Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Индукторы вылупления личинок цистообразующих нематод сем. 
Heteroderidae (Skarbilovich) и перспективы их использования для защиты растений

Диссертация: Индукторы вылупления личинок цистообразующих нематод сем. Heteroderidae (Skarbilovich) и перспективы их использования для защиты растений
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Единственным слабым звеном в развитии паразита с точки зрения борьбы следует считать вторую личиночную стадию, т. е. инвазионных личинок, только что вылупившихся из яиц и вышедших из-под защиты оболочек цист, но еще не успевших внедриться в корни растений. Такие личинки легко подвергаются воздействию внешних факторов и в случае отсутствия растения-хозяина быстро погибают. В настоящее время… Читать ещё >

Индукторы вылупления личинок цистообразующих нематод сем. Heteroderidae (Skarbilovich) и перспективы их использования для защиты растений (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Возбудители глободерозов и гетеродерозов
    • 1. 2. Жизненный цикл цистообразующих нематод
    • 1. 3. Факторы вылупления личинок цистообразующих нематод
      • 1. 3. 1. Влияние физических факторов на вылупление личинок
      • 1. 3. 2. Природные индукторы вылупления личинок цистообразующих нематод
      • 1. 3. 1. Искусственные индукторы вылупления нематод
      • 1. 3. 4. Ингибиторы вылупления нематод
      • 1. 3. 5. Компоненты цист как индукторы или ингибиторы вылупления
      • 1. 3. 6. Стадии процесса вылупления
    • 1. 4. Новые направления в защите растений от фитопаразитических нематод
  • Глава 2. Материалы и методы исследований
    • 2. 1. Материалы
      • 2. 1. 1. Химические вещества, использованные в работе
      • 2. 1. 2. Нематоды, использованные в работе
    • 2. 2. Методы
      • 2. 2. 1. Приготовление инокулюма
      • 2. 2. 2. Экстракция цист из субстрата
      • 2. 2. 3. Стерилизация цист и приготовление суспензии яиц
      • 2. 2. 4. Приготовление корневых диффузатов
      • 2. 2. 5. Приготовление гомогената цист и яиц
      • 2. 2. 6. Приготовление гомогената оболочек цист и смывов с яиц и цист
      • 2. 2. 7. Определение общего белка по методу Бредфорда
      • 2. 2. 8. Нагревание и замораживание гомогената
      • 2. 2. 9. Разделение водного экстракта гомогената яиц по молекулярному весу растворенных веществ
      • 2. 2. 10. Белковый электрофорез по Лэмли
      • 2. 2. 11. Оценка регуляторов вылупления
      • 2. 2. 12. Оценка индукции защитных ответов на суспензионной культуре клеток табака
      • 2. 2. 13. Проверка индукторов в системе «Табак — ВТМ»
      • 2. 2. 14. Анализ данных
  • Глава 3. Результаты исследований и их обсуждение
    • 3. 1. Изучение влияния эндогенных факторов на вылупление личинок
      • 3. 1. 1. Компоненты цист как индукторы вылупления
      • 3. 1. 2. Влияние концентрации водного экстракта гомогенатов яиц на вылупление личинок
      • 3. 1. 3. Влияние температурного воздействия на активность водных экстрактов из гомогенатов яиц
      • 3. 1. 4. Молекулярный вес индукторов вылупления
      • 3. 1. 5. Определение природы индуктора вылупления
      • 3. 1. 6. Влияние компонентов цист G. rostochiensis и Я. glycines на вылупление личинок G. rostochiensis
      • 3. 1. 7. Влияние компонентов цист G. rostochiensis и Я glycines на вылупление личинок Я glycines
    • 3. 2. Действие водных экстрактов гомогената яиц G. rostochiensis как индукторов устойчивости растений к фитопатогенам
      • 3. 2. 1. Антивирусная активность экстрактов из гомогената яиц
      • 3. 2. 2. Индукция раннего защитного ответа
    • 3. 3. Изучение экзогенных регуляторов вылупления личинок
      • 3. 3. 1. Компактен
      • 3. 3. 2. Фосфонистые производные аминокислот и хитозан

Седентарные цистообразующие нематоды семейства Heteroderidaeоблигатные паразиты корневой системы растений — относятся к отряду Tylenchida. Эти нематоды принадлежат к числу наиболее опасных и экономически значимых патогенов сельскохозяйственных культур во всем мире, в том числе и Россиинекоторые представители этих паразитов включены в карантинный список Европейской организации по защите растений (ЕОЗР). Среди растений-хозяев этих нематод многие важные продовольственные культуры: зерновые (пшеница, овес, ячмень), овощные (картофель, все виды свеклы, капуста, морковь и некоторые другие), из кормовых культур многие виды бобовых и злаковых трав, а также некоторые декоративные культуры и большое число видов дикой и сорной растительности. Последние являются резервантами этих нематод в природе. Гетеродериды хорошо адаптированы к условиям обитания и способны длительное время сохранять жизнеспособность (от одного года до 8−10 лет) без кормового растения. Особо опасными патогенами на территории Российской Федерации, вызывающими большие потери урожая зерновых, овощных культур и картофеля, являются пшеничная цистообразующая нематода (.Heterodera filipjevi), свекловичная цистообразующая нематода (Я. schachtii), соевая цистообразующая нематода (Я. glycines), и золотистая картофельная нематода (Globodera rostochiensis). Эта нематода является возбудителем глободероза картофеля — очень широко распространенного и наиболее вредоносного заболевания этой культуры на территории России. По данным карантинной службы G. rostochiensis зарегистрирована более чем в 60 областях и краях Российской Федерации на площади более 50 000 гектар. По данным литературы, в России на отдельных сильно зараженных приусадебных участках урожай картофеля снижается на 80%, а в среднем на зараженных очагах паразит снижает урожайность картофеля до 30−40% (Шестеперов, Савотиков, 1995). На каждом сильно зараженном растении нередко образуется только 1 -2 маленьких клубня, а в некоторых случаях последние могут и совсем отсутствовать. Картофельная нематода — карантинный объект, поэтому она не только причиняет прямой вред картофелеводству, но и дезорганизует семеноводство картофеля и препятствует развитию внутренних и международных торговых связей. Из зараженных хозяйств нельзя вывозить не только картофель, но и саженцы деревьев, кустарников, декоративных растений.

Традиционный химический метод регулирования численности нематод дорог и малоэффективен. К тому же, наиболее эффективные нематициды обладают высокой токсичностью для человека и теплокровных животных. Так как химический метод борьбы с цистообразующими нематодами связан большими затратами и к тому же не дает полной эффективности, то в последнее время все больше внимания уделяется изысканию биологических мер борьбы с ними. Основными методами регулирования численности и вредоносности цистообразующих нематод в почве являются применение систем севооборота с использованием видов растений, не являющихся хозяевами этих паразитов, что не всегда является экономически выгодным для сельхозпроизводителей. На практике весьма эффективным методом борьбы оказалось широкое применение устойчивых сортов растений, сильное обеззараживающее действие которых основано на стимуляции ими вылупления анабиотических личинок паразита из цист, и последующей их гибелью, так как они не могут развиваться в корнях устойчивых растений. Находясь в цистах, и при отсутствии растений-хозяев анабиотические личинки в течение многих лет могут сохранять свою жизнеспособность. Под влиянием корневых выделений картофеля происходит их вылупление, выход из цист и проникновение в корни растений. В корнях развивающиеся личинки хорошо защищены от воздействия внешней среды: попытки их уничтожения обычно приводят к гибели растения.

Единственным слабым звеном в развитии паразита с точки зрения борьбы следует считать вторую личиночную стадию, т. е. инвазионных личинок, только что вылупившихся из яиц и вышедших из-под защиты оболочек цист, но еще не успевших внедриться в корни растений. Такие личинки легко подвергаются воздействию внешних факторов и в случае отсутствия растения-хозяина быстро погибают. В настоящее время проводятся многочисленные исследования отдельных стадий развития нематод с целью выявления звеньев, воздействие на которые приводило бы к возможности регулирования численности паразитов. Среди них гормональные процессы (линька и размножение), синтез ферментов, энергетический метаболизм (дыхательные процессы), транспортные системы (мембранные функции), нейропередача, синтез коллагена (формирование стенки тела) и синтез ДНК. Влияние на эти мишени может оказываться как непосредственно, так и путем индукции защитных механизмов растения-хозяина.

Вылупление личинок из яиц — это исходный пункт активной жизни паразита. Тщательное изучение специфики процесса вылупления личинок имеет первостепенное значение не только с теоретической, но и с практической точки зрения. Изучение активности природных стимуляторов и ингибиторов процессов вылупления является предпосылкой для разработки новых методов борьбы с цистообразующими нематодами, связанных с использованием естественных, эволюционно-выработанных механизмов взаимоотношений в системе растение — нематоды.

Цели и задачи исследований.

Основной целью данных исследований был поиск и исследование природных регуляторов процессов, связанных с вылуплением личинок цистообразующих нематод и изучение возможности применения этих веществ для защиты растений. В связи с этим в задачи этой работы входило:

1. Исследование действия эндогенных факторов (компонентов цист) на вылупление личинок цистообразующих нематод (G. rostochiensis и Н. glycines).

2. Изучение природы веществ, выделенных из водных экстрактов гомогенатов яиц G. rostochiensis и Н. glycines и стимулирующих вылупление личинок этих нематод;

3. Исследование действия биологически активных соединений (компактина, аминофосфинатов, хитозана) на вылупление личинок G. rostochiensis и Н. glycines',.

4. Проверка водных экстрактов гомогенатов яиц G. rostochiensis на способность индуцировать защитный ответ растений в системе «ТабакВирус Табачной Мозаики (ВТМ)».

Научная новизна исследований.

1. Впервые показано, что водные экстракты гомогената яиц G. rostochiensis способны активизировать процессы вылупления личинок этой нематоды из яиц;

2. Впервые показана способность водных экстрактов гомогената яиц G. rostochiensis индуцировать устойчивость табака к ВТМ;

3. Впервые показана способность фосфиновых аналогов аспарагиновой кислоты индуцировать вылупление личинок G. rostochiensis из яиц.

Практическая значимость работы.

1. Модифицирована методика проведения лабораторного эксперимента по изучению действия различных веществ в качестве индукторов или ингибиторов вылупления личинок нематод, что позволило быстро и с достаточно высокой достоверностью определять активность влияния тех или иных веществ на процесс вылупления личинок цистообразующих нематод из яиц;

2. Полученные данные об индукторах вылупления, содержащихся в цистах G. rostochiensis и Н. glycines, могут послужить основанием для начала разработки принципиально новых подходов контроля цистообразующих нематод, таких как индукция вылупления анабиотических личинок в отсутствии растения — хозяина;

3. Показано, что вещества, содержащиеся в экстрактах яиц G. rostochiensis, обладают антивирусной активностью, что может быть важным для дальнейшего их изучения с целью разработки вирулицидов.

4. Показана активность фосфиновых аналогов аспарагиновой кислоты, как индукторов вылупления личинок G. rostochiensis из яиц. А так же продемонстрированы способности компактна и хитозана снижать активность индукторов вылупления.

Апробация работы и публикации.

Материалы диссертации были представлены: на Первой Всероссийской конференции по иммунитету растений к болезням и вредителям", С.-Петербург, 2002 гна 3-й и 6-й научных конференциях «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями (зоонозами)», Москва, 2002 и 2005 ггна Всероссийском совещании «Современные системы защиты растений от болезней и перспективы использования достижений биотехнологии и генной инженерии», Голицыно, 2003 гна XXVII и XXVIII международных симпозиумах Европейского Общества Нематологов в Риме, 2004 г. и Благоевграде, 2006 г.

По материалам диссертации опубликовано 11 печатных работ.

Структура и объем работы.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части, выводов и списка литературы. Материал изложен на 105 страницах машинописного текста, содержит 4 таблицы и 23 рисунка.

Список литературы

включает 140 работ, из которых 110 на иностранном языке.

Выводы.

1. При изучении эндогенных факторов вылупления личинок из яиц цистообразующих нематод (оболочки цист, яйца и водные смывы с поверхности стенок цист и яиц) впервые показана индуцирующая активность всех исследованных компонентов. Наибольшей индуцирующей активностью обладали водные экстракты гомогенатов яиц;

2. Индукторы вылупления личинок, выделенные из экстрактов яиц цистообразующих нематод G. rostochiensis и Я. glycines видоспецифичны. Перекрестное испытание их на вылупление личинок показало отсутствие индуцирующей активности в отношении тестируемых видов;

3. Индукторы вылупления из экстрактов яиц G. rostochiensis термостабильны. После кипячения и многократного замораживания индуцирующая активность их сохраняется. Индуцирующая активность из экстрактов яиц Я. glycines при нагревании 100 °C снижается в два раза;

4. В состав индуктора (или индукторов) вылупления из гомогенатов яиц G. rostochiensis входит белковая составляющая;

5. Молекулярная масса индуцирующей фракции в водном экстракте гомогената яиц менее 5 кДа;

6. На модельной системе табак — вирус табачной мозаики впервые выявлено действие экстрактов яиц, как неспецифических индукторов устойчивости растений. Элиситорным действием обладали экстракты из яиц с молекулярным весом более 100 кДа;

7. При изучении экзогенных факторов на процесс вылупления личинок цистообразующих нематод установлены различия в реакции разных видов нематод на одни и те же индукторы. Фосфиновые производные аспарагиновой кислоты стимулировали выход личинок.

G. rostochiensis, и не выступали как индукторы вылупления личинок.

H. glycines.

8. Компактин — ингибитор синтеза стеринов оказывал ингибирующее действие на вылупление личинок цистообразующих нематод.

9. Выявленные в ходе проведённых исследований природные регуляторы процесса вылупления личинок из яиц могут служить основой для разработки новых средств защиты растений от паразитических нематод.

Автор благодарен своим научным руководителям Виталию Георгиевичу Джавахия и Николаю Демьяновичу Романенко за поддержку в ходе выполнения работы. Особая благодарность Петелиной Г. Г., Пальчук М. В. и Дебловой 3. Н. за помощь в проведении экспериментов. Кроминой К. А. за помощь в проведении экспериментов с индукцией устойчивости на табаке и суспензионной культуре клеток табака. Щербаковой JI.A. и Шумилиной Д. В. за ценные замечания и обсуждение результатов в ходе исследования. Спасибо всем сотрудникам лаборатории молекулярной биологии ВНИИ фитопатологии за помощь и дружеское отношение.

Особую благодарность автор выражает Эдварду Маслеру за неоценимую помощь в написании статьи в журнал Nematology.

Заключение

.

Представленные результаты позволяют заключить, что в водных экстрактах из гомогената яиц цистообразующих нематод G. rostochiensis и Я. glycines присутствуют вещества, способные индуцировать вылупление личинок этих нематод из яиц. Эти индукторы являются специфичными для каждого вида нематод. Индукторы вылупления из яиц G. rostochiensis способны сохранять активность после кипячения и многократного замораживания. В то же время нагревание до 100 °C экстрактов из яиц Я. glycines снижает их индуцирующую вылупление активность в два раза.

Снижение активности экстрактов яиц G. rostochiensis после проведения ферментативного гидролиза с использованием протеиназы К, позволяет предположить, что в состав индуктора (или индукторов) вылупления входит белковая составляющая. Было показано, что индуцирующей активностью обладала фракция экстракта яиц с молекулярной массой водорастворимых веществ менее 5 кДа.

Пока остается неясным механизм действия веществ из экстрактов гомогената яиц и их роль в метаболизме личинок нематод, поэтому требуются дальнейшие исследования по идентификации веществ, отвечающих за индукцию вылупления личинок. Возможно, их определение откроет новые направления и подходы к изучению физиологии фитопаразитических нематод, контролированию их численности и снижению их вредного воздействия на растения.

Экстракты из гомогенатов яиц содержат так же вещества, способные защищать растения табака от ВТМ. Противовирусная активность компонентов цист не была показана ранее и интересна для дальнейшего исследования.

Было показано, что активные соединения на основе фосфиновых аналогов природных аминокислот, хитозана и компактина могут выступать в качестве потенциальных противонематодных агентов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , К. И. (1960) Биоэкологическое обоснование химическогометода борьбы с картофельной нематодой {Heterodera rostochiensis, Wollenweber). Материалы V Всесоюзного совещания по изучению нематод. Тезисы докладов. Самарканд, 19−21.
  2. , И. С. Зиновьева, С. В., Пасешниченко, В. А.,
  3. , Ж. В. (1998) Защитное действие фуростаноловых гликозидов на растения, зараженные галловой нематодой Meloidogyne incognita. Прикладная биохимия и микробиология, 34(5): 560−563.
  4. , Н. И., Зиновьева, С. В., Ильинская, Л. И., Переход, У. А.,
  5. , Г. И., Герасимова, Н. Г., Ильина, А. В., Варламов, В. П., Озерецковская, О. Л. (2001) Индуцирование устойчивости растений с помощью водорастворимого хитозана. Прикладная биохимия и микробиология, 37(1): 115−122.
  6. , Р. (1963) Новые исследования в области борьбы с нематодами.
  7. Международный сельскохозяйственный журнал, 2: 60−62.
  8. , X. (1972) Нематоды растений и борьба с ними. М.: Колос. С. 444.
  9. , Н. С., Баранова, Н. А., Крейер, В. Г. (1995) Микробныеингибиторы ферментов биосинтеза и этерификации холестерина. Антибиотики и химиотерапия, 5: 38−44.
  10. , Ю. Н., Вавилова, Н. А., Осипова, Т.И., Воинова, Т.М., Хурс, Е.Н.,
  11. , В.Г., Хомутов, P.M. (2004) Аминоалкилфосфинаты новые эффективные ингибиторы меланиногенеза и фунгициды. ДАН, 398: 696−698.
  12. , Ю. Н., Вавилова, Н. А., Осипова, Т.И., Воинова, Т.М., Хурс, Е.Н.,
  13. , В.Г., Хомутов, P.M. (2004) Фунгицидная активность фосфиновых аналогов аминокислот обмена метионина. ДАН 397: 1−3.
  14. , С. В., Чижов, В. Н. (2006) Современные направлениязащиты растений от паразитических нематод. В Прикладная нематология. Буторина, Н. Н., Зиновьева, С. В., Кулинич, О. А. и др. Институт Паразитологии РАН. М. Наука. Глава 11: 269−290.
  15. Инге-Вечтомов, С. Г. (1997) Метаболизм стеринов и защита растений.
  16. Соровский образовательный журнал. 11: 16−21.
  17. , Е. С., Кралль, Э. JI. (1971а) Паразитические нематодырастений и меры борьбы с ними. Л.: Наука, Т. 1.
  18. , Е. С., Кралль, Э.Л. (1971b) Паразитические нематодырастений и меры борьбы с ними. Л.: Наука, Т. 2.
  19. , И. И., Бутовский, А. П. (1939) Главнейшие итоги изучениясвекловичной нематоды {Heterodera schachtii Schmidt) и методов борьбы с ней. Сборник работ по нематодам сельскохозяйственных растений под редакцией Кирьяновой Е. С. Сельхозгиз. 75−120.
  20. , В. В., Козарь, Е. Г., Кононков, П. Ф., Шестеперов, А. А.1999) Борьба с фитопаразитическими нематодами на основе использования свойств растений-антагонистов.
  21. Сельскохозяйственная биология. 3: 24−32
  22. , Н. Н. (1979) Соевая нематода в Приамурье. Защита икарантин растений. 5: 46.
  23. , В. И., Квашнина, Н. А. (2006) Методы выявления иидентификации картофельной нематоды. Защита и карантин растений, 11: 30−32.
  24. , Л. А., Бондаренко, Л. В., Козырева, О. Г., Инге
  25. , С. Г. (1990) Получение мутантов растений с измененным составом фитостеринов, обладающих устойчивостью к насекомым. //Вести. ЛГУ. Сер. 3. 2(10): 82−87.
  26. , Л. А., Левашина, Е. А., Бондаренко, Л. В., Байрамова, Н. Л.,
  27. , Е. В., Инге-Вечтомов, С. Г. (1992) Мутанты высших растений по биосинтезу стеринов. Генетика. 28(2): 129−135.
  28. , Л. А., Павлова, 3. Б., Иванова, М. М. (1998)
  29. Агробактериальная трансформация как способ измениеня гормонального метаболизма у высших растений. Генетика. 34(2): 165−182
  30. , Л. А., Ходжайова, Л. Т. (1998) Молекулярно-генетическиеаспекты устойчивости высших растений к вредителям сельского хозяйства. Генетика. 34(6): 719−729.
  31. , Г. Л., Кудашов, А. А, Сотник, В. Г., Гуськова, Л А. (2002)
  32. Фиторегуляторные аспекты повышения устойчивости растений к нематодам. Всероссийская конференция по иммунитету растений к болезням и вредителям, посвященная 300-летию Санкт-Петербурга, Научные материалы. 146−147.
  33. , Э. А. (1974) Влияние некоторых биотических и абиотическихфакторов на вылупление личинок картофельной нематоды (Heterodera rostochiensis Woll.). Академия наук Эстонской ССР, 160с.
  34. , О. Л. (1994) Индуцирование устойчивости растенийбиогенными элиситорами фитопатогенов. Прикладная биохимия и микробиология. Т.37. 5: 533−541.
  35. , О. Л., Васюкова, Н. И., Зиновьева, С. В., (2002)
  36. Хитозан как элиситов индуцированной устойчивости растений. Хитин и Хитозан: получение, свойства и применение. Наука 2002. 339−335.
  37. , Л. Т., Левашина, Е. А., Усольцева, М. Ю.,
  38. , Л. В., Лутова, Л. А. (2000) Изменение содержания растительных стеринов как биологической борьбы с фитостерин-зависимыми организмами. Генная инженерия и экология, 1: 124 128.
  39. Федеральный закон от 15 июля 2000 года N 99-ФЗ «О карантинерастений».
  40. , А. А. Савотиков, В. Ф. (1995) Карантинныефитогельминтозы. Книга 1, Москва, «Колос».
  41. , А. А. (2007) Грозит ли посевам свеклы в Россиипочвоутамление"? Защита и карантин растений, 7: 50−53.
  42. Шишова-Касаточкина, О А., Леутская, 3. К. (1979) Биохимическиеаспекты взаимоотношений гельминта и хозяина. Изд. Наука, с. 280.
  43. Atkinson, Н. J. and Ballantyne, A. J. (1979) Evidence for the involvementof calcium in the hatching of Globodera rostochiensis. Annals of Applied Biology 93:191−198.
  44. Atkinson, H. J. Opportunities for molecular biology in crop protection.1993) Ed. D.J. Beadle et al. L: Brit. Crop protection Council, 257−266.
  45. Atkinson, H. J., Fowler, M. and Isaac, R. E. (1987b) Partial purification ofhatching activity for Globodera rostochiensis from potato root diffusate. Annals of Applied Biology 110: 115−125.
  46. Atkinson, H. J., Taylor, J. D. and Fowler, M. (1987a) Changes in thesecond stage juveniles of Globodera rostochiensis prior to hatching response to potato root diffusate. Annals of Applied Biology 110:105 114.
  47. Atkinson, H. J., Taylor, J. D. and Ballantyne, A. J. (1980) The uptake ofcalcium prior to the hatching the second stage juveniles of Globodera rostochiensis. Annals of Applied Biology 94:103−109.
  48. Bates, J. A., Taylor, E. J. A., Gans, P. Т., and Thomas, J. E. (2002)
  49. Determination of relative proportions of Globodera species in mixed populations of potato cyst nematodes using PCR product melting peak analysis. Molecular plant pathology 3(3): 153−161
  50. Baker, С. J., Orlandi, E.W., and Norton, M. (1993) Harpin, an elicitor ofthe hypersensitive response in tobacco caused by Erwinia amylovora, elicits active oxygen production in suspension cells mock. Plant Physiol. 102: 1341−1344.
  51. Birch, A. N. E., Robertson, W. M., Geogheghan, I. E., McGavin, W. J.,
  52. Alphey, T. J. W., Phillips, M. S., Fellows, L. E., Watson, A. A., Simmonds, M. S. J. and Porter, E. A. (1993) DMDP a plant derived sugar analogue with systemic activity against plant parasitic nematodes. Nematologica 39: 521−535.
  53. , R. (1979) Developmental nutrition of nematodes: the biochemicalrole of sterols, heme compounds, and lysosomal enzymes. Journal of Nematology. 11:250−259.
  54. Bradford, M. (1976) A Rapid and Sensitive Method for the Quantitation of
  55. Microgram Quantities of Protein Utilizing the Principle of Protein-Dye Binding. Analytical Biochemistry 72: 248−254.
  56. Byrne, J., Twomey, U, Maher, N., Devine, K. J. and Jones, P. W. (1998)
  57. Detection of hatching inhibitors and hatching factor stimulants for golden potato cyst nematode, Globodera rostochiensis, in potato root leachate. Annals of Applied Biology 132: 463−472.
  58. , M. (1995) Characterization of rhizosphere bacterial isolates whichaffect the hatch of potato cyst nematodes. MSc thesis, The National University of Ireland, Cork, Ireland.
  59. Charlson, D. V., Tylka, G. L. (2003) Heterodera glycines cyst componentsand surface disinfestants affect H. glycines hatching. Journal of Nematology 35(4): 458−464.
  60. Chitwood, B.G., Bulirer, E.M. (1946) The life history of the goldennematode of potatoes, Heterodera rostochiensis Wollenweber, under long Island, new York, conditions. Phytopathology. 36: 180−189.
  61. , D. J. (1999) Biochemistry and Function of Nematode Steroids.
  62. Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology. 34(4): 273— 284
  63. , D. J. (2002) Phytochemical based strategies for nematodecontrol. Annual Review Phytopathology 40: 221−249.
  64. , A. J. (1970) Hatching factors and sex attractants of cyst nematodes.
  65. Report of Rothamsted Experimental Station for 1969, p. 179. Harpenden: Rothamsted.
  66. , A. J. (1971) Hatching factors and sex attractants of potato cystnematode. In Report of Rothamsted Experimental Station for 1970, pp. 147−148. Harpenden: Rothamsted.
  67. Clarke, A. J. and Hennessy, J. (1987) Hatching agents as stimulants ofmovement of Globodera rostochiensis juveniles. Revue de Netmatologie 10: 471−476
  68. Clarke, A. J. and Shepherd, A. M. (1966a) Picrolonic acid as a hatchingagent for the potato cyst nematode, Heterodera rostochiensis Woll. Nature, London, 221: 546.
  69. Clarke, A. J. and Shepherd, A. M. (1967) Flavianic acid as a hatchingagent for Heterodera cruciferae Franklin and other cyst nematodes. Nature, London, 213:419−20.
  70. Clarke, A. J. and Shepherd, A. M. (1968) Hatching agents for the potatocyst-nematode, Heterodera rostochiensis Woll. Annuals of Applied Biology 61: 139−149.
  71. Clarke, A. J. and Shepherd, A. M. (1966b) Inorganic ions and the hatchingof Heterodera spp. Annuals of Applied Biology. 58: 497−508.
  72. Cohn, E, Spiegel, Y. (1991). Root nematode interactions, in Plant Roots-
  73. The. Hidden Half, ed. Waisel, Y., Eshel, A., Kafkafi, U. pp. 789−805. New York: Marcel Decker
  74. Cronin, D., Moenne-Loccoz, Y., Dunne, C. and O’GaraF. (1997b)1.hibition of egg hatch of the potato cyst nematode Globoderarostochiensis by chitinase-producing bacteria. European Journal of Plant Pathology, 103: 433−440.
  75. Cronin, D., Moenne-Loccoz, Y., Fenton, A., Dunne, C, Dowling, D. N. and
  76. O’Gara, F. (1997a) Role of 2,4-diacetylphloroglucinol in the interactions of the biocontrol pseudomonad strain F113 with the potato cyst nematode Globodera rostochiensis. Applied and Environmental Microbiology, 63: 1357−1361.
  77. Devine, K. J. and Jones, P. W. (2000) Response of Globoderarostochiensis to exogenously applied hatching factors in soil. Annals of applied biology, 137:21−29.
  78. Devine, K.J. Byrne, J. Maher, N. and Jones, P.W. (1996) Resolution ofnatural hatching factors for the golden potato cyst nematode, Globodera rostochiensis. Annals of Applied Biology, 129: 323−334.
  79. Doncaster, С. C., Seymour, M. K. (1973) Exploration and selection ofpenetration site Tylenchida. Nematologica. 19: 137−145.
  80. Edwards, D. L., Payne, J., Scares, G. G. (1990) Novel isolates of Bacillusthuringiensis having activity against nematodes. US Pat. 4 948 734.
  81. , C. (1945) The influence of crucifers and mustard oil on theemergence of larvae of the potato root eelworm, Heterodera rostochiensis Wollenweber. Annals of Applied Biology, 32: 67−70.
  82. , C. (1968) The survival of desiccated larvae of Heteroderarostochiensis and schachtii. Nematologica. 14: 544−548.
  83. , P. R. (1966) The effect of different soil drying times on theaxstraction from soil and hatching potato root eelworm. Plant pathology. 15:175−179.
  84. Felix, G. and Boiler, T. (2003) The highly conserved RNA-binding motif
  85. RNP-1 of bacterial cold shock proteins is recognized as an elicitor signal in tobacco. Journal Biology Chemistry, 278: 6201−6208.
  86. Ferris, J.M., Mai, W. F. (1956) Viability of encysted golden nematodelarvae following seasonal temperature changes and drought. Plant diseases reporter 40: 966−970.
  87. Forrest, J. M. S., FarrerL.A. (1983) The response of eggs of the whitepotato cyst nematode Globodera pallida to diffusate from potato and mustard roots. Annals of Applied Biology, 103: 283−289.
  88. Fukuzawa, A., Furusaki, A., Ikura, M. and Masamune, R. (1985a)
  89. Glycinoeclepin A, a natural hatching stimulus for the soybean cyst nematode. Journal of the Chemical Society, 4: 222−224.
  90. Fukuzawa, A., Matsue, H., Ikura, M. and Masamune, R. (1985b)
  91. Glycinoeclepins В and C, nortriterpenes related to glycinoeclepin A Tetrahedron Letters 26:5539−5542.
  92. Greco, N., Brandonisio, A. (1986) The biology of Heterodera carotae.
  93. Nematologica, 32: 447−460.
  94. , J. J. (1957) The hatching response of Heterodera major (O.
  95. Schmidt) to certain root diffusate. Nematologica, 2: 123−125.
  96. Jones, F. G. W. (1970) The control of potato cyst-nematode. J. R. Soc. Arts118:179−199.
  97. Jones, P. W., G. L. Tylka, and R. N. Perry. (1998) Hatching, in R. N. Perryand D. J. Wright, eds. The physiology and biochemistry of free-living and plant-parasitic nematodes. New York: CAB International, 181−212.
  98. Jong, C., Wyss, U. (1999) New approaches to control plant parasiticnematodes. Applied Microbial Biotechnology, 551: 439−446.
  99. Kraus, G. A., Johnson, В., Kongsjahju, A. and Tylka, G. L. (1994)
  100. Synthesis and evaluation of compounds that affect soybean cyst nematode egg hatch. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 42: 1839−1840.
  101. Kraus, G. A, Vander Louw, S. J., Tylka, G. L., Soh, D. H. (1996)
  102. Synthesis and tasting of compounds that inhibit soybean cyst nematode hatch. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 44:1548−1550.
  103. Kort, J., Ross, H., Rumpenhorst, H.J., Stone, A.R. (1977) An internationalscheme for identifying and classifying pathotypes of potato cyst nematodes Globodera pallida. Nematologica 23: 333−339.
  104. , U.K. (1970) Cleavage of structural protein during the assemblyof the head of the bacteriophage T4. Nature, 227: 680−685.
  105. Levene, В. C., Owen, M.D.K. and Tylka, G. L. (1998a) Response ofsoybean cyst nematode to herbicides on soybeans. Weed Science, 46: 264−270.
  106. Levene, B.C., Owen, M. D. K. and Tylka, G. L. (1998b) Influence ofherbicide application to soybeans on soybean cyst nematode egg hatching. Journal of Nematology, 30: 347−352.
  107. Lewis, M. F., Mai, W. F. (1960) Survival of encysted and free larvae of thegolden nematode if relation to temperature and relative humidity. Proceeding of Helmintologycal Society of Washington, 27: 80−85.
  108. , B. F. (1951) Larval emigration from cysts of the goldennematode of potatoes, Heterodera rostochiensis Woll. Phytopathology, 41:889−896.
  109. Mai, W. F., Mechow, J. (1952) Relative humidity in relation of viability oflarvae enclosed in cysts and free larvae of the golden nematode, Heterodera rostochiensis, Wollenweber. Phytopathology, 42: 469−470.
  110. , E. (1996) The range of stimulatory action of the nematoderesistant cultivar Tarpan on hatching of juveniles from the cysts ofgolden potato cyst nematode (Rol pathotype) under field conditions. Biuletyn Instytutu Ziemniaka, 46:104.
  111. Man-Hong Sun, Li Gao, Yan-Xia Shi, Bao-Jii Li and Xing-Zhong Liu.2006) Fungi and actinomycetes associated with Meloidogyne spp. eggs and females in China and their biocontrol potential. Journal of Invertebrate Pathology, 93(1): 22−28.
  112. Masamune, Т., Anetai, M., Fukuzawa, A., Takasugi, M., Matsue, H.,
  113. Kabayashi, K., Ueno, S., Katsui, N. (1987a) Glycinoeclepins, natural hatching stimuli for the soybean cyst nematode, Heterodera glycines. I. Isolation. Bulletin of the Chemical Society of Japan, 60: 981−999.
  114. Masamune, Т., Anetai, M., Takasugi, M. and Katsui, N. (1982) Isolation ofa natural hatching stimulus, glycinoeclepin A, for the soybean cyst nematode. Nature, 297: 495−496.
  115. Masamune, Т., Fukuzawa, A., Furusaki, A., Ikura, M., Matsue, H.,
  116. Kaneko, Т., Abiko, A., Sakamoto, N., Tanimoto, N., Murai, A. (1987b) Glycinoeclepins, natural hatching stimuli for the soybean cyst nematode, Heterodera glycines. II. Structural elucidation. Bulletin of the Chemical Society of Japan, 60: 1001−1014. '
  117. , P. M. (1968) The susceptibility of parasitic nematodes to subfreezing temperatures. Plant Disease Reporter, 52: 768−772.
  118. Miwa, A., Nii, Y., Okawara, H. and Sakakibara, M. (1987) Synthetic studyon hatching stimuli for the soybean cyst nematode. Agricultural and Biological Chemistry, 51: 3459−3461.
  119. Mori, K. and Watanabe, H. (1989) Recent results in the synthesis ofsemiochemicals: synthesis of glycinoeclepin A. Pure and Applied Chemistry, 61: 543−546.
  120. Mulder, J.G., Diepenhorst, P., Plieger, P. and Briiggemann-Rotgans, I.E.M.1992) Hatching agent for the potato cyst nematode. Patent application No. PCTINL92/126.
  121. Murai, A., Tanimoto, H., Sakamoto, H. and Masamune, T. (1988) Totalsynthesis of glycinoeclepin A. Journal of the American Chemical Society, 110:1985−1986.
  122. Myers, R., Sipes, В., Nagai, С et al. (2002) Engineering coffee for rootknot nematode resistance using cysteine and serine proteinase inhibitors. Ibid. 4(2): 234.
  123. Nitao, J. K., Meyer, S. L. F. and Chitwood, D. J. (1999) In-vitro assays of
  124. Meloidogyne incognita and Heterodera glycines for detection of nematode-antagonistic fungal compounds. Journal of Nematology, 31: 172−183.
  125. Ohl, S. A., Van der Lee, F., Cammart, R. et al. (1998) Molecular breedingfor nematode resistance in potato. Abstract of 24th International Nematology Symposium, Dandee (UK), p.84.
  126. Oji, 0., Sapra, V. T. and Pacumbaba, R. P. (1988) Effects of nematicideand herbicide interactions on field populations of cyst nematode and agronomic characters of soybean. Journal of Agronomy and Crop Science, 160: 309−313.
  127. Oostendorp, M. and Sikora, R.A. (1990) In vitro interrelationships betweenrhizosphere bacteria and Heterodera schachtii. Revue de Nematologie, 13: 269−274
  128. Oka, Y., Nacar, S., Putievsky, E., Ravid, U., Yaniv, Z., and Spiegel, Y.2000) Nematicidal activity of essential oils components against the root-knot nematode. Phytopathology, 90 (7): 710−715.
  129. , T. (1972a) Hatching inhibitory factor in the cyst contents of thesoybean cyst nematode, Heterodera glycines Inchinohe (Tylenchida: Heteroderidae). Applied Entomology and Zoology, 7: 99−102.
  130. , T. (1972b) Hatching stimulant in the egg of the soybean cystnematode, Heterodera glycines Ichinohe (Tylenchida: Heteroderidae). Applied Entomology and Zoology, 7: 234−237.
  131. , Т. (1974) Effects of hatching stimulants obtained from the cystcontents of Heterodera species (Tylenchida: Heteroderidae) on the hatching of other species. Applied Entomology and Zoology, 9:49−51.
  132. , T. G. (1955) The distribution of hatching within the cyst of potatoroot eelworm, Heterodera rostochiensis. Quarterly Journal Microbial Science, 96: 495−513.
  133. Payan, L. A., Johnson, A. W. and Littrell, R. H. (1987) Effects ofnematicides and herbicides alone or combined on Meloidogyne incognita egg hatch and development. Annals of Applied Nematology (Supplement to the Journal of Nematology, 19(1): 67−70
  134. , R.N. (1989) Dormancy and hatching of nematode eggs. Parasitology1. Today, 5: 377−383.
  135. Perry, R.N. (2002) Hatching, in: Lee, D.L., editor. The biology ofnematodes, vol. 6. London: Taylor and Francis, 147−169.
  136. Perry, R.N. and Beane, J. (1989) Effects of certain herbicides on the invitro hatch of Globodera rostochiensis and Heterodera schachtii. Revue de N6matologie, 12:191−196
  137. Perry, R. N., A. J. Clarke and J. Hennessy. (1980) The influence of osmoticpressure on the hatching of Heterodera schachtii. Revue Nematology, 3(1): 3−9.
  138. Perry, R.N. and Clarke, A.J. (1981) Hatching mechanisms of nematodes.
  139. Parasitology, 83: 435−449.
  140. Rawsthorne, D. and Brodie, В. B. (1986) Relationship between root growthof potato, root diffusate production, and hatching of Globodera rostochiensis. Journal of Nematology, 18(3): 379−384.
  141. Rawsthorne, D. and Brodie, B.B. (1987) Movement of potato root diffusatethrough the soil. Journal of Nematology, 19: 119−122.
  142. Salazar, A., Ritter, E. (1993) Effect of day light during cyst formation, storage time and temperature of cysts on the in vitro hatching Globodera rostochiensis and G. pallida. Fundamental and Applied Nematology, 16: 567−572.
  143. Samuel, M.A., Hall H., Krzymowska, M., Drzewiecka, K., Hennig, J.,
  144. , B.E. (2005) SIPK signaling controls multiple components of harpin-induced cell death in tobacco // Plant Journal, 42(3): 406−416.
  145. , A. M. (1959) Increasing the rate of larval emergence fromcysts in hatching tests with beet eelworm, Heterodera schachtii Schm. Nematologica. 4: 161−164.
  146. Schepherd, A. M. (1961) Larval emergence in pea root eelworm,
  147. Heterodera gottingiana Liebscher. Abstract of papers given at Vl-th International Nematology Symposium, Gent, p. 72.
  148. , A. M. & Clarke, A. J. (1971) Moulting and hatching stimuli, in
  149. Zuckerman, B.M., Mai, W.F. & Rohde, R.A. Eds. Plant Parasitic Nematodes, New York, NY, USA, Academic Press. 2: 267−287.
  150. Slack, D. A., Hamblen, M.L. (1961) The effect of factors on larvalemergence from cysts of Heterodera glycines. Phytopathology, 51: 350−355.
  151. , G. R. (1984). Biological control of Meloidogyne javanica with
  152. Bacillus penetrans. Phytopathology, 74: 55−60.
  153. Takasugi, M., Yachida, Y., Anetai, M., Masamune, T. and Kegasawa, 11 975) Identification of asparagusic acid as a nematicide occurring naturally in the roots of asparagus. Chemistry Letters, 45−46.
  154. Tefft, P. M., and Bone, L. W. (1985) Plant-induced hatching of eggs of thesoybean cyst nematode Heterodera glycines. Journal of Nematology, 17: 275−279.
  155. Thompson, J. M., Tylka, G. L. (1997) Differences in hatching of
  156. Heterodera glycines egg-mass and encysted eggs in vitro. Journal of Nematology, 29:315−321.
  157. , K. A. (1991) Impact of climate and agricultural practices onthe pest status of Heteroderoidea nematodes in Finland. Annals Agriculture Fenniae, 30: 125−161.
  158. , M. (1976) Conditions for collecting the potato root diffusate andthe influence on the natural hatching of potato cyst nematode. Japanese Journal of Nematology, 6: 10−13.
  159. , U. (1995) Hatching chemicals involved in the interactionbetween potato cyst nematodes, host and non-host plants. PhD thesis, The National University of Ireland, Cork, Ireland.
  160. Urwin, P. E., Lilley, C. J., McPherson, M. J. and Atkinson, H. J. (1997)
  161. Resistance to both cyst and root-knot nematodes conferred by transgenic Arabidopsis expressing a modified plant cystatin. The Plant Journal, 12(2): 455−461.
  162. Urwin, P. E., McPherson, M. J., Atkinson, H. J. (1998) Enhancedtransgenic plant resistance to nematodes by dual proteinase inhibitor constructs. Planta. 204(4): 472−479.
  163. Urwin, P. E., Troth, К. M., Zubko, E. L., Atkinson, H. J. (2000) Effectivetransgenic resistance to Globodera pallida in potato field trials. Molecular Breeding, 8: 95−101
  164. , D. R. (1961) Effect of storage environment on «in vitro"hatching of larvae from cysts of Heterodera schachtii, Schmidt. Phytopathology, 51: 623−625.
  165. , H. R. (1955) Factors influencing the emergence of larvae fromcysts of the beet eelworm, Heterodera schachtii Schmidt. Journal of Helmintology, 29: 3−16.
  166. , H. R. (1958) Observation the emergence from cysts and theorientation of larvae of three species of the genus Heterodera in response of host plan roots. Nematologica, 3: 236−243.
  167. , H. R. (1959) Further observations on some factors influencingthe emergence of larvae from cists of the beet eelworm Heterodera schachtii, Schmidt. Nematologica, 4: 245−252.
  168. , A.G. (1997) Control of potato cyst-nematode, Globoderarostochiensis Rol, by picrolonic acid and trap crops. Annals of Applied Biology, 87: 225−227.
  169. Whitehead, A.G. (1992) Emergence of juvenile potato cyst nematodes,
  170. Globodera rostochiensis and G. pallida and the control of G. pallida. Annals of Applied Biology, 120: 471−186.
  171. , A.G. (1998) Plant Nematode Control, pp. 170−171.
  172. Wallingford: CAB International.
  173. , E. (1958) Potato root diffusate production. Nematologica, III:6.14.
  174. , R. D. (1955) The hatching responses of some root eelworms ofthe genius Heterodera. The Annals of Applied Biology, 43: 19−36.
  175. Wong, A. T. S, Tylka, G. L., Hartzler, R. J. (1993) Effects of eightherbicides on in vitro hatching of Heterodera glycines. Journal of Nematology, 25(4): 578−584.
  176. Wuyts, N., Elsen, A., Sagi, L. (2002) Effect of plant secondary metaboliteson plant parasitic nematodes. The Nematology, 4(2): 208.
  177. Публикации по материалам работы
  178. , М. В., Петелина, Г. Г., Пальчук, М. В., Воинова, Т. М.,
  179. , Р. М., Приданников, М. В., Петелина, Г. Г., Пальчук, М. В.,
  180. , M. В., Петелина, Г. Г., Пальчук, М. В., Джавахия, В. Г.2006) Индукция отрождения личинок золотистой картофельной нематоды. Защита и карантин растений. 9: 35−36
  181. , С. А, Приданников, М. В., Джавахия, В.Г. (2007)
  182. Компактен потенциальный биопестицид. Защита и карантин растений (в печати).
  183. Mikhail V. Pridannikov, Galina G. Petelina, Marina V. Palchuk, Edward P.
  184. Masler and Vitaly G. Dzhavakhiya. (2007) Influence of Globodera rostochiensis cyst components on G. rostochiensis egg hatching in vitro. Nematology (в печати).
  185. Фосфонистые производные аминокислот использованные в работе.
  186. Шифр ФПА Химическая формула
  187. Ala-Рн СНз-СН (NH2)-P (0)(0H)H
  188. Asp-Рн НООС-СН2-СН (NH2)-P (0)(0H)H1.u-Рн (СН3)2-СН-СН2-СН (NH2)-P (0)(0H)H
  189. Ser-Рн НО-СН2-СН (NH2)-P (0)(0H)H
  190. Фосфонистые производные аспарагиновой кислоты, использованные в работе.
  191. Шифр ФП аспарагиновой кислоты Формула Примечание
  192. Аспарагиновая кислота (А, В, С, D места модификации) о н--в о П/ ^с^-он А-^НО V мнД D С
  193. Асп-Рн °Ч ff ho^Woh HO/DNHA с
  194. Х-156 °ч ° н4ггЧн НС> NH2 nD с Фосфиновый аналог
  195. Х-261 ОН О II/ УУ^ОН А-^ СН, о' NH2 Метиловый эфир
  196. Х-279 О SH -— В О II/ А-- СН3о' NH2 Тиофосфоновый аналог
  197. Реактивы для приготовления геля для электрофореза.1. Реактив
  198. Разделяющий (Separating) гель
  199. Формирующий (Forming) гель:1. вода2. 1МТрис-НС1,0,74 мл1,50 мл (рН 8.8)3. «Stock» АА (30%, 29:1) 2,0 мл4. SDS (10%)5. APS (10%)6. TEMED40 мкл 20 мкл 4 мкл0,8 мл0,25 мл (рН 6,8) 0,40 мл 20 мкл 14 мкл 3 мкл1. Итого:4,3 мл1,49 мл
  200. Химическая формула компактина
  201. Стадии развития Globodera rostochiensis
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!