Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Иммунный статус черноморской афалины (Tursiops Truncatus Ponticus Barabash, 1940) в период адаптации к условиям жизни в неволе

Диссертация: Иммунный статус черноморской афалины (Tursiops Truncatus Ponticus Barabash, 1940) в период адаптации к условиям жизни в неволе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Наибольшие изменения со стороны иммунной системы у афалины, выражающиеся в абсолютной и относительной лимфопении, снижении Т -® клеточной и, особенно, В — клеточной субпопуляций лимфоцитов, подавлении фагоцитарной активности нейтрофилов и моноцитов при ускоренной СОЭ и абсолютном лейкоцитозе, отмечаются в течение первого месяца адаптации к условиям жизни в неволе. При этом у афалины резко… Читать ещё >

Иммунный статус черноморской афалины (Tursiops Truncatus Ponticus Barabash, 1940) в период адаптации к условиям жизни в неволе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список использованных сокращений
  • 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Афалина или бутылкопосый дельфин
  • Tursiops truncatus Montagu, 1821)
    • 1. 2. Краткая характеристика факторов «ноогенной среды обитания» или «условий неволи»
    • 1. 3. Экологическая иммунология
    • 1. 4. Адаптация на уровне организма
    • 1. 5. Организация иммунной системы у китообразных (Cetacea)
  • 2. Собственные исследования
    • 2. 1. Материал и методы исследований
      • 2. 1. 1. Материал исследований
      • 2. 1. 2. Методы исследований
        • 2. 1. 2. 1. Определение количественного и видового состава
  • Грамположительной кокковой микрофлоры верхних дыхательных путей
    • 2. 1. 2. 2. Определение гематологических показателей
      • 2. 1. 2. 3. Методы исследования иммунного статуса
      • 2. 1. 2. 3. 1. Определение относительного и абсолютного количества лейкоцитов и лимфоцитов в периферической крови
      • 2. 1. 2. 3. 2. Определение относительного и абсолютного количества Т- и В-популяций лимфоцитов
      • 2. 1. 2. 3. 2.1. Выделение лимфоцитов из периферической крови афалины
      • 2. 1. 2. 3. 2.2. Разделение лимфоцитов на поверхности пластика, нагруженного антителами к иммуноглобулинам («пэннинг»)
      • 2. 1. 2. 3. 2.3. Метод иммунологического фенотипирования с помощью панели моноклональных антител в реакция непрямой иммунофлуоресценции (нРИФ)
      • 2. 1. 2. 3. 3. Определение фагоцитарной активности лейкоцитов
      • 2. 1. 2. 3. 4. Определение относительного содержания сывороточных иммуноглобулинов, классов G и М
      • 2. 1. 2. 4. Статистический анализ
    • 2. 2. Результаты исследований
      • 2. 2. 1. Количественный и видовой состав Грамположительной кокковой микрофлоры верхних дыхательных путей у афалины на разных сроках адаптации к условиям неволи
      • 2. 2. 2. Гематологические показатели у афалины на разных сроках адаптации к условиям неволи
      • 2. 2. 3. Показатели иммунного статуса у афалины на разных сроках адаптации к условиям неволи
        • 2. 2. 3. 1. Уровень относительного и абсолютного количества лейкоцитов и лимфоцитов в периферической крови
        • 2. 2. 3. 2. Уровень относительного и абсолютного количества Т- и В-лимфоцитов
        • 2. 2. 3. 2. 1. Содержание Т-, В- популяций лимфоцитов, которое было определено методом «пэннинг»
        • 2. 2. 3. 2. 2. Относительный состав популяций лимфоцитов, который был определен в реакции непрямой иммунофлуоресценции (нРИФ) с помощью моноклональных антител
        • 2. 2. 3. 3. Показатели фагоцитарной активности лейкоцитов
        • 2. 2. 3. 4. Относительное содержание сывороточных иммуноглобулинов, классов IgG и IgM
      • 2. 2. 4. Мониторинг иммунологических показателей у выборочного количества афалин в процессе адаптации к условиям неволи

ф Актуальность темы.

За последние годы становится все более актуальной проблема сохранения видового разнообразия на нашей планете. В связи с этим проводятся мероприятиятия по охране и всестороннему изучению редких и исчезающих видов животных. Одним из возможных направлений для решения поставленной задачи является адаптация представителей уникальных видов к условиям жизни в неволе с последующим изучением, разведением и возможным восстановлением их численности в природных популяциях, ф При адаптации диких животных из естественной среды обитания к среде, искусственно созданной человеком или условиям неволи, возникает ряд трудностей, связанных с изменением воздействия абиотических и биотических факторов на организм животного в качественно новых условиях.

Как известно, иммунная система млекопитающих представляет собой физиологический механизм, который наиболее быстро и тонко реагирует на любые изменения общего состояния организма (Ройт А. и др., 2000), а также на любые колебания биотических и абиотических факторов среды (Шубик В.М., 1976; Хаитов Р. М. и др., 1995). В связи с этим изучение динамики показателей Ф иммунного статуса животных является перспективным подходом для оценки способности организма приспосабливаться к изменению условий обитания.

В настоящей работе объектом исследования является представитель отряда китообразных — черноморская афалина (Cetacea: Odontoceti — Tursiops truncatus ponticus Barabash, 1940), вид уникальный и экологически очень уязвимый.

Черноморская афалина занесена в Красную книгу России (категория 3 -" редкие таксоны и популяции"). По мнению некоторых исследователей (Соколов В.Е., 1986; Соколов В. Е. и др., 1990; Яскин В. А., Юхов В. Л., 1997) этот подвид морских млекопитающих в недалеком будущем может оказаться на ^ грани полного исчезновения. Поэтому, для спасения этих уникальных представителей морской фауны становится очевидной необходимость их содержания и разведения в условиях неволи, ф Некоторыми исследователями (Greenwood A.G., D.C. Taylor, 1977, 1978, 1979;

Cordes D.O., 1982) было показано, что ифекционные заболевания являются основной причиной развития патологических процессов в органах и системах, которые становятся основной причиной гибели афалин, содержащихся в неволе.

Согласно другим данным, причиной гибели афалины в период адаптации к условиям жизни в неволе являются инфекционные заболевания генерализованного типа, вызванные патогенами, которые часто присутствуют в ноогенной, т. е. созданной человеком, среде обитания (Сыкало А.И., 1982; ® Романов В. В., 1991). В связи с этим можно предположить, что основным лимитирующим биотическим фактором среды, который определяет выживаемость дельфинов в процессе адаптации к условиям жизни в неволе, является бактериальная микрофлора ноогенного происхождения, с которой афалины не сталкивались в естественной среде обитания. В 80% случаев бактериальные инфекции у афалины в условиях неволи вызывают Грамположительные кокки (стафилококки и стрептококки)(Колесса О.В., 1986аVaraldo Р.Е. et al., 1988). Обычно, исход течения инфекционного процесса у афалины зависит от уровня иммунной реактивности ф макроорганизма — «хозяина» в период адаптации, а также от степени вирулентности патогенных микроорганизмов — «паразитов» .

Нарушение иммунных механизмов на уровне организма существенно снижает приспособляемость особи, повышает вероятность ее гибели, и сказывается на популяционных процессах.

В связи с этим в экологическом плане интерес представляет исследование параметров иммунного статуса у диких животных в природных условиях, как критериев оценки степени влияния факторов среды, в т. ч. антропогенных, на организм животных в данном биогеоценозе.

Следует отметить, что иммунный статус морских млекопитающих, по сравнению со многими наземными млекопитающими (человек, лабораторные, домашние и дикие животные), мало изучен. Основная причина заключается в большой трудоемкости взятия прижизненного морфологического материала: крови, лимфоузлов, пунктата костного мозга, что становится возможным в условиях неволи.

Цель и задачи исследования

.

Целью настоящей работы было изучение показателей иммунного статуса у черноморской афалины на разных сроках адаптации к условиям неволи при воздействии биотического фактора среды.

Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить количественный и видовой состав Грамположительной (Гр «+») кокковой микрофлоры верхних дыхательных путей (ВДП) у афалины на разных сроках адаптации к неволе, в качестве возможного биотического фактора среды.

2. Исследовать гематологические показатели у афалины на разных сроках адаптации.

3. Изучить клеточные и гуморальные показатели иммунного статуса у афалины на разных сроках адаптации к условиям жизни в неволе.

4. Провести сравнительный анализ между динамикой показателей Гр «+» кокковой микрофлоры ВДП и показателями иммунного статуса у афалины на разных сроках адаптации.

5. Разработать методические подходы к прижизненной комплексной оценке степени адаптированности морских млекопитающих, на примере черноморской афалины.

Научная иовизна работы.

Данная работа является первым комплексным эколого-иммунологическим исследованием адаптационных возможностей иммунной системы черноморской афалины при её содержании в измененных условиях обитания. Получены комплексные данные иммунологических показателей у клинически здоровых, адаптированных к условиям неволи афалин. Выявлены изменения показателей иммунного статуса у афалины в период адаптации к жизни в неволе, обнаружена связь между иммунологическими показателями и Гр «+» кокковой микрофлорой ВДП у афалины. Впервые показаны некоторые адаптационные физиологические особенности у этого вида китообразных: 1) появление в периферической крови форм моноцитов, переходных к тканевой форме и активное участие этих клеток в процессе фагоцитоза, 2) активное участие эозинофилов в процессе фагоцитоза, наряду с нейтрофилами и моноцитами. Установлено, что на ранних сроках адаптации (1−2 мес.) происходит подавление Тклеточного, и, особенно, Вклеточного звеньев иммунитета у афалины. Фагоцитарная активность лейкоцитов в этот период также значительно понижена. Результаты проведенного исследования показали, что для адаптации к условиям жизни в неволе афалине требуется не менее четырех месяцев.

Показано, что показатели иммунного статуса в комплексе с гематологическими и микробиологическими показателями могут применяться для комплексной оценки приспособительных возможностей афалины к условиям неволи.

Разработан методический подход для прижизненной комплексной оценки степени адаптированности организма морских млекопитающих к изменению биотических факторов среды, на примере Т. truncatus.

Положения, выиосимые па защиту.

1. Комплексная оценка физиологического состояния афалины в период адаптации к условиям жизни в неволе должна включать исследование иммунологических, микробиологических и гематологических показателей.

2. На ранних сроках адаптации к неволе (1−2 мес.) у афалины происходит подавление иммунной реактивности организма.

3. У афалины на разных сроках адаптации к условиям неволи изменение показателей клеточного и гуморального иммунитета связано с изменением количественного и видового состава Гр «+» кокковой микрофлоры ВДП.

4. Данные о состоянии иммунного статуса у афалины на разных сроках адаптации к неволе отражают степень приспособленности особей этого вида к изменению условий обитания.

Теоретическое и практическое значение работы.

Материалы диссертации представляют интерес в плане изучения адаптационных возможностей иммунной системы морских млекопитающих. В результате проведенной работы расширены научные представления об иммунологических и микробиологических аспектах адаптации. ® Предложенный эколого-иммунологический подход к оценке физиологического состояния организма может быть применен для определения степени адаптированности не только у представителей сем. Delphinidae, но и у других видов млекопитающих в связи с изменением состояния среды в природных условиях.

Результаты настоящего исследования могут оказаться полезными для разработки комплексных экологических программ по спасению, как черноморской афалины, так и других редких и исчезающих видов животных, # что будет способствовать сохранению видового разнообразия.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Ы. Афалина или бутылконосый дельфин (Tursiops truncatus Montagu, 1821) распространение, питание).

Таксономическое положение (Соколов В.Е., 1979; Павлинов И .Я., Россолимо.

О.Л., 1998):

Русское название Латинское название.

Класс ! Млекопитающие 1 Mammalia Linnaeus, 1785 ртряд ! Китообразные Cetacea Brisson, 1762.

Подотряд Зубатые Odontoceti Flower, 1867.

Семейство Дельфиновые Delphinidae Gray, 1821.

Г —————- (Род i ' i | Афалины или ! бутылконосые i ' дельфины ¦ Tursiops Gervair, 1855 г- —————————-1 Вид || Афалина Tursiops truncatus Montagu, 1821.

На основании изучения особенностей длины тела, длины черепа и окраски тела И.И. Барабаш-Никифоров (1940, 1960) счел возможным выделить черноморскую афалину в особый подвид — Tursiops truncatus ponticus. Согласно данным автора, у взрослых особей черноморской афалины средняя длина самцов составляет 245,3 см, у самок — 236,5 смсредняя длина черепа взрослой особи -477,5 мм.

Афалина {Т. truncatus Montagu, 1821) широко распространена в умеренных и тропических водах по всему миру. Афалина встречается преимущественно в прибрежной зоне, редко — в пелагических районах (Jefferson Т.А. et al., 1993).

Черноморский подвид афалины (Т. truncatus ponticus Barabash, 1940) в основном обитает в прибрежных водах. В наибольшей степени черноморские афалины сосредоточены в северо-восточной части Черного моря (Клейненберг С.Е., 1956; Гепртнер В. Г. и др., 1976; Яскин В. А., Юхов В. Л., 1997). Из-за зараженности глубинных частей Черного моря сероводородом весь бентос в этой акватории сосредоточен в прибрежных частях (Никитин В.Н., 1938), что и определяет ареал распространения черноморской афалины в северо-восточной части Черного моря, вдоль берегов Северного Кавказа и Южного Крыма.

Как уже отмечалось выше, численность популяций черноморской афалины неуклонно падает из года в год. Как полагают ученые-экологи (Яблоков А.В., 1986; Расс Т. С., 1993; Соколов В. Е., 1997; Яскин В. А., Юхов В. Л., 1997), это может являться следствием целого комплекса неблагоприятных факторов антропогенного происхождения:

— обеднение кормовой базы (значительно сократилась численность крупных пелагических рыб, таких как: кефаль, ставрида, скумбрия и др.) — существенное загрязнение бассейна Черного моря аграрными, промышленными и бытовыми стокамиувеличение фактора беспокойства, за счет резкой интенсификации судоходства, особенно в период размножения. Объект питания афалины (Т. truncatus Montagu, 1821) во многом зависит от ареала обитания. Повсеместно в питании афалины преобладают различные виды рыб, но могут встречаться кальмары и ракообразные (Соколов В.Е., 1997).

По данным В. И. Цалкина и И.И. Барабаш-Никифорова (1941), черноморский подвид {Т. truncatus ponticus Barabash, 1940) в значительной степени бентофаг, но также питается и пелагическими рыбами. Согласно данным С. Е. Клейненберга (1956) и А. Г. Томилина (1957) объектами питания черноморской афалины являются следующие виды рыб: черноморский мерланг (Odontogadus merlangus euxinus), камбала (калкан) Psetta maeotica, скат (Raja clavatia), умбрина (Umbrina cirrosa), скорпена (Scorpaena porcus), хамса (Engraulis encrasicolus), барабуля (Mullus barbatus ponticus), кефаль (Lisa sp.), лобан (Mugil cephalus), пеламида (Sarda Sarda) (названия рыб даны по Рассу Т. С., 1993).

4. ВЫВОДЫ: ф 1. В течение периода адаптации к условиям жизни в неволе у черноморской афалины (Tursiops truncatus ponticus Barabash, 1940) выявляется повышение инфицированности особей патогенной Грамположительной кокковой микрофлорой (как неблагоприятный биотический фактор) и подавление защитных иммунологических реакций, вызванное, вероятнее всего, стрессом после отлова диких животных из привычной среды обитания.

2. Наибольшие изменения со стороны иммунной системы у афалины, выражающиеся в абсолютной и относительной лимфопении, снижении Т -® клеточной и, особенно, В — клеточной субпопуляций лимфоцитов, подавлении фагоцитарной активности нейтрофилов и моноцитов при ускоренной СОЭ и абсолютном лейкоцитозе, отмечаются в течение первого месяца адаптации к условиям жизни в неволе. При этом у афалины резко возрастает количество патогенной Грамположительной кокковой микрофлоры верхних дыхательных путей, что может свидетельствовать о развитии в этот период острого воспалительного процесса при наличии иммунологической недостаточности организма у адаптирующихся животных.

• 3. Выявлены особенности иммунологических показателей у афалины, заключающиеся в повышенном содержании в периферической крови эозинофилов, обладающих фагоцитирующей способностью, а также появлении в крови переходных к тканевой форме моноцитов с высокой фагоцитарной активностью.

Резкое повышение фагоцитарной активности у переходных форм моноцитов при снижении фагоцитарных реакций у нейтрофилов и моноцитов в первый месяц адаптации к неволе следует считать особенностью адаптационного т характера иммунной системы у афалины.

4. Повышение содержания относительного количества сывороточных иммуноглобулинов (IgG и IgM) у афалины с 5 — 7 недели адаптации к неволе согласуется с наличием патогенной Грамположительной кокковой микрофлоры в верхних дыхательных путях, представленной Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus saprophyticus, Streptococcus pyogenes и Streptococcus pneumoniae. Это может свидетельствовать о наличии гуморального иммунного ответа у афалины на внедрение патогенных микроорганизмов.

5. Появление компенсаторных иммунологических механизмов, позволяющих пережить неблагоприятные биотические факторы в новых условиях обитания, приводит к постепенной нормализации иммунологических, гематологических и микробиологических показателей, отмечаемых у афалин после 1 года пребывания их в неволе и соответствующих показателям у адаптированных, клинически здоровых животных.

6. Комплексное изучение показателей иммунологического и гематологического статуса у афалины в сочетании с микробиологическими исследованиями на разных сроках пребывания в неволе позволяет оценить степень адаптированности этих животных к измененным биотическим факторам среды.

5. РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ПРАКТИЧЕСКОМУ ПРИМЕНЕНИЮ.

Предложенный эколого-иммунологнческнй подход для оценки степени влияния среды обитания, основанный на изучении динамики показателей иммунного статуса, может быть применен более широко при исследовании степени адаптированности не только у китообразных, но и у других видов морских млекопитающих.

Так, данный подход был успешно применен при исследовании степени адаптированное&tradeщенков сивуча (Eumetopias jubatus) в природных условиях на полуострове Камчатка (мыс Козлова), Командорских островах (о. Медный), Ямских о-вах и о. Иона.

В связи со значительным сокращением численности сивуча на большей части ареала в начале 1990х этот вид был включен в список редких и исчезающих видов в США и России. В настоящее время изучению этой проблемы уделяется большое внимание. В США была разработана специальная Программа по изучению и восстановлению численности сивуча до уровня безопасного состояния (Recovery Plan for the Steller Sea Lion, 1992). В соответствии с этой программой проводятся различные междисциплинарные исследования с целью выяснения причин значительного сокращения численности сивуча.

Получен положительный отзыв о практическом применении эколого-иммунологического подхода для оценки состояния здоровья репродуктивной группировки сивуча (Eumetopias jubatus) на Камчатке, Командорских, Ямских о-вах и на о. Ионы от Камчатского филиала Тихоокеанского Института Географии ДВО РАН. Предварительные данные показали (Sokolova O.V., Denisenko Т.Е., Burkanov V.N., 2005; Denisenko Т.Е., Sokolova O.V., Burkanov V.N., 2006) что подавление иммунной реактивности организма у животных в природных ареалах обитания может стать причиной повышенной восприимчивости к воздействию патогенных факторов различной этиологии (заболеваниям вирусного, бактериального или грибкового характера), что, ведет к увеличению смертности особей и в конечном итоге к общему сокращению численности популяции.

Проведенное исследование показало, что изучение изменений показателей иммунного статуса животных в связи с особенностями их экологии может оказаться перспективным подходом для оценки степени устойчивости организма к изменениям условий среды обитания.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Барабаш-Никифоров И. И. Размеры и окраска дельфинов афалин (Tursiops truncatus Montagu), как критерий в вопросе их подвидовой дифференциации. I960, Научн. Докл. высш. шк., биол. науки, № 1, стр. 35−42
  2. Барабаш-Никифоров И. И. Фауна китообразных Черного моря. Ее состав и происхождение. Воронеж: Изд-во Воронеж. Гос. Университета, 1940, стр. 56−63
  3. В.В. Проблемы охраны здоровья морских млекопитающих // Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 10 Всесоюз. совещания, Москва, 1990, стр. 19−21
  4. А.А. Микробиологический аспект адаптации дельфинов к условиям неволи.// Морские млекопитающие: Тез. докл. 9 Всес. совещ. по изуч., охране и рац. исп. мор. млек., Архангельск, 1986, стр. 41−43
  5. А.А. Спорные вопросы классификации заболеваний китообразных. // Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 10 Всесоюз. Совещания. Москва, 1990, стр. 24−25
  6. А.А., Милосердова Н. А. К характеристике микрофлоры китообразных Черного моря. // Гидробиологический журнал, 1989. Т. 25, № 5. стр. 38−42
  7. JI.H., Лебедев В. Г. Некоторые клинические показатели крови черноморских дельфинов.// Морфология и экология морских млекопитающих: дельфины. М.: Наука, 1971, стр. 126−129
  8. В.Н. Динамика и современное состояние численности сивуча в водах России, 1989−1999 гг.// Материалы международной конференции: «Морские млекопитающие Голарктики», Архангельск, 2000, стр. 56−65
  9. Великанов JIЛ. Эволюционное учение.// Биология, М.: Мир, 2002. стр. 321 345
  10. В. А. Проблема сохранения находящихся на грани исчезновения популяций полярных и серых китов Охотского моря.// Материалы международной конференции: «Морские млекопитающие Голарктики», Архангельск, 2000, стр. 82−85
  11. А.С. Лечение заболевания афалины, вызванного микробами ешерихиа коли и протеус мирабилис.// Морские млекопитающие: Тез. докл. 10 Всес. совещ. по изуч., охране и рац. исп. мор. млек., Светлогорск, М., 1990, стр.64
  12. Н.А., Джикидзе Э. К., Почхуа М. А. Иммунологический статус обезьян в процессе акклиматизации и коррекция его левамизолом.// Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии, 1986. № 3, стр. 62−65
  13. Вуд Ф. Г. Морские млекопитающие и человек.// Ленинград: Гидрометеоиздат, 1979, 264 стр.
  14. В.Г. Эволюционная иммунология. М.: ИКЦ «Академкнига», 2005, 408 стр.
  15. В.Г., Чапский К. К., Арсеньев В. А., Соколов В. Е. Ластоногие и зубатые киты. Серия: Млекопитающие Советского Союза. М.: Высшая школа, 1976,718 стр.
  16. С.В. Автоматический анализ размеров ядер лимфоцитов периферической крови морских млекопитающих.// Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 8 Всесоюз. Совещания, Астрахань, 1982, стр. 93−94
  17. А.Н. Адаптация сельскохозяйственных животных.// Физиология сельскохозяйственных животных (под ред. А.Н. Голикова), М.: Агропромиздат, 1991, стр. 409−415
  18. П.Д., Белоусова О. И., Федотова М. И. Стресс и система крови. М.: Медицина, 1983, 240 стр.
  19. Е.В. Вычислительные методы анализа и распознавания патологических процессов, Л.: Медицина, 1978, 296 стр.
  20. Гуле Вилем Гематологический атлас, Братислава: изд-во Словацкой Академии наук, 1963, 184 стр.
  21. Т.Е. Микрофлора черноморской афалины (Tursiops truncatus) в различные периоды адаптации к условиям неволи: Дисс.. уч. степ. канд. биол. наук. М.: МГАВМиБ, 2003, 180 стр.
  22. П.А., Грызлова О. Н., Денисенко В. Н., Печникова Г. Н., Тулупова М. Н. Методические указания по тестированию естественной резистентности телят.//М.: ВАСХНИЛ, 1980, стр.10−19
  23. .А., Кузьмин С. Н., Дзагурова М. С. и др. Воспроизведение феномена исчезновения антител в эксперименте.// Иммунология, 1985. № 5. стр. 58−62
  24. Т.И., А.Ф. Алексеев, О. В. Белецкая и др. Микозы кожи китообразных.// Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 7 Всесоюз. Совещания, Москва, 1978, стр. 132−133
  25. Н.Н. Применение модифицированной методики выявления неспецифической эстеразы в лимфоцитах морских млекопитающих.// Физиология морских животных, Тезисы докладов Всесоюзной конф., Мурманск, Апатиты, 1989, стр. 162
  26. B.C. О чем говорят медицинские анализы, Минск: Белорусская наука, 1999, 189 стр.
  27. В.В., Биркун А. А., Кирюхин И. Ф. Иммунозависимые реакции в процессе адаптации дельфинов к неволе.// Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 9 Всесоюз. Совещания, Архангельск, 1986, стр. 176−177
  28. С.Е. Млекопитающие Черного и Азовского морей. М.: Изд-во АН СССР, 1956, 286 стр.
  29. С.К., Соколов В. Е. Океанарии США и Японии.// в сборнике статей «Морфология и экология морских млекопитающих», отв. ред. В. Е. Соколов, М: Наука, 1971, стр. 153−171
  30. Ковальчук J1.B., Чередеев А. Н. Актуальные проблемы оценки иммунной системы человека на современном этапе.// Иммунология, 1990. № 5. стр. 4−7
  31. О.В. Проблема гнойно-септической патологии у морских млекопитающих.// Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 9 Всесоюз. Совещания. Архангельск, 1986а, стр.204−205
  32. А.З., Мисюра А. Г. Методы физиологических обследований дельфинов: (рекомендации). // Киев: Институт физиологии, 1978, 109стр.
  33. Т.И., Волянский Ю. Л., Васильев Н. В., Мальцев В. И. Адаптационный синдром и иммунитет. Харьков: «Основа», 1995, 368 стр.
  34. П.А., Глазова Т. Н. Концентрация мышечного гемоглобина в мышцах водных млекопитающих.// Биохимия, 1967, Т. 32. стр. 651 658
  35. Г. Н., Магаева C.B., Макаров С. В., Сепиашвили Р. И. Нейроиммунопатология. Руководство. М.: Изд-во НИИ общей патологии и патофизиологии, 2003. 438 стр.
  36. Э.Л. Сравнительная иммунология.// М.: Мир, 1980, 424 стр.
  37. М.М., Алешкин В. А. Использование моноспецифических антисывороток к сывороточным белкам мыши для анализа соответствующих белков других представителей отряда Rodentia, М.: Медицина, № 2, 1984, стр. 15−18
  38. Д., Пенхейл Дж., Седжуик Дж. Выделение различных субпопуляций лимфоцитов (Глава 2).// Клаус Дж. (ред.) Лимфоциты. Методы., М.:Мир, 1990. стр. 69−96
  39. А.Г., Богданова Л. Н. Система крови черноморской афалины.// Черноморская афалина Tursiops truncatus ponticus: морфология, физиология, акустика, гидродинамика. М.: Наука, 1997, стр. 186−213
  40. Ю.А., Савусин В. П., Зеленая Ф. Е. О численности черноморских дельфинов.// Морские млекопитающие: Тез. докл. 7 Всесоюз. совещания, М., 1978, стр. 226−227
  41. B.H. Нижняя граница донной фауны и ее распределение в Черном море.//Доклады АН СССР, 1938. т.21, № 7, стр. 341−345
  42. С.Н. Бактериологическое исследование павших дельфинов // Ветеринария, 1969, № 6. стр. 25−27
  43. М.С. Иммунофенотипическая характеристика лейкозных клеток в панели моноклональных антител : Дисс.. уч. степ. канд. медиц. наук. М.: Министерство здравоохранения СССР, ГНЦ РАМН, 1990, 122 стр.
  44. Одум 10. Основы экологии, М.: Мир, 1975, 740 стр.
  45. Одум 10. Экология (в 2-х томах), Пер. с англ. М.: Мир, 1986, 376 стр.
  46. С.В., Хозинский В. В., Семенов Б. Ф. Течение экспериментальной инфекции, вызванной вирусом Лангет у мышей, на фоне стресса, связанного с ограничением движения.// Вопросы вирусологии, 1986. № 5. стр. 634−636
  47. Л.А. Лекции о физиологии нервной системы. М., Л.: ОГИЗ, 1934, 182 стр.
  48. И.Я., Россолимо О. Л. Систематика млекопитающих СССР (дополнения). М.: Изд-во МГУ, 1998, 190стр.
  49. О.В. Приоритетные органические загрязняющие вещества в водной экосистеме озера Байкал. Сравнение химического и биологического подходов.// Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук, М., 2000, 27стр.
  50. Е.Е., Позднякова Р. З., Манукян Л. М. Пособие по лабораторной клинической иммунологии. М.: РУДН, 2003, 283 стр.
  51. Т.С. Ихтиофауна Черного моря и некоторые этапы ее истории.// Ихтиофауна черноморских бухт в условиях антропогенного воздействия. Киев: Наук. Думка, 1993, стр. 1−140
  52. А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология, М: Мир, 2000, 592 стр.
  53. В.В. Иммунный статус афалин, содержащихся в неволе, как критерий инфекционной устойчивости.// Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук, М.: 1991, 230 стр.
  54. А 74. Романов В. В., А. И. Сыкало, Занин А. В., Сергиевская М. О. Состояниесистемы иммунитета дельфинов при гнойно-септических заболеваниях (ГСЗ) //
  55. Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 9 Всесоюз. Совещания, Архангельск, 1986, стр. 344−345
  56. В.В., Сергиевская М. О. Динамика гематологических показателей черноморских афалин в ходе послеотловной адаптации.// Физиология морских животных, Тезисы докладов Всесоюз. Совещания, Мурманск, Апатиты, 1989, стр. 112
  57. И.И. Ответные реакции морских животных на антропогенное загрязнение Черного моря.// Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук, М., 2000, 55стр.
  58. В.И., Бондарева И. Б. Математическая статистика в клинических исследованиях.// М.: изд. дом «ГЭОТАР-МЕД», 2001, 255 стр.
  59. М.А., Скородумов Д. И., Федотов В. Б. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. М.: Колос, 1995, 319 стр.
  60. Г. А., Хисамутдинов Ф. Ф. Ветеринарная гематология. М.: Колос, 1995, 256 стр.
  61. В.Е. Систематика млекопитающих: Отряды китообразных, хищных, ластоногих, трубкозубых, хоботных, даманов, сирен, парнокопытных, мозоленогих, непарнокопытных. М.: Высш. шк., 1979, 528 стр.
  62. В.Е. Обзор исследований по черноморской афалине.// Черноморская афалина Tursiops truncatus ponticus: морфология, физиология, акустика, гидродинамика. М.: Наука, 1997. стр. 9−18
  63. В.Е. Редкие и исчезающие виды животных: Млекопитающие. Москва, 1986, 518 стр.
  64. В.Е., Яскин В. А., Юхов B.J1. Распределение и численность черноморских дельфинов.// 5 Съезд Всесоюзного Териологического общества АН СССР: Тезисы докладов, Москва, 1990. Т.З. стр. 178−179
  65. Г. Т. Механизмы стрессорных нарушений функций клеток естественной резистентности и пути их коррекции.// Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук, М.: 1985,40 стр.
  66. А.И. Иммунологические проблемы адаптации китообразных к ноогенной среде обитания.// Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тез. докл. 8 Всесоюз. совещания. Астрахань, 1982, стр. 355−357
  67. А.Г. В ми ре китов и дельфинов.// Москва, «Знание», 1974, 206 стр.
  68. А.Г. Китообразные.// Звери СССР и прилежащих стран. М.: изд-во АН СССР, 1957. Т.9. 756 стр.
  69. А.Г., Близшок Я. И. Заболевания афалин, содержащихся в неволе.// Бюл. мое. об-ва испытат. природы, 1981. Т. 86, вып.1. стр. 13−18
  70. П.А., Мельников В. В. О причинах гибели белух во время промысла // Териология, орнитология и охрана природы.// Тезисы докладов Всесоюзного симпозиума «Биология и проблемы севера», Якутск, 1986, вып. 3. стр. 78−79
  71. В.К. Неспецифические факторы защиты и иммунный ответ организма при стрессе.// Автореферат диссертации па соискание ученой степени кандидата медицинских наук, Челябинск, 1986, 25 стр.
  72. P.M., Пинегин Б. В., Истамов Х. И. Экологическая иммунология. М.: ВНИРО, 1995,219 стр.
  73. В.И., Барабаш-Никифоров И.И. Фауна китообразных Черного моря, ее состав и происхождение.//Зоологический журнал, 1941.Т.20, вып.1. стр. 176 178
  74. А.Н. Характеристика и функциональные свойства субпопуляций лимфоцитов человека.// Итоги науки и техники, ВИНИТИ, сер.: Иммунология, • 1984, Т. 13. стр. 108−133
  75. Е.В., Герман Г. П. Иммунохимическая диагностика гаммапатий // Методические рекомендации, М.: Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г. Н. Габричевского МЗ РСФСР, 1984, 51 стр.
  76. И.А. Экология. М.: Высшая школа, 2000, 512 стр.
  77. И.И. Пути и закономерности эволюционного процесса, JL, М.: изд-во Академии наук Союза ССР, 1940, 232 стр.
  78. В.М. Проблемы экологической иммунологии. JL: Медицина, 1976, 240 стр.
  79. А.В. Популяционные проблемы биологии и охраны морских млекопитающих.// Изучение, охрана и рациональное использование морских млекопитающих: Тезисы докладов 9 Всесоюз. Совещания. Архангельск, 1986, стр. 439−440
  80. А.В., Белькович В. М., Борисов В. И. Киты и дельфины. Монографический очерк. М.: Наука, 1972, 473 стр.
  81. В.А., Юхов B.J1. Численность и распределение черноморских афалин.// Черноморская афалина Tursiops truncatus ponticus: морфология, физиология, акустика, гидродинамика. М.: Наука, 1997, стр. 19−26
  82. Arvy L. The unknowns of the lymphatic system in Cetacea.// In: Investigations on Cetacea, G. Pilleri (ed.), «Der Bund», New York, 1976. pp. 169−177
  83. Arvy L., Pilleri G. Some characteristics of the cetacean spleen.// In: Investigations on Cetacea, G. Pilleri (ed.), Benteliag, Berne, Switzerland, 1970. pp. 165−167
  84. Baker J.R. Causes of mortality and parasites and incidental lesions in dolphins and whales from British waters.// Vet. Rec., 1992. Vol. 130. pp. 569−572
  85. Bossart G.D., Dierauf L.A. Marine mammal clinical laboratory medicine.// In: Handbook of Marine Mammal Medicine, Dierauf L.A. (ed.), CRC Press, Boca Raton, Florida, 1990. pp. 1−52
  86. Buck J.D., Overstrom N.A., Patton G.W., Anderson H.F., Gorzelany J.F. Bacteria associated with stranded cetaceans from the northeast USA and southwest Florida Gulf coasts.//Dis. Aquat. Org., 1991. Vol.10, pp. 147−152
  87. Skilling D.E., Evermann J., Stott J.L., Trites A.W. Disease agents in Steller Sea Lions in Alaska: a review and analysis of serology data from 1975−2000, Fisheries Centre Research Reports, Canada, 2003. V. l 1, № 4,26 pp.
  88. Calle P.P., Kenny D.E., Cook R.A. Successful treatment of suspected Erysipelas septicemia in a beluga whale {Delphinapterus leucas).// J. of Zoo Biology, 1993. Vol. 12. pp. 483−490
  89. Cavagnolo R.Z. The immunology of marine mammals.// Dev. Сотр. Immunol., 1979. Vol. 3. pp.245−257
  90. Colgrove G.S. Stimulation of lymphocytes from dolphin (Tursiops truncatus) by ф phytomitogens.// Am. J. Vet. Res., 1978. Vol. 39. pp. 141−144
  91. Cordes D.O. Dolphins and their disease.// N. Z. Vet. J. 1982. Vol. 30. pp. 46−49
  92. Cornell L.H., Duffield D.S., Joseph B.E., Stark B. Hematology and serum chemistry values in the beluga {Delphinapterus leucas).!7 J. Wildl. Dis., 1988. Vol.24, pp. 220−224
  93. De Guise Sylvain Cellular immunology of cetaceans.// In Molecular and cell biology of marine mammals, Krieger Publishing Company, Malabar, Florida, 2002. pp.235−244
  94. De Guise S., Martineau D., Beland P., Fournier M. Possible mechanisms of action of environmental contaminants on St. Lawrence beluga whales
  95. Delphinapterus leucas). Environ. Health Persp., 1995a, Vol. 103 (4), pp.73−77
  96. De Guise S., Bernier J., Dufresne M.M., Martineau D., Beland P., Fournier M. Phenotyping of beluga whale blood lymphocytes using monoclonal antibodies, Dev. Сотр. Immunol., 1997a. Vol. 21. pp. 425−433
  97. Dierauf L.A., Gulland F.M.D. (ed.) Handbook of marine mammal medicine: health, disease, veterinary medicine and wildlife rehabilitation (2nd ed.). CRC Press LLC, 2001. 1063 pp.
  98. Dierauf L.A., Gage L.J. Gross necropsy of cetaceans and pinnipeds.// In: Handbook of Marine Mammal Medicine: Health, Disease and Rehabilitation, Dierauf L.A. (ed.), CRC Press, Boca Raton, Florida, 1990. pp. 285−286
  99. Domingo M., Vilafranca M., Visa J., Prats N., Trudgett A., Visser I. Evidence for chronic morbillivirus infection in the Mediterranean striped dolphin (Stenella coeruleoalba).H J. of Veterinary Microbiology, 1995.Vol. 44. pp. 229−239
  100. Dunn J.L. Bacterial and micotic diseases of cetaceans and pinnipeds. // In Dierauf L.A. (ed.). CRC Handbook of Marine Mammal Medicine: Health, Disease and Rehabilitation. CRC Press. Boca Raton, Florida, 1990. pp. 73−87
  101. Eisner Т., Dalton L.M. Emetic voidance of stomach lining induced by massive beetle ingestion in a beluga whale.// J. of Chemical Ecology, 1993.Vol. 19(8). pp. 1833−1836
  102. Evermann J.L.S., Trites A.W. Disease agents in Steller Sea Lions in Alaska: a review and analysis of serology data from 1975−2000, Fisheries Centre Research Reports, Canada, 2003.V.11. № 4. 26 pp.
  103. Gingerich P.D., Wells N.A., Russell D. E., Ibrahim Shah S.M. Origin of whales in epicontinental remnant seas: new evidence from the Early Eocene of Pakistan.// Science, 1983. Vol. 220. pp. 403−406
  104. Graham M.S., Dow P.R. Dental care for a captive Killer Whale {Orcinus orca).// J. of Zoo Biology, 1990.Vol. 9. pp. 325−330
  105. Greenwood A.G., Taylor D.C. Clinical and pathological findings in dolphins in 1978.// J. of Aquat. Mammals. 1979.Vol. 7(3). pp.71−74
  106. Greenwood A.G., Taylor D.C. Clinical and pathological findings in dolphins in 1977.// J. of Aquat. Mammals. 1978. Vol. 6(2). pp. 33−38
  107. Greenwood A.G., Taylor D.C. Clinical and pathological findings in dolphins in 1976.// J. of Aquat. Mammals. 1977. Vol. 5(2). pp. 34−39
  108. Harwood J., Hall A. Mass mortality in marine mammals: its implications for population dynamics and genetics.// Trends in Ecology and Evolution, 1990. Vol.5, pp. 254−257
  109. Heide-Jorgensen M.-P., Harkonen Т., Dietz R., Thompson P.M. Retrospective of the 1988 European seal epizootic.// J. of diseases of aquatic organisms, 1992.Vol. 13. pp. 37−62
  110. Howard E.B., Britt J.O. Tissue residues of selected environmental contaminants in marine mammals.// In: Howard E.B. (ed.), Pathobiology of Marine Mammal Diseases. CRC Press. Boca Raton. FL., 1983. Vol. 2. pp. 79−94
  111. Inskeep II W., Gardiner C.H., Harris R.K., Dubey J.P., Goldston R.T. Toxoplasmosis in Atlantic bottlenosed dolphins (Tursiops truncatus)./I J. of Wildlife Diseases, 1990.Vol. 26(3). pp. 377−382
  112. Jacobson C.N., Aasted В., Broe M.K., Petersen J.L. Reactivities of 20 anti-human monoclonal antibodies with leucocytes from ten different animal species.// Vet. Immunol. Immunopathol., 1993.Vol. 39. pp. 461−466
  113. Jefferson T.A., Leatherwood S., Webber M.A. Marine mammals of the world. FAO Species Identification Guide. United nations environment programme, food and agriculture organization of the United Nations. Rome, 1993. 320 p.
  114. Joseph B.E., Cornell L.H. Metastatic squamous cell carcinoma in a beached California sea lion (Zalophus californianus).// J. of Wildlife Deseases, 1986.Vol. 22(2). pp. 281−283
  115. Kennedy S., Smyth J.A., Cush P.F., Duignan P., Platten M., McCullough S.J., Allan G.M. Histopathologic and immunocytochemical studies of distemper in seals.//
  116. J. of Veterinary Pathology, 1989. V. 26. pp. 97−103
  117. Kinsel M.J., Murnane R.D. Fatal Erysipelothrix rhusiopathiae septicemia in a captive Pacific white-sided dolphin {Lagenorhynchus obliquidens).// Proceedings american association of zoo veterinarians, 1996. pp. 337−339
  118. Persistent organochlorines in Steller sea lion {Eumetopias jubatus) from the Bulk of Alaska and the Bering sea, 1976−1981 // Marine Pollution Bulletin, 1996. V. 32. pp. 535−544
  119. Lipscomb T. P., Schulman F.Y., Moffett D., Kennedy S. Morbilliviral disease in Atlantic bottlenose dolphins (Tursiops truncatus) from the 1987−1988 Epizootic.// J. of Wildlife Diseases, 1994.Vol. 30(4). pp.567−571
  120. Loughlin T.R. The Steller sea lion: A declining species.// Biosphere Conservation, 1998. Vol.1, pp. 91−98
  121. MacNeill A.C. Blood values for some captive cetaceans.// Can. Vet. J., ф 1975.V.16. pp. 187−193
  122. Martineau D., Lagace A., Beland P., Higgins R., Armstrong D., Shugart L.R. Pathology of stranded Beluga Whales (Delphinapterus leucas) from the St. Lawrence estuary, Quebec, Canada// J. of Comparative Pathology, 1988. V. 98. pp. 287−311
  123. Martineau D., De Guise S., Fournier M., Shugart L., Girard C., Lagace A., Beland P. Pathology and toxicology of beluga whales from the St. Lawrence estuary, Quebec, Canada-past, present and future.// Sci. Total Environ., 1994. V. 154, pp. 201−215
  124. Merrick R.L., Loughlin T.R., Calkins D.G. Decline in abundance of the northern sea lion, Eumetopias jubatus in Alaska, 1956−86, Fish Bull., U.S., 1987. Vol. 85. pp. 351−365
  125. Monyan J.A., Ader R., Grata L.J. The effects of stress on the development of immunological memory following low-dose antigen priming in mice.// Brain, Behaviour & Immunity, 1990. Vol. 4, № 1, pp. 1−12
  126. Mumford D.M., Stockman G.D., Barsales P.B., Whitman Т., Wilbur J.R. Lymphocyte transformation studies of sea mammal blood.// Experientia, 1975. Vol. 31, p. 498
  127. Nash D.R., Mach J.P. Immunoglobulin classes in aquatic mammals.// J. Immunol., 1971. Vol. 107, pp. 1424−1430
  128. Nunoya Т., Tajima M., Ishikawa Y., Samejima Т., Ishikawa H., Hasegava K. Occurrence of a canine distemper-like disease in aquarium seals.// Jpn. J. Vet. Sci., 1990.Vol. 52(3). pp. 469−477
  129. Patterson Rhonda A., Middlebrooks Bob L. Methods for purification and study of cetacean immunoglobulins.// In: Molecular and cell biology of marine mammals. Krieger Publishing Company, Malabar, Florida, 2002, pp. 245−252
  130. G., 1983, Cetaceans in captivity.// Investigations on cetacea. Berne, Vol.15, p.221−249
  131. Recovery Plan for the Steller Sea Lion (Eumetopias jubatus). Prepared by the team for the Office of Protected Resources National Marine Fisheries Service National Oceanic and Atmospheric Administration, Silver Spring, Maryland, December 1992. 92p.
  132. Reddy M., Echols S., Finklea В., Busbee D., Reif J., Ridgway S. PCBs and chlorinated pesticides in clinically healthy Tursiops truncatus: relationships between levels in blubber and blood.// Marine Pollution Bulletin, 1998. V.36(l 1). pp. 892−903
  133. Ridgway Sam H. (ed.) Mammals of the sea: Biology and medicine, Springfield (III.), 1972. 432 p.
  134. Ridgway Sam H., Simpson J. G., Patton G. S., Gilmartin W.G. Hematologic findings in certain small cetaceans.// J. Am. Vet. Med. Assoc., 1970. Vol. 157. pp. 566−575
  135. Romano T.A., Ridgway S.H., Quaranta V. MHC class II molecules and immunoglobulins on peripheral blood lymphocytes of the bottlenosed dolphin, Tursiops truncatus.// J. Exp. Zool., 1992. Vol. 263, pp. 96−104
  136. Romano Tracy A., Felten S.Y., Olschowka J.A., Felten D.L. A microscopic investigation of the lymphoid organs of the beluga, Delphinapterus leucas: ananatomical link between the nervous and immune systems.// J. Morphol., 1993. Vol. 221. pp. 243−259
  137. Romano T.A., Ridgway S.H., Felten D.L., Quaranta V. Molecular cloning and characterization of CD4 in an aquatic mammal, the white whale Delphinapterus leucas. ll Immunogenetics, 1999. Vol. 49. pp. 376−383
  138. Ross P. S. The role of immunotoxic environmental contaminants in facilitating the emergence of infectious diseases in marine mammals. Human and Ecological Risk Assessment, 2002. Vol. 8. pp. 277−292
  139. Scott G.P., Burn D.M., Hansen L.J. The dolphin dieoff: long-term effects and recovery of the population.// In: Proceedings of the Oceans 88 Conference, 31 October-2 November 1988, Baltimore, MD.Vol.3, pp. 819−823
  140. Selye H. Stress and Disease.// Science, 1955. Vol. 122, pp. 625−631
  141. Simpson J. G., Gardner M.B. Comparative anatomy of selected marine mammals.// In: Mammals of the Sea: Biology and Medicine, S. H. Ridgway (ed.), Charles С Thomas, Springfield, IL., 1972. pp. 298−418
  142. Smith A.W., Boyt P.M. Caliciviruses of ocean origin: a review.// J. Zoo Wildl. Med., 1990.Vol. 21(1). pp. 3−23
  143. Smith A.W., Skilling D.E., Ridgway S.H., Fenner C.A. Regression of cetacean tattoo lesions concurrent with conversion of precipitin antibody against a poxvirus, Javma, 1983.Vol. 183(11). pp. 1219−1222
  144. Smith A.W., Prato C.M., Gilmartin W.G., Brown R.J., Keyes M.C. A preliminary report on potenciale pathogenic microbiological agents recently isolated from pinnipeds.// J. of Wildl. Diseases, 1974. Vol.10, pp. 54−59
  145. Solntseva G.N. The effect of water pollution on the development of pathological processes in the kidneys of the ringed seals of different populations (Pusa Hispida).//
  146. Proceedings of the Soviet-Swedish Symposium: Influence of human activities on the Baltic ecosystem, Leningrad gidrometeoizdat. 1989. pp. 60−67
  147. Solomon G.F. Emotion, immunity and philosophical perspectives.// Stress, Immunity and Aging. Marsel Dekker, Inc., New York, Basel, 1984. pp. 1−10
  148. Tanaka E., Kimura Т., Wada S., Hatai K., Sonoda S. Dermatophytosis in a Steller sea lion {Eumetopias jubatus) JI J. Vet. Med. Sci., 1994. Vol. 56(3). pp.551 553
  149. Travis J.C., Sanders B.G. Whale immunoglobulins I. light chain types.// Сотр. Biochem. Physiol., 1972 a. Vol. 43 B, pp. 627−635
  150. Travis J.C., Sanders B.G. Whale immunoglobulins II. heavy chain structure.// Сотр. Biochem. Physiol., 1972 b. Vol. 43 B. pp. 637−641
  151. Varaldo P.E., Kilpper-Balz R., Biavasco F., Satta G., Schleifer K.H. Staphylococcus delphini sp. nov., a coagulase-positive species isolated from dolphins.// International Journal of systematic bacteriology. 1988. Vol. 38, № 4. pp. 436−439
  152. Wantzelius E.O.B. Management of gastrointestinal problems in Orinoco river dolphins {Inia geoffrensis) kept in captivity at Aquarium.// J.V. Seijas, Venezuela, Proceedings American Association of Zoo Veterinarians, 1990. pp.40−42
  153. Williams III, C.R., Chapmen G.B., Blake A.S. Ultrastructural study of the blood cells of the beluga whale, Delphinapterus leucas JI J. Morphol., 1991. Vol. 209. pp. 97−110
  154. Рисунок 7.1 Черноморская афалина (Tursiops truncatus ponticus Barabash, 1940).
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!