Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Биологическое обоснование отбора штаммов гриба Beauveria bassiana S.L. для снижения численности саранчовых в Казахстане

Диссертация: Биологическое обоснование отбора штаммов гриба Beauveria bassiana S.L. для снижения численности саранчовых в Казахстане
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время в странах СНГ для контроля численности саранчовых используются только химические инсектициды. Однако, известно, что масштабное применение пестицидов имеет ряд существенных недостатков, важнейшими из которых являются возникновение резистентных популяций вредителей и загрязнение окружающей среды. Кроме того, многолетний опыт борьбы с саранчовыми свидетельствует о том, что… Читать ещё >

Биологическое обоснование отбора штаммов гриба Beauveria bassiana S.L. для снижения численности саранчовых в Казахстане (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. Энтомопатогенные грибы — возбудители микозов саранчовых аналитический обзор)
    • 1. 1. Видовой состав саранчовых Казахстана. Ир
    • 1. 2. Энтомопатогенные грибы- возбудители микозов саранчовых
      • 1. 2. 1. Видовой состав возбудителей и распространенность
      • 1. 2. 2. Цикл развития
      • 1. 2. 3. Факторы патогенности микромицетов
        • 1. 2. 3. 1. Ферментативная активность
        • 1. 2. 3. 2. Токсины
      • 1. 2. 4. Культивирование
      • 1. 2. 5. Препаративные формы
      • 1. 2. 6. Применение энтомопатогенных гифомицетов для подавления численности вредных саранчовых
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Место проведения исследований
    • 2. 2. Объекты исследований
      • 2. 2. 1. Штаммы
      • 2. 2. 2. Тест-насекомые
    • 2. 3. Методика исследований
      • 2. 3. 1. Культивирование грибов
      • 2. 3. 2. Изучение продуктивности при поверхностном и глубинном культивировании
      • 2. 3. 3. Определение скорости прорастания конидий в капле воды
      • 2. 3. 4. Определение жизнеспособности конидий
      • 2. 3. 5. Лабораторная оценка биологической активности
      • 2. 3. 6. Оценка биологической активности в полевых условиях
      • 2. 3. 7. Обработка полученных данных
  • ГЛАВА 3. СКРИНИНГ ГРИБА BEAUVERIA В ASSI AN, А ПО ПРИЗНАКУ 58 ВИРУЛЕНТНОСТИ В ОТНОШЕНИИ САРАНЧОВЫХ
    • 3. 1. Первичный скрининг штаммов Beauveria bassiana
    • 3. 2. Восприимчивость различных видов саранчовых к штаммам Beauveria 62 bassiana
    • 3. 3. Оценка биологической активности изучаемых штаммов на насекомых из 65 других систематических групп
    • 3. 4. Зависимость смертности личинок азиатской саранчи от концентрации 68 инокулюма
    • 3. 5. Влияние пассирования на вирулентность штаммов гриба Beauveria 73 bassiana
    • 3. 6. Оценка гетерогенности штаммов по признаку вирулентности
  • ГЛАВА 4. ТЕРМОТОЛЕРАНТНОСТЬ И ПРОДУКТИВНОСТЬ ГРИБА 78 ВЕЛ U VERI A BASSIANA
    • 4. 1. Влияние температуры на прорастание конидий штаммов гриба Beauveria 78 bassiana
    • 4. 2. Влияние температуры воздуха на интенсивность развития штаммов гриба
  • Веат?ег'ш bassiana в поверхностной культуре
    • 4. 3. Продуктивность при глубинном культивировании
    • 4. 4. Продуктивность при твердофазном культивировании
  • ГЛАВА 5. БИОЛОГИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ГРИБА ВЕАиУЕША ВАБЗЫКА ДЛЯ КОНТРОЛЯ ЧИСЛЕННОСТИ САРАНЧОВЫХ В ПОЛЕВЫХ УСЛОВИЯХ
    • 5. 1. Биологическая активность гриба Веашепа bassiana для контроля численности саранчовых в полевых условиях
      • 5. 1. 1. Оценка биологической активности водной суспензии конидий Веагмег1а Ьа551апа при обработке кулиг в полевых условиях
      • 5. 1. 2. Влияние растительного масла на биологическую активность гриба 92 Веашег1а Ьа88{апа в полевых условиях
  • выводы

Саранчовые в особенности стадные являются одной из наиболее вредоносных групп многоядных вредителей сельскохозяйственных культур. Их вспышки массового размножения отмечались ещё задолго до нашей эры в Древнем Египте, а позже — по всему Ближнему Востоку и в Китае (Лачининский (ред.), 2002).

На территории Казахстана обитает 270 видов и подвидов саранчовых. Наибольшую опасность сельскохозяйственным посевам и угодьям представляют 15−20 видов (Нурмуратов и др., 2000).

В странах СНГ на протяжении последних двух столетий было зарегистрировано 84 случая массовых вспышек саранчовых. Несмотря на значительные успехи в разработке химического метода проблема массовых размножений саранчовых на территории бывшего СССР в конце прошлого века не только не уменьшилась, а наоборот резко усилилась. В 1999 году саранчовые уничтожили в Казахстане только зерновые культуры на площади 220 тыс. га. При этом потери составили 15 млн. долларов США. В 2000 году площадь, обработанная инсектицидами, превысила 8,0 млн. га, что почти в 9 раз превосходила среднемноголетние объемы обработок всех предшествовавших лет. Затраты Республики Казахстан на противосаранчовые мероприятия составили в 1999 г.- 4,8 млн., а в 2000 — 23,0 млн. долларов (Камбулин и др., 2010).

Аналогичная ситуация складывается и на сопредельных территориях России. Так, в 2000 году для борьбы с саранчой химические обработки были проведены на площади 10 млн. га (Сергеев, Лачининский, 2006). В начале XXI века только в Южном Федеральном округе химические инсектициды против саранчовых ежегодно использовались на площади 300−500 тыс. га (Столяров, 2007).

В настоящее время в странах СНГ для контроля численности саранчовых используются только химические инсектициды. Однако, известно, что масштабное применение пестицидов имеет ряд существенных недостатков, важнейшими из которых являются возникновение резистентных популяций вредителей и загрязнение окружающей среды. Кроме того, многолетний опыт борьбы с саранчовыми свидетельствует о том, что инсектициды обеспечивают обычно лишь временное снижение численности и вредоносности в местах их применения, но в целом, практически не могут повлиять кардинально на ход многолетней динамики численности. Напротив, тотальные обработки дестабилизируют экологическую ситуацию за счет истребления естественных врагов и природных эпизоотий, что удлиняет периоды массового размножения на несколько лет (Камбулин и др., 2010).

В связи с этим возникает необходимость поиска альтернативных экологически безопасных методов защиты растений.

Одним из таких способов подавления вредных фитофагов является микробиологический метод защиты. Особую актуальность использование биологических приемов контроля численности саранчовых приобретает для водоохранных зон и заповедных территорий, где использование химических пестицидов законодательно полностью запрещено.

Среди всего разнообразия энтомопатогенных микроорганизмов одной из наиболее перспективных групп, с точки зрения контроля численности саранчовых являются анаморфные аскомицеты из двух родов — Metarhizium и Beauveria.

Исследования с этими микроорганизмами активно проводятся во многих станах мира — США, Аргентина, Бразилия, Южно-Африканская Республика, Франция, Германия, Испания и др. (Lomer et al., 2001; Inglis et al., 2007; Charnley, Collins, 2007, Faria, Wraight, 2007). В апреле 2004 г. на заседании Консультационного комитета по пестицидам ФАО было рекомендовано расширить долю микробиологического метода в интегрированных программах контроля численности саранчовых и в первую очередь препаратов на основе энтомопатогенных грибов (Сергеев, Лачининский, 2006).

В результате проведенных за рубежом работ было создано и успешно внедрено два препарата на основе гриба Metarhizium anisopliae var. acridumGreen Muscle® (Африка) и Green Guard© (Австралия), обладающие высокой биологической эффективностью (85−95%) против перелетной, пустынной, мароккской саранчи и кобылок (Langewald et al., 1997; Lomer et al., 2001). Ha основе В. bassiana в США созданы два экспериментальных противосаранчовых препарата — Mycocide GH® и Mycotrol®. К настоящему времени ассортимент зарубежных микоинсектицидов для контроля численности саранчовых включает 11 наименований (Faria, Wraight, 2007).

На территории СНГ исследования в этом направлении до недавнего времени были немногочисленны и носили эпизодический характер.

Кроме того, в Казахстане в начале XXI века были проведены работы по изучению видового состава возбудителей инфекционных заболеваний саранчовых, а также по испытанию препаративных форм на основе гриба Metarhizium anisopliae var. acridum и микроспоридии Nosema locusta в полевых условиях (Темрешев, 2003). Однако в результате этих исследований было показано, что коммерческие препараты (производство Китая) на основе указанных патогенов проявляют низкую биологическую активность (до 54%).

К настоящему времени в списках разрешенных к применению средств защиты растений, как в Казахстане, так и в России нет ни одного препарата на основе энтомопатогенных грибов для контроля численности вредных членистоногих и саранчовых в частности.

Уже более десяти лет в ВИЗР совместно с ИСиЭЖ СО РАН (г.Новосибирск) проводятся интенсивные работы по разработке новых микоинсектицидов (Крюков и др., 200., Левченко, 2007; Леднев и др., 2012). В последние годы к этим исследованиям активно подключились сотрудники КазНИИЗиКР и настоящая работа является составной частью данных совместных исследований.

Цель и задачи исследования

Целью нашей работы являлась скрининг новых штаммов-продуцентов микоинсектицидов на основе гриба Beauveria bassiana эффективных для подавления численности наиболее вредоносных видов саранчовых в условиях Казахстана. В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Отбор новых штаммов и природных изолятов казахстанского происхождения гриба В. Ъазъ’шпа по признаку вирулентности в отношении саранчовых;

2. Оценка специфичности отобранных культур гриба в отношении насекомых из других систематических групп;

3. Подбор оптимальных концентраций инокулюма для эффективного подавления численности сараранчовых;

4. Определение температурных преферендумов отобранных штаммов;

5. Оценка продуктивности перспективных культур гриба при поверхностном и глубинном культивировании;

6. Определение биологической эффективности лабораторных образцов биопрепаратов в полевых условиях.

Научная новизна. Впервые на большой выборке штаммов, выделенных на территории Казахстана, показана высокая гетерогенность В. Ъа851апа по признаку вирулентности в отношении саранчовых. Выявлено шесть штаммов гриба В. Ъа$$апа, обладающих высокой биологической активностью для представителей данной группы вредителей. Для них подобраны оптимальные титры рабочей суспензии. Показано, что отобранные культуры обладают высокой вирулентностью и на насекомых других систематических групп. Для данных культур гриба определены температурные преферендумы и отработаны лабораторные методы глубинной и твердофазной ферментации.

Теоретическая практическая значимость работы. В качестве перспективных штаммов-продуцентов для создания новых биологических препаратов отобраны два новых штамма гриба В. Ъа88апа казахстанского происхождения, обладающие высокой вирулентностью в отношении различных видов, саранчовых, продуктивностью и термотолерантностью. Разработаны лабораторные регламенты их производства и подобрана препаративная форма.

Показана эффективность лабораторных образцов микоинсектицидов в условиях юго-восточного Казахстана.

Основные положения, выносимые на защиту:

— отбор культур гриба В. Ъа$ 8апа, выделенных из природных источников, обладающих высокими показателями по основным целевым признакам в качестве потенциальных продуцентов новых противосаранчовых микоинсектицидов. Штамм ЮК4 — 09 подтвержден инновационным патентом;

— методы культивирования (поверхностного и глубинного) отобранных культур;

— способы использования местных штаммов гриба В. Ьа&$ 1апа для борьбы с саранчовыми в условиях юго-восточного Казахстана.

Апробация работы. Материалы, полученные в ходе исследований, докладывались на 2-м междисциплинарном микологическом форуме (Москва, 2010), 8-м межрегиональном совещании энтомологов Сибири и Дальнего Востока с участием зарубежных ученых, Новосибирск (Россия, 2010), Научной конференции ППС СПбГАУ (С.-Петербург, 2012), Международной молодежной конференции «Инфекционная патология членистоногих» (С.-Петербург, 2012), 14-м съезде Русского энтомологического общества. (С.-Петербург, 2012.), 3-м съезде микологов России. 10−12 октября (Москва, 2012), 2-й международной научной конференции молодых ученых «Актуальные проблемы и перспективы защиты и карантина растений» (Алматы, 2012).

Личный вклад соискателя. Сбор и выделение грибов, а также полевые испытания отобранных культур проводился диссертантом совместно с сотрудниками лаборатории биотехнологии КазНИИЗиКР, а также коллегами из ВИЗР Россельхозакадемии (С.-Петербург) и ИСиЭЖ СО РАН (Новосибирск). Лабораторные эксперименты, анализ и обобщение результатов исследований выполнены лично автором.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 17 работ, в том числе 2 статьи в изданиях, рекомендованных ВАК для публикации основных научных результатов диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук, и получен 1 инновационный патент.

Благодарности. Автор выражает благодарность к.б.н., доценту Г. Р. Ледневу (ВИЗР Россельхозакадемии) за руководство научной работой, д.б.н., академику НАН Республики Казахстан А. О. Сагитову, к.б.н. Б. А. Дуйсембекову (КазНИИЗиКР, Алматы), к.б.н. М. В. Левченко (ВИЗР Россельхозакадемии), за помощь на всех этапах исследования, Е. М. Макарову и Е. Ж. Баймагамбетову (КазНИИЗиКР, Алматы) за ценные замечания, сделанные при работе над рукописью. За помощь в проведении экспериментальной работы я признателен всем сотрудникам лаборатории биотехнологии КазНИИЗиКР, к.б.н. В. Ю. Крюкову и О. Н. Ярославцевой (ИСиЭЖ СО РАН).

ВЫВОДЫ.

1. Новые казахстанские штаммы гриба В. Ьаззгапа показали высокую гетерогенность по признаку вирулентности на азиатской саранче. Из тридцати трех протестированных культур высокую вирулентность показали 46% штаммов, а 37% оказались слабовирулентными. Отобрано пять культур гриба: ВСиг06, ВСи22−07, ВСо6−07, В04−07, ЮК-4, показавших лучшие результаты по скорости гибели хозяина.

2. Виды саранчовых обитающие в ксерофитных стациях (итальянский и пустынный прус, мароккская саранча) обладают повышенной восприимчивостью к микозу по сравнению с мезои гигрофилами (азиатская саранча, конек короткокрылый и др.).

3. На личинках азиатской саранчи и пустынного пруса наибольшую биологическую активность показали культуры ВСи22−07. ЮК-4 и ББК-1 при.

1 1 титрах рабочей суспензии 1×10 и 5×10. Отобранные культуры гриба обладают широким спектром действия. Они проявляют высокую вирулентность кроме саранчовых на личинках колорадского жука и на ряде видов вредных чешуекрылых.

4. Выявлена высокая степень гетерогенности культур по признаку термотолерантности конидий В. Ьа5з1апа в диапазоне температур от 20 до 35 °C. Наибольшую лабильность к повышенным температурам показали штаммы, изолированные из ксерофитных стаций. Температура воздуха оказывает сильное влияние на интенсивность роста гриба в поверхностной культуре. Наибольшей термофильностью также обладают культуры, выделенные из материала, собранного в условиях сухих степей.

5. Из пяти протестированных культур четыре обладают высокой продуктивностью при глубинной ферментации (ВСи22−07, ББК-1, ВЭ4−07 и КЖ-4). С точки зрения твердофазного культивирования лучшим по продуктивности является эталонный штамм ББК-1. Среди новых культур максимальный выход конидий наблюдалась у культуры ВСи22−07. Оптимальным субстратом для поверхностного культивирования являются пшено и рис.

6. Применение отобранных штаммов гриба В. ЪаБзгапа в форме масляной конидиальной суспензии показывает высокую эффективность для снижения численности азиатской саранчи, итальянского и пустынного пруса.

Практические рекомендации.

1. Для разработки нового микоинсектицида против вредных саранчовых предлагается использовать штаммы грибаВеатепа Ьаъъ’шпа ВСи22−07 и ЮК-4.

2. Наработку указанных штаммов рекомендуется проводить методом поверхностного твердофазного культивирования на рисе или пшене.

3. Для эффективной борьбы с саранчовыми предлагается использование отобранных штаммов в форме масляной суспензии методом малообъемного.

12 опрыскивания из расчета 5×10 конидий/га по личинкам младших возрастов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Г. К. Энтомопатогенные грибы таежных биогеоценозов как агенты биологической борьбы с вредными насекомыми: автореф. дис. докт. биол. наук: 03.00.09 / Андросов Геннадий Константинович. М., 1986. — 45 с.
  2. , A.B. Случаи массовой гибели итальянского пруса от грибной болезни в степях Ставропольского края в 1955 г. / A.B. Батко // Сборник научных студенческих работ МГУ. 1957. — С. 5−10.
  3. , Г. А. Механизированное получение вертициллиума / Г. А. Бегляров, В. А. Шумилов, Г. А. Девяткина, И. А. Пономарева, С. С. Мелехин // Защита растений. 1986. — № 5. — С. 37−39.
  4. , З.В. Хитинолитическая активность энтомопатогенных грибов / З. В. Беленикина, В. Л. Ищенко, Е. В. Луговская, А. Г. Чигалейчик // Проблемы создания и применения микробиологических средств защиты растений. Тез. докл. Велегож. 1989. — С. 212.
  5. , А.О. Получение и хранение биопестицидов на основе микромицетов / А. О. Берестецкий, C.B. Сокорнова // Микология и фитопатология. 2009. — Т. 43. — № 6. — С. 473−489.
  6. Билай, В. И, Методы эксперементальной микологии: справочник / ВН. Билай. Киев: Наукова Думка, 1982. — 685 с.
  7. , Б.А. Проблемы создания и использования микоинсектицидных препаратов / Б. А. Борисов // Изучение энтомопатогенных микроорганизмов и разработка технологий производства и применения. Научн. раб. симп. СЭВ. 1990. -С. 8−23.
  8. , Б.А. Энтомопатогенные аскомицеты и дейтеромицеты / Б. А. Борисов, В. В. Серебров, И. И. Новикова, И. В. Бойкова // Патогены насекомых: структуральные и функциональные аспекты. 2001. — С. 352.
  9. , Л.Д. Итальянсая саранча (Calliptamus italicus L.) в зоне почвозащитного земледелия на востоке Казахстана и совершенствование мероприятий по борьбе с ней: автореф. дис. канд. биол. наук: 06.01.11 / Бунин Леонид Дмитриевич. Л., 1979. — 24 с.
  10. , Я. Микробиологический метод борьбы с вредными насекомыми /Я. Вейзер. Москва: Колос, 1972. 639с.
  11. , Э.Г. Биологические основы использования энтомофторовых грибов в защите растений против тлей: автореф. дис. докт. биол. наук: 06.01.11 /Воронина Элина Генриховна. Л., 1989. 45 с.
  12. , Э.Г. Энтомофторовые грибы естественные регуляторы численности насекомых / Э. Г. Воронина, Г. Р. Леднев, Т. Ю. Мукамолова // Патогены насекомых: структурные и функциональные аспекты. — 2001, — С. 271 351.
  13. , Л.В. Основы микологии / Л. В. Гарибова, С. Н. Лекомцева // Товарищество научных изданий КМК. Москва. — 2005. — 300 с.
  14. , Н.Ю. Энтомопатогенные грибы. Биотехнологические аспекты / Н. Ю. Гештовт. Алматы, 2002. — 288 с.
  15. , Н. Ю. Критерии селекционного отбора высоковирулентных штаммов энтомопатогенных грибов / Н. Ю. Гештовт, Ж. Б. Сулейменова, Е. Ж. Баймагамбетов // Актуальные проблемы защиты растений в Казахстане. 2002. -Кн. 1. — С. 316−340.
  16. , В.В. Механизмы резистентности насекомых / В. В. Глупов // Патогены насекомых: структуральные и функциональные аспекты. 2001. С. 475 481.
  17. , А.Н. Возможность использования энтомопатогенных грибов рода Beauveria в борьбе с нестадными саранчовыми в Центральной Якутии. / А. Н. Гоголев // Экологические проблемы защиты растений. Тез. докл. 1990. — С 220.
  18. , В.М. Биологические особенности энтомопатогенного гриба Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. в условиях глубинно поверхностногокультивирования: автореф. дис. канд. биол. наук: 03.00.07 / Гораль Виктор Мартынович. К., 1970. — 24 с.
  19. , В.М. Энтомоцидная активность мускардинных грибов как функция условий культивирования / В. М. Гораль // VI съезд Украинского микробиол. о-ва. 1985. — ч.1. — С. 186−187.
  20. , В.М., Jlanna Н.В. Технология производства энтомопатогенного препарата метаризина / В. М. Гораль, Н. В. Лаппа // Теоретические и прикладные аспекты биотехнологии. Украинской акад. аграр. наук. 1991. — С. 29−30.
  21. , В.В. Микробиологическая борьба с вредными организмами / В. В. Гулий, Г. М. Иванов, М. В. Штерншис. Москва: Колос, 1981. — 272 с.
  22. , A.A. Энтомопатогенные грибы. Систематика, биология, практическое значение. / A.A. Евлахова. Ленинград: Наука, 1974. 260 с.
  23. , А.К. О некоторых закономерностях размножения итальянского пруса (Calliptamus italicus) в Актюбинской области / А. К. Жасанов // Защита и карантин растений в Казахстане. 2001. — № 1. — С. 27−28.
  24. , В.Е. Динамика популяций стадных саранчовых в Казахстане/ В. Е. Камбулин, С. Ыскак, K.M. Толеубаев // Защита растений. 2010. -№ 4. — С.
  25. , Э.З. Определитель энтомофильных грибов СССР / Э. З. Коваль. -Киев: Наукова Думка, 1974.-260 с.
  26. , Э.З. Флора грибов Украины. Зигомицеты. Энтомофторальные грибы / Э. З. Коваль. Киев, 2007.-369 с.
  27. , Л.М. Динамика численности пруса и нестадных саранчовых в горах Киргизии. Саранчовые экология и меры борьбы / Л. М. Копанева, Г. И. Дорохова//. Сб. науч. тр. — 1987. -С. 51−57.
  28. , Н.В. Изучение и использование мускардиновых грибов в защите растений / Н. В. Лаппа, В. М. Гораль // Микробиологические методы борьбы с вредителями сельскохозяйственных растений. Тр. ВИЗР. 1976. -Т. 47. — С. 53−67.
  29. , Н.В. Сравнительное действие энтомопатогенных грибов на тепличную белокрылку / Н. В. Лаппа, В. М. Гораль, В. П. Анохина, М. В. Круть // Инф. Бюл, ВПС МОББ. 1988. -№ 23. — С. 43−47.
  30. , A.B. Саранчовые Казахстана, Средней Азии и сопредельных территорий./ Лачининский A.B., Сергеев М. Г., Чильдебаев М. К., Черняховский М. Е., Локвуд Дж.А., Камбулин В. Е., Гаппаров Ф. А. Ларами, 2002.-387с.
  31. , М.В. Биологическое обоснование использования энтомопатогенных гифомицетов для подавления численности вредных саранчовых: автореф. дис. канд.биол.наук: 03.00.09 / Левченко Максим Владимирович. СПб, 2007, — 20 с.
  32. , Г. Р. Возбудители микозов насекомых: пособие по диагностике / Г. Р. Леднев, Б. А. Борисов, Г. В. Митина. Санкт-Петербург, 2003.-79 с.
  33. , С.Н. Почвенно-ботанические условия местообитаний пруса и распределение залежей его кубышек в Зеравшанеком оазисе / С. Н. Лепешкин //' Сб. работ саранчовой экспед. Узб. СТАЗРа. 1931 -С. 10−93.
  34. , С.Н. Регистрация пруса в поливных районах Средней Азии / С. Н. Лепешкин, Л. С. Зимин, E.H. Иванов, A.A. Захваткин // Саранчовые Средней Азии. 1934.-С.237−243.
  35. Лер, П. А. Материалы по биологии туранского и пустынного прусов (Orthoptera, Calliptamus) в Чиментской области / П. А. Лер // Тр. НИИ защиты раст. Казахск. акад. с.-х. наук. 1962. — С. 3−56.
  36. , М.Ж. Фауна и формирование прямокрылых (Insecta: Orthoptera) южного Приаралья: автореф. дис. канд. биол. наук: 03.00.09 / Медетов Махсетбай Жапакович Т., 2012, — 24 с.
  37. Микульская, Н. И. Морфологические особенности новых штаммов мускардинных грибов Metarhizium anisopliae, Paecilomyces fumoso-roseus и
  38. Beauveria bassiana и их активность по отношению к некоторым сельскохозяйственным вредителям / Н. И. Микульская, Л. И. Прищепа, Е. Н. Янковская, Е. С. Герасимович // Сб. научн. трудов БелНИИЗР. 2003. — № 27. -С.145−156.
  39. , Г. В. Выделение и изучение спектра действия фосфолипидов с инсектицидной активностью энтомопатогенного гриба Lecanicillium lecanii / Г. В. Митина, С. В. Сокорнова, В. А. Павлюшин // Микология и фитопатология. 2003. -Т. 36.-№ 6.-С. 53−59.
  40. , П.В. Фено- и генотипические различия штаммов анаморфных аскомицетов рода Beauveria / П. В. Митьковец, Ю. С. Токарев, О. Н. Ярославцева, В. Ю. Крюков, Г. Р. Леднев, В. В. Глупов // Современная микология в России. 2012. -Т.З.-С. 51.
  41. , А.А. Энтомопатогенные микроорганизмы стадных саранчовых в Узбекистане / А. А. Нуржанов, А. В. Лачининский // Саранчовые. Экология и меры борьбы. 1987. — С. 62−69.
  42. , А.А. Энтомопатогенные микроорганизмы стадных саранчовых Узбекистана и перспективы их использования в биологической защите растений: автореф. канд. дис. биол. наук: 03.00.09 / Нуржанов Аллаберген Абцелязович. Ленинград, 1989, — 18 с.
  43. Нурмуратов, Т. Н. Саранчовые вредители сельскохозяйственных растений
  44. Казахстана и рекомендации по ограничению их численности / Т. Н. Нурмуратов, В. К. Ажбенов, В. Е. Камбулин, М. К. Чильдебаев, И. А. Комисарова, Г. Жумагалиева // Asia Publishing. 2000. — С. 1 -56.
  45. , Б.Н. Биологическое обоснование способов создания и использования грибных препаратов для борьбы с насекомыми: автореф. дис. докт. биол. наук: 03.00.09 / Огарков Борис Никитович Л., 1990. — 44 с.
  46. , Б.Н. Энтомопатогенные грибы Восточной Сибири / Б. Н. Огарков, Г. Р. Огаркова // И. -. 2000. 134 с.
  47. , В.А. Факторы вирулентности гриба Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. и патогенез мускардиноза насекомых: дис. канд. биол. наук: 06.01.11 / Павлюшин Владимир Алексеевич. Л., 1979. — 205 с.
  48. , И.Л. Физиология микроорганизмов и управляемое культивирование / И. Л. Работнова // Успехи микробиологии. 1990. — № 24. — С. 8899.
  49. , М.Г. Стадные саранчовые: начало грядущего века / М. Г. Сергеев, А. В. Лачининский // Энтомологические исследования в Северной Азии. -2006. С. 284−286.
  50. , В.В. Детоксицирующие ферменты насекомых при микозах: дис. канд. биол. наук: 03.00.09 / В.В. Серебров-Н., 2000. 123 с.
  51. , Н.Н. Популяционная динамика саранчовых в агроценозах Северного Казахстана / Н. Н. Соболев, М. Г. Сергеев // Антропоген. воздействие на сообщества насек. 1985. — С. 96−104.
  52. , М.В. Особенности мониторинга стадных саранчовых и противосаранчовых кампаний на юге России./ М. В. Столяров // Защита и карантин растений, 2007. — № 4. — С. 40−43.
  53. И.Д. Действие солнечной радиации и микроклимата на температуру тела и поведение личинок саранчи Locustae migratoria L./ Труды Зоологического института АН СССР. 1935 т. 2. № 4. с. 637−733
  54. , Л.Г. Разработка одноэтапной технологии производства боверина и испытание его инсектицидной активности: автореф. дис. канд. биол. наук: шифр / Тарасов Л. Г. Л., 1970. — 22 с.
  55. , И.И. Биологическое обоснование использования энтомопатогенных микроорганизмов против саранчовых вредителей в Казахстане: автореф. дис. канд.биол.наук: 06.01.11 / Темрешев Избасар Исатаевич. А., 2003. -23 с.
  56. , В.А. Метаболические особенности гриба Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. при поверхностном и глубинном культивировании / В. А. Тюльпанова, В. Г. Тюльпанов, Т. Л. Козлова, А. Малиновский // Микология фитопатология. -1987.-Т.21.-№ 3.-С. 259.
  57. , Н.С. Микробиологический метод борьбы с вредителями с болезнями сельскохозяйственных растений / Н. С .Федоринчик // Биологические средства защиты растений. 1974. — С. 263−280.
  58. , С.Ж. Энтомопатогенные бактерии и грибы регуляторы численности клещей Argas persicus Oken. / С. Ж. Федорова // Илим. 1988. — С. 148.
  59. Р.И. В ожидании большого скачка / Р. И. Хлопцева // Защита растений. 1992. — № 7. — С. 17−19.
  60. , М.В. Изучение энтомопатогенного гриба М. anisopliae как биологического ресурса для биоконтроля насекомых-фитофагов / М. В. Штерншис, А. А. Малярчук, В. В. Гулий // Вестник ТГУ. 2008. — № 313. — С. 232−236.
  61. , М.В. Микробиологический метод контроля саранчовых / М. В. Штерншис, В. П. Цветкова // Защита и карантин растений. 2002. — № 6. — С. 26−27.
  62. Alves, S.B. Production of Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok. and Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. in plastic trays / S.B. Alves, R.M. Pereira // Ecosistema. 1989. — V. 14. — P. 188−192.
  63. Bateman, R.P. Methods of Appl. of microbial pesticide formulations for the control of locusts and grasshoppers / R.P. Bateman // Memoirs Entomol. Canad. Soc. -1997.-V. 171.-P. 69−80.
  64. Bateman, R.P. The enhanced infectivity of Metarhizium flavoviride in oil formulations to desert locusts at low humidities / R.P. Bateman, M. Carey, D. Moore, C. Prior // Ann.Appl. Biol. -1993. -P. 51 -52.
  65. Bello, V.A. Localization of auxotrophic and benomyl resistance markers through the parasexual cycle in the Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Entomopathogen / V.A. Bello, L.D. Paccola-Meirelles // J. invert. Pathol. 1998. — V. 72. — N 2. — P. 97−103.
  66. Bidochka, M.J. Genetic groups of the insect-pathogenic fungus Beauveria bassiana are associated with habitat and thermal growth preferences / M.J. Bidochka, F.V. Menzies, A.M. Kamp // Arch. Microbiology. 2002. — V. 178. — № 6. — P. 531−537.
  67. Bidochka, M.L. Protein hydrolysis In Grasshopper cuticulars by Entomopathogenic fungal extracellular proteases / M.L. Bidochka, G.G. Khachatourians //J. Invert. Pathol. 1994. — V. 63. — P. 7−14.
  68. Bidochka, M.J. Regulation of extra- cellular protease in the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana / M.J. Bidochka, G.G. Khachatourians // Exp. Mycol. 1988- -P. 161−168.
  69. Binnington, K. Epidermis a biologically active target for metabolic inhibitors / K. Binnington, A. Retnakaran // Physiology of insect epidermis. East Melbourne: Inkata Press Pty Ltd. 1991. — P. 307−334.
  70. Bischoff, J.F. A multilocus phylogeny of the Metarhizium anispliae lineage / J.F. Bischoff, S.A. Rehner, R.A. Humber // Mycologia. 2009. — V. 101. — № 4. — P. 512 530.
  71. Blackwell, M. Fungal evolution and taxonomy. Fungal evolution and taxonomy. / M. Blackwell // BioControl. 2010. — V.55. — P. 7−16.
  72. Blanford, S. Role of thermal biology in disease dynamics / S. Blanford, M.B. Thomas // Aspec ts Appl. Biol. 1999. — V. 53. — P. 73−82.
  73. Braga, G.U.L. Effect of UV-B on conidia and germlings of the entomopathogenic hyphomycete Metarhizium anisopliae / G.U.L. Braga, S.D. Flint, C.L. Messias, A.J. Anderson, D.W. Roberts // Mycol. Res. 2001. — V. 105. — № 7. — P. 874 882.
  74. Brey, P.T. IJltrastructure and chemical composition of the outer layers of the cuticle of the pea aphid s Acyrthosiphon pisum (Harris) / P.T. Brey, H. Ohayon, M. Lesourd, J.P. Latge // Comp. Biocem. Physiol. 1985. — V. 82. — P. 401−411.
  75. Burge, M.N. The scope of fungi in biological control / M.N. Burge // Fungi in biological control systems. 1988. — P. 1−18.
  76. Barlett, M.C. Mass production of entomogenous fungi for biological control of insects / M.C. Barlett, S.T. Jaronski // In: Fungi in biological control systems. 1988. — P. 61−88.
  77. Butt, T.M. The germination behaviour of Metarhizium anisopliae on the surface of aphid and flea beetle cuticules / T.M. Butt, L. Ibrahim, S.J. Clare, A. Beckett // My col. Res. 1995. — V. 99. — P. 945
  78. Castrillo, L.A. The fungal past, present, and future: Germination, ramification and reproduction / L.A. Castrillo, D.W. Roberts, J.D. Vanderberg // Invertebrate Pathology. 2005, — V. 89.
  79. Charnley, A.K. Entomopathogenic fungi and their role in pest control / A.K. Charnley // The Mycota IV. Environmental and microbial relationships. — D. Wicklow and M. Soderstrom, Eds. — Springer — Veriag. — 1997. — P. 185−201.
  80. Charnley, A.K. Physiological aspects of destructive pathogenesis in insects by fungi: A speculative review / A.K. Charnley // Brit. Mycol. Soc. Symp. 1984. — V. 6. -P. 132.
  81. Claydon, N. Insecticidial secondary metabolites from the entomopathogenic fungus Entomophthora virulenta / N. Claydon // Invert. Pathol. 1978. — V. 32. — N. 3. -P. 319.
  82. Claydon, N. Insecticidal secondary metabolic products from the entomopatogenous fungus Verticillium lecanii / N. Claydon, P.D. Grove // Invert. Pathol. 1982. — V. 40. — N. 3. — P. 413−418.
  83. Cliquet, S. Comparison of air drying methods for evaluating the desiccation tolerance of liquid culture — produced blastospores of Paecilomyces fumosoroseus / S. Cliquet, M.A. Jackson // Microbiol. Biotech. — 1997. — V. 13. — P. 299−303.
  84. Cortat, M. Conidiation of Neurospora crassa in submerged culture without mycelial phase / M. Cortat, G. Turian // Arch. Microbiol. 1974. — V. 95. — P. 305−309.
  85. Dahlberg, K.R. Physiology and biochemistry of fungal sporulation / K.R. Dahlberg, J.L. Van Etten // Ann. Rev. Phytopathol. 1982. — V. 20. — P. 281−301.
  86. De Crecy, E. Directed evolution of a filamentous fungus for thermotolerance /
  87. E. De Crecy, S. Jaronski, B. Lyons, T.J. Lyons, N.O. Keyhani // BMC Biotechnology. -2009. -V 9.- № 1, — P. 74.
  88. Delgado, F.X. Small-scale field trials with entomopathogenic fungi against Locusta migratoria capito in Madagascar and Oedaleus senegalensis in Cape Verde /
  89. F.X. Delgado, J.H. Brittonl, M.L. Lobo-Lima, E. Razafindratiana, W. Swearingen // New Strategies in Locust Control. Basel. 1997. — P. 171−176
  90. Dimbi, S. Effect of constant temperatures on germination, radial growth and virulence of Metarhizium anisopliae to three species of African tephritid fruit flies / S. Dimbi, N.K. Maniania, S.A. Lux, J.M. Mueke // BioControl. 2004. — V. 49. — P. 83−94.
  91. Edgington, S. Photoprotection of Beauveria bassiana: testing simple formulations for control of the coffee berry borer / S. Edgington, H. Segura, W. de La Rosa, T. Williams // Int. J. PestManag. 2000. — V. 46. — № 3. — P. 169−176.
  92. Fargues, J. Influence of temperature on in vitro growth of entomopathogenic hyphomycetes / J. Fargues, N.K. Maniania, J.C. Delmas, N. Smits // Agronomie. 1992. — V. 12. -№ 7. — P. 557−564.
  93. Fargues, J. Effects of fluctuating moisture and temperature regimes on the infection potential of Beauveria bassiana for Rhodnius prolixus / J. Fargues, C. Luz // Invert Pathol. 2000. — V. 75. — N. 3. — P. 202−211.
  94. Fargues, J. Variability in susceptibility to simulated sunlight of conidia among isolates of entomopathogenic hyphomycetes / J. Fargues, M.S. Goettel, N. Smits, A. Ouedraogo // Mycopathologia. 1996. — V. 35. — P. 171−181.
  95. Faria, M. Mycoinsecticides and Mycoacaricides: A comprehensive list with worldwide coverage and international classification of formulation types. / M. Faria, S.P. Wraight // Biological Control. 2007. — P. 237−256.
  96. Fenice, M. Chitinolytic activity at low temperature of an Antarctic strain (A3) of Verticillium lecanii / M. Fenice, L. Selbmann, R. Di Giambattista, F. Federici // Res. Microbiol. 1998. — V. 149. — N. 4. — P. 289.
  97. Fernandes, E.K.K. Cold activity of Beauveria and Metarhizium, and thermotolerance of Beauveria / E.K.K. Fernandes, D.E.N. Rangel, A.M.L. Moraes, V.R.E.P. Bittencourt, D.W. Roberts // J. Invertebr. Pathol. 2008. — V. 98. — № 1. — P. 69= 78.
  98. Ferron, P. Biological control of insect pests by entomogenous fungi / P. Ferron // Ann. Rev. Entomol. 1978. — V. 3. — P. 409−442.
  99. Ferron, P. Pest control by the fungi Beauveria and Metarhizium / P. Ferron // Microbiol Control of Pests and Plant Diseases. 1981. — P. 465−482.
  100. Goettel, M.S. Pathogenesis of the hyphomycete Tolypocladium cylindrosporum in the mosquito Aedes aegypti / M.S. Goettel // J. Inverteb. Pathol. -1988,-V. 51,-№ 3,-P. 259−274.
  101. Griffiths, J. Evaluation of the Francome Mkll exhaust nozzle sprayer to apply oil based formulations of Metarhizium flavoviride for locust control / J. Griffiths, R. Bateman//Pesticide Sci. — 1997. -V. 51. — P. 176−184.
  102. Gupta, S.C. Insect cuticle degrading enzymes from the entomogenous fungus Beauveria bassiana / S.C. Gupta, T.D. Leathers, G.N. El-Sayed // Exp. Mycol. — 1992. -V. 16. — P. 132−137.
  103. Gupta, S.C. Relationships among enzyme activities and virulence parametres in Beauveria bassiana infection of Galleria mellonella and Trichoplusia / S.C. Gupta, T.D. Leathers, G.N. El-Sayed, C.M. Ignoffo // Invert. Pathol. 1994. — V. 64. — P. 13−17.
  104. Gustafsson, M. On species of the genus Entomophthora Fres. in Sweden. 1 Classification and distribution /' M. Gustafsson // Landbr’hogsk. Annl. 1965. — V. 31. -P. 103−212.
  105. Hall, F.R. Biorational pest control agents: formulation and delivery / F.R. Hall // ACS Symposium. 1995. — V. 595. — P. 306.
  106. Hamill, R.L. The structure of beauvericin, a new depsipeptide antibiotic toxic to Artemia salani / R.L. Hamill, C.E. Higgens, H.E. Boaz, M. Gorman // Tetrahedron Letters. 1969. — V. 49. — P. 4255−4258.
  107. Hong, T.D. Fluctuating temperature and the longevity of conidia of Metarhizium flavoviride in storage / T.D. Hong, N.E. Jenkins, R.H. Ellis // Biocontrol Sci. Technol. 1999. — V. 9. — P. 165−176.
  108. Hu, Q.B. Investigation of destruxin A and B from 80 Metarhizium strains in China, and the optimization of cultural conditions for the strain MaQlO / Q.B. Hu, S.X. Ren, J.H. Wu, J.M. Chang, P.D. Musa // Toxicon. 2006. — V. 48. — № 5. — P. 491−498.
  109. Huber, J. Untersuchungen zur Physiologic insektentotenden Pilze / J. Huber // Arch. Mikrobiol, -1958. P. 257−276.
  110. Jackson, A.M. Effects of temperature, pH and water potential on growth of four fungi with disease biocontrol potential / A.M. Jackson, J.M. Whipps, J.M. Lynch // Microbiol. Biotechnol. 1991. — V. 7. — P. 494−501.
  111. Jackson, C.W. Traits associated with virulence to the aphid Mcicrosiphoniella sanborni in eighteen isolates of Verticillium lecanii / C.W. Jackson, J.B. Heale, R.A. Hall //Ann Appl. Biol. 1985. — V. 106. — P. 39−48.
  112. Jackson, M.A. Liquid culture production of dedication tolerant blastospores of the bioinsecticidal fungus Paecilomyces fumosoroseus / M.A. Jackson, M.R. McGuire, L.A. Lacey, S.P. Wraight//Mycol. Res. 1997. -V. 101. — P. 35−41.
  113. James, R.R. Effect of exogenous nutrients on conidial germination and virulence against the silverleaf whitefly for two Hyphomycetes / R.R. James // Invert. Pathol. 2001. — V. 77. — N.2. — P. 99−107.
  114. Jenkins, N.E. Development of mass production technology for aerial conidia for use as mycopesticides / N.E. Jenkins, G. Heviefo, J. Langewald, A.J. Cherry, C.J. Lomer // Biocontrol News and Information. 1998. — V. 19. — № 1. — P. 21−31.
  115. Jenkins, N.E. Methods for mass production of microbial control agents of grasshoppers and locusts / N.E. Jenkins, M.S. Goettel // Memoirs Entomol. Canad. Soc. -1997.-V. 171.-P. 37−48.
  116. Jenkins, N.E. Development of mass production technology for aerial conidia for use as mycopesticides / N.E. Jenkins, G. Heviefo, J. Langewald, A.J. Cherry, C.J. Lomer // Biocontrol News Info. 1998. — V. 19. — P. 21−31.
  117. Jenkins, N.E. Effects of formulation and Appl. method on the efficacy of aerial and submerged conidia of Metarhizium flavoviride for locust and grasshopper control / N.E. Jenkins, M.B. Thomas // Pesticide Sci. 1996. — V. 46. — P. 299−306.
  118. Kirk P.M. Dictionary of the Fungi / P.M. Kirk, P.F. Cannon, D.W. Minter, J.A. Stalners // 10th ed. Wallingford. 2008. — P. 771.
  119. Kmitowa, K. The effect of different amounts of nitrogenous compounds in the culture medium on the growth and pathogenicity of entomopathogenic fungi / K. Kmitowa // Bull. Acad. Pol. Sci. 1979. — V. 2. — N. 27. — P. 949−952.
  120. Kooyman, C. Operational scale application of entomopathogenic fungi for control of Sahelian grasshoppers / C. Kooyman, R.P. Bateman, J. Langewald, C.J. Lomer // Proc. Royal Society. 1997. — V. 264. — P. 541−546.
  121. Kosir, J.M. Genomic analysis of a virulent and a less virulent strain of the entomopathogenic fungus / J.M. Kosir, J.M. MacPherson, G.G. Khachatourians // Can. Microbiol. 1991. — V. 37. — N 7. — P. 534.
  122. , S.B. / S.B. Krasnoff, S. Gupta, R.J. Leger, J.A. Renwick, D.W. Roberts // Invertebr. Pathol. 1991. — V 58. — P. 180−188.
  123. Langewald, J. Prospects for microbial control in West Africa / J. Langewald, A. Cherry // Biocontrol News Info. 2000. — V. 21. — P. 51−56.
  124. Leger R.J. Cuticle degrading enzymes of entomopathogenic fungi: synthesis in culture on cuticle / R.J. Leger, A.K. Chamley, R.M. Cooper // Invert. Patrol. — 1986. -V. 48. -N. 1. — P. 85−89.
  125. Leger, R.J. Role of extracellular chymoelastase in the virulence of Metarhizium anisopliae for Manduca sexta / R.J. Leger, P.K. Durrands, A.K. Charnley, R.M. Cooper // Invert. Pathol. 1988. — V. 52. — N. 2. — P. 285−293.
  126. Leger, R.J. Entomopatogenic isolates of Metarhizium anisopliae, Beauveria bassiana and Aspergillus flavus product multiple extracellular chitinase isoensymes / R.J. Leger, R.C. Staples // Invert. Pathol. 1993. — V 61. — P. 81
  127. Lockey, K.H. Lipids of the insect cuticle origin, composition and function / K.H. Lockey // Comp. Biochem. Physiol. 1988. — P. 595−602.
  128. Lomer, C.J. Biological control of locusts and grasshoppers / C.J. Lomer, R.P. Bateman, D.L. Johnson, J. Langewald, M.B. Thomas // Ann. Review Entomol. 2001. -V. 46. — P. 667−702.
  129. Lomer, C.J. Development of strategics for the incorporation of microbial pesticides into the integrated management of migratory pests / C.J. Lomer, R.P. Bateman, D. Dent, H. DeGroote // Agricultural and Forest Entomology. 1999. — V. 1. -P. 71.
  130. Lomer, C.J. Field infection of Zonocerus variegatus following Appl. of an oil based formulation of Metarhizium flavoviride conidia / C.J. Lomer, R.P. Bateman, 1. Godonou, D. Kpindou // Biocontrol Sci. Technol. 1993. — V. 3. — P. 337−346.
  131. Magalhaes, B.P. Effects of drying on the survival of conidiosphores of Metarhizium anisopliae var. acridum Driver and Milner / B.P. Magalhaes, D.G. Boucias //Journal of Orthoptera Research. 2004. -№ 13. — P. 155−159.
  132. Maiga, I.H. Pratiques paysannes et utilisation potentielle de Metarhizium flavoviride Gams and Rozsypal en lutte antiacridienne au Niger / l.H. Maiga, O.K. Douro-Kpindou, C.J. Lomer // Insect Sei. and its Appl. 2000. — V. 19. — P. 163−171.
  133. Mohanty, S.S. Induction of chymoelastase (Prl) of Metarhizium anisopliae and its role in causing mortality to mosquito larvae / S.S. Mohanty, K. Raghavendra, A.P. Dash // World J Microbiol Biotechnol. 2008. — V. 24. — № 10. — P. 2283−2288.
  134. Mollier, P. A glycoprotein highly toxic for Galleria mellonella larvae secreted by the Entomopathogenic fungus Beauveria sulfyrescens / P. Mollier, J. Lagnel, B. Foumet, A. Aioun, G. Riba // Invert. Pathol. 1994. — V. 64. — P. 200−207.
  135. Moore, D. Effects of moisture content and temperature on storage of Metarhizium flavoviride conidia / D. Moore, O.K. Douro-Kpindou, N.E. Jenkins, C.J. Lomer // Biocontrol Sei. Technol. 1996. — V. 6. — P. 51 -61.
  136. Moore, D. Effects of rehydration on the conidial viability of Metarhizium flavoviride mycopesticide formulations / D. Moore, J. Langewald, F. Obognon // Biocontrol Sei. Technol. 1997. — V. 7. — P. 87−94.
  137. Morley-Davies, J. Screening of Metarhizium and Beauveria spp. conidia with exposure to simulated sunlight and a range of temperatures / J. Morley-Davies, D. Moore, C. Prior//Mycol. Res. 1996. — V. 100. — № 1. — P. 31−38.
  138. Napolitano, R. Entomopathogenous fungi degrade epicuticular hydrocarbons of Triatoma infestans / R. Napolitano, M.P. Juarez // Arch. Biochem. Biophys. 1997. -V. 311. — N. l.-P. 208.
  139. Ouedraogo, A. Effect of temperature on vegetative growth among isolates of Metarhizium anisopliae and M. flavoviride / A. Ouedraogo, J. Fargues, M.S. Goettel,
  140. C.J. Lomer // Mycopathologia. 1997. — V. 137. — P. 37−43.
  141. Ouedraogo, R.M. Behavioral thermoregulation in the migratory locust: a therapy to overcome fungal infection / R.M. Ouedraogo, M.S. Goettel, J. Brodeur // Oecologia. 2004. — V. 138. — P. 312−319.
  142. Paterson, I.E. Specific induction of a cuticle degrading protease of the insect pathogenic fungus Metarhizium anisopliae / I.E. Paterson, A.K. Charnley, R.M. Cooper, J.M. Clarkson//Microbiology. — 1994. -V. 140. — P. 185−189.
  143. Peczynska-Czoch, W. Formation of beauvericin by selected strains of Beauveria bassiana / W. Peczynska-Czoch, M.J. Urbanczyk, S. Balazy // Archivum immunologiae ettherapiae experimentalis. 1991. — V. 39 (1−2). — P. 175−179.
  144. Pedras M.S.C., Zaharia L.I., Ward D.E. The destruxins: synthesis, biosynthesis, biotransformation, and biological activity / M.S.C. Pedras, L.l. Zaharia,
  145. D.E. Ward // Review Phytochemistry. 2002. — V. 59. — № 6. -P. 579−596.
  146. Pereira, R.M. Alginate and cornstarch mycelial formulations of entomopathogenic fungi, Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae / R.M. Pereira, D.W. Roberts // Econ, Entomol. 1991. — V. 84. — P. 1657−1661.
  147. Pereira, R.M. Dry mycelium preparations of entomopathogenic fungi, Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana / R.M. Pereira, D.W. Roberts // Inver. Pathol. 1990. — V. 56. — P. 39−46.
  148. Quimby, P.C. A simple method for stabilizing and granulating fungi / P.C. Quimby, N.K. Zidack, C.D. Boyette, W.E. Grey // Biocontrol Sci. Technol. 1999. — V 9. — P. 5−8.
  149. Rehner, S.A. Phylogeny and systematics of the anamorphic, entomopathogenic genus Beauveria / S.A. Rehner, A.M. Minnis, Sung Gi-Ho, J.J. Luangsa-ard, L. Devotto, R.A. Humber // Mycologia. -2011. № 103. — P. 1055−1073.
  150. Rhodes, D.J. Formulation of biological control agents / D.J. Rhodes // Exploitation of microorganisms. 1993. — P. 411−439.
  151. Rhodes, D.J. Formulation requirements for biological control agents / D.J. Rhodes // Aspects Appl. Biol. 1990. — V. 24. — P. 145−153.
  152. Robert, A. Acid production by Metarhizium anisopliae: effect on virulence against mosquites and detection of in vitro amylase, protease and lipase activity / A. Robert, K. Messing-Al-Aidroos // Invert. Pathol. 1985. — V. 45. — P. 9−15.
  153. Rombach, M.C. Production of Beauveria bassiana (Deuteromycotina Hyphomycetes) sympoduloconidia in submerged culture / M.C. Rombach // Entomophaga. 1989. -V. 34. -N 1. — P. 45−52.
  154. Rosato, Y.B. Production of extracellular enzymes by isolated of Metarhizium anisopliae / Y.B. Rosato, C.J. Messias, J.L. Azevedo // Invert. Pathol. 1981. — V. 38. -p i
  155. Samsinakova, A. Enzyme activities in certain entomophagous representatives of Deuteromycetes (Moniliales) in relationship to their virulence / A. Samsinakova, S. Misikova // Ceska mycologie. 1973. — V. 27. — N. 1. — P. 55−60.
  156. Shah, P. A. Surveys for fungal pathogens of locusts and grasshoppers in Africa and the Near East / P.A. Shah, C. Kooyman, A. Paraiso // Memoirs Entomol. Soc. Canada. 1997.-V. 171.-P. 27−35.
  157. Shimizu, S. Serology and substrate specificity of extracellular proteases from four species of Entomopathogenic Hyphomycetes / S. Shimizu, Y. Tshuchitani, T. Matsumoto// Invert. Pathol. 1993. — V. 61. — P. 192−195.
  158. St. Leger, R.J. The role of cuticle-degrading proteases in fungal pathogenesis of insects/R.J. St. Leger //Can. J. Bot. 1995. — V. 73. — P. 1119−1125.
  159. Steenberg, T. Entomopathogenic potential of Verticillium and Acremonium species (Deuteromycotina: Hyphomycetes) / T. Steenberg, R.A. Humber // Invert. Pathol. 1999. — V. 73. — N. 3. — P. 309−314.
  160. Stephan, D. Locust control with Metarhizium flavoviride- formulation and Application of blastospores / Insect pathogenes and insect parasitic nematodes / D. Stephan, M. Welling, G. Zimmerman //Bull, IOBC/WPRS. 1996. — V. 19. — N. 9. — P. 232−235.
  161. Sung, G.H. Phylogenetic classification of Cordyceps and the clavicipitaceous fungi / G.-H. Sung, N.L. Hywel-Jones, J.-M. Sung, J.J. Luangsa-ard, B. Shrestha, J.W. Spatafora // Stud. Mycol. 2007. — V. 57. — P. 5−59.
  162. Swanson, D. Economic feasibility of two technologies for production of mycopesticides in Madagascar / D. Swanson // Memoirs Entomol. Canad. Soc. 1997. -V. 171. -P. 101−113.
  163. Takahashi, S. Pyridovericin and pyridomacrolidin: novel metabolites from entomopathogenic fungi Beauveria bassiana / S. Takahashi, N. Kakinuma, K. Uchida, R. Hashimoto // Antibiot. Tokyo. 1998. — V. 51. — N. 6. — P. 596−604.
  164. Thomas, K.C. Production and properties of Beauveria bassiana conidia cultivated in submerged culture / K.C. Thomas, G.G. Khachatourians, W.M. Ingledew // Can. Microbiol. 1986. — V. 33. — P. 12−20.
  165. Thomas, M.B. Experimental studies to evaluate spray Apples of a mycoinsecticide against the rice grasshopper, Hieroglyphus daganensis, in Northern
  166. Benin / M.B. Thomas, S. Blanford, C. Gbongboui, C.J. Lomer // Entomol. Exper. App. -1998.-V. 87.-P. 93−102.
  167. Thomas, M.B. Reduction of feeding by the variegated grasshopper, Zonocerus variegalus, following infection by the fungal pathogen. Metarhizium flavoviride / M.B. Thomas, S. Blanford, C.J. Lomer// Biocontrol Sei. Technol. 1997. — V 7. — P. 327−334.
  168. Thomsen, L. Time-concentration mortality of Pieris brassicae (Lepidoptera: Pieridae) and Agrotis segetum (Lepidoptera: Noctuidae) larvae from different destruxins / L. Thomsen, J. Eilenberg // Environ. Entomol. 2000. — V. 29. — № 5. — P. 1041−1047.
  169. Vey, A. Effect immunodepresseur de toxines fongiques: Inhibition de la reaction d’encapsulement multicellulaire par les destruxines / A. Vey, J.M. Quiot, C. Vago, J. Fargues // C. R. Acad. Sei. 1985. — V. 300. — N. 3. — P. 647.
  170. Vey, A. Toxines insecticides issues de champignons entomopathogenes. Etat actuel des conaissances dutilsation de leurs activites / A. Vey, G. Riba // C. R. Acad. Agr. 1989. — V.75. — N. 6. — P. 143−149.
  171. Vilcinskas, A. Effect of the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana on the humoral immune response of Galleria mellonella larvae (Lepidoptera: Pyralidae) / A. Vilcinskas, V. Matha // European Journal of Enthomology. 1997. — V. 94. — P. 461−472.
  172. Wang, C.' Detection and characterisation of prl virulent gene deficiencies in the insect pathogenic fungus Metarhizium anisopliae / C. Wang, M.A. Typas, T.M. Butt //FEMS Microbiology Letters. 2002. — V. 213. — № 2. — P. 251−255.
  173. Welling, M. Metarhizium spp. isolates from Madagascar Morphology and effect of high temperature on growth and infectivity to the migratory locust / M. Welling, G. Nachtigall, G. Zimmermann //Entomophaga. 1994. — V. 39. — P. 351−361
  174. West, E.J. In vitro toxin production by the fungus Beauveria bassiana and bioassay in greater wax moth larvae / E.J. West, J.D. Briggs // Econom. Entomol. 1968. — V. 61. -N. 3. — P. 684−689.
  175. Wood, S.N. Space, time and persistence of virulent pathogens / S.N. Wood, M.B. Thomas // Proceed. Royal Soc. 1996. — V. 263. — P. 673.
  176. Wraight, S.P. Fungi // Field manual of techniques in invertebrate pathology. Application and evaluation of pathogens for control of insects and other invertebrate pests / S.P. Wraight, G.D. Inglis, M.S. Goettel // Springer. 2007. — P. 223−248.
  177. Zacharuk, R.Y. Fine structure of the fungus Metarhizium anisopliae infecting three species of larvae Elateridae (Coleoptera). Conidial germ tubes and appressoria / R.Y. Zacharuk // Invert. Pathol. 1970. — V. 15. — N. 3. — P. 81−91.
  178. Zimmermann, G. The entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae and its potential as a biocontrol agent / G. Zimmermann // Pesticide Sci. 1993. — V. 37. — P. 375−379.
  179. Zocher, R. Biosintesis of cyclosporin A / R. Zocher, N. Madry, H. Peters, H. Kleinkhauf // Phitochemestry. 1984. — V.23. — P. 540−551.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!