ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚
АнтистрСссовый сСрвис

Анализ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ in vitro сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ миобластов, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· скСлСтных ΠΌΡ‹ΡˆΡ† крыс Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², ΠΈΠ·ΠΎΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· Ρ„Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ…, Π½Π΅ΠΎΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΈ ΠΌΡ‹ΡˆΡ† взрослых ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ…, выявлСна ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ВЦМ, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Ρ‡Π΅Ρ‚Ρ‹Ρ€Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹: ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, Π ΠΈ 2Π° ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½. ΠŸΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΡŽ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ тяТСлых Ρ†Π΅ΠΏΠ΅ΠΉ ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½Π° (ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, Ρ€ΠΈ 2Π°) ΠΏΡ€ΠΈ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ΅ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Анализ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ in vitro сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ миобластов, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· скСлСтных ΠΌΡ‹ΡˆΡ† крыс Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • Π“Π»Π°Π²Π° 1. ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹
    • 1. 1. Π‘Π°Ρ‚Π΅Π»Π»ΠΈΡ‚Π½Ρ‹Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΊΠ°ΠΊ тканСспСцифичСскиС стволовыС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ взрослого ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ°
      • 1. 1. 1. Π˜Π΄Π΅Π½Ρ‚ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΡ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ. ΠΈΡ… ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚рация Π² ΠΌΡ‹ΡˆΡ†Π°Ρ…
      • 1. 1. 2. Π€ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡƒΠ»Π° сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ
      • 1. 1. 3. Роль Π³Π΅Π½ΠΎΠ² сСмСйства Pax
      • 1. 1. 4. ΠΠ»ΡŒΡ‚Π΅Ρ€Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ Π³ΠΈΠΏΠΎΡ‚Π΅Π·Ρ‹ происхоТдСния ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅
    • 1. 2. Π”ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ° сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ
      • 1. 2. 1. Активация ΠΈ Π°ΡΠΈΠΌΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠ΅ Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ
  • Роль Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π° Numb
    • 1. 2. 2. Роль Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² роста Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ, ΠΏΡ€ΠΎΠ»ΠΈΡ„Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ
    • 1. 2. 3. БлияниС миобластов ΠΈ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ многоядСрных ΠΌΠΈΠΎΡ‚ΡƒΠ±
  • Роль Π³Π΅Π½ΠΎΠ² сСмСйства bHLH Π² Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°
    • 1. 2. 4. ЭкспрСссия ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΈ ΡΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· структурных Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΠΌΡ‹ΡˆΡ† Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°
    • 1. 2. Бходство ΠΈ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡ΠΈΡ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΌ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ
    • 1. 4. Роль Π‘Π° Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ. сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ²
    • 1. 5. ИспользованиС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€ для изучСния процСссов ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° in vitro
  • Π“Π»Π°Π²Π° 2. ΠœΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρ‹ ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
    • 2. 1. ΠžΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚ исслСдования
    • 2. 2. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ²ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ
    • 2. 3. ГистологичСскоС ΠΎΠΊΡ€Π°ΡˆΠΈΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅
    • 2. 4. ΠŸΡ€ΠΈΠ³ΠΎΡ‚ΠΎΠ²Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ криостатных срСзов
    • 2. 5. Π˜ΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΎΡ†ΠΈΡ‚ΠΎΡ…ΠΈΠΌΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·
    • 2. 6. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ‚ΠΎΡ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ РНК
    • 2. 7. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ‚ΠΎΡ‚Π ΠΠš Π² ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π΅
    • 2. 8. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ мРНК
    • 2. 8. Π‘ΠΈΠ½Ρ‚Π΅Π· ΠΊΠ”ΠΠš
    • 2. 9. ΠšΠΎΠ½ΡΡ‚Ρ€ΡƒΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡ€Π°ΠΉΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠ²
    • 2. 10. Нормировка ΠΊΠ”ΠΠš Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΡ‚Π΅ΠΊ
    • 2. 11. ΠŸΠΎΠ»ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Π°Π·Π½Π°Ρ цСпная рСакция
    • 2. 12. Π’Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π”ΠΠš ΠΈΠ· Π°Π³Π°Ρ€ΠΎΠ·Π½ΠΎΠ³ΠΎ гСля
    • 2. 13. Π‘Π΅ΠΊΠ²Π΅Π½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅
    • 2. 14. ΠŸΠΎΠ΄ΡΡ‡Π΅Ρ‚ количСства сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ². БтатистичСская ΠΎΠ±Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ²
  • Π“Π»Π°Π²Π° 3. Π Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ исслСдований
    • 3. 1. ПовСдСниС ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ². Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅
    • 3. 2. Π˜ΠΌΠΌΡƒΠΈΠΎΡ†ΠΈΡ‚ΠΎΡ…ΠΈΠΌΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠ°Ρ характСристика ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π² Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† крыс ΠΏΠ° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°
    • 3. 3. Π‘Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· экспрСссии Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ². ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ²
      • 3. 3. 1. ИсслСдованиС экспрСссии Π³Π΅Π½Π° Π Π°Ρ…
      • 3. 3. 2. Π˜ΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΎΡ†ΠΈΡ‚ΠΎΡ…ΠΈΠΌΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· экспрСссии. дСсмина ΠΈ ΠΌ-ΠΊΠ°Π΄Π³Π΅Ρ€ΠΈΠ½Π°
    • 3. 4. ВлияниС Π‘Π°2+ Π½Π° Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΡƒ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΡΠ΄Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… миобластов in vitro
    • 3. 5. Π’Π΅ΠΌΠΏΡ‹ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² in vitro
    • 3. 5. Π‘Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· экспрСссии Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ² ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ
      • 3. 5. 1. ИсслСдованиС экспрСссии Π³Π΅Π½Π° Π Π°Ρ…7 Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ in vitro
      • 3. 5. 2. Анализ экспрСссия Π³Π΅Π½Π° MyoD Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ²
      • 3. 5. 3. Анализ экспрСссии Π³Π΅Π½Π°, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ΠΌ-ΠΊΠ°Π΄Π³Π΅Ρ€ΠΈΠ½, Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ²
    • 3. 6. ИсслСдованиС экспрСссии Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ тяТСлых Ρ†Π΅ΠΏΠ΅ΠΉ ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½Π° Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ² in vitro
      • 3. 6. 1. Π˜ΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΎΡ†ΠΈΡ‚ΠΎΡ…ΠΈΠΌΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· экспрСссии ΠΌΠ΅Π΄Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈ Π±Ρ‹ΡΡ‚Ρ€Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ ВЦМ
      • 3. 6. 2. Анализ экспрСссии ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹ ВЦМ
      • 3. 6. 3. ЭкспрСссия ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹ ВЦМ
      • 3. 8. 3. Анализ экспрСссии ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹ (3 ВЦМ
      • 3. 8. 4. ИсслСдованиС экспрСссии Π³Π΅Π½Π°, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ВЦМ 2Π°
  • Π“Π»Π°Π²Π° 4. ΠžΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΠ²
    • 4. 1. Π‘Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Π°Ρ характСристика ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°
      • 4. 1. 1. АдгСзивныС свойства ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ²
      • 4. 1. 1. ЭкспрСссия Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ² ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ²
    • 4. 2. ВлияниС Π‘ Π°" Π½Π° Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΡƒ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΡΠ΄Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… миобластов in vitro
    • 4. 3. Π’Π΅ΠΌΠΏΡ‹ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΡΠΊΠ΅Π»Π΅Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… ΠΌΡ‹ΡˆΡ† крыс Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°
    • 4. 5. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ экспрСссии Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ тяТСлых Ρ†Π΅ΠΏΠ΅ΠΉ ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½Π° Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠ΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² in vitro
  • Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹

Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ процСссов роста, Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΈ Π²ΠΎΡΡΡ‚ановлСния ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½ΠΎΠΉ Ρ‚ΠΊΠ°Π½ΠΈ Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ стволовых ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ прСдставляСт собой ΠΎΠ΄Π½ΠΎ ΠΈΠ· Π°ΠΊΡ‚ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠΉ соврСмСнной Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ развития, молСкулярной ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ. Π’ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π΅ ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‚ΡΡ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅, Ρ‡Ρ‚ΠΎ стволовыС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ скСлСтных ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΡŽΡ‚ собой Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΡƒΡŽ ΠΏΠΎΠΏΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΡŽ, Π² ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΉ имССтся Π΄Π²Π° Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ. ΠŸΠ΅Ρ€Π²Ρ‹ΠΉ Ρ‚ΠΈΠΏ — сатСллитныС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ, Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ ΠΏΠΎΠΏΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΡŽ ΠΊΠΎΠΌΠΌΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΈ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ½ (Zammit, Beauchamp, 2001; Charge, Rudnicki, 2004) — Π²Ρ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΉ — ΠΌΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΈ ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ся собствСнно стволовыми ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°ΠΌΠΈ ΠΌΡ‹ΡˆΡ† (Seale, Rudnicki, 2000). Однако Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠ½ΡΡ‚Π²ΠΎ Π°Π²Ρ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² придСрТиваСтся ΠΎΠ±Ρ‰Π΅ΠΏΡ€ΠΈΠ·Π½Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ зрСния, согласно ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΉ процСссы роста ΠΈ Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ скСлСтных ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΎΠ±Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ‡ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‚ΡΡ Π·Π° ΡΡ‡Π΅Ρ‚ популяции сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ (Bailey et al., 2001; Seale et al., 2001; Zammit, Beauchamp, 2001; Charge, Rudnicki, 2004). Π‘Π°Ρ‚Π΅Π»Π»ΠΈΡ‚Π½Ρ‹Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½ΠΎΠΉ систСмы ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ пСрспСктивной модСлью для изучСния ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎ-гСнСтичСских ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΎΠ»ΠΈΡ„Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ, Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ, Π°ΠΏΠΎΠΏΡ‚ΠΎΠ·Π° ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… процСссов, ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΊΠ°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ развития ΠΌΡ‹ΡˆΡ†.

ИсслСдования, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ проводятся Π² ΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ, Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Ρ‹ Π½Π° ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ формирования ΠΈΡ… ΠΏΡƒΠ»Π° Π² ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΎΠ΄ развития ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½ΠΎΠΉ Ρ‚ΠΊΠ°Π½ΠΈ Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅ (Seale, Rudnicki, 2000; Gros et al., 2005), рСгуляции самообновлСния ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΡ ΠΏΡƒΠ»Π° этих ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ ΠΈΠ½Π΄ΠΈΠ²ΠΈΠ΄ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития, контроля процСссов Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ, ΠΏΡ€ΠΎΠ»ΠΈΡ„Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ (Cooper et al., 1999; Anderson, 2000; Shen et al., 2002; Hill et al., 2003; Charge, Rudnicki, 2004; Shinin et al, 2006).

ΠŸΠΎΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΡƒ сатСллитныС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅ Π² ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΎΠ΄ формирования ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½ΠΎΠΉ Ρ‚ΠΊΠ°Π½ΠΈ ΠΈ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‚ Π½Π° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚яТСнии всСго ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°, Π²Π°ΠΆΠ½ΠΎ Π²Ρ‹ΡΡΠ½ΠΈΡ‚ΡŒ, ΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ Π»ΠΈ различия ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ сатСллнтными ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°ΠΌΠΈ, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† Π² ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΈ ΠΏΠΎΡΡ‚Π½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΎΠ΄Ρ‹ развития. БущСствСнным являСтся вопрос ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, способны Π»ΠΈ сатСллитныС ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΊ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΡŽ Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅, ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΈΠ½Π΄ΠΈΠ²ΠΈΠ΄ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития. Π’Π΅Ρ€ΠΌΠΈΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ этап Π΄Π½Ρ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΏ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ in vitro, ΠΊΠ°ΠΊ ΠΈ in vivo — синтСз Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΡΠΎΠΊΡ€Π°Ρ‚ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ Π°ΠΏΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Π°, ΠΏΡ€Π΅ΠΆΠ΄Π΅ всСго ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½Π°. НСсмотря Π½Π° ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎΡ‡ΠΈΡΠ»Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ исслСдования Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½Π° in vivo, Π² Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π΅ ΠΎΡ‚ΡΡƒΡ‚ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‚ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ичности экспрСссии этих Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ in vitro ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°.

ЦСль настоящСй диссСртационной Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ — ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ исслСдованиС процСсса Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ in vitro сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† крыс Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°.

Π’ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ прСдстояло Ρ€Π΅ΡˆΠΈΡ‚ΡŒ ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ:

1. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† крыс Π½Π° 20−21 сут эмбриогСнСза, 3−5 сут ΠΏΠΎΡΡ‚Π½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† взрослых ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠ²ΠΎΠ·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… крыс;

2. ΠžΡ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ·ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ нммуноцитохимичСских ΠΈ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎ-гСнСтичСских ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ²;

3. Π‘Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Π°Π΄Π³Π΅Π·ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ свойства ΠΈ Ρ‚Π΅ΠΌΠΏΡ‹ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΈΠ½Π΄ΠΈΠ²ΠΈΠ΄ΡƒΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития;

4. Π˜ΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΡŽ Π³Π΅Π½Π° Π Π°Ρ…7 — основного транскрипционного Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π°, отвСтствСнного Π·Π° ΡΠ°ΠΌΠΎΠΎΠ±Π½ΠΎΠ²Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡƒΠ»Π° сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ;

5. ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅ΡΡ‚ΠΈ ΡΡ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· экспрСссии Π³Π΅Π½ΠΎΠ²-ΠΌΠ°Ρ€ΠΊΠ΅Ρ€ΠΎΠ² ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°;

6. ΠŸΡ€ΠΎΠ°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΡŽ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌ тяТСлых Ρ†Π΅ΠΏΠ΅ΠΉ ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½Π° (ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, Ρ€ΠΈ 2Π°) ΠΏΡ€ΠΈ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ΅ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… этапах ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°.

Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹

1. Π’ Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² (сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΡΠ΄Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… миобластов), Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° 20−21 сут эмбриогСнСза, 3−5 сут ΠΏΠΎΡΡ‚Π½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† взрослых крыс, экспрСссия Π³Π΅Π½Π° спСцифичСского транскрипционного Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π° Π Π°Ρ…7 Π½Π΅ ΠΈΠ·ΠΌΠ΅Π½ΡΠ΅Ρ‚ся, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎ ΡΠΎΡ…Ρ€Π°Π½Π΅Π½ΠΈΠΈ сатСллитными ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°ΠΌΠΈ способности ΠΊ ΡΠ°ΠΌΠΎΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΡŽ.

2. Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ установлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π΅Π½ΡŒ экспрСссия Π³Π΅Π½ΠΎΠ² MyoD ΠΈ ΠΌ-ΠΊΠ°Π΄Π³Π΅Ρ€ΠΈΠ½Π° Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° 20−21 сут эмбриогСнСза, Π²Ρ‹ΡˆΠ΅ ΠΏΠΎ ΡΡ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΡŽ с ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°ΠΌΠΈ, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† Π½Π° 3−5 сут ΠΏΠΎΡΡ‚Π½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† взрослых крыс, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎ ΠΏΡ€Π΅ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°Π½ΠΈΠΈ Π² ΡΡƒΠ±ΠΏΠΎΠΏΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΠΈ миобластов ΠΈΠ· Ρ„Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ, ΠΊΠΎΠΌΠΌΠΈΡ‚ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠ΅.

3. ΠžΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠ΅Π½ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΈ, ΠΈΠ·ΠΎΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° 20−21 сут эмбриогСнСза, Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ·ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ Π²Ρ‹Ρ€Π°ΠΆΠ΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ Π°Π΄Π³Π΅Π·ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΌΠΈ свойствами ΠΈ Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ высоким Ρ‚Π΅ΠΌΠΏΠΎΠΌ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΏΠΎ ΡΡ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΡŽ с ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠ°ΠΌΠΈ, ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° 3−5 сут ΠΏΠΎΡΡ‚Π½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ развития ΠΈ ΠΌΡ‹ΡˆΡ† взрослых крыс.

4. Показано, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· ΠΌΡ‹ΡˆΡ† ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π°, ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Π‘Π°2+ (Π΄ΠΎ 2.0 мМ) Π² ΡΡ€Π΅Π΄Π΅ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ²ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡ ΠΏΡ€ΠΈΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ ΠΊ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ, слиянию миобластов ΠΈ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰Π΅ΠΌΡƒ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ многоядСрных ΡΠΎΠΊΡ€Π°Ρ‰Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ…ΡΡ ΠΌΠΈΠΎΡ‚ΡƒΠ±.

5. Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄ΠΈΡ„Ρ„Π΅Ρ€Π΅Π½Ρ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ-ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΈΠΊΠΎΠ², ΠΈΠ·ΠΎΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ· Ρ„Π΅Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ…, Π½Π΅ΠΎΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΈ ΠΌΡ‹ΡˆΡ† взрослых ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ…, выявлСна ΡΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΡ‡Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ экспрСссии Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ВЦМ, ΠΊΠΎΠ΄ΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… Ρ‡Π΅Ρ‚Ρ‹Ρ€Π΅ ΠΈΠ·ΠΎΡ„ΠΎΡ€ΠΌΡ‹: ΡΠΌΠ±Ρ€ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠ½Π°Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΡƒΡŽ, Π ΠΈ 2Π° ΠΌΠΈΠΎΠ·ΠΈΠ½.

Π Π°Π±ΠΎΡ‚Π° Π²Ρ‹ΠΏΠΎΠ»Π½Π΅Π½Π° ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠΊΠ΅ ΠŸΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌ ΠŸΡ€Π΅Π·ΠΈΠ΄ΠΈΡƒΠΌΠ° РАН: «ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚очная биология» ΠΈ «Π‘ΠΈΠΎΡ€Π°Π·Π½ΠΎΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΈΠ΅ ΠΈ Π΄ΠΈΠ½Π°ΠΌΠΈΠΊΠ° Π³Π΅Π½ΠΎΡ„ΠΎΠ½Π΄ΠΎΠ²».

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Π‘Π°Π»Π°Π½ О. Π’, ВоротСляк Π•. А., Π‘ΠΌΠΈΡ€Π½ΠΎΠ²Π° Π’. Π”. ΠΈ Π΄Ρ€. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ сатСллитных ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ ΠΌΠΈΠΎΠ±Π»Π°ΡΡ‚ΠΎΠ² Π½Π° Ρ€Π°Π·Π½Ρ‹Ρ… стадиях ΠΎΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° крыс // Изв. РАН БСрия Π±ΠΈΠΎΠ». 2008. № 2. Π‘. 151- 159.
  2. О.Π’., ΠŸΠ°Π»ΡŠΠΌΠ±Π°Ρ… Π›. Π ., ΠžΠ·Π΅Ρ€Π½ΡŽΠΊ Н. Π”. Π Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΠ΅ скСлСтной мускулатуры Ρƒ ΠΊΠ°Ρ€ΠΏΠΎΠ²Ρ‹Ρ… Ρ€Ρ‹Π± // Π–ΡƒΡ€Π½. ΠΎΠ±Ρ‰Π΅ΠΉ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ. 1986. Π’ΠΎΠΌ XLVII. № 5. Π‘. 656- 666.
  3. Н.Π”. РСгуляция ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° // Изв. РАН. Π‘Π΅Ρ€. Π±ΠΈΠΎΠ». 1998. № 3. Π‘. 330−343.
  4. Н.Π”. Π‘Ρ€Π°Π²Π½ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ особСнности ΠΌΠΈΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° Ρƒ Π±Π΅ΡΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ…, Π½ΠΈΠ·ΡˆΠΈΡ… ΠΈ Π²Ρ‹ΡΡˆΠΈΡ… ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ½ΠΎΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ… // ΠžΠ½Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·. 2004. Π’. 35. № 6. Π‘. 441−450.
  5. Н.Π”., Π‘Π°Π»Π°Π½ О. Π’. Π‘Π°Ρ‚Π΅Π»Π»ΠΈΡ‚Π½Ρ‹Π΅ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΌΡ‹ΡˆΠ΅Ρ‡Π½ΠΎΠΉ систСмы ΠΈ Ρ€Π΅Π³ΡƒΠ»ΡΡ†ΠΈΡ Π²ΠΎΡΡΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»Π° ΠΌΡ‹ΡˆΡ† // Изв. РАН. БСрия Π±ΠΈΠΎΠ». 2007. № 6. Π‘. 650- 660.
  6. Π’.Π’., Π’Π°ΡΠΈΠ»ΡŒΠ΅Π² А. Π’., ВоротСляк Π•. А. ΠŸΠΎΠ»ΡΡ€ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΡ ΠΈ Π°ΡΠΈΠΌΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠ΅ Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ стволовых ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ // Цитология. 2007. Π’. 49. № 11. Π‘. 933.
  7. Allen R.E., Sheehan S.M., Taylor R.G. et al. Hepatocyte growth factor activates quiescent skeletal muscle satellite cells in vitro // J. Cell. Physiol. 1995. V. 165. P. 307−312.
  8. Anderson J.E. A role for nitric oxide in muscle repair: nitric oxide-mediated activation of muscle satellite cells // Mol. Biol. Cell. 2000. V. 11. P. 1859−1874.
  9. Armand O., Boutineau A.M., Mauger A. et al. Origin of satellite cells in avian skeletal muscles // Arch. Anat. Microsc. Morphol. Exp. 1983. V. 72. P. 163−181.
  10. Asakura A., Komaki M., Rudnicki M. Muscle satellite cells are multipotential stem cells that exhibit myogenic, osteogenic, and adipogenic differentiation // Differentiation. 2001. V. 68. P. 245−253.
  11. Avery G., Chow M., Holitzer H. An expressional analysis of the development of the spinal column // J. Exp. Zool. 1956. V. 132. P. 409.
  12. Bailey P., Holowaez Π’., Lassar A.B. The origin of skeletal muscle satellite cells // Current opinion in cell biology. 2001. V. 13. P.679.689.
  13. Bark Π’.Н., McNurlan M.A., Lang C.H., Garlick P.J. Increased protein synthesis after acute 1GF-1 or insulin infusion is localized to muscle in mice // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 1998. V. 275. P.1. El 18-E123.
  14. Barton P., Buckingham M.E. The myosin alkali light chain proteins and their genes // Biochem. J. 1985. V. 231. P. 249.
  15. Barton P.J.R., Robert Π’., Fiszman M.Y. et al. The same myosin alkali light chain is expressed in adult cardiac atria and in fetal skeletal muscle // J. Muscle Res. Cell Motil. 1985. V. 6. P. 461.
  16. Barton-Davis E.R., Shoturma D.I., Sweeney H.L. Contribution of satellite cells to IGF-I induced hypertrophy of skeletal muscle // Acta Physiol. Scand. 1999. V. 167. P. 301−305.
  17. Beauchamp J.R., Heslop L., Yu D.S. et al. Expression of CD-34 and Myf-5 defines the majority of quiescent adult skeletal muscle satellite cells. // J. Cell Biol. 2000. V. 151. P. 1221−1234.
  18. Bischojf R. The satellite cell and muscle regeneration // Myogenesis Eds. Engel A.G., Franszini-Armstrong C. N. Y. McGraw-Hill. 1994. V. 2. P. 97−118.
  19. Bittner R.E., Schofer Π‘., Weipoltshammer К. Recruitment of bone-marrow-derived cells by skeletal and cardiac muscle in adult dystrophic mdx mice // Anat. Embryol. 1999. V. 199. P. 391−396
  20. Bober E., Brand-Soberi Π’., Ebensperger C. et al. Initial steps of myogenesis in somites are independent of influence from axial structures //Development. 1994. V. 120. P. 3073−3082.
  21. Bockhold K.J., Rosenblatt J.D., Partridge T.A. Aging normal and dystrophic mouse muscle: analysis of myogenicity in cultures of living single fibers // Muscle Nerve. 1998. V. 21. P. 173−183.
  22. Braun Π’., Buschhausen D.C., Bober E. et al. A novel human muscle factor related to but distinct from MyoDl induces myogenic conversionin 10T½ fibroblasts // EMBO J. 1989. V. 8. P. 701.
  23. Braun Π’., Bober E., Winter Π’., et al. Myf-6, a new member of the human gene family of myogenic determination factors: evidence for a gene cluster on chromosome 12 // EMBO J. 1990. V. 9. P. 821.
  24. Buckingham M. Myogenic progenitor cells and skeletal myogenesis in vertebrates // Curr. Opin. Genet. Dev. 2006. V. 16. P. 525−532.
  25. Buckingham M. Skeletal muscle progenitor cells and the role of Pax genes // C.R. Biologies. 2007. V. 330. P. 530−533.
  26. Buckingham M., Relaix F. The Role of Pax Genes in the Development of Tissues and Organs: Π Π°Ρ…Π— and Pax7 Regulate Muscle Progenitor Cell Functions // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 2007. V. 23. P. 645−73.
  27. Burkin D.J., Kaufman S.J. The alfa7betal integrin in muscle development and disease // Cell Tissue Res. 1999. V. 296. P. 183 190.
  28. Butler-Browne G.S., Bugaislcy L.B., Schwartz K. et al. Denervation of newborn rat does not block the appearance of adult fast myosin heavy chain//Nature. 1982. V. 299. P. 830−833.
  29. Cantini M., Sartore S., Schiqffino S. Myosin types in cultured muscle // J. Cell. Biol. 1980. V. 85. P. 903−909.
  30. Charge S.B.P., Rudnicki MA. Cellular and molecular regulation of muscle regeneration // Physiol. Rev. 2004. V. 84. P. 209−238.
  31. Charge S.B., Brack A.S., Hughes S.M. Aging-related satellite cell differentiation defect occurs prematurely after Ski-induced muscle hypertrophy // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2002. V. 283. P. C1228-C1241.
  32. Chenn A., McConnell S.K. Cleavage orientation and asymmetric inheritance of Notch 1 immunoreactivity in mammalian neurogenesis //Cell. 1995. V. 82. P. 1111−1115.
  33. Chen C.J., Chin J.E., TJeda K. et al. Internal duplication and homology with bacterial transport proteins in the mdrl (P-glycoprotein) gene from multidrug-resistant human cells // Cell. 1986. V. 47. P. 381−389.
  34. Christ Π’., Brand-Saberi Π’., Grim M., Wilting J. Local signaling in dermomyotomal cell type specification // Anat. Embryol. 1992. V. 186. P. 505.
  35. Conboy I.M., Rando T.A. The regulation of Notch signaling controls cell activation cell fate determination in postnatal myogenesis // Dev. Cell. 2002. V. 3.P. 380−392.
  36. Cooper R.N., Tajbakhsh S., Mouly V. et al. In vivo satellite cell activation via Myf5 and MyoD in regenerating mouse skeletal muscle //J. Cell Sci. 1999. V. 112. P. 2895−2901.
  37. Cornelison D.D. W., Wold B.J. Single-cell analysis of regulatory gene expression in quiescent and activated mouse skeletal muscle satellite cells // Dev. Biol. 1997. V. 191. P. 270−283.
  38. Cornelison D.D., Olwin B.B., Rudnicki M.A., Wold B.J. MyoD (-/~) satellite cells in single-fiber culture are differentiation defective and MRF4 deficient // Dev. Biol. 2000. V. 224. P. 122−137.
  39. Cornelison D.D., Filla M.S., Stanley H.M. et al. Syndecan-3 and syndecan-4 specifically mark skeletal muscle satellite cells and are implicated in satellite cell maintenance and muscle regeneration // Dev. Biol. 2001. V. 239. P. 79−94.
  40. Covault J and Sanes JR. Distribution of N-CAM in synaptic and extrasynaptic portion of developing and adult skeletal muscle // J. Cell Biol. 1986. V. 102. P. 716−730.
  41. Crow M.T., Olson P. S., Stockdale F.E. Myosin light chain expression during avian muscle development// J. Cell. Biol. 1983. V. 96. P. 736.
  42. Davis R. L., Weintraub H., Lassar A.B. Expression of a single transfected cDNA converts fibroblasts to myoblasts // Cell. 1987. V. 51. P. 987.
  43. Day K., Shefer G., Richardson J.Π’., Enikolopov G., Yablonka-Reuveni Z.
  44. Nestin-GFP reporter expression defines the quiescent state of skeletal muscle satellite cells // Dev Biol. 2007 V. 304. P. 246−259.
  45. Delapeyriere O., Ollendorff V., Planche J. et al. Expression of the Fgf6 gene is restricted to developing skeletal muscle in the mouse embryo // Development. 1993. V. 118. P. 601−611.
  46. Donalies M., Cramer M., Ringwold M., Starzinski-Powits A. Expression of M-cadherin, a member of the cadherin multigenefamily, correlates with differentiation of skeletal muscle cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. V. 88. P. 8024−8028.
  47. Dusterhoft S., Yablonka-Reuveni Z., Pette D. Characterization of myosin isoforms in satellite cell cultures from adult rat diaphragm, soleus and tibialis anterior muscles // Differentiation. 1990. V. 45. P. 185−191.
  48. Ecob M. S., Butler-Browne G. S" Whalen R. G. The adult fast isozyme of myosin is represent in a nerve- muscle tissue culture system // Differentiation. 1983. V. 25. P. 84- 87.
  49. Ecob M. S., Whalen R. G. The expression of myosin heavy chain isoforms in a nerve- muscle culture system // In Molecular Biology of Muscle Development, UCLA Symp. Mol. Biol. New Series. 1986. V. 29. P. 273−282.
  50. Edmontson D.G., Olson E.N. A gene with homology to the myc similarity region of MyoDl in expressed during myogenesis and it’s sufficient to activate the muscle differentiation program // Genes Devel. 1989. V. 3. P. 628.
  51. Feldman J.L., Stockdale F.E. Temporal appearance of satellite cells during myogenesis // Dev Biol. 1992. V. 153. P. 217−226.
  52. Ferrari G., Cussela-De Angelis G., Coletta M. et al. Muscle regeneration by bone marrow-derived myogenic progenitors // Science. 1998. V. 279. P. 1528−1530.
  53. Fiore F., Planche J., Gibier P. et al. Apparent normal phenotype of Fgf6-/— mice // Int. J. Dev. Biol. 1997. V. 41. P. 639−642.
  54. Fiore F., Sebille A., Birnbaum D. Skeletal muscle regeneration is not impaired in Fgf6-/- mutant mice // Biochem. Biophys. Res. Comimm. 2000. V. 272. P. 138−143.
  55. Frank D., Weeds A.G. The amino acid sequences of the alkali light chains of rabbit skeletal-muscle myosin // Eur. J. Biochem. 1974. V. 44. P. 317−334.
  56. Gambke Π’., Lyons G. E., Haselgrove J. et al Thyroidal and neural control of myosin transitions during development of rat fast and slow muscles // FEBS Lett. 1983. V. 156. P. 335- 339.
  57. Garry DJ, Yang Q, Bassel-Duby R, and Sanders Williams R. Persistent expression of MNF identifies myogenic stem cells in postnatal muscle // Dev Biol. 1997. V. 188. P. 280−294.
  58. Gibson M.C., Schultz E. Age-related differences in absolute numbers of skeletal muscle satellite cells // Muscle Nerve. 1983. V. 6. P. 574 580.
  59. Gopinath S.D., Rando T.A. Stem cell review series: aging of the skeletal muscle stem cell niche // Aging cell. 2008. v. 7. P. 590−598.
  60. Goulding M.D., Chalepakis G., Deutsch U. et al. Pax-3, a novel murine DNA binding protein expressed during early neurogenesis // EMBO J. 1991. V. 10. P. 1135−1147.
  61. Goulding M.D., Lumsden A., Paquette A.J. Regulation of Π Π°Ρ…Π— expression in the dermamyotome and its role in muscle development // Development. 1994. V. 120. P. 957.
  62. Greentree D., Marelli D., Ma F., Chiu R.C. Satellite cell transplantation for myocardial repair: labeling techniques // Transplant Proc. 1994. V. 26. P. 3357.
  63. Gros P., Croop J., Housman D. Mammalian multidrug resistance gene: complete cDNA sequence indicates strong homology to bacterial transport proteins // Cell. 1986. V. 47. P. 371−380.
  64. Gros J., Manceau M., Thome V., Marcelle C. A commom somitic origin for embryonic muscle progenitors and satellite cells // Nature. 2005. V. 435. P. 954−958.
  65. Gussoni E., Soneoka Y., Strckland C.D. et al. Dystrophin expression in the mdx mouse restored by stem cell transplantation // Nature. 1999. V. 401. P. 390−394.
  66. Hauschka S.D. Clonal aspects of muscle development and the stability of the differentiated state // The stability of differentiated state / Ed. H. Ursprung. Berlin. 1968. P. 37−57.
  67. Hawke T. J., Garry D.J. Myogenic satellite cell: physiology to molecular biology // J. Appl. Physiol. 2001. V. 91. P. 534−551.
  68. Hill M., Werning A., Goldspink G. Muscle satellite (stem) cell activation during local tissue injury and repair // J. Anat. 2003. V. 203. P. 89- 99.
  69. Jennische E., Ekberg S., Matejka G.L. Expression of hepatocyte growth factor in growing and regenerating rat skeletal muscle // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 1993. V. 265 P. C122-C128.
  70. Jesse TL, LaChance R, lademarco MF, and Dean DC. Interferon regulatory factor-2 is a transcriptional activator in muscle where it regulates expression of vascular adhesion molecule-1 // J. Cell Biol. 1998. V. 140. P. 1265−1276.
  71. Jones N.C., Fedorov Y.V., Rosenthal R.S., Olwin B.B. ERK Π£2 is required for myoblast proliferation but is dispensable for muscle gene expression and cell fusion // J. Cell Physiol. 2001. V. 186. P. 104 115.
  72. Kachinsky AM, Dominov J A, Miller JB. Myogenesis and the intermediate filament protein, nestin // Dev. Biol. 1994. V. 165. P. 216−228.
  73. Kastner S., Elias M.C., Rivera A.J., Yablonka-Reuveni Z. Gene expression patterns of the fibroblast growth factors and their receptors during myogenesis of rat satellite cells // J. Histochem. Cytochem. 2000. V. 48. P. 1079−1096.
  74. Katagiri Π’., Yamaguchi A, Komaki M. et al. Bone morpliogenetic protein-2 converts the differentiation pathway of C2C12 myoblasts into the osteoblast lineage // J. Cell Biol. 1994. V. 127. P. 1755−1766.
  75. Kaufmann U., Kirsch J., Irintchev A., Wernig A., Starzinski-Powitzl A. The M-cadherin catenin complex interacts with microtubules in skeletal muscle cells: implications for the fusion of myoblasts // J. Cell Sci. 1999. V. 112. P 55−67.
  76. Kelly A.M., Zaks S I. Neuromuscular development in intercostalβ€’muscle of the fetal and newborn rat // J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1968. V. 27. P. 109.
  77. Kenny-Mobbs Π’., Thorogood P. Autonomy of differentiation in avian brachial somites and the influences of adjacent tissues // Development. 1987. V. 100. P. 449−462.
  78. Kiefer J.C., Hauschka S.D. Myf-5 is transiently expressed in nonmuscle mesodermand exhibit dynamic regional changes within the presegmented mesoderm and somites I-IV // Dev. Biol. 2001. V. 232. P. 77−90.
  79. Konig S., Beguet A., Bader C.R. et al. The calcineurin pathway links hyperpolarization (Kir2.1) induced Ca signals to human myoblast differentiation and fusion // Development. 2006. V. 133. P. 31 073 114.
  80. Kuang S., Gillespie M.A., Rudnicki M.A. Niche regulation of muscle satellite cell self-renewal and differentiation // Cell Stem Cell. 2008. V.2.P. 22−31.
  81. Kuch Π‘., Winnekendonk D., Butz S., Unvericht U., Kemler R., Starzinski-Powitz, A. M-cadherin-mediated cell adhesion and complex formation with the catenins in myogenic mouse cells I I Exp. Cell Res. 1997. V. 232. P. 331−338.
  82. Lin H., Schagat T. Neuroblasts: a model for the asymmetric division of stem cells // Trends Genet. 1997. V. 13. P. 33−39.
  83. Lyons G., Haselgrove J., Kelly A. et al. Myosin transitions in developing fast and slow muscles of the rat hindlimb // Differentiation. 1983. V. 25. P. 168−175.
  84. Lyons G.E., Ontell M., Cox R. et al. The Expression of Myosin Genes in Developing Skeletal Muscle in the Mouse Embryo // J. Cell. Biol. 1990. V. 111. P. 1465−1476.
  85. Maley M.A., Fan Y., Beilharz M.W., Grounds M.D. Intrinsic differences in MyoD and myogenin expression between primary cultures of SJL/J and BALB/C skeletal muscle // Exp. Cell Res. 1994. V. 211. P. 99−107.
  86. Mansouri A., Goudreau G., Gruss P. Pax genes and their role in organogenesis // Cancer Res. 1999. V. 59. P. 1707−1710.
  87. Mar ell i D., Ma F., Chiu R.C. Satellite cell implantation for neomyocardial regeneration // Transplant Proc. 1992. V. 24. P. 2995.
  88. Matsuda R., Spector D., Strohman R. Denervated skeletal muscle displays discoordinate regulation for the synthesis of several myofibrillar proteins //Proc/Natl. Acad. Sci. 1984. V. 1981. P. 11 221 125
  89. Mauro A. Satellite cell of skeletal muscle fibers // J. Biophys. Biochem. Cytol. 1961. V. 9. P. 493−495.
  90. McGeachie J.K., Grounds M.D. Retarded myogenic cell replication in regenerating skeletal muscles of old mice: an autoradiographic studyin young and old BALBc and SJL/J mice // Cell Tissue Res. 1995. V. 280. P. 277−282.
  91. McLennan I.S., Koishi K. The transforming growth factor-betas: multifaceted regulators of the development and maintenance of skeletal muscles, motoneurons and Schwann cells // Int. J. Dev. Biol. 2002. V. 46. P. 559−567.
  92. McPherron A.C., Lawler A.M. Lee S.J. Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member // Nature. 1997. V. 387. P. 83−90.
  93. Miller KJ, Thaloor D, Matteson S, and Pavlath GK. Hepatocyte growth factor affects satellite cell activation and differentiation in regenerating skeletal muscle // Am J. Physiol. Cell. 2000. V. 278. P. 174−181.
  94. Minasi M.G., Riminucci M., De Angelis L. et al. The meso-angioblast: a multipotent, self-renewing cell that originates from the dorsal aorta and differentiates into most mesodermal tissues // Development. 2002. V. 129. P. 2773−2783.
  95. Moore R., Walsh F.S. The cell adhesion molecule M-cadherin is specifically expressed in developing and regenerating, but not denervated skeletal muscle // Development. 1993. V. 117. P. 14 091 420.
  96. Munsterberg A.E., Kitajewski J., Bumcrot D.A. et al. Combinatorial signaling from Sonic hedgehog and Wnt family members induces myogenic bHLH gene expression in the somite // Genes Devel. 1995. V. 9. P. 2911.
  97. Munsterberg A.E., Lassar A.B. Combinatorial signals from the neural tube, flooer plate and notochord induce myogenic bHLH gene expression in the somite // Development. 1995. V. 121. P. 651.
  98. Musaro A., McCullagh K.J., Nay a F.J. et al. IGF-1 induces skeletal myocyte hypertrophy through calcineurin in association with GATA-2 andNF-ATcl //Nature. 1999. V. 400. P. 581−585.
  99. Nabeshima Y., Fujii Y., Muramatsu M., Ogata K. Alternative transcription and two modes of splicing result in two myosin light chains from one gene // Nature. 1984. V. 308. P. 333.
  100. Narasawa M., Fitzimons R.B., Izumo S, et al. Slow myosin in developing rat skeletal muscle // J. Cell. Biol. 1987. V. 104. P. 447 459.
  101. Nguyen H.T., Gubitis R.M., Wydro R.M., Nadal-GinardB. Sarcomeric myosin heavy chain is coded by highly conserved multigene family // Proc. Natl. Acad. Sci. 1982. V.79. P. 5230−5234.
  102. Naro F., De Arcangelis V., Coletti D. et al. Increase in cytosolic Ca2+ induced by elevation of extracellular Π‘ a" in skeletal myogenic cells // Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2003. V. 284. P. C969-C976.
  103. Olson E.N. Interplay between proliferation and differentiation within the myogenic lineage // Devel. Biol. 1992. V. 154. P. 261−272.
  104. ObinataT., Masaki Π’., Π’Π°ΠΊΠ°ΠΏΠΎ H. Types of myosin light chains present during the development of fast skeletal muscle in chick embryo // J. Biochem. 1980. V. 87. P. 81.
  105. Olson E.N., Klein W.H. bHLH factors in muscle development: dead lines and commitments, what to leave in and what to leave out // Gen. Devel. 1994. V. 8. P. 1−8.
  106. Pourquie O., Coltey M., Breant C., Le Douarin N. M. Control of somite patterning by signals from the lateral plate // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 52. P. 3219−3223.
  107. Relaix F., Rocancourt D., Mansouri A. et al. Divergent functions of murine Π Π°Ρ…Π— and Pax7 in limb muscle development // Genes Dev. 2004. V. 18. P. 1088−1105.
  108. Reugels A.M., Boggetti Π’., Scheer N., Campos-Ortega J.A. Asymmetric localization of Numb: EGFP in dividing neuroepithelial cells during neurulation in Danio rerio // Devel. Dyn. 2006. V. 235. P. 934−948.
  109. Rhodes S. J., Konieczny S.F. Identification of MRF4 A new member of the muscle regulatory factor gene family // Genes Devel. 1989. V. 3.P. 2050.
  110. Robert Π’., Daubas P., Akimenko M.A. et al. A single locus in the mouse encodes both myosin light chains 1 and 3, a second locus corresponds to a related pseudogene // Cell. 1984. V. 39. P. 129−140.
  111. Rossi D.J., Weissman I.L. Pten, tumorigenesis, and stem cell self-renewal // Cell. 2006. V. 125. P. 229−231.
  112. Sabourin L. A, Girgis-Gabardo A., Seale P. et al. Reduced differentiation potential of primary MyoD-/- myogenic cells derived from adult skeletal muscle // J. Cell Biol. 1999. V. 144. P. 631−643.
  113. Saito Y. Muscle fiber type differentiation and satellite cell population in Werding-Hoffmann disease // J. Neurol. Sci. 1985. V. 68. P. 75−87.
  114. Sanes J.R. The basement membrane/basal lamina of skeletal muscle // J. Biol. Chem. 2003. V. 278. № 15. P.12 601−12 604.
  115. Schmalbruch H., Hellhammer U. The number of nuclei in adult rat muscles with special reference to satellite cells // Anat. Rec. 1977. V. 189. P. 169−175.
  116. Schultz E. Fine structure of satellite cells in growing skeletal muscle // Am. J. Anat. 1976. V. 147. P. 46−70.
  117. Seale P., Rudnicki M.A. A new look at the origin, function, and «stem-cell» status of muscle satellite cells // Dev. Biol. 2000. V. 218. P. 115 124.
  118. Seale P., Sabourin L.A., Girgis-Gabardo A. et al. Pax7 is required for the specification of myogenic satellite cells // Cell. 2000. V. 102. P. 777−786.
  119. Seale P., Asakura A., Rudnicki M. The potential of muscle stem cells // Dev. Cell. 2001. V. 1. P. 333−342.
  120. Semsarian C., Satrave P., Richmond D. R,. Graham R.M. Insulin-like growth factor (IGF-I) induces myotube hypertrophy associated with an increase in anaerobic glycolysis in a clonal skeletal-muscle cell model // Biochem. J. 1999. V. 339. P. 443−451.
  121. Shefer G, Wleklinski-Lee M, Yablonka-Reuveni Z. Skeletal muscle satellite cells can spontaneously enter an alternative mesenchymal pathway // J Cell Sci. 2004. V. 117. P. 5393−5404.
  122. Shen Q., Zhong W., Jan Y.N., Temple S. Asymmetric Numb distribution is critical for asymmetric cell division of mouse cerebral cortical stem cells and neuroblasts // Development. 2002. V. 129. P. 4843−4853.
  123. Shinin V., Gayraud-Morel Π’., Gomes D., Tajbakhsh S. Asymmetric division and cosegregation of template DNA strands in adult muscle satellite cells //Nature Cell Biol. 2006. V. 8. № 7. P. 677−687.
  124. Smith C.K., Janney M.J., Allen R.E. Temporal expression of myogenic regulatory genes during activation, proliferation and differentiation of rat skeletal muscle satellite cells // J. Cell Physiol. 1994. V. 159. P. 379−385.
  125. Snow M.H. A quantitative ultrastructure analysis of satellite cells in denervated fast and slow muscles of the mouse // Anat. Rec. 1983. V. 207. P. 593−604.
  126. Sreter R.A., Balint M., Gergely J. Structural and functional changes of myosin during development. Comparison with adult fast, slow and cardiac myosin // Devel. Biol. 1975. V. 46. P. 317.
  127. Stocum D.L. Regenerative biology and medicine. N.Y.: Academic Press, 2006. 448 p.
  128. Sweeney L., Kennedy J., Zak R et al. Evidence for expression of a common myosin heavy chain phenotype in future fast and slow skeletal muscle during initial stages of avian embryogenesis // Dev. Biol. 1989. V. 133. P. 361−374.
  129. Tatsumi R., Anderson J.E., Nevoret C.J. et al. HGF/SF is present in normal adult skeletal muscle and is capable of activating satellite cells //Dev. Biol. 1998. V. 194. P. 114−128.
  130. Tatsumi R., Hattori A., Ikeuchi Y. et al. Release of hepatocyte growth factor from mechanically stretched skeletal muscle satellite cells and role of pH and nitric oxide // Mol. Biol. Cell. 2002. V. 13. P. 29 092 918.
  131. Teboul L., Gaillard D., Staccini L. et al. Thiazolidinediones and fatty acids convert myogenic cells into adipose-like cells // J. Biol. Chem. 1995. V. 270. P. 28 183−28 187.
  132. Terada N., Namazaki Π’., Oka M. et al. Bone marrow cells adopt the phenotype of other cells by spontaneous cell fusion // Nature. 2002. V. 416. P. 542−545.
  133. Torgan C.E., Daniels M.P. Regulation of myosin heavy chain expression during rat skeletal muscle development in vitro // Mol. Biol. Cell. 2001. V. 12. P. 1499−1508.
  134. Vassilopulos G., Wang P.R. Rrussel D.W. Transplanted bone marrow regenerates liver by cell fusion //Nature. 2003. V. 422. P. 901−904.
  135. Vivarelli E., Cossu G. Neural control of early myogenic differentiation in cultures of mouse somites // Dev. Biol. 1986. V. 117. P. 319−325.
  136. Wada M.R., Inagawa-Ogashiwa M., Shimizu S. et al. Generation of different fates from multipotent muscle stem cells // Development. 2002. V. 129. P. 2987−2995.
  137. Wang X., Willenbring H., Akkari Y. et al. Cell fusion is the principal source of bone-marrow-derived hepatocytes // Nature. 2003. V. 422. P. 897−901.
  138. Watkins S.C., Cullen M.J. A quantitative study of myonuclear and satellite cell nuclear size in Duchenne’s muscular dystrophy, polymyositis and normal human skeletal muscle //Anat. Rec. 1988. V. 222. P. 6−11.
  139. Weeds A.G., Lowey S. Substructure of the myosin molecule. II. The light chain of myosin // J. Mol. Biol. 1971. V. 61. P. 701−725.
  140. Whalen R.G., Butler-Brown G.S., Gross F. Identification of novel form of myosin light chain present in embryonic muscle tissue and cultured muscle cells // J. Mol. Biol. 1978. V. 126. P. 415.
  141. Weydert A., Daubas P., Lazaridis L. et al. Genes for skeletal muscle myosin heavy chains are clustered and ate not located on the samemouse chromosome as a cardiac myosin heavy chain gene // Proc. Natl. Acad. Sci.1985. V. 82. P .7183−7187.
  142. Weydert A. Myogenesis and gene expression // Bull. Inst. Pasteur. 1988. V. 86. P. 159−210.
  143. Wolpert L. Stem cells: a problem in asymmetry // J. Cell Sci. 1988. Suppl. V. 10. P. 1−9.
  144. Xu Q., Yu L., Cheung C.F. et al The p38 МАРК, CaMK and calcineurin-mediated signaling pathways transcriptionally regulate myogenin expression // Mol. Biol. Cell. 2002. V. 13. P. 1940−1952.
  145. Yablonka-Reuveni Z., Rivera A.J. Temporal expression of regulatory and structural muscle proteins during myogenesis of satellite cells on isolated adult rat fibers // Dev. Biol. 1994. V. 164. P. 588−603.
  146. Ying Q.L., Nichols J., Evans E.P. et al. Changing potency by spontaneous fusion //Nature. 2002. V. 416. P. 545−548.
  147. Zammit P. S., Beauchamp J.R. The skeletal muscle satellite cell: stem cell or son of stem cell? // Differentiation. 2000. V. 68. P. 193−204.
  148. Zammit P. S., Relaix F., Nagata Y. et al. Pax7 and myogenic progression in skeletal muscle satellite cells // J. Cell Sci. 2006. V. 119. P. 1824−1832.
  149. Zhao P., Hoffman E.P. Embryonic myogenesis in muscle regeneration //Dev. Dynam. 2004. V. 229. P. 380−392.
  150. Zibaitis A., Greentree D., Ma F., Marelli D., Duong M., Chiu R.C. Myocardial regeneration with satellite cell implantation // Transplant Proc. 1994. V. 26. P. 3294.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ