Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние экстракта из отжима калины Саржента и гребней винограда амурского на физиологические и структурные характеристики эритроцитов

Диссертация: Влияние экстракта из отжима калины Саржента и гребней винограда амурского на физиологические и структурные характеристики эритроцитов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Объектом экспериментальных исследований явились белые крысы линии Вистар, выведенные в питомнике лабораторных животных РАМН «Столбовая» (г. Чехов, Московская обл.). Для воспроизведения экспериментальных моделей использованы половозрелые самцы средней массой 175±5,5 г. Животные содержались в стандартных условиях вивария при естественном освещении и постоянной температуре 20−22°С согласно нормам… Читать ещё >

Влияние экстракта из отжима калины Саржента и гребней винограда амурского на физиологические и структурные характеристики эритроцитов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ВВЕДЕНИЕ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Растительные полифенолы — источники фармакологических препаратов
      • 1. 1. 1. Фенольные соединения с одним ароматическим кольцом
      • 1. 1. 2. Фенольные соединения с двумя ароматическими кольцами
      • 1. 1. 3. Полимерные фенольные соединения
    • 1. 2. Антиоксидантное и антирадикальное действие флавоноидов
    • 1. 3. Фармакологические аспекты действия флавоноидов 31−37 на организм
  • СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Влияние экстракта из отжима калины на физиологические и структурные характеристики эритроцитов крыс при стрессе (вертикальная фиксация)
    • 3. 2. Влияние экстракта из отжима калины на физиологические и структурные характеристики эритроцитов крыс при алкогольной интоксикации
    • 3. 3. Влияние экстракта из гребней винограда на физиологические и структурные характеристики эритроцитов крыс при гиперхолестериновом рационе
  • ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Актуальность проблемы. Важнейшими аспектами биологического действия растительных полифенольных соединений являются антиокислительные свойства (Хавинсон и др., 2003; Костюк, Потапович, 2004; Меныцикова и др., 2006; Salja et al., 1995; Rice-Evans, Miller, 1996; de Groot, Rauen, 1998; Vasiljeva et al., 1998), способность выступать ловушками свободных радикалов различного типа (van Acker et al., 1998; Packer et al., 1999) и взаимодействие с мембранами, что приводит к изменению их структурных характеристик (Александрова, 2005; Huh et al., 1996; Arora et al., 2000; Hulbert, 2003). Использование эритроцитов как модели для изучения мембранопротекторных свойств растительных препаратов, не имеет такого широкого распространения в модельных экспериментах, как, например, гепатоцитов, микросомальных мембран, эпителиальных клеток кишечника, эндотелиоцитов, тромбоцитов, нейтрофилов и других клеток (Заводник и др., 2006; Стрелкова и др., 2007; Shimoi et al., 1994, 1996; Kuo et al., 1998; Kaneko et al., 1999; Van Acker et al., 2000). Между тем, их изучение представляет интерес для расширения представлений о механизмах мембранозащитного действия растительных полифенолов и разработки на их основе лекарственных препаратов и биологически активных добавок с мембранопротекторными свойствами, а также для проверки этих свойств при проведении клинических испытаний.

На сегодняшний день лекарственные средства биофлавоноидной природы являются препаратами-лидерами в терапии заболеваний печени. Наиболее изучены препараты, содержащие в качестве основного действующего вещества группу полифенольных флавоноидных соединенийSilimarin, выделенных из экстрактов плодов расторопши пятнистой (Silybum marianum G.). Действие силимарина обусловлено стабилизацией клеточных мембран и включением в них фосфолипидов (Новиков, Климкина, 2005). Однако препараты, содержащие силимарин, зарубежного производства, поэтому очевидна актуальность и необходимость поиска и изучения новых источников сырья, в частности отходов от переработки растительных, дикорастущих видов Дальневосточной тайги и разработки новых эффективных отечественных мембранопротекторов. В частности, на Дальнем Востоке интенсивно изучается препарат «Максар», полученный из маакии Амурской (Maakia amitrensis Rupr.) (Федореев и др., 2004), экстракты из отходов от переработки (отжим, включающий гребни, кожицу, косточки) калины Саржента (Viburnum Sargenta Koehne), гребней винограда Амурского (Vitis amnrensis), гребней лимонника Китайского (Schizandra chinensis) (Кушнерова, Спрыгин, Фоменко, 1995;2006) в плане восстановления функции печени в условиях экспериментальных токсических гепатитов у животных. Системного исследования мембранозащитных свойств экстракта из отжима калины, включая выделение из него биологически активной субстанции в виде комплекса олигомертных проантоцианидинов (КОПЦ), а также экстракта из гребней винограда до сих пор не проводилось.

Как известно, действие на организм повреждающих факторов (физический и химический стресс) сопровождается нарушением физиологических свойств и существенным сдвигом в липидной составляющей мембран эритроцитов (Молотов-Лучанский и др., 2005; Лесникова, 2006; Кашапова и др., 2007; Lindi et al., 1998; Thompson, 1999). Также показано, что экстракты из отжима калины и гребней винограда, комплексы олигомерных проантоцианидинов способствуют стабилизации мембран лизосом и гепатоцитов в условиях интоксикации четыреххлористым углеродом и этиловым спиртом (Спрыгин и др., 2002, 2004; 2006; Фоменко и др., 2003). Эти данные подтверждают перспективность исследования экстракта из отжима калины, гребней винограда и комплекса олигомерных проантоцианидинов как мембранопротекторных средств.

В настоящем исследовании анализируется действие мембраноповреждающих факторов (стресс-вертикальная фиксация крыс за дорзальную шейную складку, интоксикация этиловым спиртом и гиперхолестериновый рацион) на физиологические характеристики, систему показателей «перекисное окисление липидов-антиоксидантная защита» и липидную составляющую мембран эритроцитов, а также демонстрируется возможность коррекции наблюдаемых отклонений с помощью водно-спиртового экстракта из отжима калины и гребней винограда, а также комплекса олигомерных проантоцианидинов, выделенного из экстракта отжима калины.

Цель работы — изучить влияние экстрактов из отжима калины и гребней винограда, а также комплекса олигомерных проантоцианидинов из экстракта отжима калины в условиях воздействия мембраноповреждающих факторов.

Задачи:

1. Изучить физиологические характеристики, систему показателей «перекисное окисление липидов-антиоксидантная защита» и липидный состав мембран эритроцитов крыс при действии мембраноповреждающих факторов (стресс-вертикальная фиксация за дорзальную шейную складку, интоксикация этиловым спиртом, гиперхолестериновый рацион).

2. Сравнить мембранопротекторные свойства экстракта из отжима калины и элеутерококка в условиях экспериментальной модели стресса.

3. Сравнить мембранопротекторные эффекты экстракта из отжима калины и легалона, комплекса олигомерных проантоцианидинов и пикногенола в условиях экспериментальной модели интоксикации этиловым спиртом.

4. Оценить мембранопротекторные свойства экстракта из гребней винограда в условиях экспериментальной модели гиперхолестеринового рациона.

Научная новизна. Впервые выполнено системное исследование мембранопротекторных свойств водно-спиртовых экстрактов из отжима калины, гребней винограда и комплекса олигомерных проантоцианидинов, выделенного из экстракта отжима калины.

Получено экспериментальное подтверждение наличия у экстрактов из отжима калины, гребней винограда и комплекса олигомерных проантоцианидинов мембранозащитных свойств.

При сопоставлении эффектов экстракта из отжима калины и известного стресс-протектора экстракта элеутерококка в условиях экспериментальной модели стресс-вертикальной фиксации крыс за дорзальную шейную складку у первого обнаружены более выраженные мембранозащитные свойства по способности увеличивать в мембране эритроцитов эфиры жирных кислот и снижать лизофосфатидилхолин и фосфатидную кислоту, что предполагает более активное влияние на биосинтез фосфолипидов.

Установлено, что в период депривации после интоксикации этиловым спиртом экстракт из отжима калины превосходит эталонный полифенольный препарат легалон по способности нормализовать размерные характеристики эритроцитов, повышать концентрацию восстановленного глутатиона, снижать холестерин и сфингомиелин, что обеспечивало увеличение порога осмотической устойчивости эритроцитов к гемолизирующему агенту.

Впервые обнаружено, что комплекс олигомерных проантоцианидинов и эталонный препарат пикногенол в равной степени обеспечивали восстановление мембран эритроцитов крыс после токсического действия этилового спирта.

Получены новые данные о том, что в условиях гиперхолестеринового рациона экстракт из гребней винограда усиливает этерификацию холестерина, чем снижает микровязкость липидной составляющей мембран эритроцитов и восстанавливает их осмотическую устойчивость.

Практическая значимость работы. Исследование расширяет недостаточно разработанные в науке представления о мембранопротексторных свойствах растительных полифенолов и, в частности, олигомерных проантоцианидинов. Материал о мембранозащитном действии экстрактов из отжима калины, гребней винограда и комплекса олигомерных проантоцианидинов в отношении изменений показателей системы «перекисное окисление липидов-антиоксидантная защита», физиологических и структурных характеристик эритроцитов при действии повреждающих факторов может быть использован при разработке медико-биологической документации на применение этих средств в качестве биологически активной добавки как в нативном виде, так и в составе продуктов питания. Экстракт из отжима калины используется при производстве функционального пищевого продукта — мармелада «Биолад-калина» (ТУ 9128−152−2 067 936−2006).

Положения, выносимые на защиту:

1. Экстракт из отжима калины по способности препятствовать стресс-индуцированным отклонениям показателей физиологических и структурных характеристик мембран эритроцитов сопоставим со стресс-протекторным препаратом экстрактом элеутерококка.

2. Экстракт из отжима калины в период депривации после интоксикации животных этиловым спиртом по способности восстанавливать липидный состав и физиологические характеристики эритроцитов сопоставим с известным полифенольным препаратом легалон, а комплекс олигомерных проантоцианидинов сопоставим с известным препаратом пикногенол.

3. Экстракт из гребней винограда обладает выраженным гипохолестеринемическим и мембранопротекторным эффектом в условиях гиперхолестеринового рациона.

Апробация работы. Основные результаты работы представлены, доложены и обсуждены на Всероссийской научной молодежной конференции «Биологически активные добавки и здоровое питание» (Улан-Уде, 2001), Н-й и Ш-й Тихоокеанских научно-практических конференциях студентов и молодых ученых «Актуальные проблемы экспериментальной, профилактической и клинической медицины» (Владивосток, 2001, 2002), 9-й Пущинской школы конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2005), Третьем съезде общества биотехнологов России им.

Ю.А.Овчинникова (Москва, 2005), III Международном Тихоокеанском конгрессе по традиционной медицине (Владивосток, Сеул 2006).

Работа выполнена при поддержке гранта «Старт» № 7371.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 научных работ, в том числе 2 статьи в рецензируемых журналах.

ВЫВОДЫ.

1. Экстракты из отжима калины, гребней винограда и комплекс олигомерных проантоцианидинов, выделенный из экстракта отжима калины, проявляют мембранопротекторные свойства в условиях воздействия мембраноповреждающих факторов как у животных, так и у человека.

2. Экстракт из отжима калины и комплекс олигомерных проантоцианидинов нормализуют показатели системы «перекисное окисление липидов-антиоксидантная защита» за счет собственной антирадикальной и антиоксидантной активности, регулируют реакции этерификации холестерина и нормализуют соотношение фосфолипидных фракций, что обусловливает восстановление размерных характеристик эритроцитов (средний диаметр и средний объем эритроцитов), повышение их эластических свойств и расширение границ осмотической устойчивости.

3. Экстракт из отжима калины в условиях стресс-вертикальной фиксации животных превосходит экстракт элеутерококка по способности увеличивать в мембране эритроцитов эфиры жирных кислот и снижать лизофосфатидилхолин и фосфатидную кислоту, что предполагает более активное влияние на биосинтез фосфолипидов.

4. Экстракт из отжима калины в период депривации после интоксикации этиловым спиртом превосходит полифенольный препарат легалон по способности нормализовать размерные характеристики эритроцитов, повышать концентрацию восстановленного глутатиона, снижать холестерин и сфингомиелин, что обеспечивало увеличение порога осмотической устойчивости эритроцитов к гемолизирующему агенту. Комплекс олигомерных проантоцианидинов и пикногенол в равной степени обеспечивают восстановление мембран эритроцитов крыс после токсического действия этилового спирта.

5. Экстракт из гребней винограда обладает мембранопротекторным эффектом в условиях гиперхолестеринового рациона, усиливая этерификацию холестерина и выведение его из мембран, чем нормализует соотношение липидных компонентов и восстанавливает осмотическую устойчивость.

Заключение

.

Анализ работ, посвященных химической характеристике полифенольных соединений, обзор известных растительных препаратов, а также изучение механизмов их антиоксидантного и антирадикального действия позволяет сделать вывод о том, что универсальная активность флавоноидов определяется универсальностью синдрома пероксидации в генезе практически всех патологий. В обсужденных работах показано, что флавоноиды активны в отношении различных активных форм кислорода, перекисей липидов, пероксил-радикалов, гидроксил-радикалов, радикалов оксида азота, синглетного кислорода, супероксиданион-радикала. Одним из существенных факторов проявления ими антиоксидантной активности считается наличие сопряжения между кольцами С и В. Антирадикальная активность флавоноидов рассматривается как комбинация реакций между свободными радикалами, ионами металлов и фенольными гидроксильными группами. В реакции инактивации свободных радикалов флавоноиды являются донорами водорода. Перспективность использования флавоноидов растительного происхождения определяется их выраженным гепатозащитным эффектом. Однако изучению возможности применения полифенольных комплексов из дикоросов Уссурийской тайги в качестве мембранопротекторов посвящены единичные работы. Это и определило направление, которое будет отражено в данном диссертационном исследовании.

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Объекты исследования.

Объектом экспериментальных исследований явились белые крысы линии Вистар, выведенные в питомнике лабораторных животных РАМН «Столбовая» (г. Чехов, Московская обл.). Для воспроизведения экспериментальных моделей использованы половозрелые самцы средней массой 175±5,5 г. Животные содержались в стандартных условиях вивария при естественном освещении и постоянной температуре 20−22°С согласно нормам содержания лабораторных животных (Западнюк и др., 1974) и с соблюдением всех правил и международных рекомендаций Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых для экспериментов или в иных научных целях (Международные рекомендации Европейской конвенции по защите позвоночных животных. Страсбург, 1986). Крыс ежедневно осматривали, фиксировали изменения весоростовых параметров. За время экспериментальных исследований не было случаев падежа крыс. По завершении каждого эксперимента животных выводили из него с использованием эфирного наркоза и проводили взятие крови из шейной вены.

Материалы исследований.

Экстракт из отжима калины Саржента (ось соцветия, косточки и кожица ягод после отделения сока) (Viburnum Sargenta Koehne). Запатентован как гепатопротектор (патент № 2 177 330 от 18.08.2000 г.) и как экстракт калины, обладающий антирадикальной активностью (патент № 2 220 614 приоритет от 20.09.2001 г.). Экстракт имеет товарный знак.

Калифен" (свидетельство на товарный знак RU № 228 327 и En № 225 516 от 09.10.2000 г). Количество общих полифенолов составляло 32,8 г/л.

Экстракт из гребней винограда Амурского (Vitis amurensis) (патент № 1 473 139 приоритет от 15.12.1998 г). Экстракт имеет товарный знак «Диприм» (свидетельство № 236 689, приоритет от 24.05.2001). Количество общих полифенолов составляло 32,4 г/л.

Экстракты были приготовлены методом реперколяции на 40%-ном этиловом спирте (1:1). Выход экстракта составлял 1 л из 1 кг сухого сырья. Химический состав экстракта из гребней винограда был исследован Л. А. Муджири (1987). Химический состав экстракта из отжима калины был исследован В. Г. Спрыгиным и Н. Ф. Кушнеровой (2002, 2004). Экстракты представляют собой жидкости темно-коричневого цвета со специфическим запахом и сладковато-кисловато-терпким вкусом. Имеют сложный композиционный состав различных классов веществ, в котором по количеству преобладают лейкоантоцианы, катехины и их полимерные формы, флавонолы, органические кислоты (фумаровая, аскорбиновая, глицериновая, оксалатная, галактуроновая и др.), свободные аминокислоты (гистилин, аргинин, аспарагиновая кислота, треонин, серин, глутаминовая кислота, глицин, цистеин, метионин, изолейцин, тирозин и др.), сахара (сахароза, рафиноза) и ряд других органических соединений. Основные представители флавоноидов составляли 60% от сухого веса экстрактов, которые и определяют их биологическую активность.

Экстракты обладают низкой токсичностью — ЛД50 составляет 36,5 мл/кг (Спрыгин и др., 2002) и безопасностью при длительных введениях (Кушнерова, Спрыгин, 2001).

Комплекс олигомерных проантоцианидинов (КОПЦ) был выделен из экстракта отжима калины и запатентован как биологически активная добавка к пище (варианты) (патент № 2 199 249 от 20.09.01 г.).

Использованные в работе экстракты и КОПЦ были любезно предоставлены лабораторией биохимии Тихоокеанского океанологического института им. В. И. Ильичева ДВО РАН.

Предварительно освобожденные от спирта экстракты (путем упаривания в вакууме) животным вводили в виде водных растворов внутрижелудочно (по 0,4 мл/кг) в дозе, соответствующей 100 мг общих полифенолов на кг массы тела животного. Доза в 100 мг/кг соответствует известной терапевтической дозе для полифенольных гепатопротекторов (Венгеровский и др., 1999).

Выбор дозы для КОПЦ (100 мг/кг) в экспериментах на животных осуществляли, основываясь на литературных данных (Kropacova, et al., 1998; Ray etal., 2001).

В качестве препаратов сравнения использовали «Легалон» (MADAUS AG, Германия), содержащий в качестве активного начала комплекс флавоноидов из экстракта плодов расторопши пятнистой (Silybum marianum), комплекс олигомерных проантоцианидинов «Пикногенол» (Stryka Botanicals, Switzerland), выделенный из коры морской сосны (Pinus maritima), аптечный экстракт элеутерококка.

Биологическим материалом для исследования явились эритроциты крови животных.

Получение биоматериала.

Кровь для исследований собирали из шейной вены животных в пробирку с 1% раствором гепарина. Гепарин готовили из расчета 0,02 мл раствора на 1 мл крови. Пробы брали утром натощак.

Выделение эритроцитов. Гепаринизированную кровь центрифугировали 10 мин при 3000 g. Плазму удаляли, а эритроциты отмывали 0,9% раствором NaCl, хорошо перемешивая, осаждали центрифугированием, супернатант удаляли (Новгородцева и др., 2003).

Повреждающие факторы. Острый стресс. Острый стресс моделировали вертикальной фиксацией животных за дорзальную шейную складку на 22 часа (Добряков, 1978).

Интоксикация этанолом. Животным в течение 7 дней внутрибрюшинно вводили 33%-ный этанол в дозе 7,5 мл/кг 2 раза в сутки. Использована схема эксперимента, разработанная А. Оа]ёоБ е! а1. (1972).

Экспериментальная гиперхолестеринемия. Экспериментальную гиперхолестеринемию вызывали в течение 6 недель введением в рацион животных повышенного содержания насыщенных жиров (растительное сало 25% от веса рациона), включающих 2,5% холестерина (Мещерская и др. 1966).

Физиологические характеристики эритроцитов. В мазках крови, окрашенных азур-эозиновой смесью, с помощью окуляр-микрометра определяли диаметр эритроцитов (мкм). Средний объем эритроцита (СОЭ) вычисляли по формуле: СОЭ = с!3×0,2 (мкм3), где с! — средний диаметр эритроцита (Гольдберг и др., 1973). Осмотическую резистентность эритроцитов измеряли по методу-, предложенному Б. Л. Эндрю (1972).

Биохимические методы характеристики системы «перекисное окисление липидов — антиоксидантная защита». Состояние антиоксидантной системы оценивали по величине антирадикальной активности крови (ЯоиасЬ е! а1., 1997), активности супероксиддисмутазы (КФ 1.15.1.1) (Рао1еИу е! а1., 1986), уровня восстановленного глутатиона (Новгородцева и др., 2003), малонового диальдегида (Гончаренко, Латинова, 1985).

Биохимические методы определения липидов. Экстракты общих липидов из эритроцитов готовили по методу I. Ро1сЬ е! а1. (1957). В полученных экстрактах с помощью хроматографических методов определяли количественное содержание фракций фосфолипидов и нейтральных липидов.

Измерение концентрации липидов в хлороформных растворах проводили методом З. У. Рапёе с соавторами (1963) в модификации Э.Я.

Костецкого и Н. Ф. Кушнеровой (1978). Аликвоту липидного экстракта упаривали досуха, добавляли 2 мл бихроматного реагента, приготовленного растворением 2,3 г бихромата калия в 14 мл дистиллированной воды и последующим доведением полученного раствора до объема в 1л концентрированной серной кислотой. Пробы нагревали на кипящей водяной бане в течение 15 минут. После охлаждения в каждую пробу добавляли по 4,5 мл дистиллированной воды и после тщательного перемешивания замеряли оптическую плотность на спектрофотометре при длине волны 440 нм. Количество общих липидов расчитывали по калибровочной кривой, построенной по высушенной до постоянного веса аликвоте липидного экстракта.

Определение общих фосфолипидов в экстрактах проводили по методу В. Е. Васьковского и соавт. (Vaskovsky et al., 1975). К упаренной досуха аликвоте липидного экстракта добавляли 0,2 мл 72-%-ной хлорной кислоты и сжигали в алюминиевом блоке при температуре 180−200°С в течение 20 мин. Остаток пробы охлаждали, добавляли 4,8 мл реактива Б. После перемешивания и последующего нагревания на кипящей водяной бане в течение 15 мин. пробу вновь охлаждали и затем измеряли ее оптическую плотность на спектрофотометре при длине волны 815 нм. В качестве стандарта для построения калибровочной кривой брали раствор однозамещенного фосфата калия. Пересчет липидного фосфора в соответствующее количество фосфолипидов производили с помощью универсального коэффициента пересчета, равного 25 (Покровский, 1969). Окончательный результат выражали в % от общих липидов.

Микротонкослойную хроматографию липидов осуществляли по методу В. И. Светашева и В. Е. Васьковского (Svetachev, Vaskovsky, 1972). В качестве сорбента использовали отечественный селикагель марки «КСК». Суспензию селикагеля получали путем осаждения частиц в определенном интервале времени. Осадки силикагеля, полученные в промежутке времени от 40 до 120 минут седиментации, собирали и хранили в банке с притертой пробкой под слоем воды. Хроматографическое распределение липидов проводили на стеклянных пластинках (6×6 см). Количество силикагеля, необходимого для нанесения на пластинку, определяли взвешиванием высушенной при 120 °C суспензии. Силикагель тщательно взбалтывали, добавляли тонко растертый гипс — 10% к весу сухого силикагеля. Полученную смесь окончательно перемешивали на магнитной мешалке. Затем при постоянном перемешивании пипеткой отбирали 1 мл готовой смеси (200−220 мг сорбента) и осторожно наносили тонким слоем на предварительно обезжиренную и просушенную пластинку. Сорбент равномерно распределяли по всей поверхности пластинки и оставляли на воздухе до полного высыхания. Непосредственно перед применением пластинки активировали в сушильном шкафу при 120 °C в течение 15 минут.

Хроматографическое распределение нейтральных липидов проводили методом одномерной тонкослойной хроматографии на силикагеле в системе растворителей гексан: серный эфир: уксусная кислота в соотношении 90:10:1 об./об. Идентификацию пятен липидов проводили с помощью очищенных препаратов отечественного производства. Количественное определение фракций нейтральных липидов выполняли по методу 1.8.Атеп1а (1964). После хроматографирования стандарты и пробы обнаруживали парами иода. Идентифицированные фракции (триглицериды, холестерин, свободные жирные кислоты, эфйры холестерина и эфиры жирных кислот) с пластинок специальным шпателем переносили в пробирки, добавляли в них по 2 мл бихроматного реактива и нагревали на кипящей водяной бане 15 минут. В охлажденные пробы добавляли по 4 мл дистиллированной воды, перемешивали и центрифугировали при 3000 об./мин в течение 10 минут. Оптическую плотность измеряли на спектрофотометре при длине волны 440 нм. Результаты выражали в % от суммы всех фракций.

Для разделения фосфолипидных фракций использовали метод двумерной хроматографии. Использовали системы растворителей, предложенные в. Кошег с соавторами (1967): в первом направлении хлороформ: метанол: аммиак (28%-ный) (65:25:5 или 65:35:5 об/об), во втором — хлороформ: ацетон: метанол: ледяная уксусная кислота: вода (30:40:10:10:5 или 50:20:10:10:5 об/об).

Для идентификации фосфолипидных фракций применяли очищенные препараты и специфические свидетели. Для обнаружения холинсодержащих фосфолипидов (фосфатидилхолина, лизофосфатадилхолина, сфингомиелина) использовали реактив Драгендорфа, приготовленный по методу H. Wagner et al. (1961) — липиды проявлялись в виде оранжевых пятен на желтом фоне. Для обнаружения фосфолипидов, содержащих аминогруппу фосфатидилэтаноламин, лизофосфатидилэтаноламин, фосфатидилсерин), пластинки опрыскивали 5%-ным раствором нингидрина в ацетоне (Rouser et al., 1967) с последующим нагреванием в течение 2−3 минут над парами воды. Фосфолипиды, содержащие гидроксильную группу (фосфатидилинозит), обнаруживали с помощью периодатного реактива Шиффа (Кейтс, 1975) — пятна липидов имели розово-сиреневый цвет.

Для проявления всех фосфолипидных фракций применяли молибдатный реактив, приготовленный по методу В. Е. Васьковского с соавторами (Vaskovsky et al., 1975) и реагент на основе малахитового зеленого (Vaskovsky, Latishev, 1975). При этом, липиды проявлялись в виде синих и зеленых пятен на белом фоне.

Для количественного определения отдельных фракций фосфолипидов, пластинку опрыскивали 10%-ным раствором серной кислоты в метаноле с последующим нагреванием ее при 180 °C в течение 1−2 минут. Зоны, содержащие липиды, микрошпателем осторожно переносили в жаростойкие пробирки (80×100 мм) и добавляли в них по 0,07 мл 57%-ной хлорной кислоты. Для контрольных проб отбирали силикагель в зонах, не содержащих липиды. Пробирки с пробами помещали в алюминиевый блок. После 40-минутного сжигания в охлажденные пробирки добавляли по 0,43 мл реактива Б, приготовленного из реактива А, тщательно перемешивали и нагревали на кипящей водяной бане 15 минут. Для осаждения силикагеля охлажденные пробы 10 минут центрифугировали при 2000 об/мин. Измерение оптической плотности проводили на спектрофотометре при длине волны 815 нм. Результаты выражали в % от суммы всех фракций.

Реактивы для анализа фосфолипидов (А, Б и реагент на основе малахитового зеленого) готовили описанным ниже способом.

Реактив, А (исходный реактив): 10 г молибденовокислого натрия растворяли в 60 мл 4Н соляной кислоты, нагревали на кипящей водяной бане в течение 20 минут, охлаждали, добавляли 14 мл концентрированной серной кислоты. Полученный объем раствора доводили дистиллированной водой до 100 мл. Реактив устойчив при комнатной температуре в посуде из темного стекла в течение нескольких месяцев.

Реактив Б: к 5,5 мл реактива, А добавляли 26 мл 1Н серной кислоты и доводили объем раствора до 100 мл дистиллированной водой.

Реагент на основе малахитового зеленого: 5 г молибдата натрия растворяли в 100 мл 2Н солянрй кислоты и смешивали с раствором 1 г малахитового зеленого в 100 мл 2Н соляной кислоты. Объем раствора доводили до 500 мл дистиллированной водой, выдерживали 2−3 часа при комнатной температуре, фильтровали через бумажный фильтр. Пластинку после хроматографирования опрыскивали 57%-ной хлорной кислотой и нагревали на электроплитке (под тягой) до прекращения выделения паров кислоты. Охлажденную пластинку опрыскивали готовым реагентом. Фосфорсодержащие липиды окрашивались ярко-зеленым цветом.

В экспериментальных исследованиях было использовано 140 экспериментальных животных (крыс). Выполнено 420 физиологических исследований и 2680 биохимических исследований.

Экспериментальные данные обрабатывали методами вариационной статистики с использованием t-критерия Стьюдента. Для проведения расчетов применяли программу «STATISTICA for Windows, release 5.1».

Показать весь текст

Список литературы

  1. .И., Оксенгендлер Г. И. Человек и противоокислительные вещества. JL: Наука, 1985. — 230 с.
  2. А.Е. Антигипоксическая и механизме действия некоторых синтетических и природных соединений // Экспер. клин, фармакол. 2005. Т. 68, № 5. С. 72−78.
  3. Т.И., Комарова E.H., Юсупов М. С., Короткова Е. И. Антиоксидантная активность коры калины обыкновенной (Viburnum opulus L.) // Хим.-фарм. журн. 2004. Т. 38, № 10. С. 26−28.
  4. Ю.Г., Фахретдинова Е. Р., Спирихин Л. В., Насибуллин P.C. О механизме взаимодействия некоторых флавоноидов с фосфатидилхолином клеточных мембран //Хим.-фарм. журн. 2007. Т. 41, № 7. С. 12−14.
  5. С.А., Казарян П. А., Акопов С. Э., Саарян A.B. Изменения структурно-функциональных свойств мембран эритроцитов под влиянием ионизирующей радиации // Радиац. биол. радиоэкол. 1995. Т. 35, Вып. 3. С. 364−369.
  6. В.А. Растительные фенолы и здоровье человека. М.: Наука, 1984.- 160 с.
  7. В.А., Брехман И. И., Голотин В. Г., Кудряшов Ю. Б. Перекисное окисление и стресс. СПб.: Наука, 1992. — 148 с.
  8. В.А., Хомчук Ю. В. Механизм антистрессового ипротиволучевого действия растительных фенольных соединений //1
  9. Укр. биохим. журн. 1998. Т. 70, № 6. С. 13−23.
  10. Е.А. Влияние масла расторопши и легалона на перекисное окисление липидов и антиоксидантные системы печени крыс при отравлении четыреххлористым углеродом // Экспер. клин, фармакол. 2001. Т. 64, № 4. С. 53−55.
  11. А. Д., Моженок Т. П. Неспецифический адаптационный синдром клеточной системы. JL: Наука, 1987. — 231 с.
  12. И.И. Элеутерококк. Л.: Наука, 1968. 186 с.
  13. Н.Д., Герасимова O.A., Сахарова Т. С., Яковлева Л. В. Природные антиоксиданты — как гепатопротекторы // Экспер. клин, фармакол. 1999. Т. 62, № 2. С. 64−67.
  14. А.И., Батурина Н. О., Чучалин B.C., Саратиков A.C. Влияние гепатопротекторов, содержащих полифенолы, на течение экспериментального хронического гепатита // Хим.- фарм. журн. 1996. № 3.С. 3−4.
  15. А.И., Маркова И. В., Саратиков A.C. Доклиническое изучение гепатозащитных средств // Ведомости фарм. комитета. 1999. № 2. С.9−12.
  16. А.И., Головина Е. Л., Чучалин B.C., Саратиков Л. С. Влияние энтеросорбентов на терапевтические эффекты гепатопротектора Максара при экспериментальном токсическом гепатите // Хим.-фарм. журн. 2000. Т. 34, № 5. С. 9−11.
  17. А.И., Головина Е. Л., Чучалин B.C., Саратиков Л. С. Влияние энтеросорбентов на метаболические эффекты гепатопротектора Лохеина при экспериментальном токсическом гепатите //Вопр. биол. мед. и фарм. хим. 2000. № 4. С. 40−43.
  18. А.И., Суходоло И. В., Чучалин B.C. и др. Гепатопротекторы оказывают лечебное действие при экспериментальном синдроме Рейе // Экспер. клин, фармакол. 2000. Т. 63, № 5. С. 68−71.
  19. А.И., Хазанов В. А. Влияние силимарина и его комбинации с янтарной кислотой на биоэнергетику головного мозга при экспериментальном ингибировании ß--окисления жирных кислот // Экспер. клин, фармакол. 2007. Т. 70, № 2. С. 51−55.
  20. Ю.А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. — 259 с.
  21. Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Сор. образоват. журн. 2000. № 12. С. 13−19.
  22. Р.Г. Очерк основ биомеханики. М.: Мир. 1988. — 128 с.
  23. Д.И., Гольдберг Е. Д., Шубин Н. Г. Гематология животных. -Томск, 1973.- 100 с.
  24. E.H., Кудряшов Ю. Б. Химическая защита от лучевого поражения. М.: Изд-во МГУ. 1985. — 249 с.
  25. М.С., Латинова A.M. Метод оценки перекисного окисления липидов//Лаб. дело. 1985. № 1. С. 60−61.
  26. А.Д. Гепатопртекторный механизм действия флавоноидов // Фармация. 1990. Т. 39, № 3. С. 75−78.
  27. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений / В 2-х т. Т.1. Пер. с англ. М.: Мир, 1986. — 393 с.
  28. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений / В 2-х т. Т.2. Пер. с англ. М.: Мир, 1986. — 312 с.
  29. Ю.И., Хасина Э. И., Спасов A.A. Стресс-протекторное действие хаурантина // Валеология: диагностика, средства и практика обеспечения здоровья. Владивосток: Дальнаука, 1996. Вып. 3. — 212 с.
  30. Е.Г. Изучение гепатозащитного действия природных флавоноидных соединений // Экспер. клин, фармакол. 2004. Т. 67, № 6. С. 41−44.
  31. Л.Б., Шкодич А. П., Егоров А. И. и др. Исследование антиоксидантных свойств изофлавона генистеин-8с-гликозида in vitro и in vivo // Экспер. клин, фармакол. 2006. Т. 69, № 1. С. 48−52.
  32. И.П., Западнюк В. И., Захария Е. Е. Лабораторные животные Разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Вища школа, 1974. — 304 с.
  33. М.Н. Основы биохимии фенольных соединений. М.: Высшая школа, 1974. — 214 с.
  34. М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функция в растениях. М.: Наука, 1993. — 272 с.
  35. М.Н. Фенольные соединения и их роль в жизни растения: 56-е Тимирязевское чтение. М.: Наука, 1996. — 45 с.
  36. Н.К., Ланкин В. З., Меныцикова Е. Б. Окислительный стресс. Биохимический и патофизиологический аспекты. М.: Наука / Интерпериодика, 2001. — 34.3 с.
  37. В.В. Деформируемость эритроцитов: Физиологические аспекты // Успехи физиол. наук. 2001. Т.32, № 3. С. 66−78.
  38. Ф.Х., Хакимов 3.3. Сравнительное изучение эффективности некоторых фармакологических средств в регуляции уровня НАДФН в гепатоцитах при остром поражении // Экспер. клин, фармакол. 1999. Т. 62, № 3. С. 50−52.
  39. Л.И. Состав и функции крови // Сор. образоват. журн. 2001. № 2. С. 11−19.
  40. О.Ю., Костин Я. В. Эффективность галстены при повреждении печени противотуберкулезными средствами // Экспер. клин, фармакол. 2002. Т. 65, № 2. С. 64−66.
  41. О.Ю., Костин Я. В., Тишкин B.C. Гепатопротекторное действие препаратов растительного происхождения // Экспер. клин, фармакол. 2002. Т. 65, № 1. С. 41−43.
  42. P.A., Хасимов Э. Н., Еникеева Д. А. Натурные исследования влияния химического загрязнения воздуха на форменные элементы крови кроликов // Гиг. и сан. 2007. № 2. С. 72−73.
  43. М. Техника липидологии. М.: Мир. 1975. — 221 с.
  44. Э.П., Шалашвили К. Г., Корсантия Б. М. и др. Фенольные соединения листьев Rhododendron ungernii и их терапевтическое действие//Хим.-фарм. журн. 2007. Т. 41, № 1. С. 10−13.
  45. C.B. Структурная лабильность биологических мембран. -Минск: Наука и техника. 1987. 240 с.
  46. Э.Я., Кушнерова Н. Ф. Микрометод определения содержания общих липидов, общего холестерина и липидного фосфора в липидном экстракте из плазмы крови // Рац. предложение № 418/60 от 16.11.78 г., утвержденное БРИЗ ВГМИ.
  47. В.А., Потапович А. И., Терещенко С. М., Афанасьев И. Б. Антиокислительная активность флавоноидов в различных системах перекисного окисления липидов // Биохимия. 1988. Т. 53, Вып. 8. С. 1365−1368.
  48. В.А., Потапович A.A. Биорадикалы и биоантиоксиданты. -Минск: БГУ, 2004. 174 с.
  49. С.Г., Ефимова JT.A., Вымятнина З. К., Зуева Е. П. Влияние экстракта корня цикория на морфофункциональное состояние печени у крыс с токсическим гепатитом // Экспер. клин, фармакол. 2006. Т. 69, № 6. С. 34−36.
  50. В.А. Расторопша пятнистая источник лекарственных средств (обзор) // Хим.-фарм. журн. 2003. Т. 37, № 4. С. 27−41.
  51. Н.Ф., Фоменко С. Е., Положенцева М. И., Буланов А. Е. Влияние природных комплексов биологически активных веществ на процессы восстановления функции печени после алкогольной интоксикации // Вопр. мед. хим. 1995. Т. 41, № 2. С. 20−23.
  52. Н.Ф., Спрыгин В. Г. Влияние комплексного полифенольного препарата Каприм на биохимические показатели печени крыс в хроническом эксперименте // Раст. ресурсы. 2001. Вып. 2.С. 62−69.
  53. Н.Ф., Спрыгин В. Г., Фоменко С. Е. и др. Эффективность применения растительного препарата Диприм для восстановления функционального состояния печени после поражения этиловым спиртом //Гиг. и сан. 2002. № 1. С. 56−60.
  54. Н.Ф., Добряков Ю. И., Спрыгин В. Г. Перспективные разработки комплексов биологически активных веществ из природного сырья Дальневосточного региона // Вестник ДВО РАН. 2003. № 2. С. 66−72.
  55. Н.Ф., Лесникова Л. Н. Влияние хаурантина на процессы восстановления липидной составляющей мембран эритроцитов после поражения этиловым спиртом // Наркология. 2003. № 5. С. 25−28.
  56. Н.Ф., Спрыгин В. Г., Рахманин Ю. А. Регуляция метаболизма этилового спирта в организме олигомерными проантоцианидинами как способ профилактики его токсического воздействия // Гиг. и сан. 2003. № 5. С. 58−61.
  57. Н.Ф., Спрыгин В. Г., Рахманин Ю. А. Влияние растительного полифенольного препарата Экликит на процессы восстановления функции печени после алкогольной интоксикации // Биомед. хим. 2004. Т. 50, Вып. 6. С. 605−611.
  58. Н.Ф., Спрыгин В. Г., Фоменко С. Е., Рахманин Ю. А. Влияние стресса на состояние липидного обмена печени, профилактика // Гиг. и сан. 2005. № 5. С. 17−21.
  59. В.З., Тихазе А. К., Беленков Ю. Н. Свободнорадикальные процессы в норме и при патологических состояниях // Пособие для врачей. Изд. 2-е, испр. и доп. М.: РКНПК МЗ РФ, 2001. 78 с.
  60. М.М. Пищевые детерминанты липидного состава биологических мембран // Вестник АМН СССР. 1986. № 11. С. 15−21.
  61. Ю.М., Арчаков А. И., Владимиров Ю. А., Коган Э. М. Холестериноз. М.: Медицина, 1983. — 352 с.
  62. К.А., Танирбергенов Т. Б., Насыров Х. М. и др. Токсикологическое изучение фитопрепарата из экстракта люцерны посевной//Экспер. клин, фармакол. 2000. Т. 63, № 1. С. 63−65.
  63. К.А., Шангареева Р. Ф. Коррекция действия гепатотоксинов фитопрепаратом из люцерны // Экспер. клин, фармакол. 2001. Т. 64, № 5. С. 53−55.
  64. A.B., Попова Т. Н., Матасова Л. В. Действие тиоктовой кислоты на функционирование антиоксилантной глутатионзависимой системы при токсическом гепатите у крыс // Биомед. хим. 2007. Т. 53, Вып. 2. С. 18−189.
  65. Р., Греннер Д., Мейес П., Родуэлл В. Биохимия человека. М.: Мир, 1993. Т. 1.-381 с.
  66. Г. И. Значение проблемы микрореологии крови для патологии // Пат. физиол. и эксп. терап. 1986. № 2. С. 3−11.
  67. Ф.З. Адаптация к стрессорным ситуациям и стресс-лимитирующие системы организма //Физиология адаптационных процессов. М., 1986. С. 521−631.
  68. Ф.З. Общий механизм адаптации и роль в нем стресс-реакции, основные стадии процесса // Физиология адаптационных процессов. М., 1986. С. 77−123.
  69. Е.Б., Ланкин В. З., Зенков Н. К. и др. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. М.: Слово, 2006. — 556 с.
  70. К.А., Бородина Г. П., Королева Н. П. О методике первичного отбора средств, влияющих на обмен холестерина // Элеутерококк и другие адаптогены дальневосточных растений. -Владивосток, 1966. С. 289−294.
  71. Д.А., Петушок Н. Э., Лелевич В. В. и др. Состояние свободнорадикальных процессов в динамике развития хронической морфиновой интоксикации // Биомед. хим. 2007. Т. 53, Вып. 2. С. 190 195.
  72. Н.И., Березовская З. Б. Нарушение деформируемости эритроцитов // Анестезиол. и реаним. 1993. № 2. С. 72−77.
  73. М.Ю., Бутусова H.H., Жуковский A.B., Коган Э. М. Морфологические изменения эритроцитов при алкоголизме и определяющие их факторы // Вопр. наркологии. 1992. № 2. С. 72−75.
  74. Молотов-Лучанский В.Б., Кудрявцев С. С., Муравлева Л. Е., Газалиев A.M. Влияние цитафата на состояние окислительного метаболизма у крыс с диабетической нефропатией // Экспер. клин, фармакол. 2005. Т. 68, № 5. С. 47−50.
  75. Л.А. Безотходная технология получения биологически активных веществ и других продуктов с комплексным использованием вторичного сырья переработки винограда: Автореф. дис. докт. тех. наук. -М., 1987. 45 с.
  76. Н.К., Ленская Е. Г., Токмурзин Ж. У. и др. Влияние различных видов алиментарного дисбаланса на степень перекисного окисления и вязкость мембранных липидов // Вопр. питания. 1986. № 1. С. 47−51.
  77. A.A. Лецитин: холестерин-ацилтрансфераза плазмы крови // Биохимия липидов и их роль в обмене веществ. М.: Наука, 1981. С. 95−105.
  78. Т.П. Липиды эритроцитов крови при формировании наследуемой кардиальной патологии: Автореф. дис. .докт. биол. наук. Владивосток. 1999. 47 с.
  79. Т.П., Эндакова Э. А., Козычева Е. В., Китайская Л. С. Модификация липидов эритроцитарных мембран больных сердечнососудистой патологией в процессе комплексной бальнеотерапии // Вопр. курорт, физиотер. и леч. физкультуры. 1999. № 1. С. 12−15.
  80. Т.П., Эндакова Э. А., Янькова В. И. Руководство по методам исследования параметров системы «Перекисное окисление липидов антиоксидантная защита» в биологических жидкостях. -Владивосток: Изд-во Дальневост. ун-та, 2003. С. 45−48.
  81. В.Е., Климкина Е. И. Фармакология гепатопротекторов // Обзор клин, фармакол. лек. тер. 2005. Т. 4, № 1. С. 2−20.
  82. Л.Е. Биохимические механизмы стресса. Новосибирск: Наука, 1983.-233 с.
  83. Т.Л., Иванов A.A. Биологически активные добавки к пище: теория, производство, применение. М.: Авваллон, 2002. — 710 с.
  84. A.A. Биохимические методы исследования в клинике. -М.: Медицина, 1969. 625 с.
  85. A.A., Левачев М. М., Львович H.A. и др. Влияние качественных особенностей жирового компонента рациона на жирнокислотный состав мембран эритроцитов и тромбоцитов у здоровых людей // Вопр. питания. 1977. № 3. С. 12−17.
  86. Н.В., Звездина Н. Д., Коротаева A.A. Влияние лизофосфатидилхолина на передачу трансмембранного сигнала внутрь клетки // Биохимия. 1998. Т. 63. С. 38−46.
  87. A.B., Саратников A.C., Чучалин B.C. и др. Гепатопротекторы препятствуют токсическому действию циклофосфана на печень крыс при ССЬ4-гепатите // Экспер. клин, фармакол. 2005. Т. 68, № 2. С. 4750.
  88. Ю.А., Кушнерова Н. Ф., Буланов А. Е. Структурная организация мембран эритроцитов у представителей разных этнических групп после однократного приема этанола. // Гиг. и сан. 1991. № 11. С. 59−62.
  89. Ю.А., Фоменко С. Е., Кушнерова Н. Ф. Гепато- и мембранопротекторные свойства чайных катехинов при алкогольной интоксикации // Гиг. и сан. 1995. № 3. С. 39−42.
  90. М.А., Фархутдинов P.P., Сибиряк C.B., Загидуллин Ш. З. Влияние водных извлечений из некоторых гепатотропных лекарственных растений на процессы свободнорадикального окисления // Экспер. клин, фармакол. 1999. Т. 62, № 2. С. 36−38.
  91. A.C., Веншеровский A.C., Чучалин B.C. и др. Гепатозащитные свойства солянки холмовой // Хим.-фарм. журн. 1990. № 6. С. 38−40.
  92. A.C., Литвиненко Ю. А., Буркова В. Н. и др. Антиоксидантная и гепатопротекторная активность комбинаций лохеина и эплира // Хим.-фарм. журн. 2001. Т. 35, № 6. С. 48−50.
  93. A.C., Чучалин B.C., Ратькин A.B. и др. Гепатопротекторные свойства полифенольных комплексов из древесины и клеточной культуры мааки амурской // Экспер. клин, фармакол. 2005. Т. 68, № 2. С. 51−54.
  94. М.И., Лелевич В. В., Развадовский Ю. Е. Влияние солянки холмовой на липидный состав плазмы крови крыс при хронической алкогольной интоксикации и после отмены этанола // Бюлл. эксперим. биол. и мед. 1999. Т. 127. № 6. С. 665−667.
  95. Г. Очерки об адаптационном синдроме. М.: Медгиз, 1960. -254 с.
  96. Н.П., Степанова Н. Ю. Эффективность легалона и эссенциале при поражении печени тетрациклином // Антибиот. и мед. биотех. 1986. Т. 31, № 10. С. 781−784.
  97. Н.П., Мосейчук И. П. Клиническая фармакология легалона // Врач. дело. 1988. № 5. С. 5−10.
  98. Н.П., Степанова Н. Ю. Сравнительныя оценка гепатопротекторной, антиоксидантной и желчегонной активности флавоноидных препаратов // Врач. дело. 1988. № 2. С. 52−54.
  99. Н.П., Шманько В. В., Охримович Л. М. Клиническая фармакология гепатопротекторов. Тернополь: Збруч, 1995. — 272 с.
  100. В.Г., Кушнерова Н. Ф. Влияние комплексного полифенольного препарата «Калифен» на процессы восстановления биохимических показателей печени после поражения этиловым спиртом //Воп. биол. мед. фарм. хим. 2002. № 4. С. 22−26.
  101. В.Г., Кушнерова Н. Ф. Метод оценки и стандартизации олигомерных проантоцианидиновых комплексов, полученных из различных видов растительного сырья // Хим.-фарм. журн. 2002. Т. 36, № 3. С. 31−35.
  102. В.Г., Кушнерова Н. Ф., Фоменко С. Е. и др. Антирадикальная активность извлечений из дальневосточных растений, содержащих олигомерный проантоцианидиновый комплекс // Бюл. физиол. патол. дых. 2002. Вып. 11. С. 50−53.
  103. В .Г., Кушнерова Н. Ф. Калина новый нетрадиционный источник олигомерных проантоцианидинов // Хим.-фарм. журн. 2004. Т. 38, № 2. С. 41−45.
  104. В.Г., Кушнерова Н. Ф. Природные олигомерные проантоцианидины перспективные регуляторы метаболических нарушений // Вестник ДВО РАН. 2006. № 2. С. 81−90.
  105. С.А., Панченко Л. Ф., Филиппович Ю. Д., Глушков B.C. Изменения физико-химических свойств биологических мембран при развитии толерантности к этанолу // Вопр. мед. хим. 2001. № 2. С. 4753.
  106. Л.Б., Минеева М. Ф., Тополева Т. В. Исследование влияния «Бересты экстракта сухого» на ключевые ферменты биотрансформации и на микросомальные мембраны печени крыс // Хим.-фарм. журн. 2007. Т. 41, № 5. С. 32−36.
  107. H.A., Руленко И. А., Колесник Ю. А. Дигидрокверцетин новая антиоксидантная и биологически активная пищевая добавка // Вопр. питания. 1997. № 6. С. 12−15.
  108. С.А., Кулеш Н. И., Глебко Л. И. и др. Препарат Максар из дальневосточного растения мааки амурской // Хим.-фарм. журн. 2004. Т. 38, № 11. С. 22−26.
  109. С.Е., Кушнерова Н. Ф., Спрыгин В. Г., Гордейчук Т. Н. Сравнительная оценка эффективности применения растительных комплексов для восстановления метаболических процессов в печени после поражения этиловым спиртом // Наркология. 2003. № 3. С. 37−42.
  110. В.Х., Баринов В. А., Арутюнян A.B., Малинин В. В. Свободнорадикальное окисление и старение. СПб.: Наука, 2003. — 286 с.
  111. В.Р., Гарифуллина Г. Г., Герчиков А. Я. Антиокислительная активность экстрактов растений сем. Geraniaceae, Rosaceae на примере изипрополового спирта // Хим.-фарм. журн. 2005. Т. 39, № 3. С. 28−30.
  112. Л.К., Сапронов Н. С. Стресс и его роль в развитии патологических процессов // Обзоры по клин, фармакол. и лек. терапии. 2003. Т. 3, № 3. С. 2−15.
  113. A.B., Дадали В. А., Макаров И. Г. Биохимические основы действия микрокомпонентов пищи / Под ред. В. А. Дадали. М.: Авваллон, 2003. — 184 с.
  114. О.Г., Шишкина Л.H., Кудряшева А. Г. Влияние попопуляционных факторов на состав фосфолипидов различных тканей полевки-экономки Microtus oeconomus природных популяций // Эвол. биохим. и физиол. 2002. Т. 38, № 2. С. 131−135.
  115. И.В., Краснов Е. А., Короткова Е. И., Нагаев М. Г. и др. Антиоксилдантная активность экстрактов надземной части лабазника вязолистного // Хим.-фарм. журн. 2006. Т. 40, № 12. С. 22- 24.
  116. Ю.О. Флавоноиды расторопши пятнистой в лечении заболеваний печени // Русский мед. журн. 2004. Т. 12, № 5. С. 248−250.
  117. Э.А., Новгородцева Т. П., Светашев В. И. Модификация состава жирных кислот крови при сердечно-сосудистых заболеваниях. Владивосток: Дальнаука, 2002. — 296 с.
  118. .Л. Экспериментальная физиология. М.: Мир, 1972. -324 с.
  119. Л.В., Бунятян Н. Д., Герасимова O.A. и др. Эффективность растительного полифенольного препарата пифламина при лекарственном поражении печени // Экспер. клин, фармакол. 1998. Т. 61, № 6. С. 48−50.
  120. В.И., Иванова И. Л., Федореев С. А., Кулеш Н. И. Антиоксидантное действие гепатопротектора Максара при экспериментальном диабете // Экспер. клин, фармакол. 2002. Т. 65, № 4. С. 33−36.
  121. И.Н., Горный Н. Ф. Влияние настойки арники горной на функциональное состояние печени крыс при отравлении их четыреххлористым углеродом // Хим.-фарм. журн. 2002. Т. 36, № 2. С. 41−42.
  122. Abe I, Seki T., Umehara К., Miyase T. et al. Green tea polyphenols: novel and potent inhibitors of squalene epoxidase // Biochem. and Biophys. Res. Commun. 2000. V. 268. P.767−771.
  123. Acharya M.M., Katyare S.S. Structural and functional alterations in mitochondrial membrane in picrotoxin-induced epileptic rat brain// Exp. Neurol. 2005. V. 192, N. 1. P. 79−88.
  124. Afanas’ev I.B., Dorozhko A.I., Brodskii A.V. et. al. Chelating and free radical scavenging mechanisms of inhibitory action of rutin and quercetin in lipid peroxidation // Biochem. Pharmacol. 1989. Vol. 38, N 11. P. 17 631 769.
  125. Amenta J.S. A rapid chemical method for quantification of lipids separated by thin-layer chromatography // J. Lipid Res. 1964. V. 5, N. 2. P. 270−272.
  126. Andersen O.M., Markham K.R. Flavonoids: chemistry, biochemistry and applications. Paris: CRC Press, 2006. — 1237 p.
  127. Ansell R.J., Lowe C.R. Artificial redox coenzymes: biomimetic analogues ofNAD+ // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999. V. 51. P. 703−710.
  128. Arora A., Byrem T.M., Nair M.G. et al. Modulation of liposomal membrane fluidity by flavonoids and isoflavonoids // Arch. Biochem. Biophys. 2000. V. 373. N 1. P.102−109.
  129. Bagchi D., Bagchi M., Stohs S. J et al. Free radicals and grape seed proanthocyanidin extract: importance in human health and disease prevention // Toxicol. 2000. V. 148. P. 187−197.
  130. Baraona E. Lieber C.S. Alcohol and lipids // Recent Dev. Alcohol. 1998. V. 14. P. 97−134.
  131. Benedeffi A., Birarelli A.M., Brunelli E. et al. Effect of chronic ethanol abuse on the physico-chemical properties of erythrocyte membranes in man //Pharmacol. Res. Commun. 1986. V. 18. P. 1003−1014.
  132. Benzie I.F.F. Lipid peroxidation: a review of causes, consequences, measurement and dietary influences // Int. J. of Food Sci. and Nutr. 1996. V. 47. P. 233−261.
  133. Berson A., Fau D., Formacciari R. et al. Mechanism for experimental buprenorphine hepatotoxicity: Major role of mitochondrial dysfunction versus metabolic activation // Hepatol. 2001. V. 34. P. 261−269.
  134. Boonstra J., Post J.A. Molecular events associated with reactive oxygen species and cell cycle progression in mammalian cells // Gene. 2004. V. 337. P. 1−13.
  135. Bors W., Heller W., Michel C., Saran M. Flavonoids as antioxidant: determination of radical-scavenging efficiencies // Methods Enzymol. 1990. V. 186. P. 343−355.
  136. Bors W., Michel C., Stettmaier K. Electron paramagnetic resonance studies of radical species of proanthocyanidins and gallate esters // Arch. Biochem. Biophys. 2000. V. '374, N. 2. P. 347−355.
  137. Brand M.D., Affourtit C., Esteves T.C. et al. Mitochondrial superoxide: production, biological effects, and activation of uncoupling proteins // Free Radic. Biol. Med. 2004. V. 37. P. 755−767.
  138. Bravo L. Ph. D. Polyphenols: chemistry, dietary sources, metabolism, and nutritional significance //Nutr. Rev. 1998. V. 56, N. 11. P. 317−333.
  139. Breinholt V., Lauridsen S.T., Dragsted L.O. Differential effects of dietaiy flavonoids on drug metabolizing and antioxidant enzymes in female rat // Xenobiotica. 1999. V. 29, N. 12. P. 1227−1240.
  140. Brindley D.N. What factors control hepatic triacylglycerol accumulation in alcohol abuse? // Biochem. Soc. Trans. 1988. V. 16, N 3. P. 251−253.
  141. Broncel M., Chojnowska-Jezierska J., Koter-Mikhalak M., Franiak I. Erythrocyte fluidity in patients with hyperlipidemia during statins therapy // Pol. Arch. Med. Wein. 2005. V. 113, N. 6. P. 531−537.
  142. Brown J.E., Khodr H., Hider R.C., Rice-Evans C.A. Structural dependence of flavonoid interactions with Cu2+ ions: implications for their antioxidant properties // Biochem. J. 1998. V. 330. P. 1173−1178.
  143. Cadenas E., Davies K.J.A. Mitochondrial free radical generation, oxidative stress, and aging // Free Radic. Biol. Med. 2000. V. 29. P. 222 230.
  144. Calixto J.B., Santos A.R.S., Filbo V.C., Yunes R.A. A review of the plants of the Genus Phyllanthus: their chemistry, pharmacology, and therapeutic potential // Med. Res. Rev. 1998. V. 18, N. 4. P. 225−258.
  145. Caro A.A., Cederbaum A.I. Oxidative stress, toxicology, and pharmacology of CYP2E1 // Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 2004. V. 44. P. 27−42.
  146. Carrasco M.P., Segovia J.L., Marco C. Incorporation of exogenous precursors into neutral lipids and phospholipids in rat hepatocytes: effect of ethanol in vitro // Biochem. Pharmacol. 1998. V. 56, N. 12. P.1639−1644.
  147. Chan T., Galati G., O’Brien P.J. Oxygen activation during peroxidase catalysed metabolism of flavones or flavanones // Chemico-Biol. Interactions. 1999. V. 122. P. 15−25.
  148. Cheng I.F., Breen K. On the ability of four flavonoids, baicalein, luteolin, naringenin, and quercetin, to suppress the Fenton reaction of the iron-ATP complex // Biometals. 2000. V. 13. P. 77−83.
  149. Chung K.-T., Lu Z., Chou M.W. Mechanism of inhibition of tannic acid and related compounds on the growth of intestinal bacteria // Food and Chemic. Toxicol. 1998. V. 36. P. 1053−1060.
  150. Chung K.-T., Wong T.Y., Wei C.I. et al. Tannins and human health: a review // Critical Rev. in Food Sci. and Nutrition. 1998. V. 38, N. 6. P. 421 464.
  151. Closa D., Torres M., Hotter G., Bioque G. et al. Prostanoids and free radicals in C^C-induced hepatotoxicity in rats: effect of astilbin // Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. 1997. V. 56, N. 4. P. 331−334.
  152. Cooper R.A. Lipids of human red cell membrane: normal composition and variability in disease I I Semin. Hematol. 1970. V. 7, N. 3. P. 296−322.
  153. Cos P., Hermans N., Calomme M. et al. Comparative study of eight well-known polyphenolic antioxidants // J. Pharm. Pharmacol. 2003. V. 55. P. 1291−1297.
  154. Crocenzi F.F., Pellegrino J.M., Pozzi E.J.S. et al. Effect of Silymarin on biliary bile salt secretion in the rat // Biochem. Pharmacol. 2000. V. 59. P. 1015−1020.
  155. Croft K.D. The chemistry and biological effects of flavonoids and phenolic acids // Annals N.Y. Academy of Sei. 1998. V. 854. P. 435−442.
  156. Darley-Usmar V., Halliwell B. Blood radicals: reactive nitrogen species: Reactive oxygen species, transition metal ions, and the vascular system // Pharm. Res. 1996. V. 13, N. 5. P. 649−662.
  157. De Groot H., Rauen U. Tissue injury by reactive oxygen species and the protective effects of flavonoids // Fundam. Clin. Pharmacol. 1998. V. 12, N3. P. 249−255.
  158. Di Carlo G., Mascolo N., Izzo A.A., Capasso F. Flavonoids: old and new aspects of a class of natural therapeutic drugs // Life Sei. 1999. V. 65, N. 4. P. 337−353.
  159. Facino R.M., Carini M., Aldini G. et al. Free radicals scavenging action and anti-enzyme activities of procyanidines from vitis vinifera // Arzneim.-Forsch./Drug Res. 1994. V. 44 (I), N. 5. P. 592−601.
  160. Facino R.M., Carini.M., Calloni M.T. et al. Sparing effect of procyanidins from vitis vinifera on vitamin E: in vitro studies // Planta Medica. 1998. V. 64. P. 343−347.
  161. Filippov A., Oradd G., Lindblom G. The effect of cholesterol on the lateral diffusion of phospholipids in oriented bilayers // Biophys J. 2003. V. 84, N. 5. P. 3079−3086.
  162. Folch J., Less M., Sloane-Stanley G.H. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissue // Biol. Chem. 1957. V. 226. P. 497−509.
  163. Fremont L., Belguendouz L., Delpal S. Antioxidant activity of resveratrol and alcohol-free wine polyphenols related to LDL oxidation and polyunsaturated fatty acids // Life Sci. 1999. V. 64, N. 26. P. 2511−2522.
  164. Gajdos A., Gaidos-Torok M., Horn R. Therapeutic effect of the (+)-catechin on biochemical disorders of the liver in the ethanol intoxicated rat // C.R. Seances Soc. Biol. Fil. 1972. V. 166, N.2. P. 277−279.
  165. Graefe E.U., Derendort H., Veit M. Pharmacokinetics and bioavailability of the flavonol quercetin in humans // Int. J. of Clinical Pharmacol, and Therap. 1999. V. 37, N. 5. P. 219−233.
  166. Hasegawa N. Stimulation of lipolysis by pycnogenol // Phytother. Res. 1999. V. 13. P. 619−620.
  167. Hasegawa N. Inhibition of lipogenesis by pycnogenol // Phytother. Res. 2000. V. 14. P. 472−473.
  168. Haslam E. Natural polyphenols (vegetable tannins) as drugs: Possible modes of action // J. Nat. Prod. 1996. V. 59. N. 2. P .205−215.
  169. Ho C., Williams B.W., Kelly M.B., Stubbs C. D. Chronic ethanol intoxication induses adaptive changes at the membrane protein/lipid interface//Biochim. Biophys. Acta. 1994. V. 1189. P. 135−142.
  170. Hollman P., Arts I.CW. Flavonols, flavones and flavanols-nature, occurrence and dietary burden // J. Sci. Food Agric. 2000. V. 80. P. 10 811 093.
  171. Hollman P. Evidence for health benefits of plant phenols: local or systemic effects? // J. Sci. Food Agric. 2001. V. 81. P. 842−852.
  172. Hodnick W.F., Kung F.S., Roettger W.J. et al. Inhibition of mitochondrial respiration and production of toxic oxygen radicals by flavonoids. A structure-activity study // Biochem. Pharmacol. 1986. V. 35. P. 2345−2357.
  173. Huh N.W., Porter N.A., Mcintosh T.J. et al. The interaction of polyphenols with bilayers: conditions for increasing bilayer adhesion // J. Biophis. 1996. V. 71. P. 3261−3277.
  174. Hulbert A.J. Life, death and membrane bilayers // J. Exp. Biol. 2003. V. 206. P. 2303−2311.
  175. Jaeschke H., Gores G.J., Cederbaum A.I. et al. Mechanisms of hepatotoxity. // Toxicol. Sci. 2002. V. 65. P. 166−176.
  176. Jiao H., Wang S.Y. Correlation of antioxidant capacities to oxygen radical scavenging enzyme activities in blackberry // J. Agric. Chem. 2000. V. 48, N. 11. P. 5672−5676.
  177. Jimenez-Ramsey L., Rogler J., Housley T. Absorption and distribution of C14 labeled condensed tannins and related sorghum phenolics in chickens // J. Agric. and Food Chem. 1994. V. 42. P. 963−967.
  178. Johnson R.M. Ectacytometry of red cells // Subcell. Biochem. 1994. V. 23. P. 161−203.
  179. Juurlink B.H.J., Paterson P.G. Suggestions for pharmacological and nutritional management strategies // J. Spinal Cord Med. 1998. V. 21, N. 4. P. 309−334.
  180. Kabarowski H.S., Xu Y., Witte O.N. Lysophosphatidylcholine as a ligand for immunoregulation // Biochem. Pharmacol. 2002. V. 64. P. 161 167.
  181. Kandaswami C., Middleton E. Jr. Free radical scavenging and antioxidant activity of plant flavonoids // Adv. Exp. Biol. 1994. V. 336. P. 351−376.
  182. Kaneko T., Matsuo M., Baba N. Inhibition of linoleic acid hydroperoxide-induced toxicity in cultured human umbilical vein endothelial cells by catechins // Chem. Biol. Intern. 1998. V. 114. P. 109 119.
  183. Kaneko T., Baba N. Protective effect of flavonoids on endothelial cells against linoleic acid hydroperoxide-induced toxicity // Biosci. Biotech. Biochem. 1999. V. 63. P. 323−328.
  184. Kempaiah R.K., Srinivasan K. Influence of dietary spices on the fluidity of erythrocytes in hypercholesterolaemic rats // Br. J. Nutr. 2005. V. 93, N. l.P. 81−91.
  185. Kikuchi Y., Da Q.W., Fujino T. Variation in red blood cell deformability and possible consequences for oxygen transport to tissue // Microvasc. Res. 1994. V. 47, N. 2. P. 222−231.
  186. Kim Y. C, Kim E. J., Lee E.D. et al. Comparative bioavailability of silibinin in healthy male volunteers // Int. J. Clin. Pharmacol. Ther. 2003. V. 41, N. 12. P. 593−596.
  187. Klebanov G.I., Teselkin Yu.O., Babencova I.V. et al. Effect of lipophilic antioxidants oh peroxidation of liposome membranes photosensitized by hematoporphirin derivatives upon He-Ne laser irradiation //Membr. Cell. Biol. 1996. V. 10, N2. P. 139−143.
  188. Kostyuk V.A., Potapovich A.I., Speransky S.D., Maslova G.T. Protective effect of natural flavonoids on rat peritoneal macrophages injury caused by asbestos fibers // Free Radic. Biol. Med. 1996. V. 21. P. 487−493.
  189. Koter M., Franiak I., Strychalska K. et al. Damage to the structure of erythrocyte plasma membrane in patients with type-2 hypercholesterolemia // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2004. V. 36, N. 2. P. 205−215.
  190. Kropacova, K. Misurova E, Hakova H. Protective and therapeutic effect of silymarin on the development of latent liver damage // Radiats. Biol. Radioecol. 1998. V. 38, N 3. P. 411−415.
  191. Kuo S.M., Leavitt P. S., Lin C.P. Dietary flavonoids interact with trace metals and affect metal-lothionein level in human intestinal cells // Biol. Trace. Res. 1998. V. 62. P. 135−153.
  192. Kuppusamy U.R., Das N.P. Potentiation of (3-adrenoceptor agonist-mediated lipolysis by quercetin and fisetin in isolated rat adipocytes // Biochem. Pharmacol. 1994. V.47, N. 3. P. 521−529.
  193. Kuhnau J. The flavonoids. A class of semi-essential food components: their role in human nutrition // Wld. Rev. Nutr. Diet. 1976. V. 24. P. 117 191.
  194. Lieber C.S. Alcoholic liver disease: new inights in pathogenesis lead to new treatments // J. Hepatol. 2000. V. 32, N 1. P. 113−128.
  195. Lieber C.S. Alcohol and the liver: Metabolism of alcohol and its role in hepatic and extrahepatic diseases. // J. of Medicine. 2000. V. 67, N. l.P. 84−93.
  196. Lieber C.S. Metabolism of alcohol // Clin. Liver Dis. 2005. V. 9. P. 135.
  197. Lindi C., Montorfano G., Marciani P. Rat erythrocyte susceptibility to lipid peroxidation after chronic ethanol intake // Alcohol. 1998. V. 16, N. 4. P. 311−316.
  198. Luper S. A review of plants used in the treatment of liver diseases: part 1 // Altern. Med. Rev. 1998. V. 3. P. 410−421.
  199. Maie N., Behrens A., Knicker H., Kogel-Knabner I. Changes in the structure and protein binding ability of condensed tannins during decomposition of fresh needles and leaves // Soil Biol, and Biochem. 2003. V. 35. P. 577−589.
  200. Mallavadhani U.V., Panda A.K., Rao Y.R. Pharmacology and chemotaxonomy of diospyros // Phytochem. 1998. V.49, N. 4. P. 901−951.
  201. Marmolle F., Leize E., Mila I. et al. Polyphenol metallic complexes: Characterization by electrospray mass spectrometric and spectrophotometric methods //Analysis. 1997. V. 25, N. 8. P. M53-M55.
  202. Marshall T., Roberts R. In vitro and in vivo assessment of lipid peroxidation of infant nutrient preparations: Effect of nutrition on oxygen toxicity // J. of Amer. College Nutr. 1990. V. 9. P. 190−199.
  203. Mesquita R., Goncalves M.I., Dias S. et al. Ethanol and erythrocyte membrane interaction a hemorheologic perspective. // Clin. Hemorheol. Microcirc. 1999. V. 21, N. 2. P. 95−98.
  204. Mila I., Scalbert A., Expert D. Iron withholding by plant polyphenols and resistance to pathogens and rots // Phytochem. 1996. V. 42, N. 6. P. 1551−1555.
  205. Mizugaki M., Ishizawa F., Yamazaki T. et al. Epigallocatechin gallate increase the prostacyclin production of bovine aortic endothelial cells // Prostaglandins and other Lipid Mediators. 2000. V. 62. P. 157−164.
  206. Moini H., Rimbach G., Packer L. Molecular aspects of procyanidin biological activity: disease preventative and therapeutic potentials // Procyanidin Biol. Activity. 2000. V. 17, N. 1−4. P. 237−259.
  207. Nonaka G., Kawahara O. and Nishioka I. Tannins and related compounds. XV. A new class of dimeric flavan-3-ol gallates, theasinensins aand b, and proanthocyanidins gallates from green tea leaf // Chem. Pharmaceut. Bull. 1983. V. 31, N 9. P. 3906−3914.
  208. Ohvo-Rekila H., Ramstedt B., Leppimaki P., Slotte J.P. Cholesterol interaction with phospholipids in membranes // Prog. Lipid Res. 2002. V. 41, N.1.P. 66−97.
  209. Ong K. C., Khoo H. E. Biological effects of myricetin // Gen. Pharmac. 1997. V. 29, N. 2. P. 121−126.
  210. Packer L., Rimbach G. and Virgili F. Antioxidant activity and biologic properties of a procyanidin-rich extract from pine (pinus maritima) bark, pycnogenol // Free Radic. Biol. Med. 1999. V. 27. № 5−6. P. 704−724.
  211. Pande S.V., Parvin K.R., Venkitasubremanian T.A. Microdetermination of lipids and serum total fatty acid // Anal. Biochem. 1963. V. 6. P. 415−423.
  212. Paoletty F., Adinucci D., Mocali A., Caparrini A. A sensitive spectrophotometric method for the determination superoxide dismutase activity in tissue extracts // Anal. Biochem. 1986. V. 154. P. 536−541.
  213. Patel S.P., Katyare S.S. Effect of alloxan-diabetes and subsequent treatment with insulin on lipid/phospholipids composition of rat brain microsomes and mitochondria // Neurosci. Lett. 2006. V. 399, N. 1−2. P. 129−134.
  214. Plumb G.W., De Pascual-Teresa S., Santos-Buelga C. et al. Antioxidant properties of catechins and proanthocyanidins: effect of polymerization, galloylation «and glycosylation // Free Radic. Res. 1998. V. 29, N. 4. P. 351−358.
  215. Porter L. J. Flavans and proanthocyanidins // The flavonoids -advances in research since 1986. London: Chapman and Hall, 1994. P. 2355.
  216. Powers S.K., Ph D., Ed D. et al. Antioxidants and exercise // Nutr. Aspects of Exercise. 1999. V. 18, N. 3. P. 525−536.
  217. Przybylska M., Faber M., Zaborowski A., Bryszewska M. Cholesterol sulfat induces changes in human erythrocyte thermostability // Biochem. and Mol. Biol. Int. 1998. V. 46, N. 2. P. 399−410.
  218. Ray, S., Bagchi D., Lim P. M. et al. Acute and long-term safety evaluation of a novel IH636 grape seed proanthocyanidin extract // Res. Commun. Mol. Pathol. Pharmacol. 2001. V. 109, N 3−4. P. 165−197.
  219. Reinhart W.H., Chien S. Role of cell geometry and cellular viscosity in red cell passage through narrow pores // Am. J. Physiol. 1985. V. 248, N. 5. P. 473−479.
  220. Rice-Evans C.A., Miller N.J., Paganga G. Antioxidant properties of phenolic compounds // Trends Plant Sci. 1997. V. 2. P. 152−159.
  221. Ridgway N.D. Interactions between metabolism and intracellular distribution of cholesterol and sphingomyelin. // Biochem. Biophys. Acta. 2000. V. 1484. P. 129−141.
  222. Robak J., Gryglewski- R.J. Bioactivity of flavonoids // Polish J. of Pharmacol. 1996. V. 48, N. 6. P. 555−564.
  223. Ross J.A., Kasum C.M. Dietary flavonoids: bioavailability, metabolic effects and safety // Annu. Rev. Nutr. 2002. V. 22. P. 19−34.
  224. Rouser G., Kritchevsky G., Yamamoto A. Column chromatographic and associated procedures for separation and determination of phosphatides and glicolipids // Lipid chromatogr. Anal. N.Y.: Dekker, 1967. V. LP. 99 162.
  225. Rouach H., Fataccioli V., Gentil M. et al. Effect of chronic ethanol feeding on lipid peroxidation and protein oxidation in relation to liver pathology // Hepatology. 1997. V. 25. N 2. P.351−355.
  226. Saija A., Scalese M., Lanza M. et al. Flavonoids as antioxidant agents: importance of their interaction with biomembranes // Free Rad. and Med. 1995. V. 19, N4. P. 481−486.
  227. Santos-Buelga C., Scalbert A. Proanthocyanidins and tannin-like compounds-nature, occurrence, dietary intake and effects on nutrition and health // J. Sci. Food Agric. 2000. V. 80. P. 1094−1117.
  228. Sanz M. J., Ferrandiz M. L., Cejudo M. et al. Influence of a series of natural flavonoids on free-radical generating systems and oxidative stress // Xenobiotica. 1994. Vol. 24. N 7. P. 689−699.
  229. Sasso G.F., Ceccanti M., Nardi E. et al. Cholesterol-acyltransferase (LCAT) activity in alcoholic liver disease // Panminerva med. 1989. V. 31, N l.P.30−33.
  230. Scalbert A. Antimicrobial properties of tannins // Phytochem. 1991. V. 30, N 12. P. 3875−3883.
  231. Scalbert A. Polyphenolic phenomena. INRA, Paris, 1993. — 296 p.
  232. Scalbert A., Mila I., Expert D. et al. Polyphenols, metal ion complexation and biological consequences // Basic Life Sci. 1999. N. 66. P. 545−554.
  233. Scalbert A., Deprez S., Mila I., Albrecht A.-M. et al. Proanthocyanidins and human health: systemic effects and local effects in the gut // Biofactors. 2000. V. 13. P. 115−120.
  234. Scalbert A., Williamson G. Dietary intake and bioavailability of polyphenols // Americ. Soc. For Nutr. Sci. 2000. V. 130. P. 2073S-2085S.
  235. Schofield J.A., Hagerman A.E., Harold A. Loss of tannins and other phenolics from willow leaf litter // J. of Chemic. Ecol. 1998. V. 24, N. 8. P. 1409−1421.
  236. Scottova N., Vagera Z., Vecera R. et al. Pharmacokinetic study of iodine-labeled silibinins in rat // Pharmacol. Res. 2001. Vol. 44. N 3. P. 247 253.
  237. Shimoi K., Masuda S., Furugori M. et al. Radioprotective effect of antioxidative flavonoids in gamma-ray irradiated mice // Carcinogen. 1994. V. 15. P.2669−2672.
  238. Shimoi K., Masuda S., Shen B. et al. Radioprotective effect of antioxidative plant flavonoids in mice // Mutat. Res. 1996. V. 350. P.153−161.
  239. Simonetti P., Brusamolino A., Pellegrini N. et al. Evaluation of the effect of alcohol consumption on erythrocyte lipids and vitamins in a healthy population // Alcohol Clin. Exp. Res. 1995. V. 19, N. 2. P. 517−522.
  240. Soleas G.J., Diamandis E.P., Goldberg D.H. Resveratrol: a molecule whose time has come? And gone? // Clinic. Biochem. 1997. V. 30, N. 2. P. 136−147.
  241. Sreemantula S., Nammi S., Kolanukonda R. et al. Adaptogenic and nootropic activities of aqueous extract of vitis vinifera (grape seed): an experimental study in rat model // Compl. and Alter. Med. 2005. V. 5, N. 1. P. 45−60.
  242. Svetachev V.l., Vaskovsky V.E. A simplified technique for thin layer microchromatography of lipids // J. Chromatogr. 1972. V. 67, N. 2. P. 376 378.
  243. Sun G.Y., Xia J., Draczynska-Lusiak B. et al. Grape polyphenols protect neurodegenerative ¦ changes induced by chronic ethanol administration//Neuro Report. 1999. V.10, N.l. P. 93−96.
  244. Sun G.Y., Xia J., Xu J. et al. Dietary supplementation of grape polyphenols to rats ameliorates chronic ethanol-induced changes in hepatic morphology without altering changes in hepatic lipids // J. Nutr. 1999. V. 129. P. 1814−1819.
  245. Terao J. Dietary flavonoids as antioxidants in vivo: conjugated metabolites of (-)-epicatechin and quercetin participate in antioxidative defense in blood plasma // J. Med. Invest. 1996. V. 46. P. 159−168.
  246. Teselkin Yu. O., Zhambalova B.F., Babenkova I.V. et al. Antioxodant properties of dihydrocqercetin //Biophysics. 1996. V. 41, N. 3. P. 621−624.
  247. Theret N., Bard J.M., Nuttens M.C. et al. The relationship between the phospholipid fatty acid composition of red blood cells, plasma, lipids and apolipoproteins // Metabolism. 1993. V. 42, N. 5. P. 562−568.
  248. Thompson P. Platelet and erythrocyte membrane fluidity changes in alcohol-dependent patients undergoing acute withdrawal // Alcohol and Alcohol. 1999. V. 34, N. 3. P. 349−354.
  249. Tijburg L.B.M., Mattern T., Folts J.D. et al. Tea flavonoids and cardiovascular diseases: a review // Critical Rev. in Food Sci. and Nutr. 1997. V. 37, N. 8. P. 771−785.
  250. Tijburg L.B.M., Wiseman S.A., Meijer G.W., Weststrate J.A. Effects of green tea, black tea and dietary lipophilic antioxidants on LDL oxidizability and atherosclerosis in hypercholesterolaemic rabbits // Atherosclerosis. 1997. V. 135. P.37−47.
  251. Trandum C., Westh P., Jorgensen K., Mouritsen O.J. Use of isothermal titration calorimetry to study the interaction of short-chain alcoholswith lipid membranes // Thermochim. Acta. 1999. V. 328. P. 129 135.
  252. Tsuchiya H. Effects of green tea catechins on membrane fluidity // J. Pharmacol. 1999. V. 59. P. 34−44.
  253. Tuquet C., Dupont J., Mesneau A., Roussaux J. Effecta of tamoxifen on the electron transport chain of isolated rat liver mitochondria // Cell. Biol. Toxicol. 2000. V. 16, N. 4. P. 207−219.
  254. Uchida K., Shiraishi M., Naito Y. et al. Activation of Stress Signaling Pathways by the end product of lipid peroxidation // Biol. Chem. 1999. V. 274, N. 4. P. 2234−2242.
  255. Ueng Y.F., Chang Y.L., Oda Y., Park S. et al. In vitro and in vivo effects of naringin on cytochrome P450-dependent monooxygenase in mouse liver // Life Sei. 1999. V. 65,"N. 24. P. 2591−2602.
  256. Ueda H., Yamazaki C., Yamazaki M. A hydroxyl group of flavonods affects oral anti-inflammatory activity and inhibition of systemic tumor necrosis factor-a production // Biosci. Biotech. Biochem. 2004. V. 1. N 68. P. 119−125.
  257. Ursini F.M.D., Tubaro F.M.S. et al. Optimization of nutrition: polyphenols and vascular protecrion // Nutr. Rev. 1999. V. 57, N. 8. P. 241 249.
  258. Valko M., Leibfritz D., Moncol J. et al. Free radicals and antioxidant in normal physiological functions and human disease // The Int. J. of Biochem. and Cell Biol. 2007. V.39. P. 44−84.
  259. Valsa A.K., Asha S.K., Vijayalakshmi N.R. Effect of catechin on intestinal lipid metabolism // Indian J. Physiol. Pharmacol. 1998. V.42, N. 2. P. 286−290.
  260. Van Acker F.A., Schouten O., Haenen G.R. et al. Flavonoids can replace a-tocopherol as an antioxidant // FEBS Lett. 2000. V. 473. P. 145 148.
  261. Vasiljeva O. V., Lyubitsky O. B., Klebanov G. I.et.al. Effect of antioxidants on the kinetics of chain lipid peroxidation in liposomes // Membr. Cell. Biol. 1998. V. 12, N2. P. 223−231.
  262. Vaskovsky V.E., Kostetsky E.Y., Vasendin I.M. An universal reagent for phospholipid analysis // J. Chromatogr. 1975. V. 114, N. 1. P. 129−141.
  263. Vaskovsky V.E., Latyshev N.A. Modified Jungnickel’s reagent for detecting phospholipids and other phosphorus compounds on thin-layer chromatograms // J. Chromatogr. 1975. V. 115, N 1. P. 246−249.
  264. Venkatesan P., Rao M.N.A. Structure-activity relationships for the inhibition of lipid peroxidation and the scavenging of free radicals bysynthetic symmetrical curcumin analogues // J. Pharm. Pharmacol. 2000. V. 52. P. 1123−1128.
  265. Wagner H., Horhammer L., Wolff F. Thin-layer chromatography of phosphatides and glycolipides //Biochem. Z. 1961. Bd, 334. S. 175−184.
  266. Weber L.W.D., Boll M., Stampfl A. Hepatotoxicity and mechanism of action of haloalkanes: carbon tetrachloride as a toxicological model // Critical Rev. in Toxicol. 2003. V. 33, N. 2. P. 105−136.
  267. Weisburger J.H. Tea and health: the underlying mechanisms // Proceedings Soc. Exp. Biol, and Med. 1999. V. 220, N. 4. P. 271−275.
  268. Yamakoshi J., Kataoka S., Koga T., Ariga T. Proanthocyanidin-rich extract from grape seeds attenuates the development of aortic atherosclerosis in cholesterol-fed rabbits // Atherosclerosis. 1999. V. 142. P. 139−149.
  269. Zhu B.T., Taneja N., Loder D.P. et al. Effects of tea polyphenols and flavonoids on liver microsomal glucuronidation of estradiol and estrone // J. Steroid Biochem. Molec. Biol. 1998. V. 64, N. 3−4. P. 207−215.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!