Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Ультраструктурное и иммунногистохимическое исследование скелетной мускулатуры человека в норме и при некоторых видах нервно-мышечной патологии

Диссертация: Ультраструктурное и иммунногистохимическое исследование скелетной мускулатуры человека в норме и при некоторых видах нервно-мышечной патологии
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Исследования в области нервно-мышечной патологии представляют актуальную проблему современной нейрогистологии и нейробио-логии. Наследственные нервно-мышечные заболевания являются наиболее многочисленной группой среди всех заболеваний нервной системы. К ним относятся различные виды миопатий, невральные и спинальные амиотрофии, миастения, миотония и периодический паралич. Нервно-мышечные… Читать ещё >

Ультраструктурное и иммунногистохимическое исследование скелетной мускулатуры человека в норме и при некоторых видах нервно-мышечной патологии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Развитие скелетной мускулатуры
    • 1. 2. Классификация и типы мышечных волокон
    • 1. 3. Ультраструктура скелетных мышц человека
      • 1. 3. 1. Цитоскелет и якорные белки сарколеммы мышечного волокна
    • 1. 4. Нервно-мышечные взаимодействия
    • 1. 5. Основные морфологические характеристики нервно-мышечных заболеваний
    • 1. 6. Классификация нервно-мышечных заболеваний
  • Глава 2. Материалы и методы исследования
  • Глава 3. Результаты собственных исследований и их обсуждение
    • 3. 1. Получение первичной культуры миобластов человека
    • 3. 2. Иммуногистохимические исследования скелетной мышцы человека
      • 3. 2. 1. Анализ распределения дистрофина в скелетной мышце человека
      • 3. 2. 2. Экспрессия аденилатциклазы в скелетной мускулатуре
    • 3. 3. Ультраструктурное исследование скелетной мышцы человека
    • 3. 4. Обсуждение

Актуальность темы

Одной из наиболее сложных в теоретической и практической невропатологии является проблема наследственных нервно-мышечных заболеваний. Относительно высокая частота этих заболеваний, тяжелая инвалидизация при большинстве из них, поражение в детском или цветущем возрасте делают их весьма актуальными (Гехт Б.М. и Ильина H.A., 1982; Bethlem J., Knobbout С., 1987; Dubowitz V., 1991; McMillan J., Harper P., 1994).

Нервно-мышечная патология полиморфна по своим проявлениям, в связи с этим возникают трудности в распознавании наследственных форм нервно-мышечных болезней и их дифференциальной диагностики. (Goebel Н., Halbig L., 1990; Emery А., 1991; Waclawik А., 1993; Лобзин B.C. и др., 1998; Темин П. А., Никанорова М. Ю., 1998). Большое значение для диагностики наследственных нервно-мышечных заболеваний имеют патоморфологические исследования мышечной ткани. Как правило, различные нервно-мышечные болезни характеризуются индивидуальной патоморфологической картиной, хотя отдельные признаки в различных сочетаниях и с разной степенью выраженности могут проявляться при различных заболеваниях (Rice С. et al, 1988; Bushby К., 1994; Noguchi S. et al., 1995; Anderson L. et al., 1996).

Большое значение в выяснении патогенеза и диагностики болезней имеют ультраструктурные исследования. Описаны характерные изменения ультраструктуры мышечных волокон при ряде нервно-мышечных заболеваний (Engel F., Lambert Е., 1977; Watkins S. et al., 1988; Samitt С., Bonilla E., 1990; Tritschler H. et al., 1992; Ozawa E. et al., 1995), вместе с тем многие положения остаются маловыясненными или противоречивыми. В настоящее время в анализе нервно-мышечной патологии преобладают исследования, направленные на выяснения распределения белков цитоскелета и основных внутриклеточных сигнальных путей (Ткачук В.А. и др., 1976; Ervasti J. et al. 1990; Matsumura К., Campbell К., 1994; Lim L. et al., 1995; Worton R., 1995; Brown R., DPhil J., 1997). Среди многих регуляторных систем мышечного волокна особое значение имеет дистрофии — ассоциирующий белковый комплекс и аденилатциклазная система.

Применение морфологических методов исследований биопсийного материала скелетных мышц у больных с нервно-мышечной патологией позволяет провести дифференциальный диагноз между отдельными формами прогрессирующих мышечных дистрофий и денервационных амиотрофий, а также диагностировать отдельные формы структурных миопатий.

Для установления точного диагноза, выработки методов лечения и профилактики необходимо понять молекулярные механизмы возникновения нервно-мышечных заболеваний. В связи с этим значительный интерес представляет изучение экспрессии некоторых белков и компонентов сигнальных путей в скелетной мышце человека, дефект которых может привести к патологии.

Цель и задачи исследования

Выяснить общие закономерности структурной перестройки скелетной мышцы человека при некоторых видах мышечной патологии.

В задачи исследования входило:

1. Получение и цитохимический анализ первичных культур миобластов человека.

2. Иммуногистохимический анализ распределения белка дистрофина и экспрессии аденилатциклазы в скелетной мышце человека.

3. Электроно-микроскопическое исследование биопсийного материала скелетной мышцы человека при некоторых видах мышечной патологии.

Научная новизна работы. В результате выполненных исследований были получены следующие основные новые данные:

— установлено, что цитохимический анализ на легкую цепь миозина и щелочную фосфатазу позволяет дифференцировать миобласты от фибробластов в культуре клетокна стадии миотубул реакция на щелочную фосфатазу резко снижается;

— с помощью оригинальных антител показана субсарколеммальная локализации белка дистрофина в мышечных волокнах человека;

— установлено, что в скелетных мышцах человека и белой крысы определяется высокий уровень экспрессии 9-ой изоформы аденилатциклазыфермент отсутствует в пресинаптических окончаниях двигательных пластинок нервно-мышечных соединений;

— установлено, что различные нервно-мышечные болезни характеризуются индивидуальной патоморфологической картиной на ультраструктурном уровне, определяющейся ведущим проявлением патологии: изменением митохондрий, перестройкой миофибриллярного аппарата, накоплением продуктов нарушенного метаболизма или сарколеммальной организации;

— к общим проявлениям ультраструктурных нарушений при миопатиях можно отнести изменения сарколеммы мышечных волокон в виде ее «отслоения» с формированиям аркадных структур, накопление или исчезновение гликогена с одновременным изменением содержания липидных капель, расширение канальцев саркоплазматического ретикулума, умеренная дезорганизация миофибриллярного аппарата.

Научно-практическая значимость работы. Полученные в работе данные о структурных изменениях в скелетной мышце человека при некоторых видах нервно-мышечной заболеваний имеют большое значение для проведения дифференциального диагноза между отдельными формами мышечной патологии. Для понимания молекулярных механизмов возникновения нервно-мышечных заболеваний практическую ценность имеют иммуногистохимические методы исследования, с помощью которых можно провести анализ белков, дефекты которых являются причиной той или иной патологии.

Результаты исследований могут быть использованы в неврологической практике с целью уточнения диагноза, определения методов лечения и профилактики новых случаев установленного заболевания в семье.

Полученные данные могут также быть использованы в учебных курсах по гистологии и невропатологии.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. В первичных культурах клеток, полученной из скелетной мышцы человека, миобласты характеризуются положительной иммунореакцией на легкую цепь миозина и высокой активностью щелочной фосфатазы.

2. В скелетных мышцах человека и крысы определяется высокий уровень экспрессии 9-ой изоформы аденилатциклазы, фермент отсутствует в терминальных отделах аксонов, образующих двигательные пластинки.

3. Ультраструктура скелетной мышцы человека при некоторых видах мышечной патологии имеет как характерные изменения, соответствующие определенным нозологическим формам, так и ряд общих неспецифических проявлений.

Апробация работы. Материалы работы докладывались на межлабораторных научных семинарах в Медико-генетическом научном центре РАМН (г. Москва, 1996;1998), на Огаревских чтениях 7.

Мордовского госуниверситета им. Н. П. Огарева (г. Саранск, 1998;1999), конференции молодых ученных Мордовского госуниверситета им. Н. П. Огарева (г. Саранск, 1999), на 12-ых научных чтениях памяти академика H.H. Бурденко (г. Пенза, 2000).

Публикации. Основные результаты диссертации изложены в 11 печатных работах, опубликованных в научных журналах, сборниках трудов всероссийских и региональных съездов и конференций.

Структура и объем диссертации

.

ВЫВОДЫ.

1. Получены достаточно стабильные клеточные линии миобластов из образцов мышечной ткани человека. Исследование иммуногистохи-мическим методом с антителами к легкой цепи миозина показало, что часть клеток давала положительную реакцию и отличалась высокой активностью щелочной фосфатазы. При длительном культивировании (16 суток) устойчивые культуры были способны образовывать многоядерные структуры (от 2 до 15 ядер) — миотубулы. Эти многоядерные мышечные волокна отличались иммунореакцией на легкую цепь миозина и низкой активностью щелочной фосфатазы.

2. 9-ая изоформа аденилатциклазы и кальцинейрин интенсивно экспрессируются в скелетных мышцах человека и белой крысы. Продукт реакции на 9-ую изоформу аденилатциклазы преимущественно локализовался в сарколемме и внутриклеточных мембранах саркоплазматиче-ской сети, а так же ядерной оболочки.

3. Терминальные пресинаптические отделы аксонов в нервно-мышечных двигательных пластинках не содержат 9-ую изоформу аденилатциклазы, но экспрессируют кальцинейрин.

4. Ультраструктурное исследование биопсийного материала скелетной мышцы человека, при некоторых видах нервно-мышечной патологии показало, наличие как типичных изменений, характерных для определенных нозологических форм — перестройка митохондрий, аномалии саркоплазматических мембран, в том числе и сарколеммы, нарушения регулярного расположения миофибрилл и миофиламентов, так и общих нарушений ультраструктуры, в виде расширения канальцев сар-коплазматической сети, скопления митохондрий в периферических отделах мышечных волокон, изменений в содержании гранул гликогена и.

115 липидов, умеренные нарушения в структуре миофибриллярного аппарата.

5. Наиболее общими нарушениями при всех изученных формах нервно-мышечной патологии следует признать нарушения субсарко-леммальных компонентов цитоскелета, ответственных за правильную упаковку миофиламентов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Исследования в области нервно-мышечной патологии представляют актуальную проблему современной нейрогистологии и нейробио-логии. Наследственные нервно-мышечные заболевания являются наиболее многочисленной группой среди всех заболеваний нервной системы. К ним относятся различные виды миопатий, невральные и спинальные амиотрофии, миастения, миотония и периодический паралич. Нервно-мышечные заболевания — это особая группа болезней, которая характеризуется чрезвычайным разнообразием нозологических форм, выраженной генетической гетерогенностью и клиническим полиморфизмом, что затрудняет диагностику и медико-генетическое консультирование. Наследственные нервно-мышечные заболевания являются одной из частых причин детской инвалидности, порождая целый комплекс медицинских и социальных проблем. За последние десятилетие достигнут, значительный прогресс в изучении нервно-мышечных заболеваний, тем не менее, проблема патогенеза, диагностики методов лечения и профилактики мышечной патологии остается актуальной.

Познание патогенеза и патоморфоза мышечных заболеваний невозможно без выяснения молекулярных механизмов, лежащих в основе как деятельности собственно мышечного волокна, так и в обеспечении скоординированной взаимозависимой организации нервно-мышечного соединения. Прогресс в изучении рецепторного аппарата и внутриклеточных сигнальных путей, инициирующихся различными рецепторами и связанными с ними ферментными системами вторичных посредников, позволяет значительно расширить представления о нормальной работе мышцы и ее изменениях при различной патологии.

В результате исследования биопсийного материала скелетной мускулатуры человека были выяснены общие закономерности структурной перестройки скелетной мышцы при некоторых видах мышечной патологии.

С помощью электронно-микроскопического исследования био-псийного материала скелетной мышцы человека было показано, что различные нервно-мышечные болезни характеризуются индивидуальной патоморфологической картиной на ультраструктурном уровне. К таким заболеваниям относятся митохондриальная миопатия и прогессирующие мышечные дистрофии Дюшенна и Беккера.

Митохондриальная миопатия проявлялась изменением митохондрий. Они имели большие размеры и неправильную организацию внутренней мембраны. В органеллах обнаруживалось появление крупных цитоплазматических осмиофильных влючений, в которых находились липидные массы и вакуоли с электронно-прозрачным содержимым.

При ультраструктурном исследовании биоптата скелетной мышцы больных миодистрофиями Дюшенна и Беккера наблюдалось, прежде всего, изменение сарколлемы мышечного волокна в виде ее «отслоения» с формированием аркадных структур. Такие изменения сарколлемы связаны с нарушением структуры белка дистрофина, который отвечает за стабилизацию мембраны мышечной клетки. Иммуногистохимически с помощью оригинальных антител нами было показана субсарколлемаль-ная локализация дистрофина.

При других изученных нозологических формах мышечной патологии характерные изменения мышечных волокон в изученном материале не были установлены. Описанные выше при дистрофии Дюшенна и Беккера нарушения изредка встречались.

Для них были характерны общие нарушения ультраструктуры в виде расширения канальцев саркоплазматической сети, скопления митохондрий в периферических отделах мышечных волокон, изменений в.

113 содержании гранул гликогена и липидов, умеренные нарушения в структуре миофибриллярного аппарата.

При исследовании биопсийного материала скелетных мышц больных кардиомиопатиями, выраженных нарушений мышечных волокон не обнаружено.

Ультраструктурное и иммуногистохимическое исследование биопсийного материала скелетных мышц больных расширяет представления о молекулярных механизмах мышечной патологии. Они могут быть использованы для изучения патогенеза, дифференциальной диагностики и выработки методов лечения нервно-мышечных заболеваний.

Одним из перспективных методов терапии мышечной патологии, которая проявляется в выраженных дегенеративных изменениях мышечных волокон, может являться использование трасплантации миобла-стов. В условиях эксперимента и клиники было показано, что клеточная терапия может быть успешно использована при миодистрофии Дюшенна и Беккера — трансплантированные клетки способны in vivo сливаться с патологически измененными мышечными волокнами и приводить к их регенерации с образованием нормальных мышечных волокон. (Law Р. et al., 1993, 1994).

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.В. Нейротрофический контроль и гуморальная регуляция пластичности скелетной мышцы. Автореф. дисс. док. биол. наук. Саранск. 1996. 46 с.
  2. Ю.Е. и Темин П.А. Митохондриальные болезни. // В кн.: Наследственные болезни нервной системы. М.: Медицина. 1998. С. 346−472.
  3. Е.М. и Полетаев Г.И. Нейротрофический контроль функциональных свойств поверхностной мембраны мышечного волокна. // В кн.: Механизмы нейрональной регуляции мышечной функции. Л.: Наука. 1988.1. С. 5−26.
  4. .М. Роль нарушений нервной трофики в механизмах формирования нервно-мышечных заболеваний. // В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации скелетных мышц. Л.: Наука. 1980.1. С. 119−141.
  5. .М., Ильина И. А. Нервно-мышечные болезни. // М.: Медицина. 1982. 352 с.
  6. С. Биология развития. // М.: Мир. 1993. Т. 1. 228 с.
  7. Р. Основы регуляции движения. // М.: Мир. 1973. 330 с.
  8. Л.П. и Агафонов Б.В. Миопатии. //М.: Медицина. 1997.216 с.
  9. B.C., Левик Ю. С. Скелетная мышца: структура и функция. // М.: Наука. 1985. 132 с.
  10. Р.К. Гистогенетические основы нервно-мышечных взаимоотношений. //СПб. 1996.
  11. Р.К., Одинцова И. А., Найденова Ю. Г. Регенерация скелетной мышечной ткани после огнестрельного повреждения. // Морфология. 1996. Т. 110. № 5. С. 86−90.
  12. . Основы эмбриологии по Пэттену. // М.: Мир. 1983. Т.1. 355 с.
  13. JI.JI., Никитюк Б. А., Этинген Л. Э. Движение, ты прекрасно! //Москва, 1993. 183 с.
  14. B.C., Сайкова Л. А., Шиман А. Г. Нервно-мышечные болезни. // С-П.: «Гиппократ». 1998. 224 с.
  15. Лойд 3., Госсрау Р., Шиблер Т. Гистохимия ферментов. // Лабораторные методы. М. 1982.
  16. Л.Ф., Резвяков Н. П., Экстрафузальные мышечные волокна, их типы и биологическая характеристика. // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1978. № 11. С. 23−40.
  17. К.С., Секамова С. Н., Соколова H.A. Ультраструктура скелетных мышц человека. // Арх. анатомии, гистологии и эмбриологии. 1973. Т.64. № 2. С.13−19.
  18. Г. А. Нейротрофический контроль функционирования электромеханической связи в скелетных мышечных волокнах. // В кн.: Механизмы нейрональной регуляции мышечной функции. Л.: Наука. 1988.1. С. 42−52.
  19. В.А., Слюсарь H.H., Шинкаренко Т. Б. Содержание фосфои-нозитидов в биологических мышечных волокон различных типов. // Морфология. 1998. Т.114. № 4. С. 69−72.
  20. О.С. Поражение сердца при наследственных нервно-мышечных заболеваниях. // В кн.: Актуальные вопросы кардиологии детского возраста. М.: ОА «Астра 7». 1997. С. 83 — 96.
  21. А.Н. Механизм сокращения мышц. // М.: Наука. 1979. 320 с.
  22. П.А., Белозеров М. Ю., Никанорова М. Ю., Страхова О. С. Псевдогипертрофическая прогрессирующая мышечная дистрофия Дюшенна. // Росс. вест, перинатологии и педиатрии. 1997. № 1. С. 45−53.
  23. П.А., Белозеров М. Ю., Никанорова М. Ю., Страхова О. С. Псевдогипертрофическая прогрессирующая мышечная дистрофия Беккера. // Росс. вест, перинатологии и педиатрии. 1997. № 5. С.27−32.
  24. П.А., Никанорова М. Ю. Наследственные болезни нервно-мышечой системы. // В кн.: Наследственные болезни нервной системы. М.: Ме-цина. 1998. С. 192−346.
  25. С.М., Гринберг К. Н., Черников В. Г. и др. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1984. № 12. С. 710−712.
  26. В.А., и др. // Биохимия. 1976.
  27. Тур А. Ф. Пропедевтика детских болезней. // Л.: Медицина. 1967. 137 с.
  28. Э.Г. и Резвяков Н.П. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон. //В кн.: Нервный контроль структурно-функциональной организации скелетных мышц. Л.: Наука. 1980. С. 84−104.
  29. X. Иммунологические методы. // М.: Мир. 1986. 237 с.
  30. А. Цитоскелет. Архитектура и хореография клетки. // М.: Мир. 1987.234 с.
  31. Ю.А. и Одинцова H.A. Соединительнотканные структуры скелетной мышцы человека и их значение в биомеханике этого органа. // Арх. анатомии. 1988. Т. 95., вып. 12. С. 41−48.
  32. Ю.А. и Одинцова H.A. Структурно-функциональная организация цитоскелета мионов и соединительнотканного каркаса поперечнополосатой мышцы человека. // Морфология. 1992. Т.102. № 4. С. 82−95.
  33. Л.А. Структура и белковый состав Z-линий. // В кн: Структура и функция белков сократительных систем. Л.: Наука. 1987. С. 132−147.
  34. С.С. Наследственные нервно-мышечные болезни. // М. 1997. 130 с.
  35. Н.В. Сравнительная характеристика гистогенеза скелетной и сердечной мышечной тканей // В кн.: Межтканевые взаимодействия в процессах развития и восстановления. Труды Куйбышевского мед. ин-та. Куйбышев. 1973. С. 59−66.
  36. Anderson M.S., Kunkel L.N. The molecular and biochemical basis of Duchenne muscular dustrophy. // Trends Biochem.Sci. 1997. V. 17. P. 289−292.
  37. Antoni F.A., Simpson J., Paterson J.M., Sosunov A.A. Adenylyl cyclase IX (AC9): a major Ca2+/ calcineurin inhibited cAMP-generating enzyme in thebrain. Immunophilins in the brain. // Sci. Symp. Kiel. 1999. P. 2.
  38. Arahata K., Hoffman E.O., Kunkel L.M. et al. Dystrophin diagnosis. Comparison of dystrormalities by immunofluorescence and immunoblot analyses. // Proc. Natl. Acad. USA. 1989. V. 86. P. 7154−7158.
  39. Asmussen G., Marechal G. Maximal shortening velocities isomyosins and fibre types in soleus muscle of mice, rats and guineapigs. // J. Physiol. 1989. V. 416. P. 245−254.
  40. Beggs A.H., Hoffman E.P., Kunkel L.M. Additional dystrophin fragment in Becker muscular dystrophy may result from proteolytic cleavage at deletion junctions.// Am.J.Med.Genet. 1992. V. 44.P. 378−381.
  41. Ben Hamida M., Fardeau M., Attia N. Severe childhood muscular dystrophy affecting both sexes and frequent in Tunisia. // Muscle Nerve. 1980. V. 6.1. P. 469−480.
  42. Bergoffen J.A., Trofatter J., Pericak-Vance M.A. et al. Linkage localization of X-linked Charcot- Maria-Tooth disease. // Amer. J. Hum. Genet. 1993. V. 52. N4. P. 312−318.
  43. Bethlem J., Knobbout C. Neuromuscular diseases. // Oxford New York — To kyo. 1987.
  44. BonillaE., Samitt C.E., Miranda A.F., Hays A.P., Salviati G., DiMauro S., Kunkel L.M. et al. Duchenne muscular dystrophy: deficiency of dystrophin at the muscle cell surface. //Cell. 1988. V. 54. P. 447−452.
  45. Boyd Y., Buckle V J. Cytogenetic heterogeneity of translocations associated with Duchenne muscular dystrophy. // Clin.Genet. 1986. V. 29. P. 108−115.
  46. Bretsher A., Vanderkerchow S. and Weber K. Actinis from chicken skeletal muscle and immunological differable. // J. Biochem. 1979. V. 100. P. 237−243.
  47. Broke M. H., Kaiser K.K. Muscle fiber types- how many and what kind? // Arch Neurol. 1970. V. 23. N 4. P. 369−379.
  48. Brown R.H., DPhil J. Dystrophin-associated proteins and the muscular dystrophies. // Annu. Rev.Med. 1997. V. 48. P. 457−466.
  49. Bulman D.E., Murphy E.G., Zubrzycka-Gaarn E.E., Worton R.G., Ray P.N. Differentiation of Duchenne and Becker muscular dystrophy phenotypes with amino- and carboxy-terminal antisera specific for dystrophy. // Am. J. Hum. Genet. 1991. V. 48. P. 295−304.
  50. Burghes A.H.M., Logan C., Hu X., Belfall B., Worton R., Ray P.N. Isolation of a cDNA clone from the region of an X:21 translocation that breaks within the Duchenne/Becker muscular dystrophy gene. // Nature. 1987. V. 328.1. P. 434−436.
  51. Burmeister M., Lehrach H. Long-range restriction map around the Duchenne muscular dystrophy gene. // Nature. 1986. V. 324. P. 582−585.
  52. Bushby K.M.D. Limb-girdle muscular dystrophy. In diagnostic criteria for neuromuscular disorders. A.E.H.Emery, ed. (Baarn, The Netherlands: ENMC). 1994. P. 25−31.
  53. Byers T.J., Husain C.A., Dubreuil R.R., Branton D., Goldstein L.S. Sequence similarity of the amino-terminal domain of Drosophila beta spectrin to alpha actinin and dystrophin. //J.Cell Biol. 1989. V.109. P.1633−1641.
  54. Byers T.J., Kunkel L.M., Watkins S.C. The subsellular distribution of dystrophin in mouse skeletal, cardiac, and smooth muscle. // J. Cell Biol. 1991.1. V. 115. P. 411−421.
  55. Campbell K.P., Kahl S.D. Association of dystrophin and integral membrane glycoprotein. //Nature. 1989. V. 338. P. 259−262.
  56. Carpenter S., Karpati G., Zubrzycka-Gaarn E., Bulman D.E., Hay P.N., Worton R.G. Dystrophin is localised to the plasma membrane of human skeletal muscle fibers by electron-microscopic cytochemical study. // Muscle Nerve. 1990. V. 13. P. 376−380.
  57. Chen Xiufang, Zhang Shenggen, Ren Huimin, Acta. zool. sin. 1989. V.35. N 1.1. P.23−27.
  58. Close R.I. Dynamic properties of mammalian skeletal muscles. // Physiol. Rev. 1972. V. 52. P. 129−197.
  59. Corrado K., Mills P.L., Chamberlain J.S. Deletion analysis of the dystrophin-actin binding domain. // FEBS Lett. 1994. V. 344. P.255−260.
  60. Counter S.A., Helstrand E., Borg E. A histochemical characterization of muscle fiber types in the avian m. Stapedius. // Comp. Biochem. and Physiol. 1987. V. A86. N1.P. 185−187.
  61. Cross R.A., Stewart M., Kendrich-Jones J. Structural predictions for the central rod domain od dystrophin. // FEBS Lett. 1990. V. 262. P. 87−92.
  62. David J.D., See W.M. Fusion of chink embryo skeletal myoblasts: Role of calcium influx preseding membrane union. // Dev. Biol. 1981. V. 82. P. 297−307.
  63. Davis H., Bressler B.H., Jasch I.G. Myotrophic effect on denervated fast-twitch muscles of mise correlation of physiologic biochemical and morphologic findings. // Exp. Neurol. 1988. V. 99. N 2. P. 474−489.
  64. Dimario J.X., Fernyak S.E., Stockdale F.E. Myoblast transferred to the limbs of embryos to are committed to specific fibre fates. // Nature. 1993. V. 362. P. 165−167.
  65. Di Mauro S., Bonilla E., Zeviani M. et al. Mitochondrial encephalomyopaties. //Arch. Neurol. 1993. V. 50. P. 1197−1208.
  66. Di Mauro S., Lombes A., Nakase H. et al. Cytochrome C oxidase deficiency. // Ped. Res. 1990. V. 28. P. 536−541.
  67. Dubowitz V. and Pears A.C.E. Reciprocal relationship of phosphorylase and oxidative enzyme in skeletal muscle. //Nature. 1985. V. 185. P. 701−702.
  68. Dubowitz V. Meuromuscular disorders: gene location // J. Neuromusc. Disord. 1991. V.I.H.I.P. 75 -76.
  69. Edman K.A.P., Reggianic C., Schiaffino S., Kronnie G. Maximum velocity of shortening retated to myosin isoform composition in frog skeleal myosin muscle fibers. // J. Physiol. (Gr. Brit.). 1988. V. 395. P. 679−694.
  70. Emery A. Population frequencies of inherited neuromuscular diseases // J. Neu romusc. Disord. 1991. V. 1. N 1. P. 19−29.
  71. Emery A.E.H. Population frequencies of inherited neuromuscular diseases: a world survey. //Neuromusc.Disord. 1991. V. 1. P. 19−29.
  72. Emery A.E.H. Duchenne muscular dystrophy. 2nd.Ed.Oxford University Press, Oxford. 1993.
  73. Engel A. G., Lambert E.H., Mulder D. M. et. al. A new myasthenic syndrome with end-plate acetylcholinesterase deficiency, small nerve terminals, and reduced acetylcholine release. // Ann Neurol. 1977. V.l. P. 315−320.
  74. Ervasti J.M., Campbell K.P. Dystrophin and the membrane skeleton. // Curr. Opin. Cell Biol. 1993. V. 5. P. 82−87.
  75. Ervasti J.M., Ohlendieck K., Kahl S.D., Gaver M.G., Campbell K.P. Deficiency of a glycoprotein component of the dystrophin complex in dystrophic muscle. //Nature. 1990. V. 345. P. 315−319.
  76. Engel A., Lambert E., Gomez M.: A new myasthenic syndrome with end-plate acetylcholinesterase deficiency, small nerve terminals, and reduced acetylcho line release. //Ann Neurol. 1977. V. 1. P. 315−322.
  77. Eto K., Watanabe T., Ida M. et al. An adult case of congenital myopathy- co existence of nemaline rods and core-like-structures. // Rinsho-Shinkeigaku. 1994. V. 34. N1.P. 43−47.
  78. Fassati A., Murphy S., Dickson G. Gene therapy of Duchenne muscular dustro-phy. // Adv. in Genet. 1997. V. 35. P. 117−153.
  79. Franco A., Lansman J.B. Calcium entry through stretch-inactivated ion channels in mdx myotubes. // Nature. 1990. V. 344. P. 670−673.
  80. Galjaard H. Biochemical diagnosis of genetic disease. II Experientia. 1986. V. 42. P.1075−1085.
  81. Gauthier G. F. On the relationship of ultrastructural and cytochemi cal features to color in mammalian skeletal muscle. // Z. Zellfosch. 1969. V. 95. N 3.1. P. 468−482.
  82. Goebel H., Halbig L. Congenital «non-progressive» myopathies classifica tion and morpholofic characteristics // J. Neurol. Sci. 1990. Sept. V. 98. (Suppl.). P. 99.
  83. Gorza L.identification of a novel type 2 fiber population in mammalian ske-tal muscle by combined use of histochemical myosin AT
  84. Grimm T. Genetic counselling in Becker X- linked muscular dystrophy. Theo retical considerations. // Am. J Med Genet. 1984. N 18. P. 713.
  85. Hammond R.G.J. Protein sequence of DMD gene is related to actin-binding domain of-actinin. // Cell. 1987. V. 51. P. 1.
  86. Heinicke E., Davis H. Effect of denervation and injected nerve extract an solu ble proteins of extenson digitorum longus muscles of rat. // Exp. Neurol. 1987. V. 97. N 3. P. 454−464.
  87. Hoffman E.P. Human molecular genetics and the elucidation of the primary biochemical defect Duchenne muscular dystrophy. // Cell Motil. and Cytoske-letion. 1989. V. 14. N 1. P.163−168.
  88. Hoffman E.P., Beggs A.H., Kunkel L.M., Angelini C. Cross- reactive protein in Duchenne muscle. // Lancet. 1989. N 8673. P. 1211−1212. A
  89. Hoffman E.P., Knudson C.M., Campbell K.P., Kunkel L.M. Subcellular fractionation of dystrophin to the triads of skeletal muscle. // Nature. 1987. V. 330. P. 754−757.
  90. Hoffman E.P., Kunkel L.M. Dystrophin abnormalities in Duchenne/Becker muscular dystrophy. // Neuron. 1989. V. 2. P. 1019−1029.
  91. Hoffman E.P., Kunkel L.M., Angelini C., Clarke A., Johnson M., Harris J.B. Improved diagnosis of Becker muscular dystrophy via dystrophin testing. // Neurology. 1989. V. 39. P. 1011−1017. E
  92. Hoffman W.W. Neurotrophism another approach. // Clin. Aspect Sens. Motor Intergration. Berlin e.a. 1987. P. l 19−134.
  93. Hudlicka O. Resting and post contraction blood flow in slow and fast muscles of the chick during development. // Microvasc. Res. 1969. V. 1. N 4.1. P. 390−402.
  94. Hugh G. and Hoh J.F.Y. Immunocytochemical analysis of myosin isoenzymes in denervated rat fast and slow muscles. // Proc. Austral. Physiol, and Pharmacol. Soc. 1987. V. 18. N 1. P. 45.
  95. IkeyaK., Saito K., Tanaka H., Hagiwara Y., Goshida M. et al. Molecular genetic and immunological analysis of dystrophin of a young patient with X-lin-ked muscular dystrophy. // Am. J. of Med. Gen. 1992. V. 43. P. 580−587.
  96. Jukubiec-Puka, Kordovska I., Catani C., Curraro U. Miosin heavy chain inso-form composition in striated muscle after denervation and self-reinnervation. // Eur. J. Biochem. 1990. V. 193. N 3. P. 623−628.
  97. Kalderon N., Gilula N.B. Membranae event involved in myoblast fusion. // J. Cell Biol. 1979. V. 81. P. 411−425.
  98. Kaufman S J., Foster R.F. Remodeling of the myoblast membrane accompanies development. // Dev. Biol. 1985. V. 110. P. 1−14.
  99. Kelso T.B., Hodgson D.R., Vissher A.R., Gollnick P.D. Some properties of different skeletal muscle fiber type: comparison of reference bases. // J. Appl. Physiol. 1987. V. 62. N 4. P. 1436.
  100. Khurana T., Hoffman E., Kunkel L. Identification of a chromosome 6-encod-ed dystrophin-related protein. // J.Biol.Chem. 1990. V. 265. P. 16 717−16 720.
  101. Kingston H.M., Harper P. S., Pearson P.L., Davies K.E., Williamson R., Page D. Localization of the gene for Becker muscular dystrophy. // Lancet.1983. V. l.P. 1200.
  102. Knudsen K.A. The calcium-dependent myoblast adhesion that precedes cell fusion is mediated by glicoproteins. // J. Cell Biol. 1985. V. 101. P. 891−897.
  103. Knudson C.M., Hoffmen E.P., Kahl S.D., Kunkel L.M., Campbell K.P. Characterization of the dystrophin in skeletal muscle triads. // J.Biol.Chem. 1988.
  104. Koenig M., Kunkel L.M. Detailed analysis of the repeat domain of dystrophin reveals four potential hinge segments that may confer flexibility. // J.Biol. Chem. 1990. V. 265. P. 4560−4566.
  105. Koenig M., Monaco A.P., Kunkel L.M. The complete sequence of dystrophin predict a rod-shaped cytoskeletal protein. // Cell. 1988. V. 53.1. P. 219−228.
  106. Krenacs T., Molnar E., Dobo E., Dux L. Fiber typing using sarcoplasmic reticulum Ca-ATO-ase and myoglobin immunohistochemistry in rat gastrocne-mus muscle. // Histochem. J. 1989. V. 21. N 3. P. 145−155.
  107. Kunkel L.M., Beggs A.H., Hoffman E.P. Molecular genetics of Duchenne and Becker muscular dystrophy: emphasis on improved diagnosis. // Clin. Chem. 1989. V. 35. N 7. P. 821−824.
  108. Lannergren J. Relation between myosin isoenzymes and contractile properties in skeletal muscle fibers. // Acta physiol. scand. 1985. V. 124. Suppl. 1.1. N 542. P. 207.
  109. Law P.K. Myoblast transfer: Gene Therapy for Muscula Dystrophy. // CRC Press. 1994. P. 164.
  110. Law P.K., Goodwin T.G., Frang Q. et al. Cell Transplantation. 1993. V. 2. P. 485−505.
  111. Levine B.A., Moir A.J.G., Patchell V.B., Perry S.V. The interaction of actin with dystrophin. // FEBS Lett. 1990. V. 263. P. 159−162.
  112. Lidov H.G.W., Byers T.J., Kunkel L.M. The distribution of dystrophin in the murine central nervous system: An immunocytochemical study. // Neuroscience. 1993. V. 54. P. 167−187.
  113. Lim L., Ducios F., Brous O. et al. Beta-sarcoglycan: characterization and role in limb-girdle muscular dystrophy linked to 4ql2. // Nature Genet. 1995.1. V. 11. P. 257−265.
  114. Love D.R., Davies K.E. Duchenne muscular dystrophy: the gene and the protein. // Mol. Biol, and Med. 1989. V. 6. N 1. P. 7−17.
  115. Love D.R., Hill D.F., Dickson G., Spurr N.K., Byth B.C., Marsden R.F., Walsh F.S., Edwards Y.H., Davies K.E. An autosomal transcript in skeletal muscle with homology to dystrophin. // Nature. 1989. V. 339. P. 55−58.
  116. Maeda M. et al. Cardiac dystrophin abnormalities in Becker muscular dystrophy assessed by endomyocardial biopsy. // American-Heart-Journal. 1995. V. 129/4. P. 702−707.
  117. Maruyama K., Muzukami F. and Ohashi K. Connectin and elastic protein of muscle. // J. Biochem. 1977. V. 82. P. 339−345.
  118. Maruyama K., Natori R. and Nonomura Y. New elastic protein from muscle. // Nature. 1976. V. 262. P. 58−60.
  119. Matsumura K., Campbell K.P. Dystrophin-glycoprotein complex: its role in the molecular pathogenesis of muscular dystrophies. // Muscle Nerve. 1994. V. 17. P. 2−15.
  120. McMillan J.C., Harper P. S. Clinical genetic in neurological disease. // J. Neurol. Neurosung. Psychiatr. 1994. V. 57. N 1. P. 7−15.
  121. Menke A., Jockusch H. Decreased osmotic stability of dystrophin-less muscle cells from the mdx mouse. // Nature. 1991. V. 349. P. 69−71.
  122. Meola G., Velicogna M., Brigato C., Pizsul S., Rotondo G., Scarlato G. Growth and differentiation of myogenic clones from adult human muscle cell cultures. // Europ. J. Basic Appl. Histochem. 1991. V. 35. N 3. P. 219−231.
  123. Mokri B., Engel A. Duchene dystrophy: Electron microscopic findings pointing to basic or early abnormality in the plasma membrane of the muscle fiber.
  124. Neurology. 1975. V. 25. P. 1111−1118.
  125. Monaco A.P., Kunkel L.M. A giant locus for the Duchenne and Becker muscular dystrophy gene. // TIG. 1987. V. 3. P. 33−37.
  126. Nammerof M. and Munar E. Inhibition of celluar differentiation by phospho-lipase C. II11 Separation of fusion and recognition among myogeniccel. Dev. Biol. 1976. V. 49. P. 410−418.
  127. Noguchi S., McNally E., Othmane K. et al. Mutations in the dystrophin-associated protein gamma-sarcoglycan in chromosome 13 muscular dystrophy. // Science. 1995. V. 270. P. 819−822.
  128. Ohlendieck K., Ervasti J.M., Snook J.B., Campbell K.P. Dystrophin-glyco-protein complex is highly enriched in isolated skeletal muscle sarcolemma. // J. Cell Biol. 1991. V. 112. P. 135−148.
  129. Ohlendieck K., Campbell K.P. Dystrophin constitutes 5% membrane cyto-skeleton in skeletal muscle. // FEBS Lett. 1991. V. 283. P. 230−234.
  130. Ozawa E., Yoshida M., Suzuki A. et al. Dystrophin-associated proteins in muscular dystrophy. //Hum.Mol.Genet. 1995. V. 4. P. 1711−1716.
  131. C., Montarras D. // Cell Biologi. A laboratory Handbook. V. 1. Lond. 1994. P. 199−206.
  132. Pinsent C., Mulle C., Benoit P. et al. // EMBO J. 1991. V. 10. P. 2411−2418.
  133. Petrof B.J., Shrager J.B., Stedman H.H., Kelly A.M., Sweeney H.L. Dystrophin protects the sarcolemma from stresses developed during muscle contraction. //Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1993. V. 90. P. 3710−3714.
  134. Porter C.A., Dmytrenko G.M., Winkelmann J.C., Block R.J. Dystrophin colo-calized with -spectrin in distinct subsarcolemmal domains in mammalian skeletal muscle. // J. Cell Biol. 1992. V. 117. P. 997−1005.
  135. Pickard N.A. et al. Systematic membrane defect in the proximal musculardystrophies. // N. Engl. J. Med. 1978. N 1. P. 284−299.
  136. Parano E. A clinical study of childhood spinal muscular atrophy in Sicily: a re view of 75 case. // Brain and Development. 1994. V. 16. N 2. P. 96−103.
  137. Reiser P.J., Greaser M.L., Moss R.L. Myosin heavy chain composition of single cells from avian slow skeletal muscle is strongly correlated with velocity of shortening during development. // Dev. Biol. 1988, V. 129. N 2.1. P. 400−407.
  138. Rice C.L., Cunnigham D.A., Taylor A.W., Paterson D.H. Comparison of the histochemical and contractile properties of human triceps surae. // Europ. J. Appl. Physiol, and Occup. Physiol. 1988. V. 58. N 1−2. P. 165−170.
  139. Roberts R.G. Dystrophin, its gene and dystrophinopathies. // Adv.Genet. 1995. V. 33. P. 177−231.
  140. Samitt C.E. and Bonilla E. Immunocytochemical study of dystrophin at the myotendinous junction. //Muscle Nerve. 1990. V. 13. P. 493−500.
  141. H. «Rote» muskelfasern. // Z. Zellforsgh. 1971. V. 119. P. 120−146.
  142. Staron R.S., Retter D. Correlation between myofibrillar ATP-ase activity and myosin heavy chain composition in rabbit muscle fibers. // Histochemistry. 1986. V. 86. N1. P. 19−23.
  143. Sugita H., Arahata K., Koizumi H., Tsukahara T. and Ishiura S. Immunohisto chemical study of dystrophin in Duchenne muscular dystrophy. // J. Pharmacobio- Dyn. 1989. V. 12. P. 5−96.
  144. Sunada Y., Campbell K. Dystrophin-glycopritein complex: molecular organization and critical roles in skeletal muscle.//Cur.Opin.Neurol. 1995. V.8. P. 379−384.
  145. Talesara C.L., Jasra Pardeep K. Differential response of slow and fast twitch fibers to denervation in young and adult rat EDL muscles. // Indian. J. Exp. Biol. 1985. V. 23. N 5. P. 247−252.
  146. Tritschler HJ., Andreetta F., Moraes C.T. et al.: Mitochondrial myopathy ot childhood associated with depletion of mitochondrial DNA. // Neurology. Y. 42. P. 209−218.
  147. Turner P.R., Fong P., Denetclaw W.F., Steinhardt G. Increased calcium influx in dystrophic muscle. // J. Cell Biol. 1991. V. 115. P. 1701−1712.
  148. R., Landon D.N. // Histochem. J. 1987. V. 19. N 3. P. 179−183.
  149. YamashitaK., Watanable M., Yoshiko T. Creatinkinase isoenzymes in different types of single muscle fibers. // Jap. J. Phisysiol. 1990. V. 40. Suppl. 1. P. 245.
  150. Yoshida M., Ozawa E. Glycoprotein cjmplex anchoring dystrophin to sarco-lemma. // J. Biochem. 1990. V. 108. P. 748−752.
  151. Yoshinobu O. Effects of denervation and deafferentation on mass and enzyme activity in rat skeletal muscles. // Jap. J. Phisiol. 1987. Y. 39. N 1. P. 21−31.
  152. Vainzof M., Passos-Bueno M.R., Canovas M., Moreira E.S., Pavanello R.C., Anderson L.V.B, et al. The sarcoglycan complex in the six autosomal recessive limb-girgle muscular dystrophies. // Hum.Mol.Genet. 1996. V. 5.1. P. 1963−1969.
  153. Van Der Laarse W.J., Maslam S., Diegenbach P.C. Relation hip between myoglobin and SDH in mouse soleus and plantaris muscle fibers. // Histochem. J. 1985. V. 17. N l.P. 1−11.
  154. Waclawik A, Lindal S., Engel A.: Experimental Lovastation myopathy. // J. Neuropathol Exp Neurol. 1993. V. 52. P. 542−549.
  155. Wakayama Y. and Shibuya S. Observations on the muscle plasma membrane associated cytoskeletions of mdx mice by quick-freeze, deep-etch rotary-shadow replica metod. //Acta Neuropathol. 1990. V. 80. P. 618−623.
  156. Wakelam M.J.O. The fusion of myoblasts. // Biochem. J. 1985. V. 228. P. 1−12.
  157. Wang K. Sarcomere-associated cytoskeletal lattices in striated muscle: Review and hypothesis. // In: Cell and Muscle Motil. 1985. New York. London.1. P. 315−369.
  158. Watkins S.C., Hoffman E.P., Slayter H.S., Kunkel L.M. Immunoelectron microscopic localization of dystrophin in myofibers. //Nature. 1988. V. 33. P. 863−866.
  159. Way M., Pope B., Cross R.A., Kendrick-Jones J., Weeds A.G. Expression of the N-terminal domain of dystrophin in E. coli and demonstration of binding to F-actin. // FEBS Lett. 1992. V. 301. P. 243−245.
  160. Weller B., Karpati G., Carpenter S. Dystrophin-deficient mdx muscle fibers are perferentially vulnerable to necrosis induced by experimental lengthening contractions. // J. Neurol. Sci. 1990. V. 100. P. 9−13.
  161. Worton R. Muscular dystrophies: diseases of the dystrophin-glycoprotein complex. // Science. 1995. V. 270. P. 755−756.
  162. Zatz M., Vianna-Morgante A.M., Campos P., Diament A.J. Translocation (X-6) in a female with Duchenne muscular dystrophy, implications for the localization of the DMD locus. // J.Med.Genet. 1981. V. 18. P. 442−447.
  163. Zubrzycka-Gaarn E.E., Bulman D.E., Karpati G., Burghes A.H., Betball B., Hajklamut H., Talbot J. et al. The Duchenne muscular dystrophy gene product is localized in sarcolemma of human skeletal muscle. // Nature. 1988. V. 33. P. 466−469.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!