Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Функциональные и структурные сдвиги в нейронах моллюсков при их деполяризации и гиперполяризации

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящий момент отсутствует единое мнение о направленности и выраженности морфо-гистохимических изменений в нейронах при их активации. Не существует также определенного ответа на вопрос, какие именно функциональные сдвиги несут ответственность за развитие структурных и метаболических перестроек в нейронах. Выдвигаются гипотезы о роли синаптических процессов и действии медиатора (Kernell… Читать ещё >

Функциональные и структурные сдвиги в нейронах моллюсков при их деполяризации и гиперполяризации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Электрофизиологическая реакция нейронов на их деполяризацию и гиперполяризациго
    • 1. 2. Структурные и гистохимические сдвиги в нейронах при их активации
  • ГЛАВА 2. МЕТОДИКА
  • ГЛАВА 3. ХАРАКТЕРИСТИКА НЕЙРОНОВ МП-I МОЛЛЮСКА PIANO
  • RBI S CORimJS
    • 3. 1. Нейроны МП-I в норме
    • 3. 2. Функциональные и морфо-гистохимические изменения в клетках МП-I, вызываемые проколом их мембраны микроэлектродом
    • 3. 3. Обсуждение результатов
    • 3. 4. Резюме
  • ГЛАВА 4. ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ, СТРУКТУРНЫЕ И ГИСТОХИМИЧЕСКИЕ СДВИГИ В НЕЙРОНАХ ПРИ ДЕПОЛЯРИЗАЦИИ
    • 4. 1. Влияние деполяризующих толчков тока на нейроны
    • 4. 2. Влияние деполяризации постоянным током на нейроны
    • 4. 3. Изменения в клетках при действии повышенного содержания ионов К+ в окружающей среде
    • 4. 4. Действие ацетилхолина на нейроны
    • 4. 5. Обсуждение результатов
    • 4. 6. Резюме .jgg
  • ГЛАВА 5. ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ И МОРФО-ГИСТОХИМИЧЕСКИЕ СДВИГИ В НЕЙРОНАХ ПРИ ГИПЕРПОЛЯРИЗАЦИИ
    • 5. 1. Влияние внутриклеточного гиперполяризующего тока на нейроны
    • 5. 2. Действие серотонина на нейроны
    • 5. 3. Обсуждение результатов
    • 5. 4. Резюме
  • ГЛАВА. б ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ И МОРФО-ГИСТОХИМИЧЕСКИЕ СДВИГИ В НЕЙРОНАХ ПРИ ДЕЙСТВИИ СТРИХНИНА
    • 6. 1. Введение
    • 6. 2. Влияние стрихнина на нейроны МП-1 моллюска
  • Planorbis corneas Tet
    • 6. 3. Изменения в спинальных центрах и мотонейронах лягушки при действии стрихнина
    • 6. 4. Обсуждение результатов
    • 6. 5. Резюме
  • ГЛАВА 7. ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ И МОРФО-ГИСТОХИМИЧЕСКИЕ СДВИГИ В НЕЙРОНАХ ПРИ ДЕЙСТВИИ ПРЕПАРАТА ЖЕНЬШЕНЯ
    • 7. 1. Введение
    • 7. 2. Влияние препарата женьшеня на нейроны МП-1 моллюска Planorbis corneas
    • 7. 3. Влияние препарата женьшеня на изменения, вызываемые в нейронах МП-1 гиперполяризующим и деполяризующим внутриклеточным постоянным током

    7.4 Влияние препарата женьшеня'1 на динамику привыкания нейронов к ортодромному и внутриклеточному раздражению. Действие женьшеня на эффективность синаптической передачи между индентифицированными нейронами моллюска Helix lac огаш

    7.5 Влияние препарата женьшеня, на изменения в мотонейронах спинного мозга лягушки, вызванные их длительной высокочастотной активацией

    7.6 .Обсузвдение результатов

    7.7 Резюме

Актуальность темы

Работами многих авторов показано изменение структуры и размеров нервных клеток при различных нагрузках на животное. Вместе с тем известно, что при активации меняются и основные параметры, характеризующие функциональное состояние нейронов: уровень мембранного потенциала, величина си-наптических потенциалов, амплитуда и частота потенциалов действия, их длительность, порог возбуждения и т. д. (Экклс, 1966; Ходоров, 1979; Костюк, Крышталь, 1981). В значительном числе исследований выявлена связь между изменениями структуры нервных клеток, сдвигами их метаболизма (в частности, обмена белков и РНК) и экспериментально вызванной функциональной активностью нейронов (Hyden, 1963; Гейнисман, 1974; Меркулова, Даринский, 1982).

В настоящий момент отсутствует единое мнение о направленности и выраженности морфо-гистохимических изменений в нейронах при их активации. Не существует также определенного ответа на вопрос, какие именно функциональные сдвиги несут ответственность за развитие структурных и метаболических перестроек в нейронах. Выдвигаются гипотезы о роли синаптических процессов и действии медиатора (Kernell, Peterson, 1970; Гахова, Веприн-цев, 1973; Даринский, 1979). Закономерно ставится вопрос об участии в морфо-функциональных сдвигах ионов калия (Бродский с соавт., 1969; Lipton, Heimbach, 1978), а также кальция и хлора (Вепринцев, 1973; Gisiger, 1973). Вместе с тем, в литературе накапливаются данные о том, что сдвиги мембранного потенциала нейронов могут сопровождаться изменениями их размеров и содержания в них РНК (Даринский, 1973; Авдеева, 1975; Веприн.

— б цев, 1977). Существует, однако, ряд работ, результаты которых свидетельствуют об отсутствии связи между уровнем мембранного потенциала нервных клеток и морфо-гистохимическими изменениями в них (Аракелов, 1969; Волков, 1974). Таким образом, вопрос о том, в какой степени сдвиг мембранного потенциала участвует в запуске структурных и метаболических перестроек нейронов, требует дальнейшего изучения.

Целью работы явилось: I. Выявление связи между сдвигом мембранного потенциала и развитием структурных и гистохимических изменений в клетке. 2. Использование полученных данных при изучении электрофизиологических и морфологических изменений в нейронах при их усиленной синалтической и прямой внутриклеточной активации. Выявление возможности предотвращения указанных изменений с помощью одного из препаратов, обладающих анти-стрессорным и адаптивным действием (женьшеня) — выяснение физиологического механизма действия женьшеня на нейрональном уровне.

В связи с этим были поставлены следующие задачи: а) выявление изменения размеров и содержания РНК в нейронах при сдвиге их мембранного потенциала (деи гиперполяризации), вызываемого действием медиаторов, изменением концентрации ионов в окружающем растворе и при использовании внутриклеточной поляризацииб) сопоставление прижизненных изменений размеров активированных нейронов с изменениями, наступившими после их фиксациив) выяснение вопроса: изменяется ли при действии женьшеня (одного из веществ класса адаптогенов) эффективность синалтической передачи. Определение направленности и выраженности действия этого вещества на функциональные и морфо-гистохимические параметры нейронов, а также на их ультраструктуру. Выявление характера действия препарата на нервные клетки, подвергающиеся усиленной внутриклеточной и синалтической активации.

Научная новизна. Полученные в работе данные дают возможность по-новому представить механизм, с помощью которого на нейрональном уровне осуществляется взаимосвязь между функциональной активностью клеток и морфо-гистохимическими сдвигами в них:

— показано, что деполяризация, развивающаяся в нейроне в результате действия медиатора, изменения ионного состава окружающей среды или прямой внутриклеточной активации, вызывает увеличение размеров клеток, а гиперполяризация — их сжатие. Установлено влияние смещения уровня мембранного потенциала нейронов на содержание в них РНК. Тем самым выявлена роль сдвига мембранного потенциала в регуляции морфометрических и гистохимических изменений в клетках;

— установлено, что любая из применявшихся форм активации нейронов вызывает изменение степени их сжатия при последующей фиксации по сравнению с интактными клетками;

— показано действие женьшеня на одиночные нейроны, синап-тическую передачу между ними и рефлекторную дугу спинного мозга позвоночных. Впервые установлено, что действие женьшеня не влияет на эффективность синаптической передачи. Выявлено, что введение женьшеня предотвращает развитие патологических сдвигов в нервных клетках как при синаптической, так и прямой их активации. На нейрональном уровне показано, что действие препарата опосредуется стабилизацией мембранного потенциала.

Теоретическое и практическое значение. Полученные данные выявили значение сдвига уровня мембранного потенциала как определяющего фактора, служащего сигналом для морфологических и метаболических изменений в нейронах.

Обнаруженное уменьшение степени сжатия нейронов после любой предварительной активации клеток необходимо учитывать при исследовании нейро-гистологического материала.

Созданы практические предпосылки для направленного управления морфологическими и метаболическими сдвигами в клетке. Речь идет о таких воздействиях, которые влияли бы на процессы изменения обмена веществ и сдвиги структуры нейронов путем изменения (либо стабилизации) их мембранного потенциала. В представленной работе исследовано действие женьшеня на функциональные и морфо-гистохимические изменения в нервных клетках. Некоторые формы нашего экспериментального воздействия на нейроны приводили к патологическим изменениям в их структуре. Характер этих изменений сходен с тем, который отмечается в нервных клетках человека и животных при различных заболеваниях. Изучение механизмов возникновения этих сдвигов, а также возможностей предотвращения развивающейся патологии имеет большое практическое значение.

Апробация работы. Результаты исследования доложены на Всесоюзной конференции «Цитологические корреляты торможения нейронов» (Ленинград, 1978) — Всесоюзной конференции «Ультраструктура нейронов и фармакологическое воздействие» (Пущино-на-Оке, 1981) — конференции молодых специалистов «Нейрон и меж-нейрональная интеграция» (Ленинград, 1982).

Основные положения и результаты диссертации изложены в 7 печатных работах.

Объем и структура диссертации. Работа изложена на 286 страницах машинописного текста, иллюстрирована 40 рисунками и 39 таблицами. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания методики, 5 глав с изложением экспериментального материала, заключения, выводов и указателя литературы, включаю.

ВЫВОДЫ.

1. С целью изучения взаимосвязи между смещением уровня мембранного потенциала нейронов, изменением их размеров и содержанием в них РНК, исследовали гигантские нервные клетки МП-I моллюсков Planorbis corneus. Полученные данные легли в основу изучения морфо-функциональных сдвигов в нейронах моллюсков и лягушки при их интенсивной синалтической и прямой внутриклеточной стимуляции. Исследовалась возможность предотвращения на нейрональном уровне указанных сдвигов с помощью препарата адаптивного типа (женьшень).

2. Деполяризация нейронов, развивающаяся в результате таких форм воздействия, как изменение концентрации ионов калия в экстраклеточной среде, прямое внутриклеточное раздражение или действие медиатора, приводит к увеличению размеров клеток на 11−26%, в то время как гиперполяризация — к их уменьшению на 7−23% от исходной величины. Тем самым показана связь между направленностью сдвига мембранного потенциала и изменениями размеров нейронов в сторону их увеличения либо уменьшения.

3. Деполяризация или гиперполяризация гигантских нервных клеток моллюска Planorbis corneus, развивающиеся в результате их пятиминутной активации, приводят к уменьшению содержания нейрональной РНК: в цитоплазме до 36−62% к исходной величине, и независимо от этого в ядре до 52−75% (р<0.05).

4. Все применявшиеся виды раздражения вызывают уменьшение сжатия нервных клеток при фиксации в жидкости Карнуа по сравнению с интактными нейронами (р<0.05).

5. Изменение порога раздражения нейронов при сохранении постоянного уровня их мембранного потенциала, развивающееся в результате различных видов активации (действие медиаторастрихнин) не влияет на прижизненные размеры нейронов и на изменение содержания в них РНК. б. Изучали действие интенсивного внутриклеточного и синал-тического раздражения нейронов. На гигантских клетках МП-I моллюсков показано, что пятиминутное смещение постоянным током мембранного потенциала до нуля приводит к увеличению размеров клеток на 22%, в то время как удвоение мембранного потенциалак уменьшению на 13% (р<0.05). Высокочастотная синаптическая активация мотонейронов лягушки сопровождается их патологическим пикноморфным сжатием и деструктивными изменениями на ультраструктурном уровне.

Выявляли возможность предотвращения указанных сдвигов в нейронах. В условиях действия препарата адаптивного типа (женьшеня) в клетках моллюсков не появляется пост-активационного сдвига мембранного потенциала. Изменения размеров нейронов при деполяризующем раздражении уменьшены на 11% (р< 0.05), а при гиперполяризующем отсутствуют вовсе. После предварительного введения женьшеня интенсивная синаптическая активация не приводит к появлению мотонейронов пикноморфного типадеструктивные изменения в клетках отсутствуют. На модели моносиналтической связи у моллюсков Helix lucorum впервые показано, что женьшень не влияет на эффективность синаптической передачи.

Таким образом, изучение действия препарата женьшеня на одиночные нейроны, синапсы между ними и клетки рефлекторной дуги выявило, что женьшень препятствует развитию морфологических изменений в нейронах как при внутриклеточном, так и синаптическом их раздражении. При этом его действие сопровождается стабилизацией мембранного потенциала клеток и не распространяется на эффективность синаптической передачи.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Полученные в настоящей работе данные позволяют (делать заключение о существовании комплекса функциональных, структурных и метаболических сдвигов в нейронах при их активации. Изменяются такие параметры, как уровень мембранного потенциала и порог раздражения нервных клетокпроисходят изменения размеров и содержания РНК в их цитоплазме и ядре. Применявшийся в работе комплексный подход пэзволил сделать предположение о механизме запуска и регуляции некоторых морфологических и гистохимических перестроек в нейронах.

В первую очередь работа была направлена на выявление роли сдвигов мембранного потенциала в процессах морфологических и гистохимических изменений в нервных клетках при их активации. Деполяризующее воздействие в различных сериях экспериментов, представленных в главе 4, приводило к увеличению размеров нейронов, а ги-перполяризующее (глава 5) — к сжатию клеток по ходу раздражения. В том случае, когда активация не вызывала сдвига МП, морфологических изменений в нейронах не наблюдалось. Это позволило сделать вывод о том, что смещение уровня мембранного потенциала является фактором, определяющим направленность изменения размеров нейронов.

Важным является также вопрос о том, зависит ли развитие мор-фометрических изменений от вида активации, вызывающей сдвиг мембранного потенциала. Для выяснения этого вопроса производили смещение уровня МП различными способами: прямой поляризацией мембраны клеток, действием медиаторов и при помощи изменения концентраци ионов в окружающей нейроны среде.

Сопоставление результатов различных серий экспериментов позволяет прийти к выводу, что изменение размеров клеток определялось сдвигом уровня МП независимо от причин, благодаря которым этот сдвиг возникал. При этом для каждого вида раздражения, по всей вероятности, существует своя пороговая величина смещения уров ня мембранного потенциала, при которой развиваются изменения размеров клеток. Так, серотонин оказывал влияние на морфологические перестройки, вызывая гиперполяризацию мембраны на 2−4 мВ, в то время как применение постоянного тока, увеличивающего МП на 12 мВ, еще не приводило к сжатию нейронов. Аналогичные примеры имеются и в сериях, где активация осуществлялась с помощью деполяризующих видов раздражения.

Помимо сдвига уровня мембранного потенциала при воздействиях на нейроны, наблюдалось также смещение величины порога раздражения. Возникла необходимость выяснить роль изменения возбудимости для морфометрических перестроек клеток, поскольку в литературе имеются сведения о взаимосвязи между этими параметрами (см. главы 1,5).

Сопоставление данных различных серий экспериментов, в которых применялось деи гиперполяризующее воздействие на клетки, приводит к выводу о том, что уменьшение уровня возбудимости нейронов и изменение их размеров происходят независимо. При однонаправленных и одинаковых по выраженности изменениях порога раздражения может наблюдаться как увеличение, так и сжатие клеток. Так, при действии АХ в концентрации 2×10~% и при удвоении МП постоянным током происходит сильнее уменьшение возбудимости нейронов (величина порога возрастает до 239−250% от начальной), однако в первом случае клетки набухают, а во втором сжимаются. Анализ экспериментальных данных показывает, что применение некоторых видов активации вызывает изменение возбудимости клеток без сдвига уровня их о мембранного потенциала. Действие АХ в концентрации 2×10 М, например, приводило к тому, что порог раздражения возрастал вдвое, но изменения МП и размеров клеток в данной серии экспериментов не происходило. Применение гипер-калиевого раствора вызывало у всех активированных нейронов потерю возбудимости. В этих условиях увеличение размеров наблюдалось только в тех случаях, когда развивалась деполяризация мембраны нейронов. С другой стороны, морфо-метрические изменения могли происходить у клеток, порог раздражения которых при активации не изменялся. Такие данные получены при активации нейронов ацетилхолином в концентрации 2×10~% и 2 серотонином (I х 10 и I х 10 М).

Однако вывод о независимости развития, сдвигов размеров клеток и уровня их возбудимости представлялся бы неполным в отсутствие' данных о морфометрических изменениях при повышении возбудимости нейронов. В опытах с применением стрихнина показано, что повышение возбудимости не сопровождается какими-либо сдвигами размеров нервных клеток. Таким образом, изменение порога раздражения нейронов не играет роли в запуске’морфометрических сдвигов в них.

Помимо структурных, в работе подвергались изучению и гистохимические перестройки, возникающие при активации нейронов. В клетках, подвергавшихся проколу микроэлектродом, наблюдалось повышенное по сравнению с интактными нейронами содержание ядерной и цитоплазматической РНК. Любой другой из применявшихся видов пятиминутной активации, приводивший к изменению мембранного потенциала деи гиперполяризации), вызывал снижение содержания РНК в нейронах. Если сдвига МП не происходило, производившееся раздражение не оказывало влияние на гистохимические перестройки клеток. Особенно наглядно это подтверждают данные, полученные в тех сериях экспериментов, где активация приводила к изменению МП только у части нейронов. Так, при действии на клетки гипер-калиевого растfZ вора или АХ в концентрации 2 х ЮМ, сниженное содержание РНК обнаруживалось лишь в тех случаях, когда наблюдалось уменьшение мембранного потенциала.

Данные, полученные в этих сериях экспериментов, свидетельствуют также и о том, что гистохимические перестройки в нейронах развиваются 'независимо от изменения порога раздражения клеток. Снижение возбудимости могло отмечаться у всех активированных нейронов, подвергавшихся цитофотометрическому анализу как, например, в серии опытов с применением гипер-калиевого раствора, в то время как сдвиги содержания РНК возникали только при развитии на мембране деполяризации. С другой стороны, в экспериментах с воздейсто вием на клетки серотонина (I х ЮМ) показано, что сдвиги содержания РНК развивались в отсутствие изменения возбудимости нейронов. Все эти данные указывают на то, что смещение величины порога раздражения при активации клеток не является определяющим фактором для изменения уровня РНК в них.

Большое значение имеет вопрос о том, в какой мере морфологические изменения, выявленные на фиксированных препаратах, отражают происходящие в клетках прижизненные сдвиги. Для ответа на этот вопрос изучали изменения степени сжатия нервных клеток в фиксаторе после различных видов активации.

В работе показано, что любой вид раздражения приводит к достоверному уменьшению степени сжатия нейронов при их последующей фиксации. Прокол клетки микроэлектродом, как и всякая другая активация, вызывал уменьшение величины, на которую клетки сжимаются в жидкости Карнуа: так, в серии «КонтрольI» размеры нейронов на тотальном препарате составляли Ы% от размеров до фиксации, а в серии «Прокол-I» эта величина была равна 68%. То же относится и к другим экспериментам, в которых нейроны подвергались действию МЭ. На фоне изменений, которые вызывает прокол мембраны клеток, никакая другая активация не приводила к еще большему уменьшению степени сжатия нейронов в фиксаторе Карнуа. В этом убеждают результаты всех серий экспериментов, поставленных с физиологическим контролем, когда в клетку вводили микроэлектрод.

Сопоставление данных, представленных в настоящей работе, позволяет сделать заключение, что степень сжатия нейронов в результате их активации происходит независимоо от того, наблюдались или нет в нейронах физиологические, морфологические и гистохимические сдвиги. Так, активация гипер-калиевым раствором приводила у части нейронов к смещению уровня мембранного потенциала, размеров и содержания РНК. Другие клетки не изменяли ни одного из этих параметров. В то же время и те, и другие нейроны даже без введения в них МЭ достоверно уменьшали степень сжатия в фиксаторе Карнуа, что может являться очень точным критерием для того, чтобы выявить, предшествовало ли фиксации раздражение нейронов.

В задаче данного исследования входило также изучение влияния вещества из класса адаптогенов (женьшеня) на нервные клетки. Установлено, что ЖШ не изменяет эффективности синаптической передачи между идентифицированными препаратами моллюска Helix lucorum. У мотонейронов лягушки и клеток МП-I моллюска Planorbis comeus жень шень вызывал увеличение прижизненных размеров и препятствовал изменениям объема, развивающимся в результате их активации. Характерным для действия женьшеня является отсутствие патологических изменений структуры и ультраструктуры нейронов, подвергавшихся стрессовому воздействию. Полученные данные создают предпосылки для направленного изучения действия адаптогенов на нервную систем;

Таким образом, использованный в работе комплексный морфо-функциональный подход к изучению биоэлектрических, объемных, гистохимических и ультраструктурынх сдвигов в нейронах при их активации позволил сделать вывод о доминирующей роли изменения мембранного потенциала для запуска перестроек в клетке. В проведенном исследовании установлено, что любой из применявшихся в течение пяти минут видов воздействия, связанный со сдвигом МП, приводит к снижению содержания в клетках РНК. Выявлено свойство нейронов уменьшать степень сжатия в фиксаторе Карнуа после активации Показано защитное действие препарата женьшеня, предотвращающее морфологические и ультраструктурные сдвиги в нейронах, возникающие при их сильном раздражении.

Показать весь текст

Список литературы

  1. .И. Влияние женьшеня на подострое отравление бензолом у кроликов. В сб.: Материалы к изучению женьшеня и лимонника. Вып. З, Л., 1958, с.67−70.
  2. Н.И. Изменения ультраструктуры и биоэлектрической активности клеток Ретциуса при экспериментальных воздействиях.-Канд.дисс., Л., 1975.
  3. Н.И., Базанова И. С. Изменение ультраструктуры и биоэлектрической активности клеток Ретциуса медицинской пиявки при синаптическом и прямом раздражении.- Физиол.ж.СССР, 1974, т.60, № 10, с.1526−1530.
  4. Н.И., Базанова И. С., Машанский В. Ф., Меркулова О. С. Специфика процессов адаптации в нейроне при синаптической и внутриклеточной активации. Цитология, 1976, т.18, № 9,с.13−17.
  5. B.C., Греченко Т. Н., Соколов Е. Н. Влияние параметров электрических стимулов на эндонейрональную пластичность изолированных нейронов виноградной улитки.- Ж.высш.нервн.деят., 1978, т.28, № 4, с.851−853.
  6. Т.А. Реактивные и пластические изменения в нейронах моллюсков при «электрофизиологическом обучении». В сб.: Память и следовые процессы: тез.докл.Всесоюзн.конф., Пущино, 1974, с.57−58.
  7. Т.А., Безручко С. М., Воженина Н. И. Влияние электри3 3ческой стимуляции на включение Н-уридина и Н-лейцина в клетки изолированной нервной системы тритона. Биофизика, 1972, т.17, В I, с.77−84.
  8. Г. Н. Электрофизиологическое исследование ионных механизмов деятельности нервных клеток пиявки. Автореф. к'анд.1 дис., Л., 1970.
  9. B.C., Сутулов Л. С., Хачатурян А. А. Электронно-микроскопический анализ радиационного поражения субмикроскопических структур нервной клетки. В кн.: Проблемы высшей нервной деятельности, нейрофизиологии и нейроморфологии. Рязань, 1965, C. II7-II9.
  10. М.М., Супрунов Н. И., Прокофьева Н. Г. Влияние некоторых соединений, выделенных из растений семейства Araiiaceae, на биосинтез белка in vitro.- Растит. ресурсы, 1972, № 3,с.378−380.
  11. Ю.Г., Матвеева В. П. Изучение структурной организации нервной системы моллюска pianorbis corneus. В сб.: Бионика и математическое моделирование в биологии, Вып.1, Киев, 1961, с.3−18.
  12. Г. Г. Реакция нейронов улитки (Helix pomatia) на ортодромную стимуляцию и микроаппликацию ацетилхолина. -гНейрофизиол., 1971, т. З, № 5, с.543−549.
  13. Г. Г. Множественность ритмоводящих зон в нейронах виноградной улитки. Нейрофизиология, 1973, т.5, № I, с.88−89.
  14. Г. Г., Соколов Е. Н., Бродский В. Н. Изучение зависимости между электрической активностью и содержанием РНК в идентифицированном нейроне большого прудовика. Цитология, 1969, т. II, № 7, с.865−870.
  15. В.Л., Айрапетян С. Н. О действии оубаина на холиноре-цепторы гигантских нейронов улитки. Докл. АН СССР, 1980, т.251, № I, с.222−226.
  16. Н.И. Структурно-функциональная организация нейронов и межнейрональных связей. М., Наука, 1979.
  17. Э.Б., Завьялов А. В., Мельнисук П. В. Влияние судорожных и противосудорожных веществ на центральную регуляцию активности промежуточных нейронов спинного мозга. Л., Наука, 1971.
  18. В.Г., Осипов А. П., Каримов Р. Х., Эпштейн A.M., Левин С. В., Гениатуллин Р. А. Проявление влияния 5-гидрокситрип-тамина на конформационное состояние гисто-гематических элементов. В сб.: Нейромедиаторы в норме и патологии, Казань, 1979, с.18−20.
  19. В.В. Становление ультраструктуры ганглиозных клеток сетчатки в онтогенезе мышей линии СБА. В сб.: Изменение ультраструктуры клеток зачатка глаза в процессе его диффе-ренцировки. Тбилиси, 1977, с.39−56.
  20. И.С., Воробьев B.C., Евдокимов С. А. Исследование мембранного потенциала нейронов парасимпатического ганглия мочевого пузыря лягушки в условиях микроскопического контроля. Физиол. журн .СССР, 1970, т.56, № 5, с.718−724.
  21. И.С., Казанский В. В., Сергеев Н. А. Сопротивлениемембраны клетки Ретциуса медицинской пиявки при длительном воздействии.- Физиол.ж.СССР, 1976, т.62, № 5, с.789−792.
  22. П.М. Роль командных нейронов в организации безусловного оборонительного рефлекса виноградной улитки.- Канд.дис., М., 1977.
  23. O.K., Вепринцев Б. Н., Дьяконова Т. Л. Изменение ультраструктуры нейронов дождевого червя при усилении биоэлектрической активности, связанной с возбуждением клетки.-Биофизика, 1966, т. II, № I, с.69−74.
  24. Е.Е. Влияние женьшеня и некоторых других веществ на протекание алкогольного и гексеналового наркоза.- В сб.: Материалы к изучению женьшеня и других лекарственный растений. Дальнего Востока. Вып.5, Владивосток, 1963, с.129−132.
  25. Н.Н. Ультраструктура мозга при гипоксии. М., Медицина, 1979.
  26. Л.С. Изменение синтеза РНК при привыкании нейрона моллюска к электрическому раздражению.- В кн.: Клеточные механизмы памяти. Пущино-на-Оке, 1973, с.146−156.
  27. Л.С. Идентификация гигантских нейронов в центральной нервной системе брюхоногих моллюсков.- В сб.: Приборы и методы для микроэлектродного исследования клеток. Пущино, 1975, с.18−26.
  28. И.И. Женьшень. Л., Медгиз, 1957.
  29. БрехманИ.И., Элеутерококк. Л., Наука, 1968.
  30. И.И., Гриневич М. А., Глазунов Г. И. Влияние жидкого экстракта женьшеня на продолжительность «работы» белых мышей до полного утомления.- Сообщ.Дальневост. филиала Сиб.отд.АН СССР, 1963, вып.19, с.135−138.
  31. И.И., Дардымов И. В. К механизму повышения резистентности организма под влиянием препаратов женьшеня и элеутерококка.- В сб.: Синтез белка и резистентность клеток. Л., Наука, 1971, с.82−88.
  32. В.Я. Трофика клетки. М., Наука, 1966.
  33. В.Я., Арефьева А. С., Кузнецова Л. Н. О деструктивной фазе физиологической регенерации нейрона.- Цитология, 1966, т.8, № 5, с.882−884.
  34. В.Я., Вецринцев Б. Н., Гахова Э. Н. Влияние ионного состава окружающей среды на включение меченого уридина в РНК гигантских нейронов катушки.- В сб.: Биофизика мембран, Москва-Каунас, 1969, с.60−62.
  35. М.М. Влияние женьшеня на двигательную активность в эксперименте и в норме и в условиях измененных соотношений основных процессов высшей нервной деятельности.- Труды Харьковского мед. ин-та, 1957, т.15, вып.36, с.319−325.
  36. В.А. Об изменении объема тел двигательных и чувствительных нейронов спинного мозга и окружающих их глиальных клеток при различных состояниях двигателнной активности.-ДАН СССР, 1969, т.184, № 5, C. I23I-I234.
  37. Бурчинская Л. Ф. Нейрофизиологические и гистохимические свойства нейронов буккальных ганглиев моллюска катушки роговой
  38. Planorbis corneus).-Вестник зоол., 1968, № 4, С.59−62.
  39. Р.Е., Титов Ю. М., Швалев В. Н. Исследование некоторых нейрогистологических объектов методом сканирующей микроскопии.- Архив анат., гистол. и эмбриол., 1975, т.68, № 4,с.91−95.
  40. Г. А. Взаимодействие возбуждения и торможения в нейроне. Л., Медицина, 1970.
  41. В.Н. О путях регуляции биосинтеза РНК и белка в нейронах.- В кн.: Клеточные механизмы памяти. Пущино, 1973, с.167−186.
  42. В.Н. О связи электрической активности нервной клетки с синтезом в ней РНК.- В сб.: Биофизика сложных систем и радиационных нарушений. М., Наука, 1977, с.22−24.
  43. А.И. Формы внутриклеточных потенциалов действия сомы идентифицируемых гигантских нейронов моллюска.- Физиол. ж. СССР, 1974, т.60, J6 I, с.42−47.
  44. Ю.Н. О возможной взаимосвязи функциональных параметров нейронов с их размерами, — В кн.: Математические модели в биологии. Киев, 1974, с.37−42.
  45. Ю.Н. Связь размера нейрона большого прудовика с величиной его мембранного потенциала и потенциала действия.
  46. В сб.: Нейробионика и моделирование биосистем. Киев, 1980, с.60−64.
  47. .В., Калашникова М. М. К вопросу о функциональной морфологии ядерной оболочки и ее пор.- Арх.патол., 1972, т.34,7, с.31−37.
  48. Е.А., Зеймаль Э. В. Характеристика холинорецепторов нейронов брюхоногих МОЛЛЮСКОВ Limnaea Stagnalis Ь.и Planorbarius corneus L. В сб.: Свойства и функции микромолекул и макромолекулярных систем. М., Наука, 1969, с.216−225.
  49. Э.С. О химическом составе и фармакологическомдействии корня женьшень.- Фармакол. и токсикология, 19, т.10, Я 3, с.51−61.
  50. С.А. Действие медиаторных веществ на идентифицированные нейроны брюхоногого{моллюска^роговой катушки. Канд.дисс., Л., 1981.
  51. Э.Н., Вепринцев Б. Н., Бродский В. Я. Влияние ионного состава внешней среды на включение уридина-Н3 в гигантские нейроны моллюска Planorbarius corneus (L.). Биофизика, 1971, т.16, № 6, с.1004−1010.
  52. Ю.Я. Структурные и метаболические проявления функции нейрона. М., Наука, 1974.
  53. Brain Res., 1979, v.167, p.426−430.
  54. В.Д., Костюк П. Г., Майский В. А. Особенности генерации потенциалов действия в гигантских нейронах моллюсков.-Физиол.ж.СССР, 1964, т.50, № 11, с.1321−1328.
  55. В.Д., Костюк П. Г., Майский В. А. Изменение биоэлектрических характеристик мембраны гигантского нейрона при увеличении наружной концентрации ионов калия.- Биофизика, 1965, т.10, № 2, с.272−280.
  56. Ц.В. Изменение количества цитоплазматической РНК в нервных и глиальных клетках при развитии корковой эпилептической активности.- Сакартвелос ССР, Мецниербата академиик моамбе, сообщ. АН Груз.ССР, 1979, т.93, № 2, с.465−468.
  57. Ц.В., Сванидзе И. К. Изменение сухого веса глиальных и нервных клеток при аппликации стрихнина и морфина на поверхность коры головного мозга.- Изв. АН Груз.ССР, сер. биол., 1977, т. З, № 2, с.149−154.'
  58. Р.Н. Влияние потенциала действия и синаптического возбуждения на обмен РНК и белков в нервной ткани.- Успехи совр. биол., 1978, т.86, № 3(6), с.447−463.
  59. А.В. Некоторые характеристики спонтанной активности нейронов педального ганглия моллюска Pianorbarius corneus.-Журн.эвол.биохим. и физиол., 1973, т.9, № 3, с.303−305.
  60. А.В. Идентификация нервных клеток окологлоточного ганглия легочного моллюска Planorbis corneus. В сб.: 10 конф.мол. ученых ин-та физиологии им. А. А. Богомольца АН УССР. Тезисы докладов, Киев, Наукова думка, 1976, с.16−17.
  61. Т.В., Татарунас А. Б., Вульфиус Е. А., Вепринцев Б. Н. Влияние ацетилхолина и его аналогов на потенциал покоя нейронов брюхоногого моллюска Planorbis corneus. Журн.Эвол. Биох. и Физиол., 1971, т.7, № 5, с.509−515.
  62. Л.И. К механизму тонизирующего действия женьшеня навысшие отделы головного мозга.- В сб.: Вопросы невропсихиче-ских нарушений при травматических и инфекционных поражениях ЦНС, М., 1957.
  63. Р. Основы регуляции движений. М., «Мир», 1973.
  64. B.C., Даринский Ю. А. Об изменении объема нейрона при его деполяризации и гиперполяризации.- Архив анат., гистол. и эмбриол., 1973, т.65, 9, с.40−47.
  65. Ю.А. О влиянии микроэлектрода на регистрируемые физиологические параметры нейрона.- Физизиол.журн.СССР, 1973, т.59, }?. 4, с.551−557.
  66. Ю.А. Роль длительности и интенсивности активации афферентных волокон в регуляции морфологических сдвигов в нейроне.- Архив анат., гистол. и эмбриол., 1976, т.70, № 7, с.35−41.
  67. Ю.А. Морфо-функциональное исследование нейронов центральной нервной системы при различных формах ее активации.- Докт.дисс., Л., 1979.
  68. Ю.А. Роль фиксации мозга в выявлении функционально -обусловленных изменений размеров нейронов.- Архив анат., гистол. и эмбриол., 1983, т.84, № I, с.31−35.
  69. Ю.А., Замосковский Е. М., Меркулова О. С. О влиянии синаптических процессов на изменение структуры нейрона.-Физиол.журн.СССР, 1976, т.62, № 5, с.673−650.
  70. Ю.А., Корнеева Т. Е. К анализу функционально обусловленных изменений размера и окраски нейронов.- Физиол. журн. СССР, 1973, т.59, № 5, с.736−744.
  71. И.В. О возможных механизмах повышения неспецифической сопротивляемости организма под влиянием препаратов женьшеня и элеутерококка.- В сб.: Процессы адаптации и биол. активы, вещества, Владивосток, 1976, с. ПЗ-124.
  72. И.В. Женьшень, элеутерококк (к механизму биологического действия). М., Наука, 1976а.
  73. И.В. О возможных механизмах повышения неспецифической сопротивляемости организма под влиянием препаратов женьшеня и элеутерококка.- В сб.: Процессы адаптации и биол. активы, вещества. Владивосток, 19 766, с. ПЗ-125.
  74. И.В., Хасина Э. И. Влияние гликозидов элеутерококка на захват глюкозы диафрагмой крыс.- В сб.: Лекарств, средства Дальнего Востока, вып. II, 1972а, с.52−55.
  75. И.В., Хасина Э. И. Влияние гликозидов женьшеня и элеутерококка на активность гексокиназы.- В сб.: Лекарств, средства Дальнего Востока, вып. II, 19 726, с.56−59.
  76. Н.Н., Нечаева Т. А. Пути внутриклеточного влияния различных медиаторов на активность кислой рибонуклеазы в ткани головного мозга.- Ереван, 1974, т.9, с.171−176.
  77. Н.Н., Нечаева Т. А., Рубинская Н. Д. Некоторые взаимоотношения между эффектами ацетилхолина и катехоламинов на обмен РНК в нервной ткани.- Вопр.мед.хим., 1971, т.17, № 2,с.254−260.
  78. А.В., Базанова И. С., Казанский В. В. Корреляция между количеством РНК и величиной мембранного потенциала нейронов Ретциуса медицинской пиявки.- Физиол.ж.СССР, 1973, т.59, № 6, с.955−956.
  79. А.В., Казанский В. В. Анализ связи между размерами нейронов и их биоэлектрической активностью.- Физиол.ж.СССР, 1979, т.65, № 8, с.1231−1234.
  80. П.А., Костюк П. Г., Крышталь О. А. Действие кальцияна мембрану сомы гигантских нейронов моллюсков.- Нейрофизиол., 1973, т.5, J? 6, с.621−627.
  81. Т.Л. Активация синтеза РНК в глиальных клетках-сателлитах при генерации нейроном потенциалов действия.-Цитология, 1972, т. 14, № 9, C. II47-II55.
  82. Т.Л. Синтез РНК в гигантском нейроне моллюска при генерации потенциалов действия в ответ на прямую стимуляцию. Физиол.ж.СССР, 1977, т.63, }Ь 6, с.814−820.
  83. Т.Л., Вепринцев В. Н., Чапас А. Ф., Бродский В. Я. Индукция электрической активности синтеза РНК в нервной клетке.- Биофизика, 1965, т.10, № 5, с.826−831.
  84. Л.Н., Мантейфель Ю. Б. Ультраструктурные изменения нейронов крыши среднего мозга лягушки при возбуждении.- Известия АН СССР, сер.биол., 1970, № 4, с.540−552.
  85. С.А., Сафьянц В. И., Сыса Ю. М. Влияние стрихнина на контралатеральное торможение спинальных рефдексов.- Докл. АН СССР, 1966, т.168, № I, с.234−236.
  86. ЕЛаев Н. А. Синтез РНК в изолированных ядрах нервных клеток при действии ацетилхолина.- Цитология, 1978, т.20, В 10, C. II73-II78.
  87. А.П., Корякина Е. Д., Розин М. А. 0 возможном значении синтеза белка в механизме восстановления нервных клеток после их повреждения.- В кн.: Синтез белка и резистентность клеток, Л., Наука, 1971, с.14−18.
  88. С.В. Влияние стрихнина на реакции корковых нейронов при асинхронной афферентной импульсации.- Труды Смоленского мед. ин-та, 1977, т.53, с.62−69.
  89. Н.М., Чайляхян Л. М. Изменение мембранного потенциала различных типов клеток в культуре нервной ткани в зависимости от ионного состава наружной среды.- Цитология, 1970, т.12, № 10, с.1248−1254.
  90. С.Л. Комплексное исследование электрической активности, морфологических изменений и динамики РНК при возбуждении и торможении рецепторного нейрона рака.- Канд.дисс., Ростов-на-Дону, 1965.
  91. .М. Морфо-функциональный анализ активности мотонейронов спинного мозга при различной их стимуляции. -Канд.дисс., Л., 1975.
  92. Е.М., Даринский Ю. А. Об изменении ультраструктуры мотонейронов спинного мозга при их антидромной активации.-ДАН СССР, 1974, т.218, № 4, с.947−950.
  93. Е.М., Даринский Ю. А., Шаврина О. С. Изменение структуры, размеров и формы митохондрий мотонейронов при функциональных нагрузках.- ДАН СССР, 1978, т.242, № 4, с.936−938.
  94. В.А., Смирнова Г. Н. Влияние серотонина и норадреналина на активность нуклеазы из головного мозга крыс.- В сб.: Память и следовые процессы, тез.докл.4-й Всес.конф., Пущино, 1979, с. 24.
  95. Л.Ф. Морфологические изменения дендритов пирамидных нейронов сенсо-моторной коры крыс при двигательной тренировке.- В сб.: Функц.-структур, основы систем.деят. и механизмы пластичности мозга. Выпуск 3, М., 1974, с.175−179.
  96. А.С., Шефер В. Ф. Изменения в коре головного мозга при височной эпилепсии.- Журн.невропатол.психиатр., 1981, т.81, № 6, с.891−895.
  97. Л.А., Незлина Н. И. Изменения вызванных потенциалов и содержания плотных веществ нейронов коры кошки в процессе компенсаторной перестройки.- Нейрофизиология, 1972, т.4,1. Ь I, с.41−46.
  98. В.В., Базанова И. С., Машанский В. Ф., Меркулова О.С.
  99. Изменение ультраструктуры нейрона Ретциуса медицинской пиявки при введении микроэлектрода и при коротком синаптическом раздражении.- Цитология, 1979, т.21, J6 6, с.662−666.
  100. В.В., — Машанский В.Ф., Базанова И. О., Меркулова О. С. Влияние введения микроэлектрода на ультраструктуру нейрона.-Физиол.ж.СССР, 1980, т.66, № 8, с.1256−1259.
  101. В.Н., Кислов А. Н. Влияние мембранного потенциала на функционирования холинорецептора.- В сб.: Фиофизика сложных систем и радиационных нарушений, М., Наука, 1977, с.16−18.
  102. Г. И., Корочкин Л. П., Максимовский Л. Ф. Влияние ингибиторов синтеза РНК и белков на аудиогенные эпилептические реакции у крыс линии КМ.- Журн.высш.нервн.деят., 1976, т.26, № 5, с.1066−1073.
  103. Л.Л. О роли примембранных структур перехвата Ран-вье в формировании следовых потенциалов нервных волокон.
  104. В сб.: Функции нейроглии, 1-й симпозиум, Тбилиси, 1976, Тбилиси, 1979, с.30−34.
  105. . Нерв, мышца и синапс. М., Мир, 1968.
  106. Квитницкий-Рыжов Ю.Н., Квитницкая-Рыжова Ю. Н. Современные представления о «темных» клетках головного мозга животных и человека.- Цитология, 1981, т.23, № 2, с.116−128.
  107. Д.С. Холинорецепторы нейронов аплизии.- В сб.: Сравн. фармакол. синаптических рецепторов. Л., Наука, 1977, с.171−190.
  108. В.А., ВДалинаускаите Л.Д., Накопление РНК в теленейронов как показатель их функциональной деафферентации. -Физиол.ж.СССР, 1980, т.66, № 3, с.339−343.
  109. Г. Т. Фармакологический анализ двухфазных постсинапти-ческих потенциалов идентифицированного нейрона моллюска Pianorbarius corneus.- Журн.Эвол.Биохим. и физиол., т.14, 1978а, с.305−307.
  110. Г. Т. Исследование ацетилхолиновых рецепторов и медиа-торной природы пост-синаптических потенциалов идентифицированных нейронов брюхоногого моллюска Pianorbarius corneus.-Канд.дисс., Л., 19 786.
  111. А.Б. Об отношении электрических к метаболическим показателям возбуждения клетки, — Физиол.ж.СССР, 1967, т.53,3, с.260−265.
  112. А.Б. Тормозная перестройка структурно-метаболической организации нервной клетки.- Журн.эвол.биох. и физиол., 1969, т.5, № I, с.3−9.
  113. А.Б., Загускин С. Л. 0 связи динамики рибонуклеиновой кислоты с электрической активностью одиночного нейрона растяжения мышцы рака при возбуждении и торможении.- Журн.эвол. биохим. и физиол., 1965, т.1, №'1|, с.59−66.
  114. А.Б., Бродский В. Я., Фельдман Г. Л., Гусатинский В. Н. Сопоставление электрических и метаболических показателей саморегуляции процессов сна.- В кн.: Саморегуляция процесса сна. Л., 1977, с.51−56.
  115. Я.П. Изменение абсолютной рефрактерной фазы мотонейронов спинного мозга под воздействием стимулянтов и наркотиков.- В сб.: Исследование нервных центров и ядер мозга. Кишинев, Штиинца, 1972, с.46−57.
  116. А.Г. Электрофизиологическое исследование центральных нейронов моллюсков.- В сб.: Нервная клетка, Л., 1966, с.131
  117. А.Г. Изменения спонтанных потенциалов нейронов брюхоногих моллюсков под влиянием деполяризующего тока.- В сб.: Нервная система, вып.8. Л., ЛГУ, 1968, с.81−86.
  118. А.Г. Особенности реакций нейронов моллюсков при действии постоянного тока разной силы и длительности.- В сб.: Биофиз. мембран, Каунас, 1973, с.344−347.
  119. А.Г. Изменение возбудимости нейрона под влиянием ги-перполяризующего тока.- Нервная система (Ленинград), 1978,20, с.144−150.
  120. Т.Е. Функционально обусловленные изменения мотонейронов и синапсов, — Канд.дисс., Л., 1975.
  121. П.Г. Медленные потенциалы спинного мозга, их происхождение и функциональное значение.- В сб.: Вопросы электрофизиологии и энцефалографии (труды I Всесоюзн.конф., Л.,
  122. II мая 1957). Изд. АН СССР, М.-Л., I960.
  123. П.Г., Крышталь О. А. Механизмы электрической возбудимости нервной клетки. М., Наука, 1981.
  124. М.А., Долдырев В. Б. Опыт прижизненного изучения нервной клетки.- В сб.: Морфология автономной нервной системы. М.-Л., 1946, с.114−120.
  125. В.Г., Комиссарчик Я. Ю., Розин М. А. Ультраструктура нервных клеток в процессе их восстановления после повреждения и изменение количества рибосом в цитоплазме этих клеток. Цитология, 1971, т.13, № 9, C. II73-II76.
  126. М.Р., Костенко Н. А. Цитохимические изменения пирамидных клеток коры при длительной функциональной нагрузке.-В кн.: Реактивные и регенераторные процессы в нервной системе. Тбилиси, 1968, с.32−34.
  127. Т.М. Влияние женьшеня на высшую нервную деятельность у собак.- Фармакология и токсикология, 1957, т.20, В 4, 93 с.
  128. Р.П. Морфологические изменения в ЦНС крыс под влиянием гипотермии.- Канд.дисс., JI., 1968.
  129. С.В. Структурные изменения клеточных мембран. Л., Наука, 1976.
  130. Н.А., Туманский В. А., Скуба Н. Д. Современное представление о структуре и функциональном значении темных клеток. Архив патологии, 1973, т.35, № 8, с.82−87.
  131. Ю.И., Стрельникова Л. А., Майоров В. Н., Сотников О. С. Методика цейтраферной микрокиносъемки для количественного анализа морфологических изменений нейрона в эксперименте.-Физиол.журн.СССР, 1975, т.61, № I, с.165−167.
  132. Ли С. Е. Влияние элеутерозидов на вес и митотическую активность регенерирующей печени мышей.- Еводл.эксп.биол. и мед., 1969, т.67, № 6, с.103−105.
  133. Х.Б., Балабан П. Н. Моносинадтическая связь между идентифицированными нейронами виноградной улитки.- Докл. АН СССР, 1978, т.240, с.237−240.
  134. И.С. О повторяющемся ответе сомы гигантского нейрона Planorbis corneus. Биофизика, 1967, Т.12, C. I0II-I0I5.
  135. И.С. О реакции гигантской нервной клетки на проникновение микроэлектрода.- Физиол.ж., 1968, т.14, № 6, с.739−743.
  136. И.С. Характеристика мембранных механизмов, обеспечивающих электрическую возбудимость сомы гигантских нейронов моллюсков.- Автореф.докт.дисс., Киев, 1972.
  137. И.С. Проблемы электрической возбудимости нейрональной мембраны.- Киев, Наукова думка, 1981.143. (Магура И.е., Замеховский И.З.) Magura I.S., Zamekhovsky I.Z. Repetitive firing in molluscan giant neurones.-J.Exp.Biol., 1973, т.59, № 5, с.767−780.
  138. И.О., Крышталь О. А. Влияние кондиционирующей поляризации сомы гигантских нейронов моллюсков на механизм генерации потенциалов действия.- Нейрофизиология, 1970, т.2, J6 I, с.91−99.
  139. В.Н. Морфология реактивных состояний вегетативного межнейронного синапса. (Прижизненные экспериментальные исследования). Л., Наука, 1969.
  140. В.А., Герасимов В. Д. Электрофизиологическое исследование гигантских нейронов некоторых представителей легочных моллюсков.- Бюлл.экспер.биол. и мед., 1964, т.58, № 12,с.22−26.
  141. Р.Ф., Шандра А. А., Лобасюк Б. А. Моделирование де-терминантного и зависимых очагов эпилептической активности в коре мозга крысы.- Бюлл.экспер.биол. и мед., 1979, т.87,3, с.217−220.
  142. А.Г. Механизм активного транспорта ионов, основанный на увеличении или периодической пульсации объема.- В сб.: — Биофизика мембран, 4.1, Каунас, 1971, с. 581−589.
  143. А.А. Ультраструктурные изменения и репаративные процессы в центральной нервной системе при различных воздействиях.- Л., Медицина, 1971.
  144. Т.Ф., Алексеева Л. П. Влияние препаратов золотого корня на двигательную активность животных и некоторые показатели функционального состояния спинного и головного мозга.
  145. В сб.: Лекарст. средства Дальнего Востока, вып. II, Владивосток, 1972.
  146. Д.П. 0 функциональных обратных связях в синапсе (факты и гипотезы). Л., Изд. ЛГУ, 1975.
  147. Мац В.Н., Ларина З. И., Гейнисман Ю. Я. Сравнительная оценкаизменений размеров нервных и глиальных клеток в условиях усиленного функционирования нервной системы, — Цитология, 1970, т.12, № 6, с.737−744.
  148. В.Ф. Действие обратного набухания на структуру ми-тохондриальных мембран.- Цитология, 1966, т.8, Js 3, с.344−348.
  149. Р.Л. О содержании ацетилхолина и холинэсте-разы у простейших губок и кишечнополостных животных.
  150. ДАН СССР, 1941, т.31, с.717−718.160, Михайлова Л. И. О действии препаратов элеутерококка и плюща колхидского на тканевое дыхание и некоторые связанные с ним показатели обмена веществ, — Канд.дисс., Хабаровск, 1972,
  151. М.Я., Зеймаль Э. В. Ацетилхолин.- Л., 1970.
  152. Д.Н., Александров В. Я. Реакция живого вещества на внешнее воздействие. М.-Л., 1940,
  153. С.П., Каджая Д. В., Тимченко А. С., Мегедь Э. Л., Нарикашвили М. С. Взаимодействие вспышек «веретен» коры больших полушарий головного мозга со стрихнинными разрядами.-Изв.АН Груз. ССР, сер.биол., 1975, т.1, № 4, с.345−348.
  154. М.Е., Бродский В. Я. Интерферометрические исследования белков в ядрах ганглиозных нейронов сетчатки курицы на некоторых стадиях онтогенеза.- Вестн.Моск.университета, сер.6, биол., 1971, т.26, № 4, с.21−25.
  155. А.Д. Физиология вегетативной нервной системы. Л., Медицина, 1983.
  156. А.Д., Пушкарев Ю. П. Характеристика медиаторных превращений.- Л., Наука, 1980.
  157. .С. Функциональная пластичность нейронов моллюсков.-Л., Изд. ЛГУ, 1980.
  158. С.А., Полесская М. М. Реакция идентифицированного нейрона виноградной улитки на аппликацию пептидов, медиаторов, цростагландинов и циклических нуклеотидов.- Нейрофизиология, 1981, т.13, № I, с.80−87.
  159. Р.А., Хорн Я., Маликова А.К, Бразовская Ф. А. Электрофизиологическое и цитохимическое исследование следового процесса при доминанте.- В сб.: Память и следовые процессы. Тез.докл. 4-й Всес.конф., Пущино, 1979, с.75−76.
  160. В.Б., Тавхелидзе Н. Н. Динамика привыкания в нейронах моллюска.- Из д. Груз. С CP, сер.биол., 1979, т.5, № I, с.9−25.
  161. В.А. Влияние электрической стимуляции пузырного нерва на нейрон-капиллярные соотношения ганглия мочевого пузыря лягушки.- Физиол.ж.СССР, 1977, т.63, Гр. 8, с.1206−1209.
  162. Певзнер Л. З. Содержание плотных веществ в ядре и цитоплазме нейронов вегетативных ганглиев кошки в покое и при возбужде
  163. НИИ. Цитология, 1965, т.7, № 2, с.253−257.
  164. Л.З., Ноздрачев А. Д., Глущенко Т. О., Федорова Л. Д. Содержание РНК в системе нейрон-нейроглия и характер синапти-ческой передачи.- ДАН СССР, 1973, т.213, № 6, с.1458−1460.
  165. Л.З., Хайдарлиу С. Х. •Содержание'нуклеиновых кислот в чувствительных и двигательных нейронах спинного мозга и гли-альных клетках-сателлитах при различном функциональном состоянии нервной системы.- Цитология, 1967, т.9, № 7, с.840−847.
  166. Г. М., Цемерис Н. К. Исследование электронного действия серотонина на диализируемом теле нейрона виноградной улитки.- Докл. АН СССР, 1979, т.248, № 3, с.763−766.
  167. Погорелая Н"Х., Скибо Г. Г., Троицкая Н. К. Структурные особенности изолированных и перфузированных нейронов моллюсков Helix pomatia. -Нейрофизиология, 1980, т.12, 3, с.297−302.
  168. А.Л. Гипоталамическая нейросекреция. Л., Наука, 1968.
  169. А. Элементы физиологии клетки.- Л., Наука, 1976.
  170. Acta histochem., 1973, v.45, IT 1, p.133−143.
  171. В.Б., Саватеев Н. В. Неантихолинэстеразные механизмы действия антихолинэстеразных средств.- Л., Медицина, 1976.
  172. Р.В. Фармакология синаптической передачи в спинном мозге.- В кн.: Физиология и фармакология синаптической передачи. Л., Наука, 1973, с.177−207.
  173. М.А. Производные бензимидазола и неспецифическая сопротивляемость.- В сб.: Производные бензимидазола и клеточная резистентность. Л., Наука, 1967, с.5−32.
  174. В.Я. Изменение резистентности организма и его тканей у адреналэктомированных животных при мышечной тренировке и под влиянием дибазола.- Научн.докл.высш. школы, биол.н., 1968, II, с.34−38.
  175. B.C., Эзрохи В. Л. О возможности эфаптического взаимодействия нейронов посредством создаваемого ими внеклеточного электрического поля.- Журн.высш.нервн.деят., 1967, т.17,5, с.947−955.
  176. И.В. Усиление судорожного действия стрихнина при введении киноуренинов в желудочки мозга лягушки.- Бюлл.экспер. биол., и мед., 1980, т.89, № 5, с.572−574.
  177. М.М. О зависимости между величиной ядра нервной клетки и ее физиологическим состоянием.- Архив анатом., 1938, т.19, № 3, с.446−455.
  178. А.С. Золотой корень. Томск, Изд. Томского университета, 1974.
  179. Т.А., Журавлев В. Л., Иванов В. И. Изменение электрической активности мышечных волокон в нервно-мышечном препарате лягушки при развитии стрихнинного блока.- Вестн. ЛГУ, 1976, № 9, с.92−99.
  180. Д.А. Генеалогия нейронов. М., Наука, 1974.
  181. Д.А. Медиаторы.- В кн.: Общая физиология нервной системы. Л., Наука, 1979, с.218−277.
  182. Д.Г. Морфо-физиологические характеристики нейронов коры головного мозга при анемии.- Мат.конф.молод. ученых «Структурно-функциональные аспекты нейрофизиологии». Л., 1978, с. 46.
  183. С.С., Базанова И. С. Изменение внеклеточно регистрируемой биоэлектрической активности нейрона Ретциуса пиявки при введении в него микроэлектрода.- Докл. АН СССР, 1980, т.251, № 4, с.1020−1022.
  184. В.И. К вопросу об оптимальной стимулирующей дозе корня женьшень.- В сб.: Материалы к изучению стимулирующих и тонизирующих средств корня женьшеня и лимонника. Вып.1., Владивосток, 1951, с.97−103.
  185. В.И. 0 продолжительности и некоторых особенностях действия женьшеня по сравнению с фенамином.- В сб.: Материа-ля к изучению женьшеня и лимонника. Вып.2. М.-Л., Наука, 1955, с.174−177.
  186. М.И. Функциональное состояние и физиологическая лабильность нейрона.- В сб.: Механизмы нервн. деятельности, Л., Изд. ЛГУ, 1977, с.99−112.
  187. М.И., Вислобоков А. П., Елизарова В. В. Электрофизиологические характеристики нейронов моллюска Coretus corneus при переживании и действии поляризующего тока.- Физиол.ж. СССР, 1971, с. 57.
  188. М.И., Эль-Саид Э.М. Биоэлектрические характеристики нейронов, А и Б моллюска Coretus corneus при различном содержании кальция и натрия в среде.- Физиол.ж.СССР, 1975, т.61, № 6, с.690−698.
  189. Г. Н., Минут-Сорохтина О.П., Турбина Л. В. Влияние женьшеня на усвоение ритмов корою головного мозга.- В сб.: Материалы к изучению женьшеня и лимонника, вып. З, Л., 1958а, с.3−11.
  190. Г. Н., Минут-Сорохтина О.П. Влияние лимонника китайского на функции нервной системы по работам кафедры физиологии Хабаровского мед. института за 10 лет.- В сб.: Материалы к изучению женьшеня и лимонника, вып. З, Л., 19 586, с.145−154.
  191. О.С. функциональная морфология живого мякотного нервного волокна. Л., Наука, 1976.
  192. О.С. Методики для прижизненного микроскопического изучения периферического нейрона и межнейронального синапса. В кн.: Прижизненная микроскопия нейрона. Л., Наука, 1978, с.45−57.
  193. О.С. Статика и реактивная кинетика структур живого вегетативного нейрона.- В кн.: Механизмы реагирования нейрона на раздражающие воздействия. Л., Наука, 1981, с.99−127.
  194. О.Д., Фомина М. С. Реакция некоторых нейронов пиявки на прокол и на прямое электрическое раздражение.- Физиол. ж. СССР, 1974, т.60, № 3, с.362−369.
  195. Е.П. О морфологических изменениях в живой нервной клетке, вызываемых адетилхолином.- Бюлл.эксп.биол. и мед., 1948, № 8, вып.2, с.138−141.
  196. Т. В., Б1локриницышй B.C., Бурчинська Л. Ф., Ге-HiK Е.Д. 0собливост1 нейрон1 В центрально! нервно! системи пр1сноводного черевоногого моллюска Planorbis corneus.-Физиолог1чний журнал, 1968, 14, В 4, с.454−471.
  197. Е.К., П1унгская В.Е. Микроэлектрофоретическое исследование особенностей метаболизма РНК в отдельных нейронах культивируемой нервной ткани.- ДАН СССР, 1973, т.213, № 2, с.449−451.
  198. М.Ю., Чекмасова Н. М., Черепнов В. Л. Действие стрихнина на ультраструктуру мотонейронов спинного мозга лягушки.- Научные докл. Высшей школы, биол. науки, 1974, № I, с.34−38.
  199. Р.Д., Керкут Д. А. Сравнительное исследование нейронов пиявки, насекомого и улитки (в особенности холинэргиче-ских, триптаминэргических и дофаминэргических рецепторов).- В сб.: Сравн.фармакол.синапт.рецепторов. Л., Наука, 1977, с.190−200.
  200. В.В., Ройтбак А. И. Отрицательные сдвиги потенциала поверхности коры и гиперполяризация корковых нейронов при электрическом раздражении коры. ДАН СССР, 1974, т.218, № 5, с.1253−1256.
  201. С.Х. Об изменениях объема тел чувствительных и двигательных нейронов спинного мозга при различных состояниях нервной системы.- Цитология, 1967, т.9, № 6, с.644−651
  202. С.Х. Влияние изменения функции нервной системы на содержание РНК в нейронах и глии мозжечка.- В кн.: Исследование нервных центров и ядер мозга. Кишинев, Штиинца, 1972, с.87−92.
  203. С.Х., Мамалыга Л. М., Маковеев В. И. О взаимоотношениях между перинейрональным внеклеточным пространством и цитоплазмой нейронов.- Изв. АН СССР, сер.биол. и хим. наук, 1980, № 2, с.52−55.
  204. .П. Электрическая возбудимость нервного волокна.-В кн.: Общая физиология нервной системы. Л., Наука, 1979, с.44−111.
  205. P.M. Цитохимические особенности изменений белковых веществ при повышенной активности нейронов (зеркальный эпилептогенный очаг).- В сб.: УП нейрохим.конф., тезисы научн. сообщений, Л., 1976, с.НО.
  206. О.Г., Кравченко В. Ф. Функциональная организация нейронных систем центрального отдела зрительного анализатора лягушки в условиях стрихнинной активности.- Нолл.эксп.биол. и мед., 1968, т.65, № 6, с.8−10.
  207. В.Д. Пассивные свойства мембран нейронов, определяющие адаптационные и компенсаторные функции нервной системы. Труды Иркутского мед. ин-та, 1981, № 154, с.74−75.
  208. С.Е. Действие вибрации на уль трас труте туру нервных клеток спинальных ганглиев крыс.- Автореф.канд.дисс., Л., 1974.
  209. Т.Ш. Изучение межнейронных взаимоотношений в сенсо-моторной коре кроликов при различных функциональных состояниях.- Изв.Сев.-Кавказ.научн. центра высшей школы. Сер. естест. наук, 1974, № 3, с.73−77.
  210. А.И., Шаповалов К. Б. Активность альфа-мотонейронов при ритмическом раздражении красного ядра и влияние стрихнина на рубро-спинальные эффекты.- Докл. АН СССР, 1966, т.168,1. Jfc 6, с.1430−1433.
  211. А.И. Нейроны и синапсы супраспинальных моторных систем. Л., Наука, 1975.
  212. А.И., Ширяев Б. П. Ионные механизмы возбуждения пост-синаптической мембраны нейронов центральной нервной системы позвоночных.- Докл. АН СССР, 1975, т.225, № 2, с.477−479.
  213. В.Л. Потенциирующее действие стрихнина на тормозную аксо-дендритную синаптическую передачу.- Физиол.ж.СССР, 1972, т.58, !Ь 10, с.1506−1513.
  214. Дж. Физиология синапсов.- М., Мир, 1966.
  215. Effect of anticholinesterase agents on giant neurone depolarization by acetylcholine and its analoques.-Comp.Biochem.Physiol., 1973, v.45A, p.45−60.
  216. Belislin D., Polak R.L., Sproull B. The effect of leptazol and struchnine on the acetylcholine release from the catbrain.- J.Physiol., 1965, v.181, II 1, p.308−316.
  217. Bennett J., Bueding E. Localization of biogenetic amines in Schistosoma mansoni.- Comp.Biochem.Physiol., 1971, V.39A, p.859−867.
  218. Benson J., Drummond Л., Levitan I. Cyclic AMP mediates a serotonin induced increase in К conductance in Aplysia neurone R15.- Ileurosci.Lett., 1980, v.11, suppl, N 5, p.67.
  219. Berry R.W. Ribonucleic acid metabolism of a single neurons correlation with electrical activity.- Science, 1969, v.166, N 3897, p.1021−1023.
  220. Berry R.W., Cohen M.J. Synaptic stimulation of RITA metabolism in the diant neuron of Aplisia californica.- J.lleurobiol., 1972, v.3, И 2, p.209−222.
  221. Berthold C.H. Ultrastructure apparence of glicogen in the B-neurons of the lumbar spinal ganglia of the frog.
  222. J.Ultrastr.Res., 1966, v.14, H 2, p.254−267.
  223. Blankenship J.E., Watchtel H., Kandel E.R. Ionic mechanisms of excitatory, inhibitory and dual synaptic actions mediated by an identified, interneuron in abdominal ganglion of Apli-sia.- J.lTeurophysiol., 1971, v.34, IT 1, p.76−92.
  224. Bolv/ig I.G., Astrup J., Christoffersen G.R.J. EEG and extracellular К in rat brain respiratory arrest.- Biomed. Express, 1977, v.27, N 3, p.99−102.
  225. Brennan R.W., Petito C.K., Porro R.S. Single stimules cause no ultrastructural changes in brain.- Brain Res., 1972, v.45,N'2> p.574−579.
  226. Brock L.C., Coombs S., Eccles J. The recording of potentials from motoneurones v/ith an intracellular electrode.- I.Physiol. (London), 1952, v.117, IT 3, p.431−460.
  227. Caulfield J.B. Effects of varing the vehicle for OsO^ intissue fixation.- J. Biophys JBiochem.Cyt., 1957, v.3, N 5, p.827−830.
  228. Charlton B.T., Gray E.C. Comparative electron microscopy of synapses in the vertebrate spinal cord.- J. Cell Science, 1966, v• 1, IT 1, p.67−87.
  229. Colding-Jorensen M. Impulse dependent adaptation in Helix pomatia neurones: effect of the impulse on the firing pattern.- Acta physiol.Scand., 1977, v.101, IT 4, p.369−381.
  230. Cottrell G.A., Macon J., Szczepaniak A.C. Glutamic acid mimicking of synaptic inhibition on the giant serotonin neurons of the snail.- Brit.J.Pharmacol., 1972, v.45, p.684−688.
  231. Curtis D.R., Duggan A.W., Johnston G.A.R. Glicine, strychnine, picrotoxin and spinal inhibition.- Brain Res., 1969, v.14, IT 3, p.759−762.
  232. Dale H.H. Pharmacology and nerve endings.- Proc.Roy.Soc.Med., 1936, v.28, p.319−332.
  233. De Peudis P.V., Elliott К.Л.С. Delay or inhibition of convulsions by intraperitoneal injection of diverse substances.-Canad.J.Physiol, and Pharmacol., 1967, v.45, N 5, p.857−865.
  234. J.Physiol., Prance, 1971, v.63, IT 6, 125A.
  235. Dye J.A. Cell changes in the central nervous system under various natural and experimental conditions.- Third paper: Functional activity.- Quard J.Exper.Physiol., 1927, v.17, IT 1, p. 107−117.
  236. Eccles J.C. The physiology of Nerve Cell.- Johns Hopxins Press, Baltimore, 1957.
  237. Edstrom J.E., Gramp W. Neurons activity and metabolism of Ribonucleic acids in the crustacean stretch receptor neuron. J.TTeurochem., 1965, v.12, IT 8, p.735−741.
  238. Paber D.S., Klee M.R. Strychnine interaction with acetylcholine, dopamine and serotonin receptors in Aplisia >neurons.
  239. Brain Res., 1974, v.65, N 1, p.109−126, 264* Florey E. Acetylcholine as sensory transmitter in Crustaceae. ITew evidence from experiments demonstrating release of ACh during sensory stimulation.- J.Comp.Physiol., 1973, v.83, p.1−16.
  240. J.lTeurophysiol., 1971, v.34, p.93−107.+ —
  241. H-serotonin in an identified neuron of Aplisia californica.- J.Cell.Biol., 1976, v.79, N 2, part 1, p.304−318.
  242. Grafstein B. Neuronal release of potassium during depression.- In: Brain Function (Proc. 1-st conf., Los Angeles, 1961), 1963, p.87−124
  243. J76. Hagiwara S., Byerly L. Calcium channel.- Annu.Rev.ITeurosci.,
  244. Polo Alto, Calif., 1981, v.4, p.69−125. ?77. Hagiwara S., Oomura J, The critical depolarization for the squid giant axon.- Jap.J.Physiol., 1958, v.8, p.234−245.
  245. Henneman E., Somjen G", Carpenter D.O. Excitability and inhi-bitibility of motoneurons of different sizes.- J.Neurophysiol. 1965, v.28, N 3, p.599−620.
  246. Heuser D. Ionic control of local cerebral blood flow during enhanced neuronal activity.- Arzneimittel-Forsch., 1978,1. N 5, p.872−873.
  247. Hodgkin A., Katz B. The effect of sodium Tons on the electrical activity of the giant axon of squid.- J.Physiol.(London), 1949, И 1, v.108, p.37−77.
  248. Holmgreen E. Weiter Mitteilungen iiber die «Sattlcanalchen» der llervenzellen.- Anat.Anz., 1900, v.18, p.290−296.
  249. Holmgren В., Martines S.R. Bioloqueo neuronal por estimulaci-on colinergica excesiva.- Cielc.biol., 1978, II 2, p.3−8.
  250. Horn R. Propagating calcium spikes in an axon of Aplisia.-J.Physiol. (Cr.Brit.), 1978, v.281, p.513−534.
  251. Hosli L., Tebecis A.K., Filias II. Effect of glycine, beta-alanine and GABA, and their interaction eith strychnine, onbrain stem neurones, — Brain Res., 1969, v.16, IT 1, p.293−285.
  252. Hubbard J.I. Microphysiology of vertebrate neuromucular transmission.- Physiol.Rev., 1973, v.53, p.674−723.
  253. Hughes G.M., Tauc L. Aspects of the organization of central nervons pathways in Aplisia Depilans.- J.Exp.Biol., 1962, v.39, N 1, p.45−69.
  254. Hyden H. Protein metabolism in the nerve cell during growth and function.- Acta Physiol.Scand., 1943, v.6, II 17, p.1−136.
  255. Hyden H. The neuron.- Academic Press, Hew York, 1960.
  256. Ito M., Oshima T. Electrical behaviour of the motoneurone membrane during intracellularly applied current steps.
  257. J.Physiol. (London), 1965, v.180, p.607−635.
  258. Iwasalci S., Satow Y. Sodium and calcium dependent spike potentials in the secretory neuron soma of the X-organ of the crayfish.- J.Gen.Physiol., 1971, v.57, II 2, p.216−238.
  259. Karnovsky M.J. Simple methods for «staining with leard» at high pH in electron microscopy.- J.Biophys.Biochem.Cyt., 1961, v.11, II 3, p.729−732.
  260. Katz В., Miledi R. The role of calcium in neuromuscular facilitation.- J.Physiol., 1968, v.195″ N 4, p.481−509.301″ Kehoe J" Double inhibition de certains neurons d’Aplisie.-J.Physiol. (Prance), 1968, v.60, Suppl., IT 1, p.266.
  261. Kerkut G.A., Gardner D.R. The role of calcium ions in the action potentials in Helix aspersa neurones.- Comp.Biochem. and physiol., 1967, v.20, N 1, p.147−162.
  262. Kernell D., Peterson R.P. The effect of spike activity versus synaptic activation on the methabolism of ribonucleic acidin a moluscan giant neurone.- J.lTeurochem., 1970, v. 17, IT 8, p.1087−1094.
  263. Klee IvI. Ro Effects of convulsants and anticonvulsants on nervecells in Aplisia californicaITeurob iol. Invert ebrat. Gastropoda Brain, Budapest, Acad. Kiado, 1976, p.267−286.
  264. Klee R.M., Paber D.S. Mephenesin block early inward currents and strychnine induced multiple disharges of Aplysia neurons Pfluger Arch., 1974, v.346, p.97−106.
  265. Klee M.R.,'Paber D.S., Heiss Y/.D. Strychnine and pentyleneterazol induced changes of excitability in Aplysia neurons.- Science, 1973, v.179, p.1133−1136.
  266. Kovac M.P., Davis W.J., Matera E., Gillette R. Functional and structural correlates of cell size in paracerebral neurons of Pleurobranchaea californicaJ. Neurophysiol., 1982, 47, И 5, 909−927.
  267. Itriz П., Sykova E., Ujeo E., Vyklicky L. Changes of extracellular potassium concentration induced by neuronal activityin the spinal cord of the cat.- J.Physiol. (Gr.Brit.), 1974, v.238, II 1, p.1−15.
  268. Landau E.M. The effect of strychnine on the neurо-muscular junction of the rat.- Life Sci., 1967, v.6, IT 23, p.2515−2517.
  269. Larson M.D. An analysis of the action of strychnine on the recurrent IPSP and amino acid induced inhibitions in the cat spinal cord.- Brain Res., 1969, v.15, N 1, p.185−200.
  270. Lehmann J., Fibiger H.C. Acetylcholinesterase and cholinergic neurone.- Life Sci., 19Y9, v.25, TT 23, p.1939−1947.
  271. Lloyd D.P.C. Reflex action in relation to pattern and peripheral source of afferent stimulation.- J. lTeurophysiol•, 1943″ y.6, IT 2, p. 111−119.
  272. Lothman E. V/., Somjen G.G. Functions of primary afferents and responses’of extracellular K+ during spinal epileptiform seizures.- Electroencephalogr. and Clin.lTeurophysiol., 1976, v.41, II 3, p.253−267.
  273. Lux H.D. The kinetics of extracellular potassium: relation’to epileptogenesisEpilepsia, 1974, v.15, N 3, Р-375−393
  274. Lux H.D., Schubert P., Kiezberg Q.W., Globus A. Excitational axonal flow.- Exp. Brain Res., 1970, v.20, IT 2, p.197−204.
  275. Harder E. Cholinergic motor neurons in the stomatogastric system of the lobster.- J.Physiol. (London), 1976, v.257, p.63−86.
  276. Mellon De Forest, Wilson John A., Phillips Christine E. Modification of motor neuron size and position in the centralnervous system of the adult snapping shrimpes.- Brain Res., 1981, v.223, N 1, p.134−140.
  277. Merker J.K. Ultrastruktur Veranderung motorischer vor der Hornzellen des Kaninchens unter abgestufter Ischamic.-Z.Zellforsch., 1969, v.95, IT 4, p.568−593.
  278. Mitolo-Chieppa D. Azione dell strichnina singola fibra nervosa mielinica dirana studiata con metolado elektrofisiologico. Boll.Soc.Ital.Biol.Sper., 1967, v.43, N 4, p.167−170.
  279. Narahashi T. Dependence of excitability of cockroach giant axons of external divalent cations.- Comp.Biochem. and Physiol., 1966, v.19, IT 4, p.759−774.
  280. Palade E.C. Electron microscope observations of interneuronal and neuromuscular synapses.- Anat.Res., 1954, v.118, II 2, p.333−336.
  281. Parnas I., Atwood H.L. Differential effect of strychnine on crustacean slow, fast, and inhibitory neuro-muscular system.
  282. J.Cellular Physiol., 1966, v.67, IT 1, p.1−12.
  283. Partridge L. Donald" Calcium independence of slow currents underlying spike frequency adaptation.- J.Neurobiol., 1980, v.11, И fe, p.613−622.
  284. Perracchia C.M.D., Ceccarelli В., Pensa P. Synapses in thespinal cord during tetanus toxin and strichnine poisonings.-In: VI Internat.congr.electron microscopy. Tokio, 1966, v.2, p.447−478.
  285. Pollen D.A., Lux H.D. Conductance changes during inhibitory postsinaptic potentials in normal and strichnized corticalneurons.- J.lleurophisiol., 1966, v.29, IT 3, p.369−381.
  286. Univ.Muncti.en, 1977, 77S.
  287. Renshow В. Influence of discharge of motoneurons upon excitation of neighbouring motoneurons.- J. lTeurophysiol•, 1941, v.4, N 2, p.167−183.
  288. Reynolds E.S. The use of lead citrate at high pH as an electron opaque stain in electron microscopy.- J.Cell.Biol., 1963, v.17, II 1, p.208−212.
  289. Salehmoghaddam S.H., Collier B. The relationship between acetylcholine release from brain slices and the acetylcholine content of subcellular fractions prepared from brain.-J.lTeurochem., 1976, v.27, IT 1, p.71−76.
  290. Sattelle D.B. Electrophysiology of the giant nerve cell bodies of Limnea stagnalis (L.). (Gastropoda: pulmonata).
  291. J.Exp.Biol., 1974, v.60, IT 3, p.653−671 .
  292. Schwartz J.H., Castellucci V.F., Kandel E.R. Functioning of identified neurons and synapses in abdominal ganglion of Aplisia in absense of protein synthesis.- J.Neurophysiol., 1971, v.34, N 8, p.939−953.
  293. Shapiro B.I. Effects of strychnine on the potassium conductance of frog node of Ranvier.- J.Gen.Physiol., 1977, v.69, N 6, p.915−926.
  294. Shefner S.A., Levy R.A. The contribution of increases in extracellular potasstum to primary afferent depolarization in the' bullfrog spinal cord.- Brain Res., 1981, v.205, IT 2, p.321−335.
  295. Sikdar K., Ghosh J.J. Histological changes in structural constituents of spinal motoneurons after picrotoxin, strychnine and tetanus toxin administration.- JTeurochem., 1964, v.11,11 7, p.545−549.
  296. Smith P.A., Pitzsimons J.T.R., Loker J.E., Walker R.J.
  297. Hydroxytryptamine as a possible inhibitory neurotransmitter in the central nervous system of the leech, Haemopis sangui-suga.- Сотр.Biochem.Physiol., 1975, 52C, p.65−73″
  298. Somjen C.G. Extracellular potassium in the mammalian central nervous system.- Annu.Rev.Physiol., Polo Alto Calif., 1979, v.41, p.159−177.
  299. Spira II.E., Yarom Y., Parnas I. Modulation of spike frequency by redions of special axonal geometry and sinaptic inputs.-J.lTeurophysiol., 1976, v.39, II 4, p.882−899.
  300. Standen II.В. Calcium and sodium ions as charge carriers in the action potential of an identified snail neurone.-J.Physiol., 1975, v.249, II 2, p.241−252.
  301. Sykova E., Shirayev В., ICriz II., Vyklicky L. Accumulation ofextracellular potassium in the spinal cord of frog.-Brain Res., 1976, v.10b, II 3, p.413−417.
  302. Takeuchi A., Takeuchi II. Active phase of frog’s end-plate potential.- J.IIeurophysiol., 1959, v.22, p.395−411 .
  303. Takeuchi A., Takeuchi П. On the permeability of end-platemembrane during the action of transmitter.- J.Physiol. (London), 19b0, v.154, p.52−67.
  304. Thesleff S. The mode of neuromuscular block caused by acetylcholine, nicotine, decamethonium and acetylcholine.
  305. Acta Physiol., Scand., 1955, v.34, p.218−231.
  306. Tebecis A.K., Phillis J.W. The use of convulsants in studing possible functions of amino acids in the toad spinal cord.-Comp.Biochem. and Piiysiol., iyb9, v.28, N 3, p.1303−1315.
  307. Toschi G., Giacobini E. Puromycin and the impulse activity of crayfish stretchreceptor neuron.- Life Sci., 1965, v.4,1. N 6, p.1831−1834.
  308. Vedel J.P., Monlins M.A. A motor neuron involved in two centrally generated motor patterns by means of tv/o different spike initiated sites.- Brain Res.(L.), 1977, v.138, IT 2, p.347−352.
  309. Vyklicky L., Sycowa E. The effect of increased spinal cord on the flexor reflex of the frog.- ITeurosci.Lett., 1980, v.19,1. 2, p.203−207.
  310. Vyklicky L., Sykova E., Kriz IT. Control of extracellular K+ in the spinal cord of the cat.- Activ.nerv.super., 1976, v. 18, IT 1−2, p.79−82.
  311. Vyklicky L., Sykova E., Ujeo E. Poststimulation changes ofextracellular potassium concentration in the spinal cord of the rat.- Brain Res., 1972, v.45, IT 2, p.608−611.
  312. Vai Hideko. Hyperpolarization caused by external high potassium in snail neurons.- Jap.J.Physiol., 1978, v.28, N 3, p.249−263.
  313. Yates J.C., Yates K.D. Some morphological effects of strychnine on the spinal cords a light and electron microscopic, study. Anat.Rec., 1964, v.150, IT 3, p.279−292.f
  314. Yates J.G., Yates K.D. An electron microscopic study of the effects of tetanus toxin in motoneurons of the rat spinal cord.- J.Ultrastr.Res., 1966, v.16, II 3, p.382−394.
Заполнить форму текущей работой