Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Возрастные особенности гормональной и нейрохимической регуляции репродуктивной функции самцов крыс с различным темпом старения

Диссертация: Возрастные особенности гормональной и нейрохимической регуляции репродуктивной функции самцов крыс с различным темпом старения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время в мире существует ограниченное число моделей животных с признаками преждевременного старения. Так наиболее изученной является созданная японскими учеными линия мышей SAM (senescence accelerated mouse), представленная 12 сублиниями, различающимися по характеру проявления признаков старения (Takeda et al., 1998; 2009). Тем не менее, проводимые в последнее десятилетие в Институте… Читать ещё >

Возрастные особенности гормональной и нейрохимической регуляции репродуктивной функции самцов крыс с различным темпом старения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы. Современные представления о половом мотивационном поведении самцов и механизмах, лежащих в основе его возрастного снижения
    • 1. 1. Структура полового поведения самцов
    • 1. 2. Механизмы возникновения полового мотивационного поведения
      • 1. 2. 1. Андрогены и половое мотивационное поведение
      • 1. 2. 2. Структуры головного мозга участвующие в реализации полового мотивационного поведения
      • 1. 2. 3. Нейромедиаторы и половое поведение самцов
    • 1. 3. Регистрация половой мотивации в эксперименте
    • 1. 4. Старение и репродуктивная функция самцов
      • 1. 4. 1. Половое поведение при старении
      • 1. 4. 2. Возрастные нейрохимические и эндокринные изменения
      • 1. 4. 3. Окислительный стресс и модели старения
      • 1. 4. 4. Окислительный стресс и репродуктивные нарушения

Выявление генетических и физиологических механизмов старения представляет собой одну из актуальных проблем физиологической генетики, геронтологии и медицины. Репродуктивная функция является одной из основных биологически высоко значимых функций организма, а ее снижение одним из проявлений естественного старения человека и животных (Wu, Gore, 2010). Кроме функционирования органов, необходимых для размножения, репродуктивная функция включает в себя и поведение, без которого невозможна нормальная реализация всего процесса размножения. Регуляция репродуктивной функции осуществляется единой функциональной нейроэндокринной системой, которая включает в себя как центральное — интегрирующее звено (Hull et al., 2007), так и периферические (эффекторные, исполнительные) органы (Dixson, Anderson, 2004). Эти звенья взаимодействуют между собой по принципу прямой и обратной отрицательной и положительной связи, определяемой характером сигналов, поступающих с периферии (Pau, Spies, 1997).

Поведение, связанное с репродукцией, включает в себя ухаживание, ведущее к образованию пары, собственно копуляторное поведение, обеспечивающее оплодотворение, и родительское поведение (Мак-Фарленд, 1988). Для реализации копуляторного поведения животные должны обладать собственной сексуальной рецептивностью, а также различать внешние стимулы с целью обнаружения потенциального полового партнера, активно достигать его, уметь различать феромональный сигнал или поведенческий паттерн партнера от того, кто не является сексуально значимым, а также быть способными осуществить половой процесс (Тинберген, 1993; Clark, 1993; Pfaus, 2001).

Мужское половое поведение включает в себя аппетентную (мотивационную) и консуматорную (завершающую) фазу, а также рефрактерный период (Pfaus et al., 2003). Большинство исследований мужского полового поведения связано с изучением завершающей фазы, тогда как работ по изучению начальной, мотивационной фазы, необходимой для нормальной реализации всего полового поведения, остается по-прежнему мало (Agmo, 1999; Amstislavkaya, 2004).

Учитывая глобальное постарение населения, важной задачей современной науки является продление активного периода жизни и сохранение репродуктивного здоровья (Bitzer et al., 2008). Кроме того, в настоящее время в развитых странах наблюдается рост процента мужчин репродуктивного возраста со сниженной половой мотивацией (Svendsen, Schultz, 2008; Rowland et al., 2010). В результате исследование механизмов, лежащих в основе возрастных нарушений как полового поведения, так и всей репродуктивной системы в целом приобрело особую актуальность. Решение этой проблемы невозможно без проведения экспериментальных исследований с использованием адекватных биологических моделей.

В настоящее время в мире существует ограниченное число моделей животных с признаками преждевременного старения. Так наиболее изученной является созданная японскими учеными линия мышей SAM (senescence accelerated mouse), представленная 12 сублиниями, различающимися по характеру проявления признаков старения (Takeda et al., 1998; 2009). Тем не менее, проводимые в последнее десятилетие в Институте цитологии и генетики СО РАН исследования свидетельствуют в пользу того, что полноценной моделью преждевременного старения может служить созданная в 70-е гг. в ИЦИГ СО РАН линия крыс OXYS (Соловьева и др., 1975). Этих животных отличает раннее развитие заболеваний, свойственных стареющим людям и животным, сниженная моторно-исследовательская активность, способность к обучению, а также повышенная тревожность (Колосова и др., 2002, 2003; Лоскутова, Колосова, 2000). Существование такого рода ранних возрастных изменений позволило предположить и раннее снижение функциональной активности репродуктивной системы у крыс OXYS, исследование которой до этого не проводилось.

Преимущество использования в работе животных двух генотипов, различающихся темпом старения, позволит выявить особенности функционирования репродуктивной системы на медиаторном и гормональном уровне преждевременно стареющих самцов крыс линии OXYS.

Целью данной работы было исследование возрастных особенностей гормональной и нейрохимической регуляции репродуктивной функции самцов крыс Вистар и OXYS, характеризующихся разным темпом старения.

Для выполнения цели исследования были поставлены следующие задачи:

1. Провести сравнительное исследование половой мотивации крыс линий Вистар и ОХУ8 разного возраста;

2. Исследовать уровень тестостерона в условиях покоя и половой активации в крови и семенниках и лютеинизирующего гормона в крови у 6-, 12- и 26-месячных самцов Вистар и ОХУ8;

3. Оценить возрастные изменения гравиметрических и сперматогенных параметров репродуктивной функции самцов крыс линий Вистар и ОХУ8;

4. Исследовать возрастные особенности метаболизма норадреналина, дофамина и серотонина в мозге 6, 12 и 26-месячных самцов Вистар и ОХУ8;

5. Провести исследование влияния социально и сексуально значимого партнера на метаболизм норадреналина, дофамина и серотонина в гипоталамусе 12 и 26-месячных самцов Вистар и ОХУ8.

Научная новизна работы.

• Установлено, что первые возрастные нарушения полового мотивационного поведения у самцов линии ОХУ8 появляются в 12 мес, в то время как у крыс Вистар подобные нарушения отмечены только к 18 мес.

• Выявлено возрастное снижение эндокринного ответа семенников (по уровню тестостерона) в условиях половой активации у крыс ОХУ8: в 26 мес он был ниже, чем у 12-месячных самцов ОХУ8 и не отличался от крыс Вистар.

• Выявлено более выраженное по сравнению с Вистар возрастное снижение потенциальной способности семенников к нормальному мейозу у самцов ОХУ8. Установлена предрасположенность самцов крыс линии ОХУ8 к развитию спонтанных лейдигом.

• Впервые проведено исследование метаболизма моноаминов в структурах мозга, вовлеченных в регуляцию полового поведения и структурах, где сосредоточены тела серотонергических, дофаминергических и норадренергических нейронов у самцов ОХУ8 разного возраста.

• Выявлены более ранние по сравнению с Вистар возрастные изменения метаболизма моноаминов в мозге у крыс ОХУЭ: у 12-месячных самцов снижен уровень серотонина и его метаболита 5-ГИУК в среднем мозге, дофамина и норадреналина в гипоталамусе.

• У 26-месячных самцов Вистар и ОХУБ выявлено снижение содержания дофамина и серотонина, а также усиление катаболизма дофамина в гипоталамусе.

• Установлено, что основные изменения в метаболизме катехоламинергической и серотонергической систем в условиях половой активации у самцов происходят в гипоталамусе.

• У крыс ОХУ8 выявлены особенности метаболизма медиаторов в ответ на предъявление полового стимула, заключающиеся в снижении катаболизма дофамина в гипоталамусе в возрасте 12 и 26 мес и повышенном содержании 5-ГИУК у 26-месячных животных.

Теоретическая и научно-практическая ценность работы.

Данная работа расширяет современные фундаментальные представления о возрастных нарушениях полового мотивационного поведения, сопряженных с определенными нейрогормональными и нейрохимическими изменениями в мозге и на периферии. Практическая ценность работы заключается не только в выявленной избирательности вклада гормонов и моноаминов в процесс снижения полового мотивационного поведения при старении, но и в перспективе дальнейших исследований по поиску подходов к коррекции приспособления организма к возрастным нарушениям.

Положения, выносимые на защиту.

1. Самцы крыс линии ОХУ8 характеризуются более ранним (12 мес) снижением полового мотивационного поведения по сравнению с крысами Вистар (18 мес). Наличие сексуального опыта не влияет на выраженность возрастного снижения полового мотивационного поведения у самцов крыс Вистар и ОХУ8.

2. Для самцов линии Вистар и ОХУ8 характерно возрастное снижение эндокринного ответа семенников (по уровню тестостерона) в условиях половой активации.

3. Показано возрастное снижение массы семенников, эпидидимисов и препуциальных желез. Снижение массы семенников у крыс ОХУБ наблюдалось с 6 мес, тогда как у Вистар — с 12 мес.

4. 12-месячные самцы линии OXYS характеризуются сниженным содержанием норадреналина и дофамина в гипоталамусе, серотонина и 5-гидроксииндолуксусной кислоты в среднем мозге, что свидетельствует об ускоренных возрастных изменениях в центральном звене регуляции репродуктивной функции у них.

5. В условиях половой активации крысы OXYS по сравнению с Вистар характеризуются сниженным катаболизмом дофамина в гипоталамусе в 12 и 26 месяцев, а также повышенным уровнем 5-гидроксииндолуксусной кислоты в 26 месяцев.

Апробация работы.

Полученные данные были представлены и обсуждены на отчетных сессиях аспирантов ИЦиГ СО РАН (Новосибирск, 2010, 2011), отчетной Сессии Института цитологии и генетики в 2010, на XLVI и XLVIII международных студенческих конференциях «Студент и научно-технический прогресс» (Новосибирск, 2008, 2010), на V Съезде Вавиловского общества генетиков и селекционеров (Москва, 2009), на II конференции Российской ассоциации психонейроэндокринологии (Москва, 2010), на XXI Съезде Физиологического общества им. И. П. Павлова (Калуга, 2010), на конференции «Фундаментальные и прикладные аспекты современной биологии» (Томск, 2010).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 13 работ, из них 4 статьи (1 в зарубежном издании и 3 в отечественных рецензируемых журналах).

Выводы.

1. С возрастом происходит снижение полового мотивационного и копуляторного поведения самцов крыс с обычным (Вистар) и ускоренным (ОХУ8) темпом старения. У самцов крыс ОХУ8 выявлено более раннее нарушение половой мотивации: в возрасте 12 мес она снижена как по сравнению с крысами Вистар того же возраста, так и с более молодыми животными обеих линий. Возрастное снижение полового мотивационного поведения у самцов крыс Вистар и ОХУ8 не зависело от сексуального опыта.

2. Не выявлено влияния возраста и генотипа на исходный уровень ЛГ и тестостерона в крови самцов крыс, но показано угнетающее влияние возраста на эндокринный ответ семенников крыс обеих линий в условиях половой активации.

3. Относительная масса андроген-зависимых репродуктивных органов (семенников, эпидидимисов и препуциальных желез) у самцов с возрастом снижается. Уменьшение массы семенников у крыс ОХУ8 происходит с 6 мес, тогда как у Вистар — с 12 мес. Отмечено возрастное снижение потенциальной способности семенников к нормальному мейозу, которое более выражено у самцов с ускоренным старением.

4. С возрастом происходит снижение содержания ДА и 5-НТ и усиление катаболизма ДА в гипоталамусе самцов обеих линий. У крыс ОХУ8 отсутствуют характерные для Вистар возрастные изменения уровня НА в гипоталамусе, 5-НТ и 5-ГИУК в среднем мозге.

5. Выявлены межлинейные различия в содержании ДА и 5-НТ в гипоталамусе 12-месячных крыс и ДА в продолговатом мозге у старых животных. Содержание ДА и 5-НТ в 12 месяцев у крыс ОХУ8 снижено, а ДА в 26 месяцев повышено по сравнению с Вистар.

6. В условиях половой активации у крыс ОХУ8 12-ти и 26-ти месяцев в гипоталамусе снижен катаболизм ДА. У старых животных повышен уровень 5-ГИУК. В возрасте 12 мес у ОХУ8 отсутствует снижение содержания 5-НТ и 5-ГИУК в этой структуре мозга, характерное для Вистар. У 26-месячных крыс ОХУ8, в отличие от Вистар, предъявление рецептивной самки не приводит к усилению катаболизма 5-НТ в гипоталамусе.

7. Снижение половой мотивации у 12-месячных самцов ОХУБ сопровождается нарушением метаболизма норадренапина, дофамина и серотонина в гипоталамусе.

5.

Заключение

.

Успех исследования механизмов старения определяется адекватностью использованных в работе биологических моделей. В настоящей работе впервые исследованы функциональные особенности отдельных звеньев репродуктивной системы преждевременно стареющих крыс линии ОХУБ. Поскольку репродуктивная функция самцов этой линии ранее не изучалась, выявленное в настоящей работе снижение половой мотивации у годовалых крыс ОХУ8 имеет принципиально важное значение. Обращает на себя внимание тот факт, что только в этом возрасте (12 мес) имеются межлинейные различия по основному показателю полового мотивационного поведения — времени, проведенного самцом у перегородки. У крыс Вистар, характеризующихся обычным темпом старения, выраженность половой мотивации в 12 месяцев не отличается от таковой у молодых животных, а её снижение отмечено только к 18 месяцам, когда половая мотивация у крыс обеих линий не различается. Более раннее снижение половой мотивации у самцов ОХУ8 можно рассматривать как генетически детерминированное нарушение их начальной стадии полового поведения, свидетельствующее об ускоренном старении репродуктивной системы этих крыс.

Следует отметить, что сексуальный опыт не влиял на выраженность проявления половой мотивации преждевременно стареющих крыс. Выявленные в работе сходные возрастные изменения в содержании лютеинизирующего гормона, в продукции клетками Лейдига тестостерона, а также в эндокринном ответе семенников в условиях половой активации у самцов обеих линий указывало, что наиболее вероятным в имеющемся снижении полового мотивационного поведения у крыс ОХУ8 является функциональные нарушения центрального звена его регуляции. Исследование возрастных изменений в содержании нейромедиаторов и их метаболитов в мозге позволило выявить у ОХУ8 целый ряд особенностей функционирования норадренергической, дофаминергической и серотонинергической систем. Так, выявлены межлинейные различия в содержании дофамина и серотонина в гипоталамусе 12-месячных крыс, кроме того у ОХУ8 в этой структуре отсутствует и характерное для Вистар повышение содержания норадреналина. Содержание дофамина и серотонина у 12-месячных крыс ОХУ8 в гипоталамусе оказалось снижено, а содержание дофамина в продолговатом мозге.

26-месячных самцов повышено по сравнению с контрольными крысами Вистар. Однако наличие межлинейных различий в содержании медиаторов в разных структурах головного мозга еще не может свидетельствовать об их ключевой роли в выявленном нами более раннем нарушении полового мотивационного поведения крыс ОХУ8. Поэтому особое значение могли иметь данные об особенностях метаболизма нейромедиаторов в условиях половой активации. Поскольку наиболее важную роль в регуляции полового поведения играет гипоталамус, где к тому же происходит трансформация медиаторных сигналов в гормональные, то для исследования метаболизма медиаторов при половой активации была выбрана именно эта структура. Исследование изменения содержания медиаторов и их метаболитов у 12- и 26-месячных самцов в гипоталамусе в ответ на предъявление социально и сексуально значимого партнера выявило специфический ответ со стороны серотонинергической системы на предъявление рецептивной самки. В 12-месячном возрасте, когда у самцов ОХУ8 отмечено снижение половой мотивации, предъявление самки не вызывало у них снижения содержания серотонина и его основного метаболита 5-гидроксииндолуксусной кислоты, характерного для крыс Вистар. Кроме этого у 26-месячных самцов ОХУ8 не происходило усиления катаболизма серотонина в гипоталамусе в ответ на предъявление самки, которое демонстрировали крысы линии Вистар. Таким образом, можно заключить, что ускоренное возрастное снижение половой мотивации у самцов ОХУ8 напрямую связано с изменением метаболизма серотонина в гипоталамусе и сопровождается нарушенным метаболизмом норадреналина и дофамина в этой структуре.

Выявленные в работе нейрохимические механизмы возрастного снижения половой мотивации самцов крыс могут быть использованы для разработки новых клинических подходов к коррекции нарушений, связанных с половыми дисфункциями у мужчин. Важным результатом работы также является доказательство возможности использования крыс линии ОХУ8 в качестве адекватной биологической модели для исследования различных нарушений в репродуктивной сфере самцов. Эти крысы могут представлять интерес не только в плане исследования изменений центрального звена регуляции репродуктивной функции, но также и выявленной в настоящей работе у них предрасположенности к развитию спонтанных лейдигом, что, как показали наши эксперименты, является ключевым фактором в снижении их сперматогенной функции.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.Г., Осадчук A.B., Наумеико Е. В. Пути активации и изменения эндокринной функции семенников, вызванные присутствием самки // Пробл. эндокринологии. 1989. 35.С.63−66.
  2. Т.Г., Попова Н. К. Активность триптофангидроксилазы отдельных структур мозга при половой мотивации и активации гипоталамо-гипофизарно-семенниковой системы мышей // Нейрохимия, 2001а. Т. 18. № 1. С.37−40.
  3. Т.Г., Попова Н. К. Метаболизм серотонина в мозге при половой мотивации и активации гипоталамо-гипофизарно-семенниковой системы мышей //Журн. высш. нервн. деят., 20 016. Т.51. № 5. С.592−597.
  4. Т.Г., Попова Н. К. Роль отдельных типов серотониновых рецепторов в индуцированной присутствием самки активации гипофизарно-семенникового комплекса мышей // Пробл. эндокринологии, 2003. № 6. С.53−56.
  5. Т.Г., Осипов К. В. Половая активация самцов крыс: поведение и гормональный ответ. Бюл. СО РАМН. 2003. З.С.112−114.
  6. Т.Г., Гладких Д. В., Белоусова И. И., Маслова JI.H., Попова Н. К. Влияние сексуального опыта на половое мотивационное и копуляторное поведение самцов крыс // Рос. физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2009, Т.93, № 12, С.1362−1373.
  7. Т.Г., Храпова М. В. Влияние генотипа на поведенческую и гормональную компоненты половой активации самцов мышей // Бюлл. Экспер. Биол. Мед., 2002, т. 133, № 5, С.548−551.
  8. В.Н. Молекулярные и физиологические механизмы старения // Санкт-Петербург «Наука», 2008.
  9. A.C. Высшая нервная деятельность // Москва «Высшая школа», 1991. С.83−85.
  10. Ю.Бакарев М. А., Непомнящих JI.M. Структурные проявления нарушений митохондриальной функции в скелетных мышцах у преждевременно стареющих крыс OXYS // Бюлл. эксп. биол. и мед. 2004. 138(12), С.674−679.
  11. П.Булыгина В. В., Амстиславская Т. Г., Маслова JT.H. Влияние социальной изоляции в ювенильном периоде на половую активацию у взрослых крыс // Рос. физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 2005. Т.91. № 11. С.1356−1365.
  12. Я., Бурешова О., Хьюстон Д. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения. Москва. «Высшая школа». 1991. С. 400.
  13. B.JI. Частная Гистология Человека // СОТИС, С-Петербург, 2001
  14. A.B. Гипоталамус как субстрат корреляции вегетативных и моторных проявлений эмоционального поведения // Центральные механизмы вегетативной нервной системы. Ереван: Изд-во АН АрмССР, 1969. С.107
  15. А.И. Половые различия инволюционных изменений сексуального поведения крыс // Пробл. старения и долголетия. 1994. Т.4. № 3−4.С.322−333.
  16. А.И. Регуляция мужского сексуального поведения половыми гормонами. Успехи физиологических наук, 1999. Т.30. № 1. С.97−105.
  17. А.Г., Соловьева H.A., Морозкова Т. С. // Генетика. 1975,11(5), С.72−77.
  18. A.A., Фурсова А. Ж., Логвинов С. В., Колосова Н. Г. Клинико-морфологические особенности хориоретинальной дегенерации у преждевременно стареющих крыс линии OXYS. Бюлл. эксп. биол. и мед. 2008.146(10).С.435−438.
  19. Я.Д. Практикум по эндокринологии. М.: Высшая школа, 1969. С. 256.
  20. Н.Г., Куторгин Г. Д., Сафина А. Ф. Особенности минерализации костной ткани преждевременно стареющих крыс OXYS // Бюлл. эксп. биол. и мед. 133.2002. С.171−174.
  21. Н.Г., Лебедев П. А., Фурсова А. Ж., Морозкова Т. С., Гусаревич О. Г. Преждевременно стареющие крысы OXYS как модель сенильной катаракты человека// Успехи геронтологии. 2003. 12, С.143−148.
  22. Т.А., Зайченко И. Н., Ефремов О. М., Байрамов A.A., Григорьев Е. И., Рыжак Г. А. Действие вилона на нейроэндокринный статус и половое поведение старых самцов крыс // Успехи Геронтологии, 2006, вып. 19. С.97−101.
  23. Л.В., Колосова Н. Г. Эмоциоциональный статус и способность к однократному обучению у крыс линии OXYS с наследственно повышеннойспособностью к радикалообразованию // Бюлл. эксперим. биол. 2000. № 8. С. 155−158.
  24. Е.Б., Зенков Н. К., Ланкин В. З., Бондарь И. А., Труфакин В. А. // Новосибирск: APTA. 2008. С. 284.
  25. Е.В., Амстиславская Т. Г., Осадчук A.B. Участие катехоламиновых механизмов в активации гипофизарно-семенникового комплекса мышей, индуцированной эффектом присутствия самки // Пробл. эндокринологии, 1986. № 6. С.55−58.
  26. Е.В., Амстиславская Т. Г., Осадчук A.B. Роль адренорецепторов в активации гипоталамо-гипофизарно-семенникового комплекса мышей, вызванной присутствием самки // Пробл. эндокринологии, 1989. № 3. С.64−67.
  27. Е.В., Осадчук A.B., Серова Л. И., Шишкина Г. Т. Генетико-физиологические механизмы регуляции функций семенников. Новосибирск: Наука. 1983. С. 203.
  28. Е.В., Серова Л. И. Роль гамма-аминомасляной кислоты в ингибирующем действии эмоционального стресса на половую активность мышей // Пробл. эндокринологии, 1990. Т.36. № 2. С.60−62.
  29. Л.М., Семёнов Д. Е., Соловьёва H.A., Салганик Р. И. Клеточные механизмы генетически детерминированной гипертрофической кардиомиопатии у крыс линии W/SSM // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1994. 118(11), С.547−551.
  30. С.Н. Феромоны и размножение млекопитающих // Л.: Наука, 1988. С. 169.
  31. , А.Д., Баженов Ю. И., Баранникова, H.A. Общий курс физиологии человека и животных // Москва: Высшая школа, 1991. Т.1. С. 222, 350. т.2. С. 60.
  32. A.B., Науменко Е. В. Роль генотипа и некоторых видов зоосоциального поведения в регуляции эндокринной функции семенников у мышей // Докл. АН СССР, 1981. Т.258. № 3. С.746−749.
  33. Н.К., Амстиславская Т. Г., Кучерявый С. А. Половая мотивация самцов мышей, индуцированная присутствием самки// Журн. высш. нервн. деят., 1998. Т.46. № 1. С.84−90.
  34. Н.К., Науменко Е. В., Колпаков В. Г. Серотонин и поведение // Издательство «Наука», Сибирское отделение. Новосибирск. 1978. С.12
  35. К.В., Осадчук A.B., Свечникова И. Г., Ахмерова Л. Г., Соловьева H.A. Преждевременное снижение эндокринной функции семенников у крыс с наследственной галактоземией. // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1996, том 122, № 9, с. 318−320.
  36. Л.И., Колесникова Л. А. Пути активирующего влияния дофамина головного мозга на эндокринную функцию семенников // Изв. СО АН СССР, Сер. биол. наук., 1983. Т.13. № 3. С.135−137.
  37. Л.И., Науменко Е. В. Роль отдельных подтипов адрено- и дофаминовых рецепторов головного мозга в регуляции функции гипоталамо-гипофизарно-семенникового комплекса // Рос. физиол. журн. им. И. М. Сеченова, 1995. Т.81. № 1. С.19−23.
  38. H.A., Морозкова Т. С., Салганик Р. И. Получение сублинии крыс с признаками наследственной галактоземии и исследование их биохимических особенностей. //Генетика, 1975, том18, № 5, С.63−71.
  39. H.A. Особенности поведения крыс OXYS как проявление их преждевременного старения // Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук. Санкт-Петербург, 2011. С. 54.
  40. К.В. Доминирующая мотивация // М. Изд-во РАМН, 2004. 236с.
  41. В.П. Старение как атавистическая программа, которую можно попытаться отменить //Вестник РАН. 2005. 75. С.831−843.
  42. И.Г., Колосова Н. Г., Гришанова А. Ю., Соловьева H.A., Соловьев
  43. B.Н., Салганик Р. И. Активность окислительного фосфорилирования, F0F1-АТФ-азы и содержание цитохромов митохондрий печени крыс с врожденным повышением способности радикалообразования // Биохимия. 1995. 60(12), 1. C.2045−2052.
  44. Т.В., Аметиславекая Т. Г., Колосова Н. Г. Особенности метаболизма серотонина в структурах мозга преждевременно стареющих крыс OXYS // Нейрохимия, 2003, том 20, № 1, С.51−55.
  45. Agmo A. Male rat sexual behavior // Brain Res. Protoc., 1997. V.l. P.203−209
  46. Agmo A. Sexual motivation an inquiry into events determining the occurrence of sexual behavior // Behav. Brain Res., 1999. V.105. P.129−150.
  47. Agmo A. Unconditioned sexual incentive motivation in the male Norway rat (Rattus norvegicus) // J. Сотр. Psychol. 2003 Mar-l 17(1). P.3−14.
  48. Agmo A., Turi A.L., Ellingsen E., Kaspersen H. Preclinical models of sexual desire: conceptual and behavioral analyses // Pharmacol. Biochem. Behav., 2004. V.78. P.379−404.
  49. Ahlenius S., Carlsson A., Hillegaart V., Hjorth S., Larsson K. Region-selective activation of brain monoamine synthesis by sexual activity in the male rat // Eur J Pharmacol. 1987. V.144. P.77−82.
  50. Ahlenius S., Hillegaart V., Hjorth S., Larsson K. Effects of sexual interactions on the in vivo rate of monoanime syntesis in forebrain regions of the male rat // Behav. Brain Res., 1991b. V.46. P. l 17−122.
  51. Ahlenius S., Larsson K. Evidence for an involvement of 5-HT1B receptors in the inhibition of male rat ejaculatory behavior produced by 5-HTP // Psychopharmacology, 1998. V.137. P.374−382.
  52. Ahlenius S., Larsson K., Wijkstrom A. Behavioral and biochemical effects of the 5HT1A receptor agonists flesinoxan and 8-OH-DPAT in the rat // Eur J Pharmacol, 1991a. V.210. P.259−266.
  53. Alexander G.M., Sherwin B.B. The association between testosterone, sexual arousal, and selective attention for erotic stimuli in men // Horm. Behav. 1991. V.25. P.367−381.
  54. Albonetti M.E., Farabollini F. Restraint increases both aggression and defence in female rats tested against same-sex unfamiliar conspecifics // Aggressive Behavior, 1993. V.19.P.369−376.
  55. Algeri S., Calderini G., Tofano G., Ponzio F. Neurotransmitter alterations in aging rats. In: Samuel D., Algeri S., Gershon S., Grimm V.E., Toffano G. (eds). Aging of the brain // Raven Press, New York, Aging, 1983. Vol. 22. P.227−243.
  56. Amstislavskaya T.G., Popova N.K. Femaleinduced sexual arousal in male mice and rats: behavioral and testosterone response. Horm. Behav. 2004. 46: 544−550.
  57. Amstislavskaya T.G., Popova N.K. Serotonergic receptor subtypes in male mouse and rat sexual arousal. Advances in Psychology Research, ed. A. Columbus. 2006. V.39. P. 139−160.
  58. Aston-Jones G., Zhu Y., Card J.P. Numerous GABAergic afferents to locus ceruleus in the pericerulear dendritic zone: possible interneuronal pool // J. Neurosci. 2004 Mar 3−24(9).P.2313−2321.
  59. Azmitia E.V., Gannon P.J. The primate serotonergic system: a review of human and animal studies and report on Macaca fascicularis // Adv.Neurol., 1986, 43. P.407−468.
  60. Balthazart J., Ball G.F. Topography in the preoptic region: Differential regulation of appetitive and consummatory male sexual behaviors // Frontiers in Neuroendocrinology, 2007, 28. P.161−178.
  61. Balthazart J., Baillien M., Cornil C.A., Ball G.F. Preoptic aromatase modulates male sexual behavior: slow and fast mechanisms of action // Physiol. Behav. 2004 Nov. 15- 83(2). P.247−270.
  62. Bakarev M.A., Nepomnyashchikh L.M. Structural manifestations of mitochondrial dysfunction in skeletal muscles of early aging OXYS rats // Bull Exp Biol Med. 2004 Dec- 138(6). P.598−602.
  63. Barbeau A. L-dopa therapy in Parkinson’s disease: a critical review of nine years' experience // Can. Med. Assoc J. 1969 Dec 27−101(13). P.59−68.
  64. Batty J. Acute changes in plasma testosterone levels and their relation to measures of sexual behaviour in the male house mouse (Mus musculus) // Anim. Behav., 1978. V.26. P.349−357.
  65. Baum M.J., Keverne E.B. Sex difference in attraction thresholds for volatile odors from male and estrous female mouse urine // Horm. Behav., 2002. V.41. P.213−219.
  66. Baum M.J., Vreeburg J.T. Copulation in castrated male rats following combined treatment with estradiol and dihydrotestosterone // Science. 1973. V.182. P.283−285.
  67. Beach F.A. The characteristics of masculine sex drive. In: Jones M.R. (Eds.) The Nebraska symposium on motivation, (pp. 1−32) Lincoln: University of Nebraska Press. 1956.
  68. Behan M., Brownfield M.S. Age-related changes in serotonin in the hypoglossal nucleus of rat: implications for sleep-disordered breathing // Neurosci Lett. 1999. 267, P.133−136.
  69. Berghard A., Buck L.B., Liman E.R. Evidence for distinct signaling mechanisms in two mammalian olfactory sense organs // PNAS USA, 1996. V.93. P.2365−2369.
  70. Berridge K.C. Motivation concepts in behavioral neuroscience // Psysiol. Behav., 2004. V.8l.P. 179−209.
  71. Blackburn J.R., Pfaus J.G., Phillips A.G. Dopamine functions in appetitive and defensive behaviours // Prog. Neurobiol., 1992. V.39. P.247−279.
  72. A.A., Sergeeva S.V., Bagryanskaya E.G., Markel A.L., Khramtsov V.V., Reznikov V.A., Kolosova N.G. 19 °F NMR measurements of NO production in hypertensive ISIAH and OXYS rats // Biochem Biophys Res Commun. 2005. 330(2), P.367−370.
  73. Bowers M.B. Jr, Van Woert M., Davis L. Sexual behavior during L-dopa treatment for Parkinsonism//Am. J. Psychiatry. 1971 Jun-127(12), P.1691−1693.
  74. Bruning G., Liangos O., Baumgarten H.G., Prenatal developement of the serotonin transporter in mouse brain // Cell Tissue Res. 1997. V. 289, № 2, P. 211−221.
  75. Brunello N, Riva M, Rovescalli AC, Galimberti R, Racagni G Age-related changes in serotonergic and adrenergic systems and in receptor responsiveness to subchronic desipramine treatment//Pharmacol Toxicol. 1988, 63: 150−155.
  76. Burchinsky S.G. Changes in the functional interactions of the neurotransmitter systems during aging: neurochemical and clinical aspects // J lin Exp Gerontol. 1985. 7. P.1−30.
  77. Carfagna N., Trunzo F., Moretti A. Brain catecholamine content and turnover in aging rats // Exp Gerontol, 20, 1985. P.265−269.
  78. Cerrito F., Aloisi G., Arminio P. Age-related changes in rat brain monoamines release: peculiarity of dopamine release // J. Neurosci. Res. 1993. 34. P.364−370.
  79. Chang H.C., Lue S.I., Hsu C., Hsu H.K., Weng C.F., Yuh-Lin Yu J. Effects of Chinese herbal prescriptions on copulatory activity in aged male rats: a preliminary study // Am J Chin Med. 1998.26(1). P.83−90.
  80. Chan S.W.C., Leathern J.H., Esashy. Testicular metabolism and serum testosterone in aging male rats // Endocrinology. 1977.Vol.l01.P.129−133
  81. Chen H., Hardy M.P., Huhtaniemi I., Zirkin B.R. Age-related decreased Leydig cell testosterone production in the brown Norway rat // J Androl. 1994 Nov-Dec-15(6). P.551−557.
  82. Chen H., Zirkin B.R. Long-term suppression of Leydig cell steroidogenesis prevents Leydig cell aging // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. 96. P.14 877−14 881.
  83. Christensen L.W., Clemens L.G. Intrahypothalamic implants of testosterone or estradiol and resumption of masculine sexual behavior in longterm castrated male rats //Endocrinology, 1974. Y.95. P.984−990.
  84. Chu X., Agmo A. Sexual incentive motivation in old male rats: the effects of sildenafil and a compound (Impaza) stimulating endothelial NO synthase // Pharmacol. Biochem. Behav. 2008 Apr-89(2). P.209−217.
  85. Clark J.T. Component analysis of male sexual behavior. In: Conn P.M. (Eds.) Methods in Neurosciences. (pp. 32−53) San Diego: Academic Press. 1993.
  86. Clark J.T. Sexual function in altered physiological states: comparison of effects of hypertension, diabetes, hyperprolactinemia, and others to «normal» aging in male rats //Neurosc. Biobehav. Rev. 1995. Summer.№ 19(2).P.279−302
  87. Coquelin A., Bronson F.H. Secretion of luteinizing hormone in male mice: factors that influence release during sexual encounters // Endocrinology, 1980. V.106. P.1224−1229.
  88. Coquelin A., Clancy A.N., Macrides F., Noble E.P., Gorski RA. Pheromonally induced release of luteinizing hormone in male mice: involvement of the vomeronasal system // J. Neurosci., 1984. V.4. P.2230−2236.
  89. Coquelin A., Desjardins C. Luteinizing hormone and testosterone secretion in young and old male mice // Am. J. Physiol. 243. 1982. p.257−263.
  90. Chen J.C., Tsai H.W., Yeh K.Y., Tai M.Y., Tsai Y.F. Male sexual behavior and catecholamine levels in the medial preoptic area and arcuate nucleus in middle-aged rats // Brain Res. 2007. Dec 12- 1184. P: 186−192
  91. Chen J.C., Tsai H.W., Yeh K.Y., Tai M.Y., Tsai Y.F. Correlation of catecholamine levels in the bed nucleus of the stria terminalis and reduced sexual behavior in middle-aged male rats / J Gerontol A Biol Sci Med Sci- 2008 Jul-63(7):678−682.
  92. Damassa D.A., Cates J.M. Sex hormone-binding globulin and male sexual development//Neurosci. Biobehav. Rev., 1995. V.19. P.165−175.
  93. Damsma G., Pfaus J.G., Wenkstern D., Phillips A.G., Fibiger H.C. Sexual behavior increases dopamine transmission in the nucleus accumbens and striatum of male rats: comparison with novelty and locomotion // Behav Neurosci. 1992 Feb-106(l). P.181−191.
  94. David J.C., Coulon J.F., Cavoy A., Delacour J. Effects of aging on p- and m-octopamine, catecholamines and their metabolizing enzymes in the rat // J. Neurochem, 53, 1989. P.149−154.
  95. Demarest K.T., Riegle G.D., Moore K.E. Characteristics of dopaminergic neurons in the aged male rat // Neuroendocrinology. 1980. 31. P.222−227
  96. Dluzen D.E. Age-related changes in monoamines within the olfactory bulbs of the Fischer 344 male rat // Mechanisms of Ageing and Development, 91, 1996. P.37−45.
  97. Dowling D.K., Simmons L.W. Reactive oxygen species as universal constraints in life-history evolution // Proc Biol Sci. 2009. 276(1663), P. 1737−1745.
  98. Drago F., Lo Presti L., Nardo F., Panella I., Matera M., Scapagnini U. Aromatization of testosterone by adipose tissue and sexual behavior of castrated male rats // Biol. Reprod., 1982. V.27. P.765−770.
  99. Edwards D.A., Walter B., Liang P. Hypothalamic and olfactory control of sexual behavior and partner preference in male rats // Physiol. Behav., 1996. V.60. P. 13 471 354.
  100. Ellis G.B., Desjardins C., Male rats secrete luteinizing hormone and testosterone episodically//Endocrinology 110. 1982. P.1618−1627.
  101. Emery D.E. Effects of endocrine state on sociosexual behavior of female rats tested in a complex environment // Behav. Neurosci., 1986. V.100. P.71−78.
  102. Erskine M.S. Solicitation behavior in the estrous female rat: a review // Horm. Behav., 1989. Y.23. P.473−502.
  103. Estes K.S., Simpkins J.W. Age-related alterations in catecholamines in discrete preoptic area and hypothalamic regions in the male rat // Brain Res. 1980, 194. P.556−560.
  104. Everitt B.J. Sexual motivation: a neural and behavioural analysis of the mechanisms underlying appetitive and copulatory responses of male rats // Neurosci. Biobehav. Rev., 1990. V.14. P.217−232.
  105. Everitt B.J. Neuroendocrine mechanisms underlying appetitive and consumatory elements of masculine sexual behavior. In J. Bancroft (Ed.) The Pharmacology of Sexual Function and Dysfunction, Elsevier. Amsterdam. 1995. P. 15−31.
  106. Fan Y., Huang J., Duffourc M, Kao R.L., Ordway G.A., Huang R, Zhu M.Y. Transcription factor Phox2 upregulates expression of norepinephrine transporter and dopamine P-hydroxylase in adult rat brains // Neuroscience. 2011 Sep 29.192.P.37−53.
  107. Fernandez-Guasti A., Escalante A.L., Ahlenius S., Hillegaart V., Larsson K. Stimulation of 5HT1A and 5HT1B receptors in brain regions and its effects on male rat sexual behaviour // Eur. J. Pharmacol., 1992. V.210. P.121−129.
  108. Fernandez-Guasti A., Rodriguez-Manzo G. Further evidence showing that the inhibitory action of serotonin on rat masculine sexual behavior is mediated after the stimulation of 5-HT1B receptors // Pharmacol. Biochem. Behav., 1992. V.42. P.529−533.
  109. Gray Y.D., Smith E.R., Dorsa D.M. Sexual behavior and testosterone in middle aged male rats // Endocrinology. 1981. Vol.109. № 5. P. 1597−1604.
  110. Gruenewald D.A., Naai M.A., Hess D.L., Matsumoto A.M. The Brown Norway rat as a model of male reproductive aging: evidence for both primary and secondary testicular failure // J. Gerontol. 1994. Mar. 49(2). P.42−50.
  111. Harding C.F., Feder H.H. Relation between individual differences in sexual behavior and plasma testosterone levels in the guinea pig // Endocrinology, 1976. V.98.P.1198−1205.
  112. Harik S.I., McCracken K.A. Age-related increase in presinaptic noradrenergic markers of the rat cerebral cortex // Brain Res, 381, 1986. P.125−130.
  113. Harman D. Aging: a theory based on free radicals and radiation biology // J Gerontol. 1956. 11:298−300.
  114. Heaulme M., Dray F. Noradrenaline and prostaglandin E2 stimulate LHRH release from rat median eminence through distinct 1-alpha-adrenergic and PGE2 receptors // Neuroendocrinology, 1984. V.39. P.403−407.
  115. Hetta J., Meyerson B.J. Effects of castration and testosterone treatment on sex specific orientation in the male rat // Acta Physiol. Scand. Suppl, 1978. V.453. P.47−62.
  116. Holy T.E., Dulac C., Meister M. Responses of vomeronasal neurons to natural stimuli // Science, 2000. V.289. P.1569−1572.
  117. Hsu H.K., Hsu C., Yu J.Y., Peng M.T. Effects of long-term testosterone replacement on copulatory activity in old male rats // Gerontology, 1986, 32, P. 10−17.
  118. Huang L., Bittman E.L. Olfactory bulb cells generated in adult male golden hamsters are specifically activated by exposure to estrous females // Horm. Behav., 2002. V.41.P.343−350.
  119. Hull E.M., Dominguez J.M. Getting his act together: roles of glutamate, nitric oxide, and dopamine in the medial preoptic area // Brain Res. 2006. Dec 18- 1126 (1). P.66−75.
  120. Hull E.M., Lorrain D.S., Du J. Matuszewich L., Lumley L.A., Putnam S.K., Moses J. Hormone-neurotransmitter interactions in the control of sexual behavior // Behav. Brain Res., 1999. V.105. P.105−116.
  121. Hull E.M., Muschamp J.W., Sato S. Dopamine and serotonin: influences on male sexual behavior // Physiol. Behav., 2004. V.83. P.291−307.
  122. Hull E.M., Dominguez J.M., Muschamp J.W. Neurochemistry of male sexual behavior // Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2007. P. 38−94.
  123. Hull E.M., Wood R.I., McKenna K.E. The neurobiology of male sexual behavior. In: Neill, J.- Donald, Pfaff, editors. The Physiology of Reproduction. 3. Elsevier Press- 2006.P. 1729−1824.
  124. Hung S.H., Pi W.P., Tsai Y.F., Peng M.T. Restoration of sexual behavior in aged male rats by intracerebral grafts of fetal preoptic area neurons. // J. Formos. Med. Assoc. 1997. V.10. P.812−818.
  125. Hutchison J.B., Steimer T. Androgen metabolism in the brain: behavioural correlates // Prog. Brain Res., 1984. V.61. P.23−51.
  126. Jervis K.M., Robaire B. The effects of long-term vitamin E treatment on gene expression and oxidative stress damage in the aging brown norway rat epididymis // Biol. Reprod. 2004. 71. P. 1088−1095.
  127. Johnson F.B., Sinclair D.A., Guarente L. Molecular Biology of Aging Cell, 1999. V. 96, 291−302.
  128. Johnston R.E. Pheromones, the vomeronasal system, and communication. From hormonal responses to individual recognition // Ann. NY Acad. Sci., 1998. V.855. P.333−348.
  129. Johnston R.E., Bronson F. Endocrine control of female mouse odors that elicit luteinizing hormone surges and attraction in males // Biol. Reprod., 1982. V.27. P.1174−1180.
  130. Kamel F., Frankel A.I. The effect of medial preoptic area lesions on sexually stimulated hormone release in the male rat // Horm. Behav., 1978. V.10. P.10−21.
  131. Kelliher K.R., Liu Y.C., Baum M.J., Sachs B.D. Neuronal Fos activation in olfactory bulb and forebrain of male rats having erections in the presence of inaccessible estrous females //Neuroscience, 1999.V.92. P.1025−1033.
  132. Keverne E.B. The vomeronasal organ // Science, 1999. V.286. P.716−720.
  133. Kippin T.E., Cain S.W., Pfaus J.G. Estrous odors and sexually conditioned neutral odors activate separate neural pathways in the male rat // Neuroscience, 2003. V.117. P.971−979.
  134. Kolosova N.G., Shcheglova T.V., Sergeeva S.V., Loskutova L.V. Long-term antioxidant supplementation attenuates oxidative stress markers and cognitive deficits in senescent-accelerated OXYS rats //Neurobiol. Aging. 2006. 27. P. 1289−1297.
  135. Kondo Y., Arai Y. Functional association between the medial amygdale and the medial preoptic area in regulation of mating behavior in the male rat I I Physiol. Behav., 1995. V.57. P.69−73.
  136. Kondo Y., Sachs B.D. Disparate effects of small medial amygdale lesions on noncontact erection, copulation, and partner preference // Physiol. Behav. 2002. V.76. P.443−447.
  137. Kondo Y., Sachs B.D., Sakuma Y. Importance of medial amygdale in rat penile erection evoked by remote stimuli from estrous females // Behav. Brain Res., 1997. V.88. P.153−160.
  138. Kumar A.M., Weiss S., Fernandez J.B., Cruess D., Eisdorfer C. Peripheral serotonin levels in women: role of aging and ethnicity // Gerontology, 1998. 44, P.211−216.
  139. Lee J.J., Chang C.K., Liu I. M, Chi T.C., Yu H.J., Cheng J.T. Changes in endogenous monoamines in aged rats // Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. 2001. 28.P. 285−289.
  140. Lee C.K., Weindruch R., Prolla T.A. Gene-expression profile of the ageing brain in mice // Nat Genet 2000. 25. P.294−297.
  141. Licht G., Meredith M. Convergence of main and accessory olfactory pathway onto single neurons in the hamster amygdala // Brain Res., 1987. V.69. P.7−14.
  142. Lieberburg I., McEwen B.S. Brain cell nuclear retention of testosterone metabolites, 5alpha-dihydrotestosterone and estradiol-17beta, in adult rats // Endocrinology, 1977. V.100. P.588−597.
  143. Liu Y.C., Salamone J.D., Sachs B.D. Impaired sexual response after lesions of the paraventricular nucleus of the hypothalamus in male rats // Behav. Neurosci., 1997. V.lll. P.1361−1367
  144. Lopez H.H., Olster D.H., Ettenberg A. Sexual motivation in the male rat: the role of primary incentives and copulatory experience // Horm. Behav., 1999. V.36. P. 176 185.
  145. Lopez H.H., Ettenberg A. Haloperidol challenge during copulation prevents subsequent increase in male sexual motivation // Pharmacol Biochem Behav. 2000 Oct- 67(2). P.387−393.
  146. Lopez H.H., Ettenberg A. Exposure to female rats produces differences in c-fos induction between sexually-naive and experienced male rats // Brain Res., 2002. V.947. P.57−66.
  147. Louilot A., Gonzalez-Mora J.L., Guadalupe T., Mas M. Sex-related olfactory stimuli induce a selective increase in dopamine release in the nucleus accumbens of male rats. A voltammetric study // Brain Res. 1991 Jul 12- 553(2). P.313−317.
  148. Machado A., Cano J., Santiago M. The change with age in biogenic amines and their metabolites in the striatum of the rat // Arch Gerontol Geriatr. 1986.5. P.333−342.
  149. Macrides F., Bartke A., Dalterio S. Strange females increase plasma testosterone levels in male mice // Science, 1975. V.189. P. l 104−1106.
  150. Madamanchi N.R., Vendrov A., Runge M.S. Oxidative Stress and Vascular Disease. // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol. 2005,25. P.29−38.
  151. Magnone M.C., Rossolini G., Piantanelli L., Migani P. Neurochemical parameters of the main neurotransmission systems in aging mice // Arch Gerontol Geriatr. 2000 Jun 1−30(3). P.269−279.
  152. Malmnas C.O. Short-latency effect of testosterone on copulatory behaviour and ejaculation in sexually experienced intact male rats // J. Reprod. Fertil., 1977. V.51. P.351−354.
  153. Markova E.V., Obukhova, Kolosova L.A., Activity N.G. Of cell immune response and open field behavior in Wistar and OXYS rats // Bull Exp Biol Med. 2003. 136, P.377−379.
  154. Martini S., Silvotti L., Shirazi A., Ryba N.J., Tirindelli R. Co-expression of putative pheromone receptors in the sensory neurons of the vomeronasal organ // J. Neurosci., 2001. V.21. P.843−848.
  155. Mas M., Rodriguez del Castillo A., Guerra M., Davidson J.M., Battaner E. Neurochemical correlates of male sexual behavior // Physiol. Behav., 1987. V.41. P.341−345.
  156. Mas M., Fumero B., Gonzalez-Mora J.L. Voltammetric and microdialysis monitoring of brain monoamine neurotransmitter release during sociosexual interactions // Behav. Brain Res. 1995a Nov- 71(1−2). P.69−79.
  157. Mas M., Fumero B., Fernandez-Vera J.R., Gonzalez-Mora J.L. Neurochemical correlates of sexual exhaustion and recovery as assessed by in vivo microdialysis // Brain Res. 1995b Mar 27−675(l-2). P.13−19.
  158. Mattison J.A., Black A., Huck J., Moscrip T., Handy A., Tilmont E., Roth G.S., Lane M.A., Ingram D.K. Age-related decline in caloric intake and motivation for food in rhesus monkeys // Neurobiol Aging. 2005.26. P. l 117−1127.
  159. McGeer E.G. Neurotransmitters systems in aging and senile dementia // Prog. Neuropsychopharmacol. 1987. 5. P.435−445
  160. McGinnis M.Y., Montana R.C., Lumia A.R. Effects of hydroxyflutamide in the medial preoptic area or lateral septum on reproductive behaviors in male rats // Brain Res. Bull., 2002. V.59. P.227−234.
  161. McGinnis M.Y., Yu W.H. Age-related changes in androgen receptor levels in cranial nerve nuclei of male rats. // Brain Res. Bull. 1995. V.36. P.581−585.
  162. McGinnis M.Y., Mirth M.C., Zebrowski A.F., Dreifuss R.M. Critical exposure time for androgen activation of male sexual behavior in rats // Physiol. Behav. 1989−46, P.159−165.
  163. Meisel R.L., Sachs B.D. The physiology of male sexual behavior. In: Knobil E., Neill J. (Eds.). The physiology of reproduction, 1994, vol.2, Raven Press, New York. P. 3−105.
  164. Mcintosh T.K., Barfield RJ. Brain monoaminergic control of male reproductive behavior. II. Dopamine and the post-ejaculatory refractory period // Behav. Brain Res. 1984 Jun-12(3). P.267−273.
  165. Mendelson S.D., Pfaus J.G. Level searching: a new assay of sexual motivation in the male rat // Physiol. Behav., 1989. V.45. P.337−341.
  166. Mennella J.A., Moltz H. Infanticide in the male rat: the role of the vomeronasal organ // Physiol. Behav., 1988. V.42. P.303−306.
  167. Meredith M. Vomeronasal, olfactory, hormonal convergence in the brain. Cooperation or coincidence? // Ann. NY Acad. Sci., 1998. V.855. P.349−361.
  168. Meredith M., Marques D.M., O’Connell R.O., Stern F.L. Vomeronasal pump: significance for male hamster sexual behavior // Science, 1980. V.207. P.1224−1226.
  169. Meredith M. Human vomeronasal organ function: a critical review of best and worst cases // Chem. Senses, 2001. V.26. P.433−445.
  170. Meyerson B.J. Drugs and sexual motivation in the female rat. In: Sexual behavior: pharmacology and biochemistry. Ed. M. Sandler and G.L. Gessa. New York. Raven Press. 1975. P.21−31.
  171. Miguez J.M., Aldegunde M., Paz-Valinas.L., Recio J., Sanchez-Barcelo E. Selective changes of noradrenaline, dopamine and serotonin in rat brain areas during aging // J. Neural Transm, 106, 1999: P. 1089−1098.
  172. Mitchell J.B., Gratton A. Opioid modulation and sensitization of dopamine release elicited by sexually relevant stimuli: a high speed chronoamperometric study in freely behaving rats // Brain Res. 1991 Jun 14−551(1−2). P.20−27.
  173. Modell J.G., Katholi C.R., Modell J.D., DePalma R.L. Comparative sexual side effects of bupropion, fluoxetine, paroxetine, and sertraline // Clin. Pharmacol. Ther., 1997. V.61. P.476−487.
  174. Moretti A., Carfagna N., Trunzo F. Effect of aging on monoamines and their metabolites in the rat brain // Neurochem Res, 12, 1987. P.1035−1039.
  175. Morgan D.G., May P.C. Age-related changes in synaptic neurochemistry. In: Schneider EL, Rowe JW (eds) Handbook of the biology of aging //Academic Press, New York. 1990. P.219−254.
  176. Muraleva N.A., SadovoT M.A., Kolosova N.G. Development of osteoporosis in prematurely aging OXYS rats // Adv Gerontol. 2010. 23(2), P.233−242.
  177. Naftolin F., Ryan K.J. The metabolism of androgens in central neuroendocrine tissues // J. Steroid Biochem., 1975a. V.6. P.993−997.
  178. Naftolin F., Ryan K.J., Davies I.J., Petro Z., Kuhn M. The formation and metabolism of estrogens in brain tissues // Adv. Biosci., 1975b. V. 15. P. 105−121.
  179. Naumenko E.V., Amstislavskaya T.G., Osadchuk A.V. The role of the adrenoceptors in the activation of the hypothalamic-pituitary-testicular complex of mice induced by the presence of a female // Experim. Clin. Endocrinol., 1991. V.97, P.1−12.
  180. Nyby J.G. Reflexive testosterone release: A model system for studying the nongenomic effects of testosterone upon male behavior // Frontiers in Neuroendocrinology. 2008. 29.P. 199−210.
  181. Obukhova L.A., Skulachev V.P., Kolosova N.G. Mitochondria-targeted antioxidant SkQl inhibits age-dependent involution of the thymus in normal and senescence-prone rats //AGING. 2009. 1(4), P.389−401.
  182. Osterburg H.H., Donahue H.G., Severson J.A., Finch C.E. Catecholamine levels and turnover during aging in brain regions of male C57BL/6J mice // Brain Res. 1981. 224. P.337−352.
  183. O’Sullivan J.D., Hughes A.J. Apomorphine-induced penile erections in Parkinson’s disease // Mov. Disord. 1998 May- 13(3), P.536−539.
  184. Paredes R.G. Medial preoptic area/anterior hypothalamus and sexual motivation // Scand. J. Psychol., 2003. V.44. P.203−212.
  185. Perez-Palacios G., Larsson K., Beyer C. Biological significance of the metabolism of androgens in the central nervous system // J. Steroid Biochem., 1975. V.6. P.999−1006.
  186. Pfaus J.G. Neural mechanisms of sexual motivation and performance in females. In J. Bancroft (Ed.) The Pharmacology of Sexual Function and Dysfunction, Elsevier, Amsterdam. 1995. P.37−48.
  187. Pfaus J.G. Revisiting the concept of sexual motivation // Annu. Rev. Sex Res., 1999. V.10.P.120−156.
  188. Pfaus J.G. Frank A. Beach award homologies of animal and human sexual behaviors//Horm. Behav., 1996. V.30. P. 187−200.
  189. Pfaus J.G., Kippin T.E., Centeno S. Conditioning and sexual behavior: a review // Horm. Behav., 2001. V.40. P.291−321.
  190. Pfaus J.G., Kippin T.E., Coria-Avila G. What can animal models tell us about human sexual response? //Annu. Rev. Sex Res., 2003. V.14. P.1−63.
  191. Pfeiffer C.A., Johnston R.E. Hormonal and behavioral responses of male hamsters to females and female odors: roles of olfaction, the vomeronasal system, and sexual experience // Physiol. Behav., 1994. V.55. P.129−138.
  192. Pohorecky L.A., Ma W., Blakley G.G., Soini H.A., Novotny M.V. Psychosocial stress and volatile compounds in preputial glands of rats // Ann N Y Acad Sci. 2008 V.1148. P.219−222.
  193. Ponzio F., Calderini G., Lomuscio G., Vantini G., Toffano G., Algeri S. Changes in monoamines and their metabolite levels in some brain regions of aged rats // Neurobiol Aging, 3, 1982: P. 23−29.
  194. N.K., Amstislavskaya T.G. 5-HT2A and 5-HT2c receptors differently modulate mouse sexual arousal and the hypothalamo-pituitary-testicular response to the presence of a female. Neuroendocrinology. 2002. 76: 28−34.
  195. Ponzio F, Brunello N, Algeri S Catecholamine synthesis in brain of ageing rats // J Neurochem. 1978, 30: 1617−1620.
  196. Ponzio F, Calderini G, Lomuscio G, Vantini G, Toffano G, Algeri S Changes in monoamines and their metabolite levels in some brain regions of aged rats // Neurobiol Aging. 1982, 3. P.23−29.
  197. Pradhan S.N. Central neurotransmitters and aging // Life Sci. 1980, 26: 16 431 656.
  198. Quinn P.G., Payne A.H. Steroid product-induced, oxygen-mediated damage of microsomal cytochrome P-450 enzymes in Leydig cell cultures. Relationship to desenditization // J. Biol. Chem. 1985. 260. P.2092−2099
  199. Rehman H.U., Masson E.A. Neuroendocrinology of ageing // Age Ageing. 2001 Jul- 30(4). P.279−287.
  200. Rodriguez-Gomez J.A., de la Roza C., Machado A., Cano J. The effect of age on the monoamines of the hypothalamus // Mechanisms of aging and development. 1995. 77. P.185−195.
  201. Rodriguez-Manzo G. Blockade of the establishment of the sexual inhibition resulting from sexual exhaustion by the Coolidge effect // Behav. Brain Res. 1999 Apr- 100(1). P.245−254.
  202. Rodriguez-Manzo G, Fernandez-Guasti A. Participation of the central noradrenergic system in the reestablishment of copulatory behavior of sexually exhausted rats by yohimbine, naloxone, and 8-OH-DPAT // Brain Res Bull. 1995−38(4). P.399−404.
  203. Roney J. R., Mahler S. V., Maestripieri D. Behavioral and hormonal responses of men to brief interaction with women // Evol. Hum. Behav., 2003. V.24. P.365−375.
  204. Roselli C.E., Cross E., Poonyagariyagorn H.K., Stadelman H.L. Role of aromatization in anticipatory and consummatory aspects of sexual behavior in male rats // Horm. Behav, 2003. V.44. P.146−151.
  205. Roubein Y. F, Embree L. J, Jackson D.W. Changes in catecholamine levels in discrete regions of rat brain during aging // Exp Aging Res. 1986. 12. P. 193−196.
  206. Sachs B.D. Airborne aphrodisiac odor from estrous rats. Advances in Chemical Signals in Vertebrates, Ed Johnston et al. Kluwer Academic // Plenum Publishers, New York. 1999. P.333−342.
  207. Salis P. J, Dewsbury D.A. p-chlorophenylalanine facilitates copulatory behaviour in male rats // Nature, 1971. V.232. P.400−401.
  208. Salganik R. I, Solovyova N. A, Dikalov S.I. et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994. 199, P.726−732.
  209. Santiago M, Machado A, Reinoso-Suarez F, Cano J. Changes in biogenic amines in rat hippocampus during development and aging // Life Sci, 42, 1988. P. 2503−2508.
  210. Sato Y, Shibuya A, Adachi H, Kato R, Horita H, Tsukamoto T. Restoration of sexual behavior and dopaminergic neurotransmission by long term exogenous testosterone replacement in aged male rats // J Urol. 1998 Oct. 160(4). P. 1572−1575.
  211. Sheridan P.J. The nucleus interstitialis striae terminalis and the nucleus amygdaloideus medialis: prime targets for androgen in the rat forebrain // Endocrinology. 1979. V.104. P.130−136.
  212. Sheweita S.A., Tilmisany A.M., Al-Sawaf H. Mechanisms of male infertility: role of antioxidants. // Curr Drug Metab. 2005 0ct-6(5):495−501.
  213. Sikka S.C. Relative impact of oxidative stress on male reproductive function // Curr. Med. Chem. 2001, 8. P.851−862.
  214. Simpkins JW, Mueller GP, Huang HH, Meites J Evidence for depressed catecholamine and enhanced serotonin metabolism in aging male rats: possible relation to gonadotropin secretion//Endocrinology. 1977. 100: 1672−1678.
  215. Smith E.R., Stefanick M.L., Clark J.Y., Davidson J.M. Hormones and sexual behavior in relationship to aging in male rats // Horm. Behav. 1992, 26. P. 110−135.
  216. Steel E., Keverne E.B. Effect of female odour on male hamsters mediated by the vomeronasal organ // Physiol. Behav., 1985. V.35. P. 195−200.
  217. Stern J .J. Responses of male rats to sex odors // Physiol. Behav., 1970. V.5. P.519−524.
  218. Strong R., Samorajski T., Gottesfeld Z. Regional mapping of neostriatal neurotransmitter systems as a functions of aging // J Neurochem. 1982, 39.P. 831−836.
  219. Swann J. Gonadal steroids regulate behavioral responses to pheromones by actions on a subdivision of the medial preoptic nucleus // Brain Res., 1997. V.750. P. 189−194.
  220. Swann J., Rahaman F., Bijak T., Fiber J. The main olfactory system mediates pheromone-induced fos expression in the extended amygdala and preoptic area of the male Syrian hamster // Neuroscience, 2001. V.105. P.695−706.
  221. Swaney W.T., Curley J.P., Champagne F.A., Keverne E.B. Genomic imprinting mediates sexual experience-dependent olfactory learning in male mice // Proc Natl Acad Sci USA. 2007 Apr 3−104(14). P:6084−6089.
  222. Takeda T. Senescence-accelerated mouse (SAM): with special reference to age-associated pathologies and their modulation // Nihon Eiseiqaku Zasshi. 1996 Jul., 51(2), P.569−578.
  223. Takeda T. Senescence-accelerated mouse (SAM) with special references to neurodegeneration models, SAMP8 and SAMP 10 mice. Neurochem Res. 2009 Apr-34(4). P. 639−659.
  224. Takahashi R. Anti-aging studies on the senescence accelerated mouse (SAM) strains // Yakugaku Zasshi. 2010 Jan., 130(1), P. l 1−18.
  225. Taylor G, Bardgett M, Farr S, Humphrey W, Womack S, Weiss J. Aging of the brain-testicular axis: reproductive systems of healthy old male rats with or without endocrine stimulation // Proc. Soc. Exp. Biol Med. 1996 Jan-211(1). P.69−75.
  226. Teerds K. J, de Rooij D. G, de Jong F. H, Rommerts F.F. Rapid developement of Leydig cell tumors in a Wistar rat substrain // J. Androl. 1991.V.12, № 3.P. 171−179.
  227. Tirindelli R, Mucignat-Caretta C, Ryba N.J. Molecular aspects of pheromonal communication via the vomeronasal organ of mammals // Trends Neurosci, 1998. V.ll. P.482−486.
  228. Tsai H-W, Chen J. C, Yeh K-Y, Tai M-Y, Tsai Y-F, Male sexual behavior and brain catecholamine levels in middle-aged rats // Chinese Journal of physiology, 2009, 52(4). P.215−222.
  229. Tsai Y. F, Tsai H. W, Tai M.Y. Variztions in the sexual performance in old male rats // Zool.Stud. 1994. 33. P.232−234.
  230. Veening J. G, Coolen L.M. Neural activation following sexual behavior in the male and female rat brain // Behav. Brain Res, 1998. V.92. P.181−193.
  231. Vega-Matuszczyk J, Larsson K. Role of androgen, estrogen and sexual experience on the female rat’s partner preference // Physiol. Behav, 1991. V.50. P.139−142.
  232. Vega-Matuszczyk J, Larsson K, Ericsson E. The selective serotonin reuptake inhibitor fluoxetine reduces sexual motivation in male rats // Pharmacol. Biochem. Behav, 1998. V.60. P.527−532.
  233. Venero JL, De la Roza C, Machado A, Cano J Age-related changes on monoamine turnover in hippocampus of rats // Brain Res. 1993, 631. P.89−96.
  234. Venero JL, Machado A, Cano J Turnover of dopamine and serotonin and their metabolites in the striatum of aged rats // J Neurochem. 1991, 56: 1940−1948.
  235. Verma S., Chhina G.S., Kumar M.V., Singh B. Inhibition of male sexual behavior by serotonin application in the medial preoptic area // Physiol. Behav., 1989. V.46. P.327−330.
  236. Viveros M.P., Fernandez B., Guayerbas N., De la Fuente M. // Behavioral characterization of a mouse model of premature immunosenescence. J. Neuroimmunol. 2001. 114, P. 80−88.
  237. Wang C., Leung A., Sinha-Hikim A.P. Reproductive aging in the male brown-Norway rat: a model for the human // Endocrinology. 1993. Dec. 133(6). P.2773−2781.
  238. Wilson J.D. The role of androgens in male gender role behavior // Endocr. Rev., 1999. V.20. P.726−737.
  239. Woodson J.C., Balleine B.W., Gorski R.A. Sexual experience interacts with steroid exposure to shape the partner preferences of rats // Horm Behav. 2002 Sep-42(2). P: 148−157.
  240. Woolley S.C., O’Malley B., Lydon J., Crews D. Genotype differences in behavior and tyrosine hydroxylase expression between wild-type and progesterone receptor knockout mice // Behav Brain Res. 2006 Feb 28- 167(2). P. 197−204.
  241. Wysocki C.J., Bean N.J., Beauchamp G.K. The mammalian vomeronasal system: Its role in learning and social behaviors. In D. Duvall, D. Muller-Schwarze, and R.M. Silverstein (Eds.) Chemical Signals in Vertebrates 4. pp. 471−485. Plenum. New York. 1986.
  242. Wysocki C.J., Katz Y., Bernhard R. Male vomeronasal organ mediates female-induced testosterone surges in mice // Biol. Reprod., 1983. V.28. P.917−922.
  243. Wysocki C.J., Nyby J., Whitney G., Beauchamp G.K., Katz Y. The vomeronasal organ: primary role in mouse chemosensory gender recognition // Physiol. Behav., 1982. V.29.P.315−327.
  244. Wu D, Gore A.C. Changes in androgen receptor, estrogen receptor alpha, and sexual behavior with aging and testosterone in male rats // Horm Behav. 2010 Jul. 58(2). P.306−316.
  245. Yurek D. M, Hipkens S. B, Hebert M. A, Gash D. M, Gerhardt G.A. Age-related decline in striatal dopamine release and motoric function in brown Norway/Fischer 344 hybrid rats // Brain Res. 1998. 791.P.246−256.
  246. Zirkin B. R, Chen H. Regulation of Leydig cell steroidogenic function during aging // Biol Reprod. 2000 Oct. 63(4). P.977−981.
  247. Zhu M. Y, Wang W. P, Iyo A. H, Ordway G. A, Kim K.S. Age-associated changes in mRNA levels of Phox2, norepinephrine transporter and dopamine beta-hydroxylase in the locus coeruleus and adrenal glands of rats // J Neurochem. 2005 Aug. 94(3). P.828−838.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!