Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Взаимосвязь структуры и биологической активности каррагинанов красных водорослей Японского моря

Диссертация: Взаимосвязь структуры и биологической активности каррагинанов красных водорослей Японского моря
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Каррагинаны, используемые как загустители и стабилизаторы различных пищевых продуктов, относятся к растворимым пищевым волокнам (ПВ) и внесены в список пищевых продуктов (Food and Drugs, 2008). Известно, что недостаток ПВ в рационе человека способствует возникновению многих желудочно-кишечных, метаболических и сердечно-сосудистых нарушений (Galisteo et al., 2008). В случае сердечно-сосудистых… Читать ещё >

Взаимосвязь структуры и биологической активности каррагинанов красных водорослей Японского моря (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Используемые сокращения
  • 1. Литературный обзор
    • 1. 1. Химическая структура каррагинанов
    • 1. 2. Физико-химические свойства каррагинанов
    • 1. 3. Пищевые волокна
    • 1. 4. Безопасность использования каррагинана
    • 1. 5. Биологическая активность полисахаридов водорослей
      • 1. 5. 1. Иммуномодулирующие свойства полисахаридов водорослей
      • 1. 5. 2. Антиоксидантная активность полисахаридов водорослей
      • 1. 5. 3. Антикоагулирующая активность полисахаридов водорослей
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Физико-химические характеристики
    • 2. 2. Атомно-силовая микроскопия
    • 2. 3. Биологические свойства
      • 2. 3. 1. Иммуномодулирующие свойства ex vivo
      • 2. 3. 2. Антиоксидантная активность in vitro
      • 2. 3. 3. Антитромботические свойства
    • 2. 4. Анализ медико-биологических исследований приема БАД «Каррагинан-ДВ»
    • 2. 5. Статистический анализ данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Физико-химические характеристики каррагинанов
    • 3. 2. Атомно-силовая микроскопия
    • 3. 3. Биологическая активность каррагинанов
      • 3. 3. 1. Иммуномодулирующие свойства
      • 3. 3. 2. Антиоксидантная активность
      • 3. 3. 3. Влияние каррагинанов на гемостаз ex vivo
    • 3. 4. Анализ медико-биологических исследований приема БАД «Каррагинан-ДВ»
  • 4. ВЫВОДЫ

Каррагинаны — сульфатированные полисахариды красных водорослей, в основе химической структуры которых находится дисахаридное повторяющееся звено, состоящее из остатков D-галактозы, соединенных регулярно чередующимися ?-1−4 и а-1−3 гликозидными связями. Структурное разнообразие каррагинанов обусловлено присутствием ?-(l-4) остатка в виде 3,6-ангидрогалактозы, а также количеством и местоположением сульфатных групп в моносахаридных остатках (Knutsen, 1994). Регулярные полисахариды, полимерная цепь которых построена из повторяющихся дисахаридных звеньев одного типа, получили собственное название. Природные каррагинаны редко соответствуют регулярным структурам, чаще они содержат повторяющиеся звенья нескольких типов и представлены нерегулярной или гибридной структурой, что объясняется многоступенчатым биосинтезом полисахаридов в клеточной стенке водорослей.

Вариабельность первичной структуры каррагинанов обуславливает многообразие их макромолекулярной организации и определяет широкий спектр их биологической активности (Yermak, Khotimchenko, 2003). В то же время биологические свойства этих полисахаридов, как и их надмолекулярная структура, изучаются в основном на коммерческих образцах, представленных каппаи лямбда-типами каррагинанов. Всестороннее изучение каррагинанов красных водорослей дальневосточных морей позволит оценить влияние различных уровней структурной организации полисахаридов на их физиологическую активность.

Среди разнообразных биологических свойств сульфатированных полисахаридов наибольший интерес в настоящее время привлекают противовирусная, антикоагулирующая, иммуномодулирующая, противоопухолевая, противоязвенная активности. Сульфатированные полисахариды взаимодействуют со множеством протеинов клеток эукариот и оказывают на иммунный ответ организма разнонаправленное действие, как ингибирующее, так и стимулирующее (Stephanie et al., 2010), что позволяет рассматривать каррагинаны в качестве возможных иммуномодуляторов. В последнее время появились данные об антиоксидантной активности полисахаридов морских водорослей (Yuan, Walsh, 2006, Zhang et al., 2010, Costa et al., 2010). Среди сульфатированных полисахаридов продолжается поиск веществ, проявляющих выраженное антитромбическое действие, не вызывающее кровотечение (Melo et al., 2004, Mestechkina, Shcherbukhin, 2010, Jiao et al. 2011, Pomin 2010). Однако данные о влиянии структурных особенностей и молекулярной массы полисахаридов на активацию тромбоцитов, — играющих основную роль в системе первичного гемостаза организма, немногочисленны.

Каррагинаны, используемые как загустители и стабилизаторы различных пищевых продуктов, относятся к растворимым пищевым волокнам (ПВ) и внесены в список пищевых продуктов (Food and Drugs, 2008). Известно, что недостаток ПВ в рационе человека способствует возникновению многих желудочно-кишечных, метаболических и сердечно-сосудистых нарушений (Galisteo et al., 2008). В случае сердечно-сосудистых заболеваний ПВ способны понижать риск их развития посредством улучшения липидных показателей крови (Brown et al., 1999, Castro et al., 2005). Кроме того, ПВ находятся в тесном контакте с лимфоидной тканью, связанной с кишечником, которая составляет значительную часть общей иммунной системы организма. Хотя 'известно, что ПВ, в частности полисахариды, могут модулировать различные звенья иммунитета, способность ПВ влиять на иммунную систему организма остается недостаточно исследованной.

В связи с этим весьма актуальным является изучение возможности использования каррагинана как источника ПВ в комплексной терапии пациентов с различными заболеваниями.

Цель работы: изучить влияние структуры каррагинанов, выделенных из красных водорослей Японского моря семейств Tichocarpaceae и Gigartinaceae, на их биологическую активность и экспериментально обосновать возможности использования этих полисахаридов в медицинской практике. 'г.

Для достижения поставленной цели в работе были сформулированы следующие задачи:

1. определить физико-химические характеристики и изучить макромолекулярную организацию различных типов каррагинанов;

2. исследовать иммуномодулирующую активность каррагинанов в моделях ex vivo;

3. изучить антиоксидантные свойства каррагинанов в экспериментах in vitro', г".

4. определить антитромботическое действие каррагинанов;

5. оценить возможность использования БАД «Каррагинан-ДВ» в комплексной терапии пациентов с сердечно-сосудистыми заболеваниями.

Научная новизна работы. Впервые методом атомно-силовой микроскопии (АСМ) изучена надмолекулярная структура каррагинанов, выделенных из красных водорослей семейств Tichocarpaceae и Gigartinaceae. Установлена избирательность иммуномодулирующего действия отдельных структурных типов каррагинанов и показана их потенциальная антиоксидантная активность. Исследованы антитромботические свойства каррагинанов, и впервые показано, что они ингибируют коллаген-индуцированную агрегацию тромбоцитов, снижая активацию этих клеток с участием гликопротеина VI.

Практическая значимость работы. Показано, что БАД «Каррагинан-ДВ», рекомендованный в качестве дополнительного источника пищевых волокон и использованный в комплексной терапии пациентов с сердечно-сосудистыми нарушениями, способствует нормализации параметров липидного обмена, снижению уровня маркеров хронического воспалительного процесса и положительной динамике ряда показателей иммунного статуса.

Основные положения, выносимые на защиту. Каррагинаны — каппа, лямбда, каппа/бета, икс и каппа/йота — выделенные из красных водорослей.

•f семейств Tichocarpaceae и Gigartinaceae, являются высокомолекулярными сульфатированными полисахаридами (М.м. от 147 до 527 кДа) с различной надмолекулярной структурой. Методом АСМ выявлены особенности макромолекулярной организации каррагинанов, обусловленные как нерегулярностью структуры, так и степенью сульфатирования полисахаридов. Все каррагинаны обладают иммуномодулирующей активностью, индуцируя в концентрационной зависимости синтез цитокинов, активацию лимфоцитов, активность макрофагов. Степень проявления этой активности зависит от структуры полисахаридов. Каппа/бета-каррагинан обладает избирательным действием в отношении индукции синтеза про- (ИЛ-6 и ФНОа) и противовоспалительных цитокинов (ИЛ-10). Антиоксидантные свойства каррагинанов проявляются в способности перехватывать оксид азота, гидроксил радикал, супероксид анион и определяются структурными особенностями полисахаридов. Каррагинаны обладают антитромботическим действием, понижая скорость коллаген-индуцированной агрегации тромбоцитов и ингибируя адгезию этих клеток, опосредованную коллагеновым рецептором тромбоцитов — гликопротеином VI. Эффект антикоагулирующего действия каррагинанов зависит от молекулярной массы и степени сульфатирования полисахарида. Б АД «Каррагинан-ДВ» может быть рекомендован в комплексной терапии пациентов с ИБС.

Апробация работы: Основные положения диссертации были представлены автором в виде устных докладов на следующих конференциях: «9th International Marine Biotechnology Conference» (Qingdao, China, 2010) — «Renewable Wood and Plant Resources: Chemistry, Technology, Pharmacology, Medicine» (Санкт-Петербург, Россия, 2011) — «Russian-Indian Symposium on Glycosciences» (Москва, Россия, 2011).

Публикации. Всего Д4 работ, из них по теме диссертации 12 публикаций, в том числе статей, опубликованных в ведущих рецензируемых научных журналах и изданиях, определенных ВАК — 5, тезисов в материалах научных конференций — 7.

Диссертация обсуждена и одобрена на расширенном заседании отдела молекулярной иммунологии ТИБОХ ДВО РАН 26 декабря 2011 года.

Работа выполнена в лаборатории молекулярных основ антибактериального иммунитета ТИБОХ ДВО РАН в соответствии с плановой темой НИР «Изучение структуры и иммунобиологических свойств макромолекул и их комплексов, включенных в патогенез наиболее распространенных и социально значимых бактериальных инфекций» (№ гос. per. 01.2.00 951 069, научный руководительд.х.н. Т.Ф. Соловьева). Работа поддержана грантами: Президиума РАН -«Фундаментальные науки — медицине» (руководитель д.х.н. И.М. Ермак) и «Молекулярная и клеточная биология» (руководитель к.б.н. В.А. Рассказов) — интеграционным грантом ДВО — УРО РАН (руководитель д.х.н. И.М. Ермак) и грантами ДВО РАН (руководитель аспирантка Е.В. Соколова).

Личный вклад соискателя. Экспериментальные результаты, представленные в диссертации, получены лично автором в совместной работе с сотрудниками лаборатории молекулярных основ антибактериального иммунитета.

ТИБОХ ДВО РАН и сотрудниками МО ДВО РАН. На защиту вынесены только те положения и результаты экспериментов, в получении которых роль соискателя была определяющей.

Структура и объем’диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов ?&bdquo-и методов исследования, изложения полученных результатов и их обсуждения, выводов и списка цитируемой литературы, содержащего 256 источников. Работа изложена на 117 страницах машинописного текста.

4. ВЫВОДЫ.

1. Показано, что каппа-, лямбда-, каппа/йота-, каппа/бетаи икс-каррагинаны, выделенные из красных водорослей Японского моря семейств ТюИосаграсеае и Gigartinaceae: представляют собой полидисперсные высокомолекулярные полисахариды, с молекулярными массами от 246 до 527 кДа и поверхностным зарядом от -24 до -40 тВ.

2. Установлено, что при низких концентрациях (10 мкг/мл) каппаи каппа/йота-каррагинаны формируют двуспиральные структуры, в то время как каппа/бета-каррагинан образует изолированные короткие волокна. При высоких концентрациях каппа-, каппа/йотаи каппа/бета-каррагинаны формируют волокнисто-сеточные структуры в результате межмолекулярной ассоциации по типу «бок-к-боку». Лямбда-каррагинан, имеющий в разбавленных растворах конформацию неупорядоченного клубка, при высоких концентрациях образует сотоподобные структуры.

3. Показано, что все исследуемые каррагинаны обладают иммуномодулирующей активностью. Лямбда-каррагинан эффективно стимулирует активацию лимфоцитов и усиливает синтез АФК в макрофагах. Каппа/бета-каррагинан обладает избирательным цитокин-индуцирующим действием, при низкой концентрации (С =10 нг/мл), усиливая синтез противовоспалительного ИЛ-10 и не проявляя активности в отношении индукции синтеза провоспалительных ИЛ-6 и ФНОа.

4. Определена потенциальная антиоксидантная активность каррагинанов, которая проявляется в способности перехватывать оксид азота, гидроксил радикал, супероксид анион. Антиоксидантная активность каррагинанов уменьшается с ростом рН, зависит от моносахаридного состава количества и местоположения сульфатных групп в полисахаридах и не связана с их восстанавливающей способностью.

5. Установлено, что каррагинаны обладают антитромботической активностью, замедляя скорость образования фибринового сгустка и коллаген-индуцированной агрегации тромбоцитов, ингибируя их адгезию к коллагену, опосредованную гликопротеином VI. Наибольшей атикоагулирующей активностью обладают каррагинаны с высокой степенью сульфатирования и большей молекулярной массой. Каппа/бета-каррагинан является наиболее сильным ингибитором агрегации тромбоцитов, и слабым индуктором их адгезии к фибриногену, что позволяет рассматривать этот полисахарид в качестве перспективного антитромботического агента.

6. Показано, что использование БАД «Каррагинан-ДВ» в комплексной терапии пациентов с сердечно-сосудистыми заболеваниями способствует нормализации показателей иммунного статуса и биохимических показателей (липидного профиля и параметров хронического воспаления), что открывает перспективу применения БАД в терапевтической практике.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ч., Шиммел П. Биофизическая химия // Перевод с английского -Москва: «издательствоМИР», 1984. С. 198−200.
  2. В.В., «Микрометоды биохимического и иммуноферментного анализа». / Под ред. Проф. В. В. Меньшикова и д.м.н. JI.H. Делекторской. М.: ТОО «Лабинформ». 1994. 370 с.
  3. Л.П. Красные водоросли дальневосточных морей России. СПб.: Изд-во «Ольга». 1994. 331 с.
  4. Э.И., Сгребнева М. Н., Ермак И. М., Малеев В. В. Влияние каррагинана на не специфическую резистентность мышей при ЛПС-индуцированной эндотоксемии // ЖМЭИ. 2007. № 2. С. 57−60.
  5. Ф.Дж. Патофизиология крови // Перевод с английского Москва Санкт-Петербург: «Издательство БИНОМ» — «Невский Диалект», 2000 г.
  6. Abad L.V., Saiki S., Kudo H., Muroya Y., Katsumura Y., de la Rosa A.M. Rate constants of reactions of каппа-carrageenan with hydrated electron and hydroxyl radical // Nucl. Instrum. Methods' Phys. Res. B. 2007. Vol. 265, P. 410 413.
  7. Abad M. J., Bedoya L.M., Bermejo P. Natural marine anti-inflammatory products // Mini Rev. Med. Chem. 2008. Vol. 8, P. 740−754.
  8. Abeysekera R.M., Bergstrom Ё.Т., Goodall D. M,. Norton I.T., Robards A.W., Ultrastructural evidence for intramolecular double stranding in iota-carrageenan // Carbohydr. Polym. 1993. Vol. 248, P. 225−231.
  9. Ajisaka K., Agawa S., Nagumo S., Kurato K., Yokoyama Т., Arai K., Miyazaki T. Evaluation and comparison of the antioxidative potency of various carbohydrates using different methods // J. Agric. Food Chem. 2009. Vol. 57, P. 3102−3107.
  10. Alban S., Kraus J., Franz G. Synthesis of laminarin sulfates with anticoagulant activity // Arzneimittelforschung. 1992. Vol. 42, N 6, P. 1005 -1008.
  11. Anand Ganesh E., Das S., Aran G., Balamurugan S., Ruban Raj R. Heparin like compound from, green alga Chaetomorpha antennina As Potential Anticoagulant Agent // Asian Journal of Medical Sciences. 2009. Vol. 1, N 3. P. 114−116.
  12. Anderson N.S., Campbell J.W., Harding M.M., Ress D.A., Samuel J.W. X-ray diffraction studies of polysaccharide sulphates: double helix models for kappa and iota-carrageenan // J. Mol. Biol. 1969. Vol. 45, N 1. P. 85−99.
  13. Anderson W., Duncan J.G.C., Harthill J.E. The anticoagulant activity of carrageenan //J. PharmCPharmacol. 1965. Vol. 17, P. 647−654.
  14. Austen K.R., Goodall D.M., Norton I.T. Anion effect on equilibria and kinetics of the disorder-order transition of kappa-carrageenan // Biopolymers 1988. Vol. 27, P. 139−155.
  15. Azevedo T.C.G., Bezerra M.E., Santos M.D., Souza L.A., Marques C.T., Benevides N.M., Leite E.L. Heparinoids algal and their anticoagulant, hemorrhagic activities and platelet aggregation // Biomed. Pharmacother. 2009. Vol. 63, N 7. P. 477−483. -
  16. Kwon Kim. JohnWiley & Sons, Ltd. 2011. Chap. 8. P. 193−204. — ISBN 978−0470−97 918−1.
  17. Becker C.F., Guimaraes J.A., Mourao P.A.S., Verli H. Conformation of sulfated galactan and sulfated fucan in aqueous solutions: Implications to their anticoagulant activities // J. Mol. Graph. Model. 2007. Vol. 26, P. 391−399.
  18. Bellavite P., Andrioli G., Guzzo P., Arigliano P., Chirumbolo S., Manzato F., Santonastaso C. A colorimetric method for the measurement of platelet adhesion in microtiter plates // Anal. Biochem. 1994. Vol. 216, P. 444−450.
  19. Bellion C., Brigand G., Prome J.-C., Bociek D.W. Identification et caracterisation des precurseurs biologiques descarraghenanes par spectroscopic de RMN-13 // Carbohydr. Res. 1983. Vol. 119. P. 31−48.
  20. Belton P. S., Goodfellow B.J., Wilson R.H. A variable-temperature Fourier transform infrared study of gelation in iota- and kappa-carrageenans // Macromolecules. 1989. Vol. 22, P. 1636−1642.
  21. Belton P. S., Wilson R.H., Chenery D.H. Interactions of group I cations with iota and kappa-carrageenan studied by Fourier transform infrared spectroscopy // Int. J. Biol. Macromol. 1986. Vol. 8, P. 247−251.
  22. Bertelli A., Giovannini L., Galmozzi G., Bertelli A.A.E. Protective role of propionyl carnitine in vascular disorders experimentally induced by endothelin (ET-1) serotonin and k-carrageenin // Drugs Exp. Clin. Res. 1993. Vol. 19, P. 7−11.
  23. Betteridge V. Dietary fibre: an evolving definition?. // Nutrition Bulletin. 2009. Vol. 34, P. 122−125.
  24. Bienvenu J., Doche C., Gutowski M., Lenoble M., Pedrix J. Production of proinflammatory cytokines and cytokines involved in the TH1/TH2 balance ismodulated by pentoxifylline // J. Cardiovascul. Pharmacol. 1995. Vol. 25, N 2. P. 80−84.
  25. Bixler H.J. Recent developments in manufacturing and marketing carrageenan // Hydrobiologia. 1996. Vol. 326/327. P. 35−37.
  26. Blondin C., Fischer E., Boisson-Vidal C., Kazatchkine M.D., Jozefonvicz J. Inhibition of complement activation by natural sulfated polysaccharides (fucans) from brown seaweed // Mol. Immunol. 1994. Vol. 31, P. 247−253.
  27. Bobin-Dubigeon C., Lahaye M., Guillon F., Barry J.-L., Gallant D.J., Studies of factors limiting the biodegradation of ulva sp. cell-wall polysaccharides // J. Sci. Food Agric. 1997. Vol. 75, P. 341−351.
  28. Bongaerts K., Reynaers H., Zanetti F., Paoletti S. On the molar mass of kappa-carrageenan in the course of conformational transition from the disordered to the fundamental ordered form // Macromolecules. 1999. Vol. 33, P. 675−682.
  29. Borgstorm J., Picullel L., Viebke C., Talmon Y. On the structure of aggregated kappa-carrageenan helices. A study by cryo-TEM, optical rotation and viscometry // Int. J. Biol. Macromol. 1996. Vol. 18, P. 223−229.
  30. Born G.V.R., Gross M.J. The aggregation of blood platelets // J. Physiol. 1963. Vol. 168, P. 178−195.
  31. Broos K., Feys H.B., De Meyer S.F., Vanhoorelbeke K., Deckmyn H. Platelet at work in primary hemostasis // Blood Rev. 2011. Vol. 25, P. 155−167.
  32. Brown L., Rosner B., Willett W., Sacks F. Cholesterol-lowering effects of dietary fiber: a meta-analysis // Am. J. Clin. Nutr. 1999. Vol. 69, P. 30−42.
  33. Brownlee A., Allen A., Pearson J.P., Dettmar P.W., Havler M.E., Atherton M.R., Onsoyen E. Alginate as a Source of Dietary Fiber // Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2005. Vol. 45, N 6. P. 497−510.r*
  34. Burtin P. Nutritional value of seaweeds // Electron J. Environ. Agric. Food Chem. 2003. Vol. 2, P. 498−503.
  35. Caceres P.J., Carlucci M.J., Damonte E.B., Matsuhiro B., Zuniga E.A. Carrageenans from Chilean samples of Stenogramme interrupta (Phyllophoraceae): structural analysis and biological activity 11 Phytochemistry. 2000. Vol. 53, N 1. P. 81−86.
  36. Capron I., Yvon M., Muller G. In-vitro gastric stability of carrageenan // Food Hydrocoll. 1996. Vol. 10, N 2. P. 239−244
  37. Castro I., Barroso L.P., Sinnecker P. Functional foods for coronary heart disease risk reduction: a meta-analysis using a multivariate approach // Am. J. Clin. Nutr. 2005. Vol. 82, P. 32−40.
  38. Cazenave J.P., Ohlmann P., Cassel D., Eckly A., Hechler B., Gachet C. Preparation of washed platelet suspensions from humanand rodent blood // Methods Mol. Biol. 2004. Vol. 272, P. 13−28.
  39. Chaidedgumjorn A., Toyoda H., Woo E.R., Lee K.B., Kim Y.S., Toida T., Imanaria T. Effect of (1—>3) — and (l-«4)-linkages of fully sulfated polysaccharides on their anticoagulant activity // Carbohydr. Res. 2002. Vol. 337, N 10, P. 925−933.
  40. Chapman V.J., Chapman D.J. Seaweeds and their uses // London, UK: Chapman & Hall, 1980. P. 98−148.
  41. Chattopadhyay N., Ghosh T., Sinha S., Chattopadhyay K., Karmakar P., Ray B. Polysaccharides from Turbinaria conoides: Structural features and antioxidant capacity I I Food Chem. 2010. Vol. 118, P. 823−829.
  42. Chen S.K., Tsai M.L., Huang J.R., Chen R.H. In vitro antioxidant activities of low-molecular-weight polysaccharides with various functional groups 11 J. Agric. Food Chem. 2009. Vol., 57, P. 2699−2704.
  43. Chevolot L., Foucault A., Chaubet F., Kervarec N., Sinquin C., Fisher A.M., Boisson-Vidal C. Further data on the structure of brown seaweed fucans: Relationships with anticoagulant activity // Carbohydr. Res. 1999. Vol. 319, P. 154 165.
  44. Chiovitti A., Bacic A., Craik D.J., Munro S.L., Kraft G.T., Liao M.-L., Falshaw R., Furneaux R.H. A pyruvated carrageenan from Australian specimens of the red alga Sacronema filiforme II Carbohydr. Res. 1998. Vol. 314, N 3−4, P. 229 243.
  45. Choi E.M., Kim A.J., Kim Y.O., Hwang J.K. Immunomodulating activity of arabinogalactan and fucoidan in vitro // J. Med. Food. 2005. Vol. 8, P. 446−453.
  46. Chronakis I.S., Piculell L., Borgstrom J. Rheology of kappa-carrageenan in mixtures of sodium and cesium iodide: two types of gels // Carbohydr. Polym. 1996. Vol. 31, P. 215−225.
  47. Cochran F.R., Baxter C.S. Macrophage-mediated suppression of T lymphocyte proliferation induced by oral carrageenan administration // Immunology. 1984. Vol. 53, P. 291−297.
  48. Cornish M.L., Garbary D.J. Antioxidants from macroalgae: potential applications in human health and nutrition // Algae. 2010. Vol. 25, N 4, P. 155−171.
  49. Costa L.S., Fidelis G.P., Cordeiro S.L., Oliveira R.M., Sabry D.A., Ciara R.B.G., Nobre L.T.D.fiL, Costa M.S.S.P., Almeida-Lima J., Farias E.H.C., Leite
  50. E.L., Rocha H.A.O. Biological activities of sulfated polysaccharides from tropical seaweeds // Biomed. Pharmacother. 2010. Vol. 64, P. 21−28.
  51. Cox D. Ligand-binding assays: fibrinogen // Methods Mol. Biol. 2004. Vol. 273, P. 125−138.
  52. Craigie J.S. Cell wall // In: Cole K.M. and Sheath G. (eds.), Biology of the Red Algae- Cambridge: Cambridge University Press, 1990. P. 221−257.
  53. Craigie J.S., Wftng K.F. Carrageenan biosynthesis // In: Jensen A. and Stein J.R. (eds), Proc. Int. Seaweed Symp. 1979. Vol. 9, 360−370.
  54. Cummings J.H., Mann J.I., Nishida C., Vorster H.H. Dietary fibre: an agreed definition // Lancet. 2009. Vol. 373, N 9661, P. 365−366.
  55. Dace R., McBride, E., Brooks K., Gander J., Buszko M., Doctor V.M. Comparison of the anticoagulant action of sulfated and phosphorylated polysaccharides // Thromb. Res. 1997. Vol. 87, N 1. P. 112−121.
  56. Davies C.E. Inhibition of complement by carrageenan: mode of action, effect of allergic reaction and on complement of various species // Immunology. 1965. Vol. 8, P. 291−299.
  57. Dawczynski C., Schubert R., Jahreis G. Amino acids, fatty acids, and dietary fibre in edible seaweed products // Food Chem. 2007. Vol. 103, N 3. P. 891 899.
  58. Dawes C. J. Seasonal and reproductive aspects of plant chemistry and HOTa-carrageenan from Floridian Eucheuma (Rhodophyta, Gigartinales) // Bot. Mar. 1977. Vol. 20, P. 137−147.
  59. Decker E.A., Schanus E.G. Catalysis of linoleate oxidation by non-heme and heme-soluble chicken muscle proteins // J. Agric. Food Chem. 1986. Vol. 34, P. 991−994.
  60. Demmig-Adams B., Adams W.W. Antioxidants in photosynthesis and human nutrition // Science. 2002. Vol. 298, P. 2149−2153.
  61. Deville C., Damas J., Forget P., Dandrifosse G., Peulen O. Laminarin in the dietary fibre concept // J. Sci. Food Agric. 2004. Vol. 84, P. 1030−1038.
  62. Deville C., Gharbi M., Dandrifosse G., Peulen O. Study on the effects of laminarin, a polysaccharide from seaweed, on gut characteristics // J. Sci. Food Agric. 2007. Vol. 87, P. 1717−1725.
  63. Eriksson A.C., Whiss P.A. Measurement of adhesion of human platelets in plasma to protein surfaces in microplates // J. Pharmacol. Toxicol. Methods. 2005. Vol. 52, N3. P. 356−365.
  64. Evelegh M.J., Clark D.A., McCandless E.L. Carrageenan stimulates the release of dialyzable helper factors // Immunol. Lett. 1982. Vol. 5, N 5. P. 247−252.
  65. Falshaw R., Furneaux R. Carragenan from the tetrasporic stage of Gigartina decipiens (Gigartinaceae, Rhodophyta) // Carbohydr. Res. 1994. Vol. 252, N 1. P.171−182.
  66. Falshaw R., Furneaux R. H. Carragenan from the tetrasporic stage of Gigartina clavifera and Gigartina alveata (Gigartinaceae, Rhodophyta) // Carbohydr. Res. 1995. Vol. 276, № 1. P. 155−165.
  67. Falshaw R., Furneaux R.H., Miller I.J. The backbone structure of th sulfated galactan from Plocamium costatum (C. Agardh) Hook. F. Et. Harv. (Plocamiaceae, Rhodophyta)//Bot. Mar. 1999. Vol. 42, N 5. P. 431−435.
  68. Falshaw R., Furneaux R.H., Wong H., Liao M.-L., Bacic A., Chandrkrachang S. Structural analysis of carrageenans from Burmese and Thai samples of Catenella nipae Zanardini // Carbohydr. Res. 1996. Vol. 285, P. 81−98.
  69. Farias W.R., Nazareth R.A., Mourao P.A. Dual effects of sulfated D-galactans from the red algae Botryocladia occidentalis preventing thrombosis and inducing platelet aggregation // J.- Thromb. Haemost. 2001. Vol. 86, P. 1540−1546.
  70. Food and Drugs: Parts 300−499 // Code of Federal Regulations Series- Bernan Assoc, 2008.
  71. Franz G., Alban S. Structure-activity relationship of antithrombotic polysaccharide derivatives International // Int. J. Biol. Macromol. 1995. Vol. 17, N 6. P. 311−314.
  72. Funami T. Atomic Force Microscopy Imaging of Food Polysaccharides // Food Sci. Technol. Res. 2010. Vol. 16, N 1. P. 1−12, a
  73. Funami T. Atomic Force Microscopy Imaging of Food Polysaccharides in Relation to Rheological-Properties // Food Sci. Technol. Res. 2010. Vol. 16, N 1. P. 13−22,6
  74. Galisteo M., Duarte J., Zarzuelo A. Effects of dietary fibers on disturbances clustered in the metabolic syndrome // J. Nutr. Biochem. 2008. Vol. 19, P. 71−84.
  75. Gao C., Boylan B., Fang J., Wilcox D.A., Newman D.K., Newman P.J. Heparin promotes platelet responsiveness by potentiating cdlb 03-mediated outside-in signaling // Blood. 2011. Vol. 117, N 18. P. 4946−4952.
  76. Gomez-Ordonez E., Jimenez-Escrig A., Ruperez P. Dietary fibre and physicochemical properties of several edible seaweeds from the northwestern Spanish coast // Food Res. Int. 2010. Vol. 43, P. 2289−2294.
  77. Granert C., Raud J., Xie X., Lindquist L., Lindbom L. Inhibition of leukocyte rolling with polysaccharide fucoidin prevents pleocytosis in experimental meningitis in the rabbit // J. Clin. Invest. 1994. Vol. 93, P. 929−936.
  78. Grasdalen H., Smidsrod O. Iodid-specific formation of kappa-carrageenan single helices. I-NMR-spectroscopic evidence for selective site binding of ioddide anions in ordered conformation // Macromolecules. 1981. Vol. 14, N 4/5. P. 18 421 845.
  79. Green L.C., Wagner D.A., Glogowski J., Skipper P.L., Wishnok J.S.,•f
  80. Tannenbaum S.R. Analysis of nitrate, nitrite, and 15N. nitrate in biological fluids // Anal. Biochem. 1982. Vol. 126, P. 131−138.
  81. Greinacher A. Platelet activation by heparin // Blood. 2011. Vol. 117, N 18. P. 4686−4687.
  82. Gunning A.P., Cairns P., Kirby A.R., Round A.N., Bixler H.J., Morris VJ. Characterising semi-refined iota-carrageenan networks by atomic force microscopy // Carbohydr. Polym. 1998. Vol. 36, P. 67−72.
  83. Gutteridge J.M.C., Halliwell B. The deoxyribose assay: an assay both for 'free' hydroxyl radical and for site-specific hydroxyl radical production // BJ. Letters. 1988. P. 932−933.
  84. Giiven K.C., Ozsoy Y., Ulutin O.N. Anticoagulant, fibrinolytic and antiaggregant activity of carrageenans and alginic acid // Botanica Marina. 1991. Vol. 34, P. 429−432.
  85. Hagimori M., Kamiya S., Yamaguchi Y., Arakawa M. Improving frequency of thrombosis by altering blood flow in the carrageenan-induced rat tail thrombosis model // Pharmacol. Res. 2009. Vol. 60, P. 320−323.
  86. Halliwell B. Reactive oxygen species in living systems: Source, biochemistry, and role in human disease // Am. J. Med. 1991. Vol. 91, P. S14-S22.
  87. Halliwell B., Gutteridge J.M.C. Free radicals in biology and medicine. Oxford University Press, New York, 2007. pp. 851.
  88. Halliwell B., Gutteridge J.M.C., Aruoma O.I. The deoxyribose method: A simple «test-tube» assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals // Anal. Biochem. 1987. Vol. 165, P. 215−219.
  89. Harris S.S., Pijls L. Dietary fibre: refining a definition // Lancet. 2009. Vol. 374, N9683. P. 28.
  90. Hawkins W.W., Leonard V.G. The antithrombic activity of carrageenin in human blood // Can. J. Biochem. Physiol. 1963. Vol. 41, N 5. P. 1325−1327.
  91. Hermansson A.-M., Eriksson E., Jordansson E. Effects of potassium, sodium, and calcium on the microstructure and rheological behaviour of kappa-carrageenan gels // Carbohydr. Polym. 1991. Vol. 16, P. 297−320.
  92. Heyraud A., Rinaudo M., Rochas C. Physical and chemical properties of phycolloids // Intr. Appl. Phycol.- Hague: SPB Academic. 1990. P. 151−176.
  93. Hjerde T., Smidsrod O., Christensen B.E. Analysis of the conformational properties of kappa- and iota-carrageenan by size-exlusion chromotography combined with low-angel laser light scattering // Biopolym. 1999. Vol. 49, N 1. P. 71−80.
  94. Hoffmann R.A., Gidley M.J., Cook D., Frith W.J. Effect of isolation prosedures on the molecular composition and physical properties of Euchemeuma cottonii carrageenan // Food Hydrocol. 1995. Vol. 39, N 2. P. 281−289.
  95. Holdt S.L., Kraan S. Bioactive compounds in seaweed: functional food applications and legislation // J. Appl. Phycol. 2011 Vol. 23, N 3. 543−597.
  96. Huang D., Ou B., Prior R.L. The Chemistry behind antioxidant capacity assays // J. Agric. Food Chem. 2005. Vol. 53, P. 1841−1856.
  97. Ikeda S., Morris V.J., Nishinari K. Microstruture of aggregated and nonaggregated Kanna-carrageenan helices visualized by atomic force microscopy // Biomacromolecules. 2001. Vol. 2, P. 1331−1337
  98. Irifune K. Alveolar destruction in experimental Klebsiella pneumonia II Pathol. Int. 1987. Vol. 37, P. 475−486.
  99. Jackson S.P. The growing complexity of platelet aggregation // Blood. 2007. Vol. 109, P. 5087−5095.
  100. Jarvis G.E. Platelet aggregation. Turbidimetric Measurements // Methods Mol. Biol. 2004. Vol. 272, P. 65−75.
  101. Jiang Y., Guo X., Tian X. Synthesis and NMR structural analysis of O-succinyl derivative of low-molecular-weight k-carrageenan // Carbohydr. Polym. 2005. Vol. 61, P. 399−406.
  102. Jiao G., Yu G. f Zhang J., Ewart S.H. Chemical structures and bioactivities of sulfated polysaccharides from marine algae // Mar. Drugs. 2011. Vol. 9, P. 196 223.
  103. Johnston K.H., McCandless E.L. The immunologic response of rabbits to carrageenans, sulfated galactans extracted from marine algae // J. Immunol. 1968 Vol. 101, N3. P. 556−562.
  104. Joint FAO/WHO expert committee on food additives compendium of food additives specifications, Addendum 9: FAO Food and Nutrition Paper. 2001.Vol. 52, P. 192−194.
  105. Joint FAO/WHO expert committee on food additives. Addendum 10. FAO Food and Nutrition Pipe, Compendium of food additives specifications. 2008. Vol. 59, P. 65−85.
  106. Jung S.M., Moroi M. Platelet glycoprotein VI // Adv. Exp. Med. Biol.2008. Vol. 640, P. 53−63.
  107. Kiefer T.L., Becker R.C. Inhibitors of platelet Adhesion // Circulation.2009. Vol. 120, P. 2488−2495.
  108. Kim M.-H., Job H.-G. Immunostimulatory effects of fucoidan on bone marrow-derived dendritic cells'// Immunol. Lett. 2008. Vol. 115, P. 138−143.
  109. Kindness G., Long W.F., Williamson F.B. Anticoagulant effects of sulphated polysaccharides in normal and antithrombin Ill-deficient plasmas // Br. J. Pharmac. 1980. Vol. 69, P. 675−677. a
  110. Kindness G., Williamson F.B., Long W.F. Inhibition by antithrombin III of carrageenan- and xylan SP54-induced aggregation of human blood platelets // Biochem. Soc. Trans. 1980. Vol. 8, P. 84−85. 6
  111. King D. Dietary fiber, inflammation, and cardiovascular disease // Mol. Nutr. Food Res. 2005. Vol. 49, P. 594−600.
  112. Kirby A.R., Gqnning A.P., Morris V.J. Imaging polysaccharides by atomic force microscopy // Biopolymers. 1996. Vol. 38, P. 355−366.
  113. Kloareg B., Demarty M., Mabeau S. Poly anionic characteristics of purified sulphated homopolysaccharides from brown algae // Int. J. Biol. Macromol. 1986. Vol. 8, 380−386. ,
  114. Knutsen S., Murano M., Amato E., Toffanin R., Rizzo R., Paoletti S. Modified procedures for extraction and analysis of carragenan applied to the red alga Hypnea musciformis II J. Appl. Phycol. 1995. Vol. 7, N 6. P. 565−576.
  115. Knutsen S.H., Grasdalen H. Characterization of water-extractable polysaccharides from Norwegian Furcellaria lumbricalis (Huds.) Lamour. (Gigartinales, Rhodopliyceae) by IR and NMR spectroscopy // Botanica Marina. 1987. Vol. 30, 497−505:
  116. Knutsen S.H., Myslabodski D.E., Larsen B., Usov A.I. A modified system of nomenclature for red algal galactans // Bot. Mar. 1994. Vol. 37, № 2. P.163−169.
  117. Kolb J.P., Quan P.C., Poupon M.F., Desaymard C. Carrageenan stimulates populations of mouse «B» cells mostly nonoverlapping with those stimulated with LPS or dextran sulfate // Cell Immunol. 1981. Vol. 57, N 2. P. 348−360.
  118. Lahaye M., Kaeffer B. Seaweed dietary fibres: structure, physico-chemical and biological properties relevent to intestinal physiology// Sci. Aliment. 1997. Vol. 17, N6. P. 563−584.
  119. Lahaye M., Michel C., Barry J.L. Chemical, physicochemical and in-vitro fermentation characteristics of dietary fibres from Palmaria palmata (L.) Kuntze // Food Chem. 1993. Vol/47, N 1. P. 29−36.
  120. Leiro J.M., Castro R., Arranz J.A., Lamas J. Immunomodulating activities of acidic sulphated polysaccharides obtained from the seaweed Ulva rigida C AGARDH // Int. Immunopharmacol. 2007. Vol. 7, P. 879−888.
  121. Lewis G., Stanley N., Guist G. Commercial production and application of algal hydrocolloids // In: Lembi C. (ed.), Algae and Human affairs- Seattle: Univ. of Washington, 1988. P. 206−232.
  122. Liao M-L., Kraft G.T., Munro S., Craik D.J. Beta/kappa-carrageenans as evidence for continued separation of the families Didranemataceae and Sarcodiaceae (Gigartinales, Rhodophyta) // J. Phycology. 1993. Vol. 29, P. 933 844.
  123. Lingnert H., Vallentin K., Eriksson C.E. Measurement of antioxidative effect in model system // J. Food Process Preserv. 1979. Vol. 3, P. 87−103.
  124. Lottenberg A.M.P., Fan P.L.T., Buonacorso V. Effects of dietaiy fiber intake on inflammation in chronic diseases // Einstein. 2010. Vol. 8, No. 2. P. 25 458. '
  125. Lukic M.L., Vukmanovich S., Ramie Z., Mostarika-Stojkovic M. Carrageenan induced T-cell suppressor activity in mice // Periodicum Biiologorum. 1983. Vol. 85, Suppl. 3. P. 41−43.
  126. MacArtain P., Gill C.I.R., Brooks M., Campbell R., Rowland I.R. Nutritional value of edible seaweeds //Nutr. Rev. 2007. Vol. 65, P. 535−543.
  127. Magalhaes L.M., Segundo M.A., Reis S., Lima J.L. Methodological aspects about in vitro evaluatioh of antioxidant properties // Anal. Chim. Acta. 2008. Vol. 613, P. 1−19.
  128. Majdoub H., Ben Mansour M., Chaubet F., Roudesli M.S., Maaroufi R.M. Anticoagulant activity of a sulfated polysaccharide from the green alga Arthrospira platensis II Biochim. Biophys. Acta. 2009. Vol. 1790, P. 1377−1381.
  129. Mao W.-J., Fang F., Li H.-Y., Qi X.-H., Sun H.-H., Chen Y., Guo S.-D. Heparinoid-active two sulfated polysaccharides isolated from marine green algae Monostroma nitidum // Carbohydr. Polym. 2008. Vol. 74, P. 834−839.
  130. Marcum J.A. The origin of the dispute over the discovery of heparin // J. Hist. Med. Allied Sci. 2000. Vol. 55, P. 37−66.
  131. Maruyama H., Tamauchi H., Hashimoto M., Nakano T. Suppression of Th2 immune responses by mekabu fucoidan from Undaria pinnatiflda sporophylls // Int. Arch Allergy Immunol: 2005. Vol. 137, P. 289−294.
  132. McCandless E.L. Biological control of carrageenan structure effects conferred by the phase of life cycle of the carrageenophyte // Proc. Int. Seaweed Symp. 1981. Vol. 8, P. 1−18.
  133. Mclntire T.M.j Brant D.A. Imaging of carrageenan macrocycles and amylase using noncontact atomic force microscopy // Int. J. Biol. Macromol. 1999. Vol. 26, P. 303−310.
  134. McMillan R.M., Macintyre D.E., Gordon J.L. Stimulation of human platelets by carrageenans // J. Pharm. Pharmacol. 1979. Vol. 31, P. 148−152.
  135. Melo F.R., Pereira M.S., Foguel D., Mourao P.A.S. Antithrombin-mediated anticoagulant activity of sulfated polysaccharides // J. Biol. Chem. 2004. Vol. 279, P. 20 824−20 835.
  136. Mestechkina N.M., Shcherbukhin V.D. Sulfated polysaccharides and their anticoagulant activity: A review // Appl. Biochem. Microbiol. 2010. Vol. 46, N 3. P. 267−273. '
  137. Michel C., Lahaye M., Bonnet C., Mabeau S., Barry J.L. In vitro fermentation by human faecal bacteria of total and purified dietary fibres from brown seaweeds // Br. J. Nutr. 1996. Vol. 75, P. 263−280.
  138. Michel C., Ma6farlane G.T. Digestive fates of soluble polysaccharides from marine macroalgae: involvement of the colonic microflora and physiological consequences for the host // J. Appl. Bacteriol. 1996. Vol. 80, P. 349−369.
  139. Millane R.P., Chandrasekaran R., Arnott S., Dea I.C.M. The molecular structure of kappa-carrageenan and comparison with iota-carrageenan // Carbohydr. Res. 1988. Vol. 182, N 1. P. 1−17.
  140. Miller I.J. The chemotaxonomic significance of the water-soluble red algal polysaccharides // Recent Res. Devel. in Phytochem. 1997. Vol. 1, P. 531−565.
  141. MinichD. Position Paper on Carrageenan. 2003.
  142. Morris E.R., Rees D.A. Calorimetric and chiroptical evidence of aggregate-driven helix formation in carrageenan systems // Carboydr. Polym. 1980. Vol. 80, P. 317−323.
  143. Morris V.J., Kirby A.R., Gunning A.P. A fibrous model for gellan gels from atomic force microscopy studies // Prog. Colloid Polym Sci. 1999. Vol. 114, P. 102−108.
  144. Mousa S.A. Heparin and low-molecular weight heparins in thrombosis and beyond //Methods Mot Biol. 2010. Vol. 663, P. 109−132.
  145. Murano E., Toffanin R., Cecere E., Rizzo R., Knutsen S.H. Investigation of the carrageenans extracted from Solieria filiformis and Agardhiella subulata from Mar Piccolo, Taranto //'Mar. Chem. 1997. Vol. 58, N 3−4. P. 319−325.
  146. Nacife V. P., Soeiro M.D.N.C., Araujo-Jorge T.C., Neto H.C.C., Meirelles M.D.N.L. Ultrastructural, immunocytochemical and flow cytometry study of mouseperitoneal cells stimulated with carrageenan // Cell Struct. Funct. 2000. Vol. 25, P. 337−350. '
  147. Nader H.B., Lopes C.C., Rocha H.A.O., Santos E.A., Dietrich C.P. Heparins and Heparinoids: Occurrence, Structure and Mechanism of Antithrombotic and Hemorrhagic Activities // Curr. Pharm. Des. 2004. Vol. 10, N 9. P. 951−966.
  148. Nagaoka M., Shibata H., Kimura-Takagi I., Hashimoto S., Aiyama R., Ueyama S., Yokokura T. Anti-ulcer effects and biological activities of polysaccharides from marine algae // Biofactors. 2000. Vol. 12, P. 267−274.
  149. Nilsson S., Piculell L. Helix-coil transitions of ionic polysaccharides analyzed within the Poisson-Boltzmann cell model. 4. Effects of site-specific counterion binding // Macromolecules. 1991. Vol. 24, P. 3804−3811.
  150. Nishimiki M.,-Rao N.A., Yagi K. The occurrence of superoxide anion in the reaction of reduced phenazine methosulfate and molecular oxygen // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1972. Vol. 46, 849−853.
  151. O’Sullivan L., Murphy B., McLoughlin P., Duggan P., Lawlor P.G., Hughes H., Gardiner G.E. Prebiotics from Marine Macroalgae for Human and Animal Health Applications // Mar. Drugs. 2010. Vol. 8, P. 2038−2064.
  152. Ogata M., Matsui T., Kita T., Shigematsu A. Carrageenan primes leukocytes to enhance lipopolysaccharide-induced tumor necrosis factor alpha production // Infect. Immun. 1999. Vol. 67, P. 3284−3289.
  153. Ogata M., Yoshida S.-I., Kamochi M., Shigematsu A., Mizuguchi Y. Enhancement of Lipopolysaccharide-induced Tumor Necrosis Factor Production in Mice by Carrageenan Pretreatment // Infect. Immun. 1991. Vol. 59, N 2. P. 679−683.
  154. Opoku G., Qiu X., Doctor V. Effect of oversulfation on the chemical and biological properties of kappa carrageenan // Carbohydr. Polym. 2006. Vol. 65, P. 134−138.
  155. Panlasigui L.N., Baello O.Q., Dimatangal J.M., Dumelod B.D. Blood cholesterol and lipid-lowering effects of carrageenan on human volunteers // Asia Pacific J. Clin. Nutr 2003. Vol. 12, No 2. P. 209−214.
  156. Parish C.R., Freeman C., Hulett M.D. Heparanase: a key enzyme involved in cell invasion // Biochim. Biophys. Acta. 2001. Vol. 1471, P. M99-M108.
  157. Park P.J., Jun^ W.K., Nam K.D., Shahidi F., Kim S.K. Purification and characterization of antioxidative peptides from protein hydrolysate of lecithinfree egg yolk // J. Am. Oil. Chem. Soc. 2001. Vol. 78, P. 651−656.
  158. Peat S., Turvey J. R., Rees D.A. Carbohydrates of the Red Alga, Porphyra umbilicalis // J. Chem. Soc. 1961. P. 1590−1595.
  159. Penta-Ramos E.A., Xiong Y.L. Antioxidative activity of whey protein hydrolysates in a liposomal system // J. Dairy Sci. 2001. Vol. 84, P. 2577−2583.
  160. Pereira M.S., Melo F.R., Mourao P.A.S. Is there a correlation between structure and anticoagulant action of sulfated galactans and sulfated fucans? // Glycobiology. 2002. Vol. 12, P. 573−580.
  161. Piculell L. Gelling carrageenans // In: Stephen A.M. (ed.), Food Polysaccharides and their Applications- New York: Marcel Dekker Inc, 1995. P. 205−244.
  162. Plashchina I., Muratalieva I., Braudo E., Tolstoguzov V.B. Studies of the gel formatin of Kanna-carrageenan above the coil-helix transition temperature range // Carbohydr. Polym. 186. Vol. 6, P. 15−34.
  163. Pomin V. Structural and functional insights into sulfated galactans: a systematic review // Glycoconj. J. 2010. Vol. 27, N l. P. 1−12.
  164. Prieto P., Pineda M., Aguilar M. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: specific application to the determination of vitamin E // Anal. Biochem. 1999. Vol. 269, P. 337−341.
  165. Prior R.L., Wu-X., Schaich K. Standardized methopds for the determination of antioxidant capacity and phenolics in foods and dietary suppelements // J. Agric. Food Chem. 2005. Vol. 53, P. 4290−4302.
  166. Qi H., Zhang Q., Zhao T., Chen R., Zhang H., Niu X., Li Z. Antioxidant activity of different sulfate content derivatives of polysaccharide extracted from Ulvapertusa (Chlorophyta) in vitro II Int. J. Biol. Macromol. 2005. Vol. 37, P. 195 199.
  167. Qiu X., Amarasekara A., Doctor V. Effect of oversulfation on the chemical and biological properties of fucoidan // Carbohydr. Res. 2006. Vol. 63, N 2, P. 224 228.
  168. Quan P.C., Kolb J.P., Lespinats G. NK activity in carrageenan-treated mice // Immunology. 1980. Vol. 40, N 4. P. 495−503.
  169. Ray B., Lahaye M. Cell-wall polysaccharides from the marine green alga Ulva 'rigida' (Ulvales, Chlorophyta). Extraction and chemical composition // Carbohydr. Res. 1995. Vol. 274, P. 251−261.
  170. Rees D.A. Structure, conformation and mechanisms in the formation of polysaccharide gels and networks // Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 1969. Vol. 24, P. 267−332.
  171. Rees D.A. The carrageenans system of polysaccharides. 1. The relation between the k- and-components // J. Chem. Soc. 1963. Vol. 1, P. 1821−1832.
  172. Rees D.A., Conway E. The Structure and Biosynthesis of Porphyran: a Comparison of some Samples // Biochem. J. 1962. Vol. 84, P. 411−416.
  173. Rees D.A., Morris E.R., Thom D., Madden S.K. Shapes and interaction of carbohydrate chains // In: Horecker B., Kaplan N.O., Marmur J. and Sheraga H.A. (eds.), The polysaccharides- Oxford: Academic Press, 1982. P. 195−290.
  174. Robinson G., Morric E.R., Rees D.A. Role of double helices in carrageenan gelation: the domain model // J. Chem. Soc. Chem. Commun. 1980. Vol. 1980, P. 152−153.
  175. Rocha de Souza M.C., Marques C.T., Dore C.M.G., Ferreira da Silva F.R., Rocha H.A.O., Leite E.L. Antioxidant activities of sulphated polysaccharides from brown and red seaweeds // J. Appl. Phycol. 2007. Vol. 19, P. 153−160.
  176. Rochas C., Rinaudo M., Landry S. Role of the molecular weight on the mechanical properties of kappa carrageenan gels // Carbohydr. Polym. 1990. Vol. 12, N3. P. 255−266. =
  177. Ruch K.J., Cheng S.J., Klauning J.E. Prevention of cytotoxicity and inhibition of intercellular communication by antioxidant catechin isolated from Chinese green tea//Carcinogenesis. 1989. Vol. 10, P. 1003−1008.
  178. Ruperez P., Ahrazem O., Leal J.A. Potential antioxidant capacity of sulfated polysaccharides from the edible marine brown seaweed Fucus vesiculosus II J. Agric. Food Chem. 2002. Vol. 50, P. 840−845.
  179. Shanmugam M., Mody K.H. Heparinoid-active sulphated polysaccharides from marine algae as potential blood anticoagulant agents // Current Science. 2000. Vol. 79, N 12. P. 1672−1683.
  180. Shantsila E., Lip G.Y.H., Chong B.H. Heparin-induced thrombocytopenia // Chest. 2009. Vol. 135, P. 1651−1664.
  181. Silverberg M.,'Vest Diehl S. The autoactivation of Factor XII (Hageman factor) induced by low-iMr heparin and dextran sulphate. The effect of the Mr of the activating polyanion // Biochem. J. 1987. Vol. 248, P. 715−720.
  182. Smidsrod O., Grasdalen H. Conformations of Kanna-carrageenan in solution // Hydrobiologia. 1984. Vol. 116. P. 19−28.
  183. Smith D.B., Cook W.H. Fractionation of carrageenan // Arch. Biochem. Biophys. 1953. Vol. 45, P. 232−233.
  184. Stanford E.C. On the economic application of seaweeds // J. Soc. Arts. 1962. Vol. 10, P. 185−195.
  185. Stanley N.F. Carrageenan // In: Harris P. (ed.), Food Gels- Liverpool: Elsever Appl. Science, 1990. P. 79−119.
  186. Stephanie B., Eric D., Sophie F., Christian B., Yu G. Carrageenan from Solieria chordalis (Gigartinales): Structural analysis and immunological activities of the low molecular weight fractions // Carbohydr. Polym. 2010. Vol. 8, P. 448 450.
  187. Stevens J.M. Platelet adhesion assays performed under static conditions // Methods Mol. Biol. 2004. Vol. 272, P. 145−151.
  188. Stacker R., Keaney J.F. Jr. Role of oxidative modifications in atherosclerosis //Physiol. Rev. 2004. Vol. 84, P. 1381−1478.
  189. Stortz C., Cerezo A.S. The carbon-13 NMR spectroscopy of carrageenans: calculation of chemical shifts and computer aided structural determination // Carbohydr. Polym. 1992. Vol. 19, P. 237−242.
  190. Sun L., Wang C., Shi Q., Ma C. Preparation of different molecular weight polysaccharides from Porphyridium cruentum and their antioxidant activities // Int. J. Biol. Macromol 2009. Vol. 45, P. 42−47.
  191. Suzuki T., Nakai K., Yoshie Y., Shirai T., Hirano H. Changes in dietary fibre in seaweed foods during commercial heat processing // Jap. Soc. Sci. Fish. 1993. Vol. 59, P. 1371−1375.
  192. Takano R., Nose Y., Hayashi K., Hara S., Hirase S. Agarose-carrageenan hybrid polysaccharide from Lomentaria catenata II Phytochemistry. 1994. Vol. 37, P. 1615−1619.
  193. Tateda K., Irifune K., Shimoguchi K., Tomono K., Hirakata Y., Matsumoto T., Kaku M., Yamaguchi K. Potential Activity of Carrageenan to Enhance Antibacterial Host-Defense Systems in Mice // J. Infect. Chemother. 1995. Vol. 1, P. 59−63.
  194. Tateda K., Matsumoto T., Yamaguchi K. Acute induction of interleukin-6 and biphasic changes of serum complement C3 by carrageenan in mice // Mediators Inflamm. 1998. Vol. l, f. 221−223.
  195. Tissot B., Daniel R. Biological properties of sulfated fucans: The potent inhibiting activity of algal fucoidan against the human complement system // Glycobiology. 2003. Vol. 13, P. 29G-31G. a
  196. Tissot B., Montdargent B., Chevolot L., Varenne A., Descroix S., Gareil P., Daniel R. Interaction of fucoidan with the proteins of the complement classical pathway // Biochim. Biophys. Acta. 2003. Vol. 1651, P. 5−16. 6
  197. Tobacman J.K. Review of harmful gastrointestinal effects of carrageenan in animal experiments // Environ. Health Perspect. 2001. Vol. 109, P. 983−994.
  198. Ueda K., Brady J. Molecular dynamics simulations of carrabiose // Biopolym. 1997. Vol. 41, N 2. P. 323−330.
  199. Utsunomiya S.N., Ohishi S. Sequential appearance of IL-1 and IL-6 activities in rat carrageenan-induced pleurisy 11 J. Immunol. 1991. Vol. 147, P. 803 809.
  200. Valko M-, Leibfrotz D., Moncol J., Cronin M.T.D., Mazur M., Telser J. Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, Vol. 39, P. 44−84.
  201. Van de Velde F. Structure and function of hybrid carrageenans // Food Hydrocolloids. 2008. Vol. 22, N 5. P. 727−734.
  202. Van de Velde F., Knutsen S.H., Usov A.I., Rollema H.S., Cerezo A.S. 1H and 13C high resolution NMR spectroscopy of carrageenans: application in research and industry // Trends Food Sci. Technol. 2002. Vol. 13, P. 73−92.
  203. Varga-Szabo D., Pleines I., Nieswandt B. Cell Adhesion Mechanisms in Platelets // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2008. Vol. 28, P. 403−412.
  204. Vaya J., Aviram M. Nutritional Antioxidants Mechanisms of Action, Analyses of Activities and Medical Applications // Curr. Med. Chem. Immunol. Endocr. Metab. Agents! 2001. Vol. 1, P. 99−117.
  205. Veena C.K., Josephine A., Preetha S.P., Varalakshmi P. Beneficial role of sulfated polysaccharides from edible seaweed Fucus vesiculosus in experimental hyperoxaluria // Food Chem. 2007. Vol. 100, P. 1552−1559.
  206. Viebke C., Piculell L., Nilsson S. On the mechanism of gelation of helix forming biopolymers //Macromolecules. 1994. Vol. 27, P. 4160−4166.
  207. Vijayakumar R.K., Palanivel V., Muthukkaruppan V.R. Influence of carrageenan on peritoneal macrophages // Immunol. Lett. 1989. Vol. 23, P. 55−60.
  208. Wang J., Zhang Q., Zhang Z., Li Z. Antioxidant activity of sulphated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica II Int. J. Biol. Macromol. 2008. Vol.42, P. 127−132.
  209. Wang J., Zhang Q., Zhang Z., Song H., Li P. Potential antioxidant and anticoagulant capacity of low molecular weight fucoidan fractions extracted from Laminaria japonica II Int. J. Biol. Macromol. 2010. Vol. 46, P. 6−12.
  210. Warrand J. Healthy polysaccharides // Food Technol. Biotechnol. 2006 Vol. 44, N 3, P. 355−370. '
  211. Wellen K., Hotamisligil G.S. Inflammation, stress, and diabetes // J. Clin. Invest. 2005. Vol. 115, N5. P. 1111−1119.
  212. Wijesekara I., Pangestuti R., Kim S.-K. Biological activities and potential health benefits of sulfated polysaccharides derived from marine algae // Carbohydr. Polym. 2011. Vol. 84, P. 14−21.
  213. Williams P.A.'Molecular interactions of plant and algal polysaccharides // Structural Chemistry. 2009. Vol. 20, N 2. P. 299−308.
  214. Witt H. J. Carrageenan, Nature’s most versatile hydrocolloid // In: Colwell R.R., Pariser E.R., Sinskey AJ. (eds), Biotechnology of Marine Polysaccharides- Washington: Hemisphere Publishing Corp., 1985. P. 345−360.
  215. Xie W., Xu P., Liu Q. Antioxidative activity of water-soluble chitosan derivatives // Bioorg. Med. Chem. Lett. 2001. Vol. 11, P. 1699−1701.
  216. Yamada T., Ogamo A., Saito T., Watanabe J., Uchiyama H., Nakagawa Y. Preparation and anti-HIV activity of low-molecular-weight carrageenans and their sulfated derivatives // Carbohydr. Polym. 1997. Vol. 32, N 1. P. 51−55.
  217. Yang J.W., Yoon S.Y. Oh S.J., Kim S.K., Kang K.W. Bifunctional effects of fucoidan on the expression of inducible nitric oxide synthase // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2006. Vol. 346. P. 345−350.
  218. Yang L.Q., Zhang L.M. Chemical structural and chain conformational characterization of some bioactive polysaccharides isolated from natural sources // Carbohydr. Polym. 2009. Vol. 76, 349−361.
  219. Yermak I. M, Khotimchenko Yu.S. Chemical properties, biological activities and applications of carrageenan from red algae // In: Fingerman M, Nagabhushanam R. (eds.), Recent Advances in Marine Biotechnology- USA-UK: Sci. Publ. Inc., 2003. P.'207−255.
  220. Yuan Y.V., Walsh N.A. Antioxidant and antiproliferative activities of extracts from a variety of edible seaweeds // Food Chem. Toxicol. 2006. Vol. 44, P. 1144−1150.
  221. Zhang H.J., Mao W.J., Fang F., Li H.Y., Sun H.H., Chen Y., Qi X.-H. Chemical characteristics and anticoagulant activities of a sulfated polysaccharide and its fragments from Monoslroma latissimum // Carbohydr. Polym. 2008. Vol. 71, p. 428−434. C
  222. Zhang Q., Li N., Zhou G., Lu X., Xu Z., Li Z. 2003. In vivo antioxidant activity of polysaccharide fraction from Porphyra haitanensis (Rhodephyta) in aging mice // Pharmacol. Res. Vol. 48, P. 151−155.
  223. Zhang W., Piculell L., Nilsson S., Knutsen S.H. Cation specificity and cation binding to low sulfated carrageenans // Carbohydr. Polym. 1994. Vol. 23, N 4. P. 105−110.
  224. Zhang Z., Wang F., Wang X., Liu X., Hou Y., Zhang Q. Extraction of the polysaccharides from five algae and their potential antioxidant activity in vitro II Carbohydr. Polym. 2010. Vol. 82, P. 118−121.
  225. Zhao X., Xue C., Cai Y., Wang D., Fang Y. Study of antioxidant activities of fucoidan from Laminaria japonica 11 High Tech. Lett. 2005. Vol. 11, P. 91−94.
  226. Zhou G., Sun Y., Xin H., Zhang Y., Li Z., Xu Z. In vivo antitumor andimmunomodulation activities of different molecular weight lambda-carrageenans from Chondrus ocellatus// Pharmacol. Res. 2004. Vol. 50, N 1. P. 47−53.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!