Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Изменчивость митохондриальной ДНК гольцов рода Salvelinus

Диссертация: Изменчивость митохондриальной ДНК гольцов рода Salvelinus
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Практическая значимость работы. Лососевые рыбы рода 8а1 у.е.Нпиз являются важными компонентами водных экосистем Дальнего Востока. Для гольцов характерно повышенное биологическое разнообразие, а также существование редких, эндемичных форм. Гольцовые рыбы — ценные объекты рыболовного промысла. Они имеют особое значение для экономики Ф коренных народностей, для любительского и спортивного лова… Читать ещё >

Изменчивость митохондриальной ДНК гольцов рода Salvelinus (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Митохондриальная ДНК как инструмент эволюционных и популяционных генетических исследований
    • 1. 2. Некоторые таксономические и филогенетические проблемы гольцов рода Salvelinus
    • 1. 3. Дифференциация гольцов рода Salvelinus на основе кариологического, биохимического и молекулярно-генетического анализов
  • Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Материалы
    • 2. 2. Методы.'
  • Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Дифференциация популяций мальмы и гольца Таранца по данным рестрикционного анализа гена цитохрома b мтДНК
    • 3. 2. Дифференциация популяций мальмы и гольца Таранца по данным рестрикционного анализа участка ATPase6/ND4L мтДНК
    • 3. 3. Дифференциация северной и южной форм мальмы по данным рестрикционного анализа участков цитохрома b и ATPase6/ND4L мтДНК
    • 3. 4. Сравнительный рестрикционный анализ мтДНК в популяциях озерного гольца
    • 3. 5. Изменчивость нуклеотидных последовательностей гена цитохрома b мтДНК гольцов рода Salvelinus

Актуальность проблемы. Гольцы рода 8а1 у.е.Ппиз — относительно молодая группа лососевых рыб, привлекающая внимание ученых, как в России, так и за рубежом уже несколько десятилетий. Гольцы отличаются циркумполярным распространением, значительным фенотипическим разнообразием, обилием видов и внутривидовых форм, высокой географической изменчивостью на огромном ареале и экологической пластичностью, которая позволила им освоить большинство пресных и морских водоемов Голарктики. Эти уникальные особенности определяют повышенный интерес к гольцовым рыбам как модельным объектам для исследования морфологической, экологической и генетической изменчивости, закономерностей микроэволюции и формообразования. Изучение гольцов представляет значительный интерес еще и потому, что они являются наиболее типичными представителями северных экосистем и могут служить индикаторами их состояния и динамики. Научный интерес определяется, несомненно, и важным хозяйственным значением этих ценных лососевых рыб. Нерешенные проблемы систематики и филогении рода 8а1 у.е.Нпиз также активизируют дальнейшие исследования, связанные с привлечением новых методических подходов.

В последние десятилетия для изучения биологического разнообразия популяций, эволюции организмов и механизмов видообразования широко используются молекулярные методы анализа ДНК. Особое место среди высокополиморфных генетических систем занимает митохондриальная ДНК (мтДНК). Материнский характер наследования, отсутствие рекомбинации, высокий уровень изменчивости — эти уникальные свойства делают мтДНК высокоинформативным инструментом генетического анализа. Исследования мтДНК успешно применяются для выяснения филогении близкородственных видов, изучения гибридизации видов, реконструкции истории видов и популяций. Сравнительные исследования структуры генома, изменчивости и дивергенции нуклеотидных последовательностей позволяют выяснить закономерности эволюции животных на молекулярном уровне. Анализ генетической изменчивости является сегодня одним из основных методов для изучения популяционно-генетической структуры видов.

К настоящему времени накоплены данные по изменчивости ДНК популяций арктического гольца S. alpinus, мальмы S. malma, озерной S. namaycush и ручьевой S. fontinalis палий, кунджи S. leucomaenis и других видов (форм) из США, Канады, Японии, Англии, Ирландии, стран Скандинавии (Вrunner et al., 2001; Davidson, 1994; Grewe et al., 1990; Phillips et al., 1995; Phillips et al., 1999; Wilson et al., 1996). Недостаточно изученными как в плане видового разнообразия, так и по широте охвата ареала остаются российские популяции гольцов (Олейник, Скурихина, 1999; Salmenkova et al., 2000).

Перечисленный круг проблем определил актуальность проведенного исследования, а также цель и задачи данной работы.

Цель и задачи исследования

Цель работы — изучение генетического разнообразия гольцов рода Salvelinus на основании данных о рестрикционном полиморфизме и изменчивости нуклеотидных последовательностей мтДНК.

В работе были поставлены следующие задачи:

1. Определить уровень межвидовой генетической изменчивости и внутривидовых различий мальмы S. malma и гольца Таранца S. taranetzi на основе данных о рестрикционном полиморфизме двух участков мтДНК, сегмента ATPase6/ND4L и гена цитохрома Ь.

2. Установить степень дифференциации популяций северной S. m. malma и южной S. т. krascheninnikovi мальмы, используя рестрикционный анализ сегмента ATPase6/ND4L и гена цитохрома b мтДНК.

3. Исследовать в сравнительном аспекте изменчивость мтДНК в популяциях озерных гольцов из разных участков ареала.

4. Оценить уровень и время дивергенции мтДНК популяций и форм ^ гольцов рода Salvelinus на основе анализа нуклеотидных последовательностей гена цитохрома Ь.

5. Определить родственные взаимоотношения изученных гольцов рода 8а1 у.е.Нпи5 на основании филогенетического анализа данных об изменчивости нуклеотидных последовательностей гена цитохрома Ь мтДНК.

Научная новизна работы.

1. В работе впервые определены нуклеотидные последовательности гена цитохрома Ь мтДНК гольцов Дальнего Востока России. Показано, что исследование этого участка митохондриального генома может использоваться для дифференциации некоторых видов гольцовых рыб.

2. Впервые исследован полиморфизм мтДНК некоторых популяций мальмы и гольца Таранца из рек бассейнов Охотского и Берингова морей. ф Показана значительная генетическая гетерогенность северной формы мальмы и существование в митохондриальном генофонде этого подвида линий ДНК, отличающихся от основного пула мтДНК Б. т. та1та. В генофонде проходного гольца Таранца обнаружен тип мтДНК, характерный для популяций мальмы, что, возможно, является отражением имевшей место в прошлом интрогрессивной гибридизации.

3. Получена уникальная информация об изменчивости мтДНК малоизученных озерных гольцов из водоемов Охотоморского побережья и бассейна р. Колымы. Предполагается, что озерные гольцы Охотоморья произошли от предков современной мальмы в Тихоокеанском бассейне, а колымские озерные гольцы, а также голец Таранца, малоротая и боганидская палии Чукотки — от другой предковой формы в Арктическом бассейне.

4. Впервые проведен анализ рестрикционного полиморфизма сегмента АТРазеб/ММЬ и определена нуклеотидная последовательность гена цитохрома Ь мтДНК боганидской палии Таймыра. Фиксация у 8. Ьк^ашс1ае из оз. Эльгыгытгын и оз. Лама типов мтДНК, специфичных для разных групп гольцов указывает на то, что боганидская палия Чукотки и боганидская палия Сибири принадлежат к различным эволюционным линиям и не могут относиться к одному виду.

5. В популяциях мальмы северного Охотоморья впервые обнаружены гибриды между мальмой и кунджей, что свидетельствует о вторичном контакте и интрогрессии мтДНК между этими видами. Предполагается, что межвидовая гибридизация происходила как в отдаленном прошлом, так и относительно недавно, поскольку один из обнаруженных гибридов фенотипически определен как мальма, а другой характеризуется промежуточным (гибридным) фенотипом, но оба имеют мтДНК кунджи.

6. У северной формы мальмы зафиксированы типы мтДНК, специфичные для южной формы этого вида, что может свидетельствовать о прошедшей между 8. т. кгаБсЬешпткоу! и 8. т. та1та интрогрессивной гибридизации.

7. Разработан метод генетической идентификации гольцов на уровне * видов (северная и южная мальма, арктический голец, голец Таранца, кунджа) и филогеографических групп (Охотская, Колымско-Чукотская, Сибирская) с помощью анализа рестрикционного полиморфизма участка АТРазе6/ЪГО4Ь мтДНК.

Практическая значимость работы. Лососевые рыбы рода 8а1 у.е.Нпиз являются важными компонентами водных экосистем Дальнего Востока. Для гольцов характерно повышенное биологическое разнообразие, а также существование редких, эндемичных форм. Гольцовые рыбы — ценные объекты рыболовного промысла. Они имеют особое значение для экономики Ф коренных народностей, для любительского и спортивного лова. Кроме того, достаточно велик потенциал гольцов как объектов искусственного воспроизводства. В настоящее время недостаток сведений о современном состоянии популяций лососевых рыб рода 8а1 у.е.Нпи5, а также несовершенные природоохранные мероприятия и управление промыслом приводят к обеднению, а иногда и к критическому состоянию рыбных ресурсов. Нередки примеры ведения хозяйственной деятельности и промысла в водоемах, где обитают узкоареальные эндемичные формы гольцов, представленные единственной популяцией, ф Эти обстоятельства свидетельствуют о высокой практической ценности исследований, расширяющих представления о популяционно-генетической структуре, характере межвидовой и внутривидовой дифференциации, родственных взаимосвязях лососевых рыб рода Salvelinus. Такие исследования являются базовыми для любых прикладных разработок по охране, восстановлению численности, искусственному разведению и оптимальному использованию промысловых ресурсов гольцовых рыб.

Результаты данного исследования были использованы для обоснования рекомендаций природоохранного характера в ходе выполнения работ по проектам Дальневосточного Морского Фонда (МФ ФЭФ РФ «ДМФ») и Государственного Комитета по охране окружающей среды Магаданской области.

Апробация работы. Основные положения диссертации представлены на # научных сессиях ИБПС ДВО РАН (Магадан, 1997, 1999, 2002) — 1-ой.

Международной научно-практической конференции молодых исследователей (Магадан, 1995) — 2-ой и 3-ей научных конференциях аспирантов «Идеи, гипотезы, поиск» (Магадан, 1995, 1996) — 3-ей Международной научно-практической конференции «Роль университетов в развитии территорий Северного Форума» (Магадан, 1996) — 2-ой Международной научной конференции по молекулярно-генетическим маркерам животных (Киев, 1996) — 1-ом Всероссийском Конгрессе ихтиологов (Астрахань, 1997) — PICES Workshop on the Okhotsk Sea and Adjacent Areas (Canada, 1996) — ISACF A Workshop «Biology and Evolution of Char of the Northern Hemisphere» .

Kamchatka, 1998) — Международной научно-практической конференции «Прибрежное рыболовство — XXI век» (Южно-Сахалинск, 2001).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 14 работ, 1 работа находится в печати.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

3.1. Дифференциация популяций мальмы и гольца Таранца по данным рестрикционного анализа гена цитохрома Ь мтДНК.

В водоемах Чукотского п-ова симпатрично обитают два морфологически и генетически различающихся вида гольцов — широко распространенная на Дальнем Востоке от Камчатки до Чукотки и по побережью Охотского моря мальма и населяющий только Чукотку голец Таранца, описанный из оз. Аччен (Кагановский, 1955; Глубоковский, Черешнев, 1981; Черешнев, 1982; Картавцев и др., 1983).

В данном разделе проанализирован рестрикционный полиморфизм гена цитохрома Ь мтДНК в трех популяциях мальмы Б. ша1ша и двух популяциях гольца Таранца Б. 1агапоХтх юго-восточной части Чукотского п-ова (табл. 1, рис. 2). Выборки мальмы представлены в следующем объеме: река Утаатап -18 экз., р. Гетлянген — 21 экз., р. Марич — 19 экз. Голец Таранца собран в р. Утаатап (29 экз.) и двух сообщающихся озерах бассейна р. Выквынайваам (21 экз.), причем в первом случае речь идет о проходной форме, а во втором — о жилой, озерной форме гольца Таранца. Общее количество исследованных гольцов составляет 108 экземпляров.

Результаты амплификации сегмента гена цитохрома Ь между участками мтДНК, гомологичными олигонуклеотидным праймерам В1 (Ы4841) и В2 (Н15 149), показали наличие продукта ПЦР длиной 375 пн у мальмы и гольца Таранца. Размер амплифицированного участка мтДНК был определен в сравнении с кетой, у которой размер продукта ПЦР между праймерами В1 и В2 установлен ранее (Радченко и др., 1997а).

В таблице 3 представлены результаты рестрикционного анализа этого участка мтДНК с использованием эндонуклеаз НаеШ, НтЯ, Мзр1, КБа1. По рестриктазам НаеШ, НтП, Яза1 выявлен лишь один вариант расщепления участка гена цитохрома Ь. Только для эндонуклеазы Мзр1 характерен полиморфизм рестрикционных фрагментов — зафиксированы три рестрикционных варианта (С, О, Е) (рис. 3). Варианты МврЬБ и МврЬЕ связаны с вариантом МэрЬС посредством одномутационных событий, определяющих появление дополнительного сайта рестрикции в случае варианта МБрЬЭ (фрагмент длиной 110 пн —" 70 пн + 40 пн) и утрату рестрикционного сайта в случае Мзр1-Е (140 пн + 50 пн -" 190 пн).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.П., Салменкова Е.А, Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика. 2002. Т. 38. № 9. 1173−1195.
  2. В.В. К систематике чукотских гольцов рода Salvelinus // Вопросы ихтиологии. 1960. Т. 14. 3−17.
  3. Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.- Л.: изд-во АНСССР, 1948.4.1.467 с.
  4. Вл.А. Эволюция генома, изменчивость и дивергенция ДНК у морских животных: автореф. дис. …докт. биол. наук. М.: Институт общей генетики им. Н. И. Вавилова РАН, 2001. 52 с.
  5. . Анализ генетических данных. М.: Мир, 1995. 320 с.
  6. P.M. Механизмы видообразования у гольцов Кроноцкого озера. М.: Наука, 1978. 110 с.
  7. P.M. Сравнительная кариология, эволюция и видообразование у гольцов рода Salvelinus // Экология и систематика лососевидных рыб. Л.: ЗИН АН СССР, 1976. 16−19.
  8. P.M., Глубоковский М. К. Механизмы и темпы видообразования у гольцов рода Salvelinus (Salmonidae, Pisces) // Докл. АН СССР. 1977. Т. 235. № 4. 946−949.
  9. P.M., Глубоковский М.К, Ермоленко Л. Н., Скопец М. Б, Гольцы рода Salvelinus из озера Эльгыгытгын (Центральная Чукотка) // Рыбы в экосистемах лососевых рек Дальнего Востока, Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1981. 67−78,
  10. В.В. Систематика и экология нейвы Salvelinus neiva Taranetz оз. Уегинского (бассейн р. Охоты) // Вопр. ихтиологии. 1976. Т. 16. № 6. 989−999,
  11. В.В., Васильева Е. Д., Савваитова К. А. О систематическом статусе чукотских проходных гольцов рода Salvelinus // Вопр. ихтиологии. 1979. Т. 19. № 3. 408−418.
  12. М.К. Таксономические отношения гольцов рода Salvelinus в бассейне р. Камчатки // Биология моря. 1977. Т. 3. 24−35.
  13. М.К., Черешнев И. А. Спорные вопросы филогении гольцов рода Salvelinus Голарктики. I. Изучение проходных гольцов из бассейна Восточно-Сибирского моря // Вопр. ихтиологии. 1981. Т. 21. № 5. 771−786.
  14. М.К. Эволюционная биология лососевых рыб. М.: Наука, 1995.343 с.
  15. О.Ф., Савваитова К. А., Груздева М. А., Кузищин К. В. О таксономическом положении гольцов рода Salvelinus северных Курильских островов // Вопр. ихтиологии. 1998. Т. 38. № 2. 189−198.
  16. П.К. Материалы по биологии кунджи Salvelinus leucomaenis бассейна Охотского моря // Вопр. ихтиологии. 1991. Т. 30. № 6. 898−908.
  17. O.K., Радченко О. А. Характеристика гольца рода Salvelinus из Элекчанских озер (северное побережье Охотского моря) — морфология, биология, генетика//Вопр. ихтиологии. 2000. Т. 40. № 5. 621−631.
  18. Е.А., Савваитова К. А. Сем. 5. Salmonidae // Аннотированный каталог круглоротых и рыб континентальных вод России, М.: Наука, 1998. ^ 31−41. I
  19. Животовский Л. А, Статистические методы анализа частот генов в природных популяциях // Итоги науки и техники. Общая генетика. М.: ВИНИТИ АН СССР, 1983. Т. 8. 76−104.
  20. ЛА. Популяционная биометрия. М.: Наука, 1991. 271 с.
  21. А.Г. Голец из бассейна Берингова моря // Вопр. ихтиологии. 1955. Т. 3. 54−56.
  22. Ю.Ф., Глубоковский М. К., Черешнев И. А. Генетическая дифференциация и изменчивость двух симпатрических видов гольцов (Salvelinus, Salmonidae) Чукотки//Генетика. 1983. Т. 19. 584−593.
  23. Дж. Морская геология: В 2-х т. Т. 1. М.: Мир, 1987. 397 с.
  24. СВ., Слободянюк Я. Эволюция фрагмента гена цитохрома b митохондриальной ДНК байкальских и внебайкальских видов подкаменщиковых рыб // Мол. биол. 1997. Т. 31. № 1. 168−175.
  25. Комплексные исследования экосистем субарктической части Северо- Востока Азии в 1997 г. М.: ВИНИТИ, 1998.
  26. Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. школа, 1973. 343 с.
  27. . Гены. М.: Мир, 1987. 544 с.
  28. .А. Проблемы молекулярной систематики рода Salvelinus, основанной на данных об изменчивости нуклеотидных последовательностей главной некодирующей области митохондриальной ДНК // Генетика. 2002. Т. 38. № 8. 1−6.
  29. А.Г., Дударева Н. А. Митохондриальный геном. Новосибирск: Наука, 1990. 193 с.
  30. А.Г. Молекулярная эволюция лососевых рыб: автореф. дис. … канд. биол, наук. Владивосток: ИБМ ДВО РАН, 1995. 23 с.
  31. А.Г. Молекулярная филогения лососевых рыб: соответствие результатов анализа ядерной и митохондриальной ДНК // Генетика. 1997. Т. 33. № 2. 229−234.
  32. А.Г., Скурихина Л. А. Родственные взаимоотношения проходных гольцов рода Salvelinus (Salmonidae, Salmoniformes) по данным рестриктазного анализа ядерной ДНК // Генетика. 1999. Т. 35. № 9. 1258−1268.
  33. А.Г., Скурихина Л. А., Брыков Вл.А. Дивергенция мальмы Salvelinus malma в азиатской части Северной Пацифики по данным PCR-RFLP-анализа мрггохондриальной ДНК // Генетика. 2002. Т. 38. № 10. 1393−1401.
  34. В.Т., Политов Д. В., Салменкова Е. А., Малинина Т. В., Фролов СВ. Генетическая дифференциация симпатричных гольцов рода Salvelinus р. Яма//Генетика. 1996. Т. 32. № 11. 1562−1568.
  35. В.Т., Салменкова Е. А., Малинина Т. В., Фролов СВ. Генетическая дифференциация симпатричных популяций гольцов рода Salvelinus озера Аччен (Чукотский полуостров) // Генетика. 1998. Т. 34. № 3. 399−405.
  36. В.Т., Салменкова Е. А. Генетические различия гольцов арктической группы (Salvelinus alpinus L., Salvelinus taranetzi Kaganovsky) и тихоокеанской мальмы (Salvelinus malma Walbaum) // Генетика. 1998. Т. 34. №
  37. А.Г., Берначе Л. «Атлантическая» и «Дунайская» филогенетические группы кумжи Salmo trutta complex: генетическая дивергенция, эволюция, охрана//Вопр. ихтиологии. 1996. Т. 36. № 6. С 762−786.
  38. А.Г., Павлов СД., Максимов В. А. Аллозимная изменчивость и генетическая дифференциация популяций арктического гольца Salvelinus alpinus L. на ареале от Балтики до Таймыра // Генетика. 1996. Т. 32. № 4. С 547−559.
  39. А.Г., Павлов Д. Аллозимная изменчивость и генетическая дивергенция популяций арктического гольца и мальмы (Salvelinus alpinus — S. malma complex) // Вопр. ихтиологии. 1998. Т. 38. № 1. 47−61.
  40. А.Г. Эволюционные взаимоотношения между основными таксонами Salvelinus alpinus — Salvelinus malma complex: результаты сравнигельного анализа аллозимных данных разных авторов // Вопр. ихтиологии. 2001. Т. 41. № 2. 167−183.
  41. А.Г. Арктический голец Salvelinus alpinus Забайкалья и Таймыра: генетическая дифференциация и происхождение // Вопр. ихтиологии. 2002. Т. 42. № 2. 149−160.
  42. Д.С., Савваитова К. А., Груздева М. А. и др. Разнообразие рыб Таймыра: Систематика, экология, структура видов как основа биоразнообразия в высоких широтах, современное состояние в условиях антропогенного воздействия. М.: Наука, 1999. 207 с,
  43. Д.В., Омельченко В. Т., Салменкова Е. А., Малинина Т. В. Генетическая дифференциация арктических и дальневосточных гольцов рода Salvelinus // Генетика. 1998. Т. 34. № 1. 83−92.
  44. О.А., Малярчук Б. А., Соловенчук Л. Л. Сравнительный рестрикционный анализ сегмента гена цитохрома b у кижуча, кеты и горбуши //Генетика. 1997а. Т. 33. № 4. 471−474.
  45. О.А., Дмитренко И. С., Малярчук Б. А. Полиморфизм гена цитохрома b у тихоокеанских лососей рода Oncorhynchus // Тезисы докладов 1 Всероссийского конгресса ихтиологов. 19 976. 363.
  46. О.А. Молекулярно-генетическая дифференциация тихоокеанских лососей по данным об изменчивости митохондриальной ДНК // Мол. биол. 1998. Т. 32. № 2. 376−377.
  47. О.А., Малярчук Б. А. Генетическая дифференциация популяций мальмы и гольца Таранца по данным рестрикционного анализа гена цитохрома b // Генетика. 1999. Т. 35. № 8. 1104−1108.
  48. О.А. Генетическая дифференциация северной и южной форм мальмы по данным рестрикционного анализа митохондриальной ДНК // Генетика. 2002. Т. 38. № 4. 521−528.
  49. К.А. Арктические гольцы (структура популяционных систем, перспективы хозяйственного использования). М.: Агропромиздат, 1989. 223 с.
  50. Е.А., Омельченко В. Т. Популяционно-генетическая структура мальмы (Salvelinus malma Walbaum) Юго-Восточного Сахалина и южных Курильских островов // Генетика. 2000. Т. 36. № 8. 1100-И10.
  51. Е.К. Пресноводная палеогеновая ихтиофауна СССР и Монголии. М.: Наука, 1986. 157 с.
  52. А.Я. О некоторых новых пресноводных рыбах из Дальневосточного Края //Докл. АН СССР. Сер. А. 1933. № 2. 83−85.
  53. СВ. Дивергенция кариотипов чукотских гольцов // Докл. РАН, 1997. Т. 357. № 5. С 703−705.
  54. СВ., Фролова В. Н., Молодиченко А. В. Кариотип мальмы Salvelinus malma реки Яма и таксономический статус северной и южной мальмы //Биология моря. 1997. Т. 23. № 5. 309−313,
  55. СВ. Изменчивость и эволюция кариотипов лососевых рыб. Владивосток: Дальнаука, 2000. 229 с.
  56. СВ. Кариологические различия северной мальмы Salvelinus malma malma и белого гольца Salvelinus albus из бассейна реки Камчатки // Генетика. 2001. Т. 37. № 3. 350−357.
  57. И.А. К вопросу о таксономическом статусе симпатрических проходных гольцов рода Salvelinus (Salmonidae) Восточной Чукотки // Вопр. ихтиологии. 1982. Т. 22. № 6. 922−936.
  58. И.А., Скопец М. Б., Гудков П. К. Новый вид гольца Salvelinus levanidovi sp. nov. из бассейна Охотского моря // Вопр. ихтиологии. 1989. Т, 29. № 5. 691−704.
  59. И.А., Скопец М.Б, Salvethymus svetovidovi gen. et sp. nova — новая эндемичная рыба из подсемейства лососевых (Salmoninae) из озера ц Эльгыгытгын (Центральная Чукотка) // Вопр. ихтиологии. 1990. Т. 30. № 2. 201−213.
  60. И.А., Скопец М. Б. Биология гольцовых рыб озера Эльгыгытгын // Природа впадины озера Эльгыгытгын (проблемы изучения и охраны). Магадан: СВКНИИ ДВО РАН, 1993. 105−127.
  61. И.А. Биологическое разнообразие пресноводной ихтиофауны Северо-Востока России. Владивосток: Дальнаука, 1996. 198 с.
  62. И.А. Биогеография пресноводных рыб Дальнего Востока России. Владивосток: Дальнаука, 1998. 131 с.
  63. И.А., Волобуев В. В., Шестаков А. В., Фролов СВ. Лососевидные рыбы Северо-Востока России. Владивосток: Дальнаука, 2002. 496 с.
  64. СВ. Филогения митохондриальной ДНК лососевых рыб подсемейства Salmoninae: анализ последовательностей гена цитохрома b // Генетика. 2002. Т. 38. № 3. 357−367.
  65. Andersson L., Ryman N., Stahl G. Protein loci in the Arctic charr, Salvelinus alpinus L.: electrophoretic expression and variability patterns // J. Fish. Biol. 1983. V, 23. P. 75−94.
  66. Anderson S., de Bruijn M.H.L., Coulson A.R., Eperon I. C, Sanger F., Young I.G. Complete sequence of bovin mitochondrial DNA // J. Mol. Biol. 1982. V. 156. P. 683−717.
  67. Aquadro C.F., Greenberg B.D. Human mitochondrial DNA variation and evolution: Analysis of nucleotide sequences from seven individuals // Genetics. 1983. V. 103. P. 287−312.
  68. Amason U., Gullberg A., Widegren В. The complete nucleotide sequence of the mitochondrial DNA of the fm whale, Balaenoptera physalus // J. Mol. Evol. 1991. V. 33. P. 556−568. т
  69. Attardi G. Animal mitochondrial DNA: An extreme example of genetic economy // Int. Rev. Cyt. 1985. V. 93. P. 93−145.
  70. Avise J.C. Mitochondrial DNA and the evolutionary genetics of higher animals // Proc. Roy. Soc. Lond. B. 1986. V. 312. P. 325−342.
  71. Avise J.C. Molecular markers, natural history and evolution. N. Y.: Chapman andHall, 1994. S l i p .
  72. Avise J. C, Bermingham E., Kessler L.G., Saunders N.C. Characterization of mitochondrial DNA variability in a hybrid swarm between subspecies of bluegill sunfish (Lepomis macrochir) // Evolution. 1984. V. 38. P. 931−941.
  73. Avise J. C, Arnold J., Ball R.M., Bermingham E., Lamb Т., Neigel J.E., Reeb C.A., Saunders N. C Intraspecific phylogeography: The mitochondrial DNA bridge between population genetics and systematics // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1987. V. 18. P. 489−522.
  74. Bartlett S.E., Davidson W.S. Identification of Thunnus tuna species by the polymerase chain reaction and direct sequence analysis of their mitochondrial cytochrome b genes // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1991. V. 48. P. 309−317.
  75. Barton N.bl., Charlesworth B. Genetic revolutions, founder effects, and speciation // Ann. Rev. Ecol. Syst. 1984. V. 15. P. 133−164.
  76. Battey J., Clayton D.A. The transcription map of human mitochondrial DNA implicates transfer RNA excision as a major processing event // J. Biol. Chem. 1980. V. 255. P. 11 599−11 606.
  77. Beckenbach A.T., Thomas W.K., Sohrabi H. Intraspecific sequence variation in the mitochondrial genome of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Genome. 1990. V. 33. P. 13−15.
  78. Behnke R.J. Organizing the diversity of the Arctic charr complex // Biology of the Arctic charr: Proc. Int. Symp. on Arctic charr, Winnipeg, May 1981. Winnipeg: Univ. Manitoba Press, 1984. P. 3−21.
  79. Behnke R.J. Interpreting the phylogeny of Salvelinus // Physiol. Ecol. Japan. 1989. Spec. V.l. P. 35−48. т
  80. Bentzen P., Wright J.M., Bryden L.T. et al. Tandem repeat polymorphism in the mitochondrial control region of redfishes (Sebastes: Scorpaenidae) // J. Heredity. 1998. V. 89. P. 1−7.
  81. Bematchez L., Glemet H., Wilson C. C, Danzmann R.G. Introgression and fixation of Arctic char (Salvelinus alpinus) mitochondrial genome in an allopatric population of brook trout (Salvelinus fontinalis) // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1995. V.
  82. Bematchez L., Wilson C.C. Comparative phylogeography of Nearctic and Palearctic fishes // Mol. Ecol. 1998. V. 7. P. 431−452.
  83. Bibb M.J., Van Etten R.A., Wright СТ., Walberg M.W., Clayton D.A. Sequence and gene organization of mouse mitochondrial DNA // Cell. 1981. V. 26. P. 167−180.
  84. Brown J.R., Gilbert T.L., Kowbel D.J., O’Hara P.J., Buroker N.E., Beckenbach A.T., Smith M.J. Nucleotide sequence of the apocytochrome В gene in white sturgeon mitochondrial DNA //Nucl. Acids. Res. 1989. V. 17. P. 4389.
  85. Brown W.M. The mitochondrial genome of animals // Molecular Evolutionary Genetics / Eds. R.J. Macintyre. N. Y.: Plenum Press, 1985. P. 95−130.
  86. Brown W.M., George M.Jr., Wilson A.C. Rapid evolution of mitochondrial DNA//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1979. V. 76. P. 1967−1971.
  87. Brown W.M., Prager E.M., Wang A., Wilson A.C. Mitochondrial DNA sequences of primates: Tempo and mode of evolution // J. Mol. Evol. 1982. V. 18. P. 225−239.
  88. Brunner P.C., Douglas M.R., Osinov A., Wilson C. C, Bematchez L, Holarctic phylogeography of arctic charr (Salvelinus alpinus L.) inferred from mitochondrial DNA sequnces // Evolution. 2001. V. 55. № 3. P. 573−586.
  89. Buroker N.E., Brown J.R., Gilbert T.A., O’Hara P.J., Beckenbach A.T., Thomas W.K., Smith M.J. Length heteroplasmy of sturgeon mitochondrial DNA: An illegitimate elongation model // Genetics. 1990. V. 124. P. 157−163.
  90. R.L., Brown W.M., Wilson A.C. Ро1утофЬ1с sites and the mechanism of evolution in human mitochondrial DNA // Genetics. 1984. V. 106. P. 479−499.
  91. Cantatore P., Robert! M., Rainaldi G., Gadaleta M.N., Saccone C. The complete nucleotide sequence, gene organization, and genetic code of the mitochondrial genome of Paracentrotus lividus // J. Biol. Chem. 1989. V. 264. P. 10 965−10 975.
  92. Cantatore P., Saccone С Organization, structure, and evolution of mammalian mitochondrial genes//Int. Rev. Cytol. 1987. V. 108. P. 149−208.
  93. Carr S.M., Marshall D. DNA sequence variation in the mitochondrial cytochrome b gene of Atlantic cod (Gadus morhua) detected by the polymerase chain reaction // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1991. V. 48. P. 48−52.
  94. Cavender T.M., Kimura S. Cytotaxonomy and interrelationships of Pacific BasinSalvelinus/ZPhysiol.Ecol. Jap. 1989. V. l .P. 49−68.
  95. Clary D.O., Wolstenholme D.R. The mitochondrial DNA molecule of Drosophila yakuba: nucleotide, gene organization and genetic code // J. Mol. Evol. 1985. V. 22. P. 252−271.
  96. Clayton D.A. Transcription of the mammalian mitochondrial genome // Ann. Rev. Biochem. 1984. V. 53. P. 573−594.
  97. Clayton D.A. Replication and transcription of vertebrate mitochondrial DNA // Ann. Rev. Cell. Biol. 1991. V. 7. P. 453−478.
  98. Consuegra S., Garcia de Leaniz C, Serdio A., Gonzalez Morales M., Straus 1.G., bCnox D., Verspoor E. Mitochondrial DNA variation in Pleistocene and modem Atlantic salmon from Iberian glacial refugium // Mol. Ecol. 2002. V. 11. №
  99. Crane P.A., Seeb L.W., Seeb J.E. Genetic relationships among Salvelinus species inferred from allozyme data // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1994. V. 51. № 1. P. 182−197.
  100. Dawid LB. Evolution of mitochondrial DNA sequences in Xenopus // Dev. Biol. 1972. V. 29. P. 139−151.
  101. DeCicco A.L. Long-distance movements of anadromous dolly varden between Alaska and the USSR//Arctic. 1992. V. 45. P. 120−123.
  102. Densmore L.D., Wright J.W., Brown W.M. Length variation and heteroplasmy are frequent in mitochondrial DNA from parthenogenetic and bisexual lizards (genus Cnemidophorus) // Genetics. 1985. V. 110. P. 689−707.
  103. Derenko M., Malyarchuk В., Shields G. Mitochondrial cytochrome b sequence from a 33,000 year-old wooly mammoth (Mammuthus primigenius) // Ancient Biomolecules. 1997. V. 1. P. 149−153.
  104. Desjardins P., Morals R. Sequence and gene organization of the chicken mitochondrial genome // J. Mol. Biol. 1990. V. 212. P. 599−634.
  105. Efstratiadis A.J., Posakony J.W., Maniatis T. et al. The structure and evolution of the human beta-globin gene family // Cell. 1980. V. 21. P. 653−668.
  106. Ewens W.J. The role of models in the analysis of molecular genetic data, with particular reference to restriction fragment data // Statistical analysis of DNA sequence data / Ed. B.S.Weir. N. Y.: Dekker, 1983. P. 45−73.
  107. Eyre-Walker A. Do mitochondrial genome recombine in humans? // Phil. Tans. R. Soc. Lond. B. 2000. V. 355. P. 1573−1580.
  108. Farias LP., Orti G., Meyer A. Total evidence: molecules, morphology, and the phylogenetics of cichlid fishes // J. Exp. Zool. 2000. V. 288. № 1. P. 76−92.
  109. Felsenstein J. PHYLIP — Phylogeny Inference Package (Version 3.2) // Cladistics. 1989. V. 5. P. 164−166.
  110. Ferguson A. Systematics of Irish charr as indicated by electrophoretic analysis of tissue proteins // Biochem. Syst. Ecol. 1981. V. 9. P. 225−232.
  111. Ferris S.D., Sage R.D., Huang СМ., Nielsen J.M., Ritte U., Wilson A.C. Flow of mitochondrial DNA across a species boundary // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. V. P. 2290−2294.
  112. Ferris S.D., Sage R.D., Wilson A.C. DNA variation and evolution // Nature, 1984. V. 309. P. 285−286. Ш
  113. Gissi C, Reyes A., Pesole G., Saccone С Lineage-specific evolutionary rate in mammalian mtDNA // Mol. Biol. Evol. 2000. V. 17. № 7. P. 1022−1031.
  114. Glemet H., Blier P., Bematchez L. Geographical extent of Arctic charb (Salvelinus alpinus) mtDNA introgression in brook char populations (S. fontinalis) from eastern Quebec, Canada// Mol, Ecology. 1998. V. 7. P. 1655−1662.
  115. Gray M.W. Mitochondrial genome diversity and the evolution of mitochondrial DNA // Can. J. Zool. 1982. V. 60. P. 157−171.
  116. Greenberg B.D., Newbold J.E., Sugino A. Intraspecific nucleotide sequence variability surrounding the origin of replication in human mitochondrial DNA // Gene. 1983. V. 21. P. 33−49.
  117. Grewe P.M., Billington N., Hebert P.D.N. Phylogenetic relationships among members of Salvelinus inferred from mitochondrial DNA divergence // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1990. V. 47. P. 984−991. «I
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!