и промышленная экология: Труды МХТИ им. Д. И. Менделеева.-М., 1985.-вып.135.-С. 29-
  74. Л.В., Тарасова Н. В., Манаков М. П., Пехлюдов А. Д., Цибанов В. В., Ларкин A.M. Ассимиляция углерод- и азотсодержащих компонентов молочной сыворотки грибом Pleurotus ostreatus Биотехнология.- 1988.- 4.- 2.- 221-
  75. Н.А., В.П. Леванова, B.C. Борзаковская, И. А. Кузубова, Т. Н. Копытова. Глубинное культивирование высших дереворазрушающих грибов на растительных гидролизатах Превращение древесины при 158
  76. Н. Н. Маслова Р.А., Якимов П. А., Андреева СМ., Алексеева Е. В. Некоторые итоги изучения базидиальных грибов как источника нолучения кормового белка и дефицитных аминокислот Растит, ресурсы.19 656.-1.-№ 1.-С. 122-
  77. Н.Н., Маслова Р. А., Якимов П. А. Сравнительные данные, но аминокислотному составу мицелия глубинной культуры дереворазрушающих грибов Кормовые белки и физиологически активные вещества для животноводства.- М.-Л.: Наука, 1965а.- 39-
  78. .Н. Ферменты и мембраны: научные основы взаимодействия. Монография.- М.: МГУНН, 2002. 195с. Федорова Л. Н., Шиврина А. Н. Протеазы сычужного действия в культурах высших грибов Микол. и фитонатол.- 1974.- т. 8.- Ж 1.- 2
  79. A.M., Леонтьевский А. А., Головлёва Л. А. Новые нриемы новышения выхода лакказы гриба Panus tigrinus II Нрикладная биохимия и микробиология. 2005. том 41. 5. 578-
  80. А.Н. Биологически активные вещества высших грибов. -М.Л.: Наука, 1965.-198с. Шкурихин И. М. Разработка технологии крашения текстильных материалов из природных волокон с иснользованием ферментов /Дис… канд. техн. наук. М., 2003. 112с. Шлегель Г. Общая микробиология. Пер. с нем. М.: Мир, 1987. 567с. Явметдинов И. С. Лакказа и Мп-перосидаза базидиомицета Coriolus hirsutus- характеристика и роль в биосинтезе гумиподобных веществ/ Дис. канд. биол. наук. М., 2003. 138 с. 159
  81. Alves AM, Record Е, Lomascolo А, Scholtmeijer К, Asther М, Wessels JG, Wosten HA. Highly efficient production of laccase by the basidiomycete Pycnoporus cinnabarinus Appl Environ Microbiol. -2004. Nov. -0(11) p. 6379-
  82. Anderson AJ, Kwon SI, Camicero A, Falcon MA. Two isolates of Fusarium proliferatum from different habitats and global locations have similar abilities to degrade lignin FEMS Microbiol Lett. 2005. Aug 1. 249(1). p.149-
  83. Arora D.S., Sandhu D.K. Laccasa production and wood degradation by Trametes hirsute// Folia microbiol. (CSSR). 1984. 29. 4. p 310-
  84. Arora DS, Rampal P. Laccase production by some Phlebia species J Basic Microbiol. 2002. 42(5). -p.295-
  85. Atacador-Ramos M., Palo M.A., Villadolid D.V., Cruz D.S. Study on submerged culture production of banana mushroom (Volvariella volvaceae). Mycelium as a source of protein, B-vitamins and food flavour Philipp. J. Sci.1967.- 9 6 1 P 191-
  86. Baldrian P. Fungal laccase occurrens and properties FEMS Microbiol Rev 30−2006. -p.215-
  87. Bauer C.G., Kuhn A., Gajovic N., Skorobogatko (Koroleva) O., Holt P.-J., Bruce N.C., Makower A., Lowe C.R., Scheller F.W. New enzyme sensors for morphine and codeine based on morphine dehydrogenase and laccase// Fresenius J. Anal. Chem., -1999. Vol. 364. P. 179-
  88. W. *Uber Vorkommen und den Nachweiss von Oxigen Bei holz st*jrenden Pilzen// Z. Pfl. Krankh. 1928. Bd 38. s. 18-
  89. Birkinshaw J.H. and Findlay W.P.K. Biochemistry of wood-rotting fungi.
  90. Metabolic products of Lentinus lepideus Fr. Biochem. J. 1940.- 34.- P. 82−88. 160
  91. Burkholder P.R., Sionnott E.W. Morphogenesis of fungus colonies in submerged shaken cultures.- Amer. J. Bot. -1945. -32, -№ 7, -p. 424-
  92. Cabana H, Jiwan JL, Rozenberg R, Elisashvili V, Penninckx M, Agathos SN, Jones JP. Elimination of endocrine disrupting chemicals nonylphenol and bisphenol A and personal care product ingredient triclosan using enzyme preparation from the white rot fungus Coriolopsis polyzona Chemosphere. 2007. Mar.- 67(4). p.770-
  93. Carbajo JM, Junca H, Terron MC, Gonzalez T, Yague S, Zapico E, Gonzalez AE. Tannic acid induces transcription of laccase gene cglccl in the white-rot fungus Coriolopsis gallica. Can J Microbiol. 2002. Dec- 48(12). p. 1041-
  94. Chairattanamanokom P, Imai T, Kondo R, Ukita M, Prasertsan P. Screening thermotolerant white-rot fungi for decolorization of wastewaters. //Appl Biochem Biotechnol. -2006. -Mar.-128(3). -p.195-
  95. Claus H. Laccases and their occurrence in prokaryotes//Arch Microbiol. 2003.-Mar.-179(3).-145-
  96. Cohen Martin S., Gabriele Peter D. Degradation of by the fungi Polyporus versicolor and Poria monticola// Appl. and Environ. Microbiol. 1982.- 44.- N2 1.-p. 23-
  97. Cooper СМ., Femstrom G.A., Millis S.A. Ind. Eng. Chem., 1944. V 36. p. 504. Das Arati, M. Chatterjee and Anjali Roy. Enzymes of Higher Fungi Mycol. 1979. vol. 71.- Ш 3.- p. 530-
  98. Dias AA, Bezerra RM, Pereira AN. Activity and elution profile of laccase during biological decolorization and dephenolization of olive mill wastewater// Bioresour Technol. -2004. Mar. -92(1). p.7−13. 161
  99. Eddy B.P. Production of mushroom mycelium by submerged culture J. Scince of Food and Agriculture. 1958. -9. 10. p. 644-
  100. Eggert C, LaFayette P.R., Temp U., Eriksson K.-E.L., Dean J.F.D. Molecular Analysis of a Laccase Gene from the White Rot Fungus Pycnoporus cinnabarinusll Appl. Environ. Microbiol. -1998. -V. 64. 5. p. 1766−1
  101. Eggert C, Temp U., Eriksson KE. The ligninolytic sistem of the white rot fungus Pycnoporus cinnabarinus: purification and characterization of the laccase// Appl Environ Microbiol. 1996. 62.-p.l 151−1
  102. Eichlerova I, Homolka L, Lisa L, Nerud F. The influence of extracellular H2O2 production on decolorization ability in Fungi J Basic Microbiol. -2006. 46(6).-p. 449-
  103. Evans C.S., Palmer J.M. Extracellular oxidases purified from Coriolus versicolor Appl. Biochem. and Biotechnol.- 1974.- 9.- }k A, -p. 353-
  104. Evans Christine S., Palmer John M., Lygnolitic activity of Coriolus versicolor J. Gen. Microbiol.- 1983.- 129.- Ш 7- p. 2103- 2
  105. Fahr K, Wetzstein HG, Grey R, Schlosser D. Degradation of 2,4dichlorophenol and pentachlorophenol by two brown rot fungi// FEMS Microbiol Lett. -1999. -Jun 1. -175(1). p 127-
  106. Fenice M, Giovannozzi Sermanni G, Federici F, DAnnibale A. Submerged and solid-state production of laccase and Mn-peroxidase by Panus tigrinus on olive mill wastewater-based media. //J Biotechnol. 2003. Jan 9. 100(1). p. 77-
  107. Ferapontova E.E., Shleev S., Ruzgas Т., Stoica L., Christenson A., Tkac J., Yaropolov A. L, Gorton L. Direct electrochemistry of proteins and enzymes. An: Electrochemistry of nucleic acid and proteins: towards electrochemical sensors for 162
  108. Fries N. Studies in the physiology of Coprinus.
  109. Growth substance, nitrogen and carbon requirements Sven. bot. tidskr.- 1955.- 49.- 4, -p. 475
  110. Gabriel M. Resherches sur la physiologic du mycelium des Basidiomicetes en aerobiose et anaerobiose Second Thesis: Universite de Lyon. 1967. p.
  111. Galhaup C, Haltrich D. Enhanced formation of laccase activity by the whiterot fungus Trametes pubescens in the presence of copper// Appl Microbiol Biotechnol. 2001. Jul. -56(1−2). p. 225−32. Gao DW, Wen XH, Qian Y. Effect of nitrogen concentration in culture mediums on growth and enzyme production of Phanerochaete chrysosporium //J Environ Sci (China). 2005. -17(2). p. 190-
  112. Garzillo A.M., Colao M.C., Buonocore V., Oliva R., Falcigno L., Saviano M., Santoro A.M., Zappala R., Bonomo R.P., Bianco C, Giardina P., Palmieri G., Sannia G. Structural and kinetic characterization of native laccases from Pleurotus ostreatus, Rigidoporus lignosus, and Trametes trogii II. J. Protein Chem. -2001. V 2 0 3 p. 191-
  113. Ghosh A.R., S. Sengupta. Studies on biochemistry of higher fungi. I. Submerged growth of Volvariella volvalla in synthetic medium J. Food Sci. and Technol.- 1977.- 14.-№ 1.-p. 6-
  114. Ginterova A. Nitrogen fixation by higher fungi Biologia, Bratislava. 1973.-28.-p. 199−202. Hao J, Song F, Huang F, Yang C, Zhang Z, Zheng Y, Tian X. Production of laccase by a newly isolated deuteromycete fungus Pestalotiopsis sp. and its decolorization of azo dye //J Ind Microbiol Biotechnol. -2007. Mar.-34(3). p. 233-
  115. Herpoel I, Moukha S, Lesage-Meessen L, Sigoillot J, Asther M. Selection of Pycnoporus cinnabarinus strains for laccase production FEMS Microbiol Lett. 2000.-Feb 15.-183(2).-p.301-
  116. Hess J, Leitner C, Galhaup C, Kulbe KD, Hinterstoisser B, Steinwender M, Haltrich D. Enhanced formation of extracellular laccase activity by the white-rot fiingus Trametes multicolor// Appl Biochem Biotechnol. 2
  117. Janusz G, Rogalski J, Barwinska M, Szczodrak J. Effects of culture conditions on production of extracellular laccase by Rhizoctonia praticola. Pol J Microbiol. -2006. -55(4). -p.309-
  118. Kahraman S, Yesilada O. Industrial and agricultural wastes as substrates for laccase production by white-rot fungi Folia Microbiol (Praha). 2001. -46(2). p.133-
  119. Kamaya Yasushi, Higuchi Takayoshi. Metabolism of 3,4- dimethoxycinnamyl alcogol and derivatives by Coriolus versicolor Ibid. -1984. 2 4 3 p 225-
  120. Kamaya Yasushi, Higuchi Takayoshi. Metabolism of non-phenolic diarylpropane lignin substructure model compound by Coriolus versicolor FEMS Microbiol Lett. 1984a. 22. 2.- p. 89-
  121. Kawai M. Productivity of proteolitic enzymes and distrilution of its milk clotting activity among the Basidiomycetes J. Agr. Chem. Soc. Japan. 1973. V. 47.-no 8.-p. 467-
  122. Kawai M., Mukai N. Studies on milk clotting enzymes, produced by Basidiomycetes//Agr. Biol. Chem.- 1970. -v. 34.-2 2.-p. 159−163. 164
  123. Kent, Kirk T. Toward elucidating the mechanism of action of the lignolytic systems in Basidiomycetes Trends Biol. Ferment. Fuels and Chem. Proc. Symp. -Upton,-1981.-p. 131-
  124. Koroleva (Skorobogatkd) O.V., Stepanova E.V., Gavrilova V.P., Biniukov V. L, Jaropolov A.I., Varfolomeyev S.D., Scheller F., Makower A., Otto A. Laccase of Coriolus zonatus. Isolation, Purification and some physico-chemical Properties// J. of Applied Biochemistry and Biotechnology. -1999. vol. 76. p. 115-
  125. Koroleva O.V., Gavrilova V.P., Stepanova E.V., Lebedeva V.I., Sverdlova N.I., Landesman E.O., Yavmetdinov I.S., Yaropolov A.I. Production of lignin modifying enzymes by co-cultivated White-rot fungi Cerrena maxima and Coriolus hirsutus and characterization of laccase from Cerrena maximalI Enzyme and Microbial Technology. -2002. vol. 30. Xo 4. p. 573-
  126. Koroleva O.V., Stepanova E.V., Binukov V.I., Timofeev V.P., Pfeil W. Temperature-induced changes in copper centers and protein conformation of two fungal laccases from Coriolus hirsutus and Coriolus zonatus// Biochimica et Biophysica Acta (BBA) Protein Structure and Molecular Enzymology. -2001. vol. 1547.-0 2.-p. 397-
  127. Koroleva O.V., Stepanova E.V., Gavrilova V.P., Yakovleva N.S., Landesman E.O., Yavmetdinov I.S., Yaropolov A.I. Laccase and Mn-Peroxidase Production by Coriolus hirsutus strain 075 in a Jar Fermenter// Journal of Bioscience and Bioengineering. -2002. -vol. 93.- N 5. p. 449-
  128. Koroleva O.V., Stepanova E.V., Landesman E.O., Vasilchenko L.G., Khromonygina V.V., Zherdev A.V., Rabinovich M.L. In vitro degradation of the herbicide atrazine by soil and wood decay fungi controlled through ELISA 165
  129. Koroleva OV, Stepanova EV, Gavrilova VP, Iakovleva NS, Landesman EO, Iaropolov Al. Optimization of conditions for cultivation of the basidiomicete Coriolus hirsutus-producer of extracellular laccase Prikl Biokhim Microbiol. 2000.-№ 36.-c.30-
  130. Koroleva O.V., Rebrikov D.V., Stephanova E.V., Pegasova T.V., Landesman E.O., and Gavrilova V.P., Molecular Analysis of a Laccase Gene from the White Rot Fungus Coriolus hirsutus. 2002, GenBank Accession number AAL89
  131. Koroleva-Skorobogaf ко О., Stepanova E., Gavrilova V., Morozova O, Lubimova N., Dzchafarova A., Jaropolov A., Makower A. Purification and Characterization of the Constitutive form of Laccase from the Basidiomycete Coriolus hirsutus and effect of Inducers on Laccase Synthesis/ J. of Biotechnology and Applied Biochemistry. -1998, -v. 28, pp. 47-
  132. Koroljova (Skorobogatko)O., Stepanova E., Gavrilova V., Morozova O., Lubimova N., Dzchafarova A., Jaropolov A., Makower A. Purification and Characterization of the Constitutive form of Laccase from the Basidiomycete Coriolus hirsutus and effect of Inducers on Laccase Synthesis// J. of Biotechnology and Applied Biochemistry. -1998. v. 28.- p. 47-
  133. Kossen N.W.F., Metz B. Growth and Activity of Mycelial Pellets Abstr. 5 th Intern, ferment, symp. -Berlin, 1976. p.
  134. Kiiskinen L.-L., Ratto M. and Kruus K. Screening for novel laccaseproducing microbes// Journal of Applied Microbiology. -2004. V 97. p
  135. Kuznetsov B.A., Shumakovich G.P., Koroleva O.V., Yaropolov A.I. On applicability of laccase as label in the mediated and mediatorless electroimmunoassay: effect of distance on the direct electron transfer between laccase and electrode// Biosensors and Bioelectronics. -2001. vol. 16. 1−2. p. 73 84. 166
  136. Leatham Gary F, Kirk T, Kent, Regulation of lignolytic activity by nutrient nitrogen in white-rot basidiomycetes FEMS Microbiol, Lett, 1983. 16, X" 1,-p, 65-
  137. Leonowicz A., Edgehill R.U., Bolag J, -M. The effect of syringic and vanilic acids by the laccases of Rhizoctonia praticola and Trametes versicolor Arch. Microbiol, 1984. 137, 2, p. 89−96, Leontievsky A, A., Myasoedova NM, Baskunov BP, Evans CS, Golovleva LA. Transformation of 2,4,6-trichlorophenol by the white-rot fungi Panus tigrinus and Coriolus versicolor Biodegradation. -2000, -N2 11, p, 331-
  138. Levemoche D, Jurasek L., Derochers M., Dorica J, Veliky LA, Removal of color fromkraft mill wastewaters with cultures of white-rot fungi and with immobilized mycelium of Coriolus versicolor Biotechnol, and Bioeng.- 1983,25,-№ 8,-p, 2055−2
  139. Lorenzo M, Moldes D, Rodriguez Couto S, Sanroman MA. Inhibition of laccase activity from Trametes versicolor by heavy metals and organic compounds// Chemosphere. -2005. Aug. -60(8). p. 1124-
  140. Marco-Urrea E, Gabarrell X, Sarra M, Caminal G, Vicent T, Reddy CA. Novel aerobic perchloroethylene degradation by the white-rot fungus Trametes versicolor//Environ Sci Technol. -2006. -Dec 15. 0(24). p 7796-
  141. Marques De Souza CG, Zilly A, Peralta RM. Production of laccase as the sole phenoloxidase by a Brazilian strain of Pleurotus pulmonarius in solid state fermentation J Basic Microbiol. -2002. 2(2). p. 83-
  142. Mattinen ML, Hellman M, Permi P, Autio K, Kalkkinen N, Buchert J. Effect of protein structure on laccase-catalyzed protein oligomerization Chem.-2006.-Nov 15.-54(23). p 8883-
  143. Madzak C, Otterbein L, Chamkha M, Moukha S, Asther M, Gaillardin C, Beckerich JM. Heterologous production of a laccase from the basidiomycete Pycnoporus cinnabarinus in the dimorphic yeast Yarrowia lipolytica// FEMS Yeast Res. -2005. Apr. -5(6−7). p.635-
  144. Mikiashvili N, Elisashvili V, Wasser S, Nevo E. Carbon and nitrogen sources influence the ligninolytic enzyme activity of Trametes versicolor// Biotechnol Lett. -2005. Jul. 27(13). p. 955−9. MuUer H.W., Trosch W. Screening of white-rot fungi for biological pretreament ofwheat straw for biogas prodaction// Appl. Microbiol. and //J Agric Food Biotechnol. 1986. -24. № 2. p 180-
  145. Nyanhongo GS, Gomes J, Gubitz G, Zvauya R, Read JS, Steiner W. Production of laccase by a newly isolated strain of Trametes modesta// Bioresour Technol. 2002. Sep. 84(3). -p. 259−63. 168
  146. Orsler R.J., Holland G.E. Degradation of tributiltin oxide by fungal culture filtrates Int. Biodeterior Bull. 1982, -18, 4, p. 95-
  147. Pozdnyakova N.N., Rodakiewicz-Nowak J., Turkovskaya O.V. Catalytic properties of yellow laccase from Pleurotus ostreatus Dl J. Molec. Catal. 2004.-Vol. 30.-p. 19-
  148. Record E, Punt PJ, Chamkha M, Labat M, van Den Hondel CA, Asther M. Expression of the Pycnoporus cinnabarinus laccase gene in Aspergillus niger and characterization of the recombinant enzyme. Eur J Biochem. -2002. Jan. 269(2).-p. 602-
  149. Reinhammar B.R.M. Oxidation-reduction potentials of the electron acceptors in laccases and stellacyanin// Biochim. Biophys. Acta. -1972. -V. 275, Xo 2 p 245−259. 169
  150. Rodriguez S, Fernandez M, Bermudez RC, Morris H. Treatment of coloured industrial effluents with Pleurotus spp Rev Iberoam Micol. -2003. Dec.-20(4).-p. 164-
  151. Rosenberg S.L. Pattern of diffusibility of lignin and carbohydrate degrading systems wood-rotting fungi// Mycologia, -1980. 72 (4). p. 798-
  152. Ryan D, Leukes W, Burton S. Improving the bioremediation of phenolic wastewaters by Trametes versicolor Bioresour Technol. -2007. Feb. 98(3). p. 579-
  153. Salony, Mishra S, Bisaria VS. Production and characterization of laccase from Cyathus bulleri and its use in decolourization of recalcitrant textile dyes Appl Microbiol Biotechnol. -2006. Aug. 71(5). p. 646−53 Sandru D.K., Arora D.S. Laccase production by polyporus versicolor on different substrates Acta biotechnol. 1984. 4. -№ 1. p.
  154. Shin KS, Lee YJ. Purificanion and characterization of a new member of the laccase famili from the white-rot basidiomicete Coriolus hirsutus// Arch Biochem Biophys. -2000. -№ 384. p. 109-
  155. Shleev S., Christenson A., Serezhenkov V., Burbaev D., Yaropolov A., Gorton L., Ruzgas T. Electrochemical redox transformations of Tl and T2 copper sites in native Trametes hirsuta laccase at gold electrode//Biochemical J. -2005a. V. 385.-Pt3.-p. 745−754 Shleev S., Tkac J., Christenson A., Ruzgas Т., Yaropolov A.I., Whittaker J.W., Gorton L. Direct electron transfer between copper-containing proteins and electrodes// Biosens. Bioelectron.- 2005b. -V. 20. 12. P. 2517−2554. 170
  156. Skorobogatko O.V., Gindilis A.L., Troitskaya E.N., Shuster A.M., Yaropolov A.I. Laccase as a new enzymatic label for enzyme immunoassay// Anal, letters. -1994. -V.27. -N
  157. Starka J. Sumbersni pestovani vyssych hub Ceska mycologia. 1955.- 9.№ 3.-s. 97-
  158. Starka J., Schanel L. The effect of extracellular enzymes of wood-rotting fungi on wood Folia Microbiol. 1962. 7. p. 155-
  159. Tamagawa Y, Hirai H, Kawai S, Nishida T. Removal of estrogenic activity of endocrine-disrupting genistein by ligninolytic enzymes from white rot fungi FEMS Microbiol Lett. -2005. Mar. -244(1). p. 93-
  160. Tamagawa Y, Yamaki R, Hirai H, Kawai S, Nishida T. Removal of estrogenic activity of natural steroidal hormone estrone by ligninolytic enzymes from white rot fungi// Chemosphere. -2006. Sep. -65(1). p 97-
  161. Epub 2006 АргЗ. Targonski Zdzislaw. Uzdolnienia niektorych szczepow grzybow z klasy basidiomycetes do biodegradacji cellulozy i substratow lignocellulozowych// Acta mycol., 1983. (1985). 19. 2. p. 323-
  162. Tavares AP, Coelho MA, Agapito MS, Coutinho JA, Xavier AM. Optimization and modeling of laccase production by Trametes versicolor in a bioreactor using statistical experimental design// Appl Biochem Biotechnol. -2006. -Sep.-134(3).-p. 233-
  163. Tekere M, Zvauya R, Read JS. Ligninolytic enzyme production in selected sub-tropical white rot fungi under different culture conditions// J Basic Microbiol. -2001.-41(2).-p. 115−29. 171
  164. Tong P, Hong Y, Xiao Y, Zhang M, Tu X, Cui T. High production of laccase by a new basidiomycete, Trametes sp.// Biotechnol Lett. -2007. Feb. 29(2).-p. 295-
  165. Trupkin S, Levin L, Forchiassin F, Viale A. Optimization of a culture medium for ligninolytic enzyme production and synthetic dye decolorization using response surface methodology J Ind Microbiol Biotechnol. 2003. -Dec. 30(12).-p. 682-
  166. Verma P, Madamwar D. Production of ligninolytic enzymes for dye decolorization by cocultivation of white-rot fungi Pleurotus ostreatus and phanerochaete chrysosporium under solid-state fermentation Appl Biochem Biotechnol. 2002. Jul-Dec. 102−103(1−6). p. 109-
  167. Wang JW, Wu JH, Huang WY, Tan RX. Laccase production by Monotospora sp., an endophytic fungus in Cynodon dactylon// Bioresour Technol. -2006. Mar. 97(5). p. 786-
  168. Xiao YZ, Wang J, Wang YP, Pu CL, Shi YY. Studies on production, purification and partial characteristics of the extracellular laccase from Armilliria mellea Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao. -2002. Jul. 18(4). p. 457-
  169. Yaver DS., Xu F, Golightly EJ, Brown KM, Brown SH, Rey MW, Schneider P, Halkier T, Mondorf K, Dalboge H. Purification, characterization, molecular cloning, and expression of two laccase genes from the white rot basidiomycete Trametes villosa Appl Environ Microbiol. 1996. 62. p. 834-
  170. Yoshida Т., Shimizu Т., Taguchi H., Teramoto S. Studies on submerged cukture of Basidiomycetes. 3. The oxygen transfer within the pellets of Lentinus edodes J. Ferment. Technol. 1967. 45. 12. p. 1119−1
  171. Zhang H, Hong YZ, Xiao YZ, Yuan J, Tu XM, Zhang XQ. Efficient production of laccases by Trametes sp. AH28−2 in cocultivation with a Trichoderma strain. //Appl Microbiol Biotechnol. -2006. Nov. 73(1). p. 8994. 173
Заполнить форму текущей работой