Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Экспресс — методы оценки иммунного статуса крупного рогатого скота

Диссертация: Экспресс — методы оценки иммунного статуса крупного рогатого скота
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Основная ценность. молочного скотоводства заключается в том, что коровы способны давать продукты для питания человека в течение длительного периода — пяти — десяти лет. Коровы, поедая в больших объемах грубые корма, способны синтезировать животный белок из небелковых соединений, снабжают человека значительным количеством питательных веществ, при этом организм коровы является хорошим фильтром… Читать ещё >

Экспресс — методы оценки иммунного статуса крупного рогатого скота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ПРИНЯТЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • Цель и задачи исследования
  • Научная новизна работы
  • Практическая значимость
  • Положения, выносимые на защиту
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Состояние и перспективы развития молочного животноводства в Российской Федерации
    • 1. 2. Факторы, вызывающие изменения иммунной системы крупного. рогатого скота
    • 1. 3. Иммунологический мониторинг иммунодефицитов крупного рогатого' скота
    • 1. 4. Методы количественного определения’иммуноглобулинов крупного рогатого скота
    • 1. 5. Методы и средства коррекции иммунодефицитов' крупного рогатого’скота
      • 1. 6. 3. аключение по обзору литературы
  • 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
  • Материалы и методы
  • Исследуемый материал
  • Компоненты для экспресс — методов
  • Иммуноферментная тест-система на основе «сэндвич» — вариантаИФА
  • Тест-система латекс-агглютинации (РЛА)
  • Количественное определение иммуноглобулинов классов G, М и А
  • Гематологические исследования
  • Физиологический и иммунный статус телят
  • Степень чистоты иммуноглобулинов и аффинноочищенных антител
  • Определение белка
  • Статистическая обработка результатов
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Получение компонентов и разработка тест-системы на основе сэндвич" - варианта ИФА
      • 3. 1. 1. Синтез антивидового конъюгата
        • 3. 1. 2. 0. тработка условий постановки «сэндвич» — варианта
  • ИФА для количественного определения IgG
    • 3. 1. 3. Результаты количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота методом «сэндвич» — варианта ИФА
    • 3. 2. Разработка тест-системы на основе латекс — агглютинации
    • 3. 3. Количественное определение иммуноглобулинов методом РИД
    • 3. 4. Сравнительная оценка экспресс-методов и РИД для количественного определения IgG
    • 3. 5. Результаты изучения естественной резистентности организма высокопродуктивных коров
    • 3. 6. Изучение клеточного и гуморального иммунитета коров
    • 3. 7. Результаты изучения физиологического и иммунного статуса телят от высокопродуктивных коров
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ
  • 5. ВЫВОДЫ
  • 6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Актуальность темы

Одной из актуальных проблем промышленного ведения животноводства является обеспечение населения страны высококачественными продуктами питания. Молодняк первых месяцев жизни наиболее подвержен риску инфекционных заболеваний из-за нарушения пассивной передачи материнских антител, что является одной из наиболее распространенных форм приобретенного иммунодефицита у молодняка сельскохозяйственных животных (Ю.Н. Федоров, 2001).

Интенсификация производства молока оказывает влияние на иммунную систему животных, что выражается в угнетении функций неспецифических и специфических факторов иммунной системы, изменении количественного содержания иммуноглобулиновч в сыворотке крови и других биологических жидкостях организма животных, развитиЬ иммунодефицитов (В.А.Мищенко, 2005; М. А. Сидоров и др., 2006; И. М. Донник, 2006).

Иммунодефицитное состояние способствует развитию маститов, эндометритов, болезней конечностей (В.П. Литвин и соавт., 2002; С. И. Джупина, 2007) и других патологий бактериального и вирусного характера у высокопродуктивных коров (М.И. Гулюкин, 2006; П. Н. Сисягин, 2007; Х. В. Баймишев, 2009).

Нарушение метаболических процессов в организме высокопродуктивных коров часто является причиной дефицита иммуноглобулинов в молозиве, снижения уровня их биосинтеза (D. Levieux, et al., 1999).

Для своевременного контроля состояния иммунитета у коров — матерей, новорожденных телят и иммунологической полноценности молозива необходимо с помощью высокочувствительных тест-систем быстро оценить иммунологический статус и принять адекватные решения.

В настоящее время эксперты ВОЗ рекомендуют применять современные, наиболее информативные методы оценки иммунного статуса животных, которые включают количественное определение иммуноглобулинов в сыворотке крови (В:М Чекишев, 1977; Н.Е. Indyk, 2003).

Благодаря совершенствованию методов иммунологического анализа появилась* возможность диагностировать у животных генетически обусловленный и приобретенный иммунодефициты, что* позволяет правильно выбрать стратегию иммунокорригирующей терапии? и профилактики' (P.M. Хаитов и др., 1998).

Классический метод радиальной иммунодиффузии (РИД) по Манчини (1965) используется в ветеринарной практике для количественного «определения* иммуноглобулинов основных классов, однако у него есть недостатки: большой расход реагентов, длительность постановки реакции и невозможность определения низких концентраций иммуноглобулинов (J.D. Arthington et al., 2000). >¦

Исследования ряда, авторов показали, чтоперспективным является использование экспресс — методов, таких как иммуноферментный анализ (ИФА) и латекс — агглютинация (PJIA) для количественного1 определения иммуноглобулинов в сыворотке крови и других биологических жидкостях организма животных и человека (Б.Б. Дзантиев с соавт., 1982; Е.С. Adams, 1985; D.G.White, 1986; M. Oikawa et al., 1986; В. И. Клюкина, 2002; B.M. Murphy et al., 2005; E.B. Борзенко, 2005).

С учетом этого, разработка экспресс — методов для оценки иммунного статуса животных является актуальной задачей для практической ветеринарии.

Цель и задачи исследования

.

Цель исследований — разработка экспресс — методов для оценки иммунного статуса крупного рогатого скота.

Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

1 .Разработать тест-систему на основе «сэндвич» — варианта ИФА для количественного определения* иммуноглобулинов класса G в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота.

2.Разработать тест-систему латекс — агглютинации (PJIA) для количественного определения иммуноглобулина класса G в сыворотке и молозиве крупного рогатого скота.

3 .Провестиоценку иммунного статуса крупного рогатого скота и иммунологической полноценности молозива с помощью «сэндвич» — варианта ИФА и РЛА.

4.Изучить уровень естественной резистентности коров в зависимости от возраста и продуктивности.

5.Изучить физиологический и иммунный статус телят от высокопродуктивных коров.

Научная новизна исследований.

Разработана тест-система на основе «сэндвич» — варианта^ ИФА для количественного определения иммуноглобулина класса G в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота.

Впервые получен латекс — препарат на основе аффинноочищенных анти-IgG антител для количественного определения иммуноглобулина класса G в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота.

Показана высокая чувствительность разработанных тест-систем для экспресс — анализа уровня иммуноглобулинов в сравнении с методом РИД.

С помощью разработанных тест-систем изучен иммунный статус крупного рогатого скота и дана характеристика иммунобиологической полноценности молозива коров разного возраста и продуктивности.

Установлена взаимосвязь развития вторичного иммунодефицита у высокопродуктивных коров от количества лактаций.

Определена взаимосвязь физиологического и иммунного статуса телят от высокоудойных коров — матерей, что позволяет прогнозировать использование их для воспроизводства молочного стада.

Практическая значимость.

Результаты исследований вошли в: «Методические1 рекомендации по оптимизации формирования колострального иммунитета1 у новорожденных животных», рассмотренные и одобренные 16.10.2009 г. на секции «Патология, фармакология и терапия» Отделения^ ветеринарноймедицины Россельхозакадемии, протокол № 3- Технологический регламент на производство «Набор для количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого» скота в «сэндвич» — ИФА" — Технологический регламент на производство «Набор дляколичественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота в реакции латексагглютинации», утвержденные 12.07.2010 г. директором ВНИТИБП.

Положения, выносимые на защиту.

1.Иммуноферментная тест — система на основе «сэндвич» — варианта для количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота.

2.Тест — система на основе латекс — агглютинации для оценки иммунного статуса крупного рогатого скота и иммунологической полноценности молозива.

3.Сравнительная оценка разработанных экспресс — методов и РИД для количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота.

4.Результаты изучения естественной резистентности организма коров разного возраста и продуктивности.

5.Результаты изучения физиологического и иммунного статуса телят, полученных от высокопродуктивных коров.

1.0Б30Р ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Состояниеперспективы развития молочного животноводства в.

Российской, Федерации.

Выполнение стратегической задачи повышения эффективности агропромышленного производства возможно при устойчивом ветеринарном благополучии и получении экологически безопасной, высококачественной продукции животноводства. Главной целью развития молочной отрасли является повышение производства молока высокого качества, засчет эффективного ведения хозяйства, включая племенную работу [80,81].

На современном этапе скотоводство является превалирующей отраслью животноводства. Это обусловлено социальными факторами, крупный рогатый скот дает более 90% молока и около 50% мяса — главных продуктов питания человека, а также поставляет сырье для кожевенной, легкой, парфюмерной и фармацевтическойпромышленности.

Основная ценность. молочного скотоводства заключается в том, что коровы способны давать продукты для питания человека в течение длительного периода — пяти — десяти лет. Коровы, поедая в больших объемах грубые корма, способны синтезировать животный белок из небелковых соединений, снабжают человека значительным количеством питательных веществ, при этом организм коровы является хорошим фильтром (коэффициент снижения токсинов составляет примерно 100%), препятствующим проникновению различных токсинов в молоко [100].

Основными причинами снижения поголовья молочного стада и выбытие животных до достижения репродуктивного возраста являются интенсификация их эксплуатации, а также болезни вирусной, бактериальной и другой этиологии. Перечисленные факторы ослабляют генофонд вида и наносят большой экономический ущерб молочному животноводству. В связи с этим улучшение условий содержания животных и своевременная профилактика инфекционных заболеваний является одной из задач-практической ветеринарии [12,61].

В Российской Федерации, начиная с 1990 годачисленность крупного рогатого скота сократилась в 2,1 раза, в том числе коров- — в 1,6 раза, что явилось основной причиной падения на 60% (в 1,67 раза) производства <молока с 55,7 млн. т. до 33,4 млн. тонн.

В настоящее время потребность населения России в молоке и молочных продуктах удовлетворяется на 86% за счет собственного производства, на долю импорта молока приходится-16−5%, масла — 32%, сыров — 46%, что показывает зависимость России от импорта [100].

Оценивая состояние отечественного животноводства (табл. 1) за 2005;2009 г. г., следует констатироватьо значительных негативных количественных и качественных изменениях, охвативших основные процессы воспроизводства и племенного дела [58].

Таблица 1. Динамика развития животноводства в РФ.

Показатели 2005 г 2006 г 2007 г 2008 г 2009 г.

Численность КРС, тыс. голов 21 625 21 561,6 21 546 21 043,7 20 724,3.

В том числе коров, тыс. голов 9522,2 9359,7 9320,2 9128,5 9022,3.

Валовое производство молока, тыс. т 31 069,9 31 339,1 31 988,4 32 362,6 32 592,1.

Удой молока на одну корову, кг 3280 3564 3758 3892 4422.

Получено телят на 100 коров, голов 76 78 78 77 77.

Производство молока на душу населения, кг 217 220 225 228 230.

Потребление молока на душу населения, кг 235 239 242 243 245 Официальный интернет — портал Минестерства сельского хозяйства Российской Федерации: сайт.- http://www.mcx.ru/navigation/docfeeder/show/145.htm.

Согласно представленным в таблице данным, численность коров снизилась, но возросло валовое производство молока за счет увеличения среднегодового удоя на одну корову. За 2009 г. хозяйства недобрали 10−15% телят (на 100 коров получено 77 телят), а это 400−600 тыс. голов продуктивных, коров в будущем [82,112].

Одной из острых проблем отечественного животноводства является выращивание ремонтных телочек, так как средний возраст при первом осеменении составляет 22−23месяца при средней живой массе при случке 340 350 кг, что меньше оптимальных зоотехнических норм на 4−5 месяца и 30−50 кг. В этом случае хозяйства недополучают минимум 700 кг молока на одну корову-первотелку [142].

Наблюдаемые поздние сроки первого отела (31 месяц против 27 месяцев) приводят к недополучению телят, что нарушает структуру молочного стада [32,100]. Анализ производства молока в мире (рис. 1) показывает, что за 2005 -2009 годы прирост составил 18,5% [45].

Рис. 1. Динамика производства молока в мире (млн. тонн).

Для ликвидации неблагополучного положения, сложившегося в отечественной отрасли молочного животноводства, в РФ принята Программа развития сельского хозяйства на 2008 — 2012 годы, основной целью которой является ускоренное развитие молочной отрасли, за счет увеличения среднегодового роста сельскохозяйственной продукции на 4%.

В 2009 году в России производство молока составило 32 млн. т. и к 2012;м планируется его увеличение до 37 млн. т., с годовым надоем от одной коровы не менее 4,5 тыс. кг [58].

В мировой практике молочного скотоводства выделяют четыре основные группы: черно-пестрый скот (разводят во всех странах Европы, Северной и Центральной Америки, Австралии, Японии и России) — скот красной масти (страны Прибалтики, Белоруссия, Россия, Украина, Молдова) — черно-пестрая и голштинская породы [5]. В современной России наиболее распространены породы молочного скота со среднем удоем 3500−5000 кг (рис.2).

Рис. 2. АХолмогорская (ср. годовой удой 3500−5000 кг, жирность молока 3,7−3,8%) — В — Черно-пестрая (ср. годовой удой 4000−4500 кг, жирность молока 3,6−3,7%) — С — Ярославская (ср. годовой удой 3500−4000 кг, жирность молока 4,0−4,2%) — D — Красно-пестрая (сргодовой удой 4400 — 5500 кг, жирность молока 3,61%) — Е — Голштинская (ср. годовой удой 8000 — 10 000 кг, жирность молока 3,6−4,0%).

Для совершенствования пород и племенной «реконструкции» молочного стада с 2007 года в РФ завозят чистопородный голштинский скот, так в Самарскую область завезено 126 тыс. молочных голштинов из Голландии, Германии и Канады. Компания «Росагролизинг» с 2009 по 2012 гг. должна ежегодно поставлять по 30 тыс. голов [19,57,88,89,123,143,145]. Выбор Российских аграриев в пользу голштинской породы объясняется ее высокой продуктивностью: при правильных условиях содержания и кормления средний надой на корову составляет 8 тыс. кг в год. [1,29,46,48,53].

В рамках сотрудничества Департамента продресурсов Москвы и Министерства сельского и лесного хозяйства Земли Бавария (Германия) создан агрохолдинг «МосМедыньагропром», на животноводческие фермы которого были завезены племенные коровы голштино-фризской и симментальской пород, с конкретной целью — наладить выпуск молочных продуктов для москвичей. В январе 2009 года в Московских школах, а в феврале — в школах города Медыни Калужской области, где расположено предприятие, появилось фирменное, обогащенное витаминами и минералами питьевое молоко под маркой «Большая перемена» [144].

Анализируя состояние молочного скотоводства в РФ на современном этапе, важно отметить, что усилия ветеринарных специалистов должны быть направлены на сохранение отечественных пород высокопродуктивного молочного скота за счет применения сбалансированных кормов, своевременной диагностики и профилактики инфекционных заболеваний и проведения мероприятий по изучению иммунного статуса поголовья.

5. ВЫВОДЫ.

1. Разработана тест — система «сэндвич» — варианта ИФА' на основе аффинноочищенных анти-IgG антител для количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота. Достоверные результаты ИФА были получены при оптимальной концентрации аффинноочищенных анти-IgG антител для сенсибилизации планшета 1,8 мкг/мл в 0,01 М карбонатном буфере рН 9,5, времени инкубации — 2 часа при 37 °C или 18 часов при 4° С, разведении пероксидазного анти-IgG крупного рогатого скота конъюгата 1:4000, исследуемой сыворотки 1:400. Время инкубации исследуемой сыворотки, молозива составило 2 часа, конъюгата 1 час и учета реакции ИФА через 30 минут после внесения стоп — реагента.

2. Разработана тест — система на основе латекс — агглютинации и оптимизированы условия определения IgG в сыворотке крови крупного рогатого скота, оценки иммунобиологической полноценности молозива. Латекс-препарат, полученный сенсибилизацией 5% полиакролеинового латекса с диаметром частиц 0,8 микрон аффинноочищенными антиIgG антителами в оптимальной концентрации 4 мг/мл, сохранял активность в виде 0,2% суспензии в течение 6 месяцев. Активность латекс-препарата со стандартной сывороткой крови крупного рогатого скота составила 1:512.

3. Разработанные тест — системы «сэндвич» — ИФА и РЛА были апробированы при определении IgG в сыворотке крови и иммунобиологической полноценности молозива коров, в сравнении с методом.

РИД. Показано, что чувствительность «сэндвич» — ИФА составила 2,1 мкг/мл, PJIA- 75 мкг/мл. Установлена положительная корреляция (г=0,82- Р<0,05) результатов количественного определения IgG с помощью «сэндвич» — варианта ИФА и РИД. «Сэндвич» — ИФА и PJIA позволяют определять IgG в сыворотке крови в течение 2'-4 часа против 24 часов методом* РИД, что позволяет рекомендовать их в качестве экспресс — методов.

4. С использованием разработанных тест — систем проведена оценка иммунного статуса коров разного возраста и продуктивности. Показано, что содержание IgG в сыворотке крови низкоудойных коров различного возраста в 1,2−1,4 раза превышало таковые значения у высокопродуктивных коров и находилось в зависимости от числа лактаций.

5. Разработанные тест — системы использованы для оценки иммунобиологической полноценности молозива коров разного возраста и продуктивности. Молозиво низкоудойных и высокопродуктивных коров разного возраста было полноценным для выпойки новорожденным животным: Содержание IgG в молозиве низкоудойных коров первого отела составило 54,75±1,86 мг/мл, третьего отела — 76,45± 1,31 мг/мл, против содержания IgG в сыворотках высокоудойных первотелок — 45,65 ±1,71 мг/мл и коров третьего отела — 53,20 ± 1,27 мг/мл.

6. Анализ морфологического состава крови, показателей клеточного и гуморального звеньев иммунитета показал наличие у 80% высокоудойных коров признаков вторичного иммунодефицита. Содержание В-лимфоцитов в крови первотелок на 61,62% было выше чем у коров третьего отелалейко-Т-лимфоцитарный индекс у первотелок составил 7,88 против 11,10 у коров третьего отеласодержание IgG, IgM, IgA соответственно: 22,04±1,2 мг/мл, 1,37±0,08мг/мл, 0,41±0,035 мг/мл, против 20,22±1,96 мг/мл, 1,61+0,27 мг/мл, 0,44+0,04мг/мл.

7. Изучено формирование иммунного статуса телят от высокопродуктивных коров. Установлено, что до приема молозива в сыворотке крови телят уровень 1 i 1 1.

IgG в ИФА составил 0,043±0,0029 мг/мл, в 2-х суточном возрасте после приема молозива — 18,9 ±1,4 мг/мл.

8. Определена взаимосвязь физиологического и иммунного статуса телят с продуктивностью коров-матерей. Телята, рожденные от высокопродуктивных коров, до 6 месяцев уступали в среднем на 4% по живой массе, основным промерам тела и индексам телосложения, в сравнении с телятами, полученными от низкоудойных коров. Полученные данные позволяют прогнозировать эффективность использования телочек от высокопродуктивных коров для воспроизводства молочного стада.

6. Практические предложения.

На основании проведенных исследований предлагаются для практики:

1. «Методические рекомендации по оптимизации формирования колострального иммунитета у новорожденных животных».

2. Разработаны технологические регламенты на производство:

— «Набор для количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота в „сэндвич“ — ИФА»;

— «Набор для количественного определения IgG в сыворотке крови и молозиве крупного рогатого скота в реакции латекс — агглютинации».

3. Для увеличения срока эксплуатации необходимо проводить мониторинг иммунного, статуса высокопродуктивных коров.

4. Для получения ценного ремонтного молодняка необходимо проводить выпойку телятам в первые два часа жизни молозива с содержанием IgG не менее 30 мг/мл.

5. В хозяйствах рекомендуется создать банк иммунологически полноценного S молозива с содержанием IgG 50−80 мг/мл. I.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Агенство АгроФакт. Росагролизинг осуществил новые поставки элитного КРС // РацВетИнформ.- № 8 (96).- 2009.- С. 5.
  2. А.И., Самуйленко А. Я. и др. Хитозан как средство лечения и профилактики желудочно-кишечных заболеваний молодняка с.-х. животных // Сб. ст. Межд. научно-практ. конф. «Современные вопросы патологии с.-х. животных», Минск, 2003. С.310−311.
  3. А.В., Николаева M.JL, Мюристая M.JI. Иммунодефициты при недостатке меди и цинка и методы их коррекции. Уфа. 2009.
  4. Х.Б. Незаразная патология у крупного рогатого скота в зависимости от инфицированности вирусом лейкоза // Сб. ст. Международной конф., Самара, 2009. С.26−30.
  5. А.Ф., Хлевная Г. А. Практические советы по содержанию крупного рогатого скота // М.: ООО Издательство ACT, 2002. 142 с.
  6. О.С. Оценка и коррекция иммунного статуса коров с высоким уровнем молочной продуктивности // Сб. научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья, Екатеринбург, 2010. С. 439−442.
  7. Г. М. Иммуностимулирующие препараты при бронхопневмонии телят // Ветеринария. 2000. — № 10. — С.41 — 43.
  8. Е. В. Количественная характеристика иммуноглобулинов в биологических жидкостях крупного рогатого скота методами иммунохимического анализа // Дисс. канд. вет. наук. Москва, 2005. 109 с.
  9. Е.Я. Разведение сельскохозяйственных животных // М.: Колос, 1967. 264 с.
  10. Р.В. Специфические свойства и функции иммуноглобулинов при некоторых вирусных и хламидийных инфекциях // Автореф. дисс.докт. вет.наук.-М., 1978,-30 с.
  11. JI.E. Иммуномодулирующая активность лигавирина при гипотрофии телят // Ветеринария. 2002. — № 9. — С.41 — 44.
  12. B.C. Адаптационная стратегия защиты здоровья высокопродуктивных молочных коров // Современная ветеринарная защита коров высокопродуктивных пород: Сб. ст. Первой научно-практической конф., Воронеж, 2005. С. 57−59.
  13. Н.А., Шкуратова И. А. Воздействие экотоксикантов на иммунную систему животных // Сб. ст. Международной конф., Самара, 2009. С. 47−50.
  14. Е.С., Денисенко В. Н., Печникова Г. Н., Смоленская-Суворова О.О. и др. Влияние Т-активина на иммунологический статус телят // Ветеринария.- 1989.- № 5.- С. 51−53.
  15. В.Г. Иммунология // Учебник. М.: РИЦ МДК. 2000. -487с.
  16. У. Дж. Ветеринарная иммунология // М.: «Колос», 1974. 311 с.
  17. А.Н., Фомина В. Д. Физиология иммунной системы // Лекция. М.: Моск. гос. акад. вет. мед. и биотехнолог, им. К. И. Скрябина. 1995. -25 с.
  18. Н.И., Попов С. М., Скопичев В. Г. Цитофизиология секреции молока. Л.: Наука, 1976
  19. М.Й., Барабанов И. И., Иванова Л. А., Грек К. П. Профилактика и меры борьбы с лейкозом в высокопродуктивных и племенных хозяйствах // Сб. ст. Первой научно-практической конф., Воронеж, 2005. С. 19−20.
  20. Гулюкин М. И: Лейкоз крупного рогатого скота: профилактика и меры борьбы // Ветинформ. 2002. — № 3. — С. 6−7.
  21. А.В., Мехдиханов Г. Г., Соколов В. Д., Белоусова Р. В. Применение иммуномодуляторов продуктивным животным // Ветеринария. 2008. — № 6. — С. 8- 13.
  22. С.И. Кризис ветеринарии // Москва, 2007. 103 с.
  23. .Б., Гаврилова Е. М., Позняк М. В., Егоров Е. А., Мокеева Р. А., Журавлев B.C. Иммуноферментный анализ. Колличественное определение иммуноглобулина G в сыворотке крови человека // Проблемы гематологии и переливания крови. 1982. — № 1. — С. 50−53.
  24. И.М., Бодрова О. С., Зависимость иммуногематологических показателей коров с разной продуктивностью от сезонов года // Ветеринария Кубани. 2009.-№ 1.-С. 10−13.
  25. И.М., Шкуратова И. А., Верещак Н. А., Шушарин А. Д. Применение сорбентов крупному рогатому скоту -при техногенном загрязнении // Ветеринария.- 2007. № 9.- С. 5−9.
  26. И.М., Никулин Н. С., Высоцкая В. М. и др. Племенная работа с холмогорской породой // п. Лесные поляны: ФГНУ ВНИИплем, 2007. 68 с.
  27. A.M., Осипов А. П., Дзантиев Б. Б., Гаврилова Е. М. Теория и практика иммуноферментного анализа // М.: Высшая школа. 1991. — 288 с.
  28. В.И. Применение лизосомально-катионного теста // Ветеринария. 1983. — № 8.- С. 30−31.
  29. С. Качество молозива и сохранность телят // Животноводство России. 2008. — Март. — С. 57−58.
  30. Иммуноглобулины антивидовые (анти-IgG КРС, анти-IgG свиньи, анти-IgG кролика), меченные ферментом пероксидазой. ТУ 46−21−78−85.
  31. Л.С. Сохранность новорожденных телят: проблему можно успешно решать // Веткорм.-2006.-№ 4.-С. 18−20.
  32. А.П. и др. Нормы и рационы кормления с.-х. животных//Справочное пособие. Москва. -2003.- 456 с.
  33. И.М. Гематологический атлас сельскохозяйственных животных.-Мн.: Ураджай, 1986.- 183 с.
  34. Ю.С. О происхождении белков молока у крупного рогатого скота // Всесоюз. сем. по физиологии и биохимии лактации: Тез. докл. — М.: 1990
  35. В.И. Промышленные технологии производства тест-систем для диагностики инфекционных болезней свиней: Автореф. дисс. доктора биол. наук. Щелково, 2002. — 50 с.
  36. И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: Справочное издание // М.: КолосС, 2004. 520 с.
  37. А. А. Эпизоотология и инфекционные болезни сельскохозяйственных животных М.: Колос, 1984.
  38. Е.В. Биологически активные вещества в ветеринарии // Автореф. дисс. доктора биол. наук. Щелково, 2008. — 44 с.
  39. П.А., Албулов А. И., Клюкина В. И., Гринь С. А. Изучение иммуномодулирующих свойств сукцината хитозана // Веткорм. 2007. — С. 1213.
  40. Э. Сравнительная иммунология М.: Мир, 1980. — 422 с.
  41. В. Электронный ресурс. // Текущая ситуация в молочной отрасли мира и Российской Федерации: сайт. http://www.dairvnews.ru/news/detail.php7IBLOCK ID=l&SECTION ID=2&ELEM ENT ID=29 916
  42. Е.Я., Никифорова Л. Н., Мазепкин А. А., Новикова Т. Г. и др. Совершенствование красно-пестрой породы крупного рогатого скота на Брянщине //Зоотехния. 2005. — № 9. — С. 2−3.
  43. С.И., Патологическая физиология сельскохозяйственных животных М.: Колос, 2001.
  44. В. Селекция отечественного скота: мифы и реальность // Животноводство России. 2009. — Октябрь. — С. 4−5.
  45. Н.А. Лизосомально-катионный тест для оценки уровня резистентности организма крупного рогатого скота // Ветеринария.- 1988.- № 5.-С.26−28.
  46. В.М., Петров Р. В., Хаитов P.M. Иммуномодуляция: история, тенденция развития, современное состояние и перспективы // Иммунология. -2002. Т. 23. — № 23. — С. 132−138.
  47. В.А., Кононов А. В., Мищенко А. В., Думова В. В., Никешина Т. Б., Павлов Д. К. Влияние физиологического и иммунобиологического статуса крупного рогатого скота на уровень поствакцинального иммунитета // Ветеринария Кубани, 2008. — № 2
  48. В.А., Яременко Н. А., Мищенко А. В., Кононов А. В., Думова В. В. Особенности иммунодефицитов у крупного рогатого скота // Ветеринария, — 2006 -№ 11 С. 17−20.
  49. В.А., Павлов Д. К. Анализ причин выбытия высокопродуктивных коров // Современная ветеринарная защита коров высокопродуктивных пород: Сб. ст. Первой научно-практической конф., Воронеж, 2005. С. 4−6.
  50. А. Б. Количественная характеристика иммуноглобулинов классов G (G1h G2), М и, А сыворотки крови здорового и больного лимфолейкозом крупного рогатого скота // Дисс. канд. биол. наук. Москва, 1988.- 146 с.
  51. Е.Н. Оценка биохимического и иммунного статуса телят в ранний постнатальный период при выпаивании замороженного молозива с высоким содержанием иммуноглобулинов // Сельскохозяйственная биология, 2008. -№ 2. — С. 84−87.
  52. .А. Пособие по клинической биохимии / Под ред. JI.B. Акуленко. М.: ГЭОТАР-Медиа, — 2007. — С.- 256.
  53. JI.C. Лизинговые каникулы // Известия агропромышленный комплекс России, 2009. — Октябрь. — С. 4.
  54. Официальный интернет — портал Минеетерства сельского хозяйства РФ: сайт. http://www.mcx.ru/navigation/docfeeder/show/r45.htm, (дата обращения: 15.04.2010)
  55. И.С., Лукьяновский В .А., Мироненко А. К., Кокуркин А.Н- Деформация копытец у высокопродуктивных коров // Ветеринарный консультант. 2003. — № 5. — С.29−30.
  56. И.А., Ульянова M.G. Оценка функциональной активности нейтрофилов крови" животных // Ветеринария.- 1984.- № 3.- С. 68−69.
  57. Дж., Чейн Б. М. Наглядная иммунология. // М.: Гэотар Медицина, 2002, -95 с.
  58. Р.В., Хаитов P.M., Пинегин Б. В. Иммунодиагностика иммунодефицитов // Иммунология. 1997.-№ 4.-С. 4−7.
  59. Р.В., Хаитов P.M., Манько В-М. и др. Оценка иммунного статуса, иммунологический мониторинг современные проблемы клинической иммунологии и аллергологии // Иммунология. -1994. — № 6.-С. 4−9.
  60. Р.В. Иммунология // М.: Медицина. 1982. -368 с.
  61. Р.В., Хаитов P.M., Пинегин Б. В. и др. Оценка иммунного статуса человека при массовых обследованиях (Методология и методические рекомендации).- М.: Медицина. 1989. — 153 с.
  62. Ф.П., Петрова О. Ю. Использование иммуностимуляторов для повышения физиологического статуса молодняка // Ветеринарный консультант. -2007.-№ 20.-С 18−20.
  63. Ю.К. Иммунохимическая и функциональная характеристика иммуноглобулинов крупного рогатого скота при лейкозе // Дисс. доктора биол. наук в виде научного доклада, Москва, 1991. 47 с.
  64. К.К. Производственное долголетие коров в Ленинградской области // Ветеринария.- 2008. № 2. С. 9- 11.
  65. Н.А. Биометрия. Изд-во Сибирского отделения АН СССР.-Новосибирск, 1961. 362 с.
  66. И.Д., Лебедев К. А., Васенович М. И. и др. Способ определениялиммунологического состояния организма. А. с. 1 090 409 (РФ) МКИ, А 61 К 39/00, № 3429. 198/28−13- заявл. 23.04.82- опубл. 07.05.84, Бюл. № 17.
  67. Д.П. Иммунохимический анализ перехода некоторых белков из крови в молоко и молозиво // Физиология и биохимия лактации. Л.: 1972
  68. И.А., Мироненко А. К. Профилактика неспецифической бронхопневмонии у телят // Ветеринария.- 2007. № 1. — С. 42- 46.
  69. Ю.П., Серна Ф. Р. Латексный тест в диагностике внутриутробной инфекции // Лаб. Дело. 1974. — № 11. — С. 682−684.
  70. М.И., Шахов А. Г., Чусов Д. В., Золотарев А. И., Лебедев М. И., Ермолова Т. Г., Близнецова Г. Н. Коррекция антиоксидантного статуса новорожденных телят для формирования более высокого колострального иммунитета // Доклады РАСХН. 20Ю.-№ 2. — С. 42−44
  71. В.Б., Черепанов Г. Г. Мониторинг физиологических функций и признаков продуктивности у молочных коров // Сельскохозяйственная биология. -2005.-№ 4.-С. 3−9.
  72. А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология // М.: «Мир».- 2000.- 592с.
  73. Л.В., Волгин В. И. Совершенствование системы кормления высокопродуктивных коров // Веткорм. 2008. — № 1. — С. 12−14
  74. А.А. Иммуная система: норма и адаптация // Иммунология. -2009. -№ 1.-С. 7−12.
  75. Ю.М. Роды коров в боксах как метод профилактики патологии родов и бесплодия // Ветеринария.- 2008. № 4. — С. 35- 37.
  76. М.А., Федоров Ю. Н., Савич О. М. Иммунный статус и инфекционные болезни новорожденных телят и поросят // Ветеринария.- 2006. -№ 11.-С. 3−5
  77. П.И., Реджепова Г. Р., Сисягина Е. П. Способы профилактики массовых респираторных болезней телят // Ветеринарный консультант. — 2007. -№ 19.-С. 16−17.
  78. В.И. Иммуномодуляция защитных факторов организма коров // Ветеринария.- 2002. № 2. — С. 29- 34.
  79. М.Д. Иммунобиологический/ статус черно-пестрого- скота Восточной Сибири и влияние на него различных аутоэкологических факторов. // Дисс. докт. биол. наук: Омск.- 2000--590 с.
  80. А.Н. Программа «Фелуцен»: как создать прочную защиту, от иммунодефицита//Веткорм. -2008- № 1.
  81. В.И., Крамарь П. В. Сохранность импортного молочного скота в хозяйствах Краснодарского края и причины его выбытия // Сб. научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья, Екатеринбург, 2010. С. 629−631.
  82. С.В.- Столповский Ю.А.- Банникова JI.B. и др. Генетические ресурсы крупного рогатого скота: редкие и исчезающие отечественные породы -М.- Наука, 1993.- 171 с.
  83. Федоров Ю: Н! Первичные иммунодефициты у животных: характеристика, диагностика, коррекция // Тезисы докл. Международной конф. — Самара, 2009. -С. 497−505.
  84. Ю.Н. Иммунодефициты крупного рогатого скота // Ветеринария. -2006.-№ 1.-С. 3−6.
  85. Ю.Н. Иммунокоррекция: применение и механизм действия иммуномодулирующих препаратов // Ветеринария. 2005.- № 2. — С. 3−6.
  86. Ю.Н. Иммунобиологические основы и принципы профилактики болезней новорожденных телят // Ветинформ, 2002. — № 1. — С. 16−17.
  87. Ю.Н. Оценка иммунного статуса и диагностика иммунодефицитов у животных // Ветеринария. 2002. — № 2. — С. 8−9.
  88. Ю.Н., Верховский О. А. Иммунодефициты домашних животных. Москва. 1996. 96 С.
  89. Ю.Н., Верховский О. А., Слугин И. В. Основы иммунологии и иммунопатологии собак. // Москва. 2000. — 248 с.
  90. Ю.Н., Частов А. А. Этиологическая структура и иммунопрофилактика желудочно-кишечных болезней телят в ранний постнатальный период // Тезисы докл. Международной конф. — Самара, 2009. -С. 506−512.
  91. Ю.Н., Кадыров С. О., Ездакова И. Ю. и др. Технология получения моноспецифических антисывороток к иммуноглобулинам' животных // Труды ВИЭВД988. Т.66. — С. 41−46.
  92. Г. И. Выделение отдельных классов иммуноглобулинов сыворотки крови крупного рогатого скота и использование их в иммунохимических исследованиях// Автореф. дисс. канд. биол. наук. М., 1983,-16 с.
  93. В.И. Успехи и проблемы российского животноводства // Животноводство России. Спецвыпуск 2008. С. 2−4
  94. Фисинин- В.И., Дунин И. М., Амерханов Х. А. и др. Рекомендации по стабилизации поголовья крупного рогатого скота и реализации его генетического потенциала в хозяйствах Российской Федерации // М.: ФГНУ Росинформагротех. 2006. — 60 с.
  95. X. Иммунологические методы // М.: Мир. 1979. — 518 с.
  96. P.M., Пинегин Б. В. Иммунная система желудочно-кишечного тракта: особенности строения и функционирования в норме и при патологии // Иммунология. 1997. — № 5. — С. 4−7.
  97. Р.Б., Пинегин Б. В., Истамов Х. И. Экологическая иммунология. М.: ВНИРО, 1995.-219 с.
  98. В.В., Двоеглазов Н. Г., Агаркова Т. А., Осипва Н. А. Рациональная схема применения диагностических тест-систем при оздоровлении хозяйств от инфекции вируса лейкоза крупного рогатого скота //
  99. Сб. научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья, Екатеринбург, 2010. С. 261−264.
  100. Н.А. Реакция агглютинации латекса // В кн.: Серологическая диагностика паразитарных болезней. М.: ВНИИМИ. 1982.- С. 14−25.
  101. В.М., Васильев B.C., Кабанцев А. И., Бондарь Т. В. Диагностика болезней животных и профилактика их на фермах и комплексах // Сборник научных трудов ИЭВС и ДВ Новосибирск 1984.
  102. В.М. Иммунологические аспекты резистентности телят // Дисс. доктора вет. наук, Новосибирск, 1983, -383 с.
  103. В.М. Колличественное определение иммуноглобулинов в сыворотке крови животных // Методические рекомендации. 1977. — Новосибирск. — 23 с.
  104. А.Н., Ковальчук JI.B. Иммунокоррекция // Иммунокоррекция и иммунореабилитация. Сб.научных.трудов. Саратов. 1991.-С. 3−16.
  105. Е.В. Структура и функции антител // М.: Мир. 1983. — 200с.
  106. А. От каждой коровы по теленку в год // Животноводство России. — 2008. Спец. выпуск молочное скотоводство. — С. 29−30.
  107. В.Е., Высоцкий A.M., Сердюк Н. А., Чумаченко В. В. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных//Киев: Урожай. 1990.- 136 с.
  108. А.Г., Федоров Ю. Н., Аргунов М. Н., Панин А. Н. и др. Методические рекомендации по оценке и коррекции неспецифической резистентности животных. Воронеж.- 2005.-62 с.
  109. А.Г., Федоров Ю. Н., Донник И. М., Панин А. Н. и др. Методические рекомендации .по оценке и коррекции иммунного статуса животных. Воронеж, 2005.
  110. И.А., Белоусов А. И., Невинный В. К. Применение гермивита и витадаптина высокопродуктивным коровам // Ветеринария.- 2009. № 1 С. 9−10.
  111. И.А., Верещак Н. А., Ряпосова М. В., Бодрова О. С., Вершинина И. Ю., Невинный В. К. // Коррекция иммунного статуса у высокопродуктивных коров. Ветеринария.- 2008.- № 2 С. 11−12.
  112. И.А., Ряпосова М. В., Стуков А. Н., Невинный В. К. Коррекция нарушения обмена веществ и воспроизводительной функции коров // Ветеринария.- 2007. № 9 — С. 9−11.
  113. В.И., Муравьев В. К., Онуфриев В. П. Выделение иммуноглобулинов и получение моноспецифических сывороток // Ветеринария. -1978.- № 1.-С. 44−47.
  114. М.Г., Медникова В.Г. NBT-тест у детей в норме и при гнойно-бактериальных инфекциях // Лаб. дело.- 1978.- № 1. С. 663−666
  115. М.Г., Нестерова И. В., Старченко В. М. Тест с нитросиним тетразолием в оценке иммунологического статуса детей с гнойно-септическими заболеваниями // Лаб. дело.- 1980.- № 7.- С. 342−344.
  116. Н.Н. Динамика иммуноглобулинов в сыворотках крови и молозива коров // Ветеринария, — 2006. № 1 — С. 45−47.
  117. А.А., Требухов А. В., Андрейцев М. З., Танкова О. В. Инновационные технологии и адаптации импортного скота в животноводческих комплексах Алтайского края // Сб. научных трудов ведущих ученых России и Зарубежья, Екатеринбург, 2010. С. 261−264.
  118. Adams E.C. Latex agglutination. Determination of IgG in Neonatals and in colostrums // Патент США № 4.542.103. 17 сентября 1985
  119. Aitken R., Hosseini R., MacDuff R. Structure and diversification of the bovine immunoglobulin repertoire // Vet. Immunol. Immunopathol. 1999. — N 72. — P. 2129.
  120. Arthington J. D., Cattell M. B. and Quigley J. D. Effect of dietary IgG source (colostrum, serum, or milk-derived supplement) on the efficiency of IgG absorption in newborn Holstein calves // J. Dairy Sci. 2000.- N 83. — P. 1463−1467.
  121. Baumstark J.I. et. al. A preparative method for the separation of 7S gamma globulin from human serum // Arch, biochem. Biophysics. 1964. — N 108.- P 514 522
  122. Bourne K. Immunoglobulins // Annual Review of Medicine. 1971. — 270 p.
  123. Brambell F. W. R. The passive immunity of the young mammal // Biol. Rev. -1958.- N33.-P. 488.
  124. Butler J. E. Biochemistry and biology of ruminant immunoglobulins // Prog. Vet. Microbiol. Immun. 1986 — N 2. — P. 1−53.
  125. Butler J. E. Immunoglobulin gene organization and the mechanism of repertoire development // Scand. J. Immunol. 1997. — N 45. — P. 455−462.
  126. Butler J.E. Immunologic aspects of breast feeding, antiinfectious activity of breast milk // Sem. Perinatol. 1979. — P. 255−270.
  127. Chigerwe M., Dawes M., Tyler J., Middleton J. Moore M., Nagy D. Evaluation of a cow-side immunoassay kit for assessing IgG concentration in colostrum // J. Am. Vet. Med. Assoc. 2005. -N 227. — P. 129−131.
  128. Collin R., Prosser C., McLaren R., Thomson M., Malcolm D. Development and validation of a nephelometric immunoassay for IgGi in milk // J. Dairy Res. 2002. -N69. P.- 27−35
  129. Gaily J: A., Edelman G.M. Corroboration of recent models of the yG immunoglobulin molecule // J. Exp. Med. 1965.- N 121.- 373 p.
  130. Goldman A. S., Garza C., Nichols B. L., Goldblum R. M. Immunologic factors of human milk during the first year of lactation // J. Pediatr. 1982. — N 100. — P. 563 567.
  131. Haasnoot W., Olieman K., Cazemier G., Verheijen R. Direct biosensor immunoassays for the detection of nonmilk proteins in milk powder. // Journal of agricultural and food chemistry. 2001. — N 49(11). — P. 5201−5206.
  132. Hagemoster W.A., Roth J.A., Lofstedt J et al. Granulocytopathy in a Holstein heifer//J. Am. Vet. Med. Assoc. 1983. -N 183. -P. 1093- 1094.
  133. Homola J, Yee SS, Gauglitz G. Surface plasmon resonance sensors: Review // Sensors Actuators B: Chem. 1999. — N 54. — P. 3−15.
  134. Hood L., Gray W. R., Sanders G., Dreyer W. J. Light chain evolution // Cold Spring Harbor Symp., Quant. Biol. 1967.- N 32. — P.133−145.
  135. Indyk H.I., Filonzi E.L. Determination of Immunoglobulin G in Bovine Colostrum and Milk by Direct Biosensor SPR-Immunoassay // J. of AOAC International. 2003. — N 2. — P. 386 — 393.
  136. Korhonen, H.- Marnila, P. and Gill, H. S. Bovine milk antibodies for health // Brit. J. Nutr. 2000. — N 48- Suppl. 1. — P. 135 — 146.
  137. Kristensen F., Antczak D. F. Advances in veterinary immunology 1982 // Developments in Animal and Veterinary Sciences, 12, Elsevier Scientific Publishing Company. Amsterdam Oxford — New York. — 1983. — P. 43−133.
  138. Leach I.M., Ruck B.J. Detection of HAA by the Latex Agglutination test // Brid. Med. J. 1971. — N4. — P. 597−598.
  139. Levieux D., Oilier A. Bovine immunoglobulin G, beta-lactoglobulin, alpha-lactalbumin and serum albumin in colostrums and milk during the early post partum period // J. Dairy Res. 1999. — N 66. — P. 421−430.
  140. Li-Chan E. C. Y., Kummer A. Influence of standards and antibodies in immunochemical assays for quantitation of immunoglobulin G in bovine milk // J. Dairy Sci. N 80. — P. 1038−1046.
  141. V.D., Romero C.R. 2001- J. Dairy Sci. N 84. — P. 389−391.
  142. Luckins A.G. Studies on bovine trypanosomiasis. Serum immunoglobulin levels in Zebu cattle exposed to natural infection in East Africa // British Vet.J. 1972. — N 128.-P. 523−528.
  143. Lunn D.P., McClure J.T. Clinico-pathological diagnosis of immunodeficiency // Equine Vet. Edu. 1993.- N 5. — P. 30−32.
  144. Maeda S., Morikawa A., Tokuyama K., Kuroume T. The concentration of bovine IgG in human breast milk measured using different methods // Acta Pediatr. -1993. -N82.-P. 1012−1016.
  145. Malmqvist M. Biospecific interaction analysis using biosensor technology // Nature.- 1993.-N 361(6408).-P. 186−187.
  146. Manchini G et. al. A single-radial-diffusion method fo the immunological quantitation of proteins // Immunochemistry/ 1965/ -V.2.-P/ 235−254.158'. Marchalonis J.J., Cone R.E. The phylogenetic emergence of vertebrate immunity // AJEBAK 1973'. — 461 P.
  147. Naessens J. Surfase immunoglobulin on В lymphocytes from cattle and sheep // Int.Immunol. 1997. — N 9. — P. 349−354.
  148. Naessens J., Williams D.J.L., Characterization and measurement of CD5+ В cells, in normal and Trypanosoma congolense-infected cattle // Eur. J. Immunol. -1992. N-22.-P. 1713−1718.
  149. Naessens J., Newson J., Williams D. J. L., Lutje V. Identification of isotypes and allotypes of bovine immunoglobulin M with monoclonal antibodies // Immunology. 1988. -N 63. — P. 569−574.
  150. Nakane P.K., Kawaoi A. Peroxidase-labelled antibody: a new method of conjugation //J.Histochem.Cytochem. 1974. -N 22. — P. 1084−1091.
  151. Newby T.J., Bourne F.J. The nature of the local immune system of the bovine intestine // Immunology. 1976. — N 118. — P. 461−465.
  152. Nielsen K., Sheppard J., Holmes W., Tizard I. Experimental bovine trypanosomiasis. Changes in serum immunoglobulins, complement and complement components in infected animals // Immunology. 197. -N 35. — P. 817−826.
  153. OIE Terrestrial Manual. 2008. — Chapter 2.4.11.- P. 729−738.
  154. Oikawa M., Yoshihara Т. Wada R. et al. Latex agglutination test for handy, rapid measurement of foal serum and colostral IgG // Bull. Equine Res. Inst. 1986. -N23.-P. 62−66.
  155. Pedersen R.E., Paulrud C.O., Tucker W.B. Influence of bovine antiserum (Bo-Bac 2X) injection on colostral immunoglobulin G absorption in neonatal dairy calves // J. Dairy Sci. 2000. — N 83(12). — P. 2829−2833
  156. Symons D. B. A., Clarcson C. A., Beal D. Structure of bovine immunoglobulin constant region heavy chain gamma 1 and gamma 2 genes // Mol. Immunol. 1989. -N26.-P. 841−850.
  157. White D.G. Evaluation of a rapid specific test for detecting colostral IgGj in the neonatal calf// J. The Veterinary Record. 1986. — January N 18. — P.68−70.
  158. Williams D. J. L., Newson J., Naessens J. Quantitation of bovine immunoglobulin isotypes and allotypes using monoclonal antibodies // Vet. Immunol. Immunopathol. 1990. -N 24. — P. 267−283
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!