Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Совершенствование методов индикации генома вируса африканской чумы свиней в объектах ветеринарного надзора

Диссертация: Совершенствование методов индикации генома вируса африканской чумы свиней в объектах ветеринарного надзора
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В диагностике инфекционных болезней животных на сегодняшний день нашли широкое применение серологические методы (ИФА, РПИФ) и методы на основе анализа генома (ПЦР с электрофоретичекой детекцией, ПЦР в реальном времени), поскольку они позволяют анализировать в краткие сроки одновременно большое количество проб и применять приборные методы учета реакции. В последующие годы вспышки болезни… Читать ещё >

Совершенствование методов индикации генома вируса африканской чумы свиней в объектах ветеринарного надзора (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность темы
    • 1. 2. Степень разработанности проблемы
    • 1. 3. Цель и задачи исследований
    • 1. 4. Научная новизна результатов исследований
    • 1. 5. Практическая значимость работы
    • 1. 6. Апробация работы
    • 1. 7. Соответствие диссертации паспорту научной специальности
    • 1. 8. Публикации
    • 1. 9. Объем и структура диссертации
    • 1. 10. Основные положения диссертации, выносимые на защиту
    • 1. 11. Личный вклад автора в выполнение работы
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Характеристика вируса АЧС
    • 2. 2. Эпизоотическая ситуация по АЧС в мире и РФ
    • 2. 3. Пути распространения вируса АЧС
    • 2. 4. Сохраняемость вируса АЧС
    • 2. 5. Патогенез и клинические проявления болезни
    • 2. 6. Лабораторная диагностика АЧС
    • 2. 7. Генотипирование вируса АЧС

1.1 Актуальность темы.

Африканская чума свиней (АЧС) — контагиозная, склонная к природной очаговости, как правило, остро протекающая септическая болезнь свиней, характеризующаяся лихорадкой, признаками токсикоза, геморрагическим диатезом и высокой летальностью, сверхострым, острым, подострым и хроническим течением. Болеют домашние и дикие свиньи независимо от породы и возраста. Выжившие животные пожизненно остаются вирусоносителями [Коваленко Я. Р., 1965; Бакулов И. А., 1969; СюринВ. Н., 1972].

Занос возбудителя АЧС в благополучные страны рассматривается специалистами как социальная и экономическая катастрофа. Это связано с огромным экономическим ущербом, причиняемым эпизоотиями данной болезни. Ученые рассматривают АЧС как угрозу для существования видов семейства Suidae [Бакулов И. А., 1969; Moreno М., 1978].

Долгое время считалось, что АЧС, как нозологическая форма болезни, присуща только странам Африки. Однако с появлением африканской чумы свиней в странах Европы — Португалии и Испании в 1957 и 1960 гг. — к этой проблеме было приковано внимание многих стран Европы и Америки.

В официальных средствах массовой информации весной 2007 г. появились сведения о массовой гибели домашних свиней в Грузии. 7 июня 2007 г. референс — лаборатория МЭБ (Пирбрайт, Великобритания) поставила диагноз — АЧС. В результате последующих мониторинговых исследований, проведенных в 2007;2008 гг. на территории Чеченской республики РФ, в 21 случае выделен вирус АЧС от павших и отстрелянных диких свиней. Во второй половине 2008 г. развитие эпизоотического процесса АЧС характеризовалось новым этапом — заносом вируса АЧС на территорию Республики Северная Осетия — Алания и вовлечению в эпизоотическую цепь домашних свиней [Куриннов В. В., 2010].

В последующие годы вспышки болезни регистрировали еще в 17 субъектах Российской Федерации: республиках Кабардино-Балкария, Калмыкия, Дагестан, Ингушетия, Краснодарском и Ставропольском краях, Ростовской, Волгоградской, Астраханской, Ленинградской, Нижегородской, Оренбургской, Архангельской, Мурманской, Тверской, Курской и Воронежской областях [http://www.fsvps.ru].

При анализе путей заноса вируса АЧС в благополучные регионы установлено, что основными путями и факторами передачи вируса АЧС являются контаминированные пищевые отходы и мясопродукты от инфицированных свиней.

Мясо и мясопродукты, как правило, поступают на реализацию в замороженном или охлажденном виде, и если животное было убито в инкубационный период болезни, то вирус АЧС может сохраняться в мясопродуктах длительное время и представлять большую опасность в распространении болезни.

В диагностике инфекционных болезней животных на сегодняшний день нашли широкое применение серологические методы (ИФА, РПИФ) и методы на основе анализа генома (ПЦР с электрофоретичекой детекцией, ПЦР в реальном времени), поскольку они позволяют анализировать в краткие сроки одновременно большое количество проб и применять приборные методы учета реакции [Вишняков И.Ф., 1992; Цыбанов С. Ж., 1995; Aguero М., 2003].

ПЦР с электрофоретической детекцией является практичным, чувствительным и специфичным методом для выявления генома вируса АЧС в крови и органах. Но недостатком ее применения в диагностике является возможность контаминации продуктами реакции и возникновение вследствие этого ложноположительных результатов. Также из-за наличия ингибиторов в пробах некоторых объектов ветеринарного надзора, при проведении полимеразной цепной реакции можно получить ложноотрицательные результаты [Aguero М., 2003].

Проведение соответствующих мероприятий по ликвидации очагов болезни в наиболее сжатые сроки возможно только при своевременной постановке диагноза и контроле продуктов свиноводства, которые могут содержать вирус АЧС и транспортироваться на различные расстояния, в том числе и для торговли. Это обуславливает необходимость разработки и внедрения в ветеринарную практику новых высокочувствительных и специфичных методов индикации вируса африканской чумы свиней, как в пробах органов инфицированных животных, так и в объектах ветеринарного надзора.

Поэтому актуальной задачей является разработка и усовершенствование методов индикации генома вируса АЧС в объектах ветеринарного надзора и внедрение их в практику исследований, а так же изучение сохраняемости вируса АЧС во внешней среде и продуктах животного происхождения.

6. выводы.

1. Разработана и оптимизирована методика выявления генома вируса АЧС на основе ПЦР в реальном времени с использованием внутреннего контрольного образца (ВКО), которая позволяет выявлять геном вируса АЧС в объектах ветеринарного надзора (мясо, шпик, клещи, комбикорм) с аналитической чувствительностью 0,5 lg ГАЕ 50/см или 95 копий ДНК на реакцию.

2. Установлена длительная сохраняемость вируса АЧС штамм «Ставрополь 2009» в мясе и шпике: при температуре 22+27°С в течение 16 дней в титрах 1,5−2,0 lg ГАЕ 50/см3, при температуре 4+6°С в течение 84 дней в титрах 2,0−2,5 lg ГАЕ 50/см3 и при температуре минус 18-К20°С в о течение 118 дней в титрах 2,5−3,0 lg ГАЕ 50/см (срок наблюдения).

3. При исследовании проб крови, мышечной ткани и органов от экспериментально зараженных вирусом АЧС животных, хранящихся при разных температурных режимах, установлено, что метод ПЦР в реальном времени с внутренним контролем позволяет выявлять ДНК вируса АЧС в сроки от 28 до 270 дней в зависимости от температуры хранения проб.

4. В ходе мониторинговых исследований в период 2009;2011 гг. методом стандартной ПЦР и ПЦР в реальном времени исследовано 59 056 проб от домашних и диких свиней, при этом в 541 пробе выявлен геном вируса АЧС. Данные ПЦР подтверждены результатами секвенирования, прямой иммунофлуоресценции и биопробы.

5. При исследовании методом стандартной ПЦР и ПЦР в реальном времени 1395 проб иксодовых клещей трех видов, {Ixodes ricinus, Haemaphysalis concina и Rhipicephalus sanguineus), собранных на территории Краснодарского края и республики Абхазия, геном вируса АЧС не выявлен.

6. С использованием методов ПЦР проведено генотипирование семи изолятов вируса АЧС, выделенных в различных регионах РФ в период.

2008;2011 гг. На основании анализа пяти вариабельных участков генома В602Ь, КР86Я, 1268Ь и гена 1196Ь вируса АЧС установлено, что все изоляты относятся ко II генотипу вируса АЧС, не имеют каких-либо изменений в данных участках генома, что свидетельствует о едином происхождении изолятов, циркулирующих на территории РФ.

7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

На основании проведенных исследований разработаны, утверждены и рекомендуются в практику научно-исследовательских и диагностических учреждений следующие разработанные методики:

1. «Тест-система для выявления ДНК вируса АЧС методом ПЦР в реальном времени» (зарегистрирована Россельхознадзором 30.08.2010 (ПВР-1−5.0/2 619)) используется в региональных ветеринарных диагностических лабораториях.

2. «Методические рекомендации по дифференциации штаммов вируса африканской чумы свиней методом ПЦР», рассмотренные на секции Биотехнологии Отделения ветеринарной медицины РАСХН (29.10.2009) и утвержденные академиком секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M. (24.12.2009 г.) предлагаются в практику в специализированных лабораториях.

3. «Методические положения по выявлению генома вируса АЧС в образцах биологического материала и объектах ветеринарного надзора» рассмотренные на секции Инфекционной патологии животных Отделения ветеринарной медицины РАСХН (27.04.2011) и утвержденные академиком секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M. (10.11.2011 г.) рекомендуются для использования в ветеринарных лабораториях.

4. «Методические положения по проведению пассивного и активного мониторинга африканской чумы свиней» рассмотренные на секции Инфекционной патологии животных Отделения ветеринарной медицины РАСХН (23.09.2011) и утвержденные академиком секретарем Отделения ветеринарной медицины РАСХН Смирновым A.M. (10.11.2011 г.) предназначены для сотрудников ветеринарных лабораторий.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Африканская чума свиней / И. Болоцкий, А. Васильев, В. Семенцов, С. Пруцаков // Свиноферма. 2008. № 9. — С. 43−46.
  2. Африканская чума свиней главная проблема для свиноводства России / В. В. Куриннов, Д. В. Колбасов, С. Ж. Цыбанов и др. // Жизнь без опасностей. — 2010. — № 3. — С. 82−87.
  3. , И.А. Африканская чума свиней / И. А. Бакулов. М.: Колос, 1969. — С. 267−290.
  4. Вирусные болезни животных / В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. В. Соловьев, Н. В. Фомина. М.: ВНИТИБП, 1998. — 928 с.
  5. , И.Ф. Диагностика африканской чумы свиней. IV Метод иммуноферментного анализа / И. Ф. Вишняков, Л. Я. Цыбанова, Г. М.
  6. Карпов // Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы научной конференции / ВНИИВВиМ, РАСХН-Покров, 1992. 4.1. — С. 68−70.
  7. , И.Ф. Перспективы использования методов анализа генома для диагностики особо опасных болезней животных / И. Ф. Вишняков, С. Ж. Цыбанов // Состояние, проблемы и перспективы развития ветеринарной науки России / ВНИИЭВ. М., 1999. -Т.1. — С. 130−133.
  8. Диагностика африканской чумы свиней реакцией гемадсорбции в культурах лейкоцитов / H.H. Крюков, В. Н. Сюрин, 3.JI. Зорина, Б. Р. Сурин //Ветеринария. 1965. — № 10. — С. 19−22.
  9. A.A. Генотипирование изолятов вируса африканской чумы свиней: канд.биол.наук: 03.02.02 / Елсукова Александра Андреевна. -Покров, 2010. С. 72−96
  10. , A.B. Инфекционные болезни свиней. М., 2006. — С. 5−8.
  11. Катастрофа для свиноводческой отрасли // Ветеринария сельскохозяйственных животных. М. — 2009. -№ 3. -С. 2−5.
  12. , Я. Р. Африканская чума свиней / Я. Р. Коваленко. М.: Колос, 1965.- 118 с.
  13. , Я. Р. Африканская чума свиней / Я. Р. Коваленко. М.: Колос, 1972. — 200 с.
  14. , Д.И. Современные проблемы африканской чумы свиней / Д. И. Козлова, В. А. Бесхлебнов. М.: ВНИИТЭИС, 1980. — 57 с.
  15. A.A. Иммунные реакции и механизмы при заражении африканской чумой свиней / A.A. Колонцов, В. В. Макаров // Сельскохозяйственная биология. Сер. Биология животных. -1993. -№ 4. -С. 12−19.
  16. , A.A. Вирус африканской чумы свиней: достижения последнего десятилетия 20 века / A.A. Колонцов // Молекул, генетика, микробиология и вирусология. 2001. — № 2. — С. 3−8.
  17. , A.A. Полипептиды вируса африканской чумы свиней / A.A. Колонцов // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. -1990.-№ 6. -С. 3−7.
  18. , A.A. Полипептиды р14 и р 31 вируса африканской чумы свиней ранние белки, локализованные на мембране инфицированной клетки / A.A. Колонцов, A.B. Устин, Н. Г. Шубина // Вопросы вирусологии. -1992. -№ 3. — С.165−168.
  19. , В.А. Технология переработки мяса и других продуктов убоя животных / В. А. Кузнецов, Я. П. Шлипаков. М. -1971. -С.91−98.
  20. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин. М, 1990. — 352 с.
  21. Ликвидация африканской чумы свиней в Республике Абхазия / В. Н. Герасимов, С. А. Кукушкин, А. В. Мищенко и др. // Ветеринария. 2008. — № 3. — С. 19−24.
  22. , В.В. Реакции вируса африканской чумы свиней с антителами и причины отсутствия нейтрализации / В. В. Макаров, М. С. Малахова, H.A. Власов // Доклады ВАСХНИЛ. 1991. — № 12. — С.27−31.
  23. , A.C. Биологические и генетические характеристики цирковирусов свиней: дис. канд.биол.наук: 03.00.06/03.00.23 / Малоголовкин Александр Сергеевич. -Покров, 2009. С. 68 — 71.
  24. Руководство по индикации особо опасных болезней сельскохозяйственных животных в объектах ветеринарного надзора и окружающей среды / H.A. Лагуткин, В. Н. Смирнов, В. В. Куриннов, С. Ж. Цыбанов и др. / ВНИИВВиМ, РАСХН. М.: 2000. — 75 с.
  25. , А .Я. Инфекционная патология животных. В 2 т./ под ред. А. Я. Самуйленко и др. М.: ИКЦ «Академкнига», 2006. -Т. 1. — 910 с.
  26. , Ю.О. Вирус африканской чумы свиней: физическое картирование генома штаммов / Ю. О. Селянинов, В. М. Балышев, С. Ж. Цыбанов // Вестник РАСХН. 2000. — № 5. — С.75−77.
  27. , Ю.О. Физическое картирование генома вируса африканской чумы свиней / Ю. О. Селянинов, Е. К. Сенечкина // Доклады РАСХН. 1995. — № 2. -С.37−39.
  28. , А.Д. Идентификация изолятоспецифического гликополипептида вируса африканской чумы свиней / А. Д. Середа, В. В. Макаров // Ветеринария. -1992. -№ 1. -С.22−24.
  29. , В.Н. Африканская чума свиней // Лабораторная диагностика вирусных болезней животных. М.: Колос, 1972. — 416 с.
  30. Филогенетический анализ полевых изолятов вируса африканской чумы свиней / И. М. Калабеков, К. Галлардо, А. А. Елсукова и др. // Ветеринария. -2010. № 5. — С.31−33.
  31. , Э. Африканская чума свиней в республике Маврикий / Э. Юбхашини // Ветеринарный консультант. 2008. — № 22. -С. 10−12.
  32. A BIR motif containing gene of african swine fever virus, 4CL, is nonessential for growth in vitro and viral virulence / J.G. Neilan Z. Lu, G.F. Kutish et al. // Virology. 1997. — Vol. 230, № 2. — P.252−264.
  33. A conserved african swine fever virus I kappa В homolog, 5EL, is nonessential for growth in vitro and virulence in domestic swine / J.G. Neilan, Z. Lu, G.F. Kutish et al. // Virology. 1997. — Vol. 235, № 2. — P.377−385.
  34. A conserved african swine fever virus right variable region gene, II1L, is non-essential for growth in vitro and virulence in domestic swine / S.B.
  35. Kleiboeker, G.F. Kutish, J.G. Neilan et al. // J. Gen. Virol. 1998. — Vol. 79, № 5.-P.l 189−1195.
  36. A nonessential african swine fever virus gene UK is a significant virulence determinant in domestic swine // Zsak L., Caler E., Lu Z. et al. // J. Virol. -1998. Vol. 72, № 2. — P. 1028−1035.
  37. A reliable enzyme linked immunosorbent assay for african swine fever using the major structural protein as antigenic reagent / E. Tabares, M. Fernandez, E. Salvador-Temprano et al. // Arch. Virol. 1981. — Vol. 70. -P.297−300.
  38. A set of African swine fever virus tandem repeats shares similarities with Sar-like sequences / F. Almazan, J.R. Murguia, J.M. Rodriguez et al. // J. Gen. Virol. 1995. — Vol. 36. — P. 729−740.
  39. A solid-phase enzyme linked immunosorbent assay using monoclonal antibodies, for the detection of african swine fever virus antigens and antibodies / M.I. Vidal, M. Stiene, J. Henkel et al. // J. Virol. Methods. 1997. — Vol. 66, № 2.-P. 211−218.
  40. A structural DNA binding protein of african swine fever virus with similarity to bacterial histone-like proteins / M.V. Borca, P.M. Irusta, G.F. Kutish et al. // Arch. Virol. 1996. — Vol. 141, № 2. — P. 301−313.
  41. African swine fever / M. Aguero, R. Blasco, P. Wilkinson, E. Vinuela // Virology. 1990. — Vol.176. — P. — 195−204.
  42. African swine fever diagnosis. Role of the new tests / M. Arias, M. Pastor, J.M. Escribano et al. // Proc. Workshop Coordinat. Agricult. Res. Lisbon, 1993. — P.185−189.
  43. African swine fever virus DNA: deletions and additions during adaptation to growth in monkey kidney cells / E. Tabare's, I. Olivares, G. Santurde, M. J. Garcia, E. Martin, M. E. Carnero // Arch. Virol. 1987. — Vol. 97. — P. 333−346.
  44. African swine fever virus encodes two genes which share significant homology with the two largest subunits of DNA-dependent RNA polymerases /
  45. RJ. Yanez, M. Boursnell, M.L. Nogal et al. // Nucleic Acids Res. 1993. -Vol. 21, № 10. — P. 2423−2427.
  46. African swine fever virus gene jl3L encodes a 25−27 k Da virion protein with variable numbers of amino acid repeats / H. Sun, S.C. Jacobs, G.L. Smith et al. // J. Gen. Virol. 1995. — Vol. 76, № 5. — P. 1117−1127.
  47. African swine fever virus infection in the argasid host, Ornithodoros porcinus porcinus / S.B. Kleiboeker, T.G. Burrage, G.A. Scoles et al. // J. Virol. 1998. — Vol. 72, № 3. — P. 1711 -1724.
  48. African swine fever virus replication in the midgut epithelium is required for infection of Ornithodoros ticks / S.B. Kleiboeker, G.A. Scoles, T.G. Burrage et al. // J. Virol. 1999. — Vol. 73, № 10. — P. 8587−8598.
  49. Amino acid sequence and structural properties of protein pl2, an african swine fever virus attachment protein / A. Alcami, A. Angulo, G. Lopez-Otin et al. // J. Virol. 1992. — Vol. 66. — P.60 — 68.
  50. Amino acid tandem repeats within a late viral gene define the central variable region of African swine fever virus / P.M. Irusta, M.V. Borca, G.F. Kutish et al. // J. Virology. 1996- Vol. 220. — P. 20−27.
  51. An african swine fever virus ERV1-ALR homologue, 9GL, affects virion maturation and viral growth in macrophages and viral virulence in swine / T. Lewis, L. Zsak, T.G. Burrage et al. // J. Virol. 2000. — Vol. 74, № 3. -P.1275−1285.
  52. An african swine fever virus gene with similarity to the proto-oncogene bcl-2 and the Epstein-Barr virus gene BHRF1 / J.G. Neilan, Z. Lu, C.L. Afonso et al. // J. Virol. 1993. — Vol. 67. — P. 4391−4394.
  53. An african swine fever virus gene with similarity to the T-lymphocyte surface antigen CD2 mediates hemadsorption / M.V. Borca, G.F. Kutish, C.L. Afonso et al. // Virology. 1994. — Vol. 199, № 2. — P.463−468.
  54. An african swine fever virus virulence-associated gene NL-S with similarity to the herpes simplex virus ICP34.5 gene / L. Zsak, Z. Lu, G.F. Kutish et al. // J. Virol. 1996. — Vol. 70, № 12. — P. 8865−8871.
  55. Analysis of the complete nucleotide sequence of african swine fever virus / R.J. Yanez, J.M. Rodriguez, M.L. Nogal et al. // Virology. 1995. — Vol. 208, № 1. — P.249−278.
  56. Anon, F. African swine fever // Rep. Comm. dis. 81th Meeting of USA UA Minneapolis. Minn. 1977. — № 18. — P. 21.
  57. Anon, F. Fiebre porcine africane en Cuba. // Rep. Comm. Habana. -1971.- P.40−42.
  58. Anon, F. Rapport sur la peste porcine africane en Espagne. Madrid, 1978.
  59. Apoptosis: a mechanism of cell killing and lymphoid organ impairment during acute african swine fever virus infection / F. Ramiro-Ibanez, A. Ortega, A. Brun et al. // J. Gen. Virol. 1996. — Vol. 77, № 9. — P. 2209−2219.
  60. Asfarviridae. Virus Taxonomy / L. K. Dixon, J. M. Escribano, C. Martins, D. L. Rock et al. // Eighth Report of the ICTV, 2005. P. 135−143.
  61. Bellani, L. Nouva fase della lotta contro la Peste suina Africana / L. Bellani // Zooprofilassi. 1967. Vol. 26, N 5- 6. P. 274−277.
  62. Black, D.N. Purification and physicochemical characteristics of african swine fever virus // J. Gen. Virol. 1976. — Vol. 32. — P. 509−518.
  63. Boldrini, G. La peste suina africana in Europa. Una situazione di emergenza che si aggrava / G. Boldrini, // Vet. Ital. 1967. Vol. 18, № 3−4. — P. 238−261.
  64. Boinas, F.S. Transmission of african swine fever virus / African swine fever / F.S. Boinas // Proc. Workshop Coordinat. Agricult. Res. 1993. — P. 211 222.
  65. Caballero, R.G. Application of pRPEL2 plasmid to detect african swine fever virus by DNA-DNA hybridization / R.G. Caballero, E. Tabares // Arch. Virol. 1986. — № 87. — P. 119−125.
  66. Camacho, A. Protein p22 of african swine fever virus: an early structural protein that is incorporated into the membrane of infected cells / A. Camacho, E. Vinuela // Virology. 1991. — № 181.-P. 251−257.
  67. Castagnoli, B. Rilivi sul facolaio di peste suina africana verifi-catosi nella provincia di Bolzano / B. Castagnoli // Att. Soc. Ital. Sci. Vet. — 1971. — Vol. 28.-P. 510−513.
  68. Characterization and molecular basis of heterogeneity of the African swine fever virus envelope protein p54 / F. Rodriguez, C. Alcaraz, A. Eiras, R.J. Yanez et al. // J. Virol. 1994- Vol. 68. — P. 7244−7252.
  69. Characterization of p30, a highly antigenic membrane and secreted protein of african swine fever virus / C.L. Afonso, C. Alcaraz, A. Brun et al. // Virology. 1992. — Vol. 189, № 1. — P.368−373.
  70. Characterization of pathogenic and non-pathogenic african swine fever virus isolates from Ornithodoros erraticus inhabiting pig premises in Portugal / F.S. Boinas, G.H. Hutchings, L.K. Dixon et al. // J. Gen. Virol. 2004. — № 85. — P. 77−87.
  71. Co-circulation of two genetically distinct viruses in an outbreak of African swine fever in Mozambique: no evidence for individual co-infection / A.D. Bastos, M.L. Penrith, F. Macome et al. // Vet. Microbiol. 2004. — Vol. 103, № 3−4.- P. 169−182.
  72. Costa, J. V. African swine fever virus, Molecular biology of iridoviruses / J. V. Costa // Kluwer Academic Publishers. Norwell, Mass, 1990. — P. 247 270.
  73. De Boer, C.J. Immunology of african swine fever / C.J. De Boer, J.C. Pan, W.R. Hess // J. Amer. Vet. Med. Ass. 1972. — Vol. 160, № 4. — P. 528−532.
  74. De Tray, D.E. African swine fever / D.E. De Tray // Advances in Veterinary Science. -1963. № 8. — P. 299−333.
  75. Deletion of a CD2-like gene, 8-DR, from african swine fever virus affects viral infection in domestic swine / M.V. Borca, C. Carrillo, L. Zsak et al. // J. Virol. 1998. — Vol. 72, № 4. — P.81−89.
  76. Detection of specific polymerase chain reaction product by utilizing the 5' to 3' exonuclease activity of Thermus aquaticus DNA polymerase / P. Holland, R. Abramson, R. Watson et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. — № 88. -P. 7276−7280.
  77. Development of a TaqMan PCR assay with internal amplification control for the detection of african swine fever virus / D.P. King, S.M. Reid, G.H. Hutchings et al. // J. Virol. Methods. 2003. — Vol. 107, № 1. — P.53−61.
  78. Dixon, L.K. The structure and function of the african swine fever genome / L.K. Dixon // Rev. Sci. tech. Off. int. Epiz. 1986. — Vol. 5, № 2. — P. 469−475.
  79. Donaldson, A.I. The survival of some air borne animal viruses in relation to relative 82 humidity / A.I. Donaldson, N.P. Ferris // Veterinary Microbiology.- 1976. № 1. P.413−420.
  80. De Kock, G. Swine fever in South Africa / G. De Kock, E. M. Robinson, J. Keppel // Onderstepoort J. Vet. Sci. Ind. 1940. — Vol. 14, N 1−2. — P. 31−93.
  81. Enjuanes, L. Isolation and properties of the DNA of african swine fever virus / L. Enjuanes, A.L. Carrascosa, E. Vinuela // J. Gen. Virol. 1976. — № 32.- P. 479−492.
  82. Family Asfarviridae / L.K. Dixon, J.V. Costa, J.M. Escribano, D.L. Rock, E. Vinuela, P.J. Wilkinson et al. // Virus taxonomy: Seventh Report of the1. ternational Committee on Taxonomy of Viruses. Summers Academic Press, San Diego, 2000. P. 159−165.
  83. General morphology and capsid fine structure of african swine fever virus particles // J.L. Carrascosa, J.M. Carazo, A.L. Carrascosa et al. // Virology. -1984.-Vol. 132.-P. 160−172.
  84. Genetic characterisation of African swine fever viruses from outbreaks in southern Africa / C.I. Boshoff, A.D. Bastos, L.J. Gerber, W. Vosloo // Vet Microbiol. 2007. — Vol. 121 — P.45−55.
  85. Genotyping field strains of african swine fever virus by partial p72 gene characterization / A.D. Bastos, M.L. Penrith, C. Cruciere et al. // Arch Virol. -2003. Vol. 148, № 4. — P.693−706.
  86. Gierloff, B. Europaeisk og afrikansk swine pest / B. Gierloff // Nord. Vet. Med. 1963. — Vol. 15, № 5. — P. 365−394.
  87. Greig, A. The localization of african swine fever virus in the tick Ornithodoros moubata porcinus / A. Greig // Arch. ges. Virusforsch. 1972. -Vol. 39, № 1 -3.-P. 240−247.
  88. Hairpin loop structure of african swine fever virus DNA / A. Gonzalez, A. Talavera, J.M. Almendral et al. // Nucleic Acids Res. 1986 — № 14. — P. 68 356 844.
  89. Hammond, R. Arecent case of african swine fever in Kenya, East Africa / R. Hammond, D. E. De Tray // J. Amer. vet. Med. Assoc. 1955. — Vol. 126- P. 389−391.
  90. Heuschule, W.P. Isolation of african swine fever from a giant forest hog / W.P. Heuschule, L. Coggins // Bull. epiz. diseases Afr. 1965. — Vol. 13, № 3. -P. 255−262.
  91. Highly sensitive PCR assay for routine diagnosis of african swine fever virus in clinical samples / M. Aguero, J. Fernandez, L. Romero et al. // J. Clin. Microbiol. 2003. — Vol. 41, № 9. — P. 4431−4434.
  92. Intra-genotypic resolution of African swine fever viruses from an East African domestic pig cycle: a combined p72-CVR approach / B.A. Lubisi, A.D. Bastos, R.M. Dwarka, W. Vosloo // Virus Genes. 2007. — Vol. 35, № 3. — P. -729−735.
  93. Kinetics of African swine fever virus infection in Ornithodoros erraticus ticks / P. Afonso, J. Rebecca, L. K. Dixon // Journal of General Virology. -2006.-P.-63−71.
  94. Kleiboeker, S.B. Pathogenesis of african swine fever virus in Ornithodoros ticks / S.B. Kleiboeker, G.A. Scoles // Anim. Health Res. Rev. 2001. — № 2. -P. 121−128.
  95. Lucas, A. Classification of african swine fever virus / A. Lucas, R. Carnero, M. Bresso / C. R. Acad. Sci. 1968. — Vol. 266, № 17. — P. 1800−1801.
  96. MacDiarmid, S.C. The importation into New Zealand of meat and meat products: A review of the risks to animal health / S.C. MacDiarmid// FAO Animal Health, Manual. 1991. -№ 11.- P. 37−40.
  97. Manual of standards for diagnostic tests and vaccines, 4th edition / OIE. 2000. 590 p.
  98. Mapping and sequence of the gene coding for protein p72, the major capsid protein of african swine fever virus / C. Lopez-Otin, J.M. Freije, F. Parra et al. // Virology. 1990. — Vol. 175. — P. 477−484.
  99. Mapping and sequence of the gene encoding protein pi7, a major african swine fever virus structural protein / C. Simon-Mateo, J.M. Freije, G. Andres et al. // Virology. 1995. — Vol. 206. — P. 1140−1144.
  100. Maurer, F. Pathology of african swine fever-comparison with Hog cholera / F. Maurer, R. J. Griesemer, T. Jones. Amer. J. Vet. Res. 1958. — Vol. 19, № 72. -P. 517−539.
  101. McDaniel, H. A. African swine fever / H. A. McDaniel // In Diseases of Swine, 5th edition, Iowa State University Press, Ames, 1980. P. 300−308.
  102. Molecular epidemiology of African swine fever in East Africa / B.A. Lubisi, A.D. Bastos, R.M. Dwarka, W. Vosloo // Arch.Virol. -2005. Vol. 150. -P. 2439−2452.
  103. Montgomery, R.E. On a form of swine fever occurring in British East Africa (Kenya Colony) / R.E. Montgomery // J. Comp. Pathol. 1921. — Vol. 34. -P. 159−191.
  104. Moreno, M. Inhibition of african swine fever virus + replication by phosphonoacetics acid / M. Moreno, A. L. Carrascola // J. gen. Virol. 1978. -Vol. 39, № 2. — P. 253−258.
  105. Morrison, T.B. Quantification of low-copy transcripts by continuous SYBR Green I monitoring during amplification / T.B. Morrison, J.J. Weis, C.T. Wittwer // BioTechniques. 1998. — № 24. — P.954−958.
  106. Nucleotide sequence and variability of the inverted terminal repetitions of african swine fever virus DNA / I. De la Vega, A. Gonzalez, R. Blasco et al. // Virology. 1994. — Vol. 201, № 1. — P. 152−156.
  107. Oligonucleotides with fluorescent dyes at opposite ends provide a quenched probe system useful for detecting PCR product and nucleic acid hybridization / K.J. Livak, S.J. Flood, J. Marmaro et al. // PCR Methods Appl. 1995. -№ 4. -P.357−362.
  108. Ortin, J. Cross-links in the DNA of african swine fever virus / J. Ortin, L. Enjuanes, E. Vinuela // J. Virol. 1979. — № 31. — P.579−583.
  109. Oura, C.A. African swine fever: a disease characterized by apoptosis / C.A. Oura, P.P. Powell, R.M. Parkhouse // J. Gen. Virol. 1998. — Vol. 79, № 6. — P. 1427−1438.
  110. Pan, I.C. African swine fever: application of immunoelectroosmophoresis for the detection of antibody / I.C. Pan, C.J. De Boer, W.R. Hess // Can. J. Comp. Med. 1972. — Vol. 36. — P. 309−316.
  111. Phologane, S.B. Intra- and inter-genotypic size variation in the central variable region of the 9RL open reading frame of diverse African swine fever viruses / S.B. Phologane, A.D. Bastos, M.L. Penrith // Virus Genes. 2005. -Vol. 31, № 3.-P. 357−360.
  112. Pierce, M.A. Distribution and ecology of Ornithodoros moubataporcinus Walton (Acarina) in animal burrows in East Africa / M.A. Pierce // Bull. Entomol. Res. 1974. — Vol. 64. — P. 605−619.
  113. Pini, A. African swine fever- an epizootiological review with special reference to the South African situation / A. Pini, D. Hurter // J. S. Afr. vet. Assn. 1975. — Vol. 46, № 3. — P. 227−232.
  114. Plowright, W. Evidence for the type of nucleic acid in african swine fever virus / W. Plowright, F. Brown, J. Parker // Arch. ges. Virusforsch. 1966. -Vol. 19, № 3.-P. 289−304.
  115. Plowright, W. The stability of african swine fever virus with particular reference to heat and pH inactivation / W. Plowright, J. Parker // Arch. ges. Virusforsch. 1967. — Vol. 21, № ¾, — P. 382−402.
  116. Plowright, W. Vector transmission of african swine fever virus / W. Plowright // Hog cholera, classical swine fever and african swine fever / Commission of the European Communities. EUR 5904 EN. 1977. — P. 575 587.
  117. Proteins specified by African swine fever virus. II. Analysis of proteins in infected cells and antigenic properties / E. Tabares, J. Martinez, F. Ruiz Gonzalvo, C. Sanchez-Botija // Arch Virol. 1980. — Vol.66, № 2. — P. 119−132.
  118. Rapid and biologically safe diagnosis of african swine fever virus infection by using polymerase chain reaction / Y. Steiger, M. Ackermann, C. Mettraux et al. // J. Clin. Microbiol. 1992. — Vol. 30, № 1. — P. 1−8.
  119. Rapid and simple method for purification of nucleic acids / R. Boom, C. J. Sol, M. M. Salimans et.al. // J. Clin. Microbiol. 1990. — Vol. 28, № 3. — P. 495−503.
  120. Read, S.J. Lightcycler multiplex PCR for the laboratory diagnosis of common viral infections of the central nervous system / S.J. Read, J.L. Mitchell, C.G. Fink // J. Clin. Microbiol. 2001. — Vol. 39. — P. 3056−3059.
  121. Rennie, L. Effects of infection of the tick Ornithodoros moubata with african swine fever virus / L. Rennie, P.J. Wilkinson, P. S. Mellor // Med. Vet. Entomol. 2000. — Vol. 14, № 4. — P. 355−360.
  122. Rennie, L. Transovarial transmission of african swine fever virus in the argasid tick Ornithodoros moubata / L. Rennie, P.J. Wilkinson, P. S. Mellor // Med. Vet. Entomol. 2001. — Vol. 15, № 2. — P. 140−146.
  123. Salas, M. African swine fever virus (Asfarviridae) / M. Salas // Encyclopedia of Virology, 2-nd edn. Vol. 1. 1999. — P. 30−38.
  124. Sanchez-Botija, C. Estudio sobre la peste porcina africana en Espana / C. Sanchez-Botija //Bull. off. internal epiz. 1962. — Vol. 58. — P. 707−727.
  125. Sanchez-Botija, C. La peste porcine africaine en Espagne / C. Sanchez-Botija // Bull. off. internat. epiz. 1961. — Vol. 56, № 1−2. — P. 148−175.
  126. Sanchez-Botija, C. Laboratory manual for diagnosis on african swine fever / C. Sanchez-Botija, A. Ordas. Madrid, 1977. — P. 133−136.
  127. Sanchez-Vizcaino, J.M. African swine fever diagnosis / J.M. Sanchez-Vizcaino // African Swine Fever / Becker Y. (ed.). Boston: Martinus Nijhoff, USA, 1987.-P. 63−71.
  128. Serological and immunohistochemical study of african swine fever in wild boar in Spain / J. Perez, A.I. Fernandez, M.A. Sierra et al. // Vet.Rec. 1998. -Vol.143, № 5.-P.136−139.
  129. Smith, J. The United States Department of agriculture emergency animal disease prepareones program / J. Smith // Wildlife dis. 1976. — P. 115−120.
  130. Terminal and internal inverted repetitions in african swine fever virus DNA / J.M. Sogo, J.M. Almendral, A. Talavera et al. // Virology. 1984. — Vol. 133. -P. 271−275.
  131. Terpstra, C. Differential diagnosis between african swine fever and hog cholera / C. Terpstra // African Swine Fever / Becker Y. (Ed.). Boston- Dordrecht: Martinus Nijhoff Publ. — 1987. — P. 73−80.
  132. Terpstra, C. Laboratory diagnostics of african swine fever in ASF-free and ASF-endemic countries / C. Terpstra // African swine fever / Galo A. (Ed.), Proc. Workshop for coordination of agricultural research. Lisbon, 1993. — P. 161−167.
  133. The african swine fever virus thymidine kinase gene is required for efficient replication in swine macrophages and for virulence in swine / D.M. Moore, L. Zsak, J.G. Neilan et al. // J. Virol. 1998. — Vol. 72, № 12. -P.10 310−10 315.
  134. The morfological characteristics of african swine fever virus and its resemblance to tipula iridescent vims / J.D. Almeida, D. June, A. P. Waterson, W. Plowright // Arch. Ges. Virusforsch. 1967. Vol. 20, № 3. — P. 392−396.
  135. Thomson, G.R. The epidemiology of african swine fever: the role of free-living hosts in Africa / G.R. Thomson // Onderstepoort J. Vet. Res. 1985. -Vol. 52.-P. 201−209.
  136. Two putative african swine fever virus helicases similar to yeast 'DEAH' pre-mRNA processing proteins and vaccinia virus AT Pases D11L and D6R / RJ. Yanez, J.M. Rodriguez, M. Boursnell et al. // Gene. 1993. — Vol. 134, № 2. — P.161−174.
  137. Variable and constant regions in african swine fever virus DNA / R. Blasco, M. Aguero, J.M. Almendral et al. // Virology. -1989. № 168. — P. 330−338.
  138. Variable regions on the genome of Malawi isolates of African swine fever virus / K.J. Sumption, G.H. Hutchings, P.J. Wilkinson, L.K. Dixon // J. Gen. Virol. 1990. -Vol. — 71. — P. 2331−2340.
  139. Wesley, R.D. Genome relatedness among african swine fever virus isolates by restriction endonuclease analysis / R.D. Wesley, A.E. Tuthill // Prev. Vet. Med. 1984. — № 2. — P. 53−62.
  140. Wilkinson, P.J. Transmission of the african swine fever virus / P.J. Wilkinson // Prev. Vet. Med. 1984. — № 2. — P. 71.
  141. Yanez, R.J. African swine fever virus encodes a DNA ligase / R.J. Yanez, E. Vinuela//Virology. 1993. — Vol.193, № 1. — P.531−536.
  142. Zsak, L. Preclinical Diagnosis of African Swine Fever in Contact-Exposed Swine by a Real-Time PCR Assay / L. Zsak, M. Borca // journal of clinical microbiology. 2005. — P. 112−119.
  143. Эпизоотическая ситуация по АЧС электронный ресурс. Режим доступа: http://www.fsvps.ru. — загл. с экрана.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!