Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Эффективность серологических, молекулярных и индикаторных методов диагностики вирусов косточковых культур

Диссертация: Эффективность серологических, молекулярных и индикаторных методов диагностики вирусов косточковых культур
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Определены наилучшие параметры процедуры выполнения ПЦР. Установлена оптимальная масса навески растительного образца (100 мг), соотношение навески к лизирующему буферу (от 1:10 до 1:20 в зависимости от видовых особенностей культуры), вид антиоксиданта. Использование в качестве антиоксиданта гидроксипроизводного бензойной кислоты в количестве 20−30 мг/образец на этапе гомогенизации улучшает… Читать ещё >

Эффективность серологических, молекулярных и индикаторных методов диагностики вирусов косточковых культур (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Цель и задачи исследований
  • Научная новизна результатов исследований
  • Практическая значимость и реализация результатов исследований
  • Основные положения, выставляемые на защиту
  • Предмет исследований
  • Апробация работы
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Видовой состав вирусов косточковых культур в Европейской части России
    • 1. 2. Основные вирусы, поражающие косточковые культуры
    • 1. 3. Методы диагностики вирусов косточковых культур
      • 1. 3. 1. Иммуноферментный анализ
      • 1. 3. 2. Полимеразная цепная реакция (ПЦР)
        • 1. 3. 2. 1. Особенности метода полимеразной цепной реакции
        • 1. 3. 2. 2. Применение ПЦР-теста для диагностики вирусов косточковых культур
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ, МЕТОДЫ И ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Время и место проведения исследований
    • 2. 2. Объекты исследований и их характеристика
    • 2. 3. Методика маршрутных обследований и тестирования растительных образцов на наличие вирусов
      • 2. 3. 1. Методика проведения ИФА
      • 2. 3. 2. Методика выполнения ПЦР
        • 2. 3. 2. 1. ОТ-ПЦР
        • 2. 3. 2. 2. ОТ-ПЦР в реальном времени
      • 2. 3. 3. Тестирование на древесных индикаторах
    • 2. 4. Элементы учета и наблюдений
    • 2. 5. Методы статистической обработки данных
    • 2. 6. Расчет экономической эффективности
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Изучение распространенности и вредоносности вирусов на косточковых культурах
    • 3. 2. Сравнительная оценка эффективности выявления вируса
  • PPV с использованием методов ИФА и ПЦР
    • 3. 2. 1. Эффективность выявления вируса PPV в зависимости от тестируемого органа растения
    • 3. 2. 2. Эффективность тестирования в зависимости от длительности хранения образцов листьев
    • 3. 2. 3. Диагностика вируса PPV в пробирочных и адаптированных к нестерильным условиям растениях сливы
    • 3. 3. Совершенствование метода экстракции РЕК вируса из растительных образцов
    • 3. 4. Эффективность выявления вируса шарки сливы на древесных индикаторах вишни войлочной в зависимости от способа прививки
  • Глава 4. ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА РАЗЛИЧНЫХ МЕТОДОВ ДИАГНОСТИКИ
  • ВЫВОДЫ
  • РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ

Вирусные и фитоплазменные заболевания вследствие хронического характера и высокой вредоносности считаются одним из лимитирующих факторов повышения урожайности косточковых культур. Наиболее вредоносным вирусом на этих культурах является потивирус шарки сливы (PPV), вызывающий существенное снижение урожая в результате преждевременного опадения плодов и снижения их вкусовых и товарных качеств. В середине прошлого века шарка едва не привела к вырождению культуры сливы в Югославии и Болгарии и вызвала необходимость вырубки сотен тысяч деревьев (Christoff, 1947; Jordovic, 1963). В условиях Молдовы потери урожая у восприимчивых к шарке сортов сливы составляют 70% и более (Вердеревская, Маринеску, 1985). В бывшей Чехословакии заражение сливовых садов шаркой привело к снижению их продуктивности на 85% (Blattny, Heger, 1965), а в Польше — на 50% (Zawadzka, 1978). У больных деревьев от 20 до 100% плодов преждевременно опадает, а вес оставшихся снижается в среднем на 20% (Sutic et al., 1971; Zawadzka, Smolarz, 1978). Кроме того, в уцелевших плодах снижается содержание Сахаров (до 25%), а кислотность повышается, что существенно снижает их вкусовые качества и пригодность для переработки (Jordovic et al., 1971).

В 80-е годы прошлого века в европейских странах были выведены устойчивые и толерантные к шарке сорта сливы, персика и абрикоса (Kegler et al., 1986), и внедрена система сертификации посадочного материала, что позволило снизить распространенность и вредоносность наиболее часто встречающегося серотипа D PPV. Однако повсеместно было констатировано быстрое распространение высокопатогенного серотипа М этого вируса (Nemeth, 1994; Roy, Smith, 1994; Topchiiska, 1997).

Высокой вредоносностью для косточковых культур характеризуются также иларвирусы некротической кольцевой пятнистости косточковых (PNRSV) и карликовости сливы (PDV), вызывающие разнообразные болезни. Вирус PNRSV вызывает такие болезни, как некротическая кольцевая пятнистость вишни и черешни, кольцевая пятнистость и розеточность персика, кольцевая пятнистость сливы и другие. Так, в Англии в результате заражения PNRSV снижение продуктивности деревьев сливы составляло 13−50% в зависимости от чувствительности сорта и штамма вируса (Posnette et al., 1981). Во Франции этот вирус вызывал уменьшение диаметра скелетных ветвей сливы до 58%, а урожайности — в среднем на 20% (Desvignes, Воуе, 1989). В средиземноморском регионе распространенность вируса PNRSV на сливе составила 27,1%, PDV — 15,1%, PPV — 35,7%, ACLSV — 9,4%. Насаждения вишни были заражены PNRSV на 48,4%, PDV-15,1%, ACLSV-21% (Myrta et al., 2003).

Вирус PDV вызывает высоковредоносную желтуху вишни, хлоротическую кольцевую пятнистость черешни, скручивание • листьев и карликовость сливы, гуммоз абрикоса, зеленую карликовость персика и другие болезни (Вердеревская, Маринеску, 1985).

Вирус PDV приводит к снижению урожайности черешни на 29−48%, сливы — на 58−99% в результате преждевременного опадения плодов (Kralikova, 1963), а вишни после поражения желтухой — на 50% и более (Fulton et al., 1981).

Некоторые штаммы триховируса хлоротической пятнистости листьев яблони (ACLSV) вызывают на сливе и абрикосе растрескивание коры и псевдошарку (Kegler et al., 1964; Dunez, 1986). В первом случае развиваются глубокие и прогрессирующие трещины, что приводит к отмиранию ветвей. При поражении псевдошаркой плоды имеют неправильную форму, различные деформации и преждевременно опадают.

Основным направлением борьбы с этими заболеваниями является перевод питомниководства на безвирусную основу и введение системы сертификации посадочного материала, что уже осуществлено во всех странах с развитым садоводством.

В России в 70−80-е годы были достигнуты существенные успехи в получении и размножении безвирусного посадочного материала косточковых культур, но в настоящее время это направление питомниководства переживает существенный упадок. В немалой степени это обусловлено финансовыми проблемами и трудоемкостью технологии получения безвирусных клонов. В связи с разработкой программы по развитию питомниководства в РФ возникает необходимость увеличения выпуска оздоровленных растений.

Ключевым элементом любой технологии получения здоровых клонов является диагностика вирусной инфекции. В этом плане важным шагом стало внедрение метода иммуноферментного анализа — ИФА (Clark, Adams, 1977), который позволяет в краткие сроки (2−3 дня) в лабораторных условиях осуществлять тестирование нескольких сотен образцов. Внедрение данного метода позволило практически отказаться от использования травянистых растений-индикаторов.

Однако получение диагностических сывороток возможно далеко не ко всем вирусам и фитоплазмам плодовых культур, а сам метод ИФА имеет недостаточную чувствительность для выявления вирусов в конце вегетации и в состоянии покоя растений, в тканях коры и древесины, а также в культурах in vitro растений. Как правило, использование метода ИФА ограничивается двумя месяцами после начала вегетации растений.

Указанные недостатки позволяют преодолеть методы молекулярной диагностики с использованием полимеразной цепной реакции (ПЦР), являющиеся наиболее современными технологиями диагностики патогенов (Wetzel et al., 1991). Преимуществами ПЦР-теста для выявления фитовирусов являются чрезвычайно высокие специфичность и чувствительность, что теоретически позволяет выявлять единичные молекулы-мишени из смеси многих других. Проведение анализа возможно в течение одного рабочего дня.

ПЦР-тесты для диагностики различных патогенов плодовых культур (вирусов, вироидов, фитоплазм, бактерий, грибов) активно разрабатываются и внедряются во всем мире. В России в этом плане было проведено крайне ограниченное число исследований по немногочисленным объектам (Филимонова и др., 2000; Добржанская и др., 2001), вследствие чего ПЦР-тесты по-прежнему слабо применяются в практике диагностической работы.

Цель и задачи исследований.

Целью исследований является совершенствование и сравнительная оценка серологических, молекулярных и индикаторных методов диагностики вирусных болезней косточковых культур.

В конкретные задачи исследований входило следующее:

1. Изучить распространенность вирусных болезней в условиях Московской области.

2. Усовершенствовать методику полимеразной цепной реакции для диагностики основных вирусов косточковых культур.

3. Дать сравнительную оценку эффективности различных модификаций ПЦР-теста при выявлении вирусов косточковых культур.

4. Оценить эффективность серологических, молекулярных и индикаторных методов диагностики вирусов косточковых культур для ускоренного выделения свободных от основных вирусов клонов.

Методология исследований заключается в поиске и разработке оптимальных методов диагностики в зависимости от поставленных вирусологических задач по мониторингу фитосанитарного состояния насаждений и получению свободного от основных вирусов посадочного материала.

Научная новизна результатов исследований.

Впервые в условиях Московской области обнаружено опасное заболевание косточковых культур — псевдошарка, вызываемая триховирусом хлоротической пятнистости листьев яблони и приводящая к появлению на плодах симптомов деформации и вдавленных пятен. Наличие данного вируса в тканях растений доказано методами ИФА и ОТ-ПЦР.

Разработан способ экстракции РНК вируса из растительных образцов различного происхождения с добавлением в лизирующий буфер гидроксипроизводного бензойной кислоты. На разработанный способ подана заявка на патент № 2 008 152 268 от 30.12.2008 г.

Определены оптимальные параметры выполнения ОТ-ПЦР и ПЦР в реальном времени. Установлена высокая чувствительность молекулярных методов при тестировании тканей покоящихся растений и растений in vitro.

При тестировании на древесных индикаторах предложен способ инокуляции щитком с древесиной, не уступающий по эффективности стандартному способу.

Практическая значимость и реализация результатов исследований.

Предложен новый высокоэффективный способ экстракции РНК вирусов из тканей косточковых культур для последующей диагностики методом полимеразной цепной реакции, обеспечивающий надежную диагностику вирусной инфекции.

Разработанный способ диагностики внедрен в условиях лаборатории вирусологии ГНУ ВСТИСП Россельхозакадемии и прошел успешные испытания в фирме «Агродиагностика», что позволило повысить эффективность выявления вирусов на 25%.

Основные положения, выставляемые на защиту:

1.. Подтверждение наличия в насаждениях косточковых культур в условиях Московской области вредоносного заболеванияпсевдошарки;

2. Совершенствование молекулярных методов диагностики (ОТ-ПЦР и ПЦР в реальном времени) вирусов на косточковых культурах;

3. Сравнительная оценка эффективности диагностики вирусов косточковых культур методами ИФА, ПЦР и на древесных индикаторах.

Предмет исследований.

Предметом исследований является определение эффективности диагностики вредоносных вирусов косточковых культур в зависимости от используемого метода, а также закономерности транслокации вирусов в различных органах и частях растения.

Апробация работы.

Основные материалы диссертации доложены на VII молодежной научной конференции «Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии» в РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева (4 апреля 2007 г.), Всероссийской научно-практической конференции «Молодые ученые — садоводству России в XXI веке» (г. Москва, 11−12 октября 2007 г.) и конференции «Инновационные подходы к обеспечению стабильной продуктивности косточковых культур» (г. Москва, 17−18 июля 2008 г.).

Публикации.

Основные результаты исследований по диссертации изложены в 7 научных статьях, в том числе 5 — в рецензируемых научных журналах.

выводы.

1. Установлена распространенность основных вирусов на косточковых культурах в обследованных насаждениях Московской области: иларвирус некротической кольцевой пятнистости косточковых — 51%, неповирус скручивания листьев черешни — 47%, потивирус шарки сливы — 31%, иларвирус карликовости сливы — 24%, триховирус хлоротической пятнистости листьев яблони — 22% к общему числу деревьев сливы и алычи.

2. На деревьях сливы и алычи с симптомами деформации и вдавленных пятен на плодах впервые в условиях Московской области осуществлена идентификация триховируса хлоротической пятнистости листьев яблони, способного вызывать опасное заболевание косточковых культур — псевдошарку. Наличие данного патогена доказано методами ИФА и ОТ-ПЦР.

3. Усовершенствованы методы ОТ-ПЦР и ПЦР в реальном времени для диагностики вирусов в различных частях и органах косточковых культур: листьях, плодах, коре и древесине побегов. Для различных культур рекомендованы оптимальные для тестирования на вирусы органы. При выполнении ПЦР в период покоя растений лучшие результаты обеспечивает использование в качестве тест-образцов древесины или смешанных образцов из коры и древесины.

4. В период покоя метод ПЦР позволяет с высокой степенью достоверности осуществлять тестирование косточковых культур на наличие вируса шарки сливы, тогда как метод ИФА в данный период не выявляет вирусную инфекцию.

5. Длительность хранения образцов листьев при низких температурах оказывает влияние на результат ПЦР. Срок хранения в течение одного месяца обеспечивает успешное получение электрофореграмм продуктов амплификации. Листья, хранящиеся при -20 °С более одного месяца, мало пригодны для тестирования методом ПЦР, поскольку у большинства образцов, за исключением персика, имеет место элиминация вируса шарки сливы.

Выделенная РНК вируса хорошо сохраняет антигенные свойства при -20 °С в течение 2 месяцев.

6. Методы ОТ-ПЦР и ПЦР в реальном времени при тестировании растений in vitro обеспечивают получение надежных результатов по диагностике вирусов в отличие от метода ИФА.

7. Определены наилучшие параметры процедуры выполнения ПЦР. Установлена оптимальная масса навески растительного образца (100 мг), соотношение навески к лизирующему буферу (от 1:10 до 1:20 в зависимости от видовых особенностей культуры), вид антиоксиданта. Использование в качестве антиоксиданта гидроксипроизводного бензойной кислоты в количестве 20−30 мг/образец на этапе гомогенизации улучшает экстракцию вирусной РНК и повышает эффективность выявления вирусов.

8. Инокуляция древесных индикаторов вишни войлочной щитком и щитком с древесиной обеспечивает одинаковую эффективность выявления вируса шарки сливы (100%-ое заражение) на основании визуальной оценки симптомов. Накопление вируса на начальном этапе заражения происходит быстрее при инокуляции щитком.

9. Подтверждена неравномерность распределения вируса PPV по тканям растений путем использования ИФА и ПЦР. С применением метода ПЦР в реальном времени установлено, что вирус шарки сливы спустя 10 дней после инокуляции распространяется в тканях древесных индикаторов и размножается в количестве, достаточном для его идентификации молекулярным методом.

10. Себестоимость тестирования одного образца на конкретный вид вируса зависит от метода диагностики. Затраты на тестирование образца методами ОТ-ПЦР составляют 509−577 руб, ПЦР в реальном времени — 658−680 руб, методом ИФА — 345 руб. Метод диагностики косточковых культур на индикаторах вишни войлочной является наиболее затратным (1402 руб/ образец). Из изученных методов наиболее надежным является ПЦР.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ.

1. Усовершенствованные методы ОТ-ПЦР и ПЦР в реальном времени рекомендуется применять в лабораториях вирусологии при диагностике косточковых культур на вирусы в процессе фитосанитарного мониторинга насаждений и производства оздоровленного посадочного материала.

2. Методы ПЦР следует использовать при тестировании на вирусы частей и органов вегетирующих и находящихся в состоянии покоя растений, а также растений in vitro. При тестировании растений в состоянии покоя следует использовать древесину или смешанный образец из коры и древесины.

3. Выполнение экстракции РНК рекомендуется осуществлять по разработанной нами методике, основанной на модифицированном способе сорбции вирусных частиц на препарате силика, с добавлением в лизирующий буфер гидроксипроизводного бензойной кислоты в количестве 20−30 мг/образец. Для экстракции следует брать навеску растительного образца в количестве 100 мг и устанавливать соотношение массы навески к объему буфера от 1:10 для вишни до 1:20 для сливы.

4. Растительные образцы, предназначенные для тестирования методами ПЦР, допускается хранить при температуре -20°С в течение 1 месяца. Выделенную РНК можно хранить при той же температуре в течение 2 месяцев.

5. Тестирование косточковых культур на древесных индикаторах вишни войлочной можно осуществлять способами инокуляции щитком или щитком с древесиной.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , И.Т. Оспа слив в СССР и меры борьбы с ней / И. Т. Абрамова / Автореферат дис. канд. биол. наук. Л., 1970. — 22 с.
  2. , Н.Д. Разработка современных иммунологических методов диагностики вируса шарки сливы / Н. Д. Билкей /Автореферат дис. канд. биол. наук. Прилуки, 1992. — 22 с.
  3. , О.О. Система оздоровления земляники садовой от вирусов / О.О. Белошапкина// Дисс. докт. с.-х. наук. М., 2006. — 370 с.
  4. , Л.Л. Изучение восприимчивости различных сортов сливы к вирусу шарки / Л. Л. Бунцевич // Плодоводство и ягодоводство России / Сб. науч. работ ВСТИСП. 2004. — Т. XI. — С. 361−364.
  5. , Т.Д. Вирусные и микоплазменные заболевания плодовых культур и разработка мер борьбы с ними в Молдавской ССР / Т. Д. Вердеревская // Автореферат дис. доктора биол. наук. — Кишинев, 1973. -42 с.
  6. , Т.Д. Вирусные и микоплазменные заболевания плодовых культур и винограда в Молдавии / Т. Д. Вердеревская, В. Т. Маринеску. -Кишинев: Штиинца, 1985. 311с.
  7. , Е.О. Диагностика вируса шарки сливы методом полимеразной цепной реакции / Е. О. Добржанская, Ю. Н. Приходько, С. Н. Чирков // Доклады РАСХН. 2001. — № 2. — С. 11−12.
  8. , Б.А. Методика полевого опыта (с основами статистической обработки результатов исследований) / Б. А. Доспехов // Изд. 5 дополненное и переработанное-М.: Агропромиздат, 1985.-351 с.
  9. , Ю.А. Изучение вируса шарки в пораженных клетках растений-хозяев методом электронной микроскопии / Ю. А. Калашян // Вирусные болезни плодово-ягодных культур и винограда в Молдавии. Кишинев, 1973.-С. 17−21.
  10. Ю.Калашян, Ю. А. Изучение вирусов шарки сливы и хлоротической пятнистости листьев яблони на ультратонких срезах и разработка быстрыхметодов их диагностики / Ю. А. Калашян / Автореферат дис. канд. с.-х. наук. Кишинев, 1978. — 19 с.
  11. , М.А. Вирусные и микоплазменные болезни древесных растений / М. А Келдыш, Ю. И. Помазков М.: Наука. 1985. — 133 с.
  12. , А.А. Таксономия и классификация вироидов / А. А. Колонцов, В. Г. Заец // Агро XXI. 2006. — № 1−3. — С. 30−31.
  13. , А.А. Вироиды, их признаки и вредоносность / А. А. Колонцов, В. Г. Заец // Агро XXI. 2006. — № 7−9. — С. 19−22.
  14. М.Литвиненко, И. С. Электронная микроскопия возбудителя оспы сливы / И. С. Литвиненко, И. Т. Абрамова, Ю. Н. Помазков // VI Всесоюзное совещание по вирусным болезням растений. М., 1971 — 185 с.
  15. Лахматова (Балашова), И. Т. Устойчивость сливы к вирусу шарки / И. Т. Лахматова (Балашова) // Автореф. дис. докт. биол. наук. М., 1997. — 48 с.
  16. , К.В. Вирусные болезни косточковых пород в Европейской части России / К. В. Метлицкая // Плодоводство и ягодоводство России: Сб. науч. раб. ВСТИСП. Т. VII. — 2000. — С. 237−242.
  17. , К.В. Диагностика и рапространение вирусных болезней косточковых пород в Европейской части России / К. В. Метлицкая, Н. А. Холод // Тезисы докладов ВИГИС. 2001. — С. 111−113.
  18. Методические рекомендации по определению экономической эффективности научных достижений в садоводстве // Сост. А. С. Косякин и др.- М.: ВСТИСП, 2005.- 111 с.
  19. , Ю.И. Вирусные болезни плодовых и ягодных культур в Нечерноземной зоне / И. Ю. Помазков / Автореферат дис. докт. с.-х. наук. М., 1975. — 34 с.
  20. ПЦР 2002.- http://molbiol.ru.
  21. , Е.М. Состояние насаждений вишни и сливы в ЦЧР и выращивание безвирусного посадочного материала / Е. М. Цуканова / Автореферат дис. канд. с.-х. наук. — Мичуринск, 1998. — 25 с.
  22. Acuna, R. Outbreaks of plum pox virus in Chile / R. Acuna // Abst. EPPO Conf. on Plum Pox. 1993. — P.5−8.
  23. Adams, A.N. The detection of plum pox virus in Prunus species by enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) / A.N. Adams // Ann. Appl. Biol. 1978. -V. 90.-P. 215−221.
  24. Albrechtova, L. Purification of the sharka virus for production of antisera useful for the ELISA method / L. Albrechtova, L. Holubcova, M. Jokej // Ochrana Rostlin. 1986 — № 22. — P. 161−163.
  25. Atanasoff, D. Plum pox: A new virus disease / D. Atanasoff // Yearbook Univ. Sofia. 1932.-V. 11.-P. 49−69.
  26. Atanasoff, D. Virus diseases of plants: a bibliography / D. Atanasoff // Houdojnik Printing Co. Sofia. 1934. — 219 p.
  27. Atanasoff, D. Mosaic of stone fruits / D. Atanasoff // Phytopath. Zeitschrift. -1935.-V. 8.-P. 259−284.
  28. Baumann, G. Wichtige Viruskrankheiten des Kern- und Steinobstes /G. Baumann // Erwerbsobstbau. 1972. — № 14. — P. 177−198.
  29. Blattny, C. Some remarks on the economical importance of sharka disease in Czechoslovakia / C. Blattny, M. Heger // Zastita Bilja. 1965. — V. 16. — P. 417 418.
  30. Breyel, E. Isolation of dsRNA from plum pox virus infected plant tissue / E. Breyel, E. Maiss, R. Casper, F. El Ouaghlidi // Acta Hort. № 193. — P. 167−172.
  31. Cadman, C.H. Affinities of viruses infecting fruit trees and raspberry / C.H. Cadman // Plant Dis. Rep. 1963. — Vol. 47. — P. 459−463.
  32. Cambra, M. Use of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for virus detection on stone fruit trees in Spain / M. Cambra, G. Llacer, C. Perez de Sanroman //Acta Hort.- 1983. № 130.-P. 145−150.
  33. Cambra, M. Translocation of chlorotic leafspot and prunus necrotic ringspot viruses in apricot and peach seedlings / M. Cambra, J. Llacer, J. Aramburu, A. Lavina // Acta Hort. 1986. — № 193 — P. 233−240.
  34. Cambra, M. Detection of plum pox potyvirus using monoclonal antibodies to structural and non-structural proteins / M. Cambra, M. Asensio, M.T. Gorris, E.
  35. Perez, E. Camarasa, J. Garcia, J.J. Moya, D. Lopez-Abella, C. Vela, A. Sanz / Bulletin OEPP / EPPO Bulletin. 1994. — V. 24. — P. 569−577.
  36. Cambra, M. Detection of Prunus viruses by print-capture PCR / M. Cambra, A. Olmos, T. Candresse, M.T. Corris // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin. 1997. -V. 27.-№ 4.-P. 535−537.
  37. Candresse, T Analysis of plum pox virus variability and development of strain specific PCR assays / T. Candresse, G. Macquaire, M. Lanneau, M. Bousalem, J. Dunez, L. Quiot-Douine, J.B. Quiot / Acta Hort. 1995. — № 386 — P. 357−369.
  38. Candresse, T. Comparison of monoclonal antibodies and polymerase chain reaction assays for the typing of isolates belonging to the M and D serotypes of plum pox potyvirus / T. Candresse, M. Cambra, S. Dallot // Phytopath. 1998. -№ 88.-P. 198−204.
  39. Candresse, T. PCR based techniques for the detection of plant viruses and viroids / M. Lanneau, F. Revers, S. Kofalvi and G. Macquaire // Acta Hort. 2000. -№ 530-P. 61−67.
  40. Casper, R. Serodiagnosis of plum pox virus / R. Casper // Acta Hort. 1975. -№ 44.-P. 171−172.
  41. Christoff, A. Virus diseases of the genus Prunus in Bulgaria / Phytopath. Z. -1938.-№ 11.-P. 360−422.
  42. Christoff, A. Izv. na Kamarata na narodnata kultura /A.Christoff // Biologija, zemedelje I lesovodstvo. 1947. — № 1. — P. 261−296.
  43. Clark, M.F. The detection of plum pox and other viruses in woody plants by enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) / M.F. Clark, A.N. Adams, J.M. Thresh, R. Casper // Acta Hort. — 1976. — № 67. — P. 51−57.
  44. Clark, M.F. Characterization of the microplate of enzyme linked immunosorbent assay for detection of plant viruses / M.F. Clark, A.N. Adams // J.Gen.Virol. -1977. — Vol. 34. — P. 475−483.
  45. Coman, T. Transmission de la sharka par le pollen et par les graines / T. Coman, V. Cocin // Bull, d’Information Sharka. 1976. — № 2. — P. 15−21.
  46. Crescenzi, A. Infenzioni di sharka su ciliegio doice in Italia meridionale / A. Crescenzi, M. Nuzzaci, L. Levy, P. Piazzolla, A. Hadidi // Inform. Agrar. 1994. -V. 34.-P. 73−75.
  47. Crescenzi, A. Plum pox virus (PPV) on sweet cherry / A. Crescenzi, M. Nuzzaci, P. Piazzolla, A. Hadidi // Acta Hort. 1995. — № 386. — P. 219−225.
  48. Crescenzi, A. Further characterization of the sweet cherry isolate of-plum pox potyvirus / A. Crescenzi, L. d’Aquino, S. Comes, M. Nuzzaci, P. Piazzolla, A. Hadidi // Proceedings of the Middle European Meeting on Plum Pox. Budapest, 1996.-P. 99- 103.
  49. Cropley, К Further studies of Euro-pean rasp, leaf and leaf roll diseases of cherry trees / R. Cropley // Ann. Appl. Biol. 1964. — № 53. — P. 333−341.
  50. Cropley, R. The identification of plum pox (sharka) virus in England / R. Cropley // Plant Pathology. 1968. — V. 17. — P. 66−70.
  51. Demeke, Т. The effects of plant polysacharide and buffer additives on PCR / T. Demeke, R.P.Adams // Biotechniques. 1992. — Vol. 12. — P. 332 — 334.
  52. Desvignes, J. C. Different diseases caused by the chlorotic leaf spot virus on the fruit trees / J.C. Desvignes, R. Boye // Acta Hort. 1989 — № 235. — P. 31−38.
  53. Detienne, G. Use and versatility of the immunoenzymatic ELISA procedure in the detection of diffferent strains of apple chlorotic leaf spot virus / G. Detienne, R. Delibos, J. Dunes // Acta Phytopath. Acad. Sci. Hung. 1980. — Vol. 15. -P. 39−45.
  54. Dosba, F. Experimental transmission of plum pox virus (PPV) to Prunus mahaleb and Prunus avium / F. Dosba, P. Maison, M. Lansac, G. Massonie // J. Phytopathology. 1987. — Vol. 120. — P. 199−204.
  55. Dulic-Marcovic, J. An experiment with plum pox virus transmission by apricot and peach seed / J. Dulic-Marcovic, M. Rancovic // Proceeding of the Midde European Metting on Plum Pox. Budapest, 1997. — P. 117−119.
  56. Dulic, J. Outbreak of plum pox virus on peach in Yugoslavia / J. Dulic, A. Saric // Acta Hort. 1986. — № 193. — P. 161−165.
  57. Dunez, J. Variability of symptoms induced by the apple chlorotic leaf spot (CLSV) A type of CLSV probably responsible for bark split disease of prune trees / J. Dunez, C. Marenaud, R. Delbos, M. Lansac // Plant Dis. Rep. 1972. — №> 56. -P. 293−295.
  58. Dunez, J. Bark split disease of prune trees and its association with strains of Apple Chlorotic Leaf Spot / J. Dunez, C. Marenaud, and R. Delbos // Acta Hort. -1975. — № 44. P.81−92.
  59. Dunez, J. Application des techniques enzymatiques a la detection de certains vims phytopathogenes des vegetaux. La methode ELISA / J. Dunez // Ann.Phytopath. 1977. — Vol. 9. — P. 219−221.
  60. Dunez, J. Preliminary observation on virus and virus- like diseases of stone-fruit trees in the Mediterranean and Near East contries / J. Dunez // FAO Plant Protection Bulletin. 1986. — V. 34. — № 1. — P. 43−48.
  61. Dunez, J. Plum pox: advances in research of the disease and its causal agents, possible means of control / J. Dunez, M. Ravelonandro, T. Candresse // Bulletin OEPP / EPPO Bulletin. 1994. — V. 24. — P. 537−542.
  62. EPPO, 1968. Rapport de la Conference internationale sur la sharka du prunier // EPPO Bulletin. 1968. — № 44. — 50 s.
  63. EPPO, 1974. Progres realises dans la connaissance de la sharka // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin. 1974. — V. 4. — P. 1 — 125.
  64. Eynard, A. Test for pollen and seed transmission of plum pox virus (sharka) in two apricot cultivars / A. Eynard, P. Roggero, R. Lenzi, M. Conti, R.G. Milne // Adv. Hort. Sci. 1991. — V. 5. — P. 96−98.
  65. Festic, H. Prunus mahaleb novi domacini virusa sarka u prirody / H. Festic // Micribiologia. 1973. — № 1. — P. 7−30.
  66. Festic, H. Inverstigstion of new sharka virus hosts / H. Festic // Acta Hort. -1977.-№ 74.-P. 233−237.
  67. Flegg, C. The detection of apple chlorotic leaf spot virus by a modified procedure of enzyme, linked immunosorbent assay (ELISA) / C. Flegg, M. Clark // Ann. appl. Biol. 1979. — Vol. 91. — P. 61−65.
  68. Fritzsche, R. Transmission of cherry leaf-roll virus by nematodes / R. Fritzsche, H. Kegler // Naturwissenschaft. 1964. — № 51. — P. 299.
  69. Fulton, R.W. Ilarviruses. Handbook of Plant Virus Infections and Comparative Diagnosis. Elsevier, Amsterdam, The Netherlands. / R.W. Fulton. 1981. -P. 377−413.
  70. Gilmer, R.M. Apple chlorotic leaf spot and tobacco mosaic viruses in cherry / R.M. Gilmer //PL. Dis.Report. 1967. — Vol. 51. — P. 823−825.
  71. Gilmer, R.M. Virus diseases and noninfectious disorders of stone fruits in North America / R.M. Gilmer, J.D. Moore, G. Nyland, M.F. Welsh // U.S. Dep. Agric. Agric. Handb. 1976. — 437 p.
  72. Gruntzig, M. Eine verbesserte Methode zur partiellen Reinigung des Scharka-virus der Pflaume (plum pox virus) und die Herstellung Hochtitriger Antiseren / M. Gruntzig //Arch. Phytopathol. Pflanzenschutz. 1981. — V. 16. — P. 279−282.
  73. Gruntzig, M. Untersuchungen zum Nachweis des Scharka-Virus (plum pox virus) in Pflaumenbaumen / M. Gruntzig, E. Fuchs, H. Kegler // Arch. Phytopathol. Pflanzenschutz. 1986. — V. 22. — P. 441−449.
  74. Habili, N. First detection of an ampelovirus, a maculavirus and two vitiviruses in Iranian table grapes / N. Habili, A. Afsharifar, R.H. Symons // 14th ICVG Conference, Locorotondo, 12−17th September. 2003. — P. 162−163.
  75. Hansen, M. A. Plant disease diagnosis: present status and future prospects / M. A. Hansen, R. L. Wick // Adv. in Plant Path. 1993. — № 10. — P. 65−126.
  76. Hamdorf, G. Untersuchungen uber den Wirtspflanzenkreis des scharka-virus / G. Hamdorf// Nachr. Deutch. Pflanzenschutzd. 1972. — V. 24. — P. 181−186.
  77. Hamdorf, G. The detection of plum pox virus (PPV) by indicator plants and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) / G. Hamdorf // Acta Hort. 1983. -№ 130.-P. 151−160.
  78. Henson, J.M. The polymerase chain reaction and plant disease diagnosis / J.M.Henson, R. French // Ann. Rev. Phytopath. 1993. — № 31. — P. 81−109.
  79. ISHS 1982. Detection of virus and virus-like diseases of fruit trees. Indexing techniques, indicatior range. // Acta Hort. 1982. — № 130. — P. 319−330.
  80. James, D. Prelimenary molecular characterization of Plum pox potyvirus isolate W3174: Evidence of a new strain / D. James, A. Varga // Acta Hort. 2004. -№ 657.-P. 177−182.
  81. Jelkmann, W. Detection of virus and virus-like diseases of fruit trees / W. Jelkmann // Acta Hort. 2004. — № 657. — P. 575−591.
  82. Jordovic, M. New indicator plants convenient for diagnosis of plum pox disease / -M. Jordovic // Zastita Bilja. 1961. — № 63−64. — P. 99−103.
  83. Jordovic, M. Investigation of the spread and some factors spreading plum pox virus disease / M. Jordovic // Phytopath. Mediterranea. 1963. — Vol. 3. — P. 167 170.
  84. Jordovic, M. The rate of spread of sharka (plum pox) virus on some plum varieties in nature / M. Jordovic // Zastita Bilja. 1965. — V. 16. — P. 353−356.
  85. Jordovic, M. Ispitivanje Prunus spinosa L. kod domacina virus sarke / M. Jordovic, H. Festic., M. Rankovic // Zast. Bilja. 1969. — V. 105. — P. 253−259.
  86. Jordovic, M. Prunus spinosa L. as host of sharka virus. Isolation and some properties of the virus / M. Jordovic, H. Festic., M. Rankovic // Ann. Phytopath. -1971.-№ 20.-P. 178−184.
  87. Jordovic, M. Une viruse grave du prunier en Yougoslavie / M. Jordovic // Tidsskrift for Planteavl. 1956. — Vol. 62. — P. 56−59.
  88. Kalashjan, Y.A. Plum pox virus in cherry / Y.A. Kalashjan, N.D. Bilkey, E.V. Rubina // Acta Hort. 1988. — № 193. — P. 42−43.
  89. Kalashjan, Y.A. Plum pox virus in cherry / Y.A. Kalashjan, N.D. Bilkey // Conference of Chechoslovak Plant Pathologists. 1989. — P. 276−306.
  90. Kalashjan, Y.A. Plum pox potyvirus on sour cherry in Moldova / Y.A. Kalashjan, N.D. Bilkey, T.D. Verderevskaya, E.V. Rubina // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin. 1994. — Vol. 24.- № 3. — P. 645−649.
  91. Kassanis, B. Some results of recent investigations on sharka (plum pox) virus disease / B. Kassanis, D. Sutic // Zastitja Bilja. 1965. — Vol. 16. — P. 335−340.
  92. Kinard, G.R. Partial characterization of Pelargonium line pattern and Pelargonium ringspot viruses / G.R. Kinard, R.L. Jordan, S.H. Hurtt // Acta Hort. 1996. — № 432. — P. 148−155.
  93. Kegler, H. Identifizierung, Nachweis und Eigenschaften des Scharkavirus der Pflaume / H. Kegler, H. Schmidt, D. Trifonov // Phytopathol. Zeitschrift. 1964. -V. 50.-№ 2.-P. 31−34.
  94. Kegler, H. Plum pox virus / H. Kegler, C. Schade // CMI / AAB Description of Plant Viruses. 1971. — № 70. — 4 s.
  95. Kegler, H. Different types of resistance to plum pox virus in plums / H. Kegler, E. Fuchs, M. Gruntzic, T.D. Verderevskaya // Acta Hort. 1986. — № 193. -P. 201−205.
  96. Kegler, H. A glasshouse test for detecting resistance of plum genotypes to plum pox virus / H. Kegler, E. Bauer, M. Gruntzic, E. Fuchs // Acta Hort. 1994. -№ 359.-P. 128−152.
  97. Kerlam, C. Some properties of plum pox virus and its nucleic acid and protein components / C. Kerlam, J. Dunez // Acta Hort. 1976. — № 67. -P. 185−192.
  98. Kerlam, C. Obtention de souches attenues du virus de la sharka a partir d’une population naturelle fortement pathogene / C. Kerlam, P. Maison, M. Lansac, J. Dunez, R. Delbos, G. Masonie, C. Marenaud // Ann. Phytopath. 1978. — V. 10. -P. 303−315.
  99. Kerlam, C. Differenciation biologique et serologique des souches du virus de la sharka / C. Kerlam, J. Dunez // Ann. Phytopath. 1979. — Vol. 11. — P. 241 250.
  100. Kerlam, C. Preliminary studies on the antagonism between strains of plum pox virus / C. Kerlam, P. Maison, M. Lansac, J. Dunez // Acta Phytopath. Acad.Sci.Hung. 1981. — Vol. 15. -P. 56−57.
  101. Knapp, E. Improved virus detection in rosaceous fruit trees in vitro / E. Knapp, V. Hanzer, D. Mendonca, A. da Camara Machado, H. Katinger, M.L. da Camara Machado //Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1998. — V. 52. — № 1. — P. 3−6.
  102. Kralikova, K. Research on some virus diseases of stone fruits in Czechoslovakia / K. Kralikova // Phytopath. Mediterranea. 1963. — Vol. 2. -P. 203−204.
  103. Kummert, J. Development of routine RT-PCR tests for certification of fruit tree multiplication material / J. Kummert, M. Vendrame, S. Steyer, P. Lepoivre // Acta Hort. 2001. — № 550. — P. 45−52.
  104. Kunze, L. Transmission of sharka virus by aphids / L. Kunze, H. Krczal // Ann. Phytopath. 1971. — № H.S. — P. 255−260.
  105. Lain, S. The complete nucleotide sequence of plum pox potyvirus RNA / S. Lain, J.L. Riechmann, J.A. Garcia // Virus Research. 1989. — Vol. 13. — P. 157 172.
  106. Leclant, F. Aspect ecologique de la transmission dela sharka (plum pox) dans le seed-est de la France Mise en evidence de nouvelles especes d’aphides vectrices / F. Leclant // Ann. Phytop ath. -1973. Vol. 5. — P. 431−439.
  107. Levy, L. Identification of plum pox potyvirus in the United States / L. Levy, V.
  108. Damsteegt, V. Mavrodieva, E. Goley, R. Welliver, D. Luster //18 Int.Symp. Virus and Virus-like diseases of Temperate Fruit Crops. 2000. — P. 37.
  109. Llacer, G. Suitable conditions for detecting Apple chlorotic leaf spot virus in apricot trees by ELISA / G. Llacer, M. Cambra, A. Lavina, J. Aramburu // Agronomie.- 1985.-№ 5.-P. 809−812.
  110. Llacer, G. Viruses infecting stone fruit trees in Spain / G. Llacer, M. Cambra, A. Lavina, J. Aramburu // Acta Hort. 1986. — № 193. — P. 95−100.
  111. Llacer, G. Epidemiology of plum pox (sharka) virus in Valencia (Spain) / G. Llacer, L. Avinent, A. Hermoso de Mendoza // Acta Hort. 1992. № 309. -P. 129−134.
  112. Macovei, F. Results concerning influence of plum pox virus on plum pollen morphology and germination / F. Macovei // Studi si cercetari de Biologie. -1970.-Vol. 22.-P. 325−328.
  113. MacKenzie, DJ. Improved RNA extraction from woody plants for the detection of viral pathogens by reverse transcription-polymerase chain reaction / DJ. MacKenzie, M.A. McLean, S. Mukerji, and M. Green // Plant Dis. 1997. -№ 81. -P. 222−226.
  114. Maiss, E. The complete nucleotide sequence of plum pox virus RNA / E. Maiss, U. Timpe, A. Brisske, W. Jelkmann, R. Casper, G. Himmler, D. Mattanovitch, H.W. Katinger // J.Gen.Virol. 1989. — Vol. 70. — P. 513−524.
  115. Marbot, S. Development of Real-Time PCR Assay for detection of Prunus Necrotic Ringspot Virus in fruit trees / S. Marbot, M. Salmon // Plant Dis. 2002. -V. 87.-№ 11.-P. 1344−1348.
  116. Marenaud, C. Identification and comparison of different strains of apple chlorotic leaf spot virus and possibilities of cross protection / C. Marenaud, J. Dunez, R. Bernhard // Acta Hort. 1976. — Vol. 67. — P. 219−226.
  117. Marenaud, C. Observations sur la diffusion et la detection du vurus de la sharka / Marenaud С., K. Mazy, M. Chauffurin // Phytoma. 1976. — № 280. — P. 20−24.
  118. Marenaud, C. Etude comparative de differents isolats du virus de la sharka / C. Marenaud, G. Massonie // Ann. Phytopath. 1977. — Vol. 9. — P. 107−122.
  119. Massone, G. Peach resistance to aphid vectors of plum pox virus / G. Massone, P. Maison // Acta Phytopath. Acad. Sci. Hung. 1980. — Vol. 15. — P. 89−95.
  120. Menzel, W. Detection of four apple viruses by multiplex RT-PCR assays of plant mRNA as internal control / W. Menzel, W. Jelkmann, E. Maiss // J. Virol. Meth. 2002. — Vol. 99. — P. 81−92.
  121. Mink, G. I. Preliminary evolution of some Russian apple varieties as indicators for apple / G.I. Mink, J.R. Shay // Supplement Plant Disease Reporter. 1959. -№ 254. — 13 p.
  122. Minoiu, N. The vectors transmitting plum pox virus to plum / N. Minoiu //Ann.Inst.Cercetari Prot.Plant. 1973. — Vol. 9. — P. 49−56.
  123. Minoiu, N. Neue Eltersuchungen iiber das scharka-virus / N. Minoiu // Arch. Phytopath.Pflanzensch. 1975. — Vol. 11. — P. 389−397.
  124. Minoiu, N. Plum and myrobalan selections resistant to plum pox virus / N. Minoiu, K. Pattantyns // Protectia Plantelor. 1997. — Vol. 27. — P. 143−145.
  125. Myrta, A. Virus and virus-like diseases of stone fruits, with particular reference to Mediterranean region / A. Myrta, B. Di Terlizzi, V. Savino // Options Mediterraneennes, Serie B. 2003. — № 45. — 172. p.
  126. Nemchinov, I. Detection and partial characterization of plum pox virus isolate from infected sour cherry / I. Nemchinov, A. Hadidi, T. Verderevskaya // Acta Hort. v.1995. — № 386. — P. 226−236.
  127. Nemchinov, L. Characterization of the sour cherry strain of plum pox virus / L. Nemchinov, A. Hadidi // Phytopathology. 1996. — Vol. 86. — P. 575−580.
  128. Nemeth, M. Field and greenhouse experiments with plum pox virus / M. Nemeth // Phytopath. Mediterranea. 1963. — Vol. 2. — P. 162−166.
  129. Nemeth, M. Plum pox virus on Prunus glandulosa / M. Nemeth, K. Schmelzer // Acta Phytopath. Acad. Sci.Hung. 1972. — Vol. 7. — P. 193−196.
  130. Nemeth, M. GF31, a reliable myrobalan field indicator for rapid detection of plum pox virus / M. Nemeth, M. Kolber // Acta Hort. 1981. — № 94. — P. 204 214.
  131. Nemeth, M. Additional evidence on seed transmission of plum pox virus in apricot, peach and plum proved by ELISA / M. Nemeth, M. Kolber // Acta Hort. -1983. -№ 130.-P. 293−300.
  132. Nemeth, M. Apricot chlorotic leaf roll. In: Virus, mycoplasma and rickettsia diseases of fruit trees / M. Nemeth // Ed. Akademiai Kiado, Budapest and Martinus Nijhoff Publishers, Dordrecht, Boston, L&&ster. 1986. — 840 p.
  133. Nemeth, M. History and importance of plum pox in stone-fruit production / M. Nemeth // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin. 1994. — Vol. 24. — P. 525−536.
  134. Olmos, A. Simultaneous and Co-operational amplification (Co-PCR) for detection of plant viruses / A. Olmos, E. Bertolini, M. Cambra // J. Virol. Methods. 2002. — № 106. — P. 51−59.
  135. Olmos, A. Real-time assay for quantative detection of non-persistently transmitted Plum pox virus RNA targets in single aphids // A. Olmos, E. Bertolini, M. Gil, M. Cambra // J. Virol. Methods. 2005. — № 68. — P. 151−155.
  136. Parakh, D.R. Detection of Prune Dwarf Virus from infected stone fruits using reverse transcription polymerase chain reaction / D.R. Parakh, A.M. Shamloul, A. Hadidi, H.E. Waterworth // Acta Hort. 1995. — Vol. 386. — P. 421−430.
  137. Pasquini, G. Different RT PCR protocols applied to mass scale detection of fruit tree viruses covered by certification / G. Pasquini, F. Faggioli- M. Barba // Petria. — 1999. — Vol. 9. — P. 157−162.
  138. Patrakosol, P. Detection and Heat Therapy of Prunus Necrotic Ringspot Virus and Prune Dwarf Virus in Peach Tree / P. Patrakosol // Memoirs of the Tokyo University of Agriculture. 1985. — № 27. — P. 35−87.
  139. Paulechova, K. Comparative study on plum sharka virus isolates from Slovakia /К. Paulechova// Biologia. 1981. — Vol. 36. — P. 225−229.
  140. Paulechova, K. Studium virosovych chorob kostkovin, ceresne a vishe / K. Paulechova // VEDA Vydavatelstvo slovenskei Akademie veid Bratislava. -1984.-93 s.
  141. Plant viruses online. 1999. — http://biology.anu.edu.au/Groups/VTS/vide/
  142. Polak, J. Euonymus europea L. and Ligustrum vulgare L. new natural hosts of plum pox virus / J. Polak // 18th Int. Symp. Virus and Virus-like Diseases of Temperate Fruit Crops. — 2000. — P. 36.
  143. Poul, F. Use of monoclonal antibodies for the identification of different antigenic domains in apple chlorotic leaf spot virus / F. Poul, J. Dunez // Arch, of Vir.- 1990.-№ 114.-P. 191−202.
  144. Posnette, A.F. Leaf Roll: a Virus Disease of Cherry / A.F. Posnette, R. Cropley//Rep. E. Mailing Res. Stn. 1955. — № 1954. — P. 126−127.
  145. Posnette, A.F. The line pattern virus disease of plums / A.F. Possnete, C.E. Ellenberger // Ann. Appl. Biol. 1957. — № 68. — P. 74−80.
  146. Posnette, A.F. A revised standard minimum range of indicator varieties for fruit tree viruses in Europe / A.F. Posnette, R. Bovey, A. Canova, C.A.R. Meijneke, H.R. Kristinsen // Tidsskrift for Planteavl. 1961. — Vol. 65. — P. 250 253.
  147. Rankovic, M. A suitable method for purification of sharka virus / M. Rankovic, M. Jordovic // Zastita Bilja. 1970. — Vol. 21. — P. 195−199.
  148. Rankovic, M. Suitability of some methods for the purification of plum pox virus strains / M. Rankovic // Zastita Bilja. 1978. — Vol. 29. — P. 179−195.
  149. Rankovic, M. The degree of sensitivity of some plum cultivars and hybrids to sharka (plum pox) virus disease / M. Rankovic // Acta Hort. 1983. — № 130. -P. 93−98.
  150. Rankovic, M. Investigation of the possibility of sharka virus strain differentiation by electrophoresis / M. Rankovic, O. Velikovic // Zastita Bilja. -1983.-Vol. 34.-P. 47−52.
  151. Rankovic, M. Resistance of some peach cultivars and variable pathogenicity of the sharka (plum pox) virus / M. Rankovic, D. Sutic // Acta Hort. 1986. -№ 193.-P. 193−200.
  152. Rankovic, M. Further studies on the resistance of plum to sharka (plum pox) virus / M. Rankovic, S. Paunovic // Acta Hort. 1989. — № 235. — P. 283−290.
  153. Ravelonandro, M. Nycleotide sequence of the capsid protein gene of the plum pox potyvirus / M. Ravelonandro, C. Varveri, R. Delbos, J Dunez // J. Gen.Virol.- 1988. Vol. 69. — P. 1509−1516.
  154. Real-Time PCR 2002., http://www.lytech.ru/Inform/pcrmethod.htm
  155. Reihmann, J.L. Infectious in vitro transcripts from a plum pox potyvirus cDNA clone / J.L. Reihmann, S. Lain, J.A. Garcia // Virology. 1990. — Vol. 177. -P. 710−716.
  156. Reverse, F. New advances in understanding the molecular biology of plant: potyvirus interactions // F. Reverse, O. Gall, T. Candresse, A.J. Maule // Molec. Plant-Micr. Interact. 1999. — № 12. — P. 367−376.
  157. Rosner, A. Evaluating the use of immunocapture and sap-dilution PCR for the detection of Prunus necrotic ringspot virus / A. Rosner, Y. Shiboleth, S. Spiegel, L. Krisbai, M. Kolber // Acta Hort. 1998. — № 472. — P. 227−233.
  158. Rowhani, A. Development of a detection system for viruses of woody plants based on PCR analysis of immobilized virions / A. Rowhani, M.A. Maningas, L.S. Lile, S.D. Daubert, D.A. Galino // Phytopath. 1995. — № 85. — P. 347−352.
  159. Roy, A.S. Plum pox situation in Europe / A.S. Roy, J.M. Smith // Bulletin OEPP/EPPO Bulletin. -1994. Vol. 24. — P. 515−523.
  160. Salmon, M. Detection of Apple chlorotic leaf spo t virus using a fluorgenic 3' minor groove binder-DNA probe / M. Salmon, M. Vendrame, J. Kummert, P. Lepoivre // Eur. J. Plant Path. 2002. — № 108. — P. 99−106.
  161. Schade, C. Eigenschaften und Serologie des Scharka- Virus der Pflaume / C. Schade // Zentabl. Bacteriol. Parasit. Infekt. Bt.Hygg. 1969. — Vol. 123. -P. 299−303.
  162. Schade, С. Der Nachweis des Virus der nekrotischen und der chlorotischen Ringleckenkrankheit in Kirschen mit dem Latextest als Schnellmethode / C. Schade // Arch. Pflanzenschutz. 1971. — Vol. 7. — P. 207−216.
  163. Schade, C. Zur serologischen Verwandschaft des Scharka- Virus der Pflaume, mit dem Bohntngelbmosaik virus / C. Schade // Arch. Phytopath. Pflanzensch., Berlin. 1975. — V. 11. — № 6. — P. 373−380.
  164. Shay, J. R. Disease resistance in apple and pear / J. R. Shay, E. B. Williams, J. Janick. // Proc. Am. Soc. Hort. Sci. 1962. — № 80. — P. 97−104.
  165. Schuch, K. Untersuchungen iiber die Pockenkrankheit der Zwetsche / K. Schuch // Z. Krankh Schutz. 1962. — Vol. 69. — P. 137−142.
  166. Schuster, C.E. Adisorderof (English) walnuts, grafted on black-walnut stocks resulting in girdling / C.E. Schuster, P. W. Miller. Phytopath. — 1933. — № 23. -P. 408−409.
  167. Spiegel, S. Improved detection of Prunuc necrotic ring spot virus by the polymerase chain reaction / S. Spiegel, S.W. Scott, V. Bowman-Vance, Y. Tam, N.N. Galiakparov, A. Rosner // Eur. J. Plant Path. 1996. — № 102. — P. 681−685.
  168. Sutic, D. Assay of transmission of sharka virus disease by sap inoculation to herbaceous plants / D. Sutic // Tidssdrrifit for Planteavl. 1961. — Vol. 65. -P. 138−146.
  169. Sutic, D. Vegetative effect of some plants on the curing of plum infected with sharka (plum pox) virus / D. Sutic // Zastita Bilja. 1965. — Vol. 16. — P. 85−88.
  170. Sutic, D. Some properties of new virus isolate in naturally infected plum trees / D. Sutic, H. Festic, M. Babovic // Ann. Phytopath. 1971. — № 20. — P.97−107.
  171. Sutic, D. Comparative studies of some sharka (plum pox) virus isolates / D. Sutic, M. Jordovic, M. Rankovic, H. Festic // Ann. Phytopath. 1971. -№ 20.-P. 185−192.
  172. Sutic, D. Transmissibility of some sharka virus strains by Myzus persicae, depending on various infection sources / D. Sutic, M. Babovic, S. Markovic // Acta Hort. 1976.-№ 67.-P. 171−175.
  173. Teycheney, P.Y. The complete nucleotide sequence of plum pox virus RNA (strain D) / P.Y. Teycheney, G. Tavert, R. Delbos, M. Ravelonandro, J. Dunez // Nucl. Acids Res. 1989.-Vol. 17. — P. 10 115−10 116.
  174. Thomas, H. E. A virus disease of prunes / H. E. Thomas, E. M. Hildebrand // Phytopathology. 1936. — № 26. — P. 145−148.
  175. Topchiiska, M. Virus and virus-like diseases of deciduous tree fruits and hops / M. Topchiiska // Newsletter. 1992. — Vol. 6. — P. 1−23.
  176. Topchiiska, M. Sweet and sour cherries natural hosts of plum pox (sharka) vims / M. Topchiiska // Proceedings of the Middle European Meeting on Plum Pox. — Budapest, — 1997. — P. 91−93.
  177. Topchiiska, M. Plum pox (sharka) on some Prunus spp. in Bulgaria / M. Topchiiska // Proceedings of the Middle European Meeting on Plum Pox. — Budapest, 1997a. P. 94−98.
  178. Trifonov, D. Plum pox infection rate of some varieties of plums in the heavily contaminated region of Bulgaria / D. Trifonov // Zastita Bilja. 1965. — Vol. 16. -P. 375−378.
  179. Trifonov, D. Susceptibility of Prunus instititia to sharka virus and to Polystigma leaf blight / D. Trifonov // Acta Hort. 1978. — № 74. — P. 229−232.
  180. Vaclav, V. Investigation of sharka disease (Prunus vims 7) / V. Vaclav // Zastita Bilja. 1960. — Vol. 16. — P. 335−340.
  181. Varga, A. Detection and differentiation of Plum pox vims using real-time PCR with SYBR Green and melting curve analysis: A rapid method of strain typing. / A. Varga, D. James // J. Virol. Methods. 2005. — № 123. — P. 213−220.
  182. Varvery, C. Construction and use of a cloned cDNA probe for the detection of plum pox virus in plants / C. Varvery, M. Ravelonandro, J. Dunez // Phytopathology. 1987. — Vol. 77. — P. 1221−1224.
  183. Varvery, C. Use of 32P-labeled transcribed RNA probe for dot hybridization of plum pox vims / C. Varvery, T. Candresse, M. Cuqusi, M. Ravelonandro, J. Dunez // Phytopathology. 1988. — Vol. 78. — P. 1280−1283.
  184. Verderevskaya, T.D. Zur Bedeutung von Unkrautern als Reservoire des Scharka-Virus (Plum pox virus) / T.D. Verderevskaya, H. Kegler, M. Gruntzig, E. Bauer // Archiv Phytopath. Pflanzenschutz, Berlin. 1985. — V. 21. — № 5. -P. 409−410.
  185. Wetzel, T. A polymerase chain reaction assay adapted to plum pox virus detection / T. Wetzel, T. Candresse, M. Ravelonandro, J. Dunez Л J. Virol. Methods. 1991a. — Vol. 33. — P. 355−365.
  186. Wetzel, T. A highly sensitive immunocapture polymerase chain reaction method for plum pox potyvirus detection / T. Wetzel, T. Candresse, G. MacQuaire, M. Ravelonandro, J. Dunez // J. Virol. Methods. 1992. — Vol. 39. -P. 27−37.
  187. Zawadzka, B. Observations and preliminary experiments on fruit tree virus diseases in Poland/В. Zawadzka //Zastita Bilja. 1982. — Vol. 16.-P. 513−516.
  188. Zawadzka, B. Summer hosts of plum aphids as possible host plants of plum pox (sharka) virus / B. Zawadzka, S. Smolarz // Zesz. Prob. Post. Nauk Roln. -1978.-Vol.214.-P. 43−49.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!