Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Совершенствование методов диагностики оспы овец и оспы коз

Диссертация: Совершенствование методов диагностики оспы овец и оспы коз
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В соответствии с требованиями МЭБ при подозрении на оспу овец и коз патологический материал должен тестироваться также на наличие вируса контагиозной эктимы. Этот парапоксвирус вызывает заболевание, которое, также как и оспа, проявляется поражениями кожи, однако не относится к особо опасным болезням из-за незначительной смертности среди пораженных животных. Метод обнаружения вируса контагиозной… Читать ещё >

Совершенствование методов диагностики оспы овец и оспы коз (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Общая характеристика оспы овец и коз
      • 1. 1. 1. Распространенность заболеваний
      • 1. 1. 2. Клиническая картина заболеваний
      • 1. 1. 3. Патологоанатомические изменения
      • 1. 1. 4. Эпизоотологические особенности
    • 1. 2. Характеристика BOO и ВОК
      • 1. 2. 1. Таксономическое положение
      • 1. 2. 2. Видовая специфичность
      • 1. 2. 3. Физико-химические свойства
      • 1. 2. 4. Структура вириона
    • 1. 3. Геном BOO и ВОК
    • 1. 4. Патогенез BOO и ВОК
      • 1. 4. 1. Проникновение вируса в клетку
      • 1. 4. 2. Депротеинизация вирусной сердцевины
      • 1. 4. 3. Экспрессия генов
      • 1. 4. 4. Морфогенез
    • 1. 5. Культивирование BOO и ВОК
    • 1. 6. Иммунитет и специфическая профилактика
    • 1. 7. Диагностика оспы овец и оспы коз
      • 1. 7. 1. Дифференциальная диагностика
      • 1. 7. 2. Вирусологические методы диагностики
      • 1. 7. 3. Серологические методы
      • 1. 7. 4. Молекулярно-биологические методы

Актуальность темы

Оспа овец и оспа коз — высококонтагиозные вирусные заболевания мелких жвачных. По классификации МЭБ они относятся к трансграничным болезням животных, способным вызывать эпизоотии и наносить большой экономический ущерб. Оспа овец и коз эндемична на Ближнем Востоке, в Центральной Азии, Индии, Китае, а также в Центральной и Южной Африке. В 1996;2003 гг. неблагополучными по этим заболеваниям были 55 стран, в том числе 7 стран СНГ. В России оспа регистрировалась в 1994;2000 и 2002;2003 гг. [187].

Возбудителями болезней являются близкородственные, но таксономически самостоятельные виды — вирус оспы овец (BOO) и вирус оспы коз (ВОК), — относящиеся к роду Саргурох семейства Poxviridae. BOO и ВОК не обладают четко выраженной хозяйской специфичностью: несмотря на то, что обычно вирусы вызывают наиболее выраженное заболевание либо у овец, либо у коз, некоторые штаммы патогенны для обоих видов животных-хозяев [112]. Это делает актуальной задачу видовой дифференциации возбудителей оспы.

Для специфической профилактики оспы используются живые аттенуированные вакцины. Вакцинированные животные в результате контакта с эпизоотическими штаммами могут становиться бессимптомными носителями вируса и служить резервуаром инфекции. В связи с этим, при обнаружении у вакцинированных животных вируса оспы возникает необходимость в дифференциации вакцинных и эпизоотических штаммов.

Лабораторная диагностика оспы основана на обнаружении вируса или его составляющих (белков, ДНК) в патологическом материале, либо антител к вирусу в крови животных.

Традиционные методы диагностики оспы овец и коз (реакция нейтрализации, выделение вируса на культуре клеток) не способны дифференцировать вирусы оспы овец и оспы коз друг от друга и, тем более, вакцинные штаммы вирусов от эпизоотических. На сегодняшний день различать вирусы рода Саргурох возможно только с помощью рестрикционного картирования или нуклеотидного секвенирования вирусных геномов (ДНК). Однако в силу сложности и трудоемкости они неприменимы для рутинной диагностики.

В соответствии с требованиями МЭБ при подозрении на оспу овец и коз патологический материал должен тестироваться также на наличие вируса контагиозной эктимы. Этот парапоксвирус вызывает заболевание, которое, также как и оспа, проявляется поражениями кожи, однако не относится к особо опасным болезням из-за незначительной смертности среди пораженных животных. Метод обнаружения вируса контагиозной эктимы с помощью ПЦР в России до сих пор отсутствует.

Для выявления антител к BOO и ВОК традиционно используется реакция нейтрализации. Метод дорог, малопроизводителен, может выполняться лишь в условиях специализированных лабораторий с высоким классом биологической защиты. Первые попытки применения ИФА для выявления антител к BOO и ВОК были основаны на использовании в качестве антигена очищенных препаратов вирусов [48, 89, 142] Однако из-за невозможности избавиться от примесей клеточных белков в препаратах антигена специфичность реакции была низкой. Для избежания этой проблемы H.G.Heine et al. [40] предложили для выявления антител к BOO и ВОК ИФА, основанный на использовании рекомбинантного антигена Р32, полученного экспрессией в E.coli. Разработанный ими ИФА имел ряд преимуществ перед традиционными тест-системами, поскольку рекомбинантный антиген был биологически безопасен, дешев в получении, а также имел высокую степень очистки, что обеспечивало высокую специфичность реакции. Однако в России подобные работы не проводились.

Таким образом, в диагностике оспы овец и оспы коз нерешенными оставался ряд проблем. Отсутствовали простые и быстрые методы видовой и штаммовой дифференциации вирусов оспы овец и оспы коз. Не разрабатывались в России и высокоспецифичные иммуноферментные методы для выявления антител к этим вирусам.

Цели и задачи исследования. Цель нашей работы заключалась в совершенствовании методов диагностики оспы овец и оспы коз.

Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

— провести сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей генома вирусов рода Саргурох, выявить участки генома, пригодные для видовой дифференциации каприпоксвирусов и для дифференциации вакцинных и эпизоотических штаммов этих возбудителей;

— разработать простой и быстрый метод обнаружения и дифференциации вирусов оспы овец и оспы коз, основанный на ПЦР и не требующий проведения таких дополнительных процедур, как рестрикционный анализ или нуклеотидное секвенирование;

— разработать метод, позволяющий различать вакцинные и эпизоотические штаммы вируса оспы овец;

— для проведения дифференциальной диагностики оспы овец и оспы коз от контагиозной эктимы разработать на основе ПЦР метод обнаружения вируса контагиозной эктимы;

— получить рекомбинантные антигены вируса оспы овец экспрессией в E. coli;

— на основе рекомбинатных антигенов разработать иммуноферментный метод для выявления антител к вирусам оспы овец и оспы коз Научная новизна исследований.

Впервые разработан экспресс-метод, позволяющий выявлять и дифференцировать виды каприпоксвирусов только на основе ПЦР, без дополнительных исследований (рестрикционного анализа или нуклеотидного секвенирования).

Предложен метод дифференциации вакцинных штаммов «НИСХИ», «ВНИИЗЖ» и «Б 5/96» вируса оспы овец от эпизоотических изолятов на основе ПЦР с последующим рестрикционным анализом ампликонов, не имеющий аналогов в диагностике оспы овец.

Предложен метод дифференциальной диагностики вируса оспы овец и вируса оспы коз от вируса контагиозной эктимы.

Экспрессией в Е. coli получены рекомбинантные белки Р17, Р18 и Р26 вируса оспы овец.

Разработан непрямой вариант ИФА с использованием рекомбинантных белков Р17 и Р18 в качестве антигенов для обнаружения антител к каприпоксвирусам в сыворотках крови мелких жвачных.

Практическая значимость исследований.

В результате проведенных исследований разработано 5 методик, которые прошли комиссионные испытания, одобрены ученым советом и утверждены директором ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»:

Методика обнаружения и видовой дифференциации каприпоксвирусов с использованием мультиплексной полимеразной цепной реакции" (2005 г.);

Методика обнаружения вируса контагиозной эктимы с использованием полимеразной цепной реакции" (2005 г.);

Методика дифференциации вакцинных и эпизоотических штаммов вируса оспы овец с использованием рестрикционного анализа продуктов ПЦР" (2005 г.);

Методика обнаружения антител к каприпоксвирусам в непрямом иммуноферментном анализе с использованием рекомбинантного антигена Р17 вируса оспы овец" (2006 г.);

Методика обнаружения антител к каприпоксвирусам в непрямом иммуноферментном анализе с использованием рекомбинантного антигена Р18 вируса оспы овец" (2006 г.).

Публикации научных исследований. По теме диссертации опубликовано 5 научных работ, в том числе одна работа в издании, рекомендованном ВАК РФ.

Апробация работы. Материалы диссертации представлены и обсуждены на Международной научной конференции молодых ученых «Проблемы мониторинга и генодиагностики инфекционных болезней животных» (Владимир, 2004 г.), а также на заседаниях ученого совета ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» в период 2002;2006 гг.

Основные положения, выносимые на защиту:

Метод обнаружения и видовой дифференциации каприпоксвирусов, с использованием мультиплексной ПЦР.

Метод дифференциации вакцинных и эпизоотических штаммов вируса оспы овец с использованием рестрикционного анализа продуктов ПЦР.

Метод обнаружения вируса контагиозной эктимы с использованием.

ПЦР.

Получение рекомбинантных антигенов вируса оспы овец и оценка их антигенной активности.

Использование рекомбинантных антигенов Р17 и Р18 вируса оспы овец в непрямом варианте ИФА.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 133 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, результаты собственных исследований, обсуждение полученных результатов, выводы, практические предложения и 5 приложений. Список используемой литературы включает 188 источников, из которых 149 на иностранном языке. Работа иллюстрирована 10 таблицами и 16 рисунками.

5. ВЫВОДЫ.

1. Проведен сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей полноразмерного генома вируса оспы овец, вируса оспы коз и вируса бугорчатки. Выявлены участки генома, позволяющие определять видовую принадлежность каприпоксвирусов, а также дифференцировать вакцинные штаммы вируса оспы овец от эпизоотических изолятов.

2. Разработан метод обнаружения и дифференциации каприпоксвирусов, основанный на мультиплексной ПЦР с видоспецифичными праймерами. Метод отличается высокой специфичностью, чувствительностью и технической простотой.

3. Разработан метод, основанный на амплификации и рестрикционном анализе гена ankyrin-repeat белка, позволяющий дифференцировать вакцинные штаммы «НИСХИ», «ВНИИЗЖ» и «Б5/96» вируса оспы овец от эпизоотических изолятов и, одновременно, различать вирусы оспы овец и коз.

4. Разработан метод обнаружения вируса контагиозной эктимы с помощью ПЦР, позволяющий проводить дифференциальную диагностику оспы овец и коз и контагиозной эктимы.

5. Получены рекомбинантные белки Р17, Р18 и Р32 вируса оспы овец экспрессией в E.coli. Показана антигенная активность рекомбинантных белков Р17 и Р18.

6. На основе рекомбинантных антигенов Р17 и Р18 вируса оспы овец разработан непрямой вариант ИФА для обнаружения антител к каприпоксвирусам в сыворотках крови овец и коз.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Для практического использования предлагаются:

Методика обнаружения и видовой дифференциации каприпоксвирусов с использованием мультиплексной полимеразной цепной реакции" (2005 г.);

Методика дифференциации вакцинных и эпизоотических штаммов вируса оспы овец с использованием рестрикционного анализа продуктов ПЦР" (2005 г.);

Методика обнаружения вируса контагиозной эктимы с использованием полимеразной цепной реакции" (2005 г.);

Методика обнаружения антител к каприпоксвирусам в непрямом иммуноферментном анализе с использованием рекомбинантного антигена Р17 вируса оспы овец" (2006 г.).

Методика обнаружения антител к каприпоксвирусам в непрямом иммуноферментном анализе с использованием рекомбинантного антигена Р18 вируса оспы овец" (2006 г.).

Методики прошли комиссионные испытания, одобрены ученым советом и утверждены директором ФГУ «Федеральный центр охраны здоровья животных».

Показать весь текст

Список литературы

  1. Биологические свойства вакцинного штамма НИСХИ вируса оспы овец / В. Н. Иванющенков, О. А. Кореба, В. Т. Кекух и др. // Ветеринария. 1990. -№ 8. — С. 22−24.
  2. , Ю.Ф. О распространении оспы овец и мерах борьбы с нею в некоторых странах / Ю. Ф. Борисович // Тр. ГНКИ. М., 1964. — Т. 12. — С. 24−31.
  3. , Т.Я. Оспа коз и ее специфическая профилактика: автореф. дис. д-ра.вет.наук / Т. Я. Ванновский. Воронеж, 1966.-43 с.
  4. Вирусные болезни животных / В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. В. Соловьев, Н. В. Фомина. М.: ВНИТИБП, 1998. — 928 с.
  5. , В.В. Сухая живая вакцина против оспы овец из штамма С 113/86 / В. В. Гуненков, В. П. Черняк, Г. Д. Кузнецов // Ветеринария. 1993. — № 11/12. — С.23−24.
  6. , В.И. Оспа овец и ее профилактика вакциной из штамма ВНИИЗЖ / В. И. Диев // Современные аспекты вет. патологии ж-ных: матер, конф., посвящен. 40-летию ВНИИЗЖ. Владимир, 1998. — С. 114−124.
  7. , В.Н. Реактогенные свойства вирусвакцины против оспы овец / В. Н. Иванющенков, В. Т. Кекух, О. А. Кореба // Ветеринария. 1990. -№ 7.-С. 28−30.
  8. Изучение патогенности вирусов оспы овец и оспы коз / М. С. Зиновьева, В. М. Захаров, В. И. Диев, Д. К. Басова // Вуз и АПК. Задачи, проблемы и пути решения: сб.науч.тр. Махачкала, 2002. — С. 288−290.
  9. Инфекционные болезни овец / Р. А. Кадымов, А. А. Кунаков, В. А. Седов и др. М.: Агропромиздат, 1987. — 303 с.
  10. Использование аэросила А-300 и фильтров GF/F (GF/C) для очистки фрагментов ДНК, ДНК-плазмид и РНК / О. Г. Грибанов, А. В. Щербаков, Н. А. Перевозчикова и др. // Биохимия. 1996. — Т. 21, № 6. — С. 1064−1070.
  11. Испытания в производственных условиях сухой эмбрион-вирусвакцины против оспы овец / Н. В. Лихачев, А. Д. Смедов, Ю. Ф. Борисович и др. // Тр. ГНКИ.-М., 1962.-Т. 11.-С. 28−32.
  12. , У.Г. Оспа животных / У. Г. Кадыров, Ю. Ф. Борисович. М.: Колос, 1981.- 156 с.
  13. , А. В. Разработка методов иммуноферментного анализа для выявления антител к вирусу репродуктивно-респираторного синдрома свиней: дис.канд.вет.наук / А. В. Каныпина. Владимир, 2004. — 123 с.
  14. , У.Ж. Получение диагностических препаратов для серологических реакций при оспе овец / У. Ж. Керембекова, Ю. М. Гононов, JI.H. Пасечников // Вестник с.-х. науки Казахстана. 1992. — № 3. — С. 122 123.
  15. , У.Ж. Совершенствование средств и методов лабораторной диагностики оспы овец: автореф.дис.канд.вет.наук / У. Ж. Керембекова. -Алматы, 1994. -26 с.
  16. Классификация и номенклатура вирусов позвоночных. Учебное пособие / под ред. В. Ю. Луговцева, Д. А. Васильева. Ульяновск, 2002. — С. 17−26.
  17. , Т. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование / Т. Маниатис, Э. Фрич, Дж. Сэмбрук: пер. с англ. М.: Мир, 1984.-480 с.
  18. , А.В. Диагностика оспы овец и оспы коз / А. В. Машнин // Вест. РАСХН. 2003. — № 3. — С. 66−69.
  19. Машнин, А, В. Получение гипериммунных сывороток для диагностики оспы овец и коз / А. В. Машнин // Докл. РАСХН. 2003. — № 5. — С. 57−59.
  20. , А.В. Разработка и усовершенствование средств и методов лабораторной диагностики оспы овец и оспы коз: автореф.дис.канд.вет.наук / А. В. Машнин. Покров, 2001. -23 с.
  21. Патогенность и иммуногенность вирусов оспы овец и оспы коз на гетеровидовых животных / Л. Б. Кутумбетов, М. С. Зиновьева, С. В. Хлебопашникова, Н. И. Ковалишина // Вет. медицина: м1жвид. тем. наук. зб. 80 рок. IEKBM. Харьюв, 2002. — С. 359−362.
  22. , И. О. Практическое пособие по медицинской статистике / И. О. Поляков. JL: Медицина, 1975. — 150 с.
  23. Разработка и испытание вирусвакцины против оспы овец сухой культуральной / И. Ф. Вишняков, В. М. Балышев, В. В. Башаев и др. // Состояние, проблемы и перспективы развития вет. науки России (К 100-летнему юбилею ВИЭВ). М., 1999. — Т. 1. — С. 138−140.
  24. , Е.И. Структура и морфогенез вируса оспы коз / Е. И. Скалинский, Ю. Ф. Борисович // Ветеринария. 1975. -№ 7. — С. 39−41.
  25. , Е.И. Об электронномикроскопической диагностике оспенных болезней животных / Е. И. Скалинский, Ю. Ф. Борисович // Ветеринария. -1978.-№ 6.-С. 46−47.
  26. , В.Н. Ветеринарная вирусология / В. Н. Сюрин, Г. В. Белоусова, Н. В. Фомина. М.:Агропромиздат, 1991. — С. 366−369.
  27. Теория и практика иммуноферментного анализа / A.M. Егоров, А. П. Осипов, Б. Б. Дзантиев, Е. М. Гаврилова. -М.: Высшая школа, 1991. -288 с.
  28. , Д. Методы трансформации Е. coli / Д. Ханаан // Клонирование ДНК. Методы: пер. с англ.-М., 1988.-С. 140−173.
  29. , Н. Г. Выделение плазмидной ДНК методом щелочного лизиса / Н. Г. Холодилов // Методы мол. генетики и генной инженерии. -Новосибирск: Наука, 1990.-С. 9−10.
  30. Эффективность сухой культуральной вирусвакцины из штамма НИСХИ против оспы овец / Ф. П. Курченко, В. Н. Иванющенков, К. П. Уфимцев и др.//Ветеринария. 1991.-№ 10.-С. 21−23.
  31. , А. С. Экспрессия в E.coli рекомбинантных белков ЗА, ЗВ и ЗАВ вируса ящура / А. С. Яковлева, А. В. Каньшина, А. В. Щербаков // Тр.
  32. Федерального центра охраны здоровья ж-ных. Владимир, 2005. — Т. 3. — С. 105−114.
  33. A capripoxvirus detection PCR and antibody ELISA based on the major antigen P32, the homolog of the vaccinia virus H3L gene / H.G. Heine, M.P. Stevens, A. J Foord., D.B. Boyle //J.Immunol.Methods. 1999. — Vol. 227, № 1−2. — P. 187−196.
  34. A classical live attenuated vaccine for sheep pox / V. Bhanuprakash, B.K. Indrani, R. Hegde et al. // Trop. Anim. Health Prod. 2004. — Vol. 36, № 4. — P. 307−320.
  35. A duplex PCR assay for simultaneous detection and differentiation of Capripoxvirus and Orf virus / M. Zheng, Q. Liu, N. Jin et al. //Mol. Cell Probes. -2007.-Vol. 2.-P. 48−50.
  36. A note on the antigenic relationship of sheep pox virus strains / Puranchand, V.D.P. Rao, R. Chandra, S.K. Garg // Indian J. Vet. Med. 1987. — Vol. 7. — P. 166−168.
  37. A prominent antigenic surface polypeptide involved in the biogenesis and function of the vaccinia virus envelope / J. Gordon, A. Mohandas, S. Wilton, S. Dales//Virology. 1991.-Vol. 181, № 2. — P.671−686.
  38. A Vero cell-attenuated goat pox virus provides protection against virulent virus challenge / M. Hosamani, S. Nandi, B. Mondal et al. // Acta Virol. 2004. -Vol. 48, № 1. — P.15−21.
  39. Adaptation and growth cycle of sheep pox virus in MDBK cell line / K.D. Pandey, A. Rai, A.C. Goel et al. // Indian J. Virol. 1985. — Vol. 1. — P. 133 138.
  40. Adlakha, S. C. Studies on sheep- and goat-pox viruses. I. Adaptation of the viruses in laboratory animals and tissue culture / S. C. Adlakha, M.P. Bansal, B.S. Malik // Indian J. Anim. Sci. 1971. — Vol. 41. — P. 171 -175.
  41. Application of ELISA in the detection of goat pox antigen and antibodies / B. Sharma, B.S. Negi, M.P. Yadav et al. // Acta Virol. 1988. — V.32. — P. 65−69.
  42. Application of fluorescent antibody test in the diagnosis of sheep pox, and study of sheep pox virus multiplication in cell-culture / P. Sarkar, S.P. Singh, A.K. Pandey et al. J // Indian J.Anim.Sci. 1980. — V.50.
  43. Assembly of vaccinia virus: role of the intermediate compartment between the endoplasmic reticulum and the Golgi stacks / B. Sodeik, R.W. Dom, M. Ericsson et al. // J. Cell Biol. 1993. — Vol. 121. — P. 521−541.
  44. Autoradiographic study on sheep pox virus infection / A.M. Terinha, J.D. Vigario, J.L. Nunes Petisca et al. // J. Bacteriol. 1965. — Vol. 90.
  45. Bakos, K. Studies on goat pox in Sweden / K. Bakos, S. Brag // Vet. Bull. -1957.-Vol. 27.-P. 571.
  46. Baldick, C.J. Characterization and regulation of mRNAs encoded by vaccinia virus intermediate stage genes / C.J. Baldick, B. Moss // J. Virol. 1993. — Vol, 67.-P. 3515−3527.
  47. Baroudy, B.M. Sequence homologies of diverse length tandem repetitions near ends of vaccinia virus genome suggest unequal crossing over / B.M. Baroudy, B. Moss // Nucleic Acids Res. 1982. — Vol. 10. — P. 5673−5679.
  48. Bhambani, B.D. An immunodiffusion test for laboratory diagnosis of sheeppox and goatpox / B.D. Bhambani, D. Krishnamurtthi // J. Сотр. Pathol. Therap. -1963.- V. 73.-P. 349−357.
  49. Bhat, P.P. Molecular characterization of pox (viral) DNA / P.P. Bhat // Indian J. Anim. Sci. 1993. — Vol. 63. — P. 857−862.
  50. Bhat, P.P. Restriction enzyme profiles as molecular epidemiological tools for characterizing sheeppox virus genomes / P.P. Bhat, B.P. Mishra // Indian Journal of Animal Sciences. 1989. — Vol. 59. — P. 1475−1490.
  51. Black, D.N. Genomic relationship between capripoxviruses / D.N. Black, J.M. Hammond, R.P. Kitching // Virus Res. 1986. — Vol. 5. — P. 277−292.
  52. Black, D.N. The capripoxvirus genome / D.N. Black // Rev. Sci. Techn. OIE. -1986.-Vol. 5.-P. 495−501.
  53. Buller, R.M.L. Poxvirus pathogenesis / R.M.L. Buller, G.J. Palumbo // Microbiol. Reviews. 1991. — Vol. 55. — P. 80−122.
  54. Carn, V.M. An antigen trapping ELISA for the detection of capripoxvirus in tissue culture supernatant and biopsy samples / V.M. Carn // J. Virol. Methods. -1995.-Vol. 51, № 1. P.95−102.
  55. Carn, V.M. Control of capripoxvirus infections / V.M. Carn // Vaccine. 1993. -Vol. 11, № 13. — P.1275−1279.
  56. Cellular fatty acids during fowlpox virus infection of three different host systems / D.S. Lyles, C.C. Randall, L.G. Gafford, H.B.J. White // Virology. 1976. — Vol. 70. — P. 227−229.
  57. Chand, P. Evaluation of the Western blot analysis of virus-specific antibody responses to capripox and contagious pustular dermatitis infections in sheep / P. Chand, R.P. Kitching, D.N. Black // Epidemiol. Infect. 1994. — Vol. 113, № 2. -P. 377−385.
  58. Chand, P. Molecular and immunological characterization of a major envelope protein of capripoxvirus: Ph. D. Thesis / P. Chand. University of Surrey, 1992.
  59. Cho, C.T. Monkeypox virus / C.T. Cho, H.A. Wenner // Bacteriol. Reviews. -1973.-Vol.37.-P. 1−18.
  60. Coagglutination test: a simple and rapid diagnostic technique for goat pox / R.K. Joshi, R. Chandra, V.D.P. Rao, S.K. Gard // Trop. Anim. Health Prod. 1989. -Vol. 21, № 4. — P.233−235.
  61. Comparative evaluation of sheep pox vaccines / I.P. Singh, V.D.P. Rao, R. Chandra, S.K. Garg // Indian J. Anim. Sci. 1984. — Vol. 54. — P. 650−653.
  62. Counter-immunoelectrophoresis test for rapid diagnosis of sheep pox / Puranchand, V.D.P. Rao, S.K. Garg et al. // Brit. Vet. J. 1985. — Vol. 141. — P. 124−128.
  63. Cultivation of goat pox virus in established cell line / Ved Prakash, R. Chandra, V.D.P. Rao, S.K. Garg // Indian J. Virol. 1994. — Vol. 10. — P. 60−63.
  64. Cytopathogenicity of goat pox virus / R.K. Joshi, R. Chandra, V.D.P. Rao, S.K. Garg // Indian J. Сотр. Microb. Immunol. Infect. Dis. 1994. — Vol. 15. — P. 3536.
  65. Dales, S. Biology of poxviruses / S. Dales, B.G.T. Pogo // Virology Monographs. 1981.-Vol. 18. — P. 1−109.
  66. Dales, S. The cycle of multiplication of vaccinia virus in Earle’s strain L cells. I. Uptake and penetration / S. Dales, R. Kajioka // Virology. 1964. — Vol. 24. — P. 278−294.
  67. Datta, S. Dot-immunobinding technique in differential diagnosis of pox diseases of sheep and goats / S. Datta, J.P. Soman // Indian J. Anim. Sci. 1990. — Vol. 60. -P. 1186−1187.
  68. Davies, F.G. The alteration in pathogenicity and immunogenicity of a Kenya sheep and goat pox virus on serial passage in bovine fetal muscle cell culture / F.G. Davies, G. Mbugwa // J. Сотр. Pathol. 1985. — Vol. 95. — P. 565−568.
  69. Davison, A.J. The structure of vaccinia virus early promoters / A.J. Davison, B. Moss // J. Mol. Biol. 1989. — Vol. 210. — P. 749−769.
  70. Davison, A.J. The structure of vaccinia virus late promoters / A.J. Davison, B. Moss // J. Mol. Biol. 1989. — Vol. 210. — P. 771−784.
  71. Deletion of 55 open reading frames from the termini of vaccinia virus / M.E. Perkus, S.J. Goebel, S.W. Davis et al. // Virology. 1991. — Vol. 180. — P. 406 410.
  72. Detection of goat pox antigen and antibody by counter-immunoelectrophoresis / R.K. Joshi, R. Chandra, V.D.P. Rao, S.K. Gard // Indian J. Anim. Sci. 1990. -Vol. 60.-P. 34−35.
  73. Detection of goatpox antigen and antibody by the CIE test / B. Sharma, B.S. Negi, A.B. Pandey et al. // Trop. Anim. Health Prod. 1988. — V.20. — P. 109 113.
  74. Detection of sheep poxvirus in skin biopsy samples by a multiplex polymerase chain reaction / P. Markoulatos, O. Mangana-Vougiouka, G. Koptopoulos et al. // J. Virol. Methods. 2000. — Vol. 84, № 2. — P. 161 -167.
  75. Development of an attenuated live virus vaccine against sheep pox: a field trial / R. Chandra, V.D.P. Rao, V.P. Dixit et al. // Indian Vet. J. 1990. — Vol. 67. — P. 1−3.
  76. Differentiation of sheep pox and goat poxviruses by sequence analysis and PCR-RFLP of P32 gene / M. Hosamani, B. Mondal, P.A. Tembhurne et al. // Virus Gene. 2004. — Vol. 29, № 1. — P. 73−80.
  77. Easterbrook, K.B. Controlled degradation of vaccine virions in vitro: an electron microscopic study / K.B. Easterbrook // J. Ultrastructure Res. 1966. — Vol. 14. -P. 484−496.
  78. ELISA: theory and practice / ed. by J.R. Crowther. -Totowa, New Jersey: Humana Press, 1995. 223 p. — (Methods in Mol. Biol.)
  79. El-Zein, A. Preparation and testing of a goat pox vaccine from a pathogenic fiel isolate attenuated in cell culture / A. El-Zein, S. Nehme, K.V. Singh // Zentralblat Vet.-Med. 1983. — Bd. 30. — S. 341−348.
  80. Evaluation of allergic test in goat pox / B.S. Negi, A.B. Pandey, M.P. Yadav, B. Sharma // Indian J. Virol. 1988. — Vol. 4. — P. 26−33.
  81. Evaluation of an immunocapture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of capripoxvirus / C.K. Ngichabe, Y.S. Binepal, J. W. Njiru, V.M. Cam // Vet. Rec.- 1999.-Vol. 145. P. 231−232.
  82. Evaluation of immunocapture ELISA for diagnosis of goat pox / T.V. Rao, P. Malik, S. Nandi, B.S. Negi // Acta Virol. 1997. — Vol. 41, № 6. — P. 345−348.
  83. Evaluation of latex agglutination test for rapid detection of goat poxvirus antigen and antibodies / T.V. Rao, B.S. Negi, P. Dhar, D. Asgola // Acta Virol. 1996. -Vol.40, № 2.-P. 95−97.
  84. Experimental immune response of Iranian goat pox vaccine virus strain against prevalent virus in Pakistan / M.A. Mahmood, M. Ahmad, S. Afzaal, M.S. Knah // Pakistan Vet. J.- 1993.-Vol. 13.-P. 125−127.
  85. Gershon, P.D. A comparison of the genomes of capripoxvirus isolates of sheep, goats, and cattle / P.D. Gershon, D.N. Black // Virology. 1988. — Vol. 164, № 2. -P. 341−349.
  86. Goat pox cell culture attenuated vaccine / H. Guo, Z.Y. Guo, Z.P. Shang, Q.G. Liu // Chinese J. Vet. Sci. Technol. 1986. — Vol.3. — P. 8−10.
  87. Gomez, C.E. Recombinant proteins produced by vaccinia virus vectors can be incorporated within the virion (IMV form) into different compartments / C.E. Gomez, M. Esteban // Arch Virol. 2001. — Vol. 146, № 5. — P.875−892.
  88. Growth and cytopathogenicity of goat pox virus in MDBK cell line / R.K. Joshi, S.K. Garg, R. Chandra, V.D. Sharma // Indian J. Virol. 1995. — Vol. 11. — P. 3133.
  89. Growth behaviour of Sambalpur strain of goat pox virus on chorioallantoic membrane of developing chicken embryo / R.K. Joshi, S.K. Garg, R. Chandra, S.N. Sharma // Indian J. Virol. 1996. — Vol. 12. — P. 109−111.
  90. Hudson, L. Practical immunology / L. Hudson, F.C. Hay. Oxford: Blackwell Sci.Publ., 1989.-P. 257−258.
  91. Ichihashi, Y. Proteolytic activation of vaccinia virus for penetration phase of infection / Y. Ichihashi, M. Oie // Virology. 1982. — Vol. 116. — P. 297−305.
  92. Ink, B.S. Transcription of poxvirus early gene is regulated both by a short promoter element and by a transcriptional termination signal controlling transcriptional interference / B.S. Ink, D.J. Pickup // J. Virol. 1989. — Vol. 63. -P. 4632−4644.
  93. Ireland, D.C. Improved detection of capripoxvirus in biopsy samples by PCR / D.C. Ireland, Y.S. Binepal //J. Virol. Methods. 1998. — Vol.74, № 1. — P. 1−7.
  94. Jadhav, K.M. Field observations on sheep pox tissue culture vaccine / K.M. Jadhav, A.K. Pandey, N.S. Radadia // Indian Vet. J. 1989. — Vol. 66. — P. 908 912.
  95. Jaikumer, D. Virion polypeptides of SPV (Ranipet strain) / D. Jaikumer, P. Ramadass, V.D. Padmanaban // Indian J. Anim. Sci. 1996. — Vol. 66. — P. 35−36.
  96. Janeczko, R.A. Studies on the mechanism of entry of vaccinia virus into animal cells / R.A. Janeczko, J.F. Rodriguez, M. Esteban // Arch. Virol. 1987. — Vol. 92.-P. 135−150.
  97. Joklik, W.K. The replication and coating of vaccinia DNA / W.K. Joklik, Y. Becker // J. Mol. Biol. 1964. — Vol. 10. — P. 452−474.
  98. Kirubaharan, J J. Adaptation of SPV (Ranipet strain) to BHK2i cell line / J.J. Kirubaharan, A.P.G. Sugirtha, V.D. Padmanaban // Indian Vet. J. 1993. — Vol. 70. — P. 4−6.
  99. Kitching, R.P. A single vaccine for the control of capripox infection in sheep and goats / R.P. Kitching, J.M. Hammond, W.P. Taylor // Res.Vet. Sci. 1987. — Vol. 42.-P. 53−60.
  100. Kitching, R.P. Clinical and antigenic relationship between isolates of sheep and goat pox viruses / R.P. Kitching, W.P. Taylor // Trop. Anim. Health Prod. 1985. -V. 17.-P. 64−74.
  101. Kitching, R.P. Comparison of the external dimensions of capripoxvirus isolates I R.P. Kitching, C. Smale // Res. Vet. Sci. 1986. — Vol. 41. — P. 425−427.
  102. Kitching, R.P. Poxvirus, infection and immunity / R.P. Kitching, J.M. Hammond // Encyclopedia of Immunology / Eds. A. Roit et al. London, 1991. — P. 12 611 264.
  103. Kitching, R.P. Progress towards sheep and goat pox vaccines / R.P. Kitching // Vaccine. 1983. — Vol.1, № 1. — P. 4−9.
  104. Kitching, R.P. Studies on the major common precipitating antigen of Capripoxvirus / R.P. Kitching, J.M. Hammond, D.N. Black // J. Gen. Virol. -1986.-V.67.-P.139−148.
  105. Kitching, R.P. The characterization of African strains of capripoxvirus / R.P. Kitching, P.P. Bhat, D.N. Black // Epidemiol. Infect. 1989. — Vol. 102. — P. 335 343.
  106. Kotwal, G.J. Analysis of a large cluster of nonessential genes deleted from a vaccinia virus terminal transposition mutant / G. J Kotwal, B. Moss // Virology. -1988.-Vol. 167.-P. 524−537.
  107. Law, M. Antibody neutralization of the extracellular enveloped form of vaccinia virus/М. Law, G.L. Smith//Virology. 2001.-Vol. 280, № l.-P. 132−142.
  108. Mahmood, M.A. Preparation of live sheep pox tissue culture vaccine / M.A. Mahmood, Z. Hasni, S. Afzal // Pakistan Vet. J. 1988. — Vol. 8. — P. 56−61.
  109. Matthews, R.E.F. Classification and nomenclature of viruses / R.E.F. Matthews // Intervirology. 1982. — Vol. 17. — P. 1−199.
  110. Merchlinsky, M. Resolution of linear minichromosomes with hairpin ends from circular plasmids containing vaccinia virus concatemer junctions / M. Merchlinsky, B. Moss // Cell. 1986. — Vol. 45. — P. 879−884.
  111. Moss, B. Instability and reiteration of DNA sequences within the vaccinia virus genome / B. Moss, E. Winters, N. Cooper// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1981. -Vol. 78.-P. 1614−1618.
  112. Pandey, A.K. Studies on sheep poxvirus. 2. Immune and antibody response with cell culture adapted virus / A.K. Pandey, B.S. Malik, M.P. Bansal // Indian Vet. J. 1969.-Vol. 46.-P. 1017−1023.
  113. Pandey, R. Soluble antigens of sheep-pox and goat-pox viruses as determined by immunodiffusion in agar gel / R. Pandey, I.P. Singh // Acta Virol. 1972. — Vol. 16.-P. 41−46.
  114. Parsons, B.L. Tandemly repeated sequences are present at the ends of the DNA of raccoonpox virus / B.L. Parsons, D.J. Pickup // Virology. 1987. — Vol. 161. -P. 45−53.
  115. Passive haemagglutination test with goat pox virus / R.K. Joshi, R. Chandra, V.D.P. Rao, S.K. Garg // Indian J. Vet. Med. 1991. — Vol. 11. — P. 56−57.
  116. Payne, L.G. Characterization of vaccinia virus glycoproteins by monoclonal antibody precipitation / L.G. Payne // Virology. 1992. — Vol. 187, № 1. — P. 251 -260.
  117. Payne, L. Polypeptide composition of extracellular enveloped vaccinia virus / L. Payne // J. Virol. 1978. — Vol. 27. — P. 28−37.
  118. Poxvirus genetic recombination during natural virus transmission / P.D. Gershon, R.P. Kitching, L.M. Hammond, D.N. Black // J.Gen. Virol. 1989. — Vol. 70, № 2.-P. 485−489.
  119. Rafyi, A. Goat pox in Iran, serial passage in goats and developing eggs and relationship with sheep pox / A. Rafyi, H. Ramyar // J. Сотр. Pathol. Therap. -1959.-Vol. 69.-P. 141−147.
  120. Ramyar, H. Goat pox: immunogenicity of vaccine virus modified in cell culture / H. Ramyar, M. Hessami, B. Ghaboussi // Vet. Bull. 1974. — Vol. 44. — P. 472.
  121. Rao, T.V.S. A comprehensive review of goat pox and sheep pox and their diagnosis / T.V.S. Rao, S.K. Bandyopadhyay // Anim. Health Res. Rev. 2000. -Vol. 1, № 2. — P. 127−136.
  122. Rao, T.V.S. Development and standartization of a rapid diagnostic test for sheep pox / T.V.S. Rao, B.S. Negi, M.P. Bansal // Indian J. Сотр. Microb. Immunol. Infect. Dis. 1997. — Vol. 18. — P. 47−51.
  123. Rao, T.V.S. Diagnosis of sheep pox and goat pox by PCR technique / T.V.S. Rao, S. Nandi, B.P. Sreenivasa // Indian J. Anim. Sci. 2001. — Vol. 71. — P.
  124. Rao, T.V.S. Evaluation of avidin-biotin ELISA for the detection of antibodies to goat poxvirus using noninfectious diagnostic reagent / T.V.S. Rao, P. Malik, D. Asgola // Acta Virol. 1999. — Vol. 43. — P. 297−301.
  125. Rao, T.V.S. Evaluation of different serological tests for the diagnosis of goat pox using soluble antigens / T.V.S. Rao, B.S. Negi // Tropical Animal Health Production 1997. — Vol. 29, № 4. — P. 235−239.
  126. Rao, T.V. Identification and characterization of differentiating soluble antigens of sheep and goat poxviruses / T.V. Rao, B.S. Negi, M.P. Bansal // Acta Virol. -1996.- V.40.-P. 259−262.
  127. Rao, T.V.S. Isolation and characterization of soluble antigens of sheep poxvirus / T.V.S. Rao, B.S. Negi, M.P. Bansal // Indian J. Exp. Biol. 1997. — Vol. 35. — P. 597−602.
  128. Rao, V.D.P. Standartization of single radial haemolysis test for detection of sheep pox antibodies / V.D.P. Rao, R. Chandra // Indian J. Vet. Med. 1986. -Vol. 6.-P. 138.
  129. Rao, T.V.S. Use of purified soluble antigens of sheep poxvirus in serodiagnosis / T.V.S. Rao, B.S. Negi, M.P. Bansal // Indian J. Anim. Sci. 1997. — Vol. 67. — P. 642−645.
  130. Replication and resolution of cloned poxvirus telomeres in vivo generates linear minichromosomes with intact viral harpin termini / A.M. DeLange, M. Reddy, D. Scraba et al. J // J Virol. 1986. — Vol. 59. — P. 249−259.
  131. Rosel, J. Transcription and translational mapping and nucleotide sequence analysis of vaccinia virus gene encoding the precursor of major core polypeptide 4b / J. Rosel, B. Moss // J. Virol. 1985. — Vol. 56. — P. 830−838.
  132. Roy, R.N. Identification and immuno-characterization of different structural polypeptides of sheep pox virion: Phd. thesis / R.N. Roy- Indian Veterinary Research Institute. Mukteswar/Izatnagar, India, 1994.
  133. Saha, G.R. Studies on lymphoid lesion of goat pox / G.R. Saha, N.C. Nayak, M.K. Bhowmik // Indian J. Anim. Res. 1991. — Vol. 25. — P. 1−4.
  134. Sambyal, D.S. Immunogenecity of soluble antigens of sheep-pox virus / D.S. Sambyal, I.P. Singh // Indian J. Anim. Sci. 1978. — Vol. 48, № 7. — P. 511 -514.
  135. Sharma, P.C. Immunological response of RM/65 sheep-pox vaccine in lambs / P.C. Sharma, S. Prasad, S.K. Karla // Indian J. Anim. Sci. 1987. — Vol. 57, № 9. -P. 923−928.
  136. Sharma, S.N. Detection of sheeppox virus multiplication in sheep cells by acridin orange staining / S.N. Sharma, B. Sambamurthi // Indian J.Exp.Biol. 1977.-V.15.-P.
  137. Sharma, S.N. Studies on sheep- and goat-pox viruses. Relationship with CPD and vaccinia viruses / S.N. Sharma, M.R. Dhanda // Indian J. Anim. Sci. 1971. — Vol. 41. — P. 864−867.
  138. Sheep pox and goat pox // OIE. Manual of Standards for Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (mammals, birds and bees). 5th ed. — Paris, 2004.-P.211−220.
  139. Sheep poxvirus identification by PCR in cell cultures / O. Mangana-Vougiouka, P. Markoulatos, G. Koptopoulos et al. // J. Virol. Methods. 1999. — Vol. 77, № 1.-P. 75−79.
  140. Singh, A. Rai // Indian Vet. Med. J. 1991. — Vol. 15. — P. 245−250. 160. Singh, B. Virion polypeptides of sheep poxvirus / B. Singh, A. Rai // Indian Vet.
  141. Med. J. 1991.-Vol. 15.-P. 239−244. 161. Smadel, J.F. Elementary bodies of vaccinia / J.F. Smadel, C.L. Hoagland //
  142. Bacterid Reviews. 1942. — Vol. 6. — P. 79−110. 162. Solyom, F. A live attenuated virus vaccine against sheep pox / F. Solyom, L. Perenlei, J. Roith // Acta Vet. Acad. Sci. Hung. — 1980. — Vol. 28, № 4. — P. 389 398.
  143. Soman, J.P. Occurrence of malignant goat pox in Bihar and confirmation of the causal virus / J.P. Soman, R.P. Singh, G.J. Jha // Indian Vet. J. 1985. — Vol. 62. -P. 907.
  144. Negi et al. // Indian J. Virol. 1986. — Vol. 2. — P. 202−221. 166. Subba Rao, M.V. Antigenic relationships among sheep pox, goat pox and CPD viruses / M.V. Subba Rao, B.S. Malik, S.N. Sharma // Acta Virol. — 1984. — Vol. 28.-P. 380−387.
  145. Subba Rao, M.V. Application of electroimmunodiffusion test for detection of antigenic relationship between sheeppox and goatpox viruses / M.V. Subba Rao, B.S. Malik // Acta Virol. 1983. — Vol.27, № 2. — P. 177−179.
  146. Tantawi, H.H. Laboratory characteristics of four strains of goatpox virus / H.H. Tantawi, M.M. Al-Falluji // Acta Virol. 1979. — Vol. 23. — P. 455−460.
  147. The genome of sheeppox and goatpox viruses / E.R. Tulman, C.L. Afonso, Z. Lu et al. // J.Virol. 2002. — Vol. 76, № 12. — P.6054−6061.
  148. The immunological relationship of the poxvirus group / M. Takahashi, S. Kameyama, S. Kato, J. Kamahora // Biken J. 1959. — Vol. 2. — P. 27−29.
  149. Tiwari, A.K. Comparative efficacy of dot-ELISA and single radial haemolysis (SRH) test in detecting goat pox antigen / A.K. Tiwari, B.S. Negi // Indian Vet. J. 1996b.-Vol. 73.-P. 1017−1020.
  150. Tiwari, A.K. Single radial haemolysis for the detection of goat pox virus antigen and antibody / A.K. Tiwari, B.S. Negi // Trop. Anim. Health Prod. 1996. -Vol.28, № 1.-P. 117−120.
  151. Tiwari, A.K. Spot agglutination test for the rapid diagnosis of goat pox / A.K. Tiwari, T.V.S. Rao, B.S. Negi // Trop. Anim. Health Prod. 1996. — Vol.28. — P. 213−215.
  152. Uppal, P.K. Serological reaction in sheep pox. 2. Agar gel diffusion test / P.K. Uppal, P.R. Nilakantan // Indian Vet. J. 1967. — V. 44. — P. 374−382.
  153. Use of a recombinant antigen in an indirect ELISA for detection bovine antibody to capripoxvirus / V.M. Cam, R.P. Kitching, J.M. Hammond, P. Chand // J. Virol. Methods. 1994. — Vol. 49, № 3. — P.285−294.
  154. Use of a recombinant antigen in an indirect ELISA for detecting bovine antibody to capripoxvirus / V.M. Cam, R.P. Kitching, J.M. Hammond et al. // J. of Virol. Methods. 1995. — Vol.53, № 2−3. — P. 273.
  155. Veda, Y. A specific surface antigen induced by pox virus / Y. Veda, M. Ito, J. Tagaya // Virology. 1969. — Vol. 38. — P. 180−182.
  156. Veterinary Virology / F. Fenner, E.P.J. Gibbs, F.A. Murphy et al. London: Acad. Press, 1993.
  157. Virus Taxonomy: Classification and Nomenclature of Virus. Sixth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / F.A. Murphy, C.M. Fauquet, D.H.L. Bishop et al. New York: Springer-Verlag, 1995. — P. 79−91.
  158. Virus Taxonomy. Classification and Nomenclature of Viruses. Seventh Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / Van M.H.V. Regenomortel, C.M. Fanguet, D.H.L. Bishop et al. London: Academic Press, 2000.
  159. Wang, S.H. Studies on attenuated goat pox virus vaccine. The manufacture of freeze-dried tissue culture goat pox modified virus vaccine / S.H. Wang, H.X. Jiang // Acta Vet. Zootechn. Sinica. 1988. — Vol. 19. — P. 279−284.
  160. Wei, C.M. Methylated nucleotides block 5'-terminus of vaccinia virus mRNA / C.M. Wei, B. Moss // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1975. — Vol. 72. — P. 318−322.
  161. Weintraub, S. Biogenesis of poxviruses: genetically controlled modifications of structural and functional components of the plasma membrane / S. Weintraub, S. Dales // Virology. 1974. — Vol. 60. — P. 96−127.
  162. Wittek, R. Tandem repeats within the inverted terminal repetition of vaccinia virus DNA / R. Wittek, B. Moss // Cell. 1980. — Vol. 21. — P. 277−284.
  163. Woodroofe, G.M. Serological relationships within the poxvirus group: an antigen common to all members of the group / G.M. Woodroofe, G. Fenner // Virology. -1962. Vol.16. — P. 334−341.
  164. World Animal Health in 1997. / Reports on the Animal Health Status and Disease Control Methods and List A Disease Outbreaks. Statistics OIE. Paris, 1997.-P. 4.
  165. Zaslavsky, V. Uncoating of vaccinia virus / V. Zaslavsky // J. Virol. 1985. -Vol. 55.-P. 352−356.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!