ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚
АнтистрСссовый сСрвис

Π˜Π½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π· ΠΈ биологичСская трансформация ячмСня (Hordeum vulgare L.) отСчСствСнных сортов

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

Рисунок 24. ΠžΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΠΊΠΎΠ» получСния растСний-Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Π½Ρ‚ΠΎΠ² ячмСня Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro. ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΎΡΡ‚Π°Π½Π°Π²Π»ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΌ экраном ΠΈ ΠΌΠΈΡˆΠ΅Π½ΡŒΡŽ, ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π» (Π·ΠΎΠ»ΠΎΡ‚ΠΎ/Π²ΠΎΠ»ΡŒΡ„Ρ€Π°ΠΌ) ΠΈ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ микроноситСлСй, врСмя ΠΈ ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Ρ‹ ΠΏΡ€Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ эксплантов ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π΄ ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅Π΄ΡƒΡ€ΠΎΠΉ обстрСла). ΠžΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ пСрСноса Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ растСний достигаСтся ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΌ ΡΠΎΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ силой… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

Π˜Π½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π· ΠΈ биологичСская трансформация ячмСня (Hordeum vulgare L.) отСчСствСнных сортов (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • 1. ΠžΠ±Π·ΠΎΡ€ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… источников
    • 1. 1. Π₯озяйствСнно-биологичСскиС особСнности ячмСня (Hordeum vulgare L.)
    • 1. 2. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ячмСня Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro
    • 1. 3. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ трансформации растСний
      • 1. 3. 1. ΠΠ³Ρ€ΠΎΠ±Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ трансформации растСний
      • 1. 3. 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ прямого пСрСноса Π”ΠΠš
        • 1. 3. 2. 1. Π­Π»Π΅ΠΊΡ‚Ρ€ΠΎΠΏΠΎΡ€ ация ΠΈ ΠŸΠ­Π“-ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄
        • 1. 3. 2. 2. ΠœΠΈΠΊΡ€ΠΎΠΈΠ½ΡŠΠ΅ΠΊΡ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΡƒΠΏΠ°ΠΊΠΎΠ²ΠΊΠ° Π”ΠΠš Π² Π»ΠΈΠΏΠΎΡΠΎΠΌΡ‹
        • 1. 3. 2. 3. БиолистичСский ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ трансформации растСний
    • 1. 4. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ трансформации Π·Π»Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€
    • 1. 5. ΠžΡΠΎΠ±Π΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Π²Π΅ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… конструкций, ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹Ρ… для трансформации ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ΄ΠΎΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€
      • 1. 5. 1. ΠŸΡ€ΠΎΠΌΠΎΡ‚ΠΎΡ€
      • 1. 5. 2. Π˜Π½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ½
      • 1. 5. 3. Π’Π΅Ρ€ΠΌΠΈΠ½Π°Ρ‚ΠΎΡ€
      • 1. 5. 4. Π Π΅ΠΏΠΎΡ€Ρ‚Π΅Ρ€Π½Ρ‹ΠΉ Π³Π΅Π½
      • 1. 5. 5. Π‘Π΅Π»Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ Π³Π΅Π½ 3 6 1.6 ΠžΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Π΅ направлСния Π³Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΠΈ ячмСня 38
  • Π—Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΠΎ ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€Ρƒ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… источников
  • 2. Π­ΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒ
    • 2. 1. ΠœΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Ρ‹ ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹
    • 2. 2. Π Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ ΠΈ ΠΎΠ±ΡΡƒΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠ΅
      • 2. 2. 1. Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ условий, Π²Π»ΠΈΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π° Ρ€ΠΎΡΡ‚ Π½Π΅Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… Π·Π°Ρ€ΠΎΠ΄Ρ‹ΡˆΠ΅ΠΉ Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro
      • 2. 2. 2. Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², Π²Π»ΠΈΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π° ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ биолистичСской трансформации ячмСня сортов Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚, Мамлюк ΠΈ Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ» 70 2.2.2.1. ЀизичСскиС Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹
        • 2. 2. 2. 2. БиологичСскиС Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹
      • 2. 2. 3. БиолистичСская трансформация ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции (Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚, Мамлюк), ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… трансформантов (Π’ΠΎ) ΠΈ ΠΈΡ… ΠΏΠΎΡ‚омства (Π’1)

Ряд Π²Π°ΠΆΠ½Π΅ΠΉΡˆΠΈΡ… ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌ чСловСчСства — Π·Π΄ΠΎΡ€ΠΎΠ²ΡŒΠ΅, обСспСчСниС насСлСния ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚Π°ΠΌΠΈ питания, ΠΎΡ…Ρ€Π°Π½Π° ΠΎΠΊΡ€ΡƒΠΆΠ°ΡŽΡ‰Π΅ΠΉ срСды — Π² Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ стСпСни опрСдСляСтся ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅ΠΌ развития Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ. Π—Π° ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½ΠΈΠ΅ дСсятилСтия Π² ΡΡ‚ΠΎΠΉ области Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ знания ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·ΠΎΡˆΠ΅Π» настоящий ΠΏΡ€ΠΎΡ€Ρ‹Π²: Π±Ρ‹Π»Π° Π΄ΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π½Π° Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π”ΠΠš ΠΊΠ°ΠΊ основного носитСля наслСдствСнной ΠΈΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ, выяснСны молСкулярныС ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡ‹ процСссов хранСния ΠΈ ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π΄Π°Ρ‡ΠΈ наслСдствСнной ΠΈΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ, Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Ρ‹ Ρ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ±ΠΈΠ½Π°Π½Ρ‚Π½Ρ‹Ρ… Π”ΠΠš. ВсС это ΠΏΡ€ΠΈΠ²Π΅Π»ΠΎ ΠΊ Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚ΠΈΡŽ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… областСй Π½Π°ΡƒΠΊΠΈ, Π½ΠΎ, ΠΏΡ€Π΅ΠΆΠ΄Π΅ всСго, создало Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΡ‹Π΅ прСдпосылки для появлСния Π±ΠΈΠΎΡ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ ΠΈ Π³Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΠΈ, ΠΏΡ€ΠΈΡ‡Π΅ΠΌ послСдняя ΠΏΠΎ ΡΡƒΡ‚ΠΈ являСтся ΠΎΠ΄Π½ΠΈΠΌ ΠΈΠ· Ρ€Π°Π·Π΄Π΅Π»ΠΎΠ² Π±ΠΈΠΎΡ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ.

Π’ ΠΈΡΡ‚оричСском смыслС биотСхнология Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ»Π° Ρ‚ΠΎΠ³Π΄Π°, ΠΊΠΎΠ³Π΄Π° Π΄Ρ€ΠΎΠΆΠΆΠΈ Π±Ρ‹Π»ΠΈ Π²ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΈ производствС ΠΏΠΈΠ²Π°, Π° Π±Π°ΠΊΡ‚Сриидля получСния ΠΉΠΎΠ³ΡƒΡ€Ρ‚Π°. Π’ Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя Π±ΠΈΠΎΡ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡŽ ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΊΠ°ΠΊ использованиС ΠΆΠΈΠ²Ρ‹Ρ… ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ², биологичСских систСм ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΠΎΠ² для ΠΏΡ€ΠΎΠΌΡ‹ΡˆΠ»Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ производства Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚ΠΎΠ² (сорта ΡΠ΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΡ…ΠΎΠ·ΡΠΉΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… растСний ΠΈ ΠΏΠΎΡ€ΠΎΠ΄Ρ‹ ΡΠ΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΡ…ΠΎΠ·ΡΠΉΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΆΠΈΠ²ΠΎΡ‚Π½Ρ‹Ρ…, лСкарствСнныС ΠΏΡ€Π΅ΠΏΠ°Ρ€Π°Ρ‚Ρ‹, Π²Π°ΠΊΡ†ΠΈΠ½Ρ‹, ΠΏΠΈΡ‰Π΅Π²Ρ‹Π΅ Π΄ΠΎΠ±Π°Π²ΠΊΠΈ ΠΈ Ρ‚. Π΄.).

Одним ΠΈΠ· ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½Ρ‹Ρ… Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠΉ биотСхнологичСских экспСримСнтов Π½Π° Ρ€Π°ΡΡ‚Сниях являСтся созданиС Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… высокопродуктивных сортов. Π’ Ρ€Π°ΡΡ‚Сния вводятся Π³Π΅Π½Ρ‹, ΠΎΠ±Π΅ΡΠΏΠ΅Ρ‡ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ ΠΈΡ… ΡƒΡΡ‚ΠΎΠΉΡ‡ΠΈΠ²ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΊ Π½Π°ΡΠ΅ΠΊΠΎΠΌΡ‹ΠΌ-врСдитСлям, вирусам, Π³Π΅Ρ€Π±ΠΈΡ†ΠΈΠ΄Π°ΠΌ ΠΈ Π½Π΅Π±Π»Π°Π³ΠΎΠΏΡ€ΠΈΡΡ‚Π½Ρ‹ΠΌ условиям ΠΎΠΊΡ€ΡƒΠΆΠ°ΡŽΡ‰Π΅ΠΉ срСды. ΠšΡ€ΠΎΠΌΠ΅ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, проводятся экспСримСнты ΠΏΠΎ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ растСний Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ «Π±ΠΈΠΎΡ€Π΅Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ²».

ΠŸΠ΅Ρ€Π΅Π½ΠΎΡ Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² Ρ€Π°ΡΡ‚Π΅Π½ΠΈΠ΅ прСдставляСт собой Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΠ²ΠΈΠ΄Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ сСлСкции. Волько ΠΏΡƒΡ‚ΡŒ создания Π½ΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ сорта Π³ΠΎΡ€Π°Π·Π΄ΠΎ ΠΊΠΎΡ€ΠΎΡ‡Π΅, ΠΈ ΠΏΡ€Π΅ΠΎΠ΄ΠΎΠ»Π΅Π²Π°Π΅Ρ‚ся Ρ‚Π°ΠΊΠΎΠ΅ сущСствСнноС ΠΎΠ³Ρ€Π°Π½ΠΈΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ классичСской сСлСкции, ΠΊΠ°ΠΊ половая нСс ΠΎΠ²ΠΌΠ΅ΡΡ‚ΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ.

МолСно привСсти Ρ‚Ρ€ΠΈ основных Π°Ρ€Π³ΡƒΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π² ΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·Ρƒ развития гСнСтичСской ΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΠΈ растСний. Π’ΠΎ-ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Ρ…, Π²Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π³Π΅Π½Π° часто ΠΏΡ€ΠΈΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΡ‚ ΠΊ ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ΅Π½ΠΈΡŽ ΡΠ΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΡ…ΠΎΠ·ΡΠΉΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ цСнности ΠΈ Π΄Π΅ΠΊΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ… качСств ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… растСний. Π’ΠΎ-Π²Ρ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ…, трансгСнныС растСния ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ ΡΠ»ΡƒΠΆΠΈΡ‚ΡŒ ΠΆΠΈΠ²Ρ‹ΠΌΠΈ Π±ΠΈΠΎΡ€Π΅Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Π°ΠΌΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ ΠΌΠ°Π»ΠΎΠ·Π°Ρ‚Ρ€Π°Ρ‚Π½ΠΎΠΌ производствС экономичСски Π²Π°ΠΆΠ½Ρ‹Ρ… Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΠΈΠ»ΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚Π°Π±ΠΎΠ»ΠΈΡ‚ΠΎΠ². Π’-Ρ‚Ρ€Π΅Ρ‚ΡŒΠΈΡ…, гСнСтичСская трансформация растСний (трансгСноз) позволяСт ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π°Ρ‚ΡŒ дСйствиС Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ развития растСний ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… биологичСских процСссов (обратная Π³Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ°).

Однако, Ρƒ Π“ΠœΠž (гСнСтичСски ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΎΡ€Π³Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠΎΠ²) Π΅ΡΡ‚ΡŒ Π½Π΅ΠΌΠ°Π»ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΈΠΊΠΎΠ² Π²ΠΎ Π²ΡΠ΅ΠΌ ΠΌΠΈΡ€Π΅. Π’ ΡΠ»ΡƒΡ‡Π°Π΅ использования трансгСнных растСний сущСствуСт Ρ‚Ρ€ΠΈ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½Ρ‹Ρ… рисков: влияниС Π½Π° Π·Π΄ΠΎΡ€ΠΎΠ²ΡŒΠ΅ Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ°, пСрСнос Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΊ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΠΌ Π²ΠΈΠ΄Π°ΠΌ, ΠΎΡ‚Π΄Π°Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ экологичСскиС послСдствия. Π’ΠΏΠΎΠ»Π½Π΅ Ρ€Π΅Π·ΠΎΠ½Π½ΠΎ ΡΠΎΠ³Π»Π°ΡΠΈΡ‚ΡŒΡΡ с ΠΎΠΏΠ°ΡΠ΅Π½ΠΈΡΠΌΠΈ ΠΏΠΎ ΠΏΠΎΠ²ΠΎΠ΄Ρƒ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ сСйчас Ρ‚Ρ€ΡƒΠ΄Π½ΠΎ ΡΠΏΡ€ΠΎΠ³Π½ΠΎΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ ΠΎΡ‚Π΄Π°Π»Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ послСдствия влияния Π“ΠœΠž Π½Π° ΠΎΠΊΡ€ΡƒΠΆΠ°ΡŽΡ‰ΡƒΡŽ срСду. Π‘Π»Π΅Π΄ΡƒΠ΅Ρ‚ Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΏΠΎΠ΄Ρ‡Π΅Ρ€ΠΊΠ½ΡƒΡ‚ΡŒ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π·Π° ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½ΠΈΠΉ Π²Π΅ΠΊ Π²ΠΎΠΎΠ±Ρ‰Π΅ Ρ‚Ρ€ΡƒΠ΄Π½ΠΎ Π½Π°ΠΉΡ‚ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€Ρ‹ ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ влияния сСльского хозяйства Π½Π° ΡΠΊΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΡƒΡŽ срСду. Вряд Π»ΠΈ трансгСнныС растСния смогут нанСсти больший Π²Ρ€Π΅Π΄ ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π΅, Ρ‡Π΅ΠΌ, скаТСм, Π±Π΅ΡΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ пСстицидов ΠΈΠ»ΠΈ ΡƒΠ½ΠΈΡ‡Ρ‚ΠΎΠΆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ лСсов.

Π’Π°ΠΊΠΈΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΠ° Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² молСкулярной сСлСкции ΠΈ ΡΠΎΠ·Π΄Π°Π½ΠΈΠ΅ трансгСнных сортов основных ΡΠ΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΡ…ΠΎΠ·ΡΠΉΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€ Π² Π ΠΎΡΡΠΈΠΈ ΠΏΡ€ΠΈΠΎΠ±Ρ€Π΅Ρ‚Π°Π΅Ρ‚ стратСгичСскоС Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ с Ρ‚ΠΎΡ‡ΠΊΠΈ зрСния ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ²ΠΎΠ»ΡŒΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ бСзопасности ΠΈ Π½Π΅Π·Π°Π²ΠΈΡΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΠΈ, Π° Π²Π»Π°Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ соврСмСнными ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ Π±ΠΈΠΎΡ‚Π΅Ρ…Π½ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ ΠΈ Π΄ΠΈΠ°Π³Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈΠΊΠΈ растСний являСтся основой для прСдотвращСния прСвращСния России Π² ΡΠ²Π°Π»ΠΊΡƒ ΠΎΡ‚Ρ…ΠΎΠ΄ΠΎΠ² биотСхнологичСской индустрии Ρ€Π°Π·Π²ΠΈΡ‚Ρ‹Ρ… стран.

БущСствуСт нСсколько способов получСния трансгСнных растСний (Π°Π³Ρ€ΠΎΠ±Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ трансформация, биолистичСская трансформация, элСктропорация, ΠΌΠΈΠΊΡ€ΠΎΠΈΠ½ΡŠΠ΅ΠΊΡ†ΠΈΠΈ ΠΈ Ρ‚. Π΄.). Π‘Π»Π΅Π΄ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎΡ‚ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΡ‚ΡŒ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ Π΄Π²Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° трансформации ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ часто ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹ΠΌΠΈ.

БистСмы пСрСноса Π³Π΅Π½ΠΎΠ² с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ Agrobacterium tumefaciens эффСктивно Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°ΡŽΡ‚ Ρ‚ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ Π² ΡΠ»ΡƒΡ‡Π°Π΅ Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² растСний. Π’ Ρ‡Π°ΡΡ‚ности, ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ΄ΠΎΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ растСния, Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Ρ основныС Π·Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ²Ρ‹Π΅ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹, практичСски Π½Π΅ Ρ‚Ρ€Π°Π½ΡΡ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‚ΡΡ A. tumifaciens. И Π΅ΡΠ»ΠΈ Π² Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ ΠΌΠΎΠ΄ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΈΠΊΠΈ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ строгом ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»Π΅ Π·Π° ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΠΌΠΈ провСдСния ΠΎΠΏΡ‹Ρ‚ΠΎΠ² ΡƒΠ΄Π°Π»ΠΎΡΡŒ Π΄ΠΎΠ±ΠΈΡ‚ΡŒΡΡ ΡƒΡΠΏΠ΅ΡˆΠ½ΠΎΠΉ Π°Π³Ρ€ΠΎΠ±Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ трансформации риса ΠΈ ΠΊΡƒΠΊΡƒΡ€ΡƒΠ·Ρ‹ Π½Π΅ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… сортов, Ρ‚ΠΎ Π΄Π»Ρ Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠ½ΡΡ‚Π²Π° Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… Π²ΠΈΠ΄ΠΎΠ² Π·Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ²Ρ‹Ρ… растСний основным ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ пСрСноса Π³Π΅Π½ΠΎΠ² остаСтся ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ биолистичСской трансформации. К Ρ‚Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹ΠΌ относится ΠΈ ΡΡ‡ΠΌΠ΅Π½ΡŒ, ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠΉΡΡ Π²Π°ΠΆΠ½ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ²ΠΎΠ»ΡŒΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€ΠΎΠΉ. Π‘Π»Π΅Π΄ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎΡ‚ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΡ‚ΡŒ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ ΠΈ Ρ‚ΠΊΠ°Π½ΠΈ Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠΈ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro с Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠΌ Ρ‚Ρ€ΡƒΠ΄ΠΎΠΌ ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π°ΡŽΡ‚ΡΡ Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ Π³Π΅Π½Π΅Ρ‚ичСской трансформации. Π’1 связи с ΡΡ‚ΠΈΠΌ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚, ΠΎΠΏΠΈΡΡ‹Π²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΡƒΡΠΏΠ΅ΡˆΠ½ΡƒΡŽ Ρ‚Ρ€Π°Π½ΡΡ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΡŽ ячмСня, Π½Π΅ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ. ΠšΡ€ΠΎΠΌΠ΅ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, Π±ΠΎΠ»ΡŒΡˆΠΈΠ½ΡΡ‚Π²ΠΎ ΠΈΠ· Π½ΠΈΡ… содСрТит Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ Ρ‚рансформации Ρ‚Π°ΠΊ Π½Π°Π·Ρ‹Π²Π°Π΅ΠΌΡ‹Ρ… ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… сортов, Π½Π΅ ΠΈΠΌΠ΅ΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΠΊΠ°ΠΊΠΎΠ³ΠΎ-Π»ΠΈΠ±ΠΎ коммСрчСского значСния Π² Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя.

ЦСлью Π½Π°ΡˆΠΈΡ… исслСдований являлось ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², Π²Π»ΠΈΡΡŽΡ‰ΠΈΡ… Π½Π° ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΈΡΡ‚ичСской трансформации соматичСских Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΉ ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции.

Для достиТСния Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Ρ†Π΅Π»ΠΈ Π±Ρ‹Π»ΠΈ поставлСны ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ:

1) Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ особСнностСй ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° ΠΈ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΠΊΠΎΠ»Π° эффСктивной Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ растСний ΠΈΠ· ΡΠΎΠΌΠ°Ρ‚ичСских Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΉ ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции.

2) ΠžΡ†Π΅Π½ΠΊΠ° влияния физичСских ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² ΠΈ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠΈΡ… характСристик эксплантов Π½Π° ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π΅Π½ΡŒ Ρ‚Ρ€Π°Π½Π·ΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠΉ экспрСссии Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² ΠΏΡ€ΠΈ биолистичСской трансформации ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции.

3) ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎ-биологичСский Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· присутствия Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π”ΠΠš Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… трансформантов.

4) Π˜Π·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π° наслСдования пСрСнСсСнных Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² ΠΏΠΎΡ‚омствС трансгСнных растСний.

Научная Π½ΠΎΠ²ΠΈΠ·Π½Π°: Π²ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π° эффСктивная систСма Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ячмСня сортов Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚ ΠΈ ΠœΠ°ΠΌΠ»ΡŽΠΊ (сСлСкция КНИИБΠ₯), ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰Π°Ρ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ½Ρ‚Π°ΠΊΡ‚Π½Ρ‹Π΅ растСния с Ρ‡Π°ΡΡ‚ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ 70−80%. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Ρ‹ ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ условия биолистичСской трансформации соматичСских Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΉ ячмСня сортов Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚ ΠΈ ΠœΠ°ΠΌΠ»ΡŽΠΊ с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ интСнсивности Ρ‚Ρ€Π°Π½Π·ΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠΉ экспрСссии Π³Π΅Π½Π° gfp Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ критСрия ΠΎΡ†Π΅Π½ΠΊΠΈ эффСктивности трансформации.

ΠŸΡ€Π°ΠΊΡ‚ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠ°Ρ Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹: Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ Π½Π°ΠΌΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΠΊΠΎΠ» получСния Ρ„Π΅Ρ€Ρ‚ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… растСний-Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Π½Ρ‚ΠΎΠ² ячмСня Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅ in vitro ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ использован ΠΏΡ€ΠΈ ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠΉ сСлСкции, соматичСской Π³ΠΈΠ±Ρ€ΠΈΠ΄ΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΈ Π³Π΅Π½Π½ΠΎ-ΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… экспСримСнтах с ΡΠΎΡ€Ρ‚Π°ΠΌΠΈ ячмСня отСчСствСнной сСлСкции. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΡΠ²Π»ΡΡŽΡ‚ΡΡ основой ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΠ»Π°Π½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠΈ исслСдований, связанных с Ρ‚рансформациСй ячмСня ΠΈ/ΠΈΠ»ΠΈ Π΄Ρ€ΡƒΠ³ΠΈΡ… Π·Π»Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€.

Данная Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° Π±Ρ‹Π»Π° Π²Ρ‹ΠΏΠΎΠ»Π½Π΅Π½Π° Π² Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠΈ Π³Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€ΠΈΠΈ растСний ГНУ Π’ΠΠ˜Π˜Π‘Π‘ РАБΠ₯Н ΠΏΠΎΠ΄ руководством Π².Π½.с. ΠΊ.Π±.Π½. М. А. Π§Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ±Ρ€ΠΎΠ²ΠΊΠΈΠ½ΠΎΠΉ ΠΈ Π·Π°Π²Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ Π»Π°Π±ΠΎΡ€Π°Ρ‚ΠΎΡ€ΠΈΠ΅ΠΉ ΠΊ.с.-Ρ….Π½. C.B. Π”ΠΎΠ»Π³ΠΎΠ²Π°.

Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π° ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΈΠΊΠ° Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции (Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚ ΠΈ ΠœΠ°ΠΌΠ»ΡŽΠΊ) ΠΈΠ· ΡΠΎΠΌΠ°Ρ‚ичСских Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΉ Π½Π΅Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… Π·Π°Ρ€ΠΎΠ΄Ρ‹ΡˆΠ΅ΠΉ с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ ΠΈΠ½Π΄ΡƒΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π° Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro.

2. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ ΠΈΠ½Ρ‚Π°ΠΊΡ‚Π½Ρ‹Π΅ растСния ячмСня сортов Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚ ΠΈ ΠœΠ°ΠΌΠ»ΡŽΠΊ, частота Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… составляСт 70−80%, Ρ‡Ρ‚ΠΎ являСтся ΠΎΠ΄Π½ΠΈΠΌ ΠΈΠ· Π²Π°ΠΆΠ½Π΅ΠΉΡˆΠΈΡ… Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² для достиТСния ΡƒΡΠΏΠ΅ΡˆΠ½ΠΎΠΉ трансформации.

3. ΠžΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€Ρ‹ биолистичСской трансформации соматичСских Ρ‚ΠΊΠ°Π½Π΅ΠΉ ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции (Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ ΠΈ Π²ΠΈΠ΄ микроноситСлСй, Π²Π΅Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ½Π° давлСния Π² ΠΌΠΎΠΌΠ΅Π½Ρ‚ выстрСла, Ρ€Π°Π·Ρ€Π΅ΠΆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ Π² ΠΊΠ°ΠΌΠ΅Ρ€Π΅ ΠΏΡƒΡˆΠΊΠΈ, расстояниС ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΎΡΡ‚Π°Π½Π°Π²Π»ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΌ экраном ΠΈ ΠΌΠΈΡˆΠ΅Π½ΡŒΡŽ, ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΎΠ΄ ΠΏΡ€Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ эксплантов) с ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ΠΌ интСнсивности Ρ‚Ρ€Π°Π½Π·ΠΈΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠΉ экспрСссии Π³Π΅Π½Π° gfp Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ критСрия ΠΎΡ†Π΅Π½ΠΊΠΈ эффСктивности трансформации.

4. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Ρ‹ ΡˆΠ΅ΡΡ‚ΡŒ трансгСнных Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ ячмСня сорта Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ» с ΠΏΠΎΠ΄Ρ‚Π²Π΅Ρ€ΠΆΠ΄Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ПЦР-Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΎΠΌ вставкой Π³Π΅Π½Π° gfp. Π’ Ρ‚канях Π·Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΊ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ наблюдалась экспрСссия Π³Π΅Π½Π° gfp.

5. Показана Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ встраивания Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… Π³Π΅Π½ΠΎΠ² Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌ ячмСня сортов отСчСствСнной сСлСкции.

Π—Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅

t.

ΠŸΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½Π½Ρ‹Π΅ Π½Π°ΠΌΠΈ экспСримСнты ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π»ΠΈ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ Ρ†Π΅Π»Ρ‹Ρ… Π·Π΅Π»Π΅Π½Ρ‹Ρ… растСний Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅ in vitro Π² Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ стСпСни зависит ΠΎΡ‚ Π³Π΅Π½ΠΎΡ‚ΠΈΠΏΠ°. ИсслСдования Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»Π° Ρ‚Ρ€Π΅Ρ… отСчСствСнных сортов ячмСня (Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚ ΠΈ ΠœΠ°ΠΌΠ»ΡŽΠΊ) продСмонстрировали Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ различия ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ Π½ΠΈΠΌΠΈ. Из ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Сстированных Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro сортов Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ высокой Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒΡŽ ΠΎΠ±Π»Π°Π΄Π°Π» сорт Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ».

Π’ Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Π΅ ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… исслСдований ΠΏΠΎ ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠΈΠ·Π°Ρ†ΠΈΠΈ состава ΠΏΠΈΡ‚Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… срСд установлСно, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ срСдой для каллусообразования являСтся срСда, составлСнная Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ прописи ΠœΡƒΡ€ΠΈΡΠΈΠ³Π΅-Π‘ΠΊΡƒΠ³Π° (MS) ΠΈ Π΄ΠΎΠΏΠΎΠ»Π½Π΅Π½Π½Π°Ρ ΠΌΠΈΠΎΠΈΠ½ΠΎΠ·ΠΈΡ‚ΠΎΠ»ΠΎΠΌ (100 ΠΌΠ³/Π»), Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ΠΎΠΌ ΠΊΠ°Π·Π΅ΠΈΠ½Π° (1000 ΠΌΠ³/Π»), 2,4-Π” (2,5 ΠΌΠ³/Π») ΠΈ 6-Π‘ΠΠŸ (0,5 ΠΌΠ³/Π»), Π° Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠΉ срСдой, позволившСй ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ высокиС Ρ€Π΅Π·ΡƒΠ»ΡŒΡ‚Π°Ρ‚Ρ‹ — срСда RM-5, составлСнная Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π΅ MS ΠΈ Π΄ΠΎΠΏΠΎΠ»Π½Π΅Π½Π½Π°Ρ ΠΌΠΈΠΎΠΈΠ½ΠΎΠ·ΠΈΡ‚ΠΎΠ»ΠΎΠΌ (100 ΠΌΠ³/Π»), Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ΠΎΠΌ ΠΊΠ°Π·Π΅ΠΈΠ½Π° (1000 ΠΌΠ³/Π»), CUSO4X5H2O (1,25 ΠΌΠ³/Π») ΠΈ 6-Π‘ΠΠŸ (3 ΠΌΠ³/Π»). ΠŸΡ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ‚ΠΈΠ΄ΠΈΠ°Π·ΡƒΡ€ΠΎΠ½Π° Π² ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ источника Ρ†ΠΈΡ‚ΠΎΠΊΠΈΠ½ΠΈΠ½ΠΎΠ² Π² ΡΡ€Π΅Π΄Π΅ RM-3 ΠΏΡ€ΠΈΠ²ΠΎΠ΄ΠΈΠ»ΠΎ ΠΊ ΡΠ½ΠΈΠΆΠ΅Π½ΠΈΡŽ частоты образования растСний-Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Π½Ρ‚ΠΎΠ², Π½ΠΎ ΡƒΠ²Π΅Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ²Π°Π»ΠΎ число ΠΏΠΎΠ±Π΅Π³ΠΎΠ² Π½Π° ΠΎΡ‚Π΄Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΌ эксплантС. ΠŸΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ эффСкт Π½Π° ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡΡ‹ Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ наблюдался ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΠΎΠ²Ρ‹ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ (Π² 50 Ρ€Π°Π· ΠΏΠΎ ΡΡ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΡŽ с Ρ€Π΅ΠΊΠΎΠΌΠ΅Π½Π΄ΡƒΠ΅ΠΌΡ‹ΠΌ ΠΏΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΠΏΠΈΡΠΈ MS) уровня содСрТания Π² ΠΏΠΈΡ‚Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ срСдС ΠΈΠΎΠ½ΠΎΠ² ΠΌΠ΅Π΄ΠΈ.

Π’Π°ΠΊΠΈΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, Π½Π°ΠΌΠΈ Π±Ρ‹Π»Π° Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π° рСгСнСрационная систСма, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰Π°Ρ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π°Ρ‚ΡŒ ΠΈΠ½Ρ‚Π°ΠΊΡ‚Π½Ρ‹Π΅ растСния Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅ in vitro с Ρ‡Π°ΡΡ‚ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ 7080% (рис. 24). j.

ΠšΡ€ΠΎΠΌΠ΅ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ, Π² Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… исслСдований ΠΌΡ‹ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π°Π»ΠΈ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Π°ΠΊΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹, Π²Π»ΠΈΡΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π½Π° ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ биолистичСской трансформации ячмСня сортов Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», Π’ΠΈΠΊΠΎΠ½Ρ‚ ΠΈ ΠœΠ°ΠΌΠ»ΡŽΠΊ (Π΄Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ гСлия, ΠΏΡ€ΠΈ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ происходит Ρ€Π°Π·Ρ€Ρ‹Π² дисков, разряТСниС Π²ΠΎΠ·Π΄ΡƒΡ…Π° Π² ΠΊΠ°ΠΌΠ΅Ρ€Π΅ ΠΏΡƒΡˆΠΊΠΈ, расстояниС.

1 этап (Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π·Π°Ρ€ΠΎΠ΄Ρ‹ΡˆΠ΅ΠΉ Ρ‡Π΅Ρ€Π΅Π· 10−15 Π΄Π½Π΅ΠΉ послС опылСнияразмСр Π·Π°Ρ€ΠΎΠ΄Ρ‹ΡˆΠ΅ΠΉ 0,5−1,5 ΠΌΠΌΠ·Π°Ρ€ΠΎΠ΄Ρ‹ΡˆΠΈ Π²Ρ‹ΡΠ°ΠΆΠΈΠ²Π°Π»ΠΈΡΡŒ Π½Π° ΡΡ€Π΅Π΄Ρƒ БМ-5 (основа ΠœΠ‘ + ΠΌΠ°Π»ΡŒΡ‚ΠΎΠ·Π° (30 Π³/Π») + ΠΈΠ½ΠΎΠ·ΠΈΡ‚ΠΎΠ» (100 ΠΌΠ³/Π») + Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ ΠΊΠ°Π·Π΅ΠΈΠ½Π° (1 Π³/Π») + 2,4-Π” (2,5 ΠΌΠ³/Π») + 6-Π‘ΠΠŸ (0,5 ΠΌΠ³/Π»)).

2 этап (ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ каллуса (срСда БМ-5) Π² Ρ‚Π΅ΠΌΠ½ΠΎΡ‚Π΅ ΠΏΡ€ΠΈ 1Β°=26Β°Π‘ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ»ΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΎΠ΄Π° — 20−25 Π΄Π½Π΅ΠΉ). W.

1St.

3 этап (активная рСгСнСрация ΠΏΠΎΠ±Π΅Π³ΠΎΠ² Π½Π° ΡΡ€Π΅Π΄Π΅ КМ-5 (основа ΠœΠ‘ + ΠΌΠ°Π»ΡŒΡ‚ΠΎΠ·Π° (30 Π³/Π») + ΠΈΠ½ΠΎΠ·ΠΈΡ‚ΠΎΠ» (100 ΠΌΠ³/Π») + Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π°Ρ‚ ΠΊΠ°Π·Π΅ΠΈΠ½Π° (1 Π³/Π») + Π‘ΠΈ504×5Н20 (1,25 ΠΌΠ³/Π») + 6-Π‘ΠΠŸ (3 ΠΌΠ³/Π») Π½Π° ΡΠ²Π΅Ρ‚Ρƒ ΠΏΡ€ΠΈ {Β°=20Β°Π‘ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ»ΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ -15−20 Π΄Π½Π΅ΠΉ)).

4 этап (ΡƒΠΊΠΎΡ€Π΅Π½Π΅Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΠΎΠ±Π΅Π³ΠΎΠ² Π½Π° ΡΡ€Π΅Π΄Π΅ RtM (½ основы MS + сахароза (20 Π³/Π») + ИМК (1 ΠΌΠ³/Π»), Π½Π° ΡΠ²Π΅Ρ‚Ρƒ ΠΏΡ€ΠΈ tΒ°=20Β°CΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΠΎΠ»ΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡŒ -10−12 Π΄Π½Π΅ΠΉ)).

Рисунок 24. ΠžΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹ΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΠΊΠΎΠ» получСния растСний-Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Π½Ρ‚ΠΎΠ² ячмСня Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… in vitro. ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΎΡΡ‚Π°Π½Π°Π²Π»ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΌ экраном ΠΈ ΠΌΠΈΡˆΠ΅Π½ΡŒΡŽ, ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π» (Π·ΠΎΠ»ΠΎΡ‚ΠΎ/Π²ΠΎΠ»ΡŒΡ„Ρ€Π°ΠΌ) ΠΈ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ микроноситСлСй, врСмя ΠΈ ΡΠΏΠΎΡΠΎΠ±Ρ‹ ΠΏΡ€Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ эксплантов ΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π΄ ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅Π΄ΡƒΡ€ΠΎΠΉ обстрСла). ΠžΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ ΡΡ„Ρ„Π΅ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΡΡ‚ΡŒ пСрСноса Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš Π² ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ растСний достигаСтся ΠΏΡ€ΠΈ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΌ ΡΠΎΠΎΡ‚Π½ΠΎΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ силой проникновСниячастиц ΠΈ ΡΡ‚Π΅ΠΏΠ΅Π½ΡŒΡŽ поранСния Ρ‚ΠΊΠ°Π½ΠΈ-мишСни. НаиболСС эффСктивная транзиСнтная экспрСссия Π³Π΅Π½Π° gfp ΠΏΡ€ΠΈ трансформации ячмСня ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠΌ биобаллистики Π΄ΠΎΡΡ‚ΠΈΠ³Π°Π»Π°ΡΡŒ ΠΏΡ€ΠΈ соблюдСнии ΡΠ»Π΅Π΄ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… условий: использованиС частиц, Π·ΠΎΠ»ΠΎΡ‚Π° Ρ€Π°Π·ΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠΌ 1,0 ΠΌΠΊΠΌ для избСТания ΠΏΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΆΠ΄Π΅Π½ΠΈΠΉ Ρ€Π°ΡΡ‚ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΠ΅ обстрСла хозяйствСнно Ρ†Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… сортов ΠΏΡ€ΠΈ Π΄Π°Π²Π»Π΅Π½ΠΈΠΈ гСлия 900−1100 psi ΠΈ Ρ€Π°Π·Ρ€ΡΠΆΠ΅Π½ΠΈΠΈ Π² ΠΊΠ°ΠΌΠ΅Ρ€Π΅ 28−29 дюймов, Ρ€Ρ‚ΡƒΡ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ столбапомСщСниС Ρ‡Π°ΡˆΠΊΠΈ с ΡΠΊΡΠΏΠ»Π°Π½Ρ‚Π°ΠΌΠΈ Π½Π° Ρ€Π°ΡΡΡ‚ояниС- 6−9 см ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ ΠΎΡΡ‚Π°Π½Π°Π²Π»ΠΈΠ²Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠΌ экраном ΠΈ ΠΌΠΈΡˆΠ΅Π½ΡŒΡŽΠΏΠ΅Ρ€Π΅Π½ΠΎΡ Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½ΠΎΠΉ Π”ΠΠš Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎ Π΄eлящиecяv ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΊΠΈ послС ΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΎΠ΄Π° ΠΏΡ€Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΠΈΠ²Π°Ρ†ΠΈΠΈ, ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΠ²ΡˆΠ΅Π³ΠΎ Π² ΡΡ€Π΅Π΄Π½Π΅ΠΌ 12−14 Π΄Π½Π΅ΠΉ Π½Π° ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠΈΠ·ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½ΠΎΠΉ Π½Π°ΠΌΠΈ Ρ€Π°Π½Π΅Π΅ срСдС для Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ±Π΅Π³ΠΎΠ².,.

Π’3 Ρ…ΠΎΠ΄Π΅ экспСримСнтов ΠΏΠΎ Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΈΡΡ‚ичСской трансформации Π½Π°ΠΌΠΈ, Π±Ρ‹Π»ΠΎ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΎ ΡˆΠ΅ΡΡ‚ΡŒ ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… трансформантов β€’ ячмСня сорта Π‘Ρ‚ΠΈΠΌΡƒΠ», содСрТащих Π³Π΅Π½ gfp. ГСномная вставка Π±Ρ‹Π»Π° ΠΏΠΎΠ΄Ρ‚Π²Π΅Ρ€ΠΆΠ΄Π΅Π½Π° ПЦР-Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·ΠΎΠΌ с ΠΏΡ€Π°ΠΉΠΌΠ΅Ρ€Π°ΠΌΠΈ Actl-int-GFP-low. ΠŸΡ€ΠΈ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΠΈ* флуорСсцСнтной^ микроскопии* Π² Ρ‚канях Π·Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ²ΠΎΠΊ этих Π»ΠΈΠ½ΠΈΠΉ Π±Ρ‹Π»ΠΎ зафиксировано Π·Π΅Π»Π΅Π½ΠΎΠ΅ свСчСниС, Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ΅ для Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎ ΡΠΊΡΠΏΡ€Π΅ΡΡΠΈΡ€ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎΡΡ Π³Π΅Π½Π° gfp. НаличиС ΠΆΠ΅ Π³Π΅Π½Π° bar Π½Π°ΠΌ ΠΎΠ±Π½Π°Ρ€ΡƒΠΆΠΈΡ‚ΡŒ Π½Π΅ ΡƒΠ΄Π°Π»ΠΎΡΡŒ Π½ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΠΈ фСнотипичСских наблюдСний Π·Π° Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠ΅ΠΉ протрансформированных растСний Π½Π° ΠΎΠ±Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΡƒ Π³Π΅Ρ€Π±ΠΈΡ†ΠΈΠ΄ΠΎΠΌ Basta™, Π½ΠΈ ΠΏΡ€ΠΈ ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΠΈ ПЦР-Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° ΠΈΠ·-Π·Π° образования Π·Π½Π°Ρ‡ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ количСства нСспСцифичСских ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚ΠΎΠ² Ρ€Π΅Π°ΠΊΡ†ΠΈΠΈ Π°ΠΌΠΏΠ»ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ°Ρ†ΠΈΠΈ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ связано с Π½Π°Π»ΠΈΡ‡ΠΈΠ΅ΠΌ Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ячмСня ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚Π΅ΠΉ Π”ΠΠš, Π³ΠΎΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… ΠΊ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΡΡ‚ΡΠΌ примСняСмых ΠΏΡ€Π°ΠΉΠΌΠ΅Ρ€ΠΎΠ².

Π’Π°ΠΊΠΈΠΌ-ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, ΠΌΡ‹ Π½Π΅ ΠΌΠΎΠΆΠ΅ΠΌ достовСрно ΡƒΡ‚Π²Π΅Ρ€ΠΆΠ΄Π°Ρ‚ΡŒ ΠΎ ΠΏΡ€ΠΈΡΡƒΡ‚ствии Π³Π΅Π½Π° bar Π² Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π½Π°ΠΌΠΈ растСний, хотя всС ΠΎΠ½ΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡˆΠ»ΠΈ ΠΎΡ‚Π±ΠΎΡ€ Π½Π° ΡΡ€Π΅Π΄Π΅ с Π΄ΠΎΡΡ‚Π°Ρ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎ высокой ΠΊΠΎΠ½Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π°Ρ†ΠΈΠ΅ΠΉ сСлСктивного Π°Π³Π΅Π½Ρ‚Π° (5 ΠΌΠ³/Π» фосфинотрицина). Однако рядом исслСдоватСлСй ΠΎΡ‚ΠΌΠ΅Ρ‡Π΅Π½ΠΎ большоС количСство эскСйпов, Ρ…Π°Ρ€Π°ΠΊΡ‚Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ΅ для Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ‚ΠΈΠΏΠ° сСлСкции.

ΠŸΠΎΡ‚ΠΎΠΌΡΡ‚Π²ΠΎ ΠΎΡ‚ ΡˆΠ΅ΡΡ‚ΠΈ ПЦР-ΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΏΠΎ Π³Π΅Π½Ρƒ gfp ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… трансформантов Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ оказалось Ρ‡ΡƒΠ²ΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΌ ΠΊ Basta™. Помимо этого, ПЦР-Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ· Π”ΠΠš, Π²Ρ‹Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΈΠ· Π»ΠΈΡΡ‚ΠΎΠ²ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π°, ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π» отсутствиС Π² ΠΈΡ… Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ΅ ΠΊΠ°ΠΊΠΈΡ…-Π»ΠΈΠ±ΠΎ Π³Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Ρ… вставок.

Анализ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… Π½Π°ΠΌΠΈ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹Ρ… источников позволяСт ΡΠ΄Π΅Π»Π°Ρ‚ΡŒ Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄ ΠΎ Ρ‚ΠΎΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ ΡΡ‡ΠΌΠ΅Π½ΡŒ являСтся ΠΎΠ΄Π½ΠΈΠΌ ΠΈΠ· ΡΠ°ΠΌΡ‹Ρ… слоТных ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚ΠΎΠ² срСди Π·Π»Π°ΠΊΠΎΠ²Ρ‹Ρ… ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€ для Π³Π΅Π½Π½ΠΎ-ΠΈΠ½ΠΆΠ΅Π½Π΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… исслСдований. БистСма Π΄Π΅ΠΉΡΡ‚Π²ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ трансформации Π΄Π°Π½Π½ΠΎΠΉ ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Ρ‹ Π±Ρ‹Π»Π° Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½Π°, Π³Π»Π°Π²Π½Ρ‹ΠΌ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠΌ, для Ρ‚Π°ΠΊΠΈΡ… ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… сортов, ΠΊΠ°ΠΊ Golden Promise, Igri ΠΈ Hymalaya. Π›ΠΈΡˆΡŒ Π² ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄Π½ΠΈΠ΅ Π³ΠΎΠ΄Ρ‹ стали ΠΏΠΎΡΠ²Π»ΡΡ‚ΡŒΡΡ сообщСния ΠΎ Π²ΠΎΠ²Π»Π΅Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠΈ Π² ΠΏΡ€ΠΎΡ†Π΅ΡΡ трансформации коммСрчСских сортов ячмСня. Однако Π΄ΠΎ ΡΠΈΡ… ΠΏΠΎΡ€ Π½Π΅ ΡƒΠ΄Π°Π»ΠΎΡΡŒ Ρ€Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ для Π½ΠΈΡ… высокотСхнологичного ΠΏΡ€ΠΎΡ‚ΠΎΠΊΠΎΠ»Π° для эффСктивной трансформации.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Π’.А., Π Ρ‹ΠΌΠ°Ρ€ΡŠ Π’. Π’. «Π―Ρ€ΠΎΠ²ΠΎΠΉ ΡΡ‡ΠΌΠ΅Π½ΡŒ» // КамСнная ΡΡ‚Π΅ΠΏΡŒ. 1984. Π‘. 301−310.
  2. .А. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΈΠΊΠ° ΠΏΠΎΠ»Π΅Π²ΠΎΠ³ΠΎ ΠΎΠΏΡ‹Ρ‚Π° // М. «ΠšΠΎΠ»ΠΎΡ». 1979. Π‘. 220 302.
  3. О. Π“. Π”ΡƒΠ½Π°Π΅Π²Π° Π‘.Π•. Π“Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ° ΠΈ Ρ€Π΅Π³Π΅Π½Π΅Ρ€Π°Ρ†ΠΈΡ Π² ΠΊΡƒΠ»ΡŒΡ‚ΡƒΡ€Π΅ in vitro Π·Π»Π°ΠΊΠΎΠ² //Π“Π΅Π½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠ°. № 10. Π‘. 1432−1440.
  4. Π“. Π‘., Π”ΠΎΠ»Π³ΠΎΠ΄Π²ΠΎΡ€ΠΎΠ² Π’. Π•., ΠšΠΎΡ€Π΅Π½Π΅Π² Π“. Π’. ΠΈ Π΄Ρ€. РастСниСводство //М. «ΠšΠΎΠ»ΠΎΡ». 1997. Π‘. 151−153, 163−167.
  5. П.Π€. БиологичСская статистика // Минск. «Π’Ρ‹ΡˆΡΠΉΡˆΠ° школа». 1973. Π‘. 80−107, 187−269.
  6. OA., ΠšΠ°Ρ‚Π°ΡΠΎΠ½ΠΎΠ²Π° A.A. Π¦ΠΈΡ‚ΠΎ-гистологичСский статус Π½Π΅Π·Ρ€Π΅Π»ΠΎΠ³ΠΎ Π·Π°Ρ€ΠΎΠ΄Ρ‹ΡˆΠ° яровой мягкой ΠΏΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ†Ρ‹ Π² Ρ„Π°Π·Π΅ развития, ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ для формирования ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ каллуса in vitro // Цитология. 2006. Π’. 48. № 9. Π‘. 797.
  7. М.Π’., ΠœΠΈΡ€ΠΎΡˆΠ½ΠΈΡ‡Π΅Π½ΠΊΠΎ Π”. Н., БСрниковская Π”. И., Π”ΠΎΠ»Π³ΠΎΠ² C.B. ΠŸΠΎΠ΄Π±ΠΎΡ€ ΠΎΠΏΡ‚ΠΈΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² баллистичСской трансформации Π³Π΅Π½ΠΎΠΌΠ° мягкой ΠΏΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ†Ρ‹ // Π‘Π΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΡ…ΠΎΠ·ΡΠΉΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Π°Ρ биология. 2006. Π’.1. Π‘. 67−73.
  8. М.Π’., ΠœΠΈΡ€ΠΎΡˆΠ½ΠΈΡ‡Π΅Π½ΠΊΠΎ Π”. Н., Π‘Π»Π°Π²ΠΎΠΎΡ…ΠΎΡ‚ΠΎΠ²Π° A.A., Π”ΠΎΡ‚ΠΎΠ² C.B. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΊΠ° систСмы трансформации ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌ ΠΏΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ†Ρ‹ (Triticum aestivum L.), устойчивых ΠΊ Π³Π΅Ρ€Π±ΠΈΡ†ΠΈΠ΄Ρƒ // ДостиТСния Π½Π°ΡƒΠΊΠΈ ΠΈ Ρ‚Π΅Ρ…Π½ΠΈΠΊΠΈ АПК. 2004. Π’.1. Π‘. 10−12.
  9. И.Π€. Роль Π³Π΅Π½ΠΎΡ‚ΠΈΠΏΠ° ΠΈ ΡΠΎΡΡ‚Π°Π²Π° срСды Π² Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ³Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ каллуса ΠΏΡˆΠ΅Π½ΠΈΡ†Ρ‹ // ВСстник Π‘Π°ΡˆΠΊΠΈΡ€ΡΠΊΠΎΠ³ΠΎ унивСрситСта. 2001. № 2. Π‘. 178−180.
  10. B.C., Π•.А. Калашникова Π•.А., ДСгтярСв Π‘. Π’. ΠΈ Π΄Ρ€. Π‘Π΅Π»ΡŒΡΠΊΠΎΡ…ΠΎΠ·ΡΠΉΡΡ‚Π²Π΅Π½Π½Π°Ρ биотСхнология // 1998. М., Π’Ρ‹ΡΡˆΠ°Ρ школа. Π‘. 154−212.
  11. Ahlandsberg S., Sathish P., Sun Π‘. et al. Green fluorescent protein as a reporter system in the transformation of barley cultivar // Physiologia Plantarum. 1999. V. 107. P. 194−200.
  12. Altpeter F, Baisakh N. Beachy R. et al. Particle bombardment and the genetic enhancement of crops: myths and realities // Molecular Breeding. 2005. V. 15. P. 305−327.
  13. Altpeter F., Vasil V., Srivastava V. et al. Accelerated production of transgenic wheat {Triticum aeslivum L.) plants // Plant Cell Reports. 1996. V. 16. P. 12−17.
  14. Altpeter F., Xu J., Ahmed S. Generation of large numbers of independently transformed fertile perennial ryegrass (Lolium perenne L.) plants of forage-and turf-type cultivars // Molecular Breeding. 2000. V. 6. P. 519−528.
  15. Baeksted Holme /., Brinch-Pedersen H., Lange M. et al. Transfonnation of different barley (Hordeum vulgare L.) cultivars by Agrobacterium lumefaciens infection of in vitro cultured ovules // Plant Cell Reports. 2008. V. 27. P. 18 331 840.
  16. Baruah-Wolff J., Harwood W.A., Lonsdale D.A. et al Luciferase as a reporter gene for transformation studies in rice (Oryza sativa L.) // Plant Cell Reports. 1999. V. 18. P. 715−720.
  17. Bellucci M., De Marchis K, Manmicci R. et al. Jellyfish green fluorescent protein as a useful, reporter for transient expression and stable transformation in Medicago sativa L. // Plant Cell Reports. 2003. V. 22. P. 328−337.
  18. Bregitzer P. Plant regeneration and callus type in barley: effect of genotype and culture medium// Crop Science. 1992. V. 32. P. 1108−1112.
  19. Bregitzer P., Campbell R.D., Wu Y. Plant regeneration from barley callus: effects of 2,4-dichlorphenoxyacetic acid and phenylacetic acid // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1995. V. 43. P. 229−235.
  20. Bregitzer P., Dahleen L.S., Campbell R.D. Enhancement of plant regeneration from embryogenic callus of commercial barley cultivars // Plant Cell Reports. 1998. V. 17. P. 941−945.
  21. Bregitzer P., Lemaux P.G., YuX-H. Transposons and meristematic cultures: Tools to improve transgene stability, agronomic performance, and consumer acceptance // In: Proceedings of National Fusarium Head Blight Forum. Bloomington, MN. 2003. P. 5.
  22. Brettschneider R., Becker D., Lorz H. Efficient transformation of scutellar tissue of immature maize embryos // Theoretical and Applied Genetics. 1997. V. 94. P. 737−748.
  23. Cabanas M.J., Vazquez D., Modolell J. Dual interference of hygromycin B with ribosomal translocation and with aminoacyl-tRNA recognition // European Journal of Biochemistry. 1978. V. 87. P. 21−27.
  24. Callis J, FrommM., Walbot V. Introns increase gene expression in cultured maize cells // Genes & Development. 1987. V. 1. P. 1183−1200.
  25. Castillo A.M., Egana B., Sanz J.M. Somatic embryogenesis and plant regeneration from barley cultivars grown in Spain // Plant Cell Reports. 1998. V. 17. P. 902−906.
  26. Caswel K.L., Leung N.L., Chibbar R.N. An efficient method for in vitro regeneration from immature inflorescence explants of Canadian wheat cultivars 11 Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2000. V. 60. P. 69−73.
  27. Chan M.T., Lee T.M., Chang H.H. Transformation of indica rice (Oryza sativa L.) mediated by Agrobacterium tumefaciens II Plant Cell Physiology. 1992. V. 33. P. 577−583.
  28. Chang Y., von Zitzewitz J., Hayes P.M. et al. High frequency plant regeneration from immature embryos of an elite barley cultivar (Hordeum vulgare L. cv. Morex) // Plant Cell Reports. 2003. V. 21. P. 733−738.
  29. Chawla H.S. Introduction to Plant Biotechnology // Science Publishers. 2002. P. 363−364.
  30. Chen L., Marmey P., Taylor N.J. Expression and inheritance of multiple transgenes in rice plants // Nature Biotechnology. 1998. V. 16. P. 10 601 064.
  31. Cheng M., Fry J.E., Pang S. et al. Genetic transformation of wheat mediated by Agrobacterium tumefaciens // Plant Physiology. 1997. V. 115. P. 971 980.
  32. Cheng T.Y., Smith H.H. Organogenesis from callus culture of Hordeum vulgare L. // Planta. 1975. V. 123. P. 307−310.
  33. Chia T.-F., Chan Y.-S., Chua N.-H. The firefly luciferase gene as a noninvasive reporter for Dendrobium transformation // Plant Journal. 1994. V. 6. P. 441−446.
  34. Cho M.-J., Choi H. W., Buchanan B.B. et al. Inheritance of tissue-specific expression of barley hordein promoter-uidA fusions in transgenic barlety plants // Theoretical and Applied Genetics. 1999. V. 98. P. 1253−1262.
  35. Cho M.-J., Ha C.D., Lemaux P.G. Production of transgenic tall fescue and red fescue plants by particle bombardment of mature seed-derived highly regenerative tissues // Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 1084−1089.
  36. Christensen, A.H., Quail, P.H. Sequence analysis and transcriptional regulation by heat shock of polyubiquitin transcripts from maize // Plant Molecular Biology. 1989. V. 12. P. 619 632.
  37. Christensen A.H., Quail P.H. Ubiquitin promoter-based vectors for highlevel expression of selectable and/or screenable marker genes in monocotyledonous plants // Transgenic Research. 1996. V. 5. P. 213−218.
  38. Christou P., McCabe D.E., Swain W.F. Stable transformation of soybean callus by DNA coated particles // Plant Physiology. 1988. V. 87. P. 671−674.
  39. Conger B. V., Hanning G.E., Gray D.J. Direct embryogenesis from mesophyll cells of orchardgrass // Science. 1983. V. 221. P. 850−851.
  40. CornejoM.J., Luth D., Blankenship K.M. et al. Activity of a maize ubiquitin promoter in transgenic rice // Plant Molecular Biology. 1993. V. 23. P. 567 581.
  41. Crossway A., Oakes J. V., Irvine J.M. et al. Integration of foreign DNA following microinjection of tobacco mesophyll protoplasts // Molecular and General Genetics. 1985. V. 202. P. 179−85.
  42. Dahleen L.S. Improved plant regeneration from barley cultures callus by increased copper levels // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1995. V. 43. P. 267−269.
  43. Dahleen L.S. Donor-Plant environment effects on regeneration from barley embryo-derived callus I I Crop Science. 1999. V. 39. P. 682−685.
  44. Dahleen L.S., Bregitzer P. An improved media system for regeneration rates barley immature embryo-derived callus cultures of commercial cultivars // Crop Science. 2002. V. 42. P. 934−938.
  45. Dahleen L.S., Manoharan M. Transformation of barley with two antifungal genes // In: Proceedings of National Fusarium Head Blight Forum. Bloomington, MN. 2003. P. 12.
  46. Dahleen L.S., Okubara P.A., Blechl A.E. Transgenic Approaches to Combat Fusarium Head Blight in Wheat and Barley // Crop Science. 2001. V. 41. P. 628−637.
  47. Dale P.J., Deambrogio E. A comparison of callus induction and plant regeneration from different explants of Hordeum vulgare II Z. pflanzenphysiol. 1979. V. 94. P. 65−77.
  48. Davis S.J., Viestra RD. Soluble, highly fluorescent protein (GFP) for use in higher plants I I Plant Molecular Biology. 1998. V. 36. P. 521−528.
  49. De Block M, Debrower D., Moens T. The development of a nuclear male sterility system in wheat. Expression of the bamase gene under the control of tapetum specific promoters // Theoretical and Applied Genetics. 1997. V. 95. P. 125−131.
  50. De Greve H., Leemans J., Hernalsteens J.P. et al. Regeneration of normal and fertile plants that express octopine synthase, from tobacco crown galls after deletion of tumour-controlling functions // Nature. 1982. V. 300. P. 752−755.
  51. Elliott A. R., Campbell J. A., Brettell R. I. S. et al. Agrobacterium-mediated transformation of sugarcane using GFP as a screenable marker // Australian Journal of Plant Physiology. 1998. V. 25. P. 739−743.
  52. Elliot A. R, Campbell J.A., Dugdale B. et al. Green fluorescent protein facilitates rapid in vivo detection of genetically transformed plant cells // Plant Cell Reports. 1999. V. 18. P. 707−714.
  53. Fernandez S., Michaux-Ferriere N., Coumans M. The embryogenic response of immature embryo culture of durum wheat (Triticum durum Desf.):histology and improvement by AgN03 // Plant Growth Regulation. 1999. V. 28. P. 147−155.
  54. Filippov M., Miroshnichenko D., Vernikovskaya D., Dolgov S. The effect of auxins, time exposure to auxin and genotypes on somatic embryogenesis from mature embryos of wheat // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2006. V. 84. P. 192−201.
  55. Finer J.J., Vain P., Jones M.W. Development of particle inflow gun for DNA delivery to plant cells // Plant Cell Reports. 1992. V. 11. P. 323−328.
  56. Fromm M.E., Taylor L.P., Walbot V. Stable transformation of maize after gene transfer by electroporation // Nature. 1986. V. 319. P. 791−793.
  57. Funatsuki H., Kuroda M, Lazzeri P.A. Fertile transgenic barley generated by direct DNA transfer to protoplasts // Theoretical and Applied Genetics. 1995. V. 91. P. 707−712.
  58. Ghorbel R, Juarez J., Navarro L. et al. Green fluorescent protein as a screenable marker to increase the efficiency of generating transgenic woody fruit plants // Theoretical and Applied Genetics. 1999. V. 99. P. 350−358.
  59. Gonzalez A., Jimenez A., Vazquez D. et al. Studies on the mode of action of hygromycin B, an inhibitor of translocation in eukaryotes // Biochem. Biophys. Acta. 1978. V. 521. P. 459−469.
  60. Gordon-Kamm W.J., Spencer T.M., Mangana M.L. et al. Transformation of maize cells and regeneration of fertile transgenic plants // The Plant Cell. 1990. V.2. P. 603−618.
  61. Hagio T., Hirabayashi T., Machii H. et al. Production of fertile transgenic barley (Hordeum vulgare L.) plants using the hygromycin-resistance marker // Plant Cell Reports. 1995. V. 14. P. 329−334.
  62. Halfhill M. D, Richards H.A., Mabon SA. et al. Expression of GFP and Bt transgenes in Brassica napus and hybridization and introgression with Brassica rapa II Theoretical and Applied Genetics. 2001. V. 103. P. 659 667.
  63. Hanzel J, Miller J., Brinkmann M. et al. Genotype and media effects on callus formation and regeneration in barley // Crop Science. 1985. V. 25. P. 27−31.
  64. Harper B.K., Mabon S.A., Leffel S.M. et al. Green fluorescent protein as a marker for expression of a second gene in transgenic plants JI Nature Biotechnology. 1999. V. 17. P. 1125−1129.
  65. Harwood W.A., Ross S.M., Cilento P. et al. The effect of DNA/gold particle preparation technique, and particle bombardment device, on the transformation of barley {Hordeum vulgare L.) // Euphytica. 2000. V. 111. P. 67−76.
  66. Harwood W. A, Ross S.M., Bulley S.M. et al. Use of the firefly luciferase gene in a barley (Hordeum vulgare L.) transformation system // Plant Cell Reports. 2002. V. 21. P. 320−326.
  67. Haseloff J., Amos B. GFP in plants I I Trends Genetics. 1995. № 11. P. 328 329.
  68. Hellens R., Mullineaux P., Klee H. A guide to Agrobacterium binary Ti vectors // Trends in plant science. 2000. V. 5. P. 446−451.
  69. Horvath H., Huang J., Wong O. et al. The production of recombinant proteins in transgenic barley grains // PNAS. 2000. V. 97. P. 1914−1919.
  70. Hu W., Cheng C.-L. Expression of Aequorea green fluorescent protein in plant cells // FEBS Letters. 1995. V. 369. P. 331−334.
  71. Hu T., Metz S., Chay C. et al. Agrobacterium-mediated large-scale transformation of wheat (Triticum aestivum L.) using glyphosate selection // Plant Cell Reports. 2003. V. 21. P. 1010−1019.
  72. Hudson L.C., Chamberlain D., Stewart-Jr. C.N. GFP-tagged pollen to monitor pollen flow of transgenic plants // Molecular Ecology Notes: 2001. V. l.P. 321−324.
  73. Hunold R., Bronner R., Hahne G. Early events in microprojectiles bombardment: cell viability and particle location // Plant Journal. 1994. V. 5. P. 593−604.
  74. Ishida Y., Saito H., Ohta S. et al. High efficiency transformation, of maize (Zca mays L.) mediated by Agrobacterium tumefaciens II Nature Biotechnology. 1996. V. 14. P. 745−750.
  75. Jacobsen J., Matthews P., Abbott D. et al. Barley transformation breeding: further progress and remaining problems // Proc. 9th Austral. Barley Techn. Symp. 1999. P. 18−19.
  76. Jahne A., Becker D., Brettschneider R. et al. Regeneration of transgenic, microspore-derived fertile barley // Theoretical and Applied Genetics. 1994. V. 89. P. 525−533.
  77. Jang I.-C., Nahm B.H., Kim J.-K. Subcellular targeting of green fluorescent protein to plastids in transgenic rice plants provides a high-level expression system // Molecular Breeding. 1999. V. 5. P. 453−461.
  78. Jarl C.I. Plant regeneration and transient expression after particle bombardment of different barley {Hordeum vulgare L.) genotypes // Hereditas. 1999. V. 130. P. 83−87.
  79. Jefferson R.A., Kavanagh T.A., Bevan M.W. GUS fusions: P-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants // EMBO Journal. 1987. V. 6. P. 3901−3907.
  80. Jentsch S. The ubiquitin-conjugation system // Annual Review of Genetics. 1992. V. 26. P. 179−207.
  81. Jiang W., Cho M.J., Lemaux P.G. Improved callus quality and prolonged regenerability in model and recalcitrant barley {Hordeum vulgare L.) cultivars // Plant Biotechnology. 1998. V. 15. P. 323−346.
  82. Jordan M.C. Green fluorescent protein as visual marker for wheat transformation//Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 1069−1075.
  83. Kaeppler H.F., Menon G.K., Skadsen R.W. et al. Transgenic oat plants via visual selection of cells expressing green fluorescent protein I I Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 661−666.
  84. Karp A. Origins, causes and uses of variation in plant tissue cultures I I In Vasil I.K., Thorpe T.A. (eds.) Plant cell and tissue culture. Kluwer, Dordrecht. 1994: P. 139−151.
  85. Ke X.-Y., McCormac A.C., Harvey A. et al. Manipulation of discriminatory T-DNA delivery by Agrobacterium into cells of immature embryos of barley and wheat I I Euphytica. 2002. V. 126. P. 333−343.
  86. Khanna H.K., Raina S.K. Elite indica transgenic rice plants expressing modified CrylAc endotoxin of Bacillus thuringiensis show enhanced resistance to yellow stem borer {Scirpophaga incertulas) II Transgenic Research. 2002. V. 11. P. 411−423.
  87. Kikkert J.R. The Biolistic® PDS-1000/He device. Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1993. V. 33. P. 221−226.
  88. King S.P., Kasha K.J. Optimising somatic embryogenesis and particle bombardment of barley {Hordeum vulgare L.) immature embryos. In vitro Cell Development and Biology of Plant. 1994. V. 30. P. 117−123.
  89. Klein T.M., Wolf E.D., Wu R. et al. High-velocity microprojectiles for delivering nucleic acids into living cells. Nature. 1987. V. 327. P. 70−73.
  90. Klein T.M., Jones T.J. Methods of genetic transformation: the gene gun. In: Vasil IK (ed) Molecular Improvement of Cereal Crop. Kluwer Academic. London. 1999. P. 21−42.
  91. Klcova L., Havrlentova M, Farago J. Cultivar and environmental conditions affect the morphogenic ability of barley {Hordeum vulgare L.) scutellum derived calli // Biologia. Bratislava. 2004. № 59/4. P. 501−504.
  92. Kohli A., Gahakwa D., Vain P. et al. Transgene expression in rice engineered through particle bombardment: molecular factors controlling stable expression and transgene silencing // Planta. 1999. V. 208. P. 88−97.
  93. Koprek T., Haensch R., Nerlich A. et al. Fertile transgenic barley of different cultivars obtained by adjustment of bombardment conditions to tissue response // Plant Sciences. 1996. V. 119. P. 79−91.
  94. Koziel M.G., Carozzi N.B., Desai N. Optimizing expression of transgenes with an emphasis on post-transcriptional events // Plant Molecular Biology. 1996. V. 32. P. 393−405.
  95. Krens F.A., Molendijk L., Wullems G.J. In vitro transformation of plant protoplasts with Ti-plasmid DNA. Nature. 1982. V. 296. P. 72−74.
  96. Krysiak C., Mazu’s B., Buchowicz J. Generation of DNA double-strand breaks and inhibition of somatic embryogenesis by tungsten microparticles in wheat// Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1999. V. 58. P. 163−170.
  97. Kumpatla S.P., Hall T.C. Recurrent onset of epigenetic silencing in rice harboring multi-copy transgene//Plant Journal. 1998. V. 14. P. 129−135.
  98. Leckband G., Lorz H. Transformation and expression of a stilbene synthase gene of Vitis vinifera L. in barley and wheat for increased fungal resistance // Theoretical and Applied Genetics. 1998. V. 96. P. 1004−1012.
  99. Leffel S.M., Mabon S.A., Stewart C.N.-Jr. Applications of green fluorescent protein in plants // Biotechniques. 1997. V. 23. P. 912−918.
  100. Lemaux P.G., Cho M.J. Compositions and methods for plant transformation and regeneration II U.S. Patent. 2001. № 6.235.529.
  101. Lemaux P.G., Cho M.-J., Zhang S. et al. Transgenic cereals: Hordeum vulgare L. (barley) // In: Molecular Improvement of Cereal Crops. Ed. I.K.Vasil. Kluwer Academic Publishers. Dordrecht, Netherlands. 1998. P. 255−316.
  102. Lemaux P., Cho M.J., Zhang S. et al. Transgenic cereals: Hordeum vulgare (barley) // In: Vasil I.K. (ed). Molecular improvement of cereal crop. Kluwer Academic. London. 1999. P. 255−316.
  103. Lidon F.Cm., Da Graca Barreiro M., Santos Enriques F. Interactions between biomass production and ethylene biosynthesis in copper treated rice // Journal of Plant Nutrition. 1995. V. 18. P. 1301−1314.
  104. Lonsdale D.M., Lindup S., Moisan L.J. et ah Using firefly luciferase to identify the transition from transient to stable expression in bombarded wheat scutellar tissue // Physiologia Plantarum. 1998. V. 102. P: 447−453.
  105. Luehrsen K.R.- Walbot V. Intron enhancement of gene expression and the splicing efficiency of introns in maize cells // Molecular and General Genetics. 1991. V. 225. P. 81−93.
  106. Luhrs R., Lorz H. Plant regeneration in vitrofrom embryogenic cultures of spring- and winter-type barley, Hordeum vulgare L. // Theoretical and Applied Genetics. 1987. V. 75. P. 16−25.
  107. Magnusson I., Bornmann C.H. Anatomical observation on somatic embryogenesis from scutellar tissues of immature zygotic embryos of Triticum aestivum II Physiologia Plantarum. 1985. V. 63. P. 137−145.
  108. Matthews P.R., Wang M.-B., Waterhouse P.M. et al. Marker gene elimination from transgenic barley, using co-transformation with adjacent 'twin T-DNAs' on a standard Agrobacterium transformation vector // Molecular Breding. 2001. V. 7. P. 195−202.
  109. McCormac A.C., Wu H., Bao M. et al. The use of visual marker genes as cell-specific reporters ofAgrobacterium-mediated T-DNA delivery to wheat (Triticum aestivum L.) and barley (Hordeum vulgare L.) // Euphytica. 1998. V. 99. P. 17−25.
  110. McElroy D., Zhang W., Cao J. et al. Isolation of an efficient actin promoter for use in rice transformation // Plant Cell. 1990. V. 2. P. 163−171.
  111. McElroy D., Blowers A.D., Jenes B. et al. Construction of expression vectors based on the rice actin 1 (ActJ) 5' region for use in monocot transformation //Molecular and General Genetics. 1991. V. 231. P. 150−160.
  112. McGrath P.F., Vincent J.R., Lei C.-H. et al. Coat protein-mediated resistance to isolates of barley yellow dwarf in oats and barley // European Journal of Plant Pathology. 1997. V. 103. P. 695−710.
  113. Miflin B.J. Crop biotechnology: Where is now? // Plant Physiology. 2000. V. j123. P. 17.
  114. Molinier J., Himber C., Hahne G. Use of green fluorescent protein for detection of transformed shoots and homozygous offspring // Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 219−223.
  115. Moore P.J., Moore A.J., Collins G.B. Genotypic and developmental regulation of transient expression of a reporter gene in soybean zygotic cotyledons//Plant Cell Reports. 1994. V. 13. P. 556−560.
  116. Mordhorst A.P., Lorz H. Embryogenesis and development of isolated barley {Hordeum vulgare L.) microspores are influenced by the amount and composition of nitrogen sources in cultyre media // Journal of Plant Physiology. 1993. V. 142. P. 485−492.
  117. Morris P.C., Bryce J.H. Cereal Biotechnology // CRC Press. 2000. P. 278−307.
  118. Mudge S.R., Lewis-Henderson W.R., Birch R.G. Comparison of Vibrio and firefly luciferases as reporter gene systems for use in bacteria and plants. Australian Journal of Plant Physiology. 1996. V. 23. P. 75−83.
  119. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiologia Plantarum. V. 15. P. 473−497.
  120. Murray F., Brettell R, Matthews P. et al. Comparison of Agrobacterium-mediated transformation of four barley cultivars using the gfp and gus reporter genes // Plant Cell Reports. 2003. V. 22. P. 397−402.
  121. Nehra N.S., Chibbar R.N., Leung N. et al. Self-fertile transgenic wheat plants regenerated from isolated scutellar tissues from microprojectile bombardment with two distinct gene constructs // Plant Journal. 1994. V. 5. P. 285−297.
  122. Nhut D.T., Le B.V., Van K.T.T. Somatic embiyogenesis and direct shoot regeneration of rice (Oryza sativa L.) using thin cell layer culture of apical meristematic tissue // Journal of plant physiology. 2000. V. 157. P. 559−565.
  123. Niedz R.F., Sussman M. R, Satterlee J.S. Green fluorescent protein: an in vivo reporter of plant gene expression I I Plant Cell. Reports. 1995.V. 14. P. 403−406.
  124. Norris S.R., Meyer S.E., Callis J. The intron of Arabidopsis thaliana polyubiquitin genes is conserved in location and is a quantitative determinant of chimeric gene expression // Plant Molecular Biology. 1993. V. 21. P. 895−906.
  125. Nuutila A.M., Hamalainen J., Mannonen L. Optimization of media nitrogen and copper concentration for regeneration of green plants from polyembryogenic cultures of barley (Hordeum vulgare L.) // Plant Science. 2000. V. 151. P. 85−92.
  126. Nuutila A.M., Ritala A., Skadsen RW. Expression of fungal thermotolerant endo-l, 4-P-glucanase in transgenic barley seeds during germination // Plant Molecular Biology. 1999. V. 41. P. 777−783.
  127. Oka S., Saito N., Kawaguchi H. Histological observations on initiation and morphogenesis in immature and mature embryo derived callus of barley (Hordeum vulgare L.) // Annals of Botany. 1995. V. 76. P. 487−492.
  128. Oldach K.H., Morgenstern A., Roiher S. et al. Efficient in vitro plant regeneration from immature zygotic embryos of pearl millet Pennisetum glaucum (L.) R. Br. and Sorghum bicolor (L.) Moench. // Plant Cell Reports. 2001'. V. 20. P. 416−421.
  129. Chv D. W., Wood K. V., De Luca M. et al. Transient and stable expression of the firefly luciferase gene in plant cells and transgenic plants // Science. 1986. V. 234. P. 856−859.
  130. Padgette S. R, Kolacz K.H., Delannay X. et al. Development, identification, and characterization of a glyphosphate-tolerant soybean line // Crop Science. 1995. V. 35. P. 1461−1467.
  131. Parveez G.K.A., Chowdhur M.K.U., Saleh N.M. Biological parameters affecting transient gus gene expression in oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) embryogenic calli via microprojectile bombardment // Industrial Crops and Products. 1998. V. 8. P. 7−27.
  132. Patel M, Johnson J.S., Brettell R.I.S. et al. Transgenic barley expressing a fungal xylanase gene in the endosperm of developing grains // Molecular Breeding. 2000. V. 6. P. 113−123.
  133. Pawlowski W.P., Somers D.A. Transgenic DNA integrated into the oat genome is frequently interspersed by host DNA // Proceedings of National Academy of Sciences. 1998. V. 95. P. 12 106−12 110.
  134. Paszkowski J.- Peterhans A.- Bilang R et al. Expression in transgenic tobacco of the bacterial neomycin phosphotransferase gene modified by intron insertions of various sizes // Plant Molecular Biology. 1992. V. 19. P. 825−836.
  135. Pedrosa L.P., Vasill.K. Optimization of somatic embryogenesis and long-term regeneration in callus cultures of diploperennial Teosinte {Zea diploperennis litis, Doebley & Guzman) // Maydica. 1996. V. 41. P. 333−348.
  136. Ponappa T., Brzozowski A.E., Finer J.J. Transient expression and stable transformation of soybean using jellyfish green fluorescent protein (GFP) // Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 6−12.
  137. Prasher D.C. Using GFP to see the light // Trends Genetics. 1995. V. 11. P. 320−323.
  138. Prasher D.C., Eckenrode V.K., Ward W.W. et al. Primary structure of the Aequorea victoria green fluorescent protein // Gene. 1992. V. 111. P. 229 233.
  139. Purnhauser L., Gyulai G. Effect of copper on shoot and Root regeneration in wheat, triticale, rape and tobaco tissue cultures // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1993. V. 35. P. 131−139.
  140. QuaedvliegN.E.M., Schlaman H.R.M., Admiraal P.C. et al. Fusions between green fluorescent protein and P-glucuronidase as sensitive and vital bifiinctional reporters in plants // Plant Molecular Biology. 1998. V. 38. P. 861−873.
  141. Rasco-Gaunt S., Riley A., Barcelo P. et al. Analysis of particle bombardment parameters to optimise DNA delivery into wheat tissues // Plant Cell Reports. 1999. V. 19. P. 118−127.
  142. Rechsteiner M. Natural substrates of the ubiquitin proteolytic pathway // Cell. 1991. V. 66. P. 615−618.
  143. Register J.C., Peterson D.J., Bell P.J. et al. Structure and function of selectable and non-selectable transgenes in maize after introduction by particle bombardment // Plant Molecular Biology. 1994. V. 25. P. 951−961.
  144. RepellinA., BagaM., Jauhar P.P. Genetic enrichment of cereal crops via alien gene transfer: New challenges // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2001. V. 64. P. 159−183.
  145. Rhodes C.A., Pierce D.A., Mettler I.J. et al. Genetically transformed maize plants from protoplasts // Science. 1988. V. 240. P. 204−207.
  146. Richards H.A., Halftiill M.D., Millwood R.J. et al. Quantitative GFP fluorescence as an indicator of recombinant protein synthesis in transgenic plants // Plant Cell Reports. 2003. V. 22. P. 117−121.
  147. Richards H.A., Ruda V.A., Sun H. et al. Construction of GFP-BAR plasmid and its use for switchgrass transformation // Plant Cell Reports. 2001. V. 20. P. 48−54.
  148. Rogers S.O. Benedich A.J. Extraction of total cellular DNA from plants, algae and fungi // In: S.B. Gelvin, R.A. Schilperoort (eds.) Plan Molecular Biology Manual. Dordrecht. Kluwer Academic Press. 1994. P. D 1−8.
  149. Rose A.B., Beliakoff J.A. Intron-mediated enhancement of gene expression independent of unique intron sequences and splicing // Plant Physiology. 2000. V. 122. P. 535−542.
  150. Russell J.A., Roy M.K., Sanford J.C. Physical trauma and tungsten toxicity reduce the efficiency of biolistic transformation // Plant Physiology. 1992. V. 98. P. 1050−1056.
  151. Ryan A.B., Castillo A.M., Valles M.P. et al. Dessicated double-haploid embryos obtained from microspore culture of barley cv. Igri // Plant Cell Reports. 1999. V. 18. P. 924−928.
  152. Sanford J.C. The biolistic process // Trends Biotechnology. 1988. V. 6. P. 299−302.
  153. Sanford J.C., Wolf E.D., Allen N.K. Method for transporting substances into living cells and tissues and apparatus therefor // US Patent #4 945 050. 1990.
  154. Sanford J.C., Smith F.D., Russell J.A. Optimizing the biolistic process for different biological applications // Methods Enzymology. 1993. V. 217. P. 483−509.
  155. Schmitt F., Oakeley E.J., Jost J.P. Antibiotics induce genome-wide hypermethylation in cultured Nicotiana tabacum plants // Journal of Biological Chemistry. 1997. V. 272: 1534−1540.
  156. Schrott M. Selectable marker and reporte genes // In: Potrykus T., Spangenbert Ed. Gene Transfer to Plants. Springer Verlag. Berlin. 1995. P. 325−336.
  157. Scult C.P., Zubko E., Meyer P. Techniques for the removal of marker genes from transgenic plants // Biochemistry. 2002. № 84. P. 1119−1126.
  158. Shan X., Li D., Ou R Thidiazuron promotes in vitro regeneration of wheat and barley // In vitro Cellular and Developmental Biology. 2000. V. 36. P. 207 210.
  159. Sharma V.K., Hansch R, Mendel R. R et al. Mature embryo axis-based high frequency somatic embryogenesis and plant regeneration from multirle cultivars of barley (Hordeum vulgare L.) // Journal of Experimental Botany. 2005b. V. 56. P. 1913−1922.
  160. Sheen J., Hwang S.B., Niwa Y. et al. Green fluorescent protein as a new vital marker for in plant cells // Plant Journal. 1995. V. 8. P. 777−784.
  161. Shimamoto K.} Terada R, Izawa T., Fujimoto H., Fertile transgenic rice plants regenerated from transformed protoplasts // Nature. 1989. V. 338. P. 274−276.
  162. Shillito R. Methods of genetic transformation: electroporation and polyethilene treatment // In: Vasil I.K. (ed.) Molecular improvement of cereal crop. Kluwer Academic. London. 1999. P. 9−20.
  163. Siderov V.A., Kasten D., Pang S.-Z. et al. Stable chloroplast transformation in potato: use of green fluorescent protein as a plastid marker // Plant Journal. 1999. V. 19. P. 209−216.
  164. Stewart C.N.-Jr. The utility of green fluorescent protein in transgenic plants // Plant Cell Reports. 2001. V. 20. P. 376−382.
  165. Stiff C.M., Kilian A, Zhou H. et al Stable transformation of barley callus using biolistic particle bombardment and the phosphinotricin acetyltransferase (bar) gene // Plant, Cell, Tissue and Organ Culture. 1995. V. 40. P. 243−248.
  166. Stoger E., Williams S., Keen D. et al. Molecular characteristics of transgenic wheat and the effect on transgene expression // Transgenic Research. 1998 V. 7. P. 463−471.
  167. Svitashev S., Ananiev E., Pawlowski W.P. et al. Association of transgene integration sites with chromosome rearrangements in hexaploid oat // Theoretical and Applied Genetics. 2000. V. 100. P. 872−880.
  168. Tadesse Y., Sagi L., Swennen R et al. Optimisation of transformation conditions and production of transgenic sorghum {Sorghum bicolor) via microparticle bombardment // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2003. V. 75. P- 1−18.
  169. Terada R, Shimamoto K Expression of CaMV35S-GUS gene in transgenic rice plants // Molecular and General Genetics. 1990. V. 220. P. 389−392.
  170. Tian L., Levee V., Mentag R et al. Green fluorescent protein as a tool for monitoring transgene expression in forest tree species // Tree Physiology. 1999. № 19. P. 541−546.
  171. Tingay S., McElroy D., Kalla R. et al. Agrobacterium (umefaciens-mediated barley transformation // Plant Journal. 1997.'V. 11. P. 1369−1376.
  172. Travella S., Ross S.M., Harden J. el al A comparison of transgenic barley lines produced by particle bombardment and Agrobacterium-mediated techniques // Plant Cell Reports. 2005. V. 23. P. 780−789.
  173. Trifonova A., Madsen S., Olesen A. Agrobacterium-mediated transgene delivery and integration into barley under a range of in vitro culture conditions// Plant Science. 2001. V. 161. P. 871−880.
  174. Tzfira T., Citovsky V. The Agrobacterium-Plant Cell interaction. Taking biology lessons from a bag II Plant Physiology. 2003. V. 133. P. 943−947.
  175. Vain P., Finer K. R, Engler D.E. et al. Intron-mediated enhancement of gene expression in maize (Zea mays L.) and bluegrass (Poa pratensis L.) // Plant Cell Reports. 1996. V. 15. P. 489−494.
  176. Vain P., Worland B., Kohli A. The green fluorescent protein (GFP) as a vital screenable marker in rice transformation // Theoretical and Applied Genetics. 2000. V. 96. P. 164−169.
  177. Valentine L. Agrobacterium tumefaciens and the plant: The David and Goliaf of Modern Genetics // Plant Physiology. 2003. V. 133. P. 948−955.
  178. Van der Geest A. H. M, Petolino J. F. Expression of a modified green fluorescent protein gene in transgenic maize plants and progeny // Plant Cell Reports. 1998. V. 17. P. 760−764.
  179. Vasil V, Castillo A.M., Fromm M.E. et al. Herbicide resistant fertile transgenic wheat plants obtained by microprojectile bombardment of regenerable embryogneic callus // Biotechnology. 1992. V. 10. P. 667−674.
  180. Wan Y., Lemaux P.G. Generation of large numbers of independently transformed fertile barley plants // Plant Physiology. 1994. V. 104. P. 37−48.
  181. Weigel R.C.J., Hughes K.W. Long-term regeneration by, somatic embryogenesis in barley (Hordeum vulgare L.) tissue cultures derived from apical meristem explants // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1985. V. 5. P. 151−162.
  182. Weir B., Gu X., Wang M. et al. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of wheat using suspension cells as model system and green fluorescent protein as a visual marker // Australian Journal of Plant Physiology. 2001. V. 28. P. 807−818.
  183. Welsh S., Kay S.A. Reporter gene expression for monitoring gene transfer // Current Opinion on Biotechnology. 1997. V. 8. P. 617−622.
  184. Wilmhelson A., P.T. Kallio, K.-M. Oksman-Caldentey et al. Heterologous expression of Vitreoscilla haemoglobinin barley {Hordeum vulgare) II Plant Cell Reports. 2007. V. 26. P: 1773−1783.
  185. Yao Q.A., Kasha K.J. Potential of biolistic transformation of barley microspores based on viability and transient p-glucoronidase activity // Genome. 1997. V. 40. P. 639−643.
  186. Yu H., Kumar P. P. Post-transcriptional gene silencing in plants by RNA // Plant Cell Reports. 2003. V. 22. P. 167−174.
  187. Zhang W., Wu R. Efficient regeneration of transgenic plants from rice protoplasts and correctly regulated expression of the foreign genes in plants // Theoretical and Applied Genetics. 1988. V. 76. P. 835−840.
  188. ZiauddinA., Kasha KJ. Long-term callus cultures of diploid barley {Hordeum vulgare L.) I. Auxin effects on culture initiation and maintenance // Euphytica. 1990a. V. 48. P. 171−176.
  189. Ziauddin A., Kasha K.J. Long-term callus cultures of diploid barley {Hordeum vulgare L.) II. Effect of auxins on chromosomal status of cultures and regeneration of plants // Euphytica. 1990b. V. 48. P. 279−286.
  190. Zupan J., Mulh T.R., Draper O. et al. The transfer of DNA from Agrobacterium tumrfaciens into plants: a feast of fundamental insights // Plant Journal. 2000. V. 23. P. 11−28.
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ