Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Профилактика вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней в промышленных комплексах

Диссертация: Профилактика вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней в промышленных комплексах
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В стерильные флакончики с опилками вносили по 0,2 мл вируса в исходной концентрации (всего 8 проб). Затем в 4 из них для увлажнения опилок добавляли по 1,8 мл физиологического раствора. Четыре других оставались сухими. После этого по два флакончика (один с добавлением только 0,2 мл вируса, а другой — 0,2 мл вируса и 1,8 мл физиологического раствора) помещали на 24 часа и 120 часов в эксикаторы… Читать ещё >

Профилактика вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней в промышленных комплексах (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общие сведения об этиологии и распространенности вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней
    • 1. 2. Диагностика вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней
      • 1. 2. 1. Эпизоотологические данные
      • 1. 2. 2. Клинические признаки болезни
      • 1. 2. 3. Патологоанатомические изменения
      • 1. 2. 4. Лабораторная диагностика
    • 1. 3. Профилактические и оздоровительные мероприятия при трансмиссивном гастроэнтерите свиней
  • 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материалы и методы исследований
    • 2. 2. Результаты исследований
      • 2. 2. 1. Устойчивость вируса трансмиссивного гастроэнтерита свиней к воздействию различных факторов в экспериментальных исследованиях
        • 2. 2. 1. 1. Влияние температурно-влажностного режима и времени экспозиции
        • 2. 2. 1. 2. Воздействие ультрафиолетового облучения
        • 2. 2. 1. 3. Влияние растворов формальдегида
      • 2. 2. 2. Воздействие минеральных и витаминных добавок на репродукцию коронавируса в культуре ткани
      • 2. 2. 3. Особенности течения трансмиссивного гастроэнтерита свиней в неблагополучных хозяйствах при различных технологиях содержания животных
        • 2. 2. 3. 1. Влияние различных технологий и относите льной влажности воздуха помещений на течение болезни у поросят-сосунов
        • 2. 2. 3. 2. Влияние различных технологий и относительной влажности воздуха помещений на течение болезни и сохранность поросят-отъемышей
      • 2. 2. 4. Влияние минеральных и витаминных добавок (МВД) на восприимчивость поросят к трансмиссивному гастроэнтериту
      • 2. 2. 5. Особенности иммунной защиты свиней от трансмиссивного гастроэнтерита в энзоотических очагах
        • 2. 2. 5. 1. Состояние иммунной защиты новорожденных поросят в очагах ТГЭ
        • 2. 2. 5. 2. Особенности иммунной защиты поросятотъемышей в неблагополучных по ТГЭ хозяйствах
    • 2. 2. б.Профилактика трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-сосунов в неблагополучных хозяйствах
      • 2. 2. 6. 1. Неспецифическая профилактика ТГЭ
      • 2. 2. 6. 2. Специфическая профилактика ТГЭ
      • 2. 2. 6. 2. 1.Профилактика ТГЭ с использованием вакцины из штамма «Риме»
      • 2. 2. 6. 2. 2. Профилактика ТГЭ с использованием инактивированной вакцины производства ЧССР
      • 2. 2. 6. 2. 3. Профилактика ТГЭ с использованием инактивированной вакцины из штамма ВГНКИ
      • 2. 2. 6. 2. 4.Профилактика ТГЭ с использованием на-тивного материала
      • 2. 2. 6. 2. 5.Профилактика ТГЭ с использованием живой авирулентной вакцины ВГНКИ-5 в сочетании с растворами формальдегида
      • 2. 2. 7. Профилактика ТГЭ у поросят-отъемышей в неблагополучных хозяйствах
      • 2. 2. 7. 1. Неспецифическая профилактика ТГЭ с использованием растворов формальдегида
      • 2. 2. 7. 2. Неспецифическая профилактика ТГЭ с использованием аэрозольной дезинфекции
      • 2. 2. 7. 3. Неспецифическая профилактика ТГЭ с использованием крезацина
      • 2. 2. 8. Специфическая профилактика ТГЭ у поросят-отъемышей
      • 2. 2. 8. 1. Профилактика ТГЭ с использованием инактиви-рованной вакцины производства ЧССР
      • 2. 2. 8. 2. Профилактика ТГЭ с использованием инактиви-рованной вакцины из штамма ВГНКИ-76 №
      • 2. 2. 8. 3. Профилактика ТГЭ с использованием аллоген-ной сыворотки от переболевших свиней
      • 2. 2. 9. Специфическая профилактика ТГЭ у поросят-отъемышей в зависимости от эпизоотической ситуации
      • 2. 2. 10. Неспецифическая профилактика ТГЭ у поросят на откорме

Внедрение в животноводство промышленных технологий, тесно связанных с интенсификацией производства, требует разработки новых подходов к профилактике инфекционных болезней. В результате неизбежного увеличения концентрации поголовья на ограниченной территории и нарастания живой массы на единицу площади нарушается равновесие между макрои микроорганизмами, что со временем приводит к снижению выживаемости животных и повышению агрессивности микроорганизмов.

Одной из актуальных проблем в инфекционной патологии свиней является вирусный (трансмиссивный) гастроэнтерит (ТГЭ). Это заболевание наносит хозяйствам огромный экономический ущерб, нарушает цикличность производственных процессов, сдерживая развитие этой отрасли животноводства.

Недостаточная изученность взаимосвязи макроорганизма и окружающей среды, патогенеза болезни, особенностей ее проявления при различных технологиях не дают возможности обеспечить эффективную защиту свиней в неблагополучных хозяйствах.

Исследование закономерностей развития инфекционного и эпизоотического процессов, выявление особенностей каждого звена эпизоотической цепи в изменившихся условиях, определение уровня иммунной защиты всех возрастных групп животных являются важными факторами при разработке мер борьбы с ТГЭ. Стабильное благополучие хозяйств по вирусному (трансмиссивному) гастроэнтериту свиней может быть обеспечено только при комплексном подходе к решению этой проблемы.

Цель и задачи исследований.

Целью настоящей работы являлась разработка научно обоснованных эффективных способов профилактики ТГЭ свиней в стационарно неблагополучных хозяйствах (комплексах) с учетом основных свойств возбудителя и его взаимодействия с макроорганизмом при разных технологиях ведения свиноводства и различном иммунном статусе животных.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

• определение устойчивости вируса ТГЭ к воздействию различных факторов (температура, влажность, время экспозиции, ультрафиолетовое облучение, раствор формальдегида), а также выяснение влияния различных минеральных и витаминных добавок (МВД) на репродукцию возбудителя в перевиваемой культуре клеток;

• выявление особенностей проявления и течения вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита у свиней разных возрастных групп при различных технологиях содержания животных и наличия в рационе МВД;

• изучение в энзоотических очагах закономерности естественной иммунной защиты от ТГЭ у поросят-сосунов, отъемышей и подсосных свиноматок;

• разработка способов неспецифической и специфической профилактики ТГЭ у свиней в зависимости от технологии их содержания и кормления в неблагополучных хозяйствах.

Научная новизна.

• Установлено влияние относительной влажности воздуха и продолжительности опоросов в помещениях на устойчивость свиней к трансмиссивному гастроэнтериту. Заболеваемость и падеж поросят-сосунов и отъемышей в стационарно неблагополучных хозяйствах (комплексах) при температуре воздуха 18−20°С и 40−50% относительной влажности повышаются, а при той же температуре и 6080% влажности снижаются. Более высокая сохранность поросят-сосунов регистрируется при содержании их в помещениях с относительной влажностью 40−50% при коротких опоросах (3−5 дней) и при длинных опоросах (более 10−12 дней) с влажностью 70−80%.

• В экспериментах с использованием референтного штамма Т ОзбЗБ^ вируса ТГЭ С показана зависимость сохранения его жизнеспособности от относительной влажности окружающего воздуха.

• На перевиваемой линии клеток СПЭВ показано влияние минеральных и витаминных добавок (сольдровита и свиного робора-на) и формальдегида на репродукцию референтного штамма ТОзбЗВ192 вируса ТГЭ С. Установлено, что добавление в поддерживающую среду сольдровита, свиного роборана в дозе 10″ 4 мг/мл или формальдегида в концентрации 0,0035% приводит к усилению репродукции коронавируса в 10−31,6 раз.

• Установлено, что на формирование иммунного статуса у свиней в стационарно неблагополучных по ТГЭС хозяйствах оказывает влияние темиературно-влажностный режим помещений. Достоверное повышение титра антител к коронавирусу в сыворотке крови подсосных свиноматок установлено при содержании их в помещениях с 40−50% относительной влажностью воздуха, при которой регистрируется наибольшая устойчивость возбудителя в аэрозоле.

• На примере вакцинного штамма «Риме» вируса трансмиссивного гастроэнтерита свиней показано, что внутримышечное введение супоросным свиноматкам больших доз вируса (более 20 тысяч инфекционных доз), увеличение кратности его введения (более одного раза) и приближение сроков иммунизации к опоросу (менее чем за 25 дней до опороса) снижают устойчивость поросят-сосунов к заболеванию. Установлена прямая зависимость устойчивости поросят к вирусу ТГЭ от технологии их выращивания.

• Показана безвредность для животных и выраженная имму-номодулирующая активность растворов формальдегида на физиологическом растворе (патент РФ № 2 077 882 на изобретение «Иммуномодулирующее средство», 1997 г.).

• Разработан простой и эффективный способ неспецифической профилактики ТГЭ у поросят-сосунов с использованием растворов формальдегида 0,04%-0,08%-ной концентрации. Схема применения зависит от эпизоотической ситуации, технологии содержания и уровня заболеваемости (патент РФ № 2 028 804 на изобретение «Способ профилактики трансмиссивного гастроэнтерита свиней», 1995 г.).

• Установлено, что внутримышечное введение живых аттенуи-рованных вакцин совместно с 0,12%-ным раствором формальдегида обеспечивает предотвращение ТГЭ С в энзоотических очагах (патент РФ № 2 035 190 на изобретение «Способ предотвращения вирусных заболеваний сельскохозяйственных животных», 1995 г.).

• Предложены научно обоснованные схемы профилактики трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-отъемышей с помощью живых и инактивированных вакцин с учетом эпизоотического состояния свиноводческих хозяйств.

• На основе специфического эритроцитарного диагностикума и кроличьих антисывороток к иммуноглобулинам А, М и О свиньи, разработан метод определения уровня изотип-специфических антител к вирусу трансмиссивного гастроэнтерита в сыворотке крови, молозиве и молоке свиноматок.

Практическая ценность.

Предложены новые принципы профилактики ТГЭ свиней в неблагополучных хозяйствах, позволяющие обеспечивать существенное повышение сохранности всех возрастных групп животных. Выявлены основные закономерности течения инфекции в энзоотических очагах, что позволило разработать научно обоснованную систему мер борьбы с этим заболеванием.

По материалам диссертации разработаны: Методические рекомендации по борьбе с вирусным (трансмиссивным) гастроэнтеритом свиней. Рекомендации утверждены Главным управлением ветеринарии МСХ СССР, 1981 г.

• Рекомендации «Диагностика вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней», утверждены Ветеринарной секцией Саратовского областного правления НТО сельского хозяйства, 1982 г.

• Инструкция «О мероприятиях по профилактике и ликвидации заболевания свиней трансмиссивным гастроэнтеритом», утверждена 11.03.85 ГУВ МСХ СССР.

• Рекомендации по специфической профилактике трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-сосунов. Утверждены Производственным управлением сельского хозяйства Саратовского облисполкома 1985 г.

• Способ профилактики ТГЭ. Патент РФ на изобретение № 2 028 804, 1995 г.

• Способ предотвращения вирусных заболеваний сельскохозяйственных животных. Патент РФ на изобретение № 2 035 190, 1995 г.

• Иммуномодулирующее средство. Патент РФ на изобретение № 2 077 882, 1997 г.

• Способ профилактики вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита. Рационализаторское предложение № 124−13/376−522, принятое Главным управлением ветеринарии Минсельхоза СССР от 20.01.84.

• Научно-техническая документация на препарат «Иммунофарм». Технические условия № 9336−231−494 189−97, рассмотрены и утверждены в установленном порядке.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

ВЫВОДЫ.

1. Установлены общие закономерности, определены лимитирующие факторы и их значение при профилактике вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней в неблагополучных комплексах (хозяйствах) в зависимости от технологий производства, эпизоотической ситуации, микроклимата, условий кормления, содержания и возраста животных. Научно обоснованы и экспериментально подтверждены новые принципы и меры борьбы с инфекцией при помощи комплексного применения технологических приемов, специфических средств, формальдегида, микроэлементов и витаминов.

2. Клинико-эпизоотологические наблюдения и диагностические исследования, проведенные в промышленных комплексах и крупных свиноводческих хозяйствах, свидетельствуют о том, что трансмиссивный гастроэнтерит (ТГЭ) характеризуется тенденцией к стационарности, заболеванием всех возрастных групп животных и является примером эволюции латентной инфекции, возникающей на фоне интенсификации животноводства. Возбудитель ТГЭ изменяет гомеостаз животных, что нарушает биологическое равновесие между паразитом и хозяином и приводит к активизации инфекционного, а затем и эпизоотического процессов.

3. Длительное неблагополучие хозяйств (комплексов) по вирусному (трансмиссивному) гастроэнтериту свиней, основные причины гибели поросят-сосунов и отъемышей, рецидивность (периодичность) эпизоотий ТГЭ обусловлены:

• увеличением поголовья на ограниченной территории;

• непрерывностью опоросов;

• понижением влажности воздуха в свинарниках;

• длительностью эксплуатации помещений и количеством опоросов в секциях;

• сменностью родильных станков;

• нарушением принципа «все занято — все пусто»;

• сроками формирования групп;

• временем инфицирования животных в подсосный период;

• ранним отъемом поросят;

• наличием хронически инфицированных животных;

• накоплением возбудителя во внешней среде;

• возрастом животных;

• изменением иммунного фона свинейв наличием в молоке свиноматок повышенного количества комплементапорядком заполнения полузданий- ® длительностью санации помещений- ® технологией отъемабессистемным скармливанием животным микроэлементов и витаминов.

4. Ретроспективная диагностика ТГЭ основывается на определении специфических антител в парных сыворотках крови подсосных свиноматок и изучении уровня антител к коронавирусу в крови 10-, 20-, 30-, 45- и 60-ти дневных поросят-сосунов и отъемышей. Повышение их титра у свиноматок или поросят (в старших группах по отношению к младшим) свидетельствует о переболевании животных трансмиссивным гастроэнтеритом.

5. В экспериментальных исследованиях с использованием референтного штамма ТОзеЗБ^ коронавируса установлена зависимость жизнеспособности возбудителя ТГЭ от относительной влажности воздуха, ультрафиолетового облучения, добавления в питательную среду минеральных и витаминных добавок и формальдегида:

• при температуре 22 °C вирус ТГЭ более устойчив во влажном подстилочном материале, чем в сухом, а в аэрозоле — при 40% относительной влажности воздуха по сравнению с 80%;

• ультрафиолетовое облучение вирусной суспензии с исходным титром 105 ТЦД 50/мл полностью инактивирует возбудителя в течение 20 минут;

• добавление в поддерживающую среду при культивировании вируса ТГЭ сольдровита, свиного роборана в дозе 10~4 мг/мл или формальдегида (в 200−400 раз меньше токсической концентрации) приводит к повышению накопления в ней коронавируса в 10−31,6 раз при заражающей дозе возбудителя 102 ТЦД 50/мл.

6. Установлено, что в неблагополучных хозяйствах на устойчивость свиней к ТГЭ существенное влияние оказывают относительная влажность воздуха и длительность опоросов в помещениях. Заболеваемость и падеж поросят-сосунов и отъемышей при температуре 18−20°С и 40−50% относительной влажности повышаются, а при той же температуре и 60−80% влажности снижаются. Более высокая сохранность поросят-сосунов наблюдается в условиях, когда относительная влажность в помещениях составляет 40−50%, а длительность опороса — 3−5 дней.

7. Показано, что устойчивость новорожденных поросят к ТГЭ зависит от иммунного статуса свинохматок, на который оказывает влияние сохранение вируса в окружающей среде при температуре 18−21°С и 40−50% относительной влажности воздуха, когда коронави-рус устойчив в аэрозоле. Невосприимчивость поросят к инфекции коррелирует с титром антител в сыворотке крови их матерей, а при 70−80% влажности, когда коронавирус в большей степени сохраняет свою жизнеспособность в подстилочном материале — с титром антител в молоке. Одновременно с этим наибольшая заболеваемость и падеж поросят-сосунов регистрируются в пометах от подсосных свиноматок с повышенным содержанием комплемента в молоке.

8. Сохранность поросят-отъемышей в неблагополучных по ТГЭ хозяйствах зависит от иммунного статуса маточного поголовья, эффективности их защиты от заражения коронавирусом в подсосный период, наличия в кормах минеральных и витаминных добавок (МВД) или витаминизации поголовья. Бессимптомное или активное перебо-левание поросят-сосунов, скармливание инфицированному поголовью МВД при передаче их в доращивание или внутримышечная обработка тривитамином, вызывают увеличение падежа животных.

9. На основе выраженной иммуномодулирующей активности формальдегида разработан способ профилактики ТГЭ в неблагополучных хозяйствах путем внутримышечного введения 0,04−0,08% растворов формальдегида свиноматкам (по 4−6 мл) и/или поросятам -(по 1−3 мл) по одной из следующих схем:

• однократно в день опороса свиноматкам и поросятам;

• двукратно свиноматкам за 22−26 и 16−20 дней до опороса;

• однократно поросятам на вторые сутки после рождения.

10. Разработан принципиально новый подход к профилактике ТГЭ в неблагополучных хозяйствах путем внутримышечного введения супоросным свиноматкам за 16−20 дней до опороса 0,12% раствора формальдегида в дозе 5 мл на голову с последующим инъецированием через 3−4 часа живой аттенуированной вакцины ВГНКИ-5 (против ТГЭ) в рекомендуемых дозах. Этот способ обеспечивает 90% защиту поросят от заражения коронавирусом в подсосный период.

11. В стационарно неблагополучных хозяйствах эффективность специфической профилактики ТГЭ свиней живыми атенуированными вакцинами зависит от сроков, кратности и иммунизирующей дозы препаратов. Однократное внутримышечное введение свиноматкам вакцины из штамма «Риме» за 40−45 дней до опороса в дозе 4,0−4,2 ^ ТЦД50 в объеме 5 мл обеспечивает 95% защиту поросят от болезни в подсосный период.

12. Показана возможность использования нативного материала и инактивированных вакцин для предотвращения заражения поросят-сосунов коронавирусом в неблагополучных по ТГЭ хозяйствах. Установлено, что:

• однократное (за 4−10 дней до опороса) или двукратное (за 1220 и 3−10 дней до опороса) внутримышечное введение по б мл на каждую инъекцию препарата, приготовленного из внутренних органов больных поросят первых дней жизни и содержащего 0,02% раствора формальдегида, обеспечивает снижение падежа новорожденных животных в 1,5−4,5 раза. Наиболее выраженная эффективность показана при применении его основным свиноматкам;

• эффективность инактивированных вакцин (вакцины ЧССР и ВГНКИ-5 против ТГЭ) зависит от эпизоотического состояния хозяйств и сроков иммунизации. Однократная иммунизация свиноматок вакциной ЧССР (в двойной дозе) за 7−12 дней до опороса обеспечивает 80−100% защиту поросят-сосунов от ТГЭ.

13. Установлено, что в неблагополучных по ТГЭ хозяйствах значительное снижение заболеваемости и падежа поросят-отъемышей достигается дезинфекцией помещений в присутствии животных при 60−70% относительной влажности смесью хлор-скипидара (из расчета 2 г хлорной извести 0,3 г скипидара на 1 м³ воздуха через день в течение 15 суток после начала заселения поросят в сектора) или при 4050% влажности — водным раствором 0,5% формалина (с помощью САГов в течении 10 дней после заселения с ежедневной экспозицией 15−20 минут), а также скармливанием животным крезацина (20 дней после заселения через день, а в последующем, до сдачи на откорм, -один раз в 3 дня). По сравнению с контрольными группами животных, где не проводились мероприятия по газовой и аэрозольной дезинфекций, обеспечено снижение падежа поросят на 11,5% при применении дезинфекции хлор-скипидаром и на 12,5% аэрозольной дезинфекции формалином. Крезацин также влияет на снижение падежа (от 4,1 — 13,2%) в зависимости от инфицированности внешней среды.

14. Оптимизированы условия применения инактивированных и живых вакцин для профилактики ТГЭ у поросят в подсосный период: Инактивированная вакцина вводится внутримышечно в дозе 2,0−2,5 мл, содержащей не менее 106,5−107'5 ТЦД50/МЛ антигена. Живая вакцина вводится внутримышечно в дозе 3,0 мл с содержанием 104'°-104'2 ТЦД50/мл исходного штамма вируса «Риме» против ТГЭ.

15. Испытана профилактическая и терапевтическая эффективность аллогенной сыворотки крови, полученной от переболевших ТГЭ свиней, у поросят-отъемышей. Установлено, что сыворотка не обладает профилактическим эффектом. Однако двух-трехкратное внутримышечное введение сыворотки в дозе 15 мл больным поросятам, переболевшим в подсосный период, обеспечивает повышение сохранности и кондиции животных, соответственно, на 14,6 и 23,8%.

16. Показана принципиальная возможность неспецифической профилактики трансмиссивного гастроэнтерита у откормочных свиней путем однократного внутримышечного введения 0,08% раствора формальдегида в дозе 5мл через 1,5−2 суток после перевода свиней в группу откорма. Это обеспечивает сокращение падежа и нетехнологического выбытия животных, соответственно, в 2,5 и 3,1 раза.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1. Ретроспективную диагностику вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита следует осуществлять как на основании исследований парных сывороток крови подсосных свиноматок, так и по результатам анализа крови на наличие специфических антител у животных других возрастных групп. Достоверное повышение уровня специфических антител к коронавирусу в крови поросят-сосунов и отъемышей в старших группах по отношению к младшим свидетельствует о неблагополучии хозяйств (комплексов) по этому заболеванию.

2. В неблагополучных по ТГЭ хозяйствах при нормальных параметрах микроклимата опоросы свиноматок в помещениях с 4050% относительной влажностью воздуха необходимо проводить в сроки от 3 до 5 дней, а с 60−70% влажностью — за 10−12 дней. При этом, необходимо строго соблюдать принцип «все занято — все пусто» в секторах и отдельных станках.

3. В свиноводческих комплексах с поточной технологией и павильонной застройкой рекомендуется последовательное заполнение помещений животными на опоросе и доращивании, начиная с дальних секторов. Комплектование групп поросят-отъемышей следует проводить в течение 4−5 дней и не раньше, чем через 10−15 суток после полного освобождения секций. В помещениях для доращивания поддерживать 60−70% относительную влажность воздуха.

4. Для дезинфекции помещений в присутствии животных при 40−50% относительной влажности воздуха использовать 0,5% водный раствор формалина, который распылять с помощью САГов в течение 10 дней с экспозицией 15−20 минут в сутки, а при 60−80% влажностисмесь хлор-скипидара из расчета 2 г хлорной извести и 0,3 мл скипидара на 1 м³ воздуха через день в течение 15 суток после начала заселения секторов поросятами-отъемышами.

5. С целью неспецифической профилактики ТГЭ у поросят-сосунов рекомендуем использовать 0,08% раствор формальдегида. В зависимости от эпизоотического состояния хозяйств (комплексов) препарат вводить внутримышечно свиноматкам по 5 мл и поросятам по 2 мл на каждую инъекцию по одной из следующих схем:

— однократно в день опороса одновременно свиноматкам и поросятам;

— двукратно свиноматкам за 22−26 и 16−20 дней до опороса;

— однократно поросятам на вторые сутки после рождения.

6. Для специфической профилактики ТГЭ у поросят-сосунов свиноматкам за 16 -20 дней до опороса внутримышечно вводят по 5 мл 0,12% раствора формальдегида с последующим введением через 3 -3,5 часа вакцины из штамма ВГНКИ-5 в рекомендуемых дозах.

7. Специфическую профилактику трансмиссивного гастроэнтеу* и «-» рита в неблагополучных хозяйствах у поросят-сосунов и отъемышеи проводить вакциной из штамма «Риме», которую необходимо вводить внутримышечно свиноматкам за 40−45 дней до опороса в дозе 5 мл и поросятам в 23−27-дневном возрасте, но не позднее, чем за 7−8 дней до отъема, в дозе 3 мл. В одной иммунизирующей дозе должно содержаться 104 ТЦД5о вируса.

8. Для профилактики ТГЭ у поросят-отъемышей в неблагополучных хозяйствах использовать инактивированные вакцины, которые вводить животным однократно внутримышечно в 23−27-дневном возрасте при содержании в одной иммунизирующей дозе 6,5−7,5 ТЦД50 антигена, но только при отсутствии переболевания (клинического или бессимптомного) поросят трансмиссивным гастроэнтеритом в подсосный период.

9. Лечение поросят-отъемышей, переболевших трансмиссивным гастроэнтеритом в подсосный период, осуществлять аллогенной сывороткой крови свиней (откормочного возраста) из неблагополучных хозяйств путем внутримышечного введения 1−2 раза по 15 мл препарата на каждую инъекцию сразу после отъема поросят от свиноматок.

10. Дополнительное введение в рацион микроэлементов и витаминов или внутримышечную инъекцию поросятам поливитаминов в период отъема их от свиноматок осуществлять только при отсутствии переболевания (активного или бессимптомного) в подсосный период.

11. Профилактику ТГЭ у свиней откормочного возраста осуществлять путем однократного внутримышечного введения 0,08% раствора формальдегида в дозе 5 мл через 1,5−2 суток после заселения животных в сектор.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Как видно из представленного обзора литературы, трансмиссивный гастроэнтерит свиней широко распространен и наносит хозяйствам большой экономический ущерб. Профилактика, осуществляемая в настоящее время в неблагополучных фермах (комплексах) с помощью вакцин (живых и инактивированных) в комплексе с организационно-технологическими и ветеринарно-санитарными мероприятиями, не является достаточно эффективной. Объяснением этому, на наш взгляд, может служить отсутствие цельного представления об эпизоотологии и патогенезе этой болезни, основанных на изучении естественного течения ТГЭ, особенно в неблагополучных хозяйствах.

Так, наряду с общепринятыми фактами (вирулентные штаммы ТГЭ более иммуногенны, чем аттенуированныенет корреляции между титрами антител и устойчивостью поросят к заражению коро-навирусоместественное переболевание свиноматок перед опоросом обеспечивает защиту их потомства через молозиво и молоко), литературные данные не лишены противоречий. Также не рассматриваются некоторые вопросы развития инфекционного и эпизоотического процессов в энзоотических очагах, регуляция фона вирусоно-сительства у маточного поголовья, его влияние на заболеваемость новорожденных поросят.

Нет единого мнения и в оценке иммунной защиты поросят от трансмиссивного гастроэнтерита после контрольного заражения. Эффективность профилактики во многих случаях оценивается не по снижению заболеваемости, а по уменьшению падежа животных. Если использовать этот показатель, то, на наш взгляд, необходимо учитывать не только падеж, но и вынужденный убой поросят на протяжении всего периода до передачи на откорм.

Никто из авторов не указывает в своих работах на условия содержания животных при проведении экспериментальных исследований. Например, очень важно знать: вместе или отдельно содержались свиноматки, сколько голов находилось в одном боксе, при какой влажности и температуре окружающего воздуха.

Практически нет данных об иммунном фоне маточного поголовья до проявления клинических признаков ТГЭ у новорожденных поросят. Исследования в этом направлении позволяют не только оценить эффективность проводимых профилактических мероприятий, но и понять закономерности естественной защиты животных от трансмиссивного гастроэнтерита в неблагополучных хозяйствах.

До настоящего времени никто из авторов не связывает восприимчивость новорожденных к заражению коронавирусом с интенсивностью обменных процессов, происходящих в организме, и возрастом животных. Отсутствуют данные и о возможности бессимптомного переболевания поросят в подсосный период.

Результаты исследований в этом направлении позволили бы дать ответы на эти вопросы и всесторонне подойти к проблеме профилактики ТГЭ в промышленных свиноводческих комплексах.

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

Работа выполнялась в Саратовской НИВС, ВИЭВ, свиноводческих хозяйствах (комплексах) Саратовской, Московской, Челябинской, Самарской, Свердловской, Мурманской, Ленинградской, Пензенской и Тамбовской областей с 1975 по 1998 годы.

Эпизоотологическому обследованию подвергнуто 16 свиноводческих комплексов с различной проектной мощностью (на получение 24, 54, 108 и 216 тысяч поросят в год), 3 племфермы и 4 товарных хозяйства, в которых был диагностирован ТГЭ свиней.

В экспериментах и наблюдениях использовано 702 772 животных (5812 свиноматок, 449 607 поросят-сосунов, 239 097 поросят-отъемышей и 8256 свиней откормочного возраста).

Работа велась в свиноводческих хозяйствах (комплексах) с поточно-цеховой системой производства, где все технологические процессы (содержание холостых, супоросных и подсосных свиноматок, поросят-сосунов и отъемышей, откормочного поголовья) связаны между собой общей галереей. Моноблочная застройка предполагает взаимосвязь отдельных помещений, а павильонная — отдельных полузданий с определенным количеством секторов (7−8-12).

Оценивали различные системы содержания животных. При двухфазной системе предусмотрено однократное перемещение поросят после рождения на откорм в 120-дневном возрасте. При трехфазной — двукратное перемещение: перевод поросят после отъема в 26−60-дневном возрасте, а затем в 100−120-дневном возрасте — на откорм.

В лабораторных исследованиях и при проведении экспериментов использовались: клеточная культура (штамм СПЭВ), вакцины против ТГЭ производства ЧССР, ГДР (штамм «Риме»), ВГНКИ-5, референтный штамм T036SD192 вируса ТГЭ, эритроцитарный диаг-ностикум для ТГЭ, кроличьи антисыворотки к иммуноглобулинам свиньи, вирусу ТГЭ, нормальные кроличьи сыворотки, флуоресцирующие сыворотки к кроличьим иммуноглобулинам, к вирусу ТГЭ, минеральные и витаминные добавки (сольдровит, роборан свиной, олахиндокс), растворы формальдегида 0,04%-2,2%-ной концентрации, эритроциты барана, комплемент морской свинки, свиноматки всех возрастных групп, новорожденные поросята и отъемыши, сыворотки крови, молозива и молока свиней, аллогенная сыворотка от переболевших ТГЭ свиней.

В реакции нейтрализации на культуре клеток СПЭВ исследовали 875 проб сывороток крови, 221 пробу молозива и 161 пробу молока.

В 39 сыворотках крови, 59 пробах молозива и 39 пробах молока определяли количество комплемента.

Устойчивость референтного штамма ТО36 ЗЭ^ коронавируса (47 проб) определяли при различных температурно-влажностных режимах и времени экспозиции, 27 проб — при ультрафиолетовом облучении, 16 проб — при добавлении в поддерживающую среду 0,04%-0,12% растворов формальдегида, 42 пробы — при внесении в культуру клеток СПЭВ минеральных и витаминных добавок (роборана свиного, сольдровита, олахиндокса).

Материал от вынужденно убитых животных и павших поросят подвергался вирусологическому анализу.

Кровь и молозиво от свиноматок получали после опороса, молоко — на 5−6 сутки лактации. Учитывали заболеваемость и падеж животных и сопоставляли их с результатами серологических исследований.

С помощью эритроцитарного диагностикума, кроличьих антисывороток к иммуноглобулинам свиньи, в непрямой реакции имму-нофлуоресценции в сыворотках молозива определяли титр специфических иммуноглобулинов. В качестве флуоресцирующей сыворотки использовали сыворотку против глобулинов кролика.

Для уточнения диагноза на 8 свиноматках и 65 полученных от них поросятах проведена биологическая проба. Материалом для заражения служил фильтрат, приготовленный из 10% взвеси кишечника вынужденно убитых поросят первых 3−5 дней жизни с клиническими признаками ТГЭ.

В производственных условиях на 854 свиноматках, 6313 поросятах-сосунах и 168 118 поросятах-отъемышах проведены соответствующие исследования и наблюдения по определению влияния различных технологий содержания животных и относительной влажности помещений на заболеваемость и гибель поросят.

Возрастная устойчивость животных к вирусу ТГЭ изучена на 353 поросятах-сосунах, влияние минеральных и витаминных добавок — на 35 997 поросятах-отъемышах.

Профилактическую эффективность крезацина оценивали на 4309 поросятах-отъемышах.

Оценка профилактической эффективности 0,04−0,12% растворов формальдегида проведена на 2041 свиноматке, 301 847 поросятах-сосунах, 18 881 отъемышах и 8256 свиньях откормочного возраста.

Влияние дезинфекции помещений хлор-скипидаром на сохранность животных оценивали на 4388 поросятах-отъемышах, эро-зольной дезинфекции на основе 0,5% раствора формалина — на 3557 поросятах-отъемышах.

Иммунологическую эффективность средств профилактики оценивали:

— вакцины из штамма «Риме» на 1618 свиноматках с 22 669 поросятами, 79 478 поросятах-сосунах;

— инактивированной вакцины ЧССР — на 52 свиноматках с 470 поросятами, 1651 поросятах-сосунах;

— инактивированной вакцины из штамма ВГНКИ-5 — на 10 свиноматках с 83 поросятами и 19 913 поросятах-сосунах;

— инактивированной вакцины из штамма ВГНКИ-76 № 8 — на 2610 поросятах-сосунах;

— вакцины ВГКНИ с предварительной внутримышечной обработкой животных раствором формальдегида — на 949 свиноматках с 6859 поросятами;

— нативного материала — на 280 свиноматках и 630 поросятах- -аллогенной сыворотки — на 2481 поросятах-отъемышах- -сухой живой вакцины ВИЭВ против ТГЭ на 1366 поросятах-отъемышах.

В соответствии с методикой эпизоотологического обследования (ВИЭВ) проводили анализ содержания, кормления и поения животных, обеспеченность кормами и их качество, санитарного состояния свинарников, соблюдения требований профилактического карантинирования, порядка комплектования свиноферм животными, наличия связей с другими хозяйствами, клинических признаков, динамики заболевания и отхода свиней (во время вспышки — по дням, в течение года — по месяцам), факторов и условий, способствующих возникновению заболевания.

При изучении инфекционного процесса использовали общие методы клинической диагностики (осмотр и термометрию), а видимые изменения в органах регистрировали на вскрытии животных.

При проведении вирусологических исследований использовали перевиваемую линию клеток СПЭВ, среду 199 с добавлением 10%-ной сыворотки крупного рогатого скота, референтный штамм ТО36 8Б-[92 коронавируса, флуоресцирующие и обычные гипериммунные сыворотки к ТГЭ. Сыворотки и референтный штамм ТО36 5Б192 (Япония) были получены в лаборатории по изучению болезней свиней ВИЭВ.

Вирус выделяли из исходного материала на культуре ткани СПЭВ. Вначале на пробирках выращивали монослой клеток, который заражали фильтратом, приготовленным из гомогената тонкого кишечника на физиологическом растворе от вынужденно убитых больных поросят и пропущенного через пластинки марки «СФ» фильтра Зейтца. В течение трех суток пробирки просматривали. При наличии в монослое клеток СПЭВ выраженных дегенеративных изменений их извлекали, замораживали и использовали для заражения в последующих пассажах. Если монослой не нарушался, то проводили пять слепых пассажей.

Тем же методом пользовались при постановке реакции имму-нофлуоресценции на слюдинках. Для этого на узких предметных стеклах, помещенных в пробирки, выращивали монослой культуры ткани СПЭВ, проводили его заражение соответствующим пассажем вирусного материала и выдерживали в термостате при температуре 37 °C в течение 18−30 часов. Затем стекла извлекали, промывали дистиллированной водой, фиксировали метиловым спиртом, наклеивали на предметные стекла и обрабатывали люминесцирующи-ми антисыворотками к коронавирусу. После 30-минутной экспозиции во влажной камере при температуре 37 °C их помещали дважды по 10 минут в забуференный раствор для удаления излишка антител, а затем два раза по 5 минут промывали дистиллированной водой. Подсушенные препараты просматривали под люминесцентным микроскопом (МЛ-3). Контролем служили незараженные слюдинки и метод блокирующей пробы с использованием зараженных слюди-нок, которые перед нанесением флуоресцирующих сывороток обрабатывали обычными гипериммунными.

Параллельно, аналогичным образом, проводили иммунофлуо-ресцентный анализ мазков-отпечатков, приготовленных из тонкого отдела кишечника вынужденно убитых больных и клинически здоровых поросят.

Изучение влияния на коронавирус определенных параметров температурно-влажностного режима исследовали на модели референтного штамма ТОзе ЗБ^ вируса ТГЭ. В качестве материала, на который наносили вируссо держащую суспензию, использовали опилки. В пенициллиновые флакончики помещали по 0,5 г мелких опилок и стерилизовали в сушильном шкафу. Для создания определенной степени влажности воздуха в эксикатор наливали раствор серной кислоты. Необходимую концентрацию кислоты определяли по таблицам на основании данных о плотности паров воды в присутствии раствора данного вещества (Наумов Н.А., 1937). При 80% относительной влажности концентрация серной кислоты в весовых процентах равнялась 27,0 г, а концентрация воды — 50,0 гпри 40% - соответственно, 48,1 и 28,9 г.

В стерильные флакончики с опилками вносили по 0,2 мл вируса в исходной концентрации (всего 8 проб). Затем в 4 из них для увлажнения опилок добавляли по 1,8 мл физиологического раствора. Четыре других оставались сухими. После этого по два флакончика (один с добавлением только 0,2 мл вируса, а другой — 0,2 мл вируса и 1,8 мл физиологического раствора) помещали на 24 часа и 120 часов в эксикаторы с 80% и 40% относительной влажностью (флакончики открыты), при комнатной температуре и 4 °C (флакончики закрыты). Через сутки все флакончики извлекали, добавляли соответственно в первые из них 9,8 мл, а во вторые — 8,0 мл поддерживающей среды 199 и готовили десятикратные разведения. После титрования в исходный титр вносили поправки с учетом того, что из проб при 80% относительной влажности в течение суток испарялось 0,04 мл жидкости, а при 40% - 0,2 мл.

Исследование устойчивости вируса в аэрозоле проводилось при комнатной температуре (22°С) следующим образом. Из стерильной, герметически закрытой 30-литровой камеры, где путем распыления вирусной суспензии постоянно поддерживали аэрозоль, коронавирус по 6 литров поступал в целлофановые мешки, имевшие по 12 литров воздуха с 40% и 80% относительной влажности. Влажность в мешках создавали, используя растворы серной кислоты, согласно ранее приведенному методу.

После 10-минутной экспозиции весь воздух из первого мешка перекачивался во второй, из второго (через 10 минут) — в третий, из которого (через 10 минут) пропускался через 50 мл среды 199. В первом случае три мешка имели 40% относительную влажность, а во втором — 80%. Опыт проведен в двух повторениях. Положительным контролем служил аэрозоль вируса (6 литров), пропущенный сразу после получения 50 мл среды 199, а отрицательным — 50 мл среды 199 из той же партии. Все пробы подвергались титрованию на пробирках с культурой ткани СПЭВ.

Изучение воздействия ультрафиолетового облучения на жизнеспособность коронавируса проводили путем облучения в течение 15,20 и 30 минут бактерицидной лампой на расстоянии 90 см вирус-содержащей суспензии, разлитой по 5 мл в чашки Петри.

При исследовании воздействия формальдегида и МВД (сольдровит, роборан свиной, олахиндокс) вначале определяли их токсические концентрации для клеток СПЭВ и, исходя из этого, добавляли препараты в поддерживающую среду после заражения монослоя референтным штаммом возбудителя ТГЭ ТО36 ЗО^ (при соответствующих контролях) в разных концентрациях. Опыты проведены в двух повторениях.

Определение концентрации вируса, а также титрование его перед постановкой реакции нейтрализации, проводили по общепринятой методике с использованием десятикратных разведений исходных проб.

Для выполнения реакции нейтрализации с вирусом ТГЭ исследовали сыворотки крови, молозиво и молоко от свиноматок, предварительно инактивированные прогреванием в течение 30 минут при температуре 56 °C. Разведенные с коэффициентом 2 от 1:4 до 1:256 пробы смешивали в равных объемах с вируссодержащей жидкостью с инфекционностью 103 ТЦД 50 на 1 мл и инкубировали в течение часа при температуре 37 °C. Заражение в пробирках культуры клеток СПЭВ смесью сыворотки и вируса проводили по общепринятой методике. Результаты реакции нейтрализации учитывали на 5−6 день после заражения. За титр нейтрализующих антител принимали то наибольшее разведение сыворотки, которое задерживало цитопатический эффект. Реакция нейтрализации включала контроль инфекционности вируса, токсичности сыворотки, качества культуры клеток, действия гипериммунной и нормальной сывороток.

Титрование комплемента проводили по общепринятой методике с использованием двукратной дозы (титр 1:750) гемолитической сыворотки, 2,5%-ной взвеси отмытых эритроцитов барана и двукратных разведений исходных проб сывороток крови. Общий объем компонентов составлял 2,5 мл, из которых 1 мл соответствующего разведения исследуемой пробы, 1 мл физиологического раствора, 0,5 мл гемолитической смеси (0,25 мл гемолитической сыворотки и 0,25 мл эритроцитов барана). Контролями служили пробы с инак-тивированными при 56 °C в течение 30 минут сыворотками крови, а также заменой их физраствором. Результаты при титровании сывороток крови учитывали после 10-минутной экспозиции в водяной бане при 37 °C.

Биологическую пробу на вирусный (трансмиссивный) гастроэнтерит ставили следующим образом. Из 8-ми завезенных свиноматок 5 были размещены за 2−7 дней до опороса в помещении, где регистрировалось заболевание, а 3 — в изолированных помещениях (вне комплекса). Кормление животных оставалось прежним.

Из 3 свиноматок, размещенных на комплексе, первая опоросившаяся свиноматка являлась контрольной, а две другие — опытными. Поросята от опытных свиноматок были заражены в суточном возрасте и одна из опытных свиноматок — за 7 дней до опороса.

Материал для заражения (тонкий отдел кишечника) брали от 20-ти вынужденно убитых больных поросят в возрасте 3−5 дней с признаками гастроэнтерита. На базе районной лаборатории готовили 10%-ную суспензию на физиологическом растворе, пропускали через фильтр Зейтца и проверяли на бактериальную контаминацию и токсичность. Безмикробный нетоксичный материал разливали по флаконам, хранили при температуре -10°С и использовали для заражения. За животными вели клиническое наблюдение и регистрировали падеж.

Определение титра специфических иммуноглобулинов осуществляли следующим образом.

На обезжиренные предметные стекла наносили эритроцитар-ный диагностикум, который фиксировали метиловым спиртом, а затем по общепринятой методике проводили исследования двукратных разведений испытуемых сывороток в реакции непрямой имму-нофлуоресценции. В контроле использовали сыворотку крови от безмолозивных поросят. Реакция считалась положительной при наличии специфического свечения по окружности эритроцитов.

С целью дифференциальной диагностики, при необходимости, проводили бактериологические исследования по общепринятой методике.

Для профилактики гастроэнтеритов подбирали аналогов среди свиноматок и поросят, затем проводили испытание соответствующих препаратов. Эффективность мероприятий оценивали по сохранности, падежу, заболеваемости, кондиции и среднесуточному приросту свиней опытных групп по сравнению с контрольными. По ходу опытов проводили вирусологические и бактериологические исследования.

При изучении влияния факторов внешней среды на проявление и течение трансмиссивного гастроэнтерита у новорожденных животных и поросят-отъемышей в неблагополучных хозяйствах, измеряли температуру и относительную влажность с помощью комнатного психрометра, а также использовали зональные метеорологические данные. Параллельно учитывали заболеваемость и смертность поросят в стационарных помещениях и летних лагерях.

Неспецифическая профилактика трансмиссивного гастроэнтерита свиней в неблагополучных хозяйствах осуществлялась путем внутримышечного введения супоросным свиноматкам или новорожденным животным, или одновременно обеим группам 0,04−0,12%-ного раствора формальдегида на физиологическом растворе в количестве, соответственно, 5 и 2 мл на каждую инъекцию. За поросятами вели клинические наблюдения, регистрировали заболеваемость и падеж до перевода их в группы доращивания.

Вакцина «Риме» против ТГЭ производства ГДР вводилась свиноматкам однократно по 5 и 10 мл на голову при разном количестве вируса в препарате за 9, 15, 25, 32 и 40−45 дней до опороса, а также двукратно — в соответствии с инструкцией по применению. Контролем служили невакцинированные свиноматки.

Специфическая профилактика трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-сосунов осуществлялась с использованием 0,12%-ного раствора формальдегида и живой вакцины из штамма ВГНКИ-5 супоросным свиноматкам. Вначале внутримышечно вводился раствор формальдегида, а затем вакцина. Отрабатывались доза, сроки, кратность, время введения препарата. Эффективность проводимых мероприятий оценивали по сохранности животных в подсосный период.

Для профилактики трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-сосунов использовали инактивированные вакцины против ТГЭ производства ЧССР, из штамма ВГНКИ-5 (подвергалась инактивации после растворения в физиологическом растворе в водяной бане при 56 °C в течение 40 минут) и живую вакцину ВИЭВ. Препараты вводили свиноматкам внутримышечно в разные сроки супоросности.

Профилактика трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-сосунов осуществлялась также с помощью нативного материала. Он готовился из тонкого отдела кишечника больных животных. 20%-ный гомогенат на физиологическом растворе центрифугировали, пропускали через пластинки «СФ» фильтра Зейтца, а затем вводили внутримышечно однократно или двукратно супоросным свиноматкам из расчета 6 мл на каждую инъекцию. Отрабатывались время и кратность обработок, а также концентрация используемого в фильтрате раствора формальдегида. Эффективность проводимых мероприятий оценивали по заболеваемости и гибели животных в подсосный период.

Для неспецифической профилактики трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-отъемышей и откормочного поголовья использовали 0,08%-ную концентрацию формальдегида на физиологическом растворе. Препарат вводили животным внутримышечно 1−2 раза из расчета 4−5 мл на каждую инъекцию. Контролем служили поросята, которым аналогичным образом инъецировали физиологический раствор.

Неспецифическая профилактика трансмиссивного гастроэнтерита у поросят-отъемышей в неблагополучных хозяйствах осуществлялась с использованием аэрозолей из 0,5%-ного водного раствора формалина или смесью хлор-скипидара из расчета 2 грамма хлорной извести и 0,2 г скипидара на 1 мЗ помещения при 15−20-минутной экспозиции в присутствии животных. Отрабатывались кратность и время обработок.

Профилактику трансмиссивного гастроэнтерита у отъемышей с помощью крезацина проводили путем дачи препарата с кормом в соответствии с инструкцией по его применению, начиная с момента поступления их на доращивание.

Аллогенную сыворотку от переболевших свиней вводили поросятам сразу после отъема их от свиноматок внутримышечно 1−2 раза из расчета 10−15 мл на каждую инъекцию.

Специфическую профилактику трансмиссивного гастроэнтерита у отъемышей в неблагополучных хозяйствах осуществляли путем внутримышечного введения животным в подсосный период при разных технологиях и эпизоотических ситуациях инактивирован-ной вакцины против ТГЭ производства ЧССР, из штамма ВГНКИ и Н- 76 № 8 и вакцины «Риме» против этого заболевания производства ГДР. Отрабатывались доза, кратность, сроки введения препаратов. Одновременно с введением вакцин использовали минеральные и витаминные добавки и тривит. Контролем служили поросята, которым специфические препараты не вводили, а инъецировали физиологический раствор.

После прекращения поступлений из ГДР вакцины «Риме» против ТГЭ при проведении экспериментов использовался штамм «Риме», поддерживаемый на перевиваемой культуре клеток СПЭВ.

Проведение экспериментов по выработке оптимальных схем применения минеральных и витаминных добавок и внутримышечного введения витаминов осуществляли в неблагополучных хозяйствах с учетом конкретных эпизоотических ситуаций и состояния здоровья поросят.

Статистическую обработку полученных результатов проводили методом вариационной статистики, описанной Усович А. Т., Лебедевым П. Т. (1970), Урбахом В. Ю. (1975). Результаты исследований сыворотки крови, молозива, молока и вируссодержащего материала выражали в логарифмах, используя показатели степеней при основании 2 или 10.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.Г., Аматуни Г. Р., Галстян В. Г. Применение реакции обратной пассивной гемагглютинации для лабораторной диагностики трансмиссивного гастроэнтерита свиней.// Вопросы вирусологии. 1987.-Вып. 32, — № 5. — С. 629−631.
  2. Н.М., Середа Н. Г., Шахов А. Г., Шеремет С. А., Лесных В. И. Состояние органов пищеварения поросят в зависимости от рационов свиноматок.// Ветеринария.-1979.- № 5.- С. 59.
  3. Г. А., Влодовец В. В., Дмитриева P.A., Ловцевич Е. Л. Основы санитарной вирусологии. М.: Медицина, 1974.-С.46−55.
  4. П.А., Майер А. Способ получения вакцины. Патент СССР № 971 108, МКИ С 12 N 7/08. Заявлено 21.04.78- Опуб. 30.10.82, Бюл. № 40, приоритет 21.04.77, № 7 704 348 (Нидерланды).-5с.
  5. А.Г., Яшенкина М. И., Лобунцова Д. В. Экспериментальный вирусный гастроэнтерит свиней.// Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии. М., 1965.- 123 с.
  6. А.Г. Желудочно-кишечные болезни свиней.// Под ред. проф. П. И. Притулина. М.: Колос, 1967.
  7. C.B. Опыты по воспроизведению вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней.//Бюллетень ВИЭВ.-Вып.23.- 1975.- С.15−17.
  8. C.B. Диагностика вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней.// Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук. М.: ВАСХНИЛ, 1978.-Т.16.
  9. Белопопска Пенка, Мотовски Ангел. Применение микрореакции вируснейтрализации в диагностике трансмиссивного гастроэнтерита./ / Ветеринарно-медицинские науки, 1986.-Т.23.- № 6.- С.8−11.
  10. Ю.Бурдейный В. В., Груздев К. Н., Марченко В. И., Денисов Л. А. Применение интерферонов при гастроэнтеритах поросят-сосунов. // Ветеринария, — 1995.- № 11, — С.22−24.
  11. И.Вабищевич Ф. С. Биологическая проба при диагностике ТГЭ свиней. // Тезисы доклада 5-й Всесоюзной конференции. Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии. Казань, 1980, — С.43−44.
  12. В.И., Нестеренко В. Ф., Надточей Г. А. Эпизоотоло-гические особенности, клиника и этиология диарей в свинокомплексе. / / Тезисы доклада 5-й Всесоюзной конференции. Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии. Казань, 1980.- С.49−51.
  13. В.И. Упрощенный метод реакции нейтрализации для диагностики ТГЭ свиней.// Бюллетень ВИЭВ.- 1985.- № 59. -С.39−41.
  14. Г. И., Остапович И. Д. Сенсибилизирующее действие формальдегида как критерий установления предельно допустимых концентраций. // Гигиена и санитария. 1976.- № 9.- С 9−12.
  15. В.И., Ковалев H.A., Мирская Т. А., Дворкин Г. Л., Кошелева Н. С., Швыдков H.H. Профилактика вирусных гастроэнтеритов новорожденных телят и поросят. // Межведомственный сборник № 28. Ветеринарная наука производству/ Минск.: Урожай, 1990.-С. 7−13.
  16. К.Н., Скворцова H.H. Чувствительность свиней различного возраста к экспериментальному заражению вирусом ТГЭ. // Тезисы докладов Всероссийской научно-практической конференции, 17−21 апреля. Владимир, 1995.- 213 с.
  17. В., Гаврилов Н., Делев П., Симеонов С. Эпизоото-логические особенности трансмиссивного гастроэнтерита свиней на крупных фермах промышленных комплексов.// Научн. Труды Съюз. Науч. раб. Болгария./ Враца, 1985.- Вып. 8.- С.243−248.
  18. Р.В., Трансмиссивный гастроэнтерит свиней (обзорная информация). М., 1981.
  19. В.М. Клиника и патморфология при инфекционном гастроэнтерите свиней. // Вестник сельскохозяйственной науки.-1963, — № 2, — С.36−37.
  20. H.A. Гастроэнтериты новорожденных поросят. М.: Россельхозиздат, 1978.
  21. Г. Выявление антигена вируса ТГЭ свиней методом иммунодиффузии в агаре. // Научные труды высш. инст. зоотехн. ветеринарной медицины. София, 1985, — Т.30.- № 2.- С. 119−129.
  22. Г., Игнатов М., Тункара А., Попов Г. Исследования этиологии вирусных гастроэнтеритов свиней. // Ветеринарномед. науки, — 1987, — Т. 24.- № 6, — С.10−18.
  23. Г. Е., Кравченко Т. Ф. Выделение и идентификация вирусов ТГЭ свиней. // Сб. Меры борьбы с болезнями сельскохозяйственных животных Северного Кавказа. 1986.- С. 15−20.
  24. А.И., Варганов В. И. Пути снижения отхода поросят в хозяйствах, стационарно неблагополучных по вирусному (трансмиссивному) гастроэнтериту свиней. // Бюлл. ВИЭВ. 1981.-№ 44, — С.58−62.
  25. В.Я., Борисов В. М. Некоторые вопросы сравнительной цитопатологии при вирусной инфекции.// Цитология. -1977, — Т. 13, — № 5.- С.593−599.
  26. В.Я. Поражение клеток при вирусных инфекциях. М.: Медицина, 1981.- 190 с.
  27. И. И. Мельникова Л.А., Осидзе Д. Ф., Пантюшенко М. Т., Николаева Н. П., Антонюк В. П. Иммунная реакция и лактоген-ный иммунитет при пероральной вакцинации свиноматок против ТГЭ. // Сельскохозяйственная биология. 1984.- № 7.- С. 116−117.
  28. Я.Е. Ветеринарная иммунология. М: Агропромиз-дат, 1986, — 271 с.
  29. В.Т., Шахов А. Г. Особенности эпизоотий гастроэнтерита свиней в крупных хозяйствах. // Вестник сельскохозяйственных наук. 1978.- № 2.- С.63−69.
  30. Е.А., Собко А. И., Серябина Е. Г., Дерябин О. Н., Мельникова Л. А., Осидзе Д. Ф., Касюк И. И. Характеристика генетических признаков штаммов коронавируса-возбудителя ТГЭ свиней. // Сельскохозяйственная биология. 1990.- № 4.- С.165−171.
  31. A.A. Особенности эпизоотологии ТГЭ свиней в хозяйствах промышленного типа. // Ветеринария. 1988.- № 3.-С.50−52.
  32. A.A., Карась О. Я., Спивак Н. Я., Лазарев А. П., Пурисман В. И. Эффективность применения интерферона для профилактики трансмиссивного гастроэнтерита свиней. // Тезисы докладов Республиканского семинара, 14−19 октября. Киев, 1989.
  33. Д.В. Лабораторная диагностика гастроэнтеритов свиней вирусной этиологии. // Бюлл. ВИЭВ. 1975.- Вып. 23.- С.9−12.
  34. В. Диагностика трансмиссивного гастроэнтерита свиней тестом иммунодиффузии в агаровом геле. // Ветеринарномед. науки. 1985, — Т. 22, — № 9, — С.39−44.
  35. Л.А., Касюк И. И., Скалинский Е. И., Бойко A.A., Лихачев Н. В. Биологические свойства некоторых штаммов ТГЭ свиней. // Труды ВГНКИ. 1980, — Т. 29, — С.47−51.
  36. Ю.И., Нуйкин Я. В., Ефименко Е. В. Клинико-эпизоотологическое изучение ТГЭ в условиях репродукторного хозяйства. / / Патология органов дыхания и пищеварения сельскохозяйственных животных. М., 1983.- С.39−44.
  37. Э.Г., Дьяченко Н. С., Краснобаев Е. А., Старчеус А. П., Муравьев В. К., Краснобаев Б. А. Выявление антител к вирусу ТГЭ свиней реакцией пассивной гемагглютинации. // Микробиологический журнал. 1986.- Т. 48.- № 4, — С.79−80.
  38. А., Белопопска П., Йорданов С. Опыты перо-ральной вакцинации новорожденных поросят против ТГЭ. / / Вете-ринарномед. науки. 1985. — Т. 22, — № 5.- С. 11−15.
  39. А., Белопопска П., Борисов Н. Течение ТГЭ свиней на свиноводческом предприятии. // Ветеринарномед. науки.-1986.- Т. 23, — № 7.- С.22−27.
  40. А., Белопопска П., Йорданов С, Веселинова И. Получение и применение специфической гипериммунной сыворотки против ТГЭ. // Ветеринарномед. науки. 1985.- Т. 22, — № 6.- С.7−12.
  41. А.Д., Катевска В. Б., Белопопска П. М., Николова Е. В. и др. Способ получения вакцины против ТГЭ свиней. // Авторское свидетельство НРБ № 38 093, МКИ С12 N 7/04, — Заявлено 11.05.84- Опуб. 30.10.85.
  42. В.Ф., Воронин Е. С. Диагностика вирусного трансмиссивного гастроэнтерита свиней методом имунноцитолиза. / / Сельскохозяйственная биология. 1983.- № 5.
  43. В.В., Бартынчук В. А. Вирусный гастроэнтерит. // Болезни молодняка свиней. Киев: Урожай. — 1978.- С.5−28.
  44. Л.С. Тканевые и клеточные культуры в вирусологии и клеточной биологии. // Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР/ Сер. Вирусология. 1979, — № 8, — С.3−134.
  45. Д.Ф. Перспективы в области культивирования клеток и вирусов. // Труды ВГНКИ. 1977.- Т.23.- С.11−20.
  46. Д.Ф., Мельникова Л. А., Ночевный В. Т., Касюк И. И., Захаров В. Б., Бажина З. П., Ермакова Е. В., Цветкова Н. В. Способы получения вакцины портив ТГЭ свиней. // Патент РФ № 1 238 294, МКИ А61К 39/225, — Заявлено 17.07.84- Опуб. 20.10.95, Бюл.29.- 5с.
  47. Н.С. Роль и место эксперимента на малых микробных экосистемах в количественных экологических исследованиях. // Динамика малых микробных экосистем и их звеньев. Новосибирск: Наука, 1981.- С.3−20.
  48. Г. Ф., Тарасова А. П., Пирог П. П. Гастроэнтероколит у свиней. // Бюлл. научн.-техн. информации Ленинградского НИВИ, 1956. Вып. 2.
  49. С.И., Семенихин В. И. Вирусный трансмиссивный гастроэнтерит свиней, диагностика и меры борьбы. / / Профилактика и меры борьбы с инфекционными болезнями сельскохозяйственных животных. Новосибирск, 1987.- С. 123−127.
  50. В.А., Павлов Е. Г., Ворона П. А., Кирьяченко С. П. Способ борьбы с гастроэнтеритом у свиней / / Патент СССР 1 805 959, МКИ А61К 31/15. Заявлено 25.05.88- Опуб 30.03.93.
  51. П.И. Инфекционный (трансмиссивный) гастроэнтерит свиней. // Бюлл. ВИЭВ. 1967.- Вып. 3.- С.55−61.
  52. П.И., Карелин А. И. Вирусный гастроэнтерит свиней. // Основы профилактики болезней свиней. М., 1969.- С. 114 119.
  53. П.И., Яшенкина М. И. О профилактике вирусного гастроэнтерита свиней. // Бюлл. ВИЭВ. 1971.- Вып 9.- С. 118−120.
  54. П.И., Лобунцова Д. В. Ветеринарные мероприятия на свиноводческих комплексах. М.: Россельхозиздат, 1973.
  55. П.И., Душук Р. В. Этиологическая структура гастроэнтерита свиней. // Бюлл. ВИЭВ. 1975.- Вып 23.- С. 12−14.
  56. П.И. Инфекционные гастроэнтероколиты свиней. -М.: Колосс, 1975.
  57. П.И., Лобунцова Д. В., Бегларян C.B. Изоляция и идентификация коронавируса-возбудителя вирусного (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней. // Бюлл. ВИЭВ. 1977,-Вып 28, — С.3−9.
  58. В.А., Грабарев П. А., Гарин Н. С. Экология вирусов человека и теплокровных животных. М.: Медицина, 1977.
  59. В.Ф. Бнопроба при вирусном (трансмиссивном) гастроэнтерите свиней. /, Ветеринария. 1976.- Nb8.- С.63−64.
  60. В.А., Алипер Т. И., Рухадзе Г. Г. Оценка антигенной активности вакцинных штаммов вируса ТГЭ и ротавируса свиней. // Ветеринария. 1989, — № 1, — С.30−32.
  61. А.И., Старчеус А. П., Синицын В. А. Иммунофермент-ный метод диагностики ТГЭ свиней. // Ветеринария. 1990, — № 2.-С.37−39.
  62. Н.М. Изучение инфекционного гастроэнтерита свиней. // Труды Укр. НИИЭВ. 1963. — Т. 29, — С.36−43.
  63. Н.М. Диагностика, эпизоотология и борьба с инфекционным гастроэнтеритом свиней. // Сб. Ветеринария. К., 1974.- № 39.- С.45−47.
  64. Э.Б., Лаптев C.B., Федоренко В. А. Изготовление и применение инактивированной тканевой вакцины против ТГЭ поросят. // Тезисы доклада науч. конф. Актуальные проблемы вирусологии, май 1994, — 1994, — С.74−75.
  65. Т.И. Вирусный гастроэнтерит свиней и меры борьбы с ним в Краснодарском крае. // Тезисы доклада Всероссийской научн.-техн. конф. Профилактика желудочно-кишечных и респираторных болезней свиней. Новочеркасск, 1978. — С. 16.
  66. В.Н., Иванова Г. А., Краснобаев Е. А., Фомин Ю. В. Лабораторная диагностика болезней животных. М., 1972.
  67. В.Н., Фомина Н. В. Частная ветеринарная вирусология. М.: Колос, 1979, — С.415−421.
  68. С., Вияшка Т. Практическая и лабораторная диагностика инфекционного вирусного гастроэнтерита свиней в Польше. // Доклад на научно-методическом совещании СЭВ. Будапешт, 1973.
  69. В.П., Шнур В. И., Воробьев Е. О. Опыт ликвидации эпизоотических вспышек вирусного гастроэнтерита свиней. // Актуальные вопросы профилактики заразных болезней сельскохозяйственных животных. Л., 1983, — С.100−104.
  70. В.П., Шнур В. И. Мероприятия при трансмиссивном гастроэнтерите свиней. // Ветеринария. 1985, — № 8.- С.39−42.
  71. В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. М.: Медицина, 1975.- 42 с.
  72. А.Т., Лебедев П. Т. Применение математической статистики при обработке экспериментальных данных в ветеринарии. / Западно-сибирское книжное изд-во: Омское отделение, — 1970.
  73. А.И. Трансмиссивный (коронавирусный) гастроэнтерит. // Сб. Патологоанатомическая диагностика инфекционных болезней свиней. Минск: Урожай, 1980. — С.22−25.
  74. Ю.Н., Верховский O.A., Орлянкин Б. Г., Аноятбе-ков М., Соколова H.A., Шегидевич Э. А. Лактогенный иммунитет у поросят против ТГЭ, ротавирусной инфекции и колибактериоза свиней. // Ветеринария. 1997, — № 12, — С.20−23.
  75. Е.С., Непоклонов Е. А., Гальнбек Т. В. Культу-ральные свойства вируса (трансмиссивного) гастроэнтерита свиней. // Бюлл. ВИЭВ. 1985, — № 60, — С.29−32.
  76. В.М., Ерошенко Г. П. Некоторые итоги испытания люминесцируюгцих сывороток для диагностики вирусного гастроэнтерита свиней. // Труды Саратовской НИВ С. 1974, — Т. 9.- С. 8388.
  77. А.Г., Положенко Э. Г., Груздев К. Н. Профилактическая эффективность интерферонов при ТГЭ свиней. // Тезисы доклада Республиканского семинара. Использование интерферонов в ветеринарии. Киев, 1989.
  78. В.А. Циркуляция патогенных штаммов вируса трансмиссивного гастроэнтерита и ротавируса в популяции свиней. / ВИЭВ, — М., 1989, — 7с, — Деп. в ВНИИТЭИагропром 21.09.89, № 492 ВС-89 Деп.
  79. Г. П. Инфекционный (вирусный) гастроэнтерит свиней и борьба с ним в условиях Ростовской области. // Диссертация на соискание ученой степени к.б. наук. Сев. Кав. Вет. Инст., 1969.
  80. Р.Х. Современные методы экспресс-диагностики инфекционных заболеваний свиней. // Тезисы доклада Всероссийской школы молодых ученых и специалистов по актуальным вопросам ветеринарии. Казань, 1976.
  81. С.Г., Ахметзянов Ф. К., Фахтулин А. Я. Экономический ущерб при инфекционном гастроэнтерите свиней. // Учен. зап. Казанского вет. инст-та. 1969.- Т. 102, — С.233−234.
  82. С.Г. К патогенезу вирусных гастроэнтероколитов свиней. // Актуальные вопросы ветеринарной вирусологии. Тезисы доклада 5-ой Всероссийской ветеринарной вирусологической конференции, 13−15 мая 1980. Казань, 1980, — С. 165−166.
  83. А.С. Индикация корона- и энтеровирусов у больных гастроэнтеритами поросят методом флуоресцирующих антител. // Вет. науки производству / Труды Белгородского НИИЭВ.-1980, — С. 46.
  84. А.С. Защитное действие специфического сывороточного иммуноглобулина при экспериментальном вирусном гастроэнтерите у поросят. // Вет. наука производству. — Минск, 1984.-№ 22, — С.65−68.
  85. А.С., Белянко Л. В., Бычковский A.M. Вирусный (трансмиссивный) гастроэнтерит в свиноводческих хозяйствах Белоруссии. // Вет. наука производству. — 1991, — № 29, — С.3−6.
  86. А.С., Бычковский A.M., Савельева Т. А., Гутков-ский А. А. Антигенная активность инактивированной вакцины против ТГЭ, ротавирусной болезни и колибактериоза свиней. // Межвед. Сб. Бел-НИИЭВ.- Минск, Ураджай. 1992, — Вып. 30, — С.6−10.
  87. А.С., Гутковский А. А., Бычковский A.M. Об им-муногенной активности вакцины против вирусных гастроэнтеритов. // Межвед. Сб.: Вет. наука производству. — Минск, 1993. — Вып. 31, — С.22−23.
  88. А.К., Beveridge W.J. Иммунопатология вирусных инфекций: модели на животных и их роль в изучении болезней человека. // Бюлл. ВОЗ. 1973.- Вып. 47, — № 2. — Р.250−267.
  89. Abau-Voussef М., Ristic М. Protective effect of immunoglobulins in serum and milk of sows exposed to transmissible gastroenteritis virus. // Canada. J. camp. Med. 1975.- № 1.- P.41−45.
  90. Aynaud J.M., Vannier Ph., Martain L., Cariolet R. Gastro-enterite transmissible essais de vaccination de la truie en milieu contamine a l’aide du virus inactive en emulsion huileuse. // Ann. Rech. Vet.- 1984.- T. 15, — № 3, — P.347−357.
  91. Bass E.P. Direct active modified live virus vaccine immunization against transmissible gastroenteritis in swine piglets at birth. // Пат. США № 3 519 710, МКИ С12К7/00, — Заявлено 10.08.67- Опуб. 7.07.70.
  92. Bernard S., Lantier L., Laude H. Detection of transmissible gastroenteritis coronavirus antigens by sandwich enzymelinked immunosorbent assay technigue. // Am. J. Veter. Res. 1986.- Vol. 47.- № 11.-P.2441−2444.
  93. Bernard S., Bottreau E., Aynaud J.M. Natural infection with the porcine respiratory coronavirus induces protective lactogenic immunity against transmissible gastroenteritis. // Veter. Microbiol. -1989.- Vol. 21.- № 1.- P.1−8.
  94. Bohac J., Derbyshire J.B. The detection of transmissible gastroenteritis viral antibodies by immunodiffusion. // Can. J. Comp. Med. 1976, — Vol. 40, — № 20, — P.161−165.
  95. Bohl E.H. Immunology of transmissible gactroenteritis. //J. Amer. vet. med. Assoc. 1972.-Vol. 160.- № 4, — P.543−549.
  96. Bohl E.H., Gupta R.K., Olguin H.V., Saif L.J. Antibody responses in serum, colostrum and milk of swine after infection or vaccination with transmissible gastroenteritis virus. // Infect, and immun. -1972, — T.6.- № 3, — P.289−301.
  97. Bohl E.H., Gupta R.K., McCloskey L.W., Saif Linda. Immunology of transmissible gastroenteritis. // J. Amer. Vet. Med. Assoc.- 1972.-T. 160.- № 4, — Part 2, — P.543−549.
  98. Bohl E.H. Transmissible gastroenteritis of swine. // Disease of swine. Jowa press university.- 1975.
  99. Bohl E.H., Saif L.J. Passive immunity in transmissible gastroenteritis of swine. Immunoglobulin characteristics of antybodies in milk after inoculating virus by different routes. // Infect, and Immun.-1975.-T.11, — № 1, — P.23−32.
  100. Bohl E.H. Transmissible gastroenteritis virus (classical enteric variant). // Virus Infec. Procines. Amsterdam etc.- 1989.- P. 139−153.
  101. Bonyeda J. Immunological study of swine transmissible gastroenteritis. // Acta. Veter. Acad.-Scient.Hung. 1974, — T. 24, — P. 159 162.
  102. Brier A.M., Wohlenberg Ch., Rosental S. et al. Inhibition or enhancement of immunological injury of virusinfect cells. // Proc. Nat. Acad. Sei. USA.- 1971.- V. 68.- P.3073−3077.
  103. Brim T.A., Vancoot J.L., Lunney J.K., Saif L.J. Limphocyte proliferation responses of pigs inoculated with transmissible gastroenteritis virus or porcine respiratory Coronavirus. // Am. J. Veter. Res.-1994.- Vol. 55, — № 4.- P.494−50L
  104. Butter D.G. Transmissible gastroenteritis. Mechanisms responsible in piglets. // J. Clin. Jnvest.- 1974.-T. 53, — № 5, — P.1335−1342.
  105. Callebaut P., Pensaert M. Development of recombinant vector virus for vaccination against viral diarrhoea and respiratory disease in pigs. // Meded. Fac. Landbouww. Rijksuniv Gent. 1992.- T. 57.-№ 46, — P.2083−2084.
  106. Corbel M.J. Immunoglobulin class in relation to neutralization of transmissible gastroenteritis. // Vet. Ree. 1972, — T.90.- № 23.-P.658−659.
  107. Cornaglia E., Chretien N., Charara S., Elazhary I. Detection of porcine respiratory Coronavirus and transmissible gastroenteritisvirus begin enzymelinked immunosorbent assay. // Veter. Microbiol. -1994, — Vol. 42, — № 4.- P.357−359.
  108. Darul C. Sefunal epithelium in transmissible gastroenteritis of swine. // Amer. J. Pathol. 1968.-T. 53, — № 1.- P.149−168.
  109. Detlef L., Liebermann H., Koitsch R., Fichtner D. Verfahren zur attenuierung des virus der transmissiblen gastroenteritis der schwiene.// Экон. Пат. ГДР 160 901, МКИ С 12 N7/08, — Опуб. 13.06.84.
  110. Donaldson A. The influense of relative humidity on the stability of food and mouth disese virus in aerosols from milk and fecal sturry. // Res. Vet. Sc. 1973, — Т.15, — № 1, — P.96−101.
  111. Doyle L., Hutchings L. Transmissible gastroenteritis in pigs. // J. Am. Vet. Med. Ass. 1946, — Т.108, — № 43.- P.257−289.
  112. Draghici G., Staniuca D. Epizootologia diagnostikum si com-baterea gastroenteritci transmissible a porcului. // Rev. Cresterea anim.- 1976.-T.26.- № 8, — P.46−50.
  113. Dulac G.C., Boulanger P., Phaneuf J.B. Isolement du virus de la gastro-enterite transmissible du pore sur cultures collulaires et compraisons antigenigues avec deux souenes americaines. // Can. Vet. Jour.- 1975, — Vol.16.- № 3.- P.77−81.
  114. M., Losio M.N., Gualandi G.L. Иммунопрофилактика вирусных гастроэнтеритов у свиней. // Selez. Veter. 1994, — Vol. 35, — № 4, — P.377−385.
  115. D.J. Использование достижений генной инженерии в решении проблем трансмиссивного гастроэнтерита свиней в Великобритании. // Veter. Ree. 1988.-T.122.-№ 19.- P.462−463.
  116. Godard A. La gastro-enterite transmissible du porcelet ou GET ENFIN UN VACCIN. // Caltivar. 1987.- №>207.
  117. Gough Patricia M. Specific antigen vaccine for TGE in swine.// Пат. США 4 335 105, МКИ A 61 К 39/12.- Опуб. 15.06.82.
  118. Jordan L.T., Derbyshire J.B. Antiviral activity of interferon against transmissible gastroenteritis virus in cell culture and ligated intestinal segments in neonatae pigs. // Veter. Microbiol. 1994, — Vol. 38.- № 3, — P.263−276.
  119. Haig D. Vassines for TGE. // Pig Farming. 1974.-T.22,-№ 11.- P.46−47.
  120. Halterman E.O. Epidemiological studies of transmissible gastroenteritis of swine proceedings. // United States Live stock Sanitary Assec. Annual Meeting, 66. Washington, 1962. — P.305−315.
  121. Halterman E.O. Immunity to transmissible gastroenteritis. // Veter. Med. Male. Anim. Clin.- 1975. T.70. -№ 6.- P.715−717.
  122. Harada K., Furichi S., Kumagai Т., Sasaharo J. Patogenicity, immunogenicity and distribution of transmissible gastroenteritis virus in pigs. Nat. Inst. Animal Health. Quart. — 1969, — T.9. -№ 4. -P. 185−192.
  123. Hess R.H., Bachmann P.A. In vitro differentiation and pH sensitivity of Field and Cell culture attenuated Strains of Transmissible Gastroenteritis Virus. // Infection and Immunity. June, 1976. Vol. 13.- № 6, — P.1642−1646.
  124. Honda E., Okada J., Okazaki K., Kono Y. Inhibition of appearance of pH-dependent virus-cell fusion by neutralizing monoclonal antibodies to transmissible gastroenteritis virus. //J. Veter med. Sc. 1993. Vol. 55, — № 4.-P.655−656.
  125. W., Burgi E., Rudiger В., Lutz H., Wegmann P., Hasler J. Первый случай обнаружения ТГЭ у свиней в Швейцарии. // Schweiz. Arch. Fierheilk.- 1985, — Т.127. № 9, — P.589−595.
  126. Kodama J., Ogata M., Simizu J. Characterization of immunoglobulin A antibody in serum of swine inoculated with transmissible gastroenteritis virus. // Am. J. Vet. Res.-1980, — Vol. 41.- № 5.-P.740−745.
  127. Komaniva H., Fukusho A., Shimizu Y. Micro-method for neutralization of transmissible gastroenteritis virus using porcine kidney cell line CPK cells. // Huxon дзюигаху дзасси. Jap. J. Vet. Sci.-1987.-T. 49, — № 1.- P.141−144.
  128. Kretschmar G. Die diagnostik der Transmissible gastroenteritis des Schweines. // Mh. Veter. Med.-1970.-T.25.- № 16, — P.629−634.
  129. Lanza I., Shoup D.I., Saif L.J. Lactogenic immunity and milk antibody isotypes to transmissible gastroenteritis virus in sows exposed to porcine respiratory Coronavirus during pregnancy. // Am. J. Vet. Res.- 1995.- V. 56, — K°6.- P.735−748.
  130. Larson D.J., Solorzano R.E., Morehouse L.G., Olson L.D. Mild transmissible gastroenteritis in pigs suckling vaccinated sows. // J. Amer. Vet. Med. Assoc.- 1980, — T. 176.- № 6, — P.539−542.
  131. Laude H., Charley В., Gelfi J. Replication of Transmissible Gastroenteritis Coronavirus (TGE) in Swine Alveolar Macrophages. // J. gen Virol.- 1984, — T.65.-P.327−332.
  132. Laude H., Rasschaert D., Delmas B. Molecular biology of transmissible gastroenteritis virus. // Veter. Microbiol.-1990.-V.23.-№¼. P.147−154.
  133. Lee K.M. Propagation of transmissible gastroenteritis virus in tissue culture. // Am. N.Y.A. -1956.- № 66.- P.191.
  134. Liberman H. Die Transmissible gastroenteritis des Schweines. // M.h. Veter. Med.- 1971, — Т. 26, — № 2.- P.46−50.
  135. Loewen K.G., Derbyshire J.B. The effect of interferon induction in parturient sows and newborn piglets on resistance to transmissible gastroenteritis. // Can. J. Veter. Res.- 1988.- Т.52, — № 1, — P. 149 153.
  136. LojKic M., Paukovic C., Korlovic M. Распространение вирусного гастроэнтерита и борьба с ним в свиноводческих хозяйствах Словении. // Vetr. Glasnik.- 1985, — Т.39.- Р.9−10.
  137. MacLachlan N. James., Anderson Kevin P. Effect of recombinant DNA-derived bovine, а Л interferon on transmissible gastroenteritis virus infection in swine. // Amer. J. Vet. Res.-1986.-T.47.- jN°5. P.1149−1152.
  138. Manninger R., Csontos J. Uber die Atiologie der infections Magendarmentzundung der Schweine. // Dueutsche Tierarztliche Wochen-Schrift.- 1943. P.104−119.
  139. Matisheek P., Emerson W., Searl R. Results of laboratory and field tests of TGE vaccine. // Vet. med. Small Animal Clinician.-1982, — February.- P.262−264.
  140. McKean J.D., Stevernter E.J. TGE economic analysis of vaccination. // Agri-Pract.- 1987, — T. 8.6, — P.33−39.
  141. B.P., Davies G.T., Culter R.S. Имитационная модель экономического ущерба от трансмиссивного гастроэнтерита в промышленном свиноводстве Австралии. // Austral. Veter. J.- 1994.-V. 51.- № 5.- P.151−154.
  142. Miller G.Y. The economic impact of Clinical transmissible gastroenteritis for swine producers participating in the Missouri mail-in-record programm. // Prev. Veter. Med.- 1985. -T.3. P.475−488.
  143. Moesary E. Vaccination experimentes against transmissible gastroenteritis of swine. Immunoglobulin characteristics of antibodies in milk of sows vaccinated with the CKP strain of TGE virus. // Acta. Vet. Acad. Sei.- 1980.- Т. 28.- № 2, — P.131−143.
  144. Morilla A., Klemm B.C., Sprino P., Ristic M. Neutralization of transmissible gastroenteritis virus of swine by colostral antibodieselicited by intestine and cell culture propagated virus. / / Amer.J.Vet.Res.- 1976, — T.37.-№ 9, — P.1011−1016.
  145. Morilla G.A., Rosales О.С., Lopez M.J. Modelo hipotetiko de presentacion de brotes clasticos de la gastroenteritis transmissible de los cerdos. // Vet.Mex.- 1984, — Т.15, — № 2, — P.105−112.
  146. Morin M., Morehouse L. Transmissible gastroenteritis in feeder pigs: observations on the jejunal epithelium of normal feeder pigs and feeder pigs infected with TGE virus. // Can. J. comp. Med.-1974. T. 38.- № 3, — P.227−235.
  147. Morin M., Morehouse L. Transmissible gastroenteritis in feeder swine: clinical, immunofluorescence and histopathological observations. // Can. J. Comp. Med.- 1973.-V. 37, — № 3, — P.239−248.
  148. Mousing O., Vagsholm J., Carpenter T. Financial impact of transmissible gastroenteritis in pigs. // J. Am. Veter. Med. Assn.-1988.-T.192.- № 6.- P.756−759.
  149. Nelson J.M. Control of transmissible gastroenteritis by inoculation with a field culture. //J. Am. Vet. Med. Assoc.-1954, — V.124.-P.926.
  150. Nevjestic A., Madzimuratovic M., Sadaric F., Cvelic Vesna. Появление ТГЭ в Боснии и Герцеговине. // Vet. glas.-1982.- Т. 36.-№ 4, — P.295−303.
  151. Nieuwstadt A.P., Zetstra Т., Boonstra J. Infection with porcine respiratory Coronavirus does not fully protect pigs against intestinal transmissible gastroenteritis virus. // Vet. Ree.-1989.- V. 125.- № 3.-P.58−60.
  152. M., Yamashita H., Koide F. Гемагглютинирующие свойства вируса ТГЭ свиней (Япония). Hemagglutination with transmissible gastroenteritis virus. // Arch. Virol.- 1987, — 96.- V.2.- P. 109 115.
  153. Norman B.V., Unterdalu R. Tracking ehe xillers cycle. // Hog. Farm. Manager.- 1976, — Т.13, — P.62−65.
  154. Okaniwa A., Harada K., Kaji T. Electron microscopy of swine transmissible gastroenteritis (TGE) cirus in tissue culture cells. // Nat. 1st. Animal Health Quart.- 1966, — T. 6. № 2. — P.119−120.
  155. Parks J.B. Method for immunizing nursing piglets against transmissible gastroenteritis (TGE) virus. /Syntex (USA) Inc.// Пат. США № 3 962 422, МКИ A61K 39/12.- Заявлено 18.02.75- Опубл. 08.06.76.
  156. Pensaert Н.В., Burnstein Т., Haelterman Е.О. Cell culture-adapted strain of transmissible gastroenteritis virus of pigs in vivo and vitro studies. // Amer. Vet. Res.- 1970.- T. 31.- № 4, — P.771−781.
  157. Pensaert M.B., Haelterman E.O., Hinsman E. J. Transmissible gastroenteritisof swine: virus intensive cell interactions. Electron microscopy of the epitelium in isolated jejunal. Coops. // Amer. Desaunt. Virusforsch.- 1970, — Т. 31.- № 3,4.- P.335−351.
  158. Pensaert M.B. Viral gastroenteritis in suckling pigs. // Rev. Sei. et techn. Off Int. epizoot.- 1984, — T.3.- № 4, — P.809−818.
  159. Petrov K. Uber eingine probleme in der Hygiene bei der aufzucht der neugeboren fercel in den Grossbetlieben fur Schweinezucht. // Wissenachaftliche Zeitechrift der Humboltuniversitat zu Berlin.-1996, — Т.15, — № 6.- P.927−929.
  160. Pilchard E.J. Experimental transmission of transmissible gastroenteritis virus by starlings. // Amer. J. Vet. Res.-1965.- T.26.-№ 114, — P.1177−1179.
  161. Pitzgerald G. R>, Wetter M.W., Welter C.J. Improving the efficacy of oral TGE vaccination. // Veter. Med.- 1986, — T.81.- № 2,-P.184−187.
  162. Pocock D.H., Garves D.J. The influense of pH on the growth and stability of transmissible gastroenteritis viurus in vitro. // Amer. Virol.- 1975.- Т.49, — № 2−3.- P.239−247.
  163. Popovic M. Mere Zast, te in infektivnij gastroenterita svinja u svetla is Kuns tava iz jasse. // Veterinarski glasnic. -1975. -T.29.- № 110, — P.745−749.
  164. Popovic M., Gagzein M., Blaga M. Prilog immunizaiji svinja protiv transmissiling gastroenterita (TGE). J-titar speifichin VNA u krnow serumu Krmaca tretiranih TGE rakcimon proizvodnjie D.L.J.Lowa, u SA. // Vet.glas.- 1978, — Т.32, — № 4, — P.317−320.
  165. G.C. Распространение трансмиссивного гастроэнтерита на эпидемически инфицированных племенных свинофермах в Восточной Англии. // Veter.Rec.-1987.- Т. 120.-№ 10, — Р.226−230.
  166. Romano J.J., Velazquer A., 01guin F. Relaciones antigenicas del virus de la gastroenteritis transmissible de las cerdoe./ / Veterina-ria.-1975.-T.6.- № 2. P.38−47.
  167. Saunders C. Transmissible gastroenteritis. // Vet.Ree.-1964.-T.76.- P.1504−1506.
  168. Stanuica D., Paltineanu D., Draghici D. Reference mono-soecific serum against swine transmissible gastroenteritis (TGE) virus prepared in HBCDIR pigs. // Archiva Vet. Romania.-1982.-V. 16,-P. 21−26.
  169. Stark S.L. Transmissible gastroenteritis of swine: effect of age of swine tests cell culture monolayers on plague assays of TGE virus. // Can J. Comp Med.- 1975, — T.39.- № 4, — P.466−468.
  170. Steckbrief A. Transmissible Gastroenteritis. // Agrar.Praxis.-1988, — T.3.- № 36.
  171. Stepanek J., Mesaros E., Pospisil Z. Identifikace izolovanych knemu puvodu virove gastroenteridity prasat. // Veter. Med. (CSSR).- 1970, — T.15.- № 1.- P.3−10.
  172. Stepanek J., Mensik J., Pospisil Z., Rozkosny V. Vlev for-malinu a betapropiolaktonuna infekenost a antigenicitu puvodce virove gastroenterit du prasat (VGR). // Veter. Med. (CSSR).- 1973.-V.18,-№ 5, — P.269−280.
  173. Stepanek J., Mensik J., Franz J., Kreje J. Preparation of hyperimmune cow colostrum whey and it’s use in the protection of piglets against transmissible gastroenteritis. // Acta vet. Bruo. 1982, 51. № 1−4. P.99−108.
  174. Stone S.S., Stark J.L., Philips M. Transmissible gastroenteritis virus in Neonatal Pigs Intestinal Transfer of colostral immunoglobulins containing specific Antibodies. // Am. J. Vet. Res.- 1974.- V. 35-№ 3, — P.339−345.
  175. Stone S.S., Kemeny L.J., Woods R.D., Jensen M.T. Efficacy of Isolated Colostral Ig A., Ig G and Ig M (A) to protect Neonatal pigs against the Coronavirus of transmissible gastroenteritis. // Am. J. Vet. Res.- 1977, — V. 38.- № 9, — P. 1285−1288.
  176. Songer j.R. Iufluens of relative humidity on the survival of same airborne viruses. // Appl. Microbiol.- 1967, — T.15.- № 1.- P.35−42.
  177. Sune C., Jimenez G., Correa J. Mechanisms of transmissible gastroenteritis Coronavirus neutralization. // Virology.-1990.-V. 177.-№ 2.- P.559−569.
  178. Tajima M. Morphology of transmissible gastroenteritis virus of pigs. // Arch. Ges. Virusforsch.- 1970.-T. 20, — № 1.- P.105−108.
  179. Tardani A. Gastroenterite infettiva (TGE). // Professioneal levatore.- 1990, — V.17.- № 6.- P.46−50.
  180. Thomas P.C., Dulac G.C. Transmissible gastroenteritis virus: peagues and a plague neutralization test. // Can. J. Comb. Med.-1976, — T. 40, — № 2.- P.171−174.
  181. Thorsen J., Djurickovic S. Experimental immunisation of sows with inactivated transmissible gastroenteritis (TGE) virus. // Can. J. Comb. Med.- 1971, — T. 35.- № 2, — P.99−102.
  182. Tomoglia Т., Hanson Z. Transmissible gastroenteritis of swine. Efficacy assay of an intramammary use vaccine. // Develop. Biol. Standard.- 1976.- V. 33, — P.404−409.
  183. Torres-Medina A. Adult pigs carry TGE virus. // Nebraske swine report.- 1975.- V. 72, — P.20 330.
  184. Trouwborst T. Virussen en aerosolen. // Tidschr. Diergen-eesk.- 1974, — V. 99, — № 1, — P.84−91.
  185. Underdahi N.R., Mebus C.A. Recovery of transmissible gastroenteritis virus from chronically infected experimental pigs. // Am. J. Veter. Res.- 1975, — V. 36, — № 10, — P.1473−1476.
  186. Vaughn E.M., Paul P. S. Antigenic and bijlogical diversity among transmissible gastroenteritis virus isolates of swine. // Veter. Microbiol.- 1993.- V. 36, — №¾, — P.333−347.
  187. J., Kyriakis S., Papaioannow N., Mavromatis J. Трансмиссивный гастроэнтерит свиней, распространение болезни в Греции, симптоматика, патология, диагностика. // Bull. Hellen. Veter. Med. Soc.- 1994, — V. 45.- № 2, — P.117−122.
  188. Voets M.H., Pensaert M., Rondhius P.R. Vaccination of pregnant sows against transmissible gastroenteritis with two attenuated virus strains and different inoculation routes. // Tydyehr. Dier-geneech.- 1980.- V. 105.- № 20, — P.211−219.
  189. Welter C.J. TGE of swine. J. Propagation of virus in cell cultures and development of a vaccine. // Vet. Med.-1965.- V. 60, — № 10.-P.1054−1058.
  190. Welter C.J., Lann E., Head H. Transmissible gastroenteritis of swine. Properties of a vaccine and immunologie aspects in the sow and pig. // J. A.V. M. A.- 1996.- V.149.- № 12.- P.1587−1590.
  191. Welter C.J. Experimental and field evaluation of a new oral vaccine for TGE. // Veter. Med. Small Anim. Clin.- 1980.-V.U.-P.17 575−1759.
  192. Witte K.H., Easterday B.C. Isolation and propagation of the virus of transmissible gastroenteritis of pigs in various pig cell cultures. // Arch. Ges. Virusforsch.- 1968.- V. 20, — № 3, — P.327−350.
  193. Witte K.H. Haufigkeit und Verbreitung transmissible gastroenteritis virus neutralizierenden antikorper bei hastschweinen in acht kreisen nordWestdeutschlands. // Zul. Veter. Med. Reihe.- 1974, — T. 21.- № 5, — P.376−384.
  194. Wood G.N. Transmissible gastroenteritis of swine. // The Veterinary Bulletin.- 1969.-V. 39, — № 4, — P.239−248.
  195. Woods R.D., Wesley R.D., Kapke P.A. Neutralization of porcine transmissible gastroenteritis virus by complement dependent monoclonal antibodies. // Am. J. Veter. Res.- 1988, — V. 49.- № 3.-P.300−304.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!