Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Эпизоотическая ситуация по бешенству животных в Московской области и совершенствование методов экспресс-диагностики

Диссертация: Эпизоотическая ситуация по бешенству животных в Московской области и совершенствование методов экспресс-диагностики
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

С) (UF-440 «Heto-Holten», Дания) и бытовой (+4°) холодильникиводяная банявесы аналитические («Zaktady Meechaniki Precyzyjnej», Польша) — высокоскоростная рефрижераторная центрифуга (Sorvall WX ultra series centrifuge, «Thermo Fishcer», Германия) — люминесцентный микроскоп MJI-4- пластиковые 96-луночные планшеты для ИФА и культуральных работ («Costar», США) — ридер с фильтром на 450−620 нм… Читать ещё >

Эпизоотическая ситуация по бешенству животных в Московской области и совершенствование методов экспресс-диагностики (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Цель и задачи исследования
    • 1. 3. Научная новизна
    • 1. 4. Основные положения работы, выносимые на защиту
    • 1. 5. Личный вклад соискателя
    • 1. 6. Апробация результатов работы
    • 1. 7. Публикация результатов исследования
    • 1. 8. Объем и структура диссертации
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Экология и география распространения бешенства
    • 2. 2. Эпизоотическая ситуация по бешенству в РФ
    • 2. 3. Экологическая обстановка и социально-экономическое положение МО
    • 2. 4. Эпизоотическая ситуация по бешенству в МО
    • 2. 5. Роль безнадзорных собак в эпизоотии бешенства в МО
    • 2. 6. Возбудитель бешенства
      • 2. 6. 1. Классификация ЬуззауипБ
      • 2. 6. 2. Морфология и свойства вируса бешенства
      • 2. 6. 3. Восприимчивость к бешенству животных
    • 2. 7. Патогенез
    • 2. 8. Формирование иммунитета у животных при бешенстве
    • 2. 9. Диагностика бешенства
      • 2. 9. 1. Традиционные методы диагностики бешенства
      • 2. 9. 2. Метод иммунохроматографического анализа (ИХА)
    • 2. 10. Профилактика и меры борьбы с бешенством
    • 2. 11. Мероприятия по борьбе с бешенством

1.1 Актуальность темы.

К важнейшим задачам ветеринарной науки относится внедрение научных достижений в производство, разработка эффективных методов диагностики, профилактики и ликвидация инфекционных болезней животных, среди которых особое место занимает бешенство.

Особенностям проявления бешенства в Российской Федерации и в отдельных ее регионах посвящены работы ведущих отечественных специалистов по вопросам рабической инфекции: Селимов М. А. (1978, 1998) — Кузнецов П. П., Таршис М. Г. (1981) — Сочнев В. В. (1987) — Кузьмин И. В. (2001) — Авилов В. М. (2002) — Джупина С. И. и др. (2002, 2007) — Макаров В. В., Воробьев A.A. (2002, 2004) — Ботвинкин А. Д. (2004) — Иванов B.C. и др. (2004) — Хрипунов Е. М. и др. (2005) — Сидорова Д. Г. (2009) — Сидоров Г. Н. и др. (1995, 1998, 2011) — Ведерников В. А. и др. (2010) — Иванов А. В., Хисматуллина H.A., Чернов А. Н., Гулюкин A.M. (2010) — Самуйленко, А .Я., Гринь С. А. и др. (2012), Дудников С. А. (2012) и др.

Эпизоотологические основы профилактики бешенства животных в Московской области в разные годы были изучены Цвиль Л. А., Родиной J1.B. и др. (2001, 2002) — Балдиной И. В. (2003, 2004) — Мовсесянц A.A. (2003, 2011) — Заводских A.B. (2007). Причины сохранения напряженности эпизоотической обстановки по бешенству в таком быстроизменяющемся регионе, как Московская область, требуют дополнительного изучения. При этом необходимо проанализировать современную эпизоотическую ситуацию по бешенству с учетом влияния экологических и социальных факторов в сочетании с экспериментальными исследованиями.

Опасность распространения бешенства связана с особенностью патогенеза заболевания — передачей вируса зараженными животными при укусе или ослюнении. По данным Роспотребнадзора, в РФ за период 20 082 011 гг. зарегистрировано 57 летальных случаев среди людей.

На территории Московской области в 2011 году зарегистрировано 3 чрезвычайных ситуации, связанные с укусами и ослюнениями бешенными безнадзорными собаками и кошками, от которых пострадало 50 человек.

В этой связи постановка своевременного диагноза с применением экспресс-методов для обнаружения вируса бешенства является актуальной задачей.

5 ВЫВОДЫ.

1. Анализ природных условий, социально-экономической характеристики МО и эколого-эпизоотической ситуации на современном этапе указывает на существование предпосылок формирования и поддержания эпизоотий бешенства, как природного, так и городского типа. Важнейшими предпосылками осложнения эпизоотической обстановки по бешенству в 2008;2012 гг. послужили процесс урбанизации городов Подмосковья, высокая численность лисиц и рост численности безнадзорных собак.

2. Бешенство животных регистрировалось на территории 40 муниципальных образований Московской области. Наиболее неблагополучными остаются северные и северо-западные районы Подмосковья: Рузский, Истринский, Лотошинский, Клинский, Дмитровский и Можайский. Существует вероятность заноса возбудителя болезни из неблагополучных по бешенству соседних Смоленской, Тверской, Калужской и Тульской областей Центрального ФО.

3. Анализ видовой структуры заболеваемости бешенством животных в Московской области свидетельствует о том, что наибольшее число случаев регистрируется среди диких плотоядных, из которых 60,8% приходится на долю лисиц, 16,2% - енотовидной собаки, с вовлечением в эпизоотические цепи домашних плотоядных — 12,5% собак и 7,1% кошек.

4. Процесс урбанизации Московского региона создал предпосылки для эпизоотии городского типа, главными медиаторами которой являются безнадзорные собаки. К негативным особенностям проявления бешенства собак следует отнести ежегодное увеличение числа лиц, укушенных бешеными животными: 230 человек (2009 год) против 119 человек (2008 год) и регистрация крупных групповых нападений больных животных на людей с числом пострадавших от 8 до 24 человек в 12 районах МО.

5. Полученные результаты свидетельствуют о неоднородности антирабического иммунитета у собак уличного и домашнего содержания. Показано, что ежегодные вакцинации монои комплексными вакцинами, поддерживают содержание антител в сыворотке крови выше порогового уровня у собак всех групп в течение последующих 1−3 лет (срок наблюдения). Установлено, что результаты антирабической вакцинации зависят от сопутствующих заболеваний собак и не обнаружено значительных различий применения импортных и отечественных антирабических вакцин.

6. Разработана технология получения компонентов иммунохроматографической тест-системы на основе очистки IgG из антисывороток методом ионообменной хроматографии. Установлено, что иммуноспецифические и контрольные компоненты, сорбированные на поверхность нитроцеллюлозной мембраны в оптимальной концентрации, сохраняют активность в течение 12 месяцев при 4 °C.

7. Показана принципиальная возможность выявления антигена вируса бешенства «сэндвич» методом иммунохроматографического анализа с использованием нитроцеллюлозных мембран с фиксированным конъюгатом высокоаффинных антирабических IgG с частицами коллоидного золота (подушка конъюгата), антинуклеокапсидных IgG (тестовая линия) и кроличьими affra-IgG-6apaHa антителами (контрольная линия).

8. Показано, что результаты определения антигена вируса бешенства методом иммунохроматографического анализа находятся в прямой зависимости от концентрации вируса в пробе. Метод ИХА пригоден для исследования ткани мозга после хранения в 50% глицерине и после длительного (72 ч.) хранения при 20 °C.

6 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Разработаны и предложены:

• НТД на «Набор реагентов для количественного определения антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа (ИФА)», утверждена директором ГНУ ВНИТИБП РАСХН А. Я. Самуйленко, 05.04.2011 г.;

• «Методические положения по количественному определению антител к антигену вируса бешенства в сыворотке крови животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН, A.M. Смирновым, 08.08.2011 г.;

• НТД на тест-систему для выявления вируса бешенства методом иммунохроматографии, утверждена директором ГНУ ВНИТИБП РАСХН А. Я. Самуйленко, 16.07.2013 г.;

• «Методические положения по выявлению вируса бешенства методом иммунохроматографии», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН A.M. Смирновым, 02.07.2013 г.

• «Методические положения по выявлению антигена вируса бешенства методом контрастной иммунофлюоресценции», утверждены академиком-секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН, A.M. Смирновым 8 августа 2011 г.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Для формирования устойчивого благополучия в сфере жизнедеятельности человека существенную роль играют оценка современной эпизоотической ситуации и разработка эффективных методов и средств диагностики инфекционных болезней, среди которых особое место занимает бешенство. Широкое распространение бешенства в мире и РФ наносит большой экономический ущерб животноводству и является постоянной угрозой жизни человека.

За последние 10 лет в Подмосковье сложилась напряженная эпизоотическая ситуация по бешенству, резко возросло количество животных, заражённых вирусом бешенства, активизировались очаги бешенства смешанного типа, отмечено ежегодное увеличение числа пострадавших от бешеных животных, зарегистрированы случаи гибели людей. Однако, такие вопросы, как особенности современных эколого-эпизоотических аспектов бешенства на территории МО остаются мало изученными. Мониторинг современного состояния эко лого-эпизоотической ситуации по бешенству собак на территории МО и совершенствование диагностики данного заболевания являются необходимой и сложной задачей.

Рассмотренные достоинства и недостатки различных методов, применявшихся ранее и используемых в настоящее время в диагностике бешенства, обеспечивают достаточную чувствительность, но применение современных методом сопряжены с использованием дорогого стационарного оборудования и длительными процедурами пробоподготовки.

В связи с этим крайне актуален поиск чувствительного и специфичного теста, пригодного для индикации антигена вируса бешенства на основе ИХА, сочетающего экспрессность, низкую стоимость и простоту применения в безприборной диагностике.

3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1 Материалы и методы.

3.1.1 Материалы.

Материалы. В работе использовали производственный штамм фиксированного вируса бешенства «Овечий-ВГНКИ» и стандартный штамм «CVS» (ВГНКИ). Инактивацию вируса бешенства проводили 0,025% В-пропиолактоном. Вирус бешенства штамм «CVS», репродуцированный в культуре клеток ВНК-21/13 с титром л инфекционности 6,5 lg LD50/0,03 cm, предоставленный доктором биологических наук, профессором Матвеевой И. Н. Инфекционность вируса бешенства устанавливали на мышах по ГОСТ 26 075–84.

Антисыворотки. Сыворотки, специфичные к вирусу бешенства и НК получали иммунизацией баранов и морских свинок по схеме, разработанной в отделе иммунологии ГНУ ВНИТИБП. Динамику накопления антирабических антител в сыворотке крови, полученной на 14, 21 и 28 сутки после окончания схемы иммунизации, определяли в РДП, РСК и непрямом ИФА. Иммуноглобулины антивидовые к IgG барана получали на кроликах согласно ТУ 46−21−78−85. В качестве референс-антирабической сыворотки в непрямом ИФА служила антирабическая сыворотка крови собак, откалиброванная относительно отраслевого стандартного образца — «Референс-сыворотка антирабическая сухая» (ГНУ ВНИТИБП РАСХН) ТУ 9388−131−494 189−05.

Иммунохроматографическая тест-система. Для конструирования тест-системы ИХА использовали набор нитроцеллюлозных мембран «Advanced Mikrodevicts» (Индия) — Protran ВА83 «Sigma» (размер пор 0,20,45 мкм) — нитроцеллюлозные мембраны производства «Millipore» (США), на которые с помощью диспенсера IsoFlow («Imagene Technology», США) наносили иммуноспецифические и контрольные реагенты.

Нитроцеллюлозные мембраны склеивали, нарезали на тест-полоски 0,5×6 см (ИХА-полоски) и хранили в плотно закрытых пластиковых тубах при 4 °C.

Реактивы. Хлорид натрия, хчнатрий фосфорнокислый двузамещенный, 12-водн. хчнатрий углекислый, хчнатрий углекислый кислый, хчкислота соляная, хчкислота серная, хчкислота лимонная, хчо-фенилендиаминперекись водородадодецилсульфат натриятвин-20, хчтритон Х-100- трис-оксиметиламинометан, хчспирт ректификатацетонмасло иммерсионноемасло ПЭС-300- кислота золотохлористоводородная водная (EAuCl4*nH20) ОАО «Аурат», Россия) — цитрат натрия («Fluka»).

Лабораторное оборудование. Термостаты ТС-80 (+25°, +37°С) — низкотемпературный.

70°С) (UF-440 «Heto-Holten», Дания) и бытовой (+4°) холодильникиводяная банявесы аналитические («Zaktady Meechaniki Precyzyjnej», Польша) — высокоскоростная рефрижераторная центрифуга (Sorvall WX ultra series centrifuge, «Thermo Fishcer», Германия) — люминесцентный микроскоп MJI-4- пластиковые 96-луночные планшеты для ИФА и культуральных работ («Costar», США) — ридер с фильтром на 450−620 нм («Sigma», США) — спектрофотометр — СФ-26 (JIOMO, Россия) — л л л дозаторы с переменным объемом 0,02 см, 0,2 см и 1,0 см со сменными наконечниками (Ленпипет, Россия) — рН-метр (рН-340) — лабораторная посуда общего назначения.

Анализируемый материал. Антиген вируса бешенства выявляли методом ИХА в ткани мозга мышей, зараженных вирусом бешенства штамм.

CVS" (5,6 lg LD50/0,03cm3) и баранов, зараженных вирусом о бешенства штамм «Овечий» (3,8 lg LD50/0,03cm) — в смеси вируса бешенства и слюныв суспензии культурального вируса бешенства штамм «CVS» (6,5 lg LD50/0,03 cm3).

Контрольными препаратами служили слюна здоровых собак, ткань мозга незараженных мышей и баранов. Содержание антирабических антител (МЕмл) в сыворотке крови собак, полученных из ветлечебниц, приютов и питомников за период 2011;2013 гг., определяли непрямым вариантом ИФА. Пробы сыворотки хранили при -20°С и перед исследованием инактивировали при 37 °C в течение 30 мин.

3.1.2 Методы.

Индикация антигена вируса бешенства. Антиген вируса бешенства в ткани мозга мышей и баранов выявляли прямым методом флюоресцирующих антител с компонентами набора «Глобулин флюоресцирующий для диагностики бешенства животных» ТУ 9388−300 497 963−97 (ГНУ ВНИИТИБП РАСХН).

Очистка вируса бешенства и выделение НК. Вирус бешенства очищали ступенчатым центрифугированием суспензии ткани мозга баранов, зараженных вирусом бешенства штамм «Овечий». Препарат НК получали центрифугированием суспензии частично очищенного и концентрированного вируса бешенства, обработанной тритоном Х-100 по методу A. Helenius (1973).

Выделение IgG. IgG из антирабической, анти-НК и нормальной сывороток выделяли методом ионообменной хроматографией на DEAE-TRISACRYL PLUS LS («Sigma») сефарозе, из кроличьей антивидовой (анти-IgG барана) на Protein A Agarose CL-4B («Fluka») по рекомендациям фирм изготовителей. Специфичность антирабических IgG подтверждали в непрямом МФА с конъюгатом кроличьих анти-IgG барана и морской свинки антител, меченных ФИТЦ (98% чистоты, «Sigma»), который готовили по ТУ 9388−003−497 963−97. Концентрацию белка в сыворотке крови, препаратах антигенов и антител определяли по методу О.Н. Lowry et al. (1958).

Анализ ситуации по бешенству в Московской области. В работе проанализированы доступные официальные данные Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору (г.Москва) — Роспотребнадзора (г.Москва) — ИАЦ ФГБУ «ВНИИЗЖ» (г.Владимир) — Главного управления ветеринарии Московской области (г.Москва) и ФГБУ «Центр ветеринарии» (г.Москва) по заболеваемости животных бешенством. Анализ экологической ситуации в Московской области проводили на основе доступных данных отчетов Правительства Московской области.

Определение антирабических антител. Активность антирабической сыворотки устанавливали в РСК по методу Е. Ки? еЛ (1973), в РДП с «Набором компонентов для диагностики бешенства животных в реакции диффузионной преципитации» ТУ 9388−006−49 763−99 (ВНИТИБП).

Содержание антирабических антител (МЕ/мл) в сыворотке крови вакцинированных против бешенства собак определяли непрямым ИФА с сорбированным гликопротеином (в) вируса бешенства и пероксидазным конъюгатом протеина, А (ГНУ ВНИТИБП, 2011).

Результат вакцинации оценивали как эффективный, если в сыворотке вакцинированных против бешенства собак содержание ВНА составляло не менее 0,5 МЕ/мл. о.

В лунки планшетов вносили по 0,1 см гликопротеина вируса бешенства в рабочем разведении, инкубировали при +4°С в течение 18−20 ч. и промывали 3−4 раза раствором 10 мМ ФБР с 0,05% твин-20. о.

Затем в лунки вносили по 0,1 см исследуемых, отрицательной контрольной сывороток и референс-антирабической сыворотки с активностью 0,5 и 5,0 МЕ/мл в разведении 1:100, инкубировали при температуре +37°С в течение 1 ч. и промывали 3−4 раза раствором для отмывания планшетов.

Во все лунки планшетов вносили по 0,1 см раствора конъюгата протеина, А с пероксидазой хрена в рабочем разведении, инкубировали при +37°С в течение 1 ч., затем все лунки промывали 4 раза раствором для отмывания планшетов.

Субстрат-хромогенный раствор вносили во все лунки планшетов по 0,1 см³ и инкубировали 20 мин. при 20 °C избегая воздействия прямых лучей света. Для остановки реакции во все лунки вносили по 0,05 см³ раствора серной кислоты и через 20 мин. и не позднее 3 ч. измеряли оптическую плотность с помощью спектрофотометра при длине волны 492 нм.

Результат вакцинации оценивали как эффективный, если в сыворотке вакцинированных против бешенства собак содержание ВНА составляло >0,5 МЕ/мл.

Иммунохроматографический анализ. «Сэндвич» вариант ИХА проводили по методу Lembo Т., et. al. (2006). Золь коллоидного золота получали по методу G. Frens (1973). Конъюгат антирабических IgG с частицами коллоидного золота готовили по методу G.T. Hermanson (1996). Оптимальные условия сорбции иммунореагентов, состав лизирующего буфера, условия постановки и учет результатов ИХА определяли экспериментально.

Чувствительность (предел обнаружения) ИХА определяли по результатам титрования в тест-системе инфицированной ткани мозга и суспензии вируса бешенства в слюне. Эффективность ИХА оценивали путем сравнения с результатами выявления антигена вируса бешенства в прямом МФА.

Статистическая обработка результатов. Статистическую обработку полученных результатов проводили общепринятыми методами (Г.Ф. Лакин, 1980). Графический анализ выполнен с использованием программного обеспечения «Microsoft Excel».

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.А. Эпизоотологическая ситуация по бешенству мелких домашних и диких животных в Московской области // Российский ветеринарный журнал. 2006. — № 4. — С. 9−10.
  2. И.П., Будкин Е. И., Швец О. М., Ермилов И. В. Бешенство антропургического типа проблема больших городов. // Ветеринарная патология. — 2010. — № 1. С. 17−20.
  3. И.В. Эпизоотологические основы совершенствования профилактики бешенства в Московском регионе // автореф. дис. канд. вет. наук. Москва, 2004. — 20 с.
  4. Н.С., Титов М. А., Караулов А. К. и др. Бешенство в России. Оценка риска: информ.-аналит. обзор // Владимир: ФГУ «ВНИИЗЖ», 2008. 80 с.
  5. A.B., Дудников С. А. Эпизоотическая ситуация по бешенству в Российской Федерации в 2011 году // Ветеринария и кормление. 2012. — № 5. — С. 6−7.
  6. Е.С., Сидоров Г. Н., Полещук Е. М., Сидорова Д. Г. Бешенство собак в России во второй половине XX начале XXI века // Российский ветеринарный журнал. — 2010. — № 3. — С. 2−6.
  7. Е.С., Сидоров Г. Н., Полещук Е. М., Сидорова Д. Г. Значение мелких диких псовых в заболеваемости людей бешенством в России. // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. 2011. — № 2. С. 26−29.
  8. А.Д., Селимов М. А., Клюева Е. В. и др. Антигенная характеристика полевых штаммов вируса бешенства из различных районов СССР с помощью антинуклеокапсидных моноклональных антител // ЖМЭИ. 1990. — № 1. — С. 50−54.
  9. А.Д., Кузьмин И. В., Хисматуллина H.A. Итоги изучения антигенного разнообразия вируса бешенства на территории бывшего СССР // Ветеринарная патология. 2004. — № 3. — С. 117−126.
  10. А.Г. и др. Совершенствование методов диагностики бешенства // Тез. док. Всерос. научно-прак. конф., посвященной 30-летию ВНИТИБП, Щелково. 2000. — С. — 218−220.
  11. В.А. и др. Бешенство животных в Российской Федерации // Вакцинация. 2005. — № 1. — С. 9−11.
  12. В.А., Балдина И. В. Краткая характеристика обстановки по бешенству животных, сложившейся в России в сентябре 2010 года // Ветеринарная жизнь. 2010. — № 21. — С. 2.
  13. Гавриленко O. JL, Россошанская Н. В., Предтеченский А. Б., Фролова С. И. Организация мероприятий по профилактике бешенства на территории Московской области. // Биозащита и биобезопасность. 2011. Т. 3. — № 4. С. 9−15.
  14. ГОСТ СССР 26 075−84. Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики бешенства. Введ. 9.01.1984. — М.: Государственный комитет СССР по стандартам, 1984. — 12 с.
  15. C.B., Лосин М. А., Грибенча Л. Ф., Непоклонова И. В. Новый принцип селекции вакцинного вируса на основе количественногоуровня экспрессии g-белка главного иммуногена вируса бешенства. // Вопросы вирусологии. — 2012. Т. 57. — № 3. С. 44−48.
  16. С.А., Акиньшина Т. В., Кузнецов Д. П., Кузнецова C.B., Сазанова Э. Я. Антиидиотипические антитела к антигенам культурального вируса бешенства. // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук.-2005.-№ 6. С. 52−53.
  17. К.Н., Недосеков В. В. Бешенство животных // М.: Аквариум. 2001. — 304 с.
  18. К.Н., Груздева А. Е. Собаки, кошки мишени и источники бешенства // Материалы 9-го Международного ветеринарного конгресса. — Москва. — 2001. — С. 32.
  19. A.M. Эпизоотологический мониторинг и совершенствование серологического контроля эффективности вакцинопрофилактики бешенства // Автореф. дис. канд. биол. наук. Казань.2011.-21 с.
  20. Доклад о состоянии окружающей среды Российской Федерации. Режим доступа http://www.mnr.gov.ru/ (проверено 8.04.2013)
  21. С.Г. Эпизоотологический мониторинг и меры борьбы с бешенством в Кировской области //Автореф. дис. канд. вет. наук. Щелково.- 2012.- 26 с.
  22. С.И., Заводских A.B. Клиническое проявление бешенства у животных // Ветеринария.- 2002. № 6. — С. 9−11.
  23. С. А. К вопросу о ситуации по бешенству в Российской Федерации в 1999 и 2000 гг. // Ветеринарная патология. 2002. — № 1. — С. 78−91.
  24. JI.A., Богатырев В. А., Щеголев С. Ю., Хлебцов Н. Г. Золотые наночастицы: синтез, свойства, биомедицинское применение // М. Наука, 2008.
  25. Елаков A. JL, Уласов В. И., Баньковский Д. О., Сафонов Г. А. Изучение биологических свойств штамма ERA G333 вируса бешенства // Ветеринария. 2011. — № 2. С. 22−24.
  26. Е.Ш. Особенности эпизоотического проявления рабической инфекции в лесостепной и степной зонах РФ // Автореф. дис. канд. вет. наук. Н. Новгород, 2011.
  27. A.B. Резервуары лиссавирусов на территориях, стационарно неблагополучных по бешенству // Автореф. дис. канд. биол. наук / Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока. Новосибирск, 2009 г.
  28. A.B. Источники инфекции заболевания людей бешенством в Московской области//Ветеринария-2007. № 12. — С. 10−11.
  29. ИАЦ Россельхознадзора. Эпизоотическая ситуация по бешенству в РФ (2010 год). Режим доступа: http://www.fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/2010 /files/iac2010 year. pdf (проверено 8.04.2013).
  30. A.B., Хисматуллина H.A., Юсупов Р. Х., Чернов А. Н. Диагностика и профилактика бешенства животных // М.: Д 44 ФГНУ «Росинформагротех», 2007. 60 с.
  31. A.B., Хисматуллина H.A., Чернов А. Н., Гулюкин A.M. Бешенство: этиология, эпизоотология, диагностика: учебно-методическое пособие в иллюстрациях // М.: Колос, 2010. 54 с.
  32. A.B., Хисматуллина H.A., Гулюкин A.M. Эпизоотологический и иммунологический надзор за бешенством. // Ветеринарный врач. 2010. — № 4. С. 3−6.
  33. B.C., Школьников Е. Э. Состояние и перспективы борьбы с бешенством // Вестник РАСХН. 2000. — № 2. — С. 63−65.
  34. Информация о практической деятельности России в области сохранения биоразнообразия. Режим доступа http://www.biodat.ru/ (проверено 8.04.2013)
  35. М.А. Совершенствование методов диагностики и оценки эффективности вакцинопрофилактики бешенства животных. // Автореф. дис. канд. биол. наук. Щелково, 2011. — 25 с.
  36. P.A. Об эпидемиологических закономерностях бешенства в различных ландшафтных зонах СССР // Вопросы борьбы с бешенством: сб. ст. М., 1963. С. 35−37.
  37. Т.В. Эколого-географический анализ структуры и динамики ареала обыкновенной лисицы, (vulpes vulpes L., 1758) // автореф. дис. канд. геогр. наук. Москва, 2010.
  38. H.A., Шашенько A.C. Иммунофлуоресцентное исследование отпечатков роговицы при бешенстве // Ветеринария. 1970. -№ 9. — С. 44−46.
  39. C.B., Кузнецов П. П., Иванов B.C. Субъединичная антирабическая вакцина // Научные основы технологии промышленного производства ветеринарных биологических препаратов: тез. докл. научн. конф. Щелково. — 1996. — С. 54.
  40. Д., Райкундалиа Ч. Иммуноферментный анализ // Антитела. Кн. 2: Пер. с англ. М.: Мир, 1991.-384 с.
  41. Г. Ф. Биометрия // М.: Высшая школа, 1980. 194 с.
  42. О.Г., Горшкова Т. Ф., Жестерев В. И. Инфекционная и антигенная активность вируса бешенства, выращенного в суспензии клеток ВНК-21 //Ветеринария.-2003. -№ 3.-С. 18−19.
  43. Г. Н., Ченцова И. В., Петухова С. А. и др. Впервые выявленный случай лиссавирусной инфекции в Приморском крае // Тихоокеанский медицинский журнал. 2010. — № 3. С. 90−94.
  44. В.В. Бешенство: очерк мирового нозоареала и общие элементы контроля // Ветеринарная патология. 2002. — № 1. С. 12−20.
  45. В.В. и др. Эпизоотологическая характеристика современного бешенства // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2002. — № 5. — С. 21−25.
  46. В.В., Джупина С. И., Ведерников В. А. Численность лисицы как фактор риска эмерджентности бешенства // Ветеринарная патология. 2002. — № 1. — С. 123−126.
  47. В.В., Недосеков В. В., Середа А. Д., Сошенко Л. П. Опыт серологического мониторинга городских популяций собак при бешенстве // Ветеринарная патология. 2002. — № 1. С. 140−143.
  48. В.В., Джупина С. И., Заводских A.B. и др. Реальная эпизоотология бешенства // Вестник РАСХН. 2002. — № 4. — С.71 — 73.
  49. В.В. Теория саморегуляции паразитарных систем В. Д. Белякова — парадигма в учении об эпидемическом процессе // Ветеринарная патология. 2004. — № 3 (10). — С. 10−13.
  50. В.В., Воробьев A.A. Актуальные проблемы бешенства: природная очаговость, методология исследования и контроля в центре России // Ветеринарная патология. 2004. — № 3 (10). — С. 102−116.
  51. В.В., Сухарев О. И., Гулюкин A.M., Боев Б.В Бешенство в Восточной Европе: актуальный вектор развития эпизоотического процесса // Вестник РАСХН. 2008. — № 4. — С.58 — 60.
  52. В.В., Джупина С. И., Ведерников В. А., Заводских A.B. и др. Общая характеристика современной эпизоотологии бешенства. Статистический анализ обстановки. // Ветеринарная патология. 2002. -№ 1. — С. 59−71.
  53. В.В., Сухарев О. И., Гулюкин A.M., Боев Б. В. Бешенство енотовидных собак: статистический анализ заболеваемости // Ветеринария. 2009. — № 6. — С. 20−24.
  54. В.В. Оральная вакцинация лисиц против бешенства безальтернативна. // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук.-2010.-№ 2. С. 57−58.
  55. Международный центр экологии и продуктивности лесов РАН. Режим доступа www.mfd.cepl.rssi.ru/reports/report05/report05.htm (проверено 8.04.2013)
  56. Международный фонд защиты животных в России. Режим доступа www.ifaw.ru (проверено 8.04.2013)
  57. А.Е. Молекулярно-биологические характеристики полевых изолятов и аттенуированных штаммов вируса бешенства // Автореф. дис. канд. вет. наук. Владимир., ФГУ, 2005. — 26 с.
  58. А.Е. Меры борьбы с бешенством животных. // Ветеринария Кубани. 2008. — № 1. С. 4−7.
  59. А.Е., Рыбаков С. С., Михалишин В. В. Оральная вакцинация диких плотоядных животных против бешенства // Ветеринария. -2009.-№ 8.- С. 18−25.
  60. Методы лабораторных исследований по бешенству. Под ред. М. Kaplan, Н. Koprowski. // Женева: ВОЗ. 1975. — 358 с.
  61. Министерство природных ресурсов и экологии Российской Федерации. Федеральные ООПТ. Режим доступа http://www.zapoved.ru/ (проверено 8.04.2013)
  62. Министерство природных ресурсов и экологии Российской Федерации. Режим доступа www.mnr.gov.ru (проверено 8.04.2013)
  63. А.Н. Усовершенствование средств диагностики бешенства и сравнительный анализ антирабической активности противовирусных препаратов в эксперименте // Автореф. дис. канд. биол. наук. Казань, 2009.
  64. Н.П., Ковалев H.A., Бельгии С. О., Щерба В. В. Использование корнеального теста для прижизненной экспресс диагностики бешенства у человека и животных // Минск. 2008.
  65. A.A., Хадарцев О. С. Случаи гидрофобии в Российской Федерации // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2003. — № 5. — С. 112−116.
  66. A.A. Бешенство: особенности современной эпизоотической и эпидемиологической ситуации в России // Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2011. № 5.- С. 4−5.
  67. H.A., Михайлина Н. М., Молодкин A.B., Рыбаков С. С., Чепуркин A.B. Разработка реакции агглютинации латекса для диагностики бешенства животных. // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. 2007. Т. 5. С. 186−201.
  68. Научный центр Российской академии естественных наук. Режим доступа http://www.ncob.ru/publ/5-l-0−61 (проверено 8.04.2013)
  69. В.В. Разработка и совершенствование средств и методов оценки эффективности вакцин против бешенства: автореф. дис. канд. вет. наук // Покров. 1998. — 24 с.
  70. Обзор «Состояние биоразнообразия природных экосистем России» под ред. Орлова В. А. Тишкова A.A. Режим доступа http://www.viems.ru/asnti/ntb/ntb502/bioresl.html (проверено 8.04.2013)
  71. .Г., Алипер Т. И., Непоклонов Е. А. Специфическая профилактика вирусных болезней собак // Материалы 12-го Московского Всероссийского ветеринарного конгресса. Москва, 2004.
  72. М.С., Наумкина М. А., Недосеков В. В. и др. Использование полимеразной цепной реакции для выявления полевых изолятов вируса бешенства // Современные проблемы рабиологии: тез. докл. науч. конф. М., 1998. — С. 26−27.
  73. Ю.В., Сочнев В. В. Рабическая инфекция: зоны риска и территориальные границы в условиях РФ в целом и в отдельных регионах // Ветеринарная патология. 2005. — № 4. — С. 68−72.
  74. А.М., Глей А. И. Эпидемическая и эпизоотическая ситуация по бешенству в Украине и мире. Бешенство у животных. // Клиническая инфектология и паразитология. 2013. — № 1. С. 96−109.
  75. Э.Р. Лиссавирусы // Вопросы вирусологии. 1996. — № 1. -С. 2−6.
  76. H.A. Биометрия // Новосибирск: Изд-во АН СССР, 1961.-364 с.
  77. Е.М., Сидоров Г. Н., Березина Е. С. Бешенство животных в России в 2007—2011 гг.. // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. 2012. — № 6. С. 8−12.
  78. Программы «Научные основы сохранения биоразнообразия», «Фундаментальные основы управления биологическими ресурсами». Режим доступа http://www.sevin.ru (проверено 8.04.2013)
  79. Н.М., Самуйленко, А .Я., Зенов Н. И., Красуткин С. Н., Захарченко О. С. Совершенствование цельновирионных вакцин против бешенства животных // Ветеринарный врач. 2012. — № 5. С. 5−7.
  80. П.В. Иммуноферментная тест-система определения уровня антирабических антител в сыворотках крови привитых против бешенства кошек и собак: дис. канд. биол. наук // Щелково. 2008. — 104 с.
  81. И.К., Литвинов О. Б., Мачнев А. Н. и др. Эпизоотическая ситуация по карантинным и особо опасным болезням животных в Российской федерации за 2009 год // ЦЕНОВИК. 2010. — № 5. — С. 6−7.
  82. Роль Московского региона в возрождении Волги. Часть II. Московская область. Под ред. д.э.н., академика РЭА И. К. Комарова. Режим доступа http://old.nasledie.m^ibliot/kniga6/index.shtml (проверено 8.04.2013)
  83. Санитарно-эпидемиологическая обстановка в РФ http://rospotrebnadzor/ru/epidemiologicsituation/ (проверено 8.04.2013)
  84. A.B., Пашкина Ю. В., Груздев К. Н. и др. Основные принципы специфической профилактики бешенства, обеспечивающие эффективность антирабических мероприятий // Ветеринарная патология. -2005.-№ 4.-С. 102−106.
  85. Э.Я., Кузнецова C.B., Маслов Е. В. и др. Иммуноферментный анализ при индикации вируса бешенства и определении уровня антител // Ветеринария. 1991. — № 8. — С. 62−64.
  86. А.Я., Гринь С. А., Еремец В. И., Клюкина В. И. и др. // Инфекционная патология животных. Том II. Бешенство Москва, ВНИТИБП. — 2012. — 153 с.
  87. С. А. Использование флюоресцирующих моноклональных антител для выявления вируса бешенства // Мат. Междунар. научно-прак. конф. «Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов». Щелково. — 2003. С. 51−53.
  88. Г. А., Хрипунов Е. М. Перспективы искоренения случаев бешенства в Российской Федерации. // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2011. — № 5. С. 67−68.
  89. М.А., Калинина Л. И., Аксенова Т. А. и др. Применение реакции связывания комплемента (РСК) для индикации вируса бешенства вкультуре ткани // Вопросы борьбы с бешенством. М., 1967. — Т. 9. — С.70−79.
  90. М.А. Бешенство // М.: Медицина. 1978. — 336 с.
  91. Е.В. Тенденции эпизоотического и эпидемического проявления бешенства в Волго-Вятском регионе // Автореф. дис. канд. биол. наук. Н. Новгород, 2010.
  92. Г. Н., Сидорова Д. Г., Колычев Н. М. и др. К вопросу о прогнозировании эпизоотического процесса при бешенстве на территории России // Ветеринарная патология. 2007. — № 3. — С. 17−23.
  93. Г. Н., Сидорова Д. Г., Колычев Н. М. Эпизоотический процесс бешенства: роль диких млекопитающих, периодичность // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2008. — № 12. — С.67−73.
  94. Д.Г. Современные экологические особенности проявления эпизоотического процесса бешенства в природных очагах // Автореф. дис. канд. биол. наук. Омск, 2009.
  95. С.А., Видяшева И. В., Фомин A.C. и др. Разработка иммунозолотых диагностических систем для идентификации возбудителя туберкулеза in situ // Российский ветеринарный журнал. 2011. — № 2. С. 2932.
  96. В.Н., Самуйленко, А .Я., Соловьев Б. В., Фомина Н. В. Вирусные болезни животных // М.: ВНИТИБП, 1998. 928 с.
  97. М.Г., Ковалев М. А., Кузнецов П. П. Бешенство животных //Минск, 1990.- 172 с.
  98. В.И. Эпизоотологическая ситуация по бешенству в Тульской области и совершенствование мер борьбы с этой болезнью на современном этапе // Автореф. дис. канд. вет. наук. Щелково, 2001. — 26 с.
  99. А.Е. Разработка и сравнительная характеристика систем экспрессного иммунохимического определения микотоксинов // Автореф. дис. канд. хим. наук. Москва, 2012.
  100. Федеральное агентство лесного хозяйства Российской Федерации. Режим доступа www.rosleshoz.gov.ru (проверено 8.04.2013)
  101. О.С., Федоров Ю. М., Жилина Н. Я. Информационный бюллетень «Бешенство в Российской Федерации в 2000—2005 гг..» // М.: Роспотребнадзор. 2006. — 38 с.
  102. H.A., Разработка средств и методов иммунологического мониторинга и мер борьбы при бешенстве и лихорадки КУ животных // Автореф. дис. доктора биол. наук. Казань, 2000. — 45 с.
  103. Е.М., Евсеева С. Д., Окрошидзе М. Г. Бешенство диких плотоядных животных // Вет. домаш. Животных. 2005. — № 5. С. 6−8.
  104. JI.A., Родина JI.B. Эпидемическая ситуация по бешенству в Москве // Вакцинация. 2005. — № 1 (37).
  105. Н. И. Анализ изменений эпизоотической обстановки по важнейшим зооантропонозам в Смоленской области. // Автореф. дис. канд. вет. наук. Москва, 2006. — 28 с.
  106. Я.С. Разработка тест-системы для индикации арктического бешенства на основе методов анализа генома: автореф. дис. канд. биол. наук // Покров. 2001. — 24 с.
  107. .Л., Хадарцев О. С., Мовсесянц А. А. Эпидемиологический надзор за бешенством в Российской Федерации // Вакцинация. 2005. — № 1 (37). — С. 66−68.
  108. И.В., Ярков С. П., Кононенко А. Б. и др. Отечественный иммунохроматографический тест для выявления сальмонелл различных серогрупп //Веткорм. -2011. № 4. — с. 12−13.
  109. .П. Бешенство в Европе. Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. -2008. № 3. С. 17−19.
  110. С.П., Третьяков С. И., Башарова Л. А., Злобин В. Н. Индикация возбудителей особоопасных заболеваний с помощью иммунохроматографии и видеоцифрового анализа // Вестник Российской АМН. 2007. — № 12. — с.22−26.
  111. Al-Yousif Y., Anderson J., Chard-Bergstrom С., Kapil S., 2002. Development, evaluation, and application of lateral-flow immunoassay (immunochromatography) for detection of rotavirus in bovine fecal samples. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 9, 723−724.
  112. Arai Y.T., Kimura M., Sakaue Y., et al. Antibody responses induced by immunization with a Japanese rabies vaccine determined by neutralization test and enzyme-linked immunosorbent assay // Vaccine. 2002. — Vol. 20, N 19−20. -P. 2448−2453.
  113. Arai Y.T., Kuzmin I.V., Kameoka Y., Botvinkin A.D. New lyssavirus genotype from the lesser mouse-eared bat (Myotis blythi), Kyrghyzstan // Emerg. Infect. Dis. 2003. — Vol. 9, N 3. — P. 333−337.
  114. Arai Y.T. Epidemiology of rabies virus and other lyssaviruses // Nippon Rinsho. 2005. — Vol. 63, N 12. — P. 2167−2172.
  115. Atanasiu P., Perrin P., Delagneau J.F. Use of an enzyme immunoassay with protein A for rabies antigen and antibody determination // Develop. Biol. Stand. 1980.-Vol. 46.-P. 207−215.
  116. Aubert M.F.A. Practical significance of rabies antibodies in cats and dogs // Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epis. 1992. — Vol. 11, N 3. — P. 735−760.
  117. G.M., Neville N., Turner G.S., 1996. Rabbis and Rabies: A Pictoral History of Rabies Through the Ages. Laboratorios Baer, S.A. DE C.V., Mexico, D.F.
  118. Bankovskiy D., Safonov G., Kurilchuk Y. Immunogenicity of the ERA G 333 rabies virus strain in foxes and raccoon dogs // Dev. Biol. 2008. -Vol. 131.-P. 461166.
  119. Barrat J., Aubert M.F.A. Diagnostic de la rage animale en France de 1991 a 1993, bilan de CNEVA laboratoire d’etudes sur la rage et la pathologie des animaux sauvages en France // Revue Med. Vet., 1995, 146, 561- 566.
  120. Benmansour A., Leblois H., Coulon P., et al. Antigenecity of rabies glycoprotein//!. Virol. 1991. — Vol. 65, N 8.-P. 4198−4203.
  121. Bhandari S. Epidemiology and control of Rabies in Nepal / Shrawan Bhandari. 2005. — Режим доступа: http://homepage.usask.ca /~shb292/rabies innepal. pdf (проверено 8.04.2013)
  122. Bingham J., Mlambo P. Ante-mortem diagnosis of human rabies by the skin biopsy technique: three case reports from Zimbabwe // Cent. Afr. J. Med. 1995 — Vol. 41, N 8. — P. 258−260.
  123. Bingham J. Canine rabies ecology in southern Africa // Emerg. Infect. Dis. 2005. — Vol. 11, N 9. — P. 1337−1342.
  124. Black E.M., McElhinney L.M., Lowings J.P. et al. Molecular methods to distinguish between classical rabies and the rabies-related European bat lyssaviruses // J. Virol. Meth. 2000. -Vol. 87, N 1−2. — P. 123−131.
  125. Black E.M., Lowings J.P., Smith J., et al. A rapid RT-PCR method to differentiate six established genotypes of rabies and rabies-related viruses using TaqMan technology // J. Virol. Meth. 2002. -Vol. 105, N 1. — P. 25−35.
  126. Bourhy Н., Reynes J.-M., Dunham E.J. et al. The origin and phylogeography of dog rabies virus // J. Gen. Virol. 2008. — Vol. 89, N 11. — P. 2673 -2681.
  127. Briggs D.J., Smith J.S., Mueller F.L., et al. A comparison of two serological methods for detecting the immune response after rabies vaccination in dogs and cats being exported to rabies-free areas // Biologicals. 1998. — Vol. 26, N4.-P. 347−355.
  128. Briggs D.J. Human vaccines. In: Jackson A.C., Wunner W.H., eds. Rabies, 2nd ed. // Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:505−516.
  129. Brookes S.M., Parsons G., Johnson N. et al. Rabies human diploid cell vaccine elicits cross-neutralising and cross-protecting immune responses against European and Australian bat lyssaviruses // Vaccine. 2005. — Vol. 23, N 32. — P. 4101−4109.
  130. Centers for disease control and prevention. Rabies. Режим доступа: http://www.cdc.gov/rabies/transmission/virus.html (проверено 8.04.2013).
  131. Cleaveland S. et al. A dog rabies vaccination campaign in rural Africa: impact on the incidence of dog rabies and human dog-bite injuries // Vaccine, 2003, 21:1965−1973.
  132. Cliquet F., Aubert M., Sagne L. Development of a fluorescent antibody virus neutralisation test (FAVN test) for the quantitation of rabies-neutralising antibody // J.Immunol.Methods. 1998. -Vol. 212, N 1. — P. 79−87.
  133. Cliquet F. et al. ELISA test for rabies antibody titration in orally vaccinated foxes sampled in the fields // Vaccine, 2000, 18:3272−3279.
  134. Cliquet F., McElhinney L.M., Servat A. et al. Development of a qualitative indirect ELISA for the measurement of rabies virus-specific antibodiesfrom vaccinated dogs and cats // J. Virol. Methods. 2004. — Vol. 117, N1. — P. 1−8.
  135. Coslett D.G., Hollow B.P., Obijeski J.K. The structural proteins of rabies virus and evidence for their synthesis from separate monocitocistronic RNA species // J. Gen. Virol. 1980. — Vol. 49, N 1. — P. 161−180.
  136. Crepin P., Audry L., Rotivel Y. et al. Intravitam diagnosis of human rabies by PCR using saliva and cerebrospinal fluid // J. Clin. Microbiol. 1998. -Vol. 36, N4.-P. 1117−1121.
  137. Dar V.S., Ghosh S., Broor S. Rapid detection of rotavirus by using colloidal gold particles labeled with monoclonal antibody // J. Virol. Methods. -1994. Vol. 47, N 1−2. — P. 51−58.
  138. Dietzschold В., Gore M., Casali P. et al. Biological characterization of human monoclonal antibodies to rabies virus // J. Virol. 1990. -Vol. 64, N 6. -P. 3087−3090.
  139. Dietzschold В et al. Concepts in the pathogenesis of rabies // Future Virology, 2008, 3(5):481−490.
  140. Faber M., Faber M.L., Papaneri A., et al. A single amino acid change in rabies virus glycoprotein increases virus spread and enhances virus pathogenicity // J. Virol. 2005. — Vol. 79, N 22. — P. 14 141−14 148.
  141. Flamand A., Wiktor T.J., Koprowski H. Use of hybridoma monoclonal antibodies in the detection of antigenic differences between rabies and rabies-related virus proteins // J. Gen. Virol. 1980. — Vol. 48, N 1. — P. 97 109.
  142. Franka R. et al. Rabies virus pathogenesis in relationship to intervention with inactivated and attenuated rabies vaccines // Vaccine, 2009, 27:7149−7155.
  143. Fraser G.C., Hooper P.T., Lunt A.R. et al. Encephalitis caused by a lyssavirus in fruit bats in Australia // Emerg. Infect. Dis. 1996. — Vol. 2, N 4. -P. 327−331.
  144. Frens G. Controlled nucleation for the regulation of the particle size in minodisperse gold suspension // Nat. Phys. Sci. 1973. — Vol. 241, N 105. — P. 20−21.
  145. Ge J., Wang X., Tao L. et al. Newcastle disease virus-vectored rabies vaccine is safe, highly immunogenic, and provides long-lasting protection in dogs and cats//J. Virol.-2011.-Vol. 85, N 16.-P. 8241 8252.
  146. Gupta P.K., Sharma S., Walunj S.S. et al. Immunogenic and antigenic properties of recombinant soluble glycoprotein of rabies virus // Vet. Microbiol. -2005. Vol. 108, N 3−4. — P. 207−214.
  147. Hamir A.N., Moser G., Fu Z.F. et. al. Immunohistochemical test for rabies: identification of a diagnostically superior monoclonal antibody // Vet. Rec. 1995. — Vol. 136, N 12. — P. 295−296.
  148. Hanlon C.A., Kuzmin I.V., Blanton J.D. et al. Efficacy of rabies biologies against new lyssaviruses from Eurasia // Virus Res. 2005. -Vol. Ill, N l.-P. 44−54.
  149. Hawkes R.A., Niday E., Gordon J. A dot-immunobinding assay for monoclonal and other antibodies // Analyt. Biochem. 1982. — Vol. 119, N 1. -P. 142−147.
  150. Helenius A., Soderlund Н. Stepwise dissociation of the Semliki forest virus membrane with Triton X-100 // Biochim. Biophys. Acta. 1973. — Vol. 307, N2.-P. 287−300.
  151. Hermanson G.T. Preparation of colloidal-gold-labelled proteins. // Bio-conjugate Techniques. NY: Academic Press, 1996. — P. 593−604.
  152. Hooper C. et al. Collaboration of antibody and inflammation in clearance of rabies virus from the central nervous system. // Journal of Virology, 1998, 72:3711−3719.
  153. Human and dog rabies prevention and control. Report of the WHO/Bill & Melinda Gates Foundation Consultation, Annecy, 7 September 2009. WHO /HTM/NTD/NZD/2010.1, pp. 37.
  154. Jackson A.C., Wunner W.H. eds. Pathogenesis. In: Rabies, 2nd ed. Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:341−381.
  155. Johnson N., Phillpotts R., Fooks A.R. Airborne transmission of Lyssaviruses. J med microbiol. 2006: 55(6) — 785−790.
  156. Kang B.K., Oh J.S., Lee C.S. et al. Evaluation of a rapid immunodiagnostic test kit for rabies virus // J. Virol. Meth. 2007. — Vol. 145, N 1, — P. 30−36.
  157. Kaplan M.M., Koprowski H. Laboratory techniques in rabies. WHO. 3rd ed. Geneva, 1975.-365 p.
  158. Kasempimolporn S., Saengseesom W., Lumlertdacha В., Sitprija V. Detection of rabies virus antigen in dog saliva using a latex agglutination test // J. Clin. Microbiol. 2000. — Vol. 38, N 8. — P. 3098−3099.
  159. Kissling R.E. The fluorescent antibody test in rabies. In: Baer G.M., ed. The Natural History of Rabies, 1st ed. Boca Raton, CDC Press, 1975, 1:401 416.
  160. Knobel DL et al. Re-evaluating the burden of rabies in Africa and Asia // Bulletin of the World Health Organization, 2005, 83:360−368.
  161. Kulonen K., Fekadu M., Whitfield S., Warner C.K. An evaluation of immunofluorescence and PCR methods for detection of rabies in archival carnoy-fixed, paraffin-embedded brain tissue // J. Vet. Med. 1999. — Vol. 46, N 3. — P. 151−155.
  162. Kuwert E. The complement fixation test // Laboratory Techniques in Rabies. WHO. 3rd ed. — Geneva, 1973. — P. 124−134.
  163. Kuzmin I.V. et al. Complete genomes of Aravan, Khujand, Irkut and West Caucasian bat viruses, with special attention to the polymerase gene and non-coding regions. Virus Research, 2008, 136:81−90.
  164. Kuzmin I.V. et al. Shimoni bat virus, a new representative of the Lyssavirus genus. Virus Research, 2010, 149:197−210. Epub. 6 February 2010.
  165. Lafon M., Lafage M. Antiviral activity of monoclonal antibodies specific for the internal proteins N and NS of rabies virus. // J. Gen. Virol. -1987.-Vol. 68, N 12.-P. 3113−3123.
  166. Lafon M. Immunology. Jackson A.C., Wunner W. H,. eds. Rabies, 2nd ed. Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:489−504.
  167. Lee K.K. Studies on molecular epidemiological characteristics of rabies virus isolated in Korea and development of its diagnostic methods. Ph.D. Thesis. Kyungpook National University, 2005. pp. 73−74.
  168. Lembo T. et al. Evaluation of a direct, rapid immunohistochemical test for rabies diagnosis // Emerging Infectious Diseases, 2006, 12:310−313.
  169. Lodmell D.L., Ray N.B., Ulrich J.T., Ewalt L.C. DNA vaccination of mice against rabies virus: effects of the route of vaccination and the adjuvant monophosphoryl lipid A (MPL) // Vaccine 2000. Vol. 18, N 11−12. — P. 10 591 066.
  170. Lodmell D.L., Ewalt L.C., Parnell M.J. et al. One-time intradermal DNA vaccination in ear pinnae one year prior to infection protects dogs against rabies virus // Vaccine. 2006. — Vol. 24, N 4. — P. 412−416.
  171. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. — Vol. 193, N l.-P. 265−275.
  172. Macfarlan R.I., Dietzschold В., Koprowski H. Stimulation of cytotoxic T-lymphocyte responses by rabies virus glycoprotein and identification of an immunodominant domain // Mol. Immunol. 1986. — Vol. 23, N 7. — P. 73 341.
  173. Madhusudana S.N., Saraswati S. Development and evaluation of a latex agglutination test for rabies antibodies // J. Clin. Virol. 2003. — Vol.27, N2.-P. 129−35.
  174. McElhinney L.M., Fooks A.R., Radford A.D. Diagnostic tools for the detection of rabies virus // EJCAP 2008. — Vol. 18, N 3. — P. 224−231.
  175. Ming P., Yan J., Rayner S., et al. A history estimate and evolutionary analysis of rabies vims variants in China // J. Gen. Virol. 2010. — Vol. 91, N 3. -P. 759−764.
  176. Moore S.M. et al. Detection of cellular immunity to rabies antigens in human vaccines // Journal of Clinical Immunology, 2006, 26:533−545.
  177. Moore S.M., Chandra C.R., Briggs D.J. Rabies serology. In: Jackson A.C., Wunner W.H., eds. Rabies, 2nd ed. // Amsterdam, Elsevier Academic Press, 2007:47188.
  178. Murphy A.F., Bell F.J., Bauer S.D. et al. Experimental chronic-rabies in the cat // Lab. Invest. 1980. — Vol. 43, N 3. — P. 231−241.
  179. Nadin-Davis S.A., Muldoon F., Wandeler A.E. A molecular epidemiological analysis of the incursion of the raccoom strain of rabies-virus into Canada // Epidemiol. Infect. 2006 — Vol. 134, N 3. — P. 534−547.
  180. Nandi S., Kumar M. Global perspective of rabies and rabies related viruses: a comprehensive review // Asian J. Anim. Vet. Adv. 2011. — Vol. 6. -P. 101−116.
  181. Nagaraj Т., Vasanth J.P., Desai A., et al. Ante mortem diagnosis of human rabies using saliva samples: Comparison of real time and conventional RT-PCR techniques // J. Clin. Virol. 2006. — Vol. 36, N 1. — P. 17−23.
  182. Osorio J.E., Tomlinson C.C., Frank R.S. et al. Immunization of dogs and cats with a DNA vaccine against rabies virus // Vaccine. 1999. — Vol. 17, N 9−10.-P. 1109−1116.
  183. Perrin P., Jacob Y., Tordo N. DNA-based immunization against Lyssaviruses // Intervirology. 2000. — Vol. 43, N 4−6. — P. 302−311.
  184. Perrin P. et al. The influence of the type of immunosorbent on rabies antibody EIA: advantages of purified glycoprotein over whole virus // Journal of Biological Standardization, 14:95−102.
  185. Rupprecht С.Е. A tale of two worlds: public health management decisions in human rabies prevention. Clinical Infectious Diseases: an official publication of the Infectious Diseases Society of America, 2004, 39:281−283.
  186. Rupprecht C.E. et al. Can rabies be eradicated? OIE. In: Dodet В et al., and the Scientific and Technical Dept of the OIE, eds. Toward the elimination of rabies in Eurasia. Basel, Karger, 2008, 131:95−122.
  187. Saengseesom W., Kasempimolporn S., Akesowan S. et al. Use of latex agglutination test to determine rabies antibodies in production of rabies antisera in horses // Southeast Asian J. Trop. Med. Pub. Health. 2010. — Vol. 41, N6.-P. 1387−1392.
  188. Schneider L.G. The cornea test: a new method for the intra-vital diagnosis of rabies // Zentrabl.Veterinaer.Med. -1969. -Vol. 16, N 1. P. 24−31.
  189. Seganti L., Superti F., Bianchi S. et. al. Susceptibility of mammalian, avian, fish, and mosquito cell lines to rabies infection // Acta. Virol. 1990. -Vol. 34, N2.-P. 155−163.
  190. Selimov M.A., Tatarov A.G., Botvinkin A.D. et al. The rabies-related Yuli virus and identification with panel of the monoclonal antibodies // Acta virologica. 1989.-Vol. 33, N6. — P. 517−521.
  191. Servat A.A., Wasniewski M., Cliquet F. Tools for rabies serology to monitor the effectiveness of rabies vaccination in domestic and wild carnivores // Dev. Biol. 2006. — Vol. 125. — P. 91−94.
  192. A., Feyssaguet M., Blanchard I., Morize J.L., Schereffer J.L., Boue F. & Cliquet F. A quantitative indirect ELISA to monitor the effectiveness of rabies vaccination in domestic and wild carnivores. J. Immunol. Methods, 2007,318, 1−10.
  193. Smith J.S. Rabies serology. In: Baer G.M., ed. A natural history of rabies, 2nd ed. // Boca Raton, CDC Press, 1971:236−290.
  194. Smith J.S., Yager Р.А., Baer G.M. A rapid reproducible test for determining rabies neutralizing antibody // Bull World Health Organ. 1973. -Vol. 48, N5.-P. 535−541.
  195. Smith J.S., Orciari L.A., Yager P.A. Molecular epidemiology of rabies in United States // Semin. Virol. 1995. — Vol. 6, N 4. — P. 387−400.
  196. Smith J.S. New aspects of rabies with emphasis on epidemiology, diagnosis and prevention of the disease in United States // Clin. Microbiol. Rew. -1996. Vol. 9, N 2. — P. 166−176.
  197. Sokol P., Stance D., Koprowski H. Structural proteins of rabies virus // J. Virol. 1971. — Vol. 7, N 2. — P. 241−249.
  198. Talbi C., Holmes E.C., P. de Benedictis et al. Evolutionary history and dynamics of dog rabies virus in western and central Africa // J. Gen. Virol. 2009 -Vol. 90, N4.-P. 783 -791.
  199. Tatsis N., Blejer A., Lasaro M.O., et al. A CD46-binding chimpanzee adenovirus vector as a vaccine carrier // Mol. Ther. 2007. — Vol. 15, N 3. — P. 608−617.
  200. Tepsumethanon V., Sitprija V. Laboratory diagnosis of rabies in Bangkok and the Central Part of Thailand, 2001−2004 // J. Med. Ass. Thailand Chot. Thangt. 2005. — Vol. 88, N 22. — P. 282−286.
  201. Tims Т., Briggs D.J., Davis R.D., et al. Adult dogs receiving a rabies booster dose with a recombinant adenovirus expressing rabies virus glycoprotein develop high titers of neutralizing antibodies // Vaccine. 2000. — Vol. 18, N 25. — P. 2804−2807.
  202. Tollis М., Dietzschold В., Buona Volia С., Koprowski Н. Immunization of monkeys with rabies ribonucleoprotein (RNP) confers protective itmnunity against rabies // Vaccine. -1991. Vol. 9, N2. — P. 134−136.
  203. Torna В. Fox rabies in France // Euro Surveill. 2005. — Vol. 10, N 11.-P. 220−222.
  204. Tordo N. et al. Rhabdoviridae. In: Mayo CM et al, eds. Virus Taxonomy // London, Elsevier Academic Press, 2004:623−644.
  205. Tordo N. et al. Rabies: Epidemiological tendencies and control tools. Developments in Biologicals, 2006, 125:3−13.
  206. Trimarchi C.V., Nadin-Davis S.A. Diagnostic evaluation. In: Jackson A.C., Wunner W.H., eds. Rabies, 2nd ed. // Amsterdam, Elsevier, 2007:411−469.
  207. Trimarchi C.V., Rudd R.D., Safford M. An in vitro virus neutralization test for rabies antibody. In: Meslin FX, Kaplan MM, Koprowski H, eds. Laboratory techniques in rabies, 4th ed. Geneva, World Health Organization, 1996:193−199.
  208. Turmelle A.S., Jackson F.R., Green D. et. al. Host immunity to repeated rabies virus infection in big brown bats // J.Gen. Virol. 2010. — Vol. 91, N9. — P. 2360−2366.
  209. Umoh J.U., Blenden D.C. Immunofluorescent staining of rabies virus antigen in formalin fixed tissue after treatment with trypsin // Bull. WHO. 1981. -Vol. 59, N5.-P. 737−744.
  210. Vengatesan D. et al. Detection of rabies virus antigen or antibody using flow cytometry // Cytometry. Part B, Clinical Cytometry, 2006, 70B:335−343.
  211. Von Teichman B.F., W.C. De Koker, Bosch S.J. et al. Mokola virus infection: description of recent south African cases and a review of the virus epidemiology // J. S. Afr. Vet. Assoc. 1998. — Vol. 69, N 4. — P. 169−171.
  212. Wacharapluesadee S., Hemachudha T. Nucleic-acid sequence based amplification in the rapid diagnosis of rabies // Lance. 2001. — Vol. 358, N 9285.-P. 892−893.
  213. Wakeley P.R., Johnson N., McElhinney L.M. et al. Development of a real-time, TaqMan reverse transcription-PCR assay for detection and differentiation of Lyssavirus genotypes 1, 5, and 6 // J. Clin. Microbiol. 2005. -Vol. 43, N6.-P. 2786−2792.
  214. Wandeler A.I. Rabies vaccinology and immunology // Developments in Biologicals, 2006, 125:181−184.
  215. Wiktor T.J., Doherty P.C., Koprowski H. In vitro evidence of cellmediated immunity after exposure of mice to both live and inactivated rabies virus // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1977, 74:334−338.
  216. Wilson M.B., Nakane P.K. Recent developments in the peroxidase method of conjugating horseradish peroxidase to antibodies // Immunofluorescence and related techniques. Amsterdam: North Holland Publishing Co, 1978. — P. 215−224.
  217. WHO Expert Consultationon Rabies. First Report. Geneva, World Health Organization, 2004 // WHO Technical Report Series, No. 931.
  218. WHO Expert Committee on Biological Standardization. Fifty-sixth report. Geneva, World Health Organization, 2007, Annex 2.
  219. WHO. Human and animal rabies. The World Health Organization. 2005.
  220. OIE Terrestrial Manual, 2011, Chapter 2.1.13, Rabies.
  221. WHO The Immunological Basis of Immunization Series, modulel7: Rabies, 2011.
  222. Xu G., Weber Р., Ни Q., et al. A simple sandwich ELISA (WELYSSA) for the detection of lyssavirus nucleocapsid in rabies suspected specimens using mouse monoclonal antibodies // Biol. J. Int. Ass. Biol. Stand. -2007. Vol. 35, N 4. — P. 297−302.
  223. L.M., Zhao L.Z., Ни R.L., et al. A novel double-antigen sandwich enzyme-linked immunosorbent assay for measurement of antibodies against rabies virus // Clin. Vaccine Immunol 2006. — Vol.13, N8. — P.966−968.
  224. Zhang S., Liu Y., Fooks A.R. et al. Oral vaccination of dogs (Canis familiaris) with baits containing the recombinant rabies-canine adenovirus type-2 vaccine confers long-lasting immunity against rabies // Vaccine. 2008. — Vol. 26, N3.-P. 345−350.
  225. Zhang S. et al. Competitive ELISA using a rabies glycoprotein-transformed cell line to semi-quantify rabies neutralizing-related antibodies in dogs // Vaccine, 2009, 27:2108−2113.
  226. Zimmerman J. Zur brauchbarkein des cornea tested de Tollwut diagnose // Berl. Munch. Tieraztl. Eachr. 1971. — B. 84, N 9. — S. 172−174.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!