Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Индукция защитной системы пшеницы и картофеля эндофитными бактериями Bacillus subtilis 26Д

Диссертация: Индукция защитной системы пшеницы и картофеля эндофитными бактериями Bacillus subtilis 26Д
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В связи с подавлением активности ПО в растениях пшеницы под влиянием совместного воздействия ЖК и суспензией клеток В. виЫШэ 26Д следует отметить, что это удивительный феномен, предполагающий наличие тонких механизмов в регуляции защитных систем растений как от истинных патогенов, так и симбиотрофных микроорганизмов. Можно предположить, что через механизм индуцирования защитной системы, зависимой… Читать ещё >

Индукция защитной системы пшеницы и картофеля эндофитными бактериями Bacillus subtilis 26Д (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. РОЛЬ СТИМУЛИРУЮЩИХ РОСТ РАСТЕНИЙ МИКРООРГАНИЗМОВ (СРРМ) В РЕГУЛЯЦИИ УСТОЙЧИВОСТИ К ПАТОГЕНАМ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Классификация современных средств защиты растений
    • 1. 2. Участие сигнальных молекул, запускающих СПУ и СИУ, в функционировании про-антиоксидантной системы растений
    • 1. 3. Биопрепараты на основе СРРМ
    • 1. 4. Механизмы защитных эффектов СРРМ
      • 1. 4. 1. Синтез антибиотиков
      • 1. 4. 2. Гидролазы
      • 1. 4. 3. Фитогормоны и сигнальные молекулы
      • 1. 4. 4. Сидерофоры
      • 1. 4. 5. Улучшение фосфорного и азотного питания растений
    • 1. 5. Особенности симбиотического взаимодействия СРРМ в формировании защитной системы растений
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Объекты исследований
      • 2. 1. 1. Возбудители болезней пшеницы и картофеля и методы работы с ними
      • 2. 1. 2. Средства защиты растений и иммунизаторы, использованные для обработки растений
    • 2. 2. Условия проведения опытов
      • 2. 2. 1. Лабораторные испытания
      • 2. 2. 2. Полевые опыты
    • 2. 3. Методы биохимических исследований
      • 2. 3. 1. Получение белковых экстрактов и измерение активности перокси дазы
      • 2. 3. 2. Измерение уровня Н
      • 2. 3. 3. Колориметрический метод определения белка по Bradford
      • 2. 3. 4. Изоэлектричесское фокусирование белков
    • 2. 4. Молекулярно-биологические методы
      • 2. 4. 1. Выделение и очистка РНК из растений
      • 2. 4. 2. Полимеразная цепная реакция ДНК
      • 2. 4. 3. Олигонуклеотидные праймеры, использованные в работе
      • 2. 4. 4. Реакция обратной транскрипцонной ПЦР на основе матричной РНК и полуколичественный анализ экспрессии гена пероксидазы
      • 2. 4. 5. Проведение RAPD анализа
      • 2. 4. 6. Электрофорез ДНК и РНК в агарозных и полиакриламидных гелях
      • 2. 4. 7. Компьютерный анализ нуклеотидных последовательностей
      • 2. 4. 8. Получение протопластов В. subtilis 26Д и их трансформация плазмидной конструкцией, содержащей ген GFP
    • 2. 5. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Экспериментальное обоснование эндофитного развития бактерии
  • В. subtilis 26Д в тканях растений картофеля и пшеницы
    • 3. 2. Влияние В. subtilis 26Д на проявление симптомов болезней пшеницы и картофеля
      • 3. 2. 1. Развитие корневых гнилей в растениях пшеницы
      • 3. 2. 2. Развитие возбудителя септориоза S. nodorum на отрезках листьев пшеницы
      • 3. 2. 3. Развитие фитофтороза на листьях картофеля
    • 3. 3. Влияние бактерии В. яиЫШя 26Д на биохимические показатели растений
      • 3. 3. 1. Генерация перекиси водорода в растениях пшеницы, инфицированных грибом Шро1ап8 зогокМапа
      • 3. 3. 2. Активность пероксидазы в растениях пшеницы инфицированных грибом В1ро1аш Богокшапа
      • 3. 3. 3. Активность пероксидазы в растениях пшеницы при инфицировании грибом & пос1огит
      • 3. 3. 4. Активность пероксидазы в растениях картофеля при инфицировании Рк
    • 3. 4. Роль бактерии В. япЫШв 26Д и сигнальных молекул в регулировании транскрипционной активности генов пероксидазы в растениях пшеницы и картофеля
      • 3. 4. 1. Транскрипционная активность гена пероксидазы ТС151 917, в растениях пшеницы, инфицированных возбудителем септориоза
      • 3. 4. 2. Регуляция экспрессии гена пероксидазы М21 334 в растениях картофеля под воздействием возбудителя фитофтороза
    • 3. 5. Сохранение защитного потенциала в клубнях картофеля при обработке растений В. яиЫШз 26Д

Актуальность исследований. В последние десятилетия растет интерес к биологическим средствам защиты растений (СЗР), которых отличает от химических СЗР экологичность и безопасность при применении. К таким СЗР следует отнести биологически активные соединения и живые эндофитные культуры микроорганизмов, способные стимулировать иммунный потенциал растений против патогенов [Pieterse et al., 2007; Bakker et al., 2007; Barruiso et al., 2008; Saunders, Kohn, 2009; Van der Lelie et al., 2009], который заметен на фоне высокой восприимчивости исходной формы растений [Reva et al., 2004; Compant et al., 2005; Van Loon, 2007; Мелентьев, 2007; Романенко и др., 2008; Berg, 2009; Wu et al., 2009]. Выявлено, что в растениях, под их влиянием запускаются механизмы защитной системы хозяина, обозначенные как «системная индуцированная устойчивость» (СИУ) (induced systemic resistance (ISR) и «системная приобретенная устойчивость» (СПУ) (systemic acquired resistance (SAR) [Van Loon, 2007; Barruiso et al., 2008; De Vleesschauwer et al., 2008], где важную роль играют сигнальные пути, регулируемые жасмоновой (ЖК) и салициловой кислотами (СК), соответственно. Кроме того известно, что некоторые биопрепараты обладают непосредственной антифунгальной активностью [Мелентьев, 2007].

Экологичность биопрепаратов привлекает производителей сельскохозяйственной продукции. Их рынок в 2004 г. составлял примерно 588 млн. USD [Bolckmans, 2008], из которых на долю Северной Америки приходилось 50% [http://www.abercade.ru/research/ analy-sis/3194.html]. Хотя на современном этапе биологические меры борьбы с патогенами и фитофагами в России мало применяются, по заключению экспертов, уже к 2012 году они «должны стать конкурентоспособными с пестицидами» [цит. по Монастырский, Першакова, 2009].

Еще в прошлом веке идентификацией и токсикологическими исследованиями эндофитных штаммов бактерий, выделенных из различных организмов, в том числе и растений, активно занимались в Институте микробиологии и вирусологии НАН Украины под руководством академика НАН Украины В. В. Смирнова. На основе одного из выделенных штаммов Bacillus subtiiis ВНИИСХМ 128 (26Д) в Респ. Башкортостан (РБ), на базе предприятия «Башинком» (г. Уфа), было налажено производство биопрепарата «Фитоспорин-М», успешно прошедшего полевые испытания и запатентованного с участием сотрудников нашего института [Патент РФ № 2 099 947]. Этот биопрепарат рекомендуется для использования на посевах различных сельскохозяйственных культур и активно используется в хозяйствах. Однако следует заметить, что фундаментальные основы физиолого-биохимических механизмов формирования устойчивости растений к патогенам под влиянием эндофитных штаммов микроорганизмов, в том числе и В. subtiiis ВНИИСХМ 128 (26Д) остаются пока практически не исследованными.

Цель исследования: Определение роли эндофитной бактерии Bacillus subtiiis 26Д в запуске механизмов, формирующих устойчивость растений к патогенам, на модели пшеницы и картофеля.

Задачи исследований:

1) определить способность бактериальных клеток В. subtiiis 26Д эндофитно сосуществовать в тканях растений;

2) определить влияние В. subtiiis 26Д на формирование устойчивости растений пшеницы к грибным патогенам Septoria nodorum и Bipolaris sorokiniana, а также растений картофеля к возбудителю фитофтороза Phytophthora infestons и фузариоза Fusarium oxysporium;

3) оценить влияние В. subtiiis 26Д на устойчивость растений картофеля к патогенным грибам во время вегетации и в период осенне-зимнего хранения;

4) оценить характер изменения компонентов про-/антиоксидантной систем в растениях пшеницы и картофеля под влиянием В. БиЬНШ 26Д и инфицирования патогенами;

5) изучить уровень экспрессии гена пероксидазы у инфицированных растений пшеницы и картофеля при обработке В. яиЫШз 26Д, салициловой и жасмоновой кислотами.

Научная новизна. Доказан эндофитный способ сосуществования бактерии штамма В. виЫШя 26Д в тканях растений пшеницы и картофеля и выявлено их участие в запуске молекулярных механизмов индуцированной устойчивости против септориоза и фитофтороза, соответственно. Обнаружена модуляция транскрипционной активности генов пероксидазы у растений пшеницы и картофеля, способствующая как более раннему иммунному ответу, так и супрессии защитного ответа при предварительной предпосевной обработке растений комплексом бактериальной суспензии с СК или ЖК, соответственно. Сравнительный анализ транскрипционного статуса генов пероксидаз М21 334 картофеля и ТС 151 917 пшеницы в ответ растений на В. яиЫШя 26Д и жасмоновую кислоту в норме и при инфицировании патогенами указывает в пользу их участия, как компонентов жасмонатной сигнальной системы, в индуцированной эндофитом устойчивости растений.

Практическая значимость работы. Совокупность полученных данных позволяет расширить современные представления о физиологических и биохимических механизмах устойчивости растений. Доказано, что применение В. БиЫШя 26Д в композиции с СК индуцирует, а ЖК супрессирует защитную систему растений, что требует внимательного подхода при подборе баковых смесей препаратов, содержащих в качестве действующего начала живые бактериальные культуры и сигнальные молекулы. Иммуностимулирующая активность бактерий В. зиЫШй 26Д имеет пролонгированное действие, способствуя сохранению защитного потенциала клубней картофеля в период их хранения. Основные результаты работы могут быть использованы в учебно-исследовательской работе.

Апробация работы. Основные результаты работы доложены на 10-й и 14-й Пущинских школах-конф. молодых ученых «Биология — наука XXI века» (2006, 2010) и Всероссийской 2-й школе-конф. по физико-химической биологии и биотехнологии «БИОМИКА — наука XXI века» (Уфа, 2011), на I-й Всероссийской научно-практической конф. студентов, аспирантов и молодых ученых с международным участием «Проблемы сохранения биологического разнообразия волжского бассейна и сопредельных территорий» (Чебоксары, 2010), на У-й Всероссийской конф. молодых ученых «Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой» (Саратов, 2010), на Всероссийском симп. «Растение и стресс» (Москва, 2010), на Международной научно-практической конф. «Научное обеспечение устойчивого ведения сельскохозяйственного производства в условиях глобального изменения климата» (Казань, 2010), на Ш-м Международном симп. «Растения и микроорганизмы» «Клеточная сигнализация у растений» (Казань, 2011).

Конкурсная поддержка работы. Исследования были поддержаны грантами РФФИ-Поволжье 10−04−97 021 «Эффективность экологически безопасных препаратов с иммуностимулирующей активностью на картофеле», государственного контракта Министерства образования и науки № П339 по ФЦП «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» на 2009;2013 гг. «Структурно-функциональная характеристика полисахарид-специфичных пероксидаз» и договором с Башкирским НИИ сельского хозяйства РАСХН «Влияние биопрепаратов с иммуностимулирующей активностью на устойчивость клубней картофеля к фитофторозу» в рамках государственного контракта по региональной ГНТП «Развитие научной и инновационной деятельности в сельском хозяйстве, биологии и медицине. Оптимизация функционирования биологических систем в РБ».

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 14 работ, в том числе 3 статьи в журналах из «Перечня ВАК».

выводы.

1. С использованием стерильных растений картофеля, а также трансформированных форм бактерий В. яиЫШя 26Д, синтезирующих белок ОБР, выявлено, что этот штамм обладает свойством проникать в ткани растений и эндофитно сосуществовать в них, стимулируя ростовой и иммунный потенциал.

2. Иммуностимулирующая активность бактерий В. яиЫШя 26Д имеет пролонгированное действие в онтогенезе растений, способствуя, также сохранению защитного потенциала в клубнях картофеля в период их хранения.

3. Один из механизмов системной иммунизации растений под влиянием эндофитного штамма бактерии В. тЪИИи 26Д связан с индуцированием активности компонентов прои антиоксидантной систем (генерация и деградация АФК, пероксидазная активность).

4. Установлено, что под влиянием В. тЫШй 26Д в растениях пшеницы происходит активация изопероксидаз с р/ ~ 3.5 — 4.5, 7.3 и 9.9, характеризующихся свойством взаимодействовать с мицелием патогенных грибов и участвующие в последующем в формировании устойчивости пшеницы к корневым гнилям.

5. Один из выявленных механизмов взаимной интерференции защитного ответа под влиянием совместной обработки растений пшеницы и картофеля эндофитным штаммом В. зиЫШя 26Д и жасмоновой кислотой к возбудителям септориоза и фитофтороза связан с эффектом супрессии функции генов пероксидазы и подавлением активности их белкового продукта.

6. Обнаружено, что комплекс салициловой кислоты и эндофитной культуры В. зиЫгШ 26Д индуцирует в растениях пшеницы и картофеля более высокий защитный эффект, в сравнении с отдельным их применением, сопряженный со специфической экспрессией генов пероксидазы.

7. Сравнительный анализ транскрипционного статуса генов пероксидаз М21 334 картофеля и ТС151 917 пшеницы в ответ на обработку растений суспензионной культурой клеток В. яиЫШя 26Д и жасмоновую кислоту в норме и при инфицировании патогенами указывает в пользу их участия, как компонентов жасмонатной сигнальной системы, в индуцированной эндофитом устойчивости.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Защита растений от патогенов путем их многогуровневой симбиотической бактеризации представляет один из наиболее перспективных и экологически безопасных методов повышения урожайности и качества сельскохозяйственной продукции. При умелом использовании законов роста и развития СРРМ в сообществе с растениями, а так же, знаний об изменении видового их состава можно добиться значительных результатов в биологической борьбе с патогенами.

Однако точного описания механизма воздействия СРРМ на защитную систему растений до сих пор нет [Yang et al., 2009]. Этому, вероятно, способствует и недостаточный отбор высокоэффективных штаммов среди СРРМ, защищающих растения от патогенов, поскольку гиперсинтез или, наоборот, недостаточный синтез ими защитных соединений может вызывать вариации в защитном эффекте, вплоть до индуцирования у растений высокой восприимчивости к патогенам [Рябчинская и др., 2009]. Тем более многие из СРРМ невозможно культивировать in vitro, что создает проблемы при их коммерческом использовании. Так, согласно Barruiso et al. [2008], только не более 10% от общей численности ризосферных видов в почве обладают высокой репродуктивной активностью in vitro. Это требует более четкого составления регламента производства микробиологических препаратов, сосздания их баковых смесей и подбора штаммов микроорганизмов с учетом его высокой специфичности по отношению к определённой культуре, а иногда и к сорту. Особо следует отметить о необходимости учета супрессоров защитной системы растения, выделяемых микроорганизмами, способных внести негативный вклад в устойчивость растений [Озерецковская, Васюкова, 2002].

Полученные нами результаты по доказательству возможности эндофитного сосуществования бактерий в тканях и последующего восстановления ими в этих условиях определенных технологических качеств делают практически привлекательным метод реинокулирования.

106 функциональной основы биопрепаратов для восстановления их защитных свойств. Особый интерес вызывают данные по индукции под влиянием бактерий и сигнальных молекул синтеза пероксидаз. Путем сравнения полученных данных было обнаружено, что развитие системной устойчивости к патогенам под влиянием бактериального препарата находится под контролем жасмонатной сигнальной системы, индуцирующей устойчивость растений к некротрофным патогенам. Поученные нами данные убедительно доказывают, что эндофитные микроорганизмы, могут быть эффективными агентами для защиты растений от патогенов и их использование является весьма перспективным.

Еще одним недостатком биопрепаратов является их малая эффективность на участках с высокой инфекционной нагрузкой. Для успешного использования СРРМ необходимо учитывать прогнозируемую степень экономического порога вредоносности, при котором эффективность их использования становится нецелесообразной и требует сочетания с «истребительными» мерами химических СЗР. Поэтому в качестве протравителей их рекомендуется включать только при слабой и средней инфицированности семян возбудителями корневых гнилей, чередуя их в эпифитотийные годы с химическими СЗР. Слабыми сторонами биопрепаратов следует считать также их нестойкость, сравнительно медленное действие, связанное с необходимостью адаптации бактерий, входящих в их состав, к новым условиям и высокая по сравнению с химическими антипатогенная и хозяйская видоспецифичность. Так, препараты на основе бактерий Pseudomonas хотя и обладают защитными и стимулирующий рост растений эффектами [Воронин, 1998; Логинов, 2005], обнаруживают недостатки, связанные со сроками их хранения.

В этих условиях использование микроорганизмов из рода Bacillus является весьма перспективным. Правда, информации об особенностях влияния бактерий рода Bacillus, проявляющих высокую степень антагонизма по отношению к фитопатогенам, на рост, устойчивость к неблагоприятным.

107 факторам среды и продуктивность растений остается пока ограниченной. Их преимуществом является способность «уходить» от конкурентного давления со стороны аборигенных видов, чему в сильной степени подвергаются другие свободно живущие микроорганизмы, искусственно привносимые в агробиоценозы.

Некоторые недостатки в биологическом эффекте биопрепаратов на основе живых микроорганизмов вероятно можно исключить при условии их использовании в качестве композиций с сигнальными молекулами биологического или искусственного происхождения, запускающими в растениях СПУ или СИУ. Однако следует заметить, что полученные нами данные показывают необходимость обращения внимания при составлении композитов различных сигнальных молекул и бактериальных препаратов с одной стороны на специфике культуры, а с другой на особенности целевых патогенов, против которых будут применяться такие препараты. Несомненно, остаются еще нерешенными и вопросы о концентрационных составляющих как микросимбионотов, использующихся в качестве защитного агента, так и сигнальных молекул, усиливающих защитный эффект первых.

В этой работе мы показали, что защитный эффект препаратов коррелирует с уровнем накопления в тканях растений АФК и функционированием одного из наиболее важных ферментов иммунной системы растений — ПО. Особый интерес представляют данные по эффективному функционированию генома растений под влиянием биопрепаратов, в частности усилению экспрессии генов ПО,.

К важным аргументам в пользу использования СРРМ можно отнести их невысокую стоимость, низкую энергоемкость при производстве, возможность сочетания с другими профилактическими мерами, неспособность вызывать инфекционные процессы в организме человека и нецелевых объектах и непатогенность по отношению к растениям. Они способны инактивировать вырабатываемые патогенами токсины и некоторые из них можно применять в качестве эффективных защитных препаратов,.

108 обладающих фунгицидиостью, способностью влиять на ростовые параметры растений и стимулировать их защитные свойства против стрессов различной природы. Соответственно их использование при соблюдении регламентов применения может быть эффективной альтернативой для частичной замены химических СЗР.

В связи с подавлением активности ПО в растениях пшеницы под влиянием совместного воздействия ЖК и суспензией клеток В. виЫШэ 26Д следует отметить, что это удивительный феномен, предполагающий наличие тонких механизмов в регуляции защитных систем растений как от истинных патогенов, так и симбиотрофных микроорганизмов. Можно предположить, что через механизм индуцирования защитной системы, зависимой от ЖК, эндофитные микроорганизмы ставят барьер, характеризующийся высокой про-/антиоксидантной активностью перед патогенной микрофлорой, что мы и видим в случае воздействия непосредственно самой бактерии или ЖК. В то же время, можно предположить, что если патогены в своем арсенале будут иметь некие эндофитные бактерии, способные подобно В. зиЫШя 26Д сосуществовать на поверхности клеточных стенок гриба, то они могут их использовать в качестве эффективных факторов агрессивности, для последующего подавления систем защиты растений функционирующих по жасмонатному сигнальному пути [Ргеу-ЮеИ, ег а1., 2007].

Итак, полученные нами результаты говорят о высокой эффективности биопрепаратов на основе живых бактерий В. яиЫШя штамма 26Д в защите растений картофеля и пшеницы от патогенов, о механизмах индуцирования этими бактериями защитных механизмов и о необходимости соблюдения определенного регламента в их использовании, связанного с запуском под их влиянием определенных сигнальных защитных систем, зачастую антагонистически относящихся к друг другу.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.Н., Веселов С. Ю., Мелентьев А. И. Сравнение действия штаммов бактерий, различающихся по способности синтезировать цитокинины, на рост и содержание цитокининов в растениях пшеницы // Физиология растений. 2006. Т. 53. № 4. С. 567−574.
  2. Т.Н., Веселов С. Ю., Мелентьев А. И. Влияние микроорганизмов, продуцирующих цитокинины, на рост растений // Биотехнология. 2006. Т. 46. № 4. С. 50−55.
  3. Ф.А., Кузнецова Т. Н., Байгузина С. Н. Штамм бактерий Bacillus subtilis, обладающий широким спектром антагонистической активности // Патент Российской Федерации № 2 182 172 от 10.05.2002.
  4. Т.С., Бегляров Г. А., Бешанов A.B., и др. Системы защиты растений / под ред. Бондаренко H.B. JL: Агропромиздат. Ленинградское отделение, 1988. 367 с.
  5. А.И. Избранные труды по фитопатологии. М.: Сельхозгиз, 1961. 215 с.
  6. , В.П. Биопрепараты в защите озимого ячменя и бахчевых культур от болезней // Защита и карантин растений. 2009. N 11. С. 34 36.
  7. A.M. Ризосферные бактерии рода Pseudomonas, способствующие росту и развило растений // Соросовский образовательный журнал. 1998. № 10. С. 25−31.
  8. A.M., Кочетков В. В. Биологические препараты на основе псевдомонад // Arpo XXI. 2000. № 3. С. 3 5.
  9. Г. Ф., Яруллина Л. Г., Максимов И. В. Пути регуляции хитоолигосахаридами защитных реакций в растениях пшеницы при инфицировании Bipolaris sorokiniana II Физиол. раст. 2007. Т. 54. С. 119−126.
  10. Т.В., Ревина Т. А., Гвоздева Е. А., Герасимова Н. Г., Ильинская Л. И., Озерецковская О. Л. Влияние элиситоров на накоплениеингибиторов протеиназ в пораненных клубнях картофеля // Прикл. биохим.112микробиол. 2001. Т.37. С.601 606.
  11. Н.И., Озерецковская O.JI. Жасмонат-зависимая защитная сигнальная система в растительных тканях // Физиол. раст. 2009. Т. 56. С. 643−653.
  12. Великанов JI. JL, Хасанов Б. А. К вопросу о биологической роли токсических метаболитов Helminthosporium sorokinianum Sacc. / Микробиологические процессы в почвах и урожайность сельскохозяйственных культур. Вильнюс. 2003. С. 78 90.
  13. С.Ю., Иванова Т. Н., Симонян М. В., Мелентьев А. И. Исследование цитокининов, продуцируемых ризосферными микроорганизмами // Прикл. биохимия и микробиология. 1998. Т. 34. С. 175−179.
  14. Ю.М. Микрофлора растений и урожай. JL: Колос, 1969. 238 с.
  15. A.C., Трофимец JI.H., Долягин А. Б., Глез В. М. Методика исследований по защите картофеля от болезней, вредителей, сорняков и иммунитету. М.:ВНИИКХ, Росссельхозакадемия. 1995. 106 с.
  16. P.M. Взаимоотношения пшеницы с возбудителем твердой головни Tilletia caries (DC.) TUL. на ранних этапах патогенеза // Автореферат дис-серт. на соискание ученой степени канд. сельскохозяйственных наук. Курган, 2000. 18 с.
  17. Ш. Я., Нугуманов А. Х., Пусенкова Л. И. Эффективность антистрессовых препаратов и биофунгицидов в системе защиты сельскохозяйственных культур от неблагоприятных абиотических и биотических факторов. Монография. Уфа. Гилем. 2008. 372 с.
  18. И.Ф., Карначук Р. А. Влияние жасмоновой кислоты на морфогенез и содержание фотосинтетических пигментов у проростков Arabidopsis на зеленом свету // Физиол. раст. 2008. Т. 55. С.240 244.
  19. И.А., Антипина И. В., Потапенко О. Ю., Войников В. К. Динамика активности внеклеточных пероксидаз суспензионных клеток картофеля при патогенезе кольцевой гнилью // Доклады РАН. 2004. Т. 399. С. 567−570.
  20. .А. Методика полевого опыта М.: Колос. 1979. 416с.
  21. Ю.Т., Озерецковская О. Л., Джавахия В. Г., Багирова С. Ф. Общая и молекулярная фитопатология. М.: Общество фитопатологов. 2001. 302 с.
  22. В.А. Химическая защита растений в России в конце XX начале XXI века // Защита растений. 2007. № 12. С. 1−7.
  23. Т.В., Жадан В. В., Наказной C.B. Эффективность биопрепаратов на разных сортах озимой пшеницы // Защита и карантин растений. 2009. V. 11. С. 25 -26.
  24. А.К., Злотников К. М. Применение биопрепарата для повышения устойчивости растений к засухе и другим стрессорам. // Arpo XXI. 2007. № 10−12. С. 37 38.
  25. В.Г., Назаровская Л. А. Источники инфекции фузариоза колоса злаковых культур в Краснодарском крае // Защита и карантин растений. 1998. № U.C. 30.
  26. Ф.Г., Агаджанян Д. А. Наличие гиббереленоподобных веществ в метаболитах микроорганизмов и влияние их на высшие растения // Биол. журнал Армении. 1971. Т. 24. С. 85 89.
  27. В.П., Дворник В .Я., Шелепова В. И. Для защиты всходов озимой пшеницы // Защита и карантин растений, 1994, № 5. С, 41,
  28. Г. Р., Курдиш И. К., Мелентьев А. И. Образование фитогормонов почвенными и ризосферными бактериями как фактор стимуляции роста растений // Биология, биохимия и генетика. 2011. № 3. €.5−16.
  29. Л.Ю., Логинов О. Н., Бойко Т. Ф., Исаев Р. Ф., Свешникова E.B., Мелентьев А. И. Эффективность бактериальных препаратов при защите пшеницы от твердой головни // С.-х. биология. 2003. № 5. С, 69 -73,
  30. Е.М., Попов В. И. Метод инокуляции всходов пшеницы Helminthosporium sativum P.K. et В. // Бюлл. ВИЗР. 1976. № 39. С. 73 -75.
  31. И.П., Кораблева H.H. Действие жасмоновой кислоты на транспорт Са2+ через мембрану везикул плазмалеммы из клеток клубней картофеля // Прикл. биохим. и микробиол. 2008. Т. 44. С. 709 712.
  32. Лиу Ю., Пан Ц. Х., и др. Взаимосвязь между Н2О2 и жасмоновой кислотой в ответной реакции листьев гороха на поранение // Физиол. раст. 2008. Т. 55. С. 851−862.
  33. О.Н. Бактерии Pseudomonas и Azotobacter как объекты сельскохозяйственной биотехнологии. Под ред. Шакирова Ф. М., М.: Наука. 2005. 166 с.
  34. H.H., Галеева Е. И., Мухитов А. Р., Румянцева Н.И.115
  35. Действие салициловой кислоты на рост каллусов гречихи татарской с различной скоростью к морфогенезу// Физиол. и биохим культ, раст. 2005. Т. 37. С. 320−325.
  36. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. М. Мир. 1984. 480 с.
  37. А.И. Аэробные спорообразующие бактерии Bacillus Cohn в агроэкосистемах. М.: Наука. 2007. 147 с.
  38. А.И., Кузьмина Л. Ю., Яковлева О. В., Курченко В. П. Штамм Bacillus subtilis продуцент сурфактина / Пат. 2 270 858. РФ. // Б.И. 2006. № 6.
  39. Методические указания по государственным испытаниям фунгицидов, антибиотиков и протравителей семян сельскохозяйственных культур, Москва, 1985. 25 с.
  40. O.A., Першакова Т. В. Современные проблемы и решения создания биопрепаратов для защиты сельскохозяйственных культур от возбудителей болезней // Arpo XXI. 2009. № 7 9. С. 3 — 5.
  41. О. Биопрепараты вместо ядохимикатов // Экосинформ. 2009. Т. 4.-С.37 42.
  42. Е.А., Кочетков В. В., Поликарпова Ф. Я., Воронин A.M. Синтез индолил-3-уксусной кислоты ризосферными псевдомонадами: Влияние плазмид биодеградации нафталина // Прикл. биохимия и микробиол. 1998. Т. 34. С. 287−292.
  43. В. Д. Биологическое обоснование применения эндофитных бактерий в защите пшеницы от болезней на Южном Урале: Дис. д-ра с.-х. наук, Уфа. 2003. 284 с.
  44. Т.Ф., Чканников Д. И. Токсины фитопатогенных грибов и их роль в развитии болезней растений. М.: Колос, 1987. 60 с.
  45. И.И. // Биологические средства защиты растений технологии их подготовки и применения С.- Пб.: ВИЗР. 2005. С. 303 330.
  46. И.И. Биологическое обоснование создания и116применения полифункциональных биопрепаратов на основе микробов-антагонистов для фитосанитарной оптимизации агроэкосистем // Дис. д-ра биол. наук: С-Петербург, 2005.
  47. О. Л., Васюкова Н. И., Чаленко Г. И., Герасимова Н. Г., Ревина Т. А., Валуева Т. А. Процесс раневой репарации и индуцированная устойчивость клубней картофеля. Прикладная биохимия и микробиология. 2009. Т. 45. С. 220 224.
  48. О. Л., Васюкова Н. И. При использовании элиситоров для защиты сельскохозяйственных растений необходима осторожность // Прикл. биохимия и микробиология. 2002. Т. 38. С. 322 325.
  49. Патент РФ № 2 099 947. Биопрепарат Фитоспорин для защиты растений от болезней / Смирнов В. В., Сорокулова И. Б., Бережницкая Т. Г. и др. /Заявл. 1997.12.27- опубл. 25.12.97.
  50. Я.С., Васюкова Н. И., Озерецковская О. Л. Свободные и коньюгированные формы салициловой кислоты: содержание и роль в картофеле // Прикл. биохим. и микробиол. 2005. Т. 4. С. 354 357.
  51. Г. В. Септориозы зерновых культур.- М.:Колос, 1984.54 с.
  52. Г. В., Карасева Е. В. Методика изучения возбудителей септориоза на изолированных листьях пшеницы // С.-х. биология. 1985. Т. 12. С .112- 114.
  53. А. Основные болезни зерновых (септориоз) // Интенсивное производство зерна. М.: Агропромиздат, 1985. С, 213 232.
  54. Н.Д., Попов И. О., Таболин С. Б., Бугаева Е.Н. Заец117
  55. B.Г. Перспективы использования бактерий-антагонистов против наиболее фитопатогенных видов нематод, вирусов и грибов // Arpo XXI. 2008. № 1−3,1. C. 23−27.
  56. Т.А., Харченко Г. Л., Саранцева H.A., Бобрешова И. Ю., Злотников А. К. Полифункциональное действие препарата Альбит при предпосевной обработке семян яровой пшеницы // Агрохимия. 2009. № 10. С. 39−47.
  57. A.A., Анциферова Л. В. Способы выделения и хранения возбудителей септориоза пшеницы // Микол. и фитопатол. 1989. Т. 23. С. 172−175,
  58. О.С., Шуляковская Л. Н. Эффективный биофунгицид для защиты сельскохозяйственных культур. // Arpo XXI 2001, № 6.
  59. И.А., Яковлева В. Г., Егорова A.M. Протеомный анализ изменений в корнях гороха, вызванный апоптоз-индуцирующей концентрацией салициловой кислоты // ДАН. 2008. Т. 422. № 3. С. 410−414
  60. С. Л. Научные основы индуцирования болезнеустойчивости растений. С-Пб.: ООО «Инновационный центр защиты растений» ВИЗР, 2002. 328 с.
  61. С.Л. Физиолого-биохимические основы управления стрессо-устойчивостью растений в адаптивном растениеводстве / С. Л. Тютерев // Вестник защиты растений. 2000. № 1. С. 11 33.
  62. .А. Обзор грибов из рода Bipolaris Shoem. //Микология и фитопатология. 1991. Т. 25, Вып.4. С.360 365.
  63. М.К., Доброзракова Т. Л., Степанов К. М., Летова М. Ф. Определитель болезней растений. СПб.: Изд. «Лань», 2003. 592 с.
  64. В.А. Корневые гнили хлебных злаков / В. А. Чулки на -Новосибирск: Наука Сиб. отд., 1985.20 с.
  65. Akram A., Ongena M., Duby F., Dommes J., Thonart P. Systemic resistance and lipoxygenase-related defence response induced in tomato by Pseudomonas putida strain BTP1// BMC Plant Biology. 2008. V.8. P. 1−12.
  66. Almagro L., Gomez Ros L.V., Belchi-Navarro S., Bru R., Ros Barcello A., Pedreno M.A. Class III peroxidases in plant defence reactions // J. Exp. Botany. 2009. V. 60. P. 377 390.
  67. Alstrom S. Induction of disease resistance in common bean susceptible to halo blight bacterial pathogen after seed bacterization with rhizosphere pseudomonads // J. Gen. Appl. Microbiol. 1991. V. 37. P. 495 501.
  68. Arrebola E., Jacobs R., Korsten L. Iturin A is the principal inhibitor inthe biocontrol activity of Bacillus amyloliquefaciens PPCB004 against postharvest119fungal pathogens // J. Applied Microbiol. 2010. V.108. P. 386 395.
  69. Asgar H.N., Zahir Z.A., Arshad M., Khalidq A. Relationship between in vitro production of auxins by rhizobacteria and their growth-promoting activities in Brassica juncea L. // Biol. Fertile. Soils. 2002. V. 35. P. 231 237.
  70. Audenaert K., Pattery T., Cornelis P., Hofte M. Interactions between Myxobacteria, plant pathogenic fungi, and biocontrol agents // MPMI. 2002. ?.15. P. 1147 1156.
  71. Bakker P.A.H.M., Pieterse C.M.J., van Loon L/C. Induced systemic resistance by fluorescent Pseudomonas spp. // Phytopathology. 2007. V. 97. P. 239−243.
  72. Belesky D. P., Robbins J. D., Stuedemann J. A., Wilkinson S. R., Devine O. J. Fungal endophyte infection-loline derivative alkaloid concentration of grazed tall fescue // Agron J. 1987. V. 79. P. 217 -220.
  73. Benhamou N., Kloeper J.W., Quadt -Hallman A., Tuzun S. Induction of defense-related ultrastructural modifications in pea root tissues inoculated with endophytic bacteria // Plant physiol. 1996. V. 112. P. 919 929.
  74. Berg G. Plant-microbe interactions promoting plant growth and health: perspectives for controlled use of microorganisms in agriculture // Appl. Microboil. Biotehnol. 2009. V. 84. P. 11 18.
  75. Bindschedler L.V., Minibayeva F., Gardner SL. et al. Early signaling events in the apoplastic oxidative burst in suspension cultured french bean cells involve cAMP and Ca2+ //NewPhytologist. 2001. V. 151. P. 185 194.
  76. Bolckmans K. Biocontrol files // Can. Bull. Ecol. Pest. Manag. 2008. V.13. P. 1 10.
  77. Bonfante P., Anca I.-A. Plants, mycorrhizal fungi, and bacteria: a network of interactions // Annu. Rev. Microbiol. 2009. V. 63. P. 363 383.
  78. Bultman T.L., Bell G., Martin W.D. A Fungal endophyte mediates reversal of wound-induced resistance and constrains tolerance in a grass // Ecology. 2004. V. 85. P. 679 685.
  79. Campanile G., Ruscelli A., Luisi N. Antagonistic activity of endophytic fungi towards Diplodia corticola assessed by in vitro and in planta tests // Eur. J. Plant Pathol. 2007. V. 11. P. 237 246.
  80. Carrillo C., Teruel J.A., Aranda F.J., Ortiz, A. Molecular mechanism of membrane permeabilization by the peptide antibiotic surfactin // Biochim Biophys Acta. 2003. V. 1611. P. 91 97.
  81. Caruso C., Chilosi G., Leonardi L., Bertini L., Margo P., Buonocore V., Capolare C. A basic peroxidase from wheat kernel with antifungal activity // Phytochemistry. 2001. V. 58. P. 743 750.
  82. Cattelan A. J., Hartel P. G., Fuhrmann J. J. Screening for plant growth-promoting rhizobacteria to promote early soybean growth // Soil Sci. Soc. Am. J. 1999. V. 63. P. 1670 1680.
  83. Chandrashekhara Niranjanranj S., Deepak S.A., Amrutesh K.N., Shetty N.P., Shety H.S. Endophytic bacteria from different plant origin enhance growth and induce downy mildew resistance in pearl millet // Asian J. Plant Pathol. 2007. V. l-.P. 1−11.
  84. Chang S., Cohen S.N. High frequency transformation of B. subtilis protoplasts by plasmid DNA. //Mol. Gen. Genet. 1976. V. 168. P. Ill 115.
  85. Chanway C.P., Nelson L.M. Holl F.B. Cultivar-speciflc growth promotion of spring wheat (Triticum aestivum L.) by co-existent Bacillus species. // Can. J. Microbiol. 1989. V. 34. P. 925−929.
  86. Chaturvedi R., Shan J. Salicylic acid in plant desease resistance // Salycilic acid: a plant hormone, Springer-Verlag. Berlin. Heidelberg. 2007. P. 247−276.
  87. Chen C.Q., Belanger R.R., Benhamou N., Paulitz T.C. Defense enzymes induced in cucumber roots by treatment with plant growth-promotingrhizobacteria (PGPR) and Prthium aphanidermatum II Physiol. Mol. Plant Pathol.1 212 000. V.56. P. 13−23.
  88. Chen F., Wang M., Zhang Y., Luo J., Yang X., Wang X. Quantitative changes of plant defense enzymes and phytohormone in biocontrol of cucumber Fusarium wilt by Bacillus subtilis B579 // World J. Microbiol Biotechnol. 2010. V. 26. P. 675 684.
  89. Chet I., Inbar J. Biological control of fungal pathogens // Applied Biochem. Biotech. 1994. V. 48. P. 37 43.
  90. Choudhary D.K., Johri B.N. Interactions of Bacillus spp. and plants— with special reference to induced systemic resistance (ISR) // Microbiol. Res. 2009. V. 164. P. 493−513.
  91. Choudhary D.K., Prakash A., Wray V., Johri B.N. Insights of the fluorescent pseudomonads in plant growth regulation // Cur. Science. 2009. V. 97. P. 170−179.
  92. Cipollini D. Does competition magnify the fitness costs of indused responses in Arabidopsis thaliana? A manipulative approach // Oecologia. 2002. V. 131. P. 514−520.
  93. Compant S., Duffy B., Nowak J., Clement C., Barka E.A. Use of plant Growth-promoting bacteria for biocontrol of plant diseases: Principles, mechanisms of action and future prospects // Appl. Envir. Microbiol. 2005. V. 71. P. 4951 -4959.
  94. Conn V. M., Walker A. R., Franco C. M. M. Endophytic
  95. Actinobacteria Induce Defense Pathways in Arabidopsis thaliana II Mol. Plant122
  96. Microbe Interact. 2008. V. 21. P. 208 218.
  97. Cook R.J., Tomashow L.S., Weller D.M., Fujimoto D., Mazzolla M., Bangera G., Kim D.-S. Molecular mechanisms of defense by rhizobacteria against root disease // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 4197 4201.
  98. Curtis M.D., Rae A. L, Rusu A.G., Harrison S.J., Manners J.M. A peroxidase gene promoter induced by phytopathogens and methyl jasmonate in transgenic plants // Molecular Plant-Microbe Interactions. 1997. Y.10. № 3. P. 326−338
  99. Date R. A. Advances in inoculant technology: a brief review. // Austral. J. Exp. Agric. 2001. V. 41. P. 321 325.
  100. De Meyer G., Audenaert K., Hofte M. Pseudomonas aeruginosa 7NSK2-induced systemic resistance in tobacco depends on in planta salicylic acid accumulation but is not associated with PR la expression // Eur. J. Plant Pathology. 1999. V. 105. P. 513−517.
  101. De Werra P., Pechy-Tarr M., Keel C., Maurhofer M. Detection of plant-modulated alterations in antifungal gene expression by Pseudomonas fluoreseens CHA0 on roots by flow cytometry // Appl. Environ. Microbiol. 2009. V. 75. P. 4162−4174.
  102. Debono M., Gordee R.S. Antibiotics that inhibit fungal cell wall development // Ann. Rev. Microbiol. 1994. V. 48. P. 471 497.
  103. Deepak S. et al. Induction of resistanse against doeny mildew pathogen in pearl millet by a synthetic jasmonate analogon // Physiol. Mol. Plant Pathol. 2007. V. 71. P. 96 105.
  104. Dow M., Newman L.A., Reynolds C.M. Bacteria andphytoremediation: new uses for endophytic bacteria in plants // Trends in123
  105. Biotechnology. 2005.V. 23. P. 6 8.
  106. Duffy B., Schouten A., Raaijmakers J.M. Pathogen self defense: mechanisms to counteract microbial antagonism // Ann. Rev. Phytopathol. 2003. V.41.P. 501 -538.
  107. Eyal Z. The Septoria tritici and Stagonospora nodorum blotch diseases of wheat // Eur. J, Plant Pathol. 1999. V. 105. P. 629 641.
  108. Fawcett, P., Eichenberger, P., Losick, R., and Youngman, P. The transcriptional profile of early to middle sporulation in Bacillus subtilis // Prot. Nat. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. 8063 8068.
  109. Frey-Klett P., Garbaye J., Trakka M. The mycorrhiza helper bacteria revisited // New Phytol. 2007. V. 176. P. 22 36.
  110. Garcia de Salamone, I. E., Hynes, R. K., and Nelson, L. M. Cytokinin production by plant growth promoting rhizobacteria and selected mutants // Can. J. Microbiol. 2001. V. 47, P. 404 411.
  111. Ghosh S., Penterman J.N., Little R.D., Chavez R., Glick B.R. Three newly isolated plant growth-promoting bacilli facilitate the seedling growth of canola, Brassica campestris // Plant Physiol. Biochem. 2003. V. 41. P. 277 281.
  112. Glick B.R. Modulation of plant ethylene levels by the bacterial enzyme ACC deaminase // FEMS Microbiol. Letters. 2005. V. 251. P. 1 7.
  113. Glick, B. R. The enhancement of plant growth by free-living bacteria // Can. J. Microbiol. 1995. V. 41. P. 109 117.
  114. Gomes-Gomes L., Boiler T. Flagellin perception: a para- digm for innate immunity // Trends Plant Sci. 2002. V. 7. P. 251 -256.
  115. Gregor A.K., Klubek B., Varsa E.C. Identification and use of actinomycetes for enhanced nodulation of soybean co-inoculated with Bradyrhizobium japonicum II Can. J. Microbiol. 2003. V. 49. P. 483 -491.
  116. Guder A., Schmitter T., Wiedemann I., Sahl H.G., Bierbaum G. Role of the single regulator MrsRl and the two-component system MrsR2/K2 in the regulation of mersacidin production and immunity // Appl Environ Microbiol. 2002. V. 68.P. 106−113.
  117. Guder A., Wiedemann I., Sahl H.G. Posttranslationally modified bacteriocins the lantibiotics // Biopolymers. 2000. V. 55. P. 62 — 73.
  118. Gwinn K.D., Gavin A. M. Relationship between endophytic infection level of tall fescue seed lots and Rhizoctonia zeae seedling disease // Plant Disease. 1998. V. 76. P. 911−914.
  119. Hampson M.C., Coombes J. W. Reduction of potato wart disease with crushed crabshell: suppression or eradication? // Can. J. Plant Pathol. 1995. V.17. P. 69 74.
  120. Hasper H.E., De Kruijff B., Breukink E. Assembly and stability of Nisin-Lipid II pores // Biochemistry. 2004. V. 43. P. 11 567 11 575.
  121. Hemphill H.E., Gage I., Zahler S.A., Korman R.Z. Prophage-mediated production of a bacteriocin-like substance by SP beta lysogens of Bacillus subtilis II Can J Microbiol. 1980. V. 26. P. 1328 1333.
  122. Hilton M.D., Alaeddinoglu N.G., Demain A.L. Synthesis of bacilysin by Bacillus subtilis branches from the prephenate of the aromatic amino acid pathway // J Bacteriol. 1988. V. 170. P. 482 484.
  123. Hirano S.S., Baker L. S, Upper C.D. Raindrop momentum triggers growth of leaf-associated populations of Pseudomonas syringae on field grown snap bean plants // Appl. Environ. Microbiol. 1996. V. 62. P. 2560 2566.
  124. Horsten J., Fehrmann H. Fungicide resistance of Septoria nodorum and Pseudocercosporella herpostricoides: Characterization of resistant strains I IZ. Phlanzenschutz. 1980. V. 87. P. 513 522.
  125. Howell C.R., Stipanovich R.D. Control of Rhizoctonia solani on cotton seedlings with Pseudomonas fluorescens and with an antibiotic produced by the bacterium II Phytopathology. 1979. V. 69. P. 480 482.
  126. Hsieh F.C., Lin T.C., Meng M., Kao S.S. Comparing methods for identifying Bacillus strains capable of producing the antifungal lipopeptide iturin A // Curr. Microbiol. 2008. V. 56. P. 1 5.
  127. Hurek T., Reinhold-Hurek B. Azoarcus spp. strain BH72 as a model for nitrogen-fixing grass endophytes 11 J. Biotechnol. 2003. V.106. P. 169 178.
  128. Inaoka T., Takahashi K., Ohnishi-Kameyama M., Yoshida M., Ochi
  129. K. Guanine nucleotides guanosine 5'-diphosphate 3-diphosphate and GTP126cooperatively regulate the production of an antibiotic bacilysin in Bacillus subtilis. IIJ Biol Chem. 2003. V. 278. P. 2169 2176.
  130. Inaoka T., Takahashi K., Yada H., Yoshida M., Ochi K. RNA polymerase mutation activates the production of a dormant antibiotic 3,3'-neotrehalosadiamine via an autoinduction mechanism in Bacillus subtilis I I J Biol Chem. 2004. V. 279. P. 3885 3892.
  131. Jack R.W., Jung G. Lantibiotics and microcins: polypeptides with unusual chemical diversity // Curr Opin Chem Biol. 2000. V.4. P. 310 307.
  132. Jacometti M.A., Wratten S.D., Walter M. II Austr. J. Grape and Wine Res. 2010, V. 16. P. 154 -172.
  133. Janisiewicz W.J., Korsten L. Biological control of postharvest diseases of fruits // Annu. Rev. Phytopathol. 2002. V. 40. P. 411 41.
  134. Jetiyanon J., Kloepper J.W. Mixtures of plant growth-promoting rhizobacteria for induction of systemic resistance against multiple plant diseases // Biol. Control 2002. V. 24. P. 285 291.
  135. Joo G.J., Kim Y.M., Kim J.T., Rhee I.K., Kim J.H., Lee I, J. Gibberellins-producing rhizobacteria increase endogenous gibberellins content and promote growth of red peppers // J. Microbiology. 2005. V. 43. P. 510 515.
  136. Jourdan E., Henry G., Duby F., Dommes J., Bartelemy P., Thonart P., Ongena M. Insights into the defense-related events occurring in plant cells following perception of surfactin-type lipopeptide from Bacillus subtilis II MPML 2009. V. 22. P. 456−468.
  137. Kado C.I. Molecular mechanisms of bacterial virulence. Edited by C.I. Kado and J.H. Gross. 1992.145 p.
  138. Kakimoto T. Plant cytokinin biosynthesis enzymes as dimethylallyl diphosphate: ATP/ADP isopentyltransferases // Plant Cell Physiology. 2001. V. 42. P. 667−685.
  139. Kamnev A.A. Metals in soil versus plant- microbe interactions / Plant-Microbe Interactions, Ed-s: Barka E.A., Clement C. Research Signpost Fort P.O., Trivandrum-695 023, Kerala, India, 13 Chapter. 2008. P. 291 318.
  140. Karjalainen R. Host pathogen interaction between spring wheat and Septoria nodorum // J. Agric. Sci. in Finland. 1985. V. 57. P. 11 65.
  141. Kato T., Shiraishi T., Toyoda K. Inhibition of ATPase activity in pea plasma membrane by fungal suppressor from Micosherella pinodes and their peptide moieties // Plant Cell Physiol. 1993. V. 34. P. 439 445.
  142. Kawano T. Roles of the reactive oxygen species-generating peroxidase reactions in plant defense and growth induction // Plant Cell Reports. 2003. V. 21. P. 829−837.
  143. Kawano T., Muto S. Machanism of peroxidase actionc for salicylic acid-indused generation of active oxigen species and an increase in cytosolic calcium in tobacco cell suspension culture // J. Exp. botany. 2000. V. 51. P. 685−693.
  144. Kazan K., Manners J. M. Jasmonate Signaling: Toward an Integrated View // Plant physiology. 2008. V. 146. P. 1459 1468.
  145. Keon J., Bailey A., Hardreaves J. A group of expressed cDNA sequences from the wheat leaf blotch pathogen, Mycosphaeria graminicola {Septoria tritici) // Fungal Genet. Biol. 2000. V. 29. P. 118 133.
  146. Khairullin R.M., Yarullina L.G., Troshina N.B., Akhmetova I.E. Aktivatsiya khitooligosakharidami okisleniya ortofenilendiamina prorostkami pshenitsy v prisutstvii shchavelevoi kisloty // Biokhimiya. 2001. T. 66. S. 354−358.
  147. Kilian M., Steiner U., Krebs B., Junge H., Schmiedeknecht G., Hain R. FZB24® Bacillus subtilis Mode of action of a microbial agent enhancing plant vitality // Pflanzenschutz-Nachrichten Bayer. 2000. V. 53. P. 72 — 93.
  148. Kishore G.K., Pande S., Podile A. R Chitin-supplemented foliar application of Serratia marcescens GPS 5 activates defense-related enzymes of groundnut // J. Pytopathol. V. 153. 2009. P. 169 173.
  149. Kleerebezem, M. Quorum sensing controls of lantibiotic production- nisin and subtilis autoregulate their own biosynthesis // Peptides. 2004. V. 25. P. 1405 -1414.
  150. Klein C., Entian K.-D. Genes involved in self-protection against the lantibiotic subtilin produced by Bacillus subtilis ATCC 6633 // Appl Environ Microbiol. 1994. V. 60. P. 2793 2801.
  151. Kloepper J.W., Gutierrez-Estrada A., Mclnroy J.A. Photoperiod regulates elicitation of growth promotion but not induced resistance by plant growth-promoting rhizobacteria // Can. J. Microbiology. 2007. V. 53. P. 159−167.
  152. Kloepper J.W., Ryu C.-M., Zhang S. Induced systemic resistance and promotion of plant growth by Bacillus spp. // Phytopathol. 2004. V. 94. P. 1259 -1266.
  153. Kobayashi D.Y., Crouch J.A. Bacterial/fungal interactions: from pathogens to mutualistic endosymbionts // Annu. Rev. Phytopathol. 2009. V. 47. P. 63 82.
  154. Kombrinc E., Schroder M., Hahlrock K. Several «pathogenesis-related» proteins in potato are 1,3-f-glucanases and chitinases // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2008. V. 85. P. 782 786.
  155. Koponen O., Takala T.M., Saarela U., Qiao M., Saris P.E.129
  156. Distribution of the Nisi immunity protein and enhancement of nisin activity by the lipid-free Nisi // FEMS Microbiol Lett. 2004. V. 231. P. 85 90.
  157. Kotan R., Dikbas N., Bostan H. Biological control of post harvest disease caused by Aspergillus flavus on stored lemon fruits // African Journal of Biotechnology. 2009. V. 8. P. 209 214.
  158. Kowall M., Vater J., Kluge B., Stein T., Franke P., Ziessow D. Separation and characterization of surfactin isoforms produced by Bacillus subtilis OKB 105 // J Colloid Interface Sci. 1998. V. 204. P. 1 8.
  159. Kumar A., Prakash A., Johri B.N. Bacillus as PGPR in Crop Ecosystem // Chapter 2 Bacteria in Agrobiology: Crop Ecosystems, D.K. Maheshwari (ed.), Springer-Verlag Berlin Heidelberg 2011, P. 37 59.
  160. Kumari G.J., Reddi A.M., Naik S.T., Kumar S.G., Prasanthni J. Jasmonic acid induced changes in protein pattern, antioxidative enzyme activities and peroxidase isozymes in peanut seedlings // Biologia plantarum. 2006. N. 50. P. 219−226.
  161. Kunst F., Ogasawara N., Moszer I., Albertini A.M., Alloni G., Azevedo V. The complete genome sequence of the gram-positive bacterium Bacillus subtilis //Nature. 1997. V. 390. P. 249 256.
  162. Lambalot R.H., Gehring A.M., Flugel R.S., Zuber P., LaCelle M., Marahiel M.A. A new enzyme superfamily the phosphopantetheinyl transferases // Chem Biol. 1996. V. 3. P. 923 — 936.
  163. Larran S., Perello A., Simon M.R., Moreno V. Isolation and analysis of endophytic microorganisms in wheat (Triticum aestivum L.) leaves // World J. Microbiol. Biotechnol. 2002. V. 18. P. 683 686.
  164. Lehtonen M.T., Akita M., Kalkkinen N., Ahola-Iivarinen E., Ronnholm G., Somervuo P., Thelander M., Valkonen J.P.T. Quickly-released peroxidase of moss in defense against fungal invaders // New Phytologist. 2009. V. 183. P. 432−443.
  165. Lev-Yadun S., Halpern M. Ergot (Claviceps purpurea) an aposemantic fungus // Symbiosis. 2007. V. 43. P. 105 — 108.
  166. Liu Y.-H., Huang C.-J., Chen C.-Y. // Phytopathol. 2008. V. 98. P. 830−836.
  167. Maurhofer M., Reimmann C., Schmidli-Scherer P., Heeb S., Haas D., Defago G. Downstream of NPR1, PR genes are activated in the SAR pathway but not in the ISR // Phytopathology. 1998. V.88. P. 678 684.
  168. McAuliffe O., Ross R.P., Hill C. Lantibiotics: structure, biosynthesis and mode of action // FEMS Microbiol. Rev. 2001.V. 25. P. 285 308.
  169. Melnick R.L., Zidack N.K., Bailey B.A., Maximova S.N., Guiltinan M., Backman P.A. Bacterial endophytes: Bacillus spp. from annual crops as potential biological control agents of black pod rot of cacao // Biological Control. 2008. V. 46. P. 46−56.
  170. Meziane H., Van der Sluis I., Van Loon L. C., Hofte M., Bakker P.A.H.M. Determinants of Pseudomonas putida WCS358 involved in inducing systemic resistance in plants // Mol. Plant Pathol. 2005. V. 6. P. 177 185.
  171. Mika A., Boenisch M.J., Hopff D., Luthje S. Membrane-bound guaiacol peroxidases from maiz (Zea mays L.) roots are regulated by methyl jasmonate, salicylic acid, and pathogen elicitors // Journal of Experimental Botany. 2010. V.61.N.3.P. 831 -841.
  172. Misaghi I., Donndelinger L.R. Endophytic bacteria in symptom-free cotton plants // Phytopathology. 1990. V. 80. P. 808 811.
  173. H.D., Finking R., Marahiel M.A. 4'-phosphopantetheinetransfer in primary and secondary metabolism of Bacillus subtilis II J Biol Chem1312001. V. 276. P. 37 289 37 298.
  174. Moszer I., Jones L.M., Moreira S., Fabry C., Danchin A. SubtiList: the reference database for the Bacillus subtilis genome // Nucleic Acids Res. 2002. V. 30. P. 62−65.
  175. Moyne A.L., Cleveland T.E., Tuzun, S. Molecular characterization and analysis of the operon encoding the antifungal lipopeptide bacillomycin D // FEMS Microbiol Lett. 2004. V. 234. P. 43 49.
  176. Murphy J. F., Zehnder G. W., Schuster D. J., Sikora E. J., Polston J.E., Kloepper J. W. Plant growth-promoting rhizobacterial mediated protection in tomato against Tomato Mottle Virus // Plant Disease. 2000. V. 84. P. 779 784.
  177. Nakano M.M., Corbell N., Besson J., Zuber P. Isolation and characterization of sfp: a gene that functions in the production of the lipopeptide biosurfactant, surfactin, in Bacillus subtilis II Mol Gen Genet. 1992. V. 232. P. 313−321.
  178. Nakano M.M., Zheng G., Zuber P. Dual control of sbo-alb operon expression by the SpoO and ResDE systems of signal transduction under anaerobic conditions in Bacillus subtilis II J. Bacteriol. 2002. V. 182. P. 3274 3277.
  179. Newton A.C., Catten C.E. Characteristics of strains of Septoria nodorum adapted to wheat or to barley // Plant Pathology. 1991. V.40. P. 546−553.
  180. Okazaki Y., Isobe T., Iwata Y. Metabolism of avenanthramide phytoalexins in oats // Plant J. 2004. V. 39. P. 560 565.
  181. Ongena M., Jacques P. Bacillus lipopeptides: versatile weapons for plant disease biocontrol // Trends in Microbiology. 2008. V. 16. P. 115 125.
  182. Ongena M., Jourdan E., Adam A., Paquot M., Brans A., Joris B.,
  183. Arpigny J.-L., Thonart P. Surfactin and fengycin lipopeptides of Bacillus subtilis132as elicitors of induced systemic resistance in plants // Environmental Microbiol. 2007. V. 9. P. 1084−1090.
  184. Orozco-Cardenas M.L., Narvaez-Vasquez J., Ryan C.A. Hydrogen Peroxide Acts as a Second Messenger for the Induction of Defense Genes in Tomato Plants in Response to Wounding, Systemin, and Methyl Jasmonate // Plant Cell. 2001. V. 13. P. 179−191.
  185. Palmer C.L., Skinner W. Mycoshaerella graminicola: Latent infection, crop devastation and genomics // Mol. Plant Pathol. 2002. V. 3. P. 63 70.
  186. Park K.S., Paul D., Kim J.S., Park J.W. L-Alanine augments rhizobacteria-induced systemic resistance in cucumber // Folia Microbiol. 2009. V. 54. P. 322−326.
  187. Park K.S., Kloepper, J.W. Activation of PR-la promoter by Rhizobacteria that induce systemic resistance in Tobacco against Pseudomonas syringae pv. Tabaci // Biological Control. 2000. V. 18. P. 2 9.
  188. Paulitz T.C., Belanger R.B. Biological control in greenhouse systems. Ann. Rev. Phytopathol // 2001. V. 39. P. 103 133.
  189. Peypoux F., Bonmatin J.M., Wallace J. Recent trends in the biochemistry of surfactin // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999. V. 51. P. 553−563.
  190. Pieterse C.M.J., Van der Ent S., Van Pelt J.A., Van Loon L.C. // Advances in plant ethylene research: Proc. 7-th inter Symp. On Plant Hormone Ethylene. Eds. Ramina A., Chang C., et al. Springer. P. 2007. P. 325 331.
  191. Pinchuk I.V., Bressollier P., Sorokulova I.B., Verneuil B., Urdaci, M.C. Amicoumacin antibiotic production and genetic diversity of Bacillus subtilis strains isolated from different habitats // Res Microbiol. 2002. V. 153. P. 269−276.
  192. Pleban S., Chernin L., Chet I. Chitinolytic activity of an endophytic strain of Bacillus cereus H Lett. Appl. Microbiol. 1997. V. 25. P. 284 288.
  193. Popay A.J. Defensive Mutualism in Microbial Symbiosis // CRC Press, Boca Raton, FL. 2009. P. 347 358.
  194. C.L. // Proc. Ind Acad. Sci. 1932. V. 41. P. 149 (hht. no MejieHTteB, 2007).
  195. Pozo M.J., Van der Ent S., Van Loon L.C., Pieterse C.M.J. Transcription factor MYC2 is involved in priming for enhanced defense during rhizobacteria-induced systemic resistance in Arabidopsis thaliana II New Phytologist. 2008. V. 180. P. 511−523.
  196. Puseu P.J., Wilson C.L. Postharvest biological control of stone fruit brown rot by Bacillus subtilis II Plant Disease. 1984. V. 68. P. 753 756.
  197. Quan L.-J., Zhang B., Shi W.-W., Li H.-Y. Hydrogen peroxide in plants: a versatile molecule of the reactive oxygen species network // J. Integ. Plant Biology. 2008. V.50. P. 2 18.
  198. Rajendran L., Ramanathan A., Durairaj C., Samiyappan, R. Endophytic Bacillus subtilis enriched with chitin offer induced systemic resistance in cotton against aphid infestation // Arch. Phytopathol. Plant Protect. 2011. V. 44. P. 1375−1389.
  199. V., Viswanathan R., Raguchander T., Prakasam V., Samiyappan R. // Crop Protection. 2001. V. 20. P. 1 11.
  200. Raupach G. S., Kloepper J. W. Biocontrol of Cucumber Diseases in the Field by Plant Growth-Promoting Rhizobacteria With and Without Methyl Bromide Fumigation // Plant Disease. 2000. V. 84. P. 1073 1075.
  201. R.S., Sheehan K.B., Stout R.G., Rodriguez R.J., Henson J.M. // Science. 2002. V. 298. P. 1581 1582.
  202. Reitz M., Rudolph K., Schroder I., Hoffman-Hergarten S., Hallman J., Sikora R.A. // Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. 66. P. 3515 3518.
  203. Reva O.N., Dixelius C., Meijer J., Priest F.G. Taxonomic characterization and plant colonizing abilities of some bacteria related to Bacillus amylolyquefaciens and Bacillus subtilis // FEMS Microbiology Ecology. 2004. V. 42. P. 249−259.
  204. Reva O.N., Smirnov V.V., Petterson B., Priest F.G. Bacillus endophyticus sp. nov., isolated from the inner tissues of cotton plants (Gossypium sp.) // Inter. J. of systematic and evolutionary microbiology. 2002. V. 52. P. 101 -107.
  205. Roberts W. Plant and bacterial chitinases differ in antifungal activity / W. Roberts, C. Selitrennikoff// J. Gen. Microbiol. 1988. V. 134. P. 169−176.
  206. Ross R.P., Morgan S., Hill C. Preservation and fermentation: past, present and future // Int. J. Food Microbiol. 2002. V. 79. P. 3 16.
  207. Ryu C., Farag M.A., HU C., Reddy M.S., Kloepper J.W., Pare P.W. Bacterial volatiles induce systemic resistance in Arabidopsis II Plant Physiology. 2004. V. 134. P. 1017−1026.
  208. Saleem M., Arshad M., Hussain S., Bhatti A.S. Perspective of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) containing ACC deaminase in stress agriculture // J. Ind. Microbiol. Biotech. 2007. V. 34. P. 635 648.
  209. Saravanakumara D., Vijayakumarc C., Kumarb N., Samiyappana R. PGPR-induced defense responses in the tea plant against blister blight disease // Crop Protection. 2007. V. 26. P. 556 565.
  210. Sasaki K., Hiraga S., Ito H., Seo S., Matsui H., Ohashi Y. A Wound-Inducible Tobacco Peroxidase Gene Expresses Preferentially in the Vascular System // Plant and Cell Physiology. 2002. V. 43. P. 108 117.
  211. Sattar M.A., Gaur A.C. Production of auxins and gibberellins by phosphate dissolving microorganism // Zentralbl. Mikrobiol. 1987. V. 142. P. 393−395.
  212. Saunders M., Kohn L.M. Evidence for alteration of fungal endophyte135community assembly by host defense compounds // New Phytol. 2009. V. 182. P. 229−238.
  213. Schardl C.L., Grossman R.B., Nagabhyru P., Faulkner J.R., Mallik U.P. Loline alkaloids: currency of mutualism // Phytochemistry. 2007. V. 68. P. 980−996.
  214. Schnell N., Entian K.D., Schneider U., Gotz F., Zahner H., Kellner R., Jung, G. Prepeptide sequence of epidermin, a ribosomally synthesized antibiotic with four sulphide-rings // Nature. 1988. V. 333. P. 276 278.
  215. Schoonbeek H.-J., Jacquat-Bovet A.-C., Mascher F., Metraux J.-P. Oxalate-degrading bacteria can protect Arabidopsis thaliana and crop plants against Botrytis cinerea II MPMI. 2007. V. 20. P. 1535 1544.
  216. Schrey S.D., Tarkka M.T. Friends and foes: streptomycetes as modulators of plant disease and symbiosis // Antonie van Leeuwenhoek. 2008. V. 94. P. 11−19.
  217. Segenet Kelemu. Harmonizing the agricultural biotechnology debate for the benefit of African farmers // African Journal of Biotechnology 2003. V. 2. P. 394−416.
  218. P., Narayanasamy M. // Internet J. Microbiol. 2009. V.6. http://www.ispub.com/journal / the internet journal of microbiology.
  219. Shi Y., Lou K., Li C. Isolation, quantity distribution and characterization of endophytic microorganisms within sugar beet // African journal of biotechnology. 2009. V. 8. P. 835 840.
  220. Silva H.S.A., Romeiro R.S., Mounteer A. Development of a root colonization bioassay for rapid screening of rhizobacteria for potential biocontrol agents // J. Phytopathol. 2003. V. 151. P. 42 46.
  221. Simmons L., Bultman T.L., Sullivan T.J. Effects of Methyl Jasmonate and an Endophytic Fungus on Plant Resistance to Insect Herbivores // J. Chem. Ecology. 2008. V. 34. P. 1511 1517.
  222. Smith K.P., Goodman R.M. Host variation for interactions withbeneficial plant-associated microbes // Ann. Rev. Phytopathol. 1999. V. 37.136p. 473−491.
  223. Smith R.S. New inoculant technology to meet changing legume management. I I Biological Nitrogen Fixation for the 21st Century. C. Elmerich, A. Kondorosi, and W. E. Newton, eds. Kluwer, Dordrecht, The Netherlands. 1997. P. 621−622.
  224. Sonenshein A. L., Boris R. Belitsky. Role and Regulation of Bacillus subtilis Glutamate Dehydrogenase Genes // Journal of Bacteriology, December 2001. V. 180. P. 6298−6305.
  225. Sorensen J., Jensen L. E., Nybroe O. Soil and rhizosphere as habitats for Pseudomonas inoculants: New knowledge on distribution, activity and physiological state derived from micro-scale and single-cell studies // Plant Soil 2001. V. 232. P. 97−108.
  226. Steddom K., Menge J. A., Crowley D., Borneman J. Effect of repetititve applications of the biocontrol bacterium Pseudomonas putida 6 909-rif/nal on citrus soil microbial communities // Phytopathol. 2002. V. 92. P. 857−862.
  227. Stein T. Bacillus subtilis antibiotics: structures, syntheses and specific functions // Molecular microbiology. 2005. V. 56. P. 845 857.
  228. Stein Т., Borchert S., Conrad В., Feesche J., Hofemeister В., Hofemeister J., Entian K.-D. Two different lantibiotic-like peptides originate from the ericin gene cluster of Bacillus subtilis Al/3 // J Bacteriol. 2002. V. 184. P. 1703- 1711.
  229. Stein Т., Heinzmann S., Dusterhus S., Borchert S., Entian K.-D. Expression and functional analysis of subtilin immunity genes spalFEG in the subtilin-sensitive host Bacillus subtilis МОЮ99 // J. Bacteriol. 2005. V. 187. P. 822−828.
  230. Stein Т., Heinzmann S., Kiesau P., Himmel В., Entian K.-D. The spa-box for transcriptional activation of subtilin biosynthesis and immunity in Bacillus subtilis II Mol. Microbiol. 2003. V. 47. P. 1627 1636.
  231. Stein Т., Heinzmann S., Solovieva I., Entian K.-D. Function of1371. ctococcus lactis nisin immunity genes nisi and nisFEG after coordinated expression in the surrogate host Bacillus subtilis II J. Biol. Chem. 2003. V. 278. P. 89−94.
  232. Steinborn G., Hajirezaei M.R., Hofemeister J. Bacillus genes for recombinant bacilysin and anticapsin production in Bacillus host strains // Arch Microbiol. 2005. V. 183. P. 71 79.
  233. Steller S., Sokoll A., Wilde C., Bernhard F., Franke P., Vater J. Initiation of surfactin biosynthesis and the role of the SrfD-thioesterase protein // Biochemistry. 2004. V. 43. P. 11 331 11 343.
  234. Steller S., Vollenbroich D., Leenders F., Stein T., Conrad B., Hofemeister J. Structural and functional organization of the fengycin synthetase multienzyme system from Bacillus subtilis b213 and Al/3 // Chem. Biol. 1999. V. 6. P. 31−41.
  235. Sziderics A.H., Rasche F., Trognitz F., Sessitsch A., Wilhelm E. Bacterialendophytes contribute to abiotic stress adaptation in pepper plants (Capsicum annuum L.) // Canadian J. Microbiol. 2007. V. 53. P. 1195 1202.
  236. Tada Y., Spoel S.H., Pajerowska-Mukhtar K., Mou Z., Song J., Wang C., Zuo J., Dong X. Plant immunity requires conformational changes of NPR1 via S-nitrosylation and thioredoxins // Science. 2008. V. 321. P. 952 956.
  237. Tamehiro N., Okamoto-Hosoya Y., Okamoto S., Ubukata M., Hamada M., Naganawa H., Ochi K. Bacilysocin, a novel phospholipid antibiotic produced by Bacillus subtilis 168 // Antimicrob Agents Chemother. 2002. V. 46. P. 315−320.
  238. Thimon L., Peypoux F., Wallach J., Michel G. Effect of thelipopeptide antibiotic, iturin A, on morphology and membrane ultrastructure of138yeast cells II FEMS Microbiol Lett. 1995. V. 128. P. 101 106.
  239. Thomas-Bauzon D., Weinhar P., Villecourt P., Balandreau, J. The spermosphere model. I. Its use in growing, counting and isolating N2-fixing bacteria from the rhizosphere of rice // Can. J. Microbiol. 1982. V. 28. P. 922−928.
  240. Torres M.A., Jones J., Dangl J.L. Reactive Oxygen Species Signaling in Response to Pathogens // Plant Physiology. 2006. V. 141. P. 373 378.
  241. Torres M.S., Singh A.P., Vorsa N., White J.F. An analysis of ergot alkaloids in the Clavicipitaceae (Hypocreales, Ascomycota) and ecological implications// Symbiosis. 2008. V. 46. P. 11−19.
  242. Traw M. B., Kim J., Enright S., Cipollini D. F., Bergelson J. Negative cross-talk between salicylate- and jasmonate- mediated pathways in the Wassilewskija ecotype of Arabidopsis thaliana // Molecular Ecology. 2003. V.12. P. 1125−1135
  243. Tsuge K., Akiyama T., Shoda M. Cloning, sequencing, and characterization of the iturin A operon // J. Bacteriol. 2001. V.183. P. 6265 6273.
  244. Tsuge K., Ano T., Hirai M., Nakamura Y., Shoda M. The genes degQ, pps, and lpa-8 (sfp) are responsible for conversion of Bacillus subtilis 168 to plipastatin production // Antimicrob Agents Chemother. 1999. V. 43. P. 2183−2192.
  245. K., Ohata Y., Shoda M. (a) Gene yerP, involved in surfactin self-resistance in Bacillus subtilis II Antimicrob Agents Chemother. 2001. V. 45. P. 3566−3573.
  246. Tunlid A., White D. Biochemical analysis of biomass, community structure, nutritional status, and metabolic activity of microbial communities in soil // Soil Biochemistry. 1992. V. 7. P. 229 262.
  247. Turner JG, Ellis C, Devoto A. The jasmonate signal pathway // Plant Cell. 2002. V. 14. P. 153−164.
  248. Unno Y., Okubo K., Wasaki J., Shinano T., Osaki M. Plant growth promotion abilities and microscale bacterial dynamics in the rhizosphere of Lupin analysed by phytate utilization ability // Environ. Microbiol. 2005. V. 7. P. 396−404.
  249. Van Loon L.C. Plant responses to plant growth-promoting rhizobacteria // Eur. J. Plant Pathol. 2007. V. 119. P. 243 254.
  250. Van Loon L.C., Baccer P.A.H.M., Pieterse C.M.J. Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria // Annu. Rev. Phytopathol. 1998. V. 36. P. 453−483.
  251. Van Peer R., Niemann G.J., Schippers B. Induced resistance and phytoalexin accumulation in biological control of fusarium wilt of carnation by Pseudomonas sp. strain WCS417r II Phytopathol. 1991. V. 81. P. 728 734.
  252. Vanittanakom, N., Loeffler, W., Koch, U., and Jung, G. () Fengycin -a novel antifungal lipopeptide antibiotic produced by Bacillus subtilis F-29−3 // J Antibiot. 1986. V. 39. P. 888 901.
  253. Verhagen B.W.M., Glazebrook J., Zhu T., Chang H.S., Van Loon L.C., Pieterse C.M. The transcriptome of rhizobaeteria induced systemic resistance in Arabidopsis I IMPMI. 2004. V. 17. P. 895 908.
  254. Verhagen B.W.M., Tritel-Aziz P., Couderchet M., Hofte M., Aziz A. Pseudomonas spp.-induced systemic resistance to Botrytis cinerea is associated with induction and priming of defense responses in grapevine // J. Exp. Botany. 2010. V.61.P. 249−260.
  255. Visca P., Cievro A., Sanfilippo V., Orsi N. Iron-regulated salicylate synthesis by Pseudomonas spp. // J. General Microbiol. 1993. V. 139. P. 1995−2001.
  256. Voisard C., Keel C., Haas D., Defago G. Cyanide production by Pseudomonas fluorescens helps suppress black root rot of tobacco under gnotobiotic conditions // EMBO J. 1989. V.8. P. 351 358.
  257. Wada M., Kato H., Malik K. A suppresscin from pathogenic fungus deactivates transcription of a plant defense gene encoding phenylalanine ammonia liase // J. Mol. Biol. 1995. V. 24. P. 513 519.
  258. Watanabe T., Yamada T., Oyanagi W. Purification and some properties of chitinase B1 from Bacillus circulans WL-12 // Biosci. Biotech. Biochem. 1992. V. 56. P. 682 683.
  259. Wees S., Swart E., Pelt J. A., Van Loon L. C., Pieterse C. M. J. Enhancement of induced disease resistance by simultaneous activation of salicylate- and jasmonate-dependent defense pathways in Arabidopsis thaliana II PN AS. 2000. V. 97. P. 8711 8716.
  260. Wei G., Kloepper J.W., Tuzun S. Induction of systemic resistance ofcucumber to Colletotricium orbiculare by select strains of grouth-promoting141rhizobacteria//Phytopathology. 1991. V. 81. P. 1508 1512.
  261. Weller D.M., Raaijmakers J.M., McSpadden G.B.B., Thomashow L.S. Microbial populations responsible for specific soil suppressiveness to plant pathogens // Ann. Rev. Phytopathol. 2002. V. 40. P. 309 348.
  262. Westers H., Dorenbos R., van Dijl J.M., Kabel J., Flanagan T., Devine K.M., et al. Genome engineering reveals large dispensable regions in Bacillus subtilis II Mol. Biol. Evol. 2003. V. 20. P. 2076 2090.
  263. White J.F., Torres M.S. Is plant endophyte-mediated defensive mutualism the result of oxidative stress protection? // Physiologia Plantarum. 2010. V. 138. P. 440−446.
  264. Wiwat C., Siwayaprahm P., Bhumiratana A. Purification and characterization of chitinase from Bacillus circulans II Curr. Microbiol. 1999. V. 39. P. 134−140.
  265. Yan Y., Stolz S., Chetelat A., Reymond P., Pagni M., Dubugnon L., Farmer E.E. A Downstream Mediator in the Growth Repression Limb of the Jasmonate Pathway // Plant Cell. 2007. V. 19. P. 2470 2483.
  266. Yang J.W., Yu S.H., Ryu C.-M. Priming of defense-related genes confers root-colonizing Bacilli-elicited induced systemic resistance in pepper // Plant Pathol. J. 2009. V. 25. P. 389 399.
  267. Zareen Khan, Sharon L. Doty. Characterization of bacterial endophytes of sweet potato plants Plant Soil, doi: 10.1007/sl 1104−009−9908−1.
  268. Zheng G., Hehn R., Zuber P. Mutational analysis of the sbo-alb locus of Bacillus subtilis: identification of genes required for subtilosin production and immunity 11 J. Bacteriol. 2000. V. 182. P. 3266−3273.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!