Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Клинико-лабораторные особенности сифилиса у беременных в современных условиях

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Результаты работы доложены на заседании Санкт-Петербургского отделения Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов им. И. И. Мечникова (2004), Юбилейной научной конференции, посвященной 80-летию кафедры микробиологии Военно-медицинской академии (С.-Петербург, 2004), Научной конференции Российско-Шведского проекта «Контроль и профилактика инфекций… Читать ещё >

Клинико-лабораторные особенности сифилиса у беременных в современных условиях (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Страница
  • СОКРАЩЕНИЯ
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Актуальность сифилиса беременных
    • 1. 2. Особенности патогенеза сифилиса у беременных
    • 1. 3. Социальные, клинические и эпидемиологические особенности сифилиса на фоне беременности
    • 1. 4. Методы микробиологической диагностики сифилиса и их особенности на фоне беременности
    • 1. 5. IgM-серология сифилиса
    • 1. 6. Перспективные направления преодоления трудностей диагностики сифилиса у беременных
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Характеристика обследованных пациентов
    • 2. 2. Общеклинические лабораторные исследования крови и мочи
    • 2. 3. Биохимические исследования сыворотки крови
    • 2. 4. Серологические реакции
    • 2. 5. Характеристика использованных антигенов Т. pallidum
    • 2. 6. Конъюгаты на основе моноклональных антител, использованные в ИФА
    • 2. 7. Определение показателей специфического гуморального иммунитета
    • 2. 8. Статистическая обработка результатов исследования
  • Глава 3. Социальная, клиническая и лабораторная характеристика беременных
    • 3. 1. Социальная характеристика обследованных
    • 3. 2. Клиническая характеристика обследованных
    • 3. 3. Характеристика результатов лабораторных исследований
  • Глава 4. Результаты серологического обследования беременных
    • 4. 1. Результаты обследования пациентов в иммуноферментном анализе
      • 4. 1. 1. Изучение динамики противотрепонемных антител в процессе специфического лечения
      • 4. 1. 2. Результаты обследования пациентов с диагнозом сифилис и серологической резистентностью в реакциях на сифилис
    • 4. 2. Результаты использования IgM-РИФабс
    • 4. 3. Обоснование схемы серологического обследования беременных с подозрением на сифилис

1 .

Актуальность темы

:

Последние годы в России и других странах СНГ характеризуются значительным ростом заболеваемости сифилисом, удельный вес которого в структуре ИППП составляет 20,5%. В течение 90-х годов в России заболеваемость сифилисом возросла в 60 раз [40]. За последние годы уровень официально регистрируемой заболеваемости сифилисом по сравнению с серединой 90-х годов характеризовалась некоторым снижением. Тем не менее, динамика изменения темпов роста отдельных форм сифилиса, а также научные исследования позволяют прогнозировать очередной рост заболеваемости [34, 37].

Особенную настороженность вызывает неуклонный рост случаев сифилиса среди беременных и как следствие — увеличение риска инфицирования новорожденных [294]. Неслучайно, динамика роста заболеваемости врожденным сифилисом аналогична динамике удельного веса беременных в структуре больных сифилисом женщин [58]. По данным статистических исследований у трети беременных сифилис регистрируется во второй половине беременности. Общепризнанно, что вероятность развития врожденной патологии напрямую зависит от сроков лечения беременной больной сифилисом [34].

В случае подозрения на инфицирование беременной женщины возбудителем сифилиса, которое протекает без клинических проявлений, возникает как минимум два проблемных вопроса. Во-первых, позитивные серологические реакции на сифилис не всегда носят абсолютный характер [20]. В ряде случаев возможно формирование ложноположительных реакций. В других ситуациях положительные результаты лабораторных исследований могут быть следствием инфекции, перенесенной ранее [60]. Во-вторых, всегда необходимо определять необходимость проведения и объем медикаментозной терапии, что является при подобных обстоятельствах весьма непростой задачей.

В таких условиях большое значение приобретает эффективная лабораторная диагностика данного заболевания. Множественность методов серологической диагностики вызывает на практике сложности интерпретации их результатов при совместной постановке [40]. Научные исследования, проведенные в течение последних лет, демонстрируют существенные преимущества иммунофер-ментного анализа (ИФА) в решении различных проблемных вопросов при сифилисе [30, 65]. Кроме того, перспективны методы выявления противотрепо-немных иммуноглобулинов класса IgM, широкому распространению которых препятствует отсутствие технически простых методов разделения фракций IgG и IgM в исследуемых сыворотках [12, 13]. Разработка доступных для широкого внедрения методов элиминации из исследуемых сывороток крови иммуноглобулинов класса G для последующего выявления специфических IgM-антител, является по-прежнему актуальной [40]. Одним из возможных направлений совершенствования в этой области является использование методов аффинной хроматографии на основе специфических белков-рецепторов стрептококков.

В связи с вышеизложенным целью нашего исследования явилось выявление социальных, клинических и лабораторных особенностей у беременных с подозрением на сифилис в современных условиях.

Задачи исследования:

1. Сформировать панель парных сывороток крови от беременных с подтвержденным диагнозом активного сифилиса, беременных с диагнозом сифилис в анамнезе и диагнозом серорезистентность, а также здоровых лиц.

2. Изучить и сравнить социальные, клинические и лабораторные особенности у больных сифилисом в период беременности.

3. Изучить особенности структуры и динамики противотрепонемных антител у беременных с активным сифилисом и серологической резистентностью.

4. Установить диагностическую информативность авторской модификации IgM-РИФабс.

5. Обосновать алгоритм диагностических мероприятий при выявлении сифилиса у беременных или подозрении на него.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. При активном сифилисе у беременных (клинически выраженном или скрытом) в пуле сывороточных противотрепонемных иммуноглобулинов присутствуют антитела как минимум к трем трепонемным антигенам из числа ли-попротеинов с молекулярной массой 15, 17, 41 и 47 кД.

2. При серологической резистентности в реакциях на сифилис, не связанной с сохранением в организме пациента Т. pallidum, в сыворотке крови пациентов выявляются противотрепонемные иммуноглобулины не более чем к двум липопротеинам (17 и 47 кД).

Научная новизна.

Получены современные данные об отсутствии существенных различий в социальных, клинических и лабораторных данных между беременными с диагнозом активного сифилиса и с сохранившимися положительными серологическими реакциями после ранее перенесенного заболевания.

Впервые для диагностики сифилиса у беременных использован метод IgM-РИФабс., основанный на способе предварительного истощения сывороток крови от иммуноглобулинов класса G с помощью стрептококкового белка G.

Новыми научными данными являются сведения о различиях в диагностической значимости у больных сифилисом противотрепонемных антител, направленных к липопротеиновым и липополисахаридным антигенам Т. pallidum.

Практическое значение.

В результате исследований сформулированы рекомендации по ведению беременных с подтвержденным диагнозом сифилис или с подозрением на заболевание. Выявлены клинико-лабораторные критерии, позволяющие дифференцировать скрытое течение сифилиса и состояния серологической резистентности после перенесенной люэтической инфекции, не связанные с сохранением жизнеспособного возбудителя.

Апробация работы.

Результаты работы доложены на заседании Санкт-Петербургского отделения Всероссийского научно-практического общества эпидемиологов, микробиологов и паразитологов им. И. И. Мечникова (2004), Юбилейной научной конференции, посвященной 80-летию кафедры микробиологии Военно-медицинской академии (С.-Петербург, 2004), Научной конференции Российско-Шведского проекта «Контроль и профилактика инфекций, передаваемых половым путем» (Санкт-Петербург, 2004).

Результаты исследований внедрены в учебный процесс и диагностическую работу кафедр кожных и венерических болезней и микробиологии Военно-медицинской академии.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация изложена на 127 страницах машинописного текста и состоит из введения, 4 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций. Указатель литературы включает 73 источников на русском языке и 237 на иностранных языках. В текст включены 22 таблицы и 11 рисунков.

ВЫВОДЫ.

1. Беременные с диагнозом вторичный и ранний скрытый сифилис характеризуются отсутствием значимых различий по социальным, клиническим и лабораторным показателям с больными сифилисом.

2. Беременных с диагнозом ранний скрытый сифилис не представляется возможным дифференцировать от беременных с сохранившимися положительными реакциями на сифилис по данным анализа социальных, клинических и рутинных лабораторных методов исследований.

3. Пациенты с диагнозом вторичный и ранний скрытый сифилис проявляют выраженную иммунологическую реактивность в ИФА с искусственными аналогами трепонемных антигенов. В сыворотке крови больных присутствуют специфические иммуноглобулины как минимум к трем липопротеинам из числа белков с молекулярной массой 15, 17, 41 и 47 кД.

4. Группа беременных с клиническим диагнозом «серорезистентность» отличается гетерогенностью по результатам исследований в ИФА. В 42,3% случаев в сыворотке крови пациентов определяются антитела не более чем к двум трепонемным антигенам (17 и 47 кД), что позволяет исключить возможность сохранения в их организме жизнеспособного возбудителя.

5. Результаты использования авторской модификации IgM-РИФабс. характеризуются противоречивостью. При вторичном и раннем скрытом сифилисе в ряде случаев получены ложноотрицательные результаты, что не позволяет рекомендовать его для внедрения в клиническую практику и требует проведения дополнительных исследований.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

Для выявления факта сохранения в организме пациента жизнеспособного возбудителя сифилиса целесообразно использовать следующие условия проведения ИФА: а) При получении иммуносорбента — концентрация антигенов р15 — 5 мкг/мл, р 17 — 4 мкг/мл, Sif-13 — 5 мкг/мл, р47 — 5 мкг/млдлительность сорбции 24 часа при 4 °C, рН сорбирующего карбонатно-бикарбонатного буферного раствора 9,6- б) При взаимодействии исследуемых проб с иммуносорбентом — разведение исследуемой сыворотки крови 1:10, экспозиция 60 мин при 37°Св) При выявлении комплекса антиген-антитело — специфический конъюгат на основе МКАТ к иммуноглобулинам IgGl, IgG3, IgG4, IgM, экспозиция 60 мин при 37 °C.

Для промывки планшетов в перерывах между основными этапами реакции необходимо использовать фосфатно-солевой буфер, содержащий 0,15 М NaCl и 0,1% твин-20 (ФСБ). Для разведения исследуемых проб при работе с рекомби-нантными антигенами применяется ФСБ, содержащий 360 мкг/мл лизата клеток-продуцентов антигена р15, р17 и р47 (E.coli).

При выявлении в сыворотке крови 4 и менее серологических маркеров из 16-ти возможность сохранения жизнеспособного возбудителя исключается, а специфическое лечение нецелесообразно. Обнаружение 7 и более серологических маркеров в ИФА указывает на высокую вероятность сохранения возбудителя и необходимость специфической терапии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.А., Тихонова Л. И., Машкиллейсон А. Л. и др. Заболеваемость сифилисом: опыт истории, эпидемиологический анализ, прогнозы // Заболевания передаваемые половым путем. 1995. — № 4. — С. 22−25.
  2. И.А., Колобов А. В., Соколовский Е. В. Некоторые медико-социальные аспекты в группе беременных, страдающих сочетанной инфекционной патологией // Русский журнал ВИЧ/СПИД и родственные проблемы 2000 — т.4, № 2. — С. 46−50.
  3. В.Н. Иммунолюминесцентный анализ в диагностике сифилиса // Иммунолюминисценция в медицине. М.: Мед., 1977. — С. 72−79.
  4. Н.И., Иваненко И. П., Громыко А. И., Тихонова Л. И. Современная ситуация по болезням, передающимися половым путем, в России и тенденции ее развития // Эпидемиология и инфекционные болезни. 1999. -№ 1. — С.4−7.
  5. Т.В., Топоровский Л. М., Егоров Г. И. и др. К характеристике современного скрытого сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. -1981.-№ 7.-С. 45−50.
  6. В.Г. Иммунология. М.: Нива России, 2000. — 488 с.
  7. В.Н., Кирмане Р. Э., Первушина Н. В., Шур А.А. Некоторые клини-ко-иммунологические аспекты серорезистентного сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1991. — № 9. — С. 32−33.
  8. Е.А. Конструирование диагностических иммуносорбентов с использованием искусственных аналогов трепонемных антигенов: Авто-реф. дис. канд. биол. наук Санкт-Петербург, 2002. — 20 с.
  9. А.А., Кочнева Р. В., Сиволобова Г. Ф. и др. Исследование сывороток больных сифилисом методом иммуноферментного анализа с использованием рекомбинантных антигенов // Иммунология. 1998. — № 4. -С. 20−23.
  10. Ю.Гражданцева А. А., Сиволобова Г. Ф., Урманов И. Х. и др. Клонирование и экспрессия в E. coli основных антигенов Treponema pallidum и исследование их иммунохимических свойств // Иммунология. 1998. — № 4. — С. 1720.
  11. П.Грязева И. В. Получение моноклональных антител к легким цепям иммуноглобулинов человека и их использование в иммунодиагностике: Авто-реф. Дис.. канд. биол. наук. СПб., 1996. — 21 с.
  12. С.Н. Особенности течения и исходы беременности у женщин, больных сифилисом: Дис.. канд. мед. наук. СПб, 2000. — 148 с.
  13. З.Данилов С. И. Критерии диагностики, иммунокоррекция и реабилитация больных с серорезистентностыо после лечения сифилиса: Автореф. Дис.. д-ра мед. наук. СПб, 1996. — 38 с.
  14. .Б., Егоров A.M. Современное состояние и перспективы развития иммуноферментного анализа // Журн. Всесоюзн. хим. об-ва. 1982. -Т.27, № 4. — С. 82−89.
  15. Г. А., Брагина Е. Е. Современные методы лабораторной диагностики сифилиса: Часть 1 // Вестн. дерматологии и венерологии. 1996. -№ 2. — С. 29−32.
  16. Г. А., Брагина Е. Е. Современные методы лабораторной диагностики сифилиса: Часть 2 // Вестн. дерматологии и венерологии. 1996. -№ 3. — С.33−38.
  17. Е.Б., Бельгесов Н. В., Тихменева И. Б. и др. Обследование доноров крови в профилактике сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. -1996. -№ 3. С. 39−40.
  18. .И. Особенности клинического течения сифилиса, совершенствование методов его диагностики и лечения: Автореф. Дис.. д-ра мед. наук. -М., 1990.- 32 с.
  19. A.M. Совершенствование диагностики сифилиса на основе модифицированного иммуноферментного анализа: дис. канд. мед. наук -Санкт-Петербург, 2000. 202 с.
  20. И.И., Яровинская Б. Г., Галеева А. С. Тактика врача при сохранении положительных серореакций после лечения ранних форм сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1984. — № 11. — С. 57−61.
  21. Иммуноферментный анализ для диагностики сифилиса (пособие для врачей-серологов) // сост. Дмитриев Г. А., Беднова В. Н., Киселёва Г. А. и др. -М., 1998. 16 с.
  22. Инструкция по постановке иммуноферментного анализа на поверхности твердофазного носителя (ИФА) для серо- и ликвородиагностики сифилиса. Утверждена Минздравом СССР 3.11.87 г. за № 10−11/129. М., 1987.
  23. С., Сильм X., Виндиревских Г., Шевчук О. Усовершенствование методов диагностики сифилиса при помощи определения антител к специфическим белкам возбудителя // Заболевания передаваемые половым путем. 1998. -№ 4. -С.21−22.
  24. С.А., Калинина Н. М. Иммунология для врача. СПб.: Гиппократ, 1998.- 156 с.
  25. Ким Э. Г. Особенности иммуногенетики и иммуногенеза при сифилисе: Автореф. Дис. д-ра мед. наук. М., 1992. — 32 с.
  26. В.Б. Моноклональные антитела против иммуноглобулинов человека: Дис.. д-ра мед. наук. СПб, 1996. — 296 с.
  27. А.А., Ковалев В. И. Случай вторичного свежего сифилиса с редкой клинической картиной // Вестн. дерматологии и венерологии. 1991. — № 3. — С. 72−73.
  28. А.В. Разработка и клиническая оценка методики постановки иммуноферментного анализа на поверхности твердофазного носителя для серодиагностики сифилиса: Автореф. дис.. канд. мед. наук. М. — 1986. -16 с.
  29. А.В. Разработка иммуноферментных тест-систем для выявления антител к вирусам простого герпеса и цитомегалии и их апробация на клиническом материале: Автореф. Дис.. канд. биол. наук. СПб., 1998. -19 с.
  30. И.Т., Мельникова В. Г., Андреева Е. Н. и др. Сравнительное изучение результатов серологической диагностики Лйам-боррелиоза в реакции непрямой иммунофлюоресценции и иммуноферментном анализе // Клин, лаб. диагностика. 1999. — № 3. — С. 34−37.
  31. O.K., Ловенецкий A.H. Эпидемиология, клиника, диагностика и лечение сифилиса // Руководство для врачей, М., 2000 62 с.
  32. O.K., Тактамышева Э. Ш. Современный нейросифилис: клиника, диагностика, лечение // Рус. мед. журн. 1998. — Т. 6, № 15. — С.981−984.
  33. В.Ф., Борисенко К. К., Потекаев H.C. и др. Динамика трепонемоспе-цифической иммуноглобулинемии при ранних формах сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1990. — № 8. — С. 38−42.
  34. Г. И. Влияние сифилиса на течение беременности и внутриутробное развитие плода // Дерматолопя и венеролопя. 2002. — № 4. — С. 41−43.
  35. М.В. Эволюция сифилиса. М.: Мед., 1987. — 157 с.
  36. Н.М. Актуальные вопросы серодиагностики сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1981. — № 8. — С. 22−26.
  37. Н.М., Васильев М. М. О серорезистентности при сифилисе // Вестн. дерматологии и венерологии. 1983. — № 4. — С. 21−29.
  38. Н.М., Делекторский В. В. Атлас электронной микроскопии некоторых представителей рода трепонем, рода нейссерия и трихомонад. М., Медицина, 1974. 53 с.
  39. Парасифилитические заболевания // Явкин В. М., Милич М. В., Мирахме-дов У.М., Сазонова Л. В. Ташкент: Мед., 1980 — 168 с.
  40. И.И. Возможности полимеразной цепной реакции в детекции бледной трепонемы у больных сифилисом: Автореф. дис. канд. мед. наук -Москва, 2002.- 18 с.
  41. В.О. Функциональные свойства клеточных структур культу-ральных Treponema pallidum // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1997. — № 3. — С. 11−14.
  42. В.О., Беднова В. Н., Угримов С. А., Дадалка С. Ф. Новый специфический сорбент для РИФ-абс при серодиагностике сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1995. — № 2. — С. 15−16.
  43. А. Анализ иммунологических данных // Методы исследования в иммунологии: Пер. с англ. М., 1981. — С. 428−467.
  44. Н.И., Ермолин Г. А., Чалов В. В. и др. Применение иммунофер-ментного анализа для регистрации специфических IgM-антител у больных сифилисом //Вестн. дерматологии и венерологии. 1990. — № 11. — С. 12−16.
  45. Н.И., Ермолин Г. А., Чалов В. В. и др. Применение иммунофер-ментного анализа для регистрации специфических суммарных антител у больных сифилисом // Вестн. дерматологии и венерологии. 1991. — № 8. -С. 25−27.
  46. Г. Ф., Вербенко Е. В., Петрова И. Л. и др. К вопросу о серорези-стентном сифилисе // Вестн. дерматологии и венерологии. 1983. — № 6. -С. 25−27.
  47. И.В., Пименова Г. Н., Куполев В. Н. Метод статистической обработки результатов иммуноферментного анализа // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1985. — № 5. — С. 44−48.
  48. В.Б. Применение твердофазного иммуноферментного анализа для диагностики псевдотуберкулеза: Дис.. канд. мед. наук. Л., 1986. -180 с.
  49. В.Б., Вербов В. Н. Применение иммуноферментного анализа для диагностики инфекционных заболеваний. СПб., 1997. — 24 с.
  50. Ю.К., Борисенко К. К., Глозман В. Н. Некоторые аспекты современного течения сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1975. -№ 9. — С. 40−45.
  51. B.C., Коваленко В. И. Еще раз к вопросу о лечении больных скрытыми формами сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. -1991. -№ 10. С. 67−70.
  52. Т.С., Чайка Н. А. Эпидемиологическая характеристика заболеваний, передаваемых половым путем, (Санкт-Петербург, 1995 год). СПб., 1996.- 32 с.
  53. Современные особенности клиники и течения сифилиса, ошибки его диагностики (методические рекомендации) // Сост. К. К. Борисенко, И. Н. Винокуров, Н. С. Потекаев и др. М., 1989 — 19 с.
  54. Е.В. Серологическая резистентность после лечения сифилиса (причины и факторы развития, профилактика и лечение): Автореф. Дис.. д-ра мед. наук. СПб, 1995. — 40 с.
  55. Е.В., Омельченко B.C., Лебедев А. Д. Особенности распределения макромолекулярных структур сыворотки крови больных сифилисом //Вестн. дерматологии и венерологии. 1994. — № 5. — С. 16−21.
  56. М.Е., Гракович М. И., Данилов С. И. Значение определения фракции IgM в диагностике сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1994. -№ 1. — С. 9−11.
  57. М.Е., Смирнова Т. С. Социально-эпидемиологические аспекты ЗППП в Санкт-Петербурге // Материалы XXXI научно-практической конференции дерматовенерологов, акушер-гинекологов и урологов Санкт-Петербурга. 1996. — С.4−9.
  58. А.В. Клинико-иммунологические особенности течения сифилитической инфекции в современных условиях: Дис.. канд. мед. наук. -СПб. 1997. — 123 с.
  59. И.Н. Оптимизация диагностики и лечения раннего нейросифили-са: Автореф. дис. канд. мед. наук Санкт-Петербург, 2001. — 18 с.
  60. Теория и практика иммуноферментного анализа // А. М. Егоров, А. П. Осипов, Б. Б. Дзантиев, Е. М. Гаврилова М.: Высш. шк., 1991. — 288 с.
  61. Г. Ф. Реакция пассивной гемагглютинации в серодиагностике сифилиса: Автореф. Дис.. д-ра мед. наук. М., 1991. — 16 с.
  62. Г. Ф., Басова Н. Н., Беднова В. Н. Реакция пассивной гемагглютинации в серодиагностике сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1985. -№ 3. — С. 21−25.
  63. В.К. ИФА-диагностика сифилиса (Информационно-методическое пособие). Кольцово, 1998. — 31с.
  64. Топоровский J1.M., Глебова Л. И. Ошибки в диагностике сифилиса // Вестн. дерматологии и венерологии. 1986. — № 10. — С. 75−76.
  65. М.П. О серологической устойчивости после лечения больных сифилисом // Вестн. дерматологии и венерологии. 1984. — № 7. — С. 32−34.
  66. М.П. Ошибки в диагностике сифилиса. Киев: Здоров’я, 1983 -134 с.
  67. Ajayi NA, Marven S, Kaschula RO, Millar A, Rode H. Intestinal ulceration, obstruction, and haemorrhage in congenital syphilis // Pediatr. Surg. Int. 1999. -Vol.15, № 5−6.-P.391−393.
  68. Akins D.R., Purcell A.K., Mitra M.M. et al. Lipid modification of the 17-kilodalton membrane immunogen of Treponema pallidum determines macrophage activation as well as ampliphicity // Infect. Immunol. 1993. — Vol.61, № 4. — P. 1202−1210.
  69. Alexander JM, Sheffield JS, Sanchez PJ, Mayfield J, Wendel GD Jr. Efficacy of treatment for syphilis in pregnancy // Obstet. Gynecol. 1999. — Vol.93, № 1. — P.5−8.
  70. Antoni G., dal Masco G., Berti B. et al. Detection of antigenic determinants in the Treponema pallidum membrane protein TmpA using overlapping synthetic peptides //J. Immunol. Methods. 1996. — Vol.189, № 1. — P. 137−140.
  71. Augenbraun MH, Rolfs R. Treatment of syphilis, 1998: nonpregnant adults // Clin. Infect. Dis. 1999. — Vol.28 Suppl 1. -P.21−28.
  72. Backhouse J.L., Hudson B.J. Evaluation of immunoglobulin G enzyme immunoassay for serodiagnosis of yaws // J. Clin. Microbiol. 1995. — Vol.33, № 7. -P. 1875−1878.
  73. Barsanti C, Valdetaro F, de Albuquerque Diniz EM, Succi RC. Diagnostic of congenital syphilis: a comparison between serological tests in mothers and their newborns // Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 1999. — Vol.32, № 6. — P.605−611
  74. Baughn R.E., Demecs M., Taber L.H., Musher D.M. Epitope mapping of B-cell determinants on the 15-kilodalton lipoprotein of Treponema pallidum (Tppl5) with synthetic peptides // Infect. Immun. 1996. — Vol.64, № 7. — P. 2457−2466.
  75. Baughn R.E., Jorizzo J.L., Adams C.B., Musher D.M. Ig class and IgG subclass responses to Treponema pallidum in patients with syphilis // J. Clin. Immunol. -1988. Vol.8, № 2. -P. 128−139.
  76. Baughn R.E., McNeely M.C., Jorizzo J.L., Musher D.M. Characterization of the antigenic determinants and host components in immune complexes from patients with secondary syphilis // J. Immunol. 1986. — Vol. 136, № 4. — P. 14 061 414.
  77. Beksinska ME, Mullick S, Kunene B, Rees H, Deperthes B. A case study of antenatal syphilis screening in South Africa: successes and challenges // Sex. Transm. Dis. 2002. — Vol.29, № 1. — P.32−37.
  78. Belisle Y.T., Brandt M.E., Radolf J.D., Norgard M.V. Fatty acids Treponema pallidum and Borrelia burgdorferi lipoproteins // J. Bacteriol. 1994. — Vol.176, № 8.-P. 2151−2157.
  79. Benzick AE, Wirthwein DP, Weinberg A, Wendel GD Jr, Alsaadi R, Leos NK, Zeray F, Sanchez PJ. Pituitary gland gumma in congenital syphilis after failed maternal treatment: a case report // Pediatrics. 1999. — Vol.104, № 1. — P. e4.
  80. Bernardes J. The Jarisch-Herxheimer reaction and fetal monitoring changes in pregnant women treated for syphilis // Obstet. Gynecol. 1999. — Vol.93, № 4. -P.631−632.
  81. Blanco D.R., Champion C.L., Miller J.N., Lovett M.A. Antigenic and structural characterisation of Treponema pallidum (Nicols strain) endoflagella // Infect. Immun. 1986.-Vol.56, № 1.-P. 168−175.
  82. Blanco D.R., Miller J.N., Lovett M.A. Surface antigens of the syphilis spirochete and their potential as virulence determinants // Emerg. Infect. Dis. 1997. — Vol.3, № 1. — P. 11−20.
  83. Borenstein L.A., Radolf J.D., Fehniger Т.Е. et al. Immunisation of rabbits with recombinant Treponema pallidum surface antigen 4D alters the course of experimental syphilis // J. Immunol. 1988. — Vol.140, № 7. — P. 2415−2421.
  84. Borobio M.V., Martin E., Perea E.J. Specificity of three serological test for syphilis: VDRL, FTA-abs and TPHA in healthy people, pregnant women and diabetics // Eur. J. Sex. Transmit. Dis. 1984. — Vol.1, № 3−4. — P. 155−158.
  85. Bouis D.A., Popova T.G., Takashima A., Norgard M.V. Dendritic cells phago-cytose and are activated by Treponema pallidum // Infect. Immun. 2001. -Vol.69, № 1.-P. 518−528.
  86. Bourell K.W., Shoulz W., Norgard M.V., Radolf J.D. Treponema pallidum rare outer membrane proteins: analysis of mobility by freeze-fracture electron microscopy// J. Bacteriol. 1994. — Vol.176, № 6. — P. 1598−1608.
  87. Brauner A., Carlsson В., Sundlcvist G., Ostenson C.G. False-positive treponemal serology in patients with diabetes mellitus // J. Diabetes Complications. -1994.-Vol.8, № 1,-P. 57−62.
  88. Brocklehurst P. Update on the treatment of sexually transmitted infections in pregnancy-1 // Int J STD AIDS. 1999 Sep-10(9):571−8- quiz 579−81.
  89. Bromberg K., Rawstron S., Tannis G. Diagnosis of congenital syphilis by combining Treponema pallidum-specific IgM detection with immunofluorescent antigen detection for T. pallidum // J. Infect. Dis. 1993. — Vol.168, № 1. — P. 238 242.
  90. Bromberg K., Rawstron S., Tannis G. Diagnosis of congenital syphilis by combining Treponema pallidum-specific IgM detection with immunofluorescent antigen detection for T. pallidum II J. Infect. Dis. 1993. — Vol. 168, № 1. — P. 238−242.
  91. Burstain J.V., Grimprel E., Lukehart S.A. et al. Sensitive detection of Treponema pallidum by using the polymerase chain reaction // J. Clin. Microbiol. -1991. Vol.29, № 1. — P. 62−69.
  92. Byrne R.E., Laslca S., Bell M. et al. Evaluation of a Treponema pallidum western immunoblot assay as a confirmatory test for syphilis // J. Clin. Microbiol. 1992. — Vol.30, № 1. — P. 115−122.
  93. Carlsson В., Hanson II.S., Wassermann J., Brauner A. Evaluation of the fluorescent antibody-absorption (FTA-Abs) test specificity // Acta Derma-tovenerol. 1991. — Vol.71, № 4. — P.306−311.
  94. Castro R.R., Prieto E.S., Santo I. et al. Evaluation of the passive particle agglutination test in the serodiagnosis and follow-up of syphilis // Am. J. Clin. Pathol. 2001. — Vol.116, № 4. — P. 581−585.
  95. Chamberlaine N.R., Radolf J.D., Hsu P. Genetic and physicochemical characterisation of the recombinant DNA-derived 47-kilodalton surface immunogen of Treponema pallidum subsp. pallidum // Infect. Immunol. 1988. — Vol.56, № 1. — P. 71−78.
  96. Chung K.Y., Lee M.G., Lee I.B. Detection of Treponema pallidum by polymerase chain reaction in the cerebrospinal fluid of syphilis patient // Yonci. Med. J. 1994. — Vol.35, № 2. — P. 190−197.
  97. Connor N, Roberts J, Nicoll A. Strategic options for antenatal screening for syphilis in the United Kingdom: a cost effectiveness analysis // J. Med. Screen. 2000. — Vol.7, № 1. — P.7−13.
  98. Conover CS, Rend CA, Miller GB Jr, Schmid GP. Congenital syphilis after treatment of maternal syphilis with a penicillin regimen exceeding CDC guidelines // Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 1998. — Vol.6, № 3. — P. 134−137.
  99. Cox D.L., Chang P., Mc Dowall A.W., Radolf J.D. The outer membrane, not a coat of host proteins, limits antigenicity of virulent Treponema pallidum // Infect. Immun. 1992. — Vol.60, № 3. — P. 1076−1083.
  100. Crino JP. Ultrasound and fetal diagnosis of perinatal infection // Clin. Obstet. Gynecol. 1999. — Vol.42, № 1. — P.71−80.
  101. Cummings M.C., Lukehart S.A., Marra C. et al. Comparison of methods for the detection of Treponema pallidum in lesions of early syphilis // Sex. Transm. Dis. 1996. — Vol.23, № 5. — P. 366−369.
  102. De Majo E., Bianchini G., Parri R et al. Evaluation of a competitive enzyme immunoassay in screening for syphilis // New Microbiol. 1996. — Vol.19, № 1. -P. 31−38.
  103. Delport SD, van den Berg JH. On-site screening for syphilis at an antenatal clinic // S. Afr. Med. J. 1998. — Vol.88, № 1. — P.43−44.
  104. Dettori G., Gillo R., Mara G. et al. Evaluation of Western immunoblotting technique in the serological diagnosis of human syphilitic infections // Eur. J. Epidemiol. 1989. — Vol.5, № 1. — P. 22−30.
  105. Dobson S.R., Taber L.H., Baughn R.E. Characterisation of the components in circulating immune complexes from infants with congenital syphilis // J. Infect. Dis. 1988. — Vol.158, № 5. — P. 940−947.
  106. Dobson S.R., Taber L.H., Baughn R.E. Characterisation of the components in circulating immune complexes from infants with congenital syphilis // J. Infect. Dis. 1988. — Vol.158, № 5. — P. 940−947.
  107. Dobson S.R., Taber L.H., Baughn R.E. Recognition of Treponema pallidum antigens by IgM and IgG antibodies in congenitally infected newborns and their mothers//J. Infect. Dis. 1988. — Vol.157, № 5. — P. 903−910.
  108. Dobson S.R., Taber L.H., Baughn R.E. Recognition of Treponema pallidum antigens by IgM and IgG antibodies in congenitally infected newborns and their mothers //J. Infect. Dis. 1988. — Vol.157, № 5. — P. 903−910.
  109. Donders GG. Treatment of sexually transmitted bacterial diseases in pregnant women // Drugs. 2000. — Vol.59, № 3. — P.477−485.
  110. Eichmann A., Gutling M., Meyer J. The SPHA test in the diagnosis of syphilis results in various stages of untreated syphilis // Eur. J. Transmit. Dis. -1986. — Vol.3, № 2. — P. 95−98.
  111. Engwall E., Perlmann P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA): quantitative assay of immunoglobulin G // Immunochemistry. 1971. — Vol.8, № 9. — P. 671−674.
  112. Farshy C.E., Hunter E.F., Larsen S.A., Cerny E.H. Double-conjugate enzyme-linked immunosorbent assay for immunoglobulins G and M against Treponema pallidum // J. Clin. Microbiol. 1984. — Vol.20, № 6. — P. 1109−1113.
  113. Fears M.B., Pope V. Syphilis fast latex agglutination test, a rapid confirmatory test // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. — Vol.8, № 4. — P. 841−842.
  114. Finelli L, Berman SM, Koumans EH, Levine WC. Congenital syphilis // Bull. World. Health. Organ. 1998. — Vol.76, Suppl 2. — P. 126−128.
  115. Fonck К, Claeys P, Bashir F, Bwayo J, Fransen L, Temmerman M. Syphilis control during pregnancy: effectiveness and sustainability of a decentralized program // Am. J. Public. Health. 2001. — Vol.91, № 5. — P.705−707.
  116. Fraser C.M., Norris S.J., Weinstock G.M. et al. Complete genome sequence of Treponema pallidum, the syphilis spirochete // Science. 1998. — Vol.281, 17 july. — P. 375−388.
  117. Friedberg M. Congenital syphilis: need for adequate antenatal care. // Hare-fuah. 1999. — Vol.137, № 10. — P.457−459.
  118. Fujimura K., Ise E., Ueno E. et al. Reactivity of recombinant Treponema pallidum (r-Tp) antigens with anti-Tp antibodies in human syphilitic sera evaluated by ELISA // J. Clin. Lab. Anal. 1997. — Vol.11, № 6. — P. 315−322.
  119. Gene M, Ledger WJ. Syphilis in pregnancy // Sex. Transm. Infect. 2000. -Vol.76, № 2.-P.73−79.
  120. George R., Pope V., Fears M. et al. An analysis of the value of some antigen-antibody interactions used as diagnostic indicators in a treponemal Western blot (TWB) test for syphilis // J. Clin. Lab. Immunol. 1998. — Vol.50, № 1. — P. 2744.
  121. Gerber A., Krell S., Morenz J. Recombinant Treponema pallidum antigens in syphilis serology // Immunobiology. 1996. — Vol.196, № 5. — P. 535−549.
  122. Gharoro EP, Abedi HO. Is routine antenatal screening for syphilis useful? // Int. J. Gynaecol. Obstet. 2000. — Vol.68, № 1. — P.55−57.
  123. Gibuwski M., Neumann E. Non-specific positive test results to syphilis in dermatological diseases // Brit. J. Vener. Dis. 1980. — Vol.56, № 1. — P. 17−19.
  124. Goldberg M.A., Laycock К.A., Kinard S. et al. Poor correlation between reactive syphilis serology and human immunodeficiency virus testing among potential cornea donors // Amer. J. Ophtalm. 1995. — Vol.119, № 1. — P. 1−6.
  125. Griemberg G, Ravelli MR, Etcheves PC, Orfus G, Pizzimenti MC. Syphilis and pregnancy. Prenatal control, seroprevalence and false biological positives // Medicina (B Aires). 2000. — Vol.60, № 3. — P.343−347.
  126. Grodzicki R.L., Steere A.C. Comparison of immunoblotting and indirect enzyme-linked immunosorbent assay using different antigen preparation for diagnosing early Lyme disease // J. Infect. Dis. 1988. — Vol.157, № 4. — P. 790−797.
  127. Guarner J, Greer PW, Bartlett J, Ferebee T, Fears M, Pope V, Zaki SR. Congenital syphilis in a newborn: an immunopathologic study // Mod. Pathol. -1999.-Vol. 12, № 1.-P. 82−87.
  128. Hagedorn H.J., Kraminer-Hagedorn A., De Bosschere K. et al. Evaluation of INNO-LIA syphilis assay as a confirmatory test for syphilis // J. Clin. Microbiol. 2002. — Vol.40, № 3. — P. 973−978.
  129. Haslett P., Laverty M. The prozonephenomenon in syphilis associated with HIV infection //Arch. Intern. Med. 1994. — Vol.154. № 14. — P. 1643−1644.
  130. Hay P.E., Clarke J.R., Strugnell R.A. et al. Use of the polymerase chain reaction to detect DNA sequences specific to pathogenic treponemes in cerebrospinal fluid // Microbiol. Lett. 1990. — Vol.56, № 3. — P. 233−238.
  131. Hay P.E., Clarke J.R., Taylor-Robinson D., Goldmeier D. Detection of treponemal DNA in the CSF of patients with syphilis and HIV infection using the polymerase chain reaction // Genitourin. Med. 1990. — Vol.66, № 6. — P. 428 432.
  132. Hazlett K.R., Sellati T.J., Nguyen T.T. et al. The TprK protein of Treponema pallidum is periplasmic and is not a target of opsonic antibody or protective immunity//J. Exp. Med.-2001. Vol.193, № 9. — P. 1015−1026.
  133. Hertz C.J., Kiertscher S.M., Godowski P.J. et al. Microbial lipopeptides stimulate dendritic cell maturation via Toll-like receptor 2 // J. Immunol. -2001. Vol.166, № 4. — P. 2444−2450.
  134. Hillson S, Grigson C, Bond S. Dental defects of congenital syphilis // Am. J. Phys. Anthropol. 1998. — Vol.107, № 1. -P.25−40.
  135. Hoarau C, Ranivoharimina V, Chavet-Queru MS, Rason I, Rasatemalala H, Rakotonirina G, Guyon P. Congenital syphilis: update and perspectives // Sante. 1999. — Vol.9, № 1. — P.38−45.
  136. Hollier LM, Harstad TW, Sanchez PJ, Twickler DM, Wendel GD Jr. Fetal syphilis: clinical and laboratory characteristics // Obstet. Gynecol. 2001. -Vol.97, № 6.-P.947−953.
  137. Hook E.W., Roddy R.E., Lukehart S.A. et al. Detection of Treponema pallidum in lesion exudate with a pathogen-specific monoclonal antibody // J. Clin. Microbiol. 1985. — Vol.22, № 2. — P. 241−244.
  138. Hsu PL., Chamberlain N.R., Orth K. et al. Sequence analysis of the 47-kilodalton major integral membrane immunogen of Treponema pallidum // Infect. Immun. 1989. — Vol.57, № 1. — P. 196−203.
  139. Hunter E. R, Russel H., Farshy C.E. et al. Evaluation of sera from patients with Lyme disease in the fluorescent treponemal antibody-absorption test for syphilis // Sex. Transm. Dis. 1986. — Vol.13, № 4. — P. 232−236.
  140. Hurtig AK, Nicoll A, Carne C, Lissauer T, Connor N, Webster JP, Ratcliffe L. Syphilis in pregnant women and their children in the United Kingdom: results from national clinician reporting surveys 1994−7 // BMJ. 1998. — Vol.12. — P.1617−1619.
  141. Ijsselmuiden O.E., Beelaert G., Schouls L.M. et al. Line immunoassay and enzyme-linked immunofiltration assay for simultaneous detection of antibody to two trponemal antigens // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 1989. — Vol.8, № 8. — P. 716−721.
  142. Ijsselmuiden O.E., Meinardi M.M.H.M., van der Sluis J.J. et al. Enzyme-linked immunofiltration assay for rapid serodiagnosis of syphilis // Eur. J. Clin. Microbiol. 1987. — Vol.6, № 3. — P. 281−285.
  143. Ijsselmuiden O.E., van der Sluis J.J., Mulder A. et al. An IgM capture enzyme-linked immunosorbent assay to detect IgM antibodies to treponemes in patient with syphilis // Genitourin. Med. 1989. — Vol.165, № 2. — P. 79−83.
  144. Ito F., Hunter E.F., George R.W. et al. Specific immunofluorescent staining of pathogenic treponemes with a monoclonal antibody // J. Clin. Microbiol. -1992. Vol.30, № 4. — P. 831−838.
  145. Kim D.K., Lee M.G., Lee J.B. Changes of serum IgG antibody reactivity to protein antigens of Treponema pallidum in syphilis patients after treatment // J. Korean. Med. Sci. 1989. — Vol.4, № 2. — P. 63−69.
  146. Kitagawa H. Congenital syphilis // Ryoilcibetsu. Shokogun. Shirizu. 1999. -Vol.25, Pt3.-P.21−23.
  147. Labbe AC, Mendonca AP, Alves AC, Jaffar S, Dias F, Alvarenga 1С, Frost E, Morency P, Milord F, Pepin J. The Impact of Syphilis, HIV-1, and HIV-2 on Pregnancy Outcome in Bissau, Guinea-Bissau // Sex. Transm. Dis. 2002. -Vol.29, № 3.-P.157−167.
  148. Larkin JA, Lit L, Toney J, Haley JA. Recognizing and treating syphilis in pregnancy // Medscape. Womens. Health. 1998. — Vol.3, № 1. — P.5.
  149. Lee M.G., Chung K.Y., Lee J.D. et al. Scintigraphic diagnosis of syphilitic lesions in rabbits by radiolabeled monoclonal antibodies specific for Treponema pallidum // Acta. Derm. Venerol. 1993. — Vol.73, № 4. — P. 276−279.
  150. Lee MJ, Hallmark RJ, Frenkel LM, Del Priore G. Maternal syphilis and vertical perinatal transmission of human immunodeficiency virus type-1 infection // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1998. — Vol.63, № 3. — P.247−252.
  151. Lefevre J.C., Betrand M.A., Bauriand R. Evaluation of the captia enzyme immunoassays for detection of immunoglobulins G and M to Treponema pallidum in syphilis // J. Clin. Microbiol. 1990. — Vol.28, № 8. — P. 1704−1707.
  152. Levine Z, Sherer DM, Jacobs A, Rotenberg O. Nonimmune hydrops fetalis due to congenital syphilis associated with negative intrapartum maternal serology screening // Am. J. Perinatol. 1998. — Vol.15, № 4. — P.233−236.
  153. Lewis L.L., Taber L.H., Bauglin R.E. Evaluation of immunoglobulin M Western blot analysis in the diagnosis of congenital syphilis // J. Clin. Microbiol. -1990. Vol.28, № 2. — P. 296−302.
  154. Lewis L.L., Taber L.H., Bauglin R.E. Evaluation of immunoglobulin M Western blot analysis in the diagnosis of congenital syphilis // J. Clin. Microbiol. -1990. Vol.28, № 2. — P. 296−302.
  155. Lu J, Huang C, Zeng Y. Syphilis in pregnancy women // Zhonghua. Fu. Chan. ICe. Za. Zhi. 2001. — Vol.36, № 8. — P.456−459.
  156. Lulcehart S.A., Baker-Zander S.A., Gubish E.R. Identification of Trponema pallidum antigens: comparison with a nonpathogenic treponeme // J. Immunol. -1982. Vol.129, № 2. — P. 833−838.
  157. Lulcehart S.A., Tam M.R., Horn J. et al. Characterisation of monoclonal antibodies to Treponema pallidum // J. Immunol. 1985. — Vol.134, № 1. — P. 585 592.
  158. Lumbiganon P. Appropriate technology: antenatal care // Int. J. Gynaecol. Obstet. 1998,-Vol.63, Suppl 1.-P.91−95.
  159. Lusialc M., Podwinska J. Interleulcin 10 and its role in the regulation of the cell-mediated immune response in syphilis // Arch. Immunol. Ther. Exp. (Warsz). 2001. — Vol.49, № 6. — P. 417−421.
  160. Maeter-Boehm H., Hoernla R. The significance of serology tests to diagnose the activity of syphilis. The 19S-IgM-FTA-Abs-test compared with the syphilis-IgM-ELISA // Laboratoriumsmedizin. 1994. — Vol.18, № 5. — P. 205−208.
  161. Magnarelli L.A., Miller J.N., Anderson J.F., Riviere G.R. Cross-reactivity of nonspecific trponemal antibody in serologic test for Lyme disease // J. Clin. Microbiol. 1990. — Vol.28, № 6. — P. 1276−1279.
  162. Mancuso P. Dermatologic manifestations of infectious diseases in pregnancy // J. Perinat. Neonatal. Nurs. 2000. — Vol.14, № 1. — P. 17−38.
  163. Marangoni A., Sambri V., Suorni E. et al. Treponema pallidum surface immunofluorescence assay for serologic diagnosis of syphilis //"Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2000. — Vol.7, № 3. — P. 417−421.
  164. Marchitto K.S., Selland-Grossling C.K., Norgard V.M. Molecular specifities of monoclonal antibodies directed against virulent Trponema pallidum // Infect. Immun. 1986.-Vol.51, № 1.-P. 168−176.
  165. Martin D, Bertrand J, McKegney C, Thompson L, Belongia E, Mills W. Congenital syphilis surveillance and newborn evaluation in a low-incidence state //Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 2001. — Vol.155, № 2. — P. 140−144.
  166. Mathai E, Mathai M, Prakash JA, Bergstrom S. Audit of management of pregnant women with positive VDRL tests // Natl. Med. J. India. 2001. -Vol. 14, № 4. — P.202−204.
  167. Matsumoto M., Ishikawa F. Purification of Treponema pallidum, Nicols strain, by two-step column chromatography // J. Chromatogr. B. Biomed. Appl. 1995. — Vol.663, № 2. — P.217−224.
  168. Matsumoto M., Ishikawa F., Matsubayashi T. et al. Latex agglutination test for detecting antibodies to Treponema pallidum // Clin. Chem. 1993. — Vol.39, № 8.-P. 1700−1705.
  169. Mavrov GI, Goubenlco TV. Clinical and epidemiological features of syphilis in pregnant women: the course and outcome of pregnancy // Gynecol. Obstet. Invest. 2001. — Vol.52, № 2. — P. 114−118.
  170. Meyer M.P., Eddy Т., Baughn R.E. Analysis of western blotting (im-munoblotting) technique in diagnosis of congenital syphilis // J. Clin. Microbiol. 1994. — Vol.32, № 3. — P. 629−633.
  171. Meyer M.P., Eddy Т., Baughn R.E. Analysis of western blotting (im-munoblotting) technique in diagnosis of congenital syphilis // J. Clin. Microbiol. 1994. — Vol.32, № 3. — P. 629−633.
  172. Mills WA, Martin DL, Bertrand JR, Belongia EA. Physicians' practices and opinions regarding prenatal screening for human immunodeficiency virus and other sexually transmitted diseases // Sex. Transm. Dis. 1998. — Vol.25, № 3. -P.169−175.
  173. Miyakawa H., Kawaguchi N., Kilcuchi K. et al. False positive reaction in ELISA for IgM class anti-M2 antibody and its prevention // Hepatol. Res.-2001.-Vol.20, № 3.-P. 279−287.
  174. Mobley JA, McKeown RE, Jackson KL, Sy F, Parham JS, Brenner ER. Risk factors for congenital syphilis in infants of women with syphilis in South Carolina // Am. J. Public. Health. 1998. — Vol.88, № 4. — P.597−602.
  175. Moskophidis M. Muller F. Molecular basis of immunological cross-reactivity between Treponema pallidum and nonpathogenic Treponema phagedenis // Eur. J. Sex. Transmit. Dis. 1985. — Vol.3, № 1. — P. 1−5.
  176. Moskophidis M., Muller F. Molecular analysis of immunoglobulins M and G immune response to protein antigens of Treponema pallidum in human syphilis // Infect. Immun. 1984. — Vol.43, № 1. — P. 127−132.
  177. Moskophidis M., Muller F. Monoclonal antibodies to immunodominant surface-exposed protein antigens of Treponema pallidum // Eur. J. Clin. Microbiol. 1985. — Vol.4, № 5. — P.473−477.
  178. Moyer VA, Schneider V, Yetman R, Garcia-Prats J, Parks D, Cooper T. Contribution of long-bone radiographs to the management of congenital syphilis in the newborn infant // Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 1998. — Vol.152, № 4. — P.353−357.
  179. Muller F., Moskophidis M. Evaluation of an enzyme immunoassay for IgM antibodies to Treponema pallidum in syphilis in man // Br. J. Vener. Dis. 1984.- Vol.60, № 5. P. 288−292.
  180. Muller F., Moskophidis M., Barkhardt H.L. Detection of immunoglobulin M antibodies to Treponema pallidum in a modified enzyme-linked immunosorbent assay // Eur. J. Clin. Microbiol. 1987. — Vol.6, № 1. — P. 35−39.
  181. Murphy F.T., George R., Kubota K. et al. The use of Western blotting as the confirmatory test for syphilis in patients with rheumatic disease // J. Rheumatol.- 1999. Vol.26, № 11. — P. 2448−2453.
  182. Musher P.M. Sexually Transmitted Diseases. Ed. By King K.H. et al., Mc Graw-Hill, inc. 1990. — Ch.18. — P.205−210.
  183. Myles T.D., Elam G., Park-Hwang E., Nguyen T. The Jarisch-Herxheimer reaction and fetal monitoring changes in pregnant women treated for syphilis // Obstet. Gynecol. 1998. — Vol.92, № 5. — P.859−864.
  184. Nafeev AA. A case of Lyme disease in pregnancy. // Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. 2001 May-Jun-(3): 121−2. Russian.
  185. Nakane P.K., Pierce G.B. Enzyme-labelled antibodies // J. Histochem. Cyto-chem. 1966. — Vol.14, № 11. — P. 929−937.
  186. Narain S, Batra B, Abraham SN, Arya LS. Symptomatic congenital syphilis presenting at birth // Indian. J. Pediatr. 2001. — Vol.68, № 9. — P.897−899.
  187. Narducci F, Switala I, Rajabally R, Decocq J, Delahousse G. Maternal and congenital syphilis. // J. Gynecol. Obstet. Biol. Reprod. 1998. — Vol.27, № 2. -P.150−160.
  188. Newell ML, Thorne C, Pembrey L, Nicoll A, Goldberg D, Peckham C. Antenatal screening for hepatitis В infection and syphilis in the UK // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1999. — Vol.106, № 1. -P.66−71.
  189. Norgard M.V., Chamberlaine N. R, Swancutt M.A., Goldberg M.S. Cloning and expression of the major 47-kilodalton surface immunogen of Treponema pallidum in Escherichia coli // Infect. Immun. 1986. — Vol.54, № 2. — P. 500 506.
  190. Norris S.J. Polypeptides of Treponema pallidum: progress toward understanding their structural, functional and immunologic roles // Microbiol. Rev. -1993. Vol.57, № 3. — P. 750−779. .
  191. Norris S.J., Cox D.L., Weinstock G.M. Biology of Treponema pallidum: correlation of functional activities with genome sequence data // J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2001. — Vol.3, № 1. — P. 37−62.
  192. Obisesan KA, Ahmed Y. Routine antenatal syphilis screening a case against // Afr. J. Med. Med. Sci. — 1999. — Vol.28, № 3−4. — P. 185−187.
  193. Orton S.L., Dodd R.Y., Williams A.E. Absence of risk factors for false-positive test results in blood donors with a reactive test result in an automated treponemal test (PK-TP) for syphilis // Transfusion. 2001. — Vol.41, № 6. — P. 744−750.
  194. Passeron A. Compassion for pregnant women. // Presse. Med. 1998. -Vol.27, № 4.-P. 165.
  195. Pedersen N.S., Axelsen N.H., Jorgensen B.B., Petersen C.S. Antibodies in secondary syphilis against five of forty Reiter treponeme antigens // Scand. J. Immunol. 1980. — Vol.11, № 6. — P. 629−633.
  196. Pedersen N.S., Petersen C.S., Axelsen N.H. Enzyme-linked immunosorbent assay for detection of immunoglobulin M antibody against the Reiter treponeme flagellum in syphilis // J. Clin. Microbiol. 1982. — Vol.16, № 4. — P. 608−614.
  197. Peihong J, Zhiyong L, Rengui C, Jian W. Early congenital syphilis // Int. J. Dermatol. 2001. — Vol.40, № 3. — P. 198−202.
  198. Penn C.W., Cockayne A., Bailey M.J. The outer membrane of Treponema pallidum: biological significance and biochemical properties // J. Gen. Microbiol. 1985. — Vol.131, Pt.9. — P. 2349−2357.
  199. Pierangeli S.S., Goldsmith G.H., Krenie S., Herris E.N. Differences in functional activity of anticardiolipin antibodies from patient with syphilis and those with antiphospholipid syndrome // Infect. Immun. 1994. — Vol.62, № 9. — P. 4081−4084.
  200. Pillay T, Adhikari M, Mokili J, Moodley D, Connolly C, Doorasamy T, Coovadia HM. Severe, rapidly progressive human immunodeficiency virus type 1 disease in newborns with coinfections // Pediatr. Infect. Dis. J. 2001. -Vol.20, № 4. — P.404−410.
  201. Pohl M, Niemeyer CM, Hentschel R, Duffner U, Bergstrasser E, Brandis M. Haemophagocytosis in early congenital syphilis // Eur. J. Pediatr. 1999. -Vol.158, № 7.-P.553−555.
  202. Radolf J.D., Robinson E.J., Bourell K.W. et al. Characterisation of outer membranes isolated from Treponema pallidum, the syphilis spirochete // Infect. Immun. 1995. — Vol.63, № 11. — P. 4244−4252.
  203. Rath P.M., Marsch W.C., Brade V., Fehrenbach F. Serological distinction between syphilis and Lyme borreliosis // Int. J. Med. Microbiol. Virol. Parasitol. Infect. Dis. 1994. — Vol.280, № 3. — P. 319−324.
  204. Rawlins S. Nonviral sexually transmitted infections // J. Obstet. Gynecol. Neonatal. Nurs. 2001. — Vol.30, № 3. — P.324−331.
  205. Rawstron S.A., Mehta S., Marcellino L. et al. Congenital syphilis and fluorescent treponemal antibody test reactivity after the age of 1 year // Sex. Transm. Dis. 2001. — Vol.28, № 7. — P. 412−416.
  206. Rawstron SA, Bromberg K. Congenital syphilis in newborn infants // Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 1998 — Vol.152, № 10. — P. l041−1042.
  207. Rawstron SA, Mehta S, Marcellino L, Rempel J, Chery F, Bromberg K. Congenital syphilis and fluorescent treponemal antibody test reactivity after the age of 1 year// Sex. Transm. Dis. 2001. — Vol.28, № 7. — P.412−416.
  208. Reisner B.S., Mann L.M., Tholcken C.A. et al. Use of the Treponema pal-lidum-specific captia syphilis IgG assay in conjunction with the rapid plasma reagin to test for syphilis // J. Clin. Microbiol. 1997. — Vol.35, № 5. — P. l 1 411 143.
  209. Rodriguez I., Alvarez E.L., Fernandez C., Miranda A. Comparison of a re-combinant-antigen enzyme immunoassay with Treponema pallidum hemagglutination test for serological confirmation of syphilis // Mem. Inst. Oswaldo. -2002. Vol.97, № 3. — P. 347−349.
  210. Ross J., Moyes A., Young H., Mc Millan A. An analysis of false positive reactions occurring with the Captia Syph G EIA // Genitourin. Med. 1991. -Vol.67, № 5. — P. 408−410.
  211. Ross J.D., Young H. Use of nontreponemal tests in the diagnosis of syphilis // Arch. Intern. Med. 1994. — Vol.154, № 22. — P. 2616.
  212. Sambri V., Marangoni A., Eyer C. et al. Western immunoblotting with five Treponema pallidum recombinant antigens for serologic diagnosis of syphilis // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. — Vol.8, № 3. — P. 534−539.
  213. Sambri V., Marangoni A., Simone M.A. et al. Evaluation of recomWell Treponema, a novel recombinant antigen-based enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of syphilis // Clin. Microbio. Infect. 2001. — Vol.7, № 4. -P. 200−205.
  214. Sammaritano L.R., Gharavai A.E. Antiphospholipid antibody syndrome // Clin. Lab. Med. 1992. — Vol.12, № 1. — P. 41−59.
  215. Sanchez P.J., McCracken G.H.Jr, Wendel G.D. et al. Molecular analysis of the fetal IgM response to Treponema pallidum antigens: implications for improved serodiagnosis of congenital syphilis // J. Infect. Dis. 1989. — Vol.159, № 3. — P. 508−517.
  216. Sanchez P.J., McCracken G.H.Jr, Wendel G.D. et al. Molecular analysis of the fetal IgM response to Treponema pallidum antigens: implications for improved serodiagnosis of congenital syphilis // J. Infect. Dis. 1989. — Vol. 159, № 3. — P. 508−517.
  217. Sanchez P.J., Wendel G.D., Norgard M.V. IgM antibody to Treponema pallidum in cerebrospinal fluid of infants with congenital syphilis // Am. J. Dis. Child. 1992. — Vol.146, №io. — P. 1171−1175.
  218. Sanchez P.J., Wendel G.D., Norgard M.V. IgM antibody to Treponema pallidum in cerebrospinal fluid of infants with congenital syphilis // Am. J. Dis. Child. 1992. — Vol.146, № 10. — P. 1171−1175.
  219. Sanchez PJ. Laboratory tests for congenital syphilis // Pediatr. Infect. Dis. J. 1998.-Vol.17, № 1.-P.70−71.
  220. Santiago M.B., Stellin R., Gaburo Junior N. Antiphospholipid antibodies in syphilis // Braz. J. Med. Biol. Res. 1990. — Vol.23, № 5. — P. 397−402.
  221. Sato N.S., Hirata M.H., Hirata R.D. et al. Analysis of Treponema pallidum recombinant antigens for diagnosis of syphilis by western blotting technique // Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 1999. — Vol.41, № 2. — P. 115−118.
  222. Sato T. Development of anti-Treponema pallidum-IgM antibodies detection methods using purified antigen-comparison with conventional methods // Kan-senshogaku Zasshi. 1993. — Vol.67, № 8. — P. 758−766.
  223. Sato Т., Kubo E., Yokota M. et al. Treponema pallidum specific IgM hae-magglutination test for serodiagnosis of syphilis // Br. J. Vener. Dis. 1984. -Vol.60, № 6. — P. 364−370.
  224. Savigny P. de., Voller A. The communication of quantitative ELISA results //Immunoenzymatic assay techniques. Hague- Boston, 1980. — P. 116−132.
  225. Schmidt B.L., Luger A., Duschet P. et al. Specific IgM tests in syphilis diagnosis // Hautarzt. 1994. — Vol.45, № 10. — P. 685−689.
  226. Schmitz J.L., Gertis K.S., Mauney C. et al. Laboratory diagnosis of congenital syphilis by immunoglobulin M (IgM) and IgA immunoblotting // Clin. Di-agn. Lab. Immunol. 1994. — Vol.1, № 1. — P. 32−37.
  227. Schmitz J.L., Gertis K.S., Mauney C. et al. Laboratory diagnosis of congenital syphilis by immunoglobulin M (IgM) and IgA immunoblotting // Clin. Di-agn. Lab. Immunol. 1994. — Vol.1, № 1. — P. 32−37.
  228. Sell S., Norris S.J. The biology, pathology, and immunology of syphilis // Int. Rev. Exp. Pathol. 1983. — Vol.24. — P. 203−276.
  229. Sheffield JS, Wendel GD Jr. Syphilis in pregnancy // Clin. Obstet. Gynecol. 1999. — Vol.42, № 1. — P.97−106.
  230. Silletti R.P. Comparison of CAPTIA syphilis G enzyme immunoassay with rapid plasma reagin test for detection of syphilis // J. Clin. Microbiol. 1995. -Vol.33, № 7. — P. 1829−1831.
  231. Simmank КС, Pettifor JM. Unusual presentation of congenital syphilis // Ann. Trop. Paediatr. 2000. — Vol.20, № 2. — P. 105−107.
  232. Singh A.E., Romanowski B. Syphilis: rewiew with emphasis on clinical, epidemiologic, and some biologic featurs // Clin. Microbiol. Rev. 1999. -Vol. 12, № 2.-P.l87−209.
  233. Skvaril F. IgG subclasses in viral infections. In: Basic and clinical aspects of IgG subclasses. (Monographs in allergy, Vol. 19). Basel et al., 1986. — P. 134 143.
  234. Stoll B.J. Congenital syphilis: evaluation and managment of neonates born to mothers with reactive serologic test for syphilis // Pediatr. Infect. Dis. J. -1994. Vol.13, № 10. — P. 845−852.
  235. Stoll B.J., Lee F.K., Larsen S. et al. Clinical and serologic evaluation of neonates for congenital syphilis: a continuing diagnostic dilemma // J. Infect. Dis. -1993. Vol.167, № 5. — P. 1093−1099.
  236. Sung L, MacDonald NE. Syphilis: a pediatric perspective // Pediatr. Rev. -1998. -Vol.19, № 1.- P. 17−22.
  237. Szufladowicz-Wozniak J, Marianska B. The analysis of factors which affect qualification of pregnant women as cord blood donors // Ginekol. Pol. 1998. -Vol.69, № 3.- P. 145−51.
  238. Tholclcen C.A., Woods G.L. Evaluation of the Bio-Rad syphilis IgG test performed on the CODA system for serologic diagnosis of syphilis // Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2000. — Vol.37, № 3. — P. 157−160.
  239. Tikhonova L., Salakhov E., Southwick K. et al. Congenital syphilis in the Russian Federation: magnitude, determinants, and consequences // Sex Transm Infect. 2003. Vol 79, № 2. — P. 106−110.
  240. Torchinsky MY, Shulman H, Landau D. Special feature: radiological case of the month. Congenital syphilis presenting as osteomyelitis with normal radioisotope bone scan // Arch. Pediatr. Adolesc. Med. 2001. — Vol.155, № 5. -P613−614.
  241. Veldkamp J., Visser A.M. Application of the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) in the serodiagnosis of syphilis // Brit. J. Veneral Dis. 1975. -Vol.51, № 4. — P. 227−231.
  242. Verboon-Maciolek MA, Gerards LJ, Stoutenbeek P, van Loon AM. Congenital infection: diagnostic serology of the mother not always definitive // Ned. Tijdschr. Geneeskd. -2001. Vol.145, № 4. — P. 153−156.
  243. Versalovic O.J., Nash Z.D., Carinhas R. et al. Immunoglobulin class and subclass restriction of autoimmune responses in secondary syphilis // Clin. Exp. Immunol. 1990. — Vol.80, № 3. — P. 381−386.
  244. Vieker S, Siefert S, Lemke J, Pust B. Congenital syphilis after reactivation of «healed» maternal primary infection // Klin. Padiatr. 2000. — Vol.212, № 6. — P.336−339.
  245. Wagner CL, Katikaneni LD, Cox TH, Ryan RM. The impact of prenatal drug exposure on the neonate // Obstet. Gynecol. Clin. North. Am. 1998. -Vol.25, № 1.-P.169−194.
  246. Walker GJ. Antibiotics for syphilis diagnosed during pregnancy (Cochrane Review) // Cochrane. Database. Syst. Rev. 2001. — Vol.3. — CD001143.
  247. Warner L, Rochat RW, Fichtner RR, Stoll В J, Nathan L, Toomey KE. Missed opportunities for congenital syphilis prevention in an urban southeastern hospital // Sex. Transm. Dis. 2001. — Vol.28, № 2. — P.92−98.
  248. Weigel L.M., Brandt M.E., Norgard M.V. Analysis of the N-terminal region of the 47-kilodalton integral membrane lipoprotein of Treponema pallidum // Infect. Immun. 1992. — Vol.60, № 4. — P. 1568−1576.
  249. Weisbord JS, Koumans EH, Toomey KE, Grayson C, Markowitz LE. Sexually transmitted diseases during pregnancy: screening, diagnostic, and treatment practices among prenatal care providers in Georgia // South. Med. J. 2001. -Vol.94, №l.-P.47−53.
  250. Welch J. Antenatal screening for syphilis. Still important in preventing disease // BMJ. 1998. — Vol.317, № 7173. — P.1605−1606.
  251. Whang K.K., Lee M.G., Lee W., Lee J.B. Production and characterisation of monoclonal antibodies to Treponema pallidum // J. Dermatol. Sci. 1992. -Vol.4, № 1. — P. 26−32.
  252. White T.J., Fuller S.A. Visuwell Reagin, a nontreponemal enzyme-linked immunosorbent assay for the serodiagnosis of syphilis // J. Clin. Micrbiol. -1989. Vol.27, № 10. — P. 2300−2304.
  253. Wicher K., Abbruscato F., Wicher V., Shouls L. Immunisation of guinea pigs with Treponema pallidum recombinant antigens reveals the presence of novel epitopes // Int. Arch. Allergy Immunol. 1994. — Vol.103, № 4. — P. 396−399.
  254. Wicher K., Baughn R.E., Wicher V., Nakeeb S. Experimental congenital syphilis: guinea pig model // Infect. Immun. 1992. — Vol.60, № 1. — P. 271−277.
  255. Wicher K., Noordhoek G.T., Abbruscato F., Wicher V. Detection of Treponema pallidum in early syphilis by DNA amplification // J. Clin. Microbiol. -1992. Vol.30, № 2. — P. 497−500.
  256. Wicher К., Wicher V., Abbruscato F., Baughn R.E. Treponema pallidum subsp. pertenue displays pathogenic properties different from those of T. pallidum subsp. Pallidum // Infect. Immun. 2000. — Vol.68, № 6. — P. 3219−3225.
  257. Wicher V, Wicher K. Pathogenesis of maternal-fetal syphilis revisited // Clin. Infect. Dis. 2001. — Vol.33, № 3. — P.354−363.
  258. Wicher V., Zabek J., Wicher K. Pathogen-specific humoral response in Treponema pallidum-infected humans, rabbits and guinea pigs // J. Infect. Dis. -1991. Vol.163, № 4. — P. 830−836.
  259. Wilkinson D, Sach M. Improved treatment of syphilis among pregnant women through on-site testing: an intervention study in rural South Africa // Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 1998. — Vol.92, № 3. — P.348.
  260. Wilkinson D. Screening for syphilis in pregnant women // Trop. Doct. -1998.-Vol.28, № 2.-P.120.
  261. Woods D, Roditi D. On-site rapid plasma reagin screening for syphilis in pregnancy//S. Afr. Med. J.- 1998. Vol.88, № 9.-P.1051, 1054.
  262. Xu Y, Lu X, Ling Y. Treatment of syphilis in pregnancy and its perinatal prognosis // Zhonghua. Fu. Chan. Ke. Za. Zhi. 2001. — Vol.36, № 8. — P.460−461.
  263. Yelton D.B., Limberger R.J., Curci K. et al. Treponema phagedenis encodes and expresses homologs of the Treponema pallidum TmpA and TmpB proteins // Infect. Immun. 1991. — Vol.59, № 10. — P. 3685−3693.
  264. Yetman RJ, Risser WL, Barth BA, Risser JM, Hwang LY. Problems in physician’s classification and reporting of congenital syphilis // Int. J. STD. AIDS. 1998. — Vol.9, № 12. — P.765−768.
  265. Young H. Syphilis serology // Dermatol. Clin. 1998. — Vol.16, № 4. — P. 691 698.
  266. Young H. Syphilis: new diagnostic directions (Reviews) // Int. J. STD and AIDS. 1992. — Vol.3, № 6. — P. 391−413.
  267. Young H., Aktas G., Moyes A. Enzywell recombinant enzyme immunoassay for the serological diagnosis of syphilis // Int. J. STD AIDS. 2000. — Vol.11, № 5. -P. 288−291.
  268. Young H., Moyes A., de Ste Croix I., McMillan A. A new recombinant latex agglutination test (Syphilis Fast) for the rapid serological diagnosis of syphilis // Int. J. STD and AIDS. 1998. — Vol.9, № 3. — P. 196−200.
  269. Young H., Moyes A., McMillan A., Patterson J. Enzyme immunoassay for antitreponemal IgG: screening or confirmatory test? // J. Clin. Pathol. 1992. -Vol.45, № 1. — P. 37−41.
  270. Young H., Moyes A., Ross J.D. Marcers of past syphilis in HIV infection comparing Captia Syphilis G anti-treponemal IgG enzyme immunoassay with other treponemal antigen tests // Int. J. STD and AIDS. 1995. — Vol.6, № 2. — P. 101−104.
  271. Young H., Moyes A., Seagar L., McMillan A. Novel recombinant-antigen enzyme immunoassay for serological diagnosis of syphilis // J. Clin. Microbiol. 1998. — Vol.36, № 4. — P. 913−917.
  272. Zaatari M.M., Martens M.G., Anderson G.D. Incidence of the prozone phenomenon in syphilis serology // Obstet. Gynecol. 1994. — Vol.84, № 4. — P. 609 612.
  273. Zrein M., Maure J., Boursier F., Soufflet L. Recombinant antigen-based enzyme immunoassay for screening of Treponema pallidum antibodies in blood bank routine // J. Clin. Microbiol. 1995. — Vol.33, № 3. — P. 525−527.
Заполнить форму текущей работой