Инфекционный ринотрахеит

Определение: инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота — остро протекающая высококонтагиозная болезнь крупного рогатого скота, характеризующаяся катарально-некротическим воспалением верхних дыхательных путей, абортами и вульвовагинитами у самок, баланопоститами у самцов.

Историческая справка. Вначале инфекционный ринотрахеит и пустулезный вульвовагинит (пузырьковая сыпь, контальная экзантема, баланопостит у быков) считали самостоятельными заболеваниями. При этом как «пузырьковая сыпь» болезнь была описана в Европе и нашей стране в середине XIX в. В виде заболевания верхних дыхательных путей инфекционный ринотрахеит впервые зарегистрирован в США в 1954 г.

Вирус впервые был выделен в 1956 г. Мейдином и др. при респираторной форме болезни, в 1958 г. Кендриком и др. — при инфекционном вульвовагините, в 1961 г. Абинанти и Плумером — при конъюнктивитах. В 1959 г. Гилепси доказал идентичность возбудителей указанных форм болезни, которые клинически проявляются в зависимости от места локализации вируса.

В СССР заболевание, сходное с инфекционным ринотрахеитом, у откормочного молодняка впервые описал Ф. М. Пономаренко (1939), назвав его «инфекционный катар дыхательных путей».

Распространение и экономический ущерб. В настоящее время инфекционный ринотрахеит регистрируется во всем мире, особенно в странах с развитым промышленным скотоводством, в том числе и РБ. За 2003 год в республике зарегистрировано 61 неблагополучный пункт, в которых заболело 1164 и пало 258 голов крупного рогатого скота. Приносит значительный экономический ущерб, который складывается из гибели животных, затрат на лечение больных животных и затрат по ликвидации болезни.

Этиология. Возбудитель болезни — ДНК-содержащий вирус из семейства герпесвирусов, имеет сферическую или эллипсоидную форму, размер 180—250 им. Вирус обладает выраженным тропизмом к клеткам органов дыхания и размножения. У телят обнаруживается в носовых истечениях с 1-го по 14-й день болезни, содержимом конъюнктивального мешка, слизи из трахеи, в слюне, крови, моче, у половозрелых животных — в сперме клинически или латентно больных быков-производителей, влагалищных истечениях больных коров, абортированном плоде, котиледонах, плаценте.

Для культивирования вируса применяют первично трипсинизированные клетки ПЭК, ТБ, почек телят, а также перевиваемые клетки. Цитопатогенный эффект обнаруживают через 16—24 ч после инфицирования в виде округления клеток, образования синцития, формирования в клеточном монослое «окон», скопления округлившихся клеток в форме гроздьев винограда, отделения клеток от стекла, образования внутриядерных включений. Через 48 ч выявляют полное разрушение монослоя.

В культуре клеток под агаровым покрытием на 4—6-й день инкубации обнаруживают бляшки.

Лабораторные животные к вирусу инфекционного ринотрахеита не чувствительны.

Вирус относительно устойчив во внешней среде: при —25—70°С сохраняется 7—14 мес, —20—26°С —3—7 мес, 22—25° 40—50 дн, 37°—4—10 дн, 4 °C —30—40 дн. Вирус хорошо переносит многократное замораживание и оттаивание, длительно сохраняется при рН 6—9, но быстро теряет активность в кислой среде. Высушенный в замороженном состоянии вирус сохраняется при 4°С—8 мес, 5 °C —4 мес, 60°С—30 дн. Устойчив к рентгеновским лучам (до 1,5— 2 млн рентген), высокому давлению (до 3 тыс. атм), но очень чувствителен к ультрафиолетовому облучению.

Кипячение убивает вирус мгновенно, при температуре 56° он гибнет в течение 60 мин, солнечные лучи разрушают вирус через 48 ч; эфир, хлороформ, ацетон инактивируют вирус при 4 °C в течение 18—20 ч, при 37°С— за 15 мин. Растворы формалльдегида (1—2%), натрия гидроокиси (0,5%), хлорной извести (1—2%) разрушают вирус за 5 мин.

Диагноз устанавливают на основании клинико-эпизоотологических данных, патологоанатомических изменений, а также результатов лабораторных исследований.

Эпизоотологические данные. В естественных условиях болеет крупный рогатый скот, особенно тяжело телята и молодняк на откорме. Источником возбудителя инфекции являются больные и переболевшие животные, выделяющие вирус 6—19 мес после выздоровления. Очень опасны быки-производители, переболевшие генитальной формой, длительное время выделяющие вирус со спермой.

Из организма животных вирус выделяется с секретом из носа и глаз, истечениями из половых органов, спермой, молоком, мочой, калом. Заражение происходит аэрогенным, контактным путем и при случке. Факторами передачи возбудителя инфекции служат инфицированные воздух, корма, подстилка, предметы ухода за животными, одежда и руки обслуживающего персонала, инструментарий и др.

Заболевание не имеет выраженной сезонности. На предприятиях по производству говядины проявляется в виде периодических вспышек, возникающих на 5—7-й день после завоза сборного поголовья телят для комплектования стада. Вначале заболевают отдельные животные, затем количество животных быстро нарастает, достигая максимума на 10—12-й день. Вспышка длится 19—21 день, в течение которых заболевает 76—82% животных. Летальность составляет 19,3—22,3%.

Характерной особенностью инфекции в промышленном животноводстве являются частые случаи осложнения секундарной микрофлорой, обусловливающие более тяжелое течение болезни и высокую летальность (36,2%).

На мелких фермах инфекция протекает гораздо слабее и часто бессимптомно.

К вирусу инфекционного ринотрахеита очень чувствителен плод КРС, заражение и гибель которого приводят к аборту чаще на 8-ом месяце стельности.

Патогенез. При инфекционном ринотрахеите установлено отсутствие виремии, а факт обнаружения вируса в различных органах и тканях исследователи объясняют миграцией лейкоцитов, которые в комплексе с вирусом «инфекционный комплекс» обусловливают распространение вируса в организме с первичных мест инфицирования.

Вирус размножается в чувствительных клетках слизистых оболочек, вызывая характерный симптомокомплекс поражения покровного эпителия.

Течение и симптомы болезни. Различают респираторную и генитальную формы инфекционного ринотрахеита. Некоторые исследователи выделяют также конъюнктивальную, менингоэнцефалитную и кожную формы болезни.

Респираторную форму наблюдают главным образом у откормочного молодняка. Различают острое, подострое и хроническое течение болезни.

Острое течение болезни обычно наблюдают при первичной вспышке инфекции в хозяйстве при поступлении в неблагополучное стадо неиммунных животных, а также на предприятиях по производству говядины при смешивании в период комплектования сборного поголовья телят.

Инкубационный период продолжается 2—5 сут. Заболевание начинается с подъема температуры тела до 41— 42 °C, слезотечения, слюнотечения, обильных слизистых выделений из носа. Отмечают также учащенное поверхностное дыхание, угнетение, снижение аппетита, кашель. В дальнейшем развивается сильная одышка, животное стоит с широко расставленными ногами или лежит, вытянув вперед шею и открыв рот, из которого нередко выпадает отечный язык, выделяется пенистая слюна. Иногда наступает внезапная смерть от удушья вследствие закупорки просвета бронхов вязким экссудатом. Наряду с респираторным синдромом у некоторых животных отмечают конъюнктивит, светобоязнь. При остром течении 10—20% телят гибнет на 2—5-й день болезни, выздоровевшие отстают в развитии.

При подостром течении наблюдают повышение температуры тела до 41—42°С, гиперемию слизистой оболочка носа, носового зеркальца («красный нос»), угнетение, обильное серозно-слизистое истечение из носа, пенистое слюнотечение. По мере развития болезни на слизистой оболочке носа появляются мелкие очаги некроза, поверхностные язвы. Истечения из носовой полости становятся фибринозно-гнойными, выдыхаемый воздух зловонным. Дыхание у животных учащенное, поверхностное, ярко выражена одышка; отмечают сухой кашель, вначале короткий, а затем громкий, лающий. Ухудшается или полностью исчезает аппетит, наступает истощение, прогрессирует упадок сил, больные животные лежат. Продолжительность болезни 7—10 дн. Отмечают частые случаи осложнения патогенной микрофлорой, следствием чего является бронхопневмония.

Хроническое течение инфекционного ринотрахеита обычно наблюдают в конце эпизоотии, как следствие перехода острых и подострых случаев болезни. Заболевание может продолжаться до 1,5 мес, нередко осложняясь секундарной инфекцией.

Генитальная форма. Инкубационный период при передаче вируса во время случки составляет от 3 до 12 дней. Отмечают кратковременное повышение температуры тела, уменьшение аппетита, снижение лактации, частое мочеиспускание. Слизистая оболочка вульвы и преддверия влагалища отечна, гиперемирована, покрыта светлои темно-красными узелками величиной с булавочную головку, которые окружены алой зоной. В последующем развиваются везикулы, пустулы, дифтеритические пленки, после отторжения которых образуются язвы. Спина изогнута, из влагалища выделяется слизисто-гнойный экссудат. Через 2—3 недели наступает улучшение общего состояния и выздоровление. У беременных коров часто бывают аборты, сопровождающиеся метритами и задержанием последа. Вульвовагиниты могут протекать и субклинически. Латентное инфицирование обусловливает возможность выделения вируса из влагалища до 570 дней.

У быков инкубационный период составляет 40—72 ч. Болезнь проявляется лихорадкой (40—41,5°), угнетением, снижением__аппетита. неспособностью к спариванию На месте перехода складки слизистой оболочки с головки пениса на препуции, а также на слизистой оболочке препуциалького мешка обнаруживают мелкие розовые узелки, которые на 4—5-й день лопаются, образуют язвы и эрозии, из препуция выделяется гной. На 6—8-п день начинается заживление язв и эрозий без рубцов и к 12—14-му дню животные выздоравливают. Бывают случаи субклинического бессимптомного переболевакия быков, сопровождающиеся выделением вируса со спермой до 626 дн.

Патологоанатомические изменения. При респираторной форме болезни устанавливают катаральное воспаление и отек слизистой оболочки носовой полости, гортани, трахеи, скопление серозного или гнойного экссудатов в носовых ходах и трахее. Иногда на слизистой оболочке носа обнаруживают очаги некроза, кровоизлияния, серозно-фибринозные пленки. Конъюнктива отечна, гиперемирована. Легкие увеличены в объеме, просветы бронхов и альвеол заполнены пенистой жидкостью или слизисто-гнойным экссудатом. В случаях, когда инфекционный ринотрахеит осложняется секундарной микрофлорой, на слизистой носовой полости и трахеи выявляют очаги некроза, дифтеритические наложения, эмфизему легких, катарально-гнойную бронхопневмонию.

При генитальной форме выявляют гиперемию слизистых оболочек преддверия и вагины у коров, препуция и пениса у быков, появление на них кровоизлияний, пустул, а в более поздние сроки — эрозий и язв. Иногда обнаруживают некротические очаги слизистой оболочки, покрытые дифтеритической пленкой.

Диагноз устанавливают на основании клинико-эпизоотологических данных, патологоанатомических изменений, а также результатов лабораторных исследований.

Для исследований от больных животных в период максимального проявления у них клинических признаков в лабораторию направляют истечения, соскобы и смывы из носовой полости, влагалища, препуция. Одновременно от них для серологического исследования отбирают первую пробу крови (вторую — через 25—30 дн). От павших и вынужденно убитых животных не позднее чем через 2 ч после гибели берут небольшие кусочки слизистой оболочки носа, гортани, трахеи, а также легких, головного мозга, пораженных участков желудочно-кишечного тракта, органы абортивного плода, которые помещают в стерильные флаконы и доставляют в лабораторию в термосе со льдом.

Лабораторные исследования предусматривают обнаружение в патологическом материале вирусного антигена методом иммунофлюоресценции, выделение возбудителя и его идентификацию в РН и РИФ, выявление антител в крови переболевших животных (серологическая диагностика) в РНГА и РН.

Обнаружение вирусного антигена ИФ методом. Со слизистой оболочки носовой перегородки, бронхов, трахеи, влагалища делают скальпелем соскобы, вносят их в центрифужные пробирки с 5 мл физиологического раствора и центрифугируют 10 мин при 2000 об./мин. Осадок клеток суспензируют в 0,5 мл того же раствора и на обезжиренных предметных стеклах готовят по 4 мазка из каждого исследуемого препарата. Одновременно готовят по 4 препарата-отпечатка или гистосреза из кусочков легких, головного мозга, органов абортированного плода. Препараты подсушивают на воздухе, фиксируют 5 мин в ацетоне, окрашивают флюоресцирующими сыворотками во влажной камере при 37 °C в течение 45 мин. Затем их ополаскивают в трех сменах физиологического раствора (рН 7,2— 7,4) и в дистиллированной воде, подсушивают на воздухе, исследуют под люминесцентным микроскопом.

В положительных случаях в ядре на тусклом зеленовато-сером фоне ткани выявляют яркое зеленовато-желтое диффузное или в виде гранул свечение вирусного антигена.

Для контроля специфичности свечения ставят реакцию подавления иммунофлюоресценции. Для этого на два препарата из органа, при исследовании которого получена положительная реакция иммунофлюоресценции, наносят специфическую сыворотку в разведении 1:10 и выдерживают в термостате во влажной камере 30 мин.

В контрольных препаратах, обработанных последовательно специфической и флюоресцирующей сыворотками, специфическое свечение отсутствует.

Выделение вируса в культуре клеток. Флаконы со смывами, а также со слизью и соскобами, ресуспензированными в растворе Хэнкса с антибиотиками, центрифугируют 10 мин при 2 тыс. об/мин, надосадочную жидкость отсасывают в стерильную посуду, куда вносят по 500 ЕД/мл пенициллина и 500 мкг/мл стрептомицина, выдерживают 2—4 ч при 4 °C и используют для заражения культур клеток.

Из кусочков слизистой оболочки носовой полости, трахеи, бронхов, а также легких и головного мозга готовят 10%-ную суспензию на растворе Хэнкса с антибиотиками, центрифугируют 20 мин при 5 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость отсасывают, выдерживают 2—4 ч при 4 °C и используют для заражения культур клеток.

Вируссодержащим материалом заражают по 5 первично-трипсинизированных культур клеток почек или селезенки эмбриона коровы, почек теленка, тестикулов бычков. Пробирки с монослоем клеток отмывают раствором Хэнкса, вносят по 0,1—0,2 мл каждого исследуемого материала, выдерживают 60—90 мин при 37 °C в термостате. Затем вируссодержащий материал удаляют, добавляют 1 мл поддерживающей среды, содержащей 200 ЕД/мл пенициллина и 200 мкг/мл стрептомицина, ставят на инкубацию при 37 °C. Контролем служат 4 пробирки с незараженными культурами клеток, в которых ростовую среду заменяют поддерживающей. Просмотр пробирок начинают со 2-го дня и проводят 7—^14 сут — до обнаружения ЦПД, которое проявляется обычно через 36—48 ч.

При цитологическом исследовании инфицированной культуры клеток, окрашенной гематоксилин-эозином, обнаруживают внутриядерные тельца-включения.

Идентификация вируса в РН. Выделенный вирус разводят от 10~' до 10~7, специфическую и отрицательную (контрольную) сыворотки 1:10 питательной средой для культур клеток. Сыворотки перед постановкой реакции инактивируют 30 мин при 56 °C в водяной бане. К каждому разведению вируса в первом ряду добавляют равный объем специфической сыворотки, во втором ряду — отрицательной. Смеси выдерживают 1 ч при 37 °C, затем вносят по 0,1 мл каждой в 4 пробирочные культуры клеток, куда добавляют также по 0,9 мл поддерживающей среды. Инкубируют при 37 °C до полного проявления ЦПД. Титр вируса определяют в присутствии специфической и отрицательной сывороток и выражают его в log ТЦД50/мл.

Видовую принадлежность вируса устанавливают при наличии разности в титрах вируса с отрицательной и положительной сыворотками не менее чем на 2 логарифма.

Серологическая диагностика основывается на постановке РН и РНГА. Для исследования используют парные сыворотки крови, взятые в первые 2—3 сут болезни, а затем через 14—30 дн. Перед исследованием сыворотки прогревают 30 мин при 56 °C.

Постановка и учет РН. Готовят двукратные разведения испытуемых сывороток от 1:2 до 1:64 на питательной среде для культур клеток в объеме 0,5 мл.

Имеющийся в диагностическом наборе вирус предварительно титруют в культуре клеток. Для этого сухой антиген (вирус) разводят десятикратно от 10~' до 10~10 (конечный титр сухого антигена указан на этикетке) питательной средой. Каждым разведением с вируса в объеме 1 мл заражают по 4 пробирки с культурой клеток, отмытой раствором Хэнкса. Культуры клеток инкубируют при 37 °C, ежедневно просматривают в течение 5—7 сут. Титром вируса считают его наибольшее разведение, вызывающее ЦПД в 50% культур клеток. Вычисляют титр по Риду—Менчу и выражают в ТЦД so/мл. Затем готовят необходимый объем вируса, содержащего 100 ТЦДзч в 0,1 мл, и добавляют равный объем его (0,5мл) в каждую пробирку с разведением сывороток. Смесь вируса и сыворотки выдерживают 1 ч при 37 °C, вносят каждую в объеме 0,2 мл в 4 пробирки с культурой клеток, куда добавляют 0,8 мл поддерживающей среды. Инкубируют в термостате при 37°. Контролем служат 4 пробирки с незараженной культурой клеток, 4 пробирки, зараженные 0,2 мл вируса, содержащего 100 ТЦДго в 6,1 мл.

Титром сыворотки считают то ее предельное разведение, которое предотвратило ЦПД в 50% зараженных культур клеток.

Положительный диагноз при инфекционном ринотрахеите устанавливают при 4-кратном и большем увеличении титра сывороток во второй пробе в сравнении с первой.

Постановка и учет РНГА. Исследуемые и контрольную (отрицательную) сыворотки разводят двукратно в объеме 0,2 мл. Для разведения используют физиологический раствор (рН 7,2—7,4), к которому добавляют 1% нормальной сыворотки кролика, истощенной эритроцитами барана, или 0,25% бычьего альбумина. К каждому разведению сыворотки добавляют по 0,05 мл эритроцитариого диагностикума. Смесь сыворотки и эритроцитарного диагностикума осторожно перемешивают, оставляют при комнатной температуре на 1—2 ч. Титром сыворотки считают то ее наибольшее разведение, которое вызвало агглютинацию диагностикума. В ряду с контрольной отрицательной сывороткой агглютинация должна отсутствовать.

Таким образом, диагноз на ИРТ считается установленным:

— при выделении и идентификации вируса в патологическом материале;

— при нарастании в 4 и более раз титров специфических антител.

Дифференциальный диагноз. Инфекционный ринотрахеит необходимо отличать от парагриппа-3, вирусной диареи, ящура, злокачественной катаральной горячки, пастереллеза.

Парагрипп-3 возникает после стрессовых ситуаций (переохлаждение, транспортировка), сопровождается поражением легких. Вирус образует не только внутриядерные, но и цитоплазматические включения, содержит ге-магглютинин. Лабораторный диагноз устанавливают по РГА, РГАд, РТГА, РТГАд, РН. Вирусная диарея характеризуется преимущественным поражением пищеварительного тракта; окончательный диагноз устанавливают по РН со специфической сывороткой в культуре клеток. Ящур отличается большой контагиозностью, более быстрым распространением инфекции, меньшей летальностью. Для болезни характерным является образование специфических афт в ротовой полости, в области вымени, венчика. Ящур диагностируют по РСК. Злокачественная катаральная горячка сопровождается поражением роговицы глаз (помутнение, изъязвление), расстройством нервной системы, наличием цитоплазматических включений в мозговой ткани. Пастереллез проявляется септицемией, явлениями геморрагического диатеза, обширными отеками подкожной и межмышечной клетчатки. При бактериологическом исследовании выделяют грамотрица-тельные биполярные бактерии.

Лечение. Больных животных лечат гипериммунной сывороткой или сывороткой реконвалесцентов. Препараты применяют аэрозольно из расчета 10 мл/м3 помещения, добавляя к ним 10% стерильного медицинского глицерина, или подкожно в дозе 2 мл/кг. Используют также аэрозоли тимола (к спиртовому раствору тимола 1:16 добавляют равное количество глицерина и распыляют на САГ-1 по 1 ч в течение трех дней подряд), аэрозоли 40%-ного раствора молочной кислоты (распыляют на 1 мл/м5 помещения по 1 ч в течение трех дней подряд), аэрозоли йода (1 г кристаллического йода, 0,09 алюминиевой пудры, 0,13 г хлористого аммония, несколько капель воды на 1 м³ помещения, применяют по 1 ч в течение 4—5 дн). Проводят ингаляцию хлорскипидаром (смешивание 2 г хлорной извести, содержащей не менее 25% активного хлора, и 0,02 г скипидара на 1 м³ помещения), используют отхаркивающие и общеукрепляющие средства (натрий гидрокарбонат внутрь по 20—25 г на 100 кг живой массы в течение 8—10 дн, глюкоза, хлористый кальций, витамины и др.). При осложнении секундарной инфекцией используют антибиотики пролонгированного действия, сульфаниламидные и нитрофурановые препараты.

Иммунитет и специфическая профилактика. У переболевших животных иммунитет длится 1,5—2 года, при респираторной форме он более напряженный и продолжительный, нежели при генитальной. Из средств специфической профилактики применяют живую вирус-вакцину ВИЭВ против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота, инактивированную вакцину против инфекционного ринотрахеита, а также сухую культуральную ассоциированную вакцину против парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.

Вирус-вакцину ВИЭВ против инфекционного ринотрахеита применяют для профилактической и вынужденной иммунизации крупного рогатого скота в хозяйствах, неблагополучных по инфекционному ринотрахеиту. Вакцинации подлежат клинически здоровые животные. Не разрешается прививать слабых животных и больных другими болезнями, а также стельных коров после 4-го месяца стельности.

Сухую живую вакцину перед применением растворяют стерильным физиологическим раствором в объеме, зависящем от титра вакцины. Используют не позднее 2 ч после растворения, а в теплое время не позднее 30 мин, предохраняя ее от действия солнечных лучей. Неиспользованную вакцину уничтожают посредством 15-минутного кипячения.

Вакцину вводят в следующих дозах: молодняку в возрасте от 10 дн до 4 мес — по 2 мл двукратно — первый раз — интраназально по 1 мл в каждый носовой ход, второй раз — подкожно через 14 дней в дозе 2 мл, животным старше 4 мес. —3 мл однократно, подкожно в области верхней трети шеи._

" Первую (интраназальную) вакцинацию телят проводят в хозяйствах-поставщиках за 2—3 дн до перевода или в первые 2 дн после перевода на откорм или доращивание. Для интраназальной аппликации вакцины используют аэрозольные распылители, автоматические шприцы с аэрозольной насадкой. Вакцину в носовые ходы можно ввести с помощью шприца с надетой на него резиновой трубкой длиной 5—7 см.

Иммунитет у привитых животных наступает на 5—7-й день после вакцинации и сохраняется не менее 1 г.

У отдельных животных после вакцинации возможно кратковременное (12—24 ч) повышение температуры тела и признаки слабого серозного ринита, без нарушений в общем состоянии организма.

Инактивированная вакцина против инфекционного ринотрахеита изготавливается из вируса, выращенного в однослойной культуре клеток ПЭК, ТБ и их субкультурах.

Применяют для профилактической иммунизации крупного рогатого скота в хозяйствах репродукторного и племенного направления. Прививают только клинически здоровых животных.

В хозяйствах, благополучных и угрожаемых по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота, животных вакцинируют внутримышечно, двукратно с интервалом 30 дн: молодняк до 6-месячного возраста по 5 мл, всем остальных животных — по 10 мл. Стельных коров иммунизируют в последние 3 мес стельности 2-кратно с интервалом 30 дн. Телят от вакцинированных коров прививают 2: кратно с интервалом 30 дней, начиная с 3-месячного возраста. Телят, родившихся от неиммунизированных коров, а также с неизвестным иммунологическим фоном, прививают в 6-недельном возрасте и повторно через 30 дн.

При вспышке инфекционного ринотрахеита животных всех возрастов вакцинируют внутримышечно 2-кратно с интервалом 14 дн.

После вакцинации у части животных может повышаться температура тела и удерживаться 48—72 ч.

Иммунитет у вакцинированных животных наступает через 14 дн после второй прививки и сохраняется не менее 6 мес. Вакцинированных животных можно вывозить в другие хозяйства через 14 дн после второй прививки.

Вакцину против парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота вводят телятам в возрасте до 3-х мес. 2-кратно — первый раз интраназально по 1 мл в каждый носовой ход, второй раз через 14 дн подкожно в средней трети шеи в дозе 2 мл, молодняку старше 3 мес — интраназально по 1 мл в каждый носовой ход, повторно через 14 дн, подкожно в дозе 3 мл. Иммунитет формируется через 2 недели после вакцинации, длится не менее 6 мес после повторной иммунизации. Убой привитых животных разрешается через 7 дн после вакцинации.

Вакцину применяют в неблагополучных хозяйствах для профилактики ПГ-3 и ИРТ.

В животноводческих комплексах откормочного типа телят с 20-дневного возраста вакцинируют в первые 2 дн после поступления в хозяйство по группам, разрешая перемещения животных не ранее чем через 2 недели со дня повторной вакцинации.

В хозяйствах репродукторного типа вакцину применяют в случае вспышки болезни. При этом вынужденно вакцинируют всех животных, находящихся под угрозой заражения. Вакцинации подлежат клинически здоровые животные. Слабых животных и больных другими болезнями изолируют, подвергают лечению и прививают после их выздоровления. Первая вакцинация может вызвать у некоторых животных кратковременное повышение температуры тела и слабые серозные истечения из носа, повторное введение у отдельных вакцинированных животных может вызвать незначительное кратковременное повышение температуры тела.

Профилактика и меры борьбы. В основу профилактики ИРТ положено строгое соблюдение ветеринарных требований по охране хозяйств от заноса возбудителя инфекции, проведение комплекса мер, направленных на повышение резистентное организма, своевременную диагностику, выделение и изоляцию больных животных, обезвреживание вируса во внешней среде.

Для охраны хозяйств от заноса возбудителя инфекции необходимо комплектовать их здоровыми животными из закрепленных репродукторных ферм, благополучных по инфекционным болезням, с соблюдением принципа «пусто — занято». Помещения необходимо заполнять одновозрастными животными в течение 3 — 5 дн, размещать в секциях телят только одного хозяйства-поставщика, содержать их одной группой до перевода в группу следующего периода выращивания (откорма) или сдачи на убой; доукомплектование запрещается. В течение 30 дн вновь поступившие животные должны находиться в карантине. Необходимо строго выполнять требования работы предприятий закрытого типа, поддерживать в помещениях нормальный микроклимат, регулярно проводить профилактическую аэрозольную дезинфекцию воздуха, механическую очистку стен, перегородок, полов и кормушек с их последующей дезинфекцией.

При подозрении на заболевание животных ИРТ проводят их клинический осмотр, выявляют и изолируют больных, отбирают от них патологический материал и направляют в лабораторию для диагностического исследования.

При установлении диагноза хозяйство объявляют неблагополучным по этой болезни и вводят ограничения: запрещают ввод в хозяйство и вывод из него животных, перегруппировку их внутри хозяйства, вывоз фуража и предметов ухода, закрепляют для ухода за животными отдельный обслуживающий персонал и др.

Больных животных изолируют и лечат. Всех остальных животных, находящихся в новом эпизоотическом очаге, немедленно вакцинируют сухой вирусвакциной против инфекционного ринотрахеита согласно наставлению по ее применению. В стационарно неблагополучных хозяйствах мясного, направления всех подозрительных по заболеванию и подозреваемых в заражении животных вакцинируют сухой вирусвакциной против ИРТ.

В хозяйствах молочного направления всех животных, находящихся в новом эпизоотическом очаге и иммунизированных сухой вирус-вакциной, через 25—30 дн подвергают 2-кратной вакцинации инактивированной вакциной согласно наставлению по ее применению. Больных животных лечат.

В угрожаемой зоне животных прививают инактивированной вакциной.

Помещения, где содержатся больные и подозрительные по заболеванию животные, а также предметы ухода, спецодежду, подстилку и навоз обеззараживают.

Для дезинфекции применяют: 1%-ный раствор формальдегида; 4%-ный горячий раствор ниртана; 5%-ный раствор хлорамина-Б; раствор гипохлорита натрия с содержанием 1,5% активного хлора; осветленный раствор хлорной извести с содержанием 2% активного хлора при экспозиции 3 ч; 2%-ный горячий раствор едкого натрия при экспозиции 4 ч; 3%-ный раствор ниртана, подогретый до 50 °C, при экспозиции 5 ч. Расход растворов 1 л/м2.

Дезинфекцию можно проводить и аэрозольным методом, используя формалин из расчета 20 мл/м3 при экспозиции 12 ч, 25%-ный раствор глутарового альдегида из расчета 25 мл/м3 при экспозиции 24 ч.

Дезинфекцию проводят также посредством направленного нанесения потока аэрозоля на поверхность помещения, используя раствор гипохлорита натрия с содержанием 1,5% активного хлора или 3%-ный раствор надуксусной кислоты, приготовленный согласно наставлению по применению. Вышеуказанные растворы расходуют из расчета 200 мл/м2 при экспозиции 3 ч.

Шкуры павших и вынужденно убитых животных обеззараживают путем вымачивания в дезрастворе: 50 г алюминиевых квасцов, 200 г поваренной соли на 1 л воды при 16—18°С в течение 48 ч.

Молоко от больных и подозрительных по заболеванию животных после пастеризации при 70 °C в течение 30 мин используют в пищу людям и в корм животным.

Хозяйство объявляют благополучным и снимают с него отграничения через 30 дн после последнего случая выздоровления больного животного и проведения заключительной дезинфекции.

инфекционный ринотрахеит