Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Анализ маркеров вируса простого герпеса у недоношенных новорожденных детей с признаками внутриутробной инфекции

Диссертация: Анализ маркеров вируса простого герпеса у недоношенных новорожденных детей с признаками внутриутробной инфекции
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Клиническая диагностика ГВИ в настоящее время, в группах высокого риска, является актуальной и в тоже время чрезвычайно трудной задачей из-за неспецифичности и полиморфности симптоматики, что нередко приводит к позднему назначению адекватной терапии. Одна из нерешенных проблем состоит в быстрой и дифференциальной диагностике бактериальных инфекций от заболеваний вирусной этиологии. В работах… Читать ещё >

Анализ маркеров вируса простого герпеса у недоношенных новорожденных детей с признаками внутриутробной инфекции (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ИСПОЛЬЗОВАННЫЕ СОКРАЩЕНИЯ ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • Глава 1. Вирусы простого герпеса 1 и 2 типов: структура, репродукция репликация вируса в клетке
    • 1. 1. Структура и организация генома вирионов ВПГ
    • 1. 2. Репродукция ВПГ в клетке
  • Глава 2. Инфекция, вызываемые ВПГ 1 и 2 типов
    • 2. 1. Герпесвирусная инфекция у беременных женщин
    • 2. 2. Значение ВПГ в развитии ВУИ у недоношенных детей
    • 2. 3. Лечение герпесвирусной инфекции у новорожденных детей
  • Глава 3. Лабораторная диагностика герпесвирусной инфекции
    • 3. 1. Культуральный метод
    • 3. 2. Полимеразная цепная реакция
      • 3. 2. 1. ПЦР «в реальном времени»
      • 3. 2. 2. ПЦР «in situ»
    • 3. 3. Иммуноферментный анализ

Актуальность проблемы.

Герпесвирусные инфекции (ГВИ) чрезвычайно широко распространены в человеческой популяции и являются актуальной проблемой вирусологии и практического здравоохранения. Важное значение для педиатрии и неонатологии имеют вирусы простого герпеса 1 и 2 типов (ВПГ), так как нередко являются причиной мертворождаемости, преждевременных родов, младенческой смертности и заболеваемости новорожденных. Внутриутробная инфекция (ВУИ) развивается у 27−37% детей, рожденных живыми у матерей группы высокого инфекционного риска, обусловливая от 11% до 45% перинатальных потерь, которые могут достигать по данным разных авторов до 66% [29].

Особую группу риска по частоте заболеваемости и ранней неонатальной смертности составляют недоношенные дети. Доля детей, родившихся недоношенными, составляет 3−16,6% от общего числа новорожденных. По данным литературы новорожденные с очень низкой массой тела при рождении, составляющие примерно 1% от всех рожденных детей, формируют до 75% заболеваемости и смертности. Эта группа детей характеризуется наиболее высоким риском по развитию инфекционных заболеваний, связанных с общей функциональной незрелостью иммунной системы [184].

Ранее полагали, что серьезную угрозу для здоровья беременной женщины и ее ребенка представляют только клинически выраженные формы генитального герпеса (ГГ). В настоящее время получены данные о том, что в 60 — 80% случаев дети с неонатальным герпесом рождаются от матерей с атипичными или бессимптомными формами течения ВПГ-инфекции [85]. Для выявления атипично протекающих инаппарантных форм генитально герпеса необходимо оптимизировать диагностику ГВИ у беременных и усовершенствовать тактику ведения женщин с данной патологией.

Диагностика ГВИ у новорожденных детей часто представляет сложную задачу в связи с отсутствием типичных клинических симптомов ГВИ, а также из-за особенностей иммунной системы новорожденных. Несмотря на многочисленные исследования, посвященные этой проблеме, разработка четких и общепринятых рекомендаций по лабораторному обследованию недоношенных новорожденных с сочетанной перинатальной патологией и подозрением на ГВИ в России остается нерешенной проблемой.

Не менее сложную проблему представляет лечение недоношенных новорожденных детей с ГВИ. Специфичные противовирусные препараты обладают высокой токсичностью и не разрешены для терапии новорожденных детей. В связи с этим одной из важных задач медицины и здравоохранения является разработка новых препаратов, эффективно подавляющих вирусный патоген и развитие тяжелых форм заболевания.

Цель исследования.

Цель настоящей работы состояла в сравнительном анализе маркеров ВПГ-инфекции в группах риска: у новорожденных детей и беременных женщин с отягощенным акушерско-гинекологическим анамнезом.

Задачи.

1. Оценить частоту выявления маркеров ВПГ у доношенных и недоношенных новорожденных детей и проследить динамику выявления маркеров ВПГ в течение первого года жизни.

2. Изучить эффективность лечения препаратом Виферон инфицированных недоношенных детей.

3. Выявить прямые маркеры ВПГ и серологические показатели ВПГ-инфекции у беременных женщин с отягощенным акушерско-гинекологическим анамнезом (ОАГА) в течение беременности, начиная со 2-го триместра.

4. Оценить влияние ВПГ на исход беременности и формирование патологических состояний у детей, родившихся от ВПГ инфицированных матерей.

5. Разработать протокол ПЦР in situ для выявления ВПГ на цитологическом препарате в клетках мертворожденных детей. Оценить эффективность методов лабораторной диагностики при детекции ВПГ в материалах аутопсии.

Научная новизна и практическая значимость.

1. Разработан алгоритм комплексного лабораторного обследования недоношенных новорожденных детей с клиническими признаками ВУИ культуральным методам (БКМ) и с помощью генодиагностики (ПЦР, ПЦР-рв) для выявления ВПГ.

2. Показано, что включение Виферона в комплексное лечение недоношенных новорожденных детей с клиническими признаками ВУИ моделирует показатели интерферонового статуса и приближает к уровню здоровых доношенных новорожденных детей.

3. Установлена распространенность ВПГ-инфекции в группе беременных с ОАГА. На основании комплексного обследования беременных в динамике установлена частота первичного инфицирования и реактивации ВПГ в данной группе риска.

4. Впервые разработан протокол ПЦР in situ для выявления ДНК ВПГ в отпечатках органов мертворожденных детей, позволяющий оценить наличие инфицированных клеток и их тканевую принадлежность.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Показана высокая частота выявления маркеров ВПГ у недоношенных маловесных новорожденных детей с сочетанной врожденной патологией по сравнению с доношенных детьми. Недоношенные маловесные новорожденные дети являются группой риска по развитию ВПГ-инфекции на первом году жизни, что диктует необходимость проведения неоднократного вирусологического обследования этих детей.

2. Включение Виферона в комплексное лечение недоношенных новорожденных детей с признаками ВУИ оказывает иммуномодулирующее действие и снижает показатели летальности у детей с тяжелыми патологическими состояниями.

3. Показана высокая частота выявления маркеров ВПГ у беременных женщин с ОАГА и отмечены неблагоприятные исходы беременности у женщин этой группы риска чаще, чем у женщин, не имевших маркеров ВПГ.

4. ПЦР in situ — информативный молекулярно-биологический метод, открывающий новые возможности в лабораторной диагностике ВПГ-инфекции. Метод эффективен как для диагностики, так и для изучения патогенеза инфекций, вызываемых ВПГ.

Апробация работы.

Основные положения работы были представлены на VIII Международном конгрессе «Здоровье и образование в XXI векеконцепции болезней цивилизации» (Москва, 2007), на VI Конгрессе детских инфекционистов России «Актуальные вопросы инфекционной патологии и вакцинопрофилактики» (Москва, 2007), на Ежегодном конгрессе клинической вирусологии (Saariselka, Финляндия, 2008), на III Ежегодном конгрессе и VI Съезде Российской ассоциации специалистов перинатальной медицины «Современная перинаталогия: организация, технология и качество» (Москва, 2008). В завершенном виде доклад по диссертационной работе прошел предварительную экспертизу на совместном заседании Отдела молекулярной вирусологии и совета по предварительной экспертизе диссертационных работ в Учреждении РАМН НИИ вирусологии им. Д. И. Ивановского РАМН от 17 декабря 2009 года.

ВЫВОДЫ:

1. При обследовании 212 недоношенных новорожденных детей с признаками внутриутробного инфицирования (ВУИ) на первой неделе жизни установлено, что частота выявления прямых маркеров ВПГ значительно выше (26,8%), чем в группе доношенных детей (7,5%). Обследование в динамике показало, что у 10,6% детей маркеры ВПГ впервые появляются к трем месяцам жизни и еще у 9,3% детей — через 4−7 месяцев после рождения. Это указывает на необходимость неоднократного обследования детей данной группы риска в течение первого года жизни.

2. Сравнительная оценка частоты обнаружения ВПГ у недоношенных детей быстрым культуральным методом (20%) и методом ПЦР (17,2%) показала, что применение двух методов повышает эффективность выявления прямых маркеров ВПГ (26,8%).

3. Отсутствие антител к ВПГ класса IgM у недоношенных новорожденных детей с клиническими признаками ВУИ и маркерами ВПГ, а также присутствие антител к ВПГ класса IgG у подавляющего большинства обследованных детей свидетельствуют о малой информативности серологических методов диагностики.

4. Количественное изучение способности клеток крови к индукции ИФН-а показало, что включение препарата Виферон, содержащий рекомбинантный интерферон — а2Ь, в комплексное лечение новорожденных детей оказывает иммунокорригирующее действие и снижает показатели летальности у недоношенных детей с признаками ВУИ.

5. Впервые разработан и использован для диагностики внутриутробной ВПГ-инфекции метод ПЦР in situ при исследовании отпечатков органов и тканей умерших новорожденных, который позволяет визуализировать инфицированные клетки и оценить локализацию вирусной ДНК. Установлена высокая частота выявления ДНК ВПГ.

42,5%) методом ПЦР in situ в аутопсийных материалах мертворожденных детей.

6. Показано, что у беременных женщин с отягощенным акушерско-гинекологическим анамнезом маркеры ВПГ встречались в 24,3% случаев. Неблагоприятные исходы беременности у женщин этой группы риска наблюдались чаще при выявлении ВПГ (30%), чем у женщин, не имевших маркеров ВПГ (16,6%).

3.4.

Заключение

.

Клиническая диагностика ГВИ в настоящее время, в группах высокого риска, является актуальной и в тоже время чрезвычайно трудной задачей из-за неспецифичности и полиморфности симптоматики, что нередко приводит к позднему назначению адекватной терапии. Одна из нерешенных проблем состоит в быстрой и дифференциальной диагностике бактериальных инфекций от заболеваний вирусной этиологии. В работах последних лет доказано, что отрицательный результат обследования крови и мочи методом ПЦР, полученный в первые дни жизни, не исключает возможности отсроченной реализации ВУИ [59].

За последние пятнадцать лет в лабораторной диагностике ГВИ достигнуты значительные успехи, разработаны и внедрены в клиническую практику современные методы лабораторной диагностики. Однако эффективность и информативность различных методов неодинаковы при диагностике ГВИ у новорожденных, детей раннего возраста и беременных женщин.

Суммируя данные литературы, можно заключить, что наряду с достоинствами каждый из имеющихся в лабораторной практике методов имеет и ряд недостатков. Это означает, что для надежной и адекватной диагностики ВПГ-инфекции требуются дальнейшие детальные сравнительные исследования, которые помогут выработать алгоритмы вирусологического обследования, оптимальные для разных групп риска. Данный вывод в особенности относится к таким социально значимым группам, какими являются беременные женщины и новорожденные дети.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В. Ю. Состояние здоровья детей дошкольного возраста, родившихся недоношенными.// Рос. педиатр, журнал. — 1998. № 4. -С. 12−15
  2. А. А., Альбицкий В. Ю., Волчина С. Я. Глубоконедоношенные дети как биоэтическая проблема.// Рос. педиат. журнал. 1999. — № 1. — С. 29−32
  3. Е. И., Жаворонюк С. В., Калинин А. Л. Герпетическая инфекция в практике акушера гинеколога.// Мед. Новости. 2001. — № 4. — С. 35−37
  4. И. Ф. Герпевирусная инфекция — иммунодефицитные заболевания XXI века.// Аллергология и иммунология 2004. — Т.5. -№ 1. — С. 202−204
  5. И. Ф., Шубладзе А. К., Каспаров А. А., Гребешок В. Н. Герпес (этиология, диагностика, лечение).// М.: Медицина. 1986. -С. 272
  6. Л. Ю., Орехов К. В.// Иммунология. 2004. — № 6. — С. 8−12
  7. И. И., Зайдиева 3. С., Тютюнник В. Л. Морфология последа при генитальной герпетической инфекции.// Акушерство игинекология 2001. — № 6. — С. 24−28
  8. А.Г. Вирусология.// М.: Медицина. — 1986
  9. В.А., Лаура Н. В., Захарова Н. И. Оценка состояния здоровья недоношенных новорожденных с перинатальными инфекциями.// Рос. вестник перинатологии и педиатрии. — 2006. № 3. -С. 11−14
  10. Н. Ю., Наговицына Е. Б., Сятковская А. Л. Эпидемиологические аспекты репродуктивных потерь.// Проблемы репродукции 2001. — Т. 7. — № 3. — С. 54−57.
  11. Н. Н. Неонатология: национальное руководство.// М.: Геотар-медиа, 2007. С. 848
  12. Н. Н., Дегтярев Д. Н., Ковтун И. Ю. и др. Перспективы использования метода ПЦР для ранней диагностики герпесвирусной инфекции у новорожденных детей.// генодиагностика в современной медицине (сборник тезисов) М. — 2000. — С. 197−198
  13. В. М. Герпетическая инфекция.// Новгород: изд. НГМД -2001.-С. 88
  14. Л. И.// Педиатрия. 1999. — № 4. — С. 83−86
  15. А., Дж. Осборн. Врожденные перинатальные и неонатальные инфекции.// Пер. с анг. М.: Медицина, 2000. — С. 288
  16. Д.Н., Дегтярева М. В., Ковтун И. Ю., Шаламова Л. В. Принципы диагностики внутриутробных вирусных инфекций у новорожденных и тактика ведения детей группы риска. // Перинатология сегодня. 1997. — № 3. — С. 18−24
  17. Г. М. Профилактическая и превентивная неонатология. Низкая масса тела при рождении. Гипоксия плода и новорожденного: лекция для врачей. М., 1999. — С. 70
  18. Т. И. Оценка эффективности лабораторных методов диагностики врожденной ЦМВИ.// клиническая лабораторная диагностика 2000. — № 11. — С. 35
  19. Е. И. Диагностика и биокоррекция нарушений антиинфекционного гомеостаза в системе «мать-дитя». // Н. Новгород: Изд-во НГМА. 2004. — С. 376
  20. Зайдиева 3. С., Тютюнник В. Л., Цахилова С. Г. Тактика ведения беременности и родов при генитальной герпесвирусной инфекции.// Рос. мед. журн. 1998. — № 5. — С. 33−36
  21. P.P. и др. Получение и свойства моноклональных антител к вирусу герпеса 1 и 2 типа.// ЖМЭИ.- 1999. № 5. — С. 99−103.
  22. Н. И., Помелова В. Г., Зубков В. В. Клинико — иммунологические критерии диагностики герпесвирусной инфекции новорожденных.// Российский вестник перинатологии и педиатрии — 1998.-№ 5.-С. 12−18
  23. Н.В., Герасимова Н. М., Зудин А. Б., Кузовкова Т. В. Генитальный герпес.// Екатеринбург — 2001
  24. Кущ А. А., Федорова Н. Е., Климова Р. Р. Быстрый культуральный метод диагностики герпесвирусных инфекций. Методические рекомендации № 02.030−08, Роспотребнадзор. М. 2008. — С. 20
  25. О. В., Ковальчук Л. В. Невынашивание беременности, инфекция, врожденный иммунитет.// ГЭОТАР-МЕД, 2007 г.
  26. А. Д., Бицадзе В. О., Акинынина С. В. Синдром системного воспалительного ответа в акушерстве.// М.: Мед. информ. агенство 2006. — С. 448
  27. JI. А., Шурмалина А. В. Стратегия лечения больных с рецидивирующим генитальным герпесом.// Российский международный журнал 2001. — № 3. — С. 50−53
  28. JI. А., Шуршалина А. В. Обоснование принципов современной терапии генитального герпеса.// Гинекология. — 2000. — Т. 2. № 3. — С. 296−302
  29. A.A. и др. Сравнение различных методов лабораторной диагностики при выявлении цитомегаловируса в аутопсийном материале умерших новорожденных и детей, умерших на первом году жизни.// ЖМЭИ 2002. — Т. 3. — № 2. — С. 63−69
  30. Д., Бростофф Дж., Рот Д.Б., Ройтт А. Иммунология.// М.: издательство «Логосфера». 2007. — С. 70−77
  31. А. П., Асцатурова О. Р. Генитальный герпес и беременность.// Гинекология 2002. — Т. 4. — № 1. — С. 4−6
  32. Л. Л., Талалаев А. Г. Основные причины смерти новорожденных.// Руководство по педиатрии. Неонатология. Москва 2006.- С. 432−448
  33. И. В., Тютюнник В. Л. Акушерская тактика у пациенток с герпетической инфекцией.// Акушерство и гинекология — 2001.-№ 4.-С. 56−59
  34. И. В., Тютюнник В. Л., Марченко Л. А. Генитальный герпес (этиология, патогенез, клиника, диагностика, планирование беременности).// Акушерство и гинекология 2001. — № 3. — С. 61−63
  35. А. В., Будыркина Т. С., Морозов С. Г. и др. Инфекция матери как причина патологии плода и новорожденного.// Аллергология и иммунология 2001. — Т. 2. — № 2. — С. 110−116
  36. Прилепская Заболевания шейки матки, влагалища и вульвы (клинические лекции): 2 издание — М.: МЕДпресс — 2000. С. 432
  37. С. В., Тартаковский И. С.// Клин. лаб. диагн. — 1998. -№ 2.-С. 33−35
  38. Протоколы диагностики, лечение и профилактики внутриутробной инфекции у новорожденных детей М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ. — 2001. -С. 96
  39. В. Н., Кононова И. Н., Бушуева П. В., Власова И. А. Значение оценки местного иммунитета генитального тракта беременных.// Мед. иммунология — 2001. — Т. 3.- № 2. С. 257−258
  40. Д. В., Трофимов Д. Ю. ПЦР «в реальном времени»: подходы к анализу данных (обзор).// Прикладная биохимия и микробиология -2006. Т. 42. — № 5. — С. 520−528
  41. А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология.// М.: издательство «Мир». 2000. — С. 168−189
  42. М. А., Халдин А. А. Простой герпес. Дерматологические аспекты.// М.: «МЕДпресс-информ» 2002. — С. 160
  43. В. Н. Сочетанная внутриутробная герпетическая и цитомегаловирусная инфекция и ее влияние на плод и новорожденного.// Материалы Ш съезда Российской ассоциации специалистов перинатальной медицины М.: ГОУ ВУНМЦ МЗ РФ -2000. С. 76−77
  44. В. Н., Тютюнник В. Л., Зубков В. В. Перинатальные исходы у беременных с инфекционными заболеваниями и плацентарной недостаточностью.// Акушерство и гинекология. — 2001. № 1. — С.16.21
  45. А. П. Инфекционные поражения нервной системы у новорожденных: Автореф. дисс. доктора мед. наук С.Пб. — 2001. — С. 70
  46. Ю. К., Шарапова Г. Я., Селисский Г. Д. Инфекции, передаваемые половым путем: практическое руководство.// М.: МЕДпрессинформ 2001. — С. 464
  47. Е.И. Клиническая иммунология: В 3-х т.// М.: Медицина. — 1998.-С. 228
  48. М. Н., Скрипченко Н. В. Вирусные энцефалиты и менингиты у детей.// Москва 2004. — С. 424
  49. Г. Т. Иммунология беременности.// М.: Изд. РАМН 2003. — С. 400
  50. Т. Г., Малиновская В. В., Будыкина Т. С. и др. Диагностическая и прогностическая значимость иммунного и интеферонового статуса при вирусно — бактериальной инфекции у беременных.// Мед. Иммунология 2002. — Т. 4. — № 2. — С. 284−285
  51. Н. К., Сухих Г. Т. Роль цитакинов в невынашивании беременности.// Материалы V Российского форума «мать и дитя». М. -2003.-С. 231−232
  52. А. А., Авдеева О. В., Обухова О. О. Содержание цитокинов в сыворотке крови мужчин с генитальным герпесом в стадии клинической ремиссии.// Аллергология и иммунология 2004. — Т. 5. -№ 1.-С. 124
  53. Н.Е., Меджидова М. Г., Воронцова О. Н. и др. Количественные лабораторные методы для диагностики цитомегаловирусной инфекции у недоношенных новорожденных детей.// Вопросы вирусологии. — 2005. № 1. — С. 9−14
  54. ., Найп Д. Вирусология.// М., изд. «Мир» 1989. — Т. 3
  55. А. В., Мельникова В. Ф. Перинатальная инфекция: практическое руководство.// Практич. рук-во. СПб.: Эпби СПб. — 2002. — С. 352
  56. В. М., Губанова Е. В. Динамика заболеваемости генитальным герпесом и деятельность ЛПУ в Москве и Московской области.// Сборник научных работ ЦНИКВИ МЗ РФ. М. — 2000. — С. 93−94
  57. Г. В., Бомбардинова Е. П., Акоев Ю. С. Особенности течения септического процесса у недоношенных детей на современном этапе.// Рос. педиат. журнал. 2000. — № 2. — С. 47−49
  58. Г. В., Скворцова В. А., Боровик Т. Э. Функциональное состояние желудочно-кишечного тракта у новорожденных.// Педиатрия. 2001. — № 3. — С. 89−92
  59. Alanen A., Hurranen V. HSV DNA in amniotic fluid without neonatal infection.// Clin. Ifect. Dis. 2000. — V. 30. — № 2. — P. 363−367
  60. J. С., Steinhart W. L., Hill C. W. Transcription of herpes simplex type 1 DNA in nuclei isolated from infected HEp-2 and KB cells.// Virol. -1974.-V. 60.-P. 302−307
  61. Amin H. J., Zamora S. A., D. D. Mc Millan. Arginine supplementation prevents necrotizing enterocolitis in the premature infant.// J. Pediatr. -2002. V. 140. — № 4. — P. 425−431
  62. Andorsky D. J., Lund D. P., Lillehei C. W. Nutritional and other postoperative management of neonates with clinical outcomes.// J. Pediatr. -2001.-V. 139.-P. 27−33
  63. Anzivino E., Fioriti D., Mischitelli M. et al. Herpes simplex virus infection in pregnancy and in neonate: status of art of epidemiology, diagnosis, therapy and prevention.// Virology Journal. 2009. — V. 6. — № 40. — P. 111
  64. Ashley LR, Corey L. Herpes simplex viruses. In: Schmidt N, Whitely R, Emmons, editors. Diagnostic procedures for viral, Rickettial and Chlamydial infection.// ApHA American Public Health Association -1989.-P. 265−319
  65. Baker D. A. Consequences of herpes simplex virus in pregnancy and their prevention.// Curr Opin Infect Dis. 2007. — V. 20. — P. 73−76
  66. Batterson W., Roizman B. Characterization of the herpes simplex virion-associated factor responsible for the induction of alpha genes.// J of Virol. 1983. -V. 46.-P. 371−377
  67. Baumal C. R., Levin A. V., Read S. E. Cytomegalovirus retinitis in immunosuppressed children.// Am. J. Ophthalmol. 1999. — V. 127. — № 5. -P. 550−558
  68. Biswas N, Weller S. K. The UL5 and UL52 subunits of the herpes simplex virus type 1 helicase-primase subcomplex exhibit a complex interdependence for DNA binding.// J Biol Chem. 2001. — V. 276. — № 20
  69. Boehmer P. E., Dodson M. S., Lehman I. R. The herpes simplex virus type-1 origin binding protein. DNA helicase activity.// J of Biological Chemistry. 1993. -V. 268. — P. 1220−1225
  70. Boutell C., Everett R. D. The Herpes Simplex Virus Type 1 (HSV-1) Regulatory Protein ICP0 Interacts with and Ubiquitinates p53.// J. Biol. Chem. 2003. — V. 38. — P. 36 596−36 602
  71. Braig S., Chanzy B. Management of genital herpes during pregnancy: the French experience.// Herpes. 2004. — V. 11. — № 2. — P. 45−47
  72. Branco F. J., Fraser N. W. Herpes simplex virus type 1 latency-associated transcript expression protects trigeminal ganglion neurons from apoptosis.// J. Virol. 2005. — V. 79. — P. 6969−6975
  73. Brocklehurst P. Should acyclovir prophylaxis be used in late pregnancy in women with recurrent genital herpes infection? How to use a clinical decision analysis.// P. Brocklehurst Genitourin Med. 1997. — V. 73. — № 4.-P. 314−319
  74. Brown Z. A., Gardella C., Wald A., Morrow R. A., Corey L. Genital herpes complicating pregnancy.// Obstet Gynecol. 2005. — V. 106. — P. 845−856
  75. Brown Z. A., Selke S., Zen J. et al. The acquisition of herpes simplex virus during pregnancy.// N. Engl. J. Med. 1997. — № 337. — P. 509−515
  76. Brown Z. A., Wald A., Morrow R. A., Selke S., Zeh J., Corey L. Effect of serologic status and cesarean delivery on transmission rates of herpes simplex virus from mother to infant.// JAMA 2003. — V. 289. — P. 203 209
  77. Bruisten S. M., Cairo I., Fennema H., Pijl A., Buimer M., Peerbooms P. G. H. et al. Diagnosing genital ulcer disease in a clinic for sexually transmitted diseases in Amsterdam.// J. Clin. Microbiol. 2001. — V. 39. -P.601−605
  78. Bursrein D. N. Sequally transmitted treatment guidelines.// Current Opinion in Pediatrics-2003.-V. 15.-P. 391−397
  79. Carrozza M., DeLuca N. Interactions of the viral activator protein ICP4 with TFIID through TAF250.// Molecular and Cellular Biology. 1996. -V. 16.-P. 3085−3093
  80. Centers for Disease Control and Prevention Website. Sexually transmitted disease guidelines.// http://www.cdc.gov/std/treat ment/2006/rr551 l.pdf.
  81. Chan S. H., Perussia B., Gupta J. W. Induction of interferon gamma production by natural killer cell stimulatory factors: characterization of the responder cells and synergy with other inducers.// J. Exp. Med. 1991.1251. V. 173.-P. 819−879
  82. Chen K. T., Segu M., Lumey L. H., Kuhn L., Carter R. J., Bulterys M., Abrams E. J. Genital herpes simplex virus infection and perinatal transmission of human immunodeficiency virus.// Obstet Gynecol — 2005. -V. 106.-P. 1341−1348
  83. Chen Sh., Pearson A., Coen D.M. Failure of Thymidine Kinase-Negative Herpes Simplex Virus To Reactivate from Latency following Efficient Establishment.// J Virol. 2004. — V. 78. — № 1. — P. 520−523
  84. Chen Y. M., Knipe D. M. A dominant mutant form of the herpes simplex virus ICP8 protein decreases viral late gene transcription.// Virol. 1996. -V. 221.-P. 281−290
  85. Cheng C. H. Measured versus estimated energy expedinture in mechanically ventilated critically ill patients.// Clinical Nutrition. 2002. -V. 21. — № 2. — P. 165−172
  86. Chiou H. C., Weller S. K., Coen D. M. Mutations in the herpes simplex virus major DNA-binding protein gene leading to altered sensitivity to DNA polymerase inhibitors.// Virol. 1985. — V. 145. — P. 213−226
  87. Constantin N., Dodson M. S. Two-hybrid analysis of the interaction between the UL52 and UL8 subunits of the herpes simplex virus type 1 helicase-primase.// J of General Virol. 1999. — V. 80. — P. 2411−2415
  88. Cook W. J., Wobbe K. K., Boni J., Coen D. M. Regulation of Neighboring Gene Expression by the Herpes Simplex Virus Type 1 Thymidine Kinase Gene.//J Virol.-1996.-V. 218.-№ l.-P. 193−203
  89. Corey L., Handsfield H. H. Genital herpes and public health- addressing a global problem.// JAMA. 2000. — V. 283. — P. 791−94
  90. Costanzo F., Campadelli-Fiume G., Foa-Tomasi L., Cassai E. Evidence that herpes simplex virus DNA is transcribed by cellular RNA polymerase B.// J of Virol. 1977. — V. 21. — P. 996−1001
  91. Crate J. J., Mocarski E. S., Lehman I. R. A DNA helicase induced by herpes simplex virus type 1.// Nucleic Acids Research. 1988. — V. 16.1261. P. 6585−6596
  92. Cusini M., Ghislanzoni M. The importance of diagnosing genital herpes.// J Antimicrob Chemother 2001. — V. 47. — P. 9−16
  93. Desselberger U. Herpes simplex virus infection in pregnancy: diagnosis and significance.// Intervirology. 1998. — V. 41. — P. 185−190
  94. Edward K., Wagner’s, Herpes Virus Research.// http://www.dbc.uci.edu/.
  95. Edwards K., Logan J., Saunders N. Real-time PCR.// Horizon Bioscence -2004.-P. 1−36
  96. Elgadi M. M., Smiley J. R. Picornavirus internal ribosome entry site elements target RNA cleavage events induced by the herpes simplex virus virion host shutoff protein.// J of Virol. 1999. — V. 73. — P. 9222−9231
  97. Elias P., Lehman I. R. Interaction of origin binding protein with an origin of replication of herpes simplex virus 1.// Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 1988. — V. 85. — P. 2959−2963
  98. Enright A. M., Prober C. G. Neonatal herpes infection: Diagnosis, treatment and prevention.// Semin Neonatol 2002. — V. 7. — P. 283−291
  99. Espy M. J., Ross T. K., Teo R. et al. Evaluation of LightCycler PCR for implementation of laboratory diagnosis of herpes simplex virus infections.// J. Clin. Microbiol. 2000. — V. 38. — P. 3116−3118
  100. Everett R. D. Herpes Simplex Virus type 1 regulatory protein ICP0 does not protect cyclins D1 and D3 from degradation during infection// J. of virol. 2004. — V. 78. — P. 9599−9604
  101. Faber S. W., Wilcox K. W. Association of the herpes simplex virus regulatory protein ICP4 with specific nucleotide sequences in DNA.// Nucleic Acids Research. 1986. — V. 14. — P. 6067−6083
  102. Freedman E., Mindel A., Jones C.I. Epidemiological, clinical and laboratory aids for the diagnosis of neonatal herpes an Australian perspective. // Herpes. -2004. — V. 11. — № 2. — P. 38−40
  103. G. J. J. van Doornum, Guldemeester J., Osterhaus A. D. M. E. et al. Diagnosing Herpesvirus Infections by Real-Time Amplification and Rapid Culture.// Journal of Clinical Microbiology 2003. — P. 576−580
  104. Gao M., Knipe D. M. Potential role for herpes simplex virus ICP8 DNA replication protein in stimulationof late gene expression.// J of Virol. -1991. V. 65. — P. 2666−2675
  105. Gaytant M. A. et al. Congenital cytomegalovirus infection: review of the epidemiology and outcome.// Obstet. Gynecol. Surv. — 2002. V. 57. — P. 245−256
  106. Godowski P. J., Knipe D. M. Mutations in the major DNA-binding protein gene of herpes simplex virus type 1 result in increased levels of viral gene expression.// J of Virol. 1983. — V. 47. — P. 478−486
  107. Godowski P. J., Knipe D. M. Transcriptional control of herpesvirus gene expression: gene functions required for positive and negative regulation.// Proceedings of the National Academy of Sciences. 1986. — P. 256−260
  108. Godowski P. J., Knipe D. M. Identification of a herpes simplex virus function that represses late gene expression from parental viral genomes.// J of Virol. 1985. — V. 55. — P. 357−365
  109. Gottlieb S. L., Douglas JM Jr, Schmid D. S. et al. Seroprevalence and correlates of herpes simplex virus type 2 infection in five sexually transmitted-disease clinics.// J Infect Dis. 2002. — V. 186. — P. 1381−1389
  110. Grangeot-Keros L., Cointe D. Diagnosis and prognostic markers of HCMV infection.// J. Clin. Virol. 2001. — V. 21. — P. 213−221
  111. Granzow H., Klupp B.G., Fuchs Wet, et al. Egress of alphaherpesviruses: comparative ultrastructural study.// J. of virol. 2001. — P. 3675−3684
  112. Gressens P., Langston C., Martin J. R. In Situ PCR Localization of Herpes Simplex Virus DNA Sequences in Disseminated Neonatal Herpes Encephalitis.// J of Neuropathology and Experimental Neurology 1994. -V. 53. -№ 5.-P. 469−482
  113. Haarr L., Shukla D., Rodahl E. et al. Transcription from the gene encoding the herpesvirus entro receptor nectin — 1 (HveC) in nervous tissue of adult mouse.// Virol. 2001. — V. 287. — P. 301−309
  114. Haase A.T., Retzel E. F., Staskus K. A. Amplification and detection of lentiviral DNA inside cells.// Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1990. — V. 87. -P. 4971−4975
  115. Haliona B. Epidemiology of genital herpes resentadvancer.// Eur. J. Dermatol — 1999. — V. 9. — № 3. — P. 177−184
  116. Hallman M. Intrauterine infections and the fetus.// Duodecim. 1999. — V. 115. — № 14.-P. 1437−1438
  117. Hardwicke M. A., Sandri-Goldin R. M. The herpes simplex virus regulatory protein ICP27 contributes to the decrease in cellular mRNA levels during infection.// J of Virol. 1994. — V. 68. — P. 4797−4810
  118. Hassan J., Connell J. Translational mini-review series on infectious disease: congenital cytomegalovirus infection: 50 years on.// Clin Exp Immunol. 2007. — V. 149. — № 2. — P. 205−210
  119. Hill D. J., Petrik J., Arany E. Growth factors and the regulation of fetal growth.// Obstst. Gynecol. 1998. — V. 92. — № 2. — P. 179−183
  120. Hodgson J., Zuckerman M., Smith M. Development of a novel internal control for a real-time PCR for HSV DNA types 1 and 2. // J Clin Virol -2007. V. 38. — № 3. — P. 217−220
  121. Honess R. W., Roizman B. Regulation of herpesvirus macro-molecular synthesis. I. Cascade regulation of the synthesis of three groups of viral proteins.// J of Virol. 1974. — V. 14. — P. 8−19
  122. Hwang Y. S., Spruance. The epidemiology of uncommon HSV 1 infection.// J. of the IHMF — 1999. — V.6. — № 1. — P. 16−19
  123. Igarashi K., Fawl R., Roller R. J., Roizman B. Construction and properties of a recombinant herpes simplex virus 1 lacking both S-component origins of DNA synthesis.//J of Virol. 1993. -V. 67. — P. 2123−2132
  124. Jacobs R. F. Neonatal herpes simplex virus infections.// Semin. Perinatol. -1998.-V. 22.-P. 64−71
  125. Jean S., LeVan K. M., Song B., Levine M., Knipe D. M. Herpes simplex virus 1 ICP27 is required for transcription of two viral late (gamma2) genes in infected cells.// Virol. 2001. — V. 283. — P. 273−284
  126. Jing X, Cerveny M, Yang K, He B. Replication of herpes simplex virus 1 depends on the gamma 134.5 functions that facilitate virus response to interferon and egress in the different stages of productive infection.//J Virol.-2004.-V.78
  127. Jones C.L. Herpes simplex virus infection in the neonate: clinical presentation and management. // Neonatal Network 1996. — V. 15. — P.13 011.15
  128. Karr В. M., Read G. S. The virion host shutoff function of herpes simplex virus degrades the 5' end of a target mRNA before the 3' end.// Virol. —1999. V. 264. — P. 195−204
  129. Kawana T. Vertical transmission of alpha herpes virus.// Nippon. Rinsho2000. -V. 58. № 4. — P. 871−876
  130. Kenneson A., Cannon M. Review and meta-analysis of the epidemiology of congenital cytomegalovirus (CMV) infection. // Rev Med Virol. 2007. -V. 17. -№ 4.-P. 253−76.
  131. Kim J.C., Choi S.H., Kim J.K. et al. Белок ICP27 вируса простого герпеса типа 1 индуцирует апоптоз путем повышения внутриклеточного содержания активных форм кислорода.// Молекулярная биология 2008. — Т. 42. — № 3. — С. 470−477
  132. Kimberlin D. W. Advances in the treatment of neonatal herpes simplex infections.// Rev Med Virol 2001. — V. 11. — P.157−163
  133. Kimberlin D. W. Herpes Simplex Infection.// Clinical Microbiology Reviews. 2004. — P. 1−13
  134. Kimberlin D. W. Herpes simplex virus infections in newborn. // Semin. Perinatol. 2007. — V. 31. — P. 19−25
  135. Kimberlin D. W. Herpes Simplex Virus, Meningitis and Encephalitis in Neonates.// J. Herpes 2004. — V. 11. — № 2. — P. 65−76
  136. Kimberlin D. W. Neonatal herpes simplex infection.// Clin. Microbiol, Rev.-2004.- V. 17.-№ l.-P. 1−13
  137. Kimberlin D. W., Lin C. Y., Jacobs R. F. et al. Safety and efficacy of highdose intravenous acyclovir in the management of neonatal herpes simplex virus infections.// Pediatrics. 2001. — V. 108. — P. 230−238
  138. Kimberlin D. W., Lin CY, Jacobs RF, et al. Safety and efficacy of highdose intravenous acyclovir in the management of neonatal herpes simplex virus infections. Pediatrics. 2001. — V. 108. — P. 230−238
  139. Klapper P. E., Cleator G. M. Herpes simplex virus.// Inter virology 1997. -V. 40.-P. 62−71
  140. Kleinschmidt-De Masters B. K., Gilden D. H. The expanding spectrum of herpes simplex virus infection of the nervous system.// Brain Pathol. -2001. -V. 11.-№ 4.-P. 440−451
  141. Knipe D.M., Howley P.M. Fields Virology, 5th Edition.// Copyright B (c)2007 Lippincott Williams & Wilkins
  142. Knipe D.M. Fundamental Virology.// Lippicott W&W. Philadelphia, 2001.-P. 1123−1185
  143. Koff A., Tegtmeyer P. Characterization of major recognition sequences for a herpes simplex virus type 1 origin-binding protein.// J of Virol. 1988. — V. 62.-P. 4096−4103
  144. Kriebs J. M. Understanding herpes simplex virus: transmission, diagnosis, and considerations in pregnancy management.// J Midwifery Womens Health 2008. — V. 53. — P. 202−208
  145. Kristie T. M., Sharp P. A. Interactions of the Oct-1 POU subdomains with specific DNA sequences and with the HSV alpha-trans-activator protein.// Genes & Development. 1990. — V. 4. — P. 2383−2396
  146. Kwong A. D., Kruper J. A., Frenkel N. Herpes simplex virus virion host shutoff function.// J of Virol. 1988. — V. 62. — P. 912−921
  147. Lee C. K., Knipe D. M. An immunoassay for the study of DNA-binding activities of herpes simplex virus protein ICP8.// J of Virol. 1985. — V. 54.-P. 731−738
  148. Lin B. T. Retinoblastoma cancer suppressor gene product is a substrate of the cell cycle regulator cdc2 kinase.// EMBO J. 1991. — V. 10. — P. 857 864
  149. Linssen C.F.M., Jacobs J.A., Stelma F. et al. Herpes simplex virus load in bronchoalveolar lavage fluid is related to poor outcome in critically ill patients.// Intensive Care Med. 2008. — V. 34. — № 12. — P. 2202−2209
  150. Lockshon D., Galloway D.A. Cloning and characterization of oriL2, a large palindromic DNA replication origin of herpes simplex virus type 2.// J of Virol. 1989. -V. 58.-P. 513−521
  151. McGregor F., PhelanA., Dunlop J., Clements J. B. Regulation of herpes simplex virus poly (A) site usage and the action of immediate-early protein IE63 in the early-late switch.// J of Virol. 19 996. — V. 70. — P. 1931−1940
  152. McNamee E. E., Taylor T. J., Knipe D. M. A dominant-negative herpesvirus protein inhibits intranuclear targeting of viral proteins: Effects on DNA replication and late gene expression.// J of Virol. — 2000. V. 74. -P. 10 122−10 131
  153. Meerbach A., Sauerbrei A., Meerbach W. et al. Fatal outcome of herpes simplex virus type 1-induced necrotic hepatitis in a neonate.// Med Microbiol Immunol. -2006. -V. 195. P. 101−105
  154. Mettenleiter T. C. Herpesvirus assembly and egress.// J Virol. — 2002. V. 76.-P. 1537−1547
  155. Mladina N., Mehikic G., Pasik A. TORCH infection in mother as a course of neonatal morbidity.// Med. Arh. 2000. — V. 54. — P. 273−276
  156. Morrison E. E., Stevenson A. J., Wang Y. E. et al. Defferences in the intracellular localization and fate of Herpes Simplex Virus tegument proteins early in the infection of VERO cells.// J of General virol. 1998. — V. 79.-P. 2517−2528
  157. Mossman K. L., Saffran H. A., Smiley J. R. Herpes Simplex Virus ICP0 Mutants Are Hypersensitive to Interferon.// J Virol. 2000. — V.74. — № 4. — P. 2052−2056
  158. Muller M. T. Binding of the herpes simplex virus immediate-early gene product ICP4 to its own transcription start site.// J of Virol. — 1987. V. 61.-P. 858−865
  159. Mullis K. B., Falloona F. A. Specific synthesis of DNA in vitro a polymerase-catalysed chain reaction.// Meth. Ensymol. 1987. — V. 155. -P. 335−349
  160. Najioullah F., Bosshard S., Thouvenot D. et al. Diagnosis and surveillance of herpes simplex virus infection of the central nervous system. // J Med Virol 2000. — V. 61. — № 4. — P. 468−73
  161. Nakajima H., Kobayashi M., Pollard R. B., Suzuki F. Pathogenic role of Th2 responses on the severity of encephalomyelitis induced in mice by herpes simplex virus type 2 infection.// J. Neuroimmunol. 2000. — V. 10. -P. 106−113
  162. Namangala B., Inoue N., Kohara J., Kuboki N., Sakurai T., Hayashida K., Sugimoto C. Evidence for the immunostimulatory effects of low-dose orally delivered human IFN-alpha in cattle J.// Interferon Cytokine Res. -2006. — V. 26. — № 9. — P. 675−681
  163. Nuovo G. PCR in situ hybridization.// NY, Raven Press 1992
  164. Nuovo G. Preparation of samples for polymerase chain reaction in situ.// Scan Microsc Suppl. 1996. — V. 10. — P. 49−55
  165. Nuovo G., Gallery F., McConnell P. Analysis of non specific DNA synthesis during in situ PCR.// PCR Method Applic. — 1994. — V. 4. — P. 342 — 349
  166. Nuovo G., Gallery F., McConnell P., Becker J., Bloch W. An improved technique for the in situ detection of DNA after polymerase chain reaction amplification.// Am J Pathol. 1991. — V. 139. — P. 1239 — 1244
  167. Nuovo G., Gallery F., McConnell P., Horn R., Bloch W. Importance of different variables for enchansing in situ detection of PCR — amplified DNA.// PCR Methods Appl. 1993. — V. 2. — № 305. — P. 312
  168. Nuovo G., Gorgone G., McConnell P. In situ localization of PCR -amplified human and viral cDNAs.// PCR Methods Appl. 1992. — V. 2. -P. 117−123
  169. O’Riordan D. P., Golden C. W., Aucott S. W. Herpes Simplex Virus Infection in Preterm Infant.// J. Pediatrics. 2007. — V. 22. — P. 1613−1620
  170. Oroskar A. A., Read G. S. A mutant of herpes simplex virus type 1 exhibits increased stability of immediate early (alpha) mRNAs.// J of Virol. 1987. -V. 61. -P. 604−606
  171. Papavassiliou A. G., Silverstein S. J. Characterization of DNA-protein complex formation in nuclear extracts with a sequence from the herpes simplex virus thymidine kinase gene.// J of Biological Chemistry. — 1990. -V. 265.-P. 1648−1657
  172. Polvino-Bodnar M., Orberg P. K., Schaffer P.A. Herpes simplex virus type 1 oriL is not required for virus replication or for the establishment and reactivation of latent infection in mice.// J of Virol. 1987. -V. 61. — P.1 353 528−3535
  173. Preston C. M., Newton A. A. The effects of herpes simplex virus type 1 on cellular DNA-dependent RNA polymerase activities.// J of General Virol. -1976.-V. 33.-P. 471−482
  174. Proffit M. R., Schindler S. A. Rapid detection of HSV with enzyme-linked virus inducible system employing a genetically modified cell line.// Clin Diagn Virol 1995. — V. 4. — P. 175−82
  175. Quinlan M. P., Chen L. B., Knipe D. M. The intranuclear location of a herpes simplex virus DNAbinding protein is determined by the status of viral DNA replication.// Cell. 1984. — V. 36. — P. 857−868
  176. Randolph A. G., Washington A. E., Prober C. G. Cesarean delivery for women presenting with genital herpes lesions. Efficacy, risks, and costs.// JAMA. 1993. — V. 270. — P. 77−82
  177. Rawlinson W. et al. Viruses and other infections in stillbirth: what is the evidence and what should we be doing?// Pathology. 2008. — V. 40. — № 2.-P. 149−60
  178. Revello M. et al. Preconceptional primary human cytomegalovirus infection and risk of congenital infection // J. Infect. Dis. 2006. — V. 193. — № 6. — P.783−7
  179. Reynolds A., Liand L., Baines J. Conformational Changes in the Nuclear Lamina Induced by Herpes Simplex Virus Type 1 Reguire Genes UL31 and UL34.// J of virol. 2004. — V. 78. — № 11. — P. 5564−5575
  180. Rudnick C. M., Hoekzema G. S. Neonatal herpes simplex virus infections.// Am Fam Physician. 2002. — V. 65. — № 6. — P. 1138−1142
  181. Ruyechan W. T. The major herpes simplex virus DNA-binding protein holds single-stranded DNA in an extended configuration.// J of Virol. -1983.-V. 46.-P. 661−666
  182. Sandri-Goldin R. M., Hibbard M. K. The herpes simplex virus type 1 regulatory protein ICP27 coimmunoprecipitates with anti-Sm antiserum, and the C terminus appears to be required for this interaction.// J of Virol. — 1996.-V. 70.-P. 108−118
  183. Sauberbrei F., Eichborn U., Hottenrott G., Wutzler P. Virological diagnosis of herpes simplex encephalitis.// J. Clin. Virol. 2000. — V. 17. — P. 31 -36
  184. Sauerbrei A., Wutzler P. Herpes simplex and varicella-zoster virus infections during pregnancy: current concepts of prevention, diagnosis and therapy. Part 1: herpes simplex virus infections.// Med Microbiol Immunol -2007.- V. 196.-P. 89−94
  185. Schang L. M., Phillips J., Schaffer P. A. Requirement for cellular cyclin-dependent kinases in herpes simplex virus replication and transcription. // J. Virol. 1998. — V. 72. — № 7. — P. 5626−5637
  186. Slomka M. J., Emery L., Munday P. E. et al. A comparison of PCR with virus isolation and direct antigen detection for diagnosis and typing of genital herpes.// J Med Virol 1998. — V. 55. — P. 177−183
  187. Spear P. Herpes Simplex Virus: receptors and ligands for cell entry.// Cellular Microbiology. 2004. — № 6. — P. 401−410
  188. Spear P., Longnecker R. Herpesvirus entry: an Update.// J. of virol. 2003. -V. 77.- № 19.-P. 10 179−10 185
  189. Squier W. Shaken baby syndrome: the quest for evidence.// Dev. Med. Child Neurol. 2008. — V. 50. — № 1. — P. 10−14
  190. Stanberry L. R. Control of STDs — the role of prophylactic vaccines against herpes simplex virus.// Sex. Trans. Infect. 1998. — V. 74. — P. 391−394
  191. Stern S., Herr W. The herpes simplex virus transactivator VP16 recognizes the Oct-1 homeo domain: evidence for a homeo domain recognition subdomain.// Genes & Development. 1991. — V. 5. — P. 2555−2566
  192. Stow N. D. Localization of an origin of DNA replication within the TRS/IRS repeated region of the herpes simplex virus type 1 genome.// EMBO J. 1982. -V. 1. — P. 863−867
  193. Stow N. D., McMonagle E. C. Characterization of the TRS/IRS origin of DNA replication of herpes simplex virus type 1.// Virol. — 1983. V. 130. -P. 427−438
  194. Stringer K. F., Ingles C. J., Greenblatt J. Direct and selective binding of an acidic transcriptional activation domain to the TATA-box factor TFIID.// Nature. 1990. — V. 345. — P. 783- 786
  195. Suligoi B., Cusan M., Santopadre P., Palu G., Catania S., Girelli G., Pala S., Vullo V. HSV-2 specific seroprevalence among various populations in Rome, Italy. The Italian Herpes Management Forum.// Sex Transm Infect. -2000. V. 76.-P. 213−214
  196. Swiss Herpes Management Forum. Swiss recommendations for the management of genital herpes and herpes simplex virus infection in the neonate.// Swiss Med Wkly. 2004. — V. 134. — P. 205−214
  197. Taylor T. J., Brockman M. A., McNamee E. E., Knipe D. M. Herpes Simplex Virus.// Front Biosci. 2002. — V. 7. — P. 752−764
  198. Thellin O., Coumans B., Zorzi W. Tolerans to the foeto placental graft: ten ways to support a child for nine months.// Curr. Opin. Immunol. — 2000.-V. 12.-P. 731−737
  199. Thomas D., Blakqori G., Wagner V., Banholzer M., Kessler N., Elliott R. M., Haller O., Weber F. J. Inhibition of RNA Polymerase II Phosphorylation by a Viral Interferon Antagonist.// J Virol. 2004. — V. 30.-P. 31 471−31 477
  200. Thompson R. L., Shieh M., Sawtell N. M. Analysis of Herpes Simplex Virus ICP0 Promoter function in sensory neurons during acute infection, Establishment of Latency, and Reactivation in vivo.// J of virol. 2003. -V. 77.- № 22.-P.12 319−12 330
  201. Trincado D., Eawlinson W. Congenital and perinatal infections with cytomegalovirus.// J. Paediatr. Child Health. 2001. — V. 37. — P. 187−92
  202. Tunback P., Bergstrom T., Claesson B. A. et al. Early acquisition of herpes simplex virus type 1 antibodies in children—a longitudinal serological study.// J Clin Virol 2007. — V. 40. — № 1. — P. 26−30
  203. Twagira M., Hadzic N., Smith M., et al. Disseminated neonatal herpes simplex virus (HSV) type 2 infection diagnosed by HSV DNA detection in blood and successfully managed by liver transplantation.// Eur J Pediatr -2004.-V. 163 -№ 3.-P. 166−169
  204. Wagner E. K., Roizman B. Ribonucleic acid synthesis in cells infected with herpes simplex virus. I. Patterns of ribonucleic acid synthesis in productively infected cells.// J of Virol. 1969. — V. 4. — P. 36−46
  205. Wald A., Huang M., Carrell D. et al. Polymerase Chain Reaction for Detection of Herpes Simplex Virus (HSV) DNA on Mucosal Surfaces: Comparison with HSV Isolation in Cell Culture.// The Journal of Infectious Diseases-2003.-V. 188. -№ l.-P. 1345−1351
  206. Weiss H. Epidemiology of herpes simplex virus type 2 infection in the developing world.// Herpes 2004. — V. 11. — P. 24−35
  207. Weller S.K. et al. Cloning, sequencing, and functional analysis of oriL, a herpes simplex virus type 1 origin of DNA synthesis.// Molecular & Cellular Biology. 1985. — V. 5. — P. 930−942
  208. Whitley R. J. Herpes simplex virus in children.// Curr Treat Options Neurol -2002. V. 4.-P. 231−237
  209. Whitley R. J., Kimberlin D. W. Herpes simplex virus.// Clin. Infect. Dis. — 1998. -V. 26. P. 541−555
  210. Xiao P., Capone J. P. A cellular factor binds to the herpes simplex virus type 1 transactivator Vmw65 and is required for Vmw65-dependent protein-DNA complex assembly with Oct-1.// Molecular & Cellular Biology. 1990. — V. 10. — P. 4974−4977
  211. Xu F, Sternberg M. R., Kottiri B. J., McQuillan G. M., Lee F. K., Nahmias A. J., Berman S. M., Markowitz L. E. Trends in herpes simplex virus type 1 and type 2 seroprevalence in the United States.// JAMA 2006. — V. 296.- P. 964−973
  212. Young E. J., Chafizaden E., Oliveira V. L. Disseminated herpes simplex infection during pregnancy.// Genta Clinic. Infect. Dis. — 1996. — V. 22. -№ 1.-P. 51−58
  213. Zelus B. D., Stewart R. S., Ross J. The virion host shutoff protein of herpes simplex virus type 1: messenger ribonucleolytic activity in vitro.// J of Virol. 1996. -V. 70. — P. 2411−2419
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!