Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Пространственная структура, внутриклеточная локализация и ферменты катаболизма изосукцинимид-?-гликозида

Диссертация: Пространственная структура, внутриклеточная локализация и ферменты катаболизма изосукцинимид-?-гликозида
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Работа выполнена в период прохождения аспирантуры и является частью плановой темы кафедры биологии растений и микробиологии ВГПУ «Метаболическая адаптация растений в условиях экологических стрессов» и входит в тематику РАН по проблеме «Растительный мир и его адаптация». Основные результаты исследований были представлены и обсуждались на ежегодном симпозиуме ВОФР «Physical… Читать ещё >

Пространственная структура, внутриклеточная локализация и ферменты катаболизма изосукцинимид-?-гликозида (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Гликозиды и их роль в растениях
    • 1. 2. Изосукцинимид-Р-гликозид растений гороха и пути его метаболизации
      • 1. 2. 1. Строение и распространение изосукцинимид-Р-гликозида
      • 1. 2. 2. Образование и локализация изосукцинимид-Р-гликозида в клетках растений
      • 1. 2. 3. Пути утилизации изосукцинимид-Р-гликозида в растениях
      • 1. 2. 4. Гамма-аминомасляная кислота, ее роль и пути метаболизации в различных условиях
    • 1. 3. Характеристика, локализация и свойства Р-гликозидаз
      • 1. 3. 1. К атализируемая реакция
      • 1. 3. 2. Распространение и роль в метаболизме клетки
      • 1. 3. 3. Внутриклеточная локализация р-гликозидаз
      • 1. 3. 4. Очистка р-гликозидаз из различных организмов
      • 1. 3. 5. Свойства Р-гликозидаз из различных источников
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Изучение структуры молекулы изосукцинимид-р-гликозида
      • 2. 2. 2. Условия постановки опытов на растениях
      • 2. 2. 3. Выделение спирторастворимых соединений
      • 2. 2. 4. Определение содержания изосукцинимид-Р-гликозида и его агликона в растениях гороха
      • 2. 2. 5. Определение содержания этил-р-гликозида
      • 2. 2. 6. Хроматографическое определение содержания аминокислот
      • 2. 2. 7. Исследование внутриклеточного распределения соединений с 42 использованием ДМСО
      • 2. 2. 8. Определение активности фермента (3-гликозидазы
      • 2. 2. 9. Выделение клеточных фракций
      • 2. 2. 10. Выделение и очистка (3-гликозидазы из проростков гороха
      • 2. 2. 11. Экстракция
      • 2. 2. 12. Фракционирование белков с помощью сульфата аммония
      • 2. 2. 13. Гель-фильтрация
      • 2. 2. 14. Определение молекулярной массы фермента
      • 2. 2. 15. Аналитический электрофорез
      • 2. 2. 16. Исследование кинетических характеристик (3-гликозидазы
      • 2. 2. 17. Определение количества белка
      • 2. 2. 18. Определение содержания хлорофилла
      • 2. 2. 19. Статистическая обработка экспериментальных данных
  • ГЛАВА 3. ИССЛЕДОВАНИЕ ПРОСТРАНСТВЕННОЙ СТРУКТУРЫ МОЛЕКУЛЫ ИЗОСУКЦИН И МИ Д-(3-ГЛ ИКОЗИ Д А
    • 3. 1. Подбор методов для исследования структуры биологически активных соединений
    • 3. 2. Использование квантово-химических методов для построения пространственной структуры молекулы изосукцинимид-Р-гликозида
  • ГЛАВА 4. СОДЕРЖАНИЕ И30СУКЦИНИМИД-(3-ГЛИК03ИДА В РАЗНЫХ СОРТАХ РАСТЕНИЙ ГОРОХА И ВЛИЯНИЕ РЕГУЛЯТОРОВ РОСТА НА ЕГО ПУЛ
    • 4. 1. Изучение распределения изосукцинимид-Р-гликозида, его агликона и свободных аминокислот в различных сортах растений гороха
    • 4. 2. Влияние регуляторов роста на содержание изосукцинимид-Р-гликозида и свободных аминокислот в проростках гороха
  • ГЛАВА 5. ВНУТРИКЛЕТОЧНАЯ ЛОКАЛИЗАЦИЯ И30СУКЦИНИМИД-(3-ГЛЖ03ИДА И АМИНОКИСЛОТ В УСЛОВИЯХ АЭРАЦИИ И ПРИ ГИПОКСИИ
    • 5. 1. Внутриклеточное распределение изосукцинимид-(3-гликозида
    • 5. 2. Вакуолярный фонд аминокислот
    • 5. 3. Влияние гипоксии и среды СО2 на внутриклеточное распределение изосукцинимид-р-гликозида
    • 5. 4. Влияние гипоксии на внутриклеточное распределение аминокислот
  • ГЛАВА 6. ИЗУЧЕНИЕ ЛОКАЛИЗАЦИИИ И ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИХ СВОЙСТВ Р-ГЛИКОЗИДАЗЫ ПРОРОСТКОВ ГОРОХА
    • 6. 1. Внутриклеточная локализация
    • 6. 2. Очистка фермента из растений гороха
    • 6. 3. Молекулярная масса и некоторые физико-химические свойства р-гликозидазы проростков гороха
    • 6. 4. Изменение активности Р-гликозидазы в онтогенезе
    • 6. 5. Влияние гипоксии и повышенного содержания углекислого газа на активность Р-гликозидазы проростков гороха

Актуальность темы

Одной из отличительных особенностей растительных организмов является их способность к синтезу разнообразных вторичных соединений, включая гликозиды. Однако функции и пути образования многих из гликозидов в настоящее время мало изучены (Запрометов, 1992; Носов, 1994). Ранее (Vitek, 1964; Liu et al., 1968; Землянухин и др., 1977) в растениях гороха был обнаружен специфический гликозид, идентифицированный как изосукцинимид-р-гликозид (ИС-гликозид), предшественником агликона которого являлась непротеиногенная гамма-аминомасляная кислота (ГАМК) (Ершова, 1978). Исследованы пути и скорость образования этого соединения из различных С-аминокислот и глюкозы в нормальных и аноксических условиях (Землянухин, Ершова, 1983). Однако роль этого гли-козида в растениях еще не достаточно выяснена, так как установлены лишь некоторые реакции превращений ИС-гликозида в клетках растений (Ershova, 1996).

Известно (Измайлов, 1978; Carroll, 1992), что специфичность в проявлении свойств различных соединений в клетках растений достигается их пространственной изоляцией, т. е. компартментацией. В тоже время исследований внутриклеточного распределения ИС-гликозида и его агликона ранее не проводилось. Обнаружено, что в условия недостатка кислорода изменяется содержание целого ряда клеточных метаболитов, включая кислоты ЦТК, аминокислоты, углеводы (Гринева, 1975; Crawford, 1994; Чиркова, 1995). При этом СО2 -среда была более эффективной в пополнении фондов этих соединений (Землянухин, 1979;1988). Вероятно, при гипоксии происходило не только изменение содержания, но и перераспределение соединений между отдельными клеточными компартментами.

Установлено, что одним из первых этапов метаболизации гликозидов является реакция разрыва гликозидной связи (Pukazhenthi, 1993), которую осуществляют Р-гликозидазы (КФ 3.2.1.21). В отличие от р-гликозидаз микроорганизмов (Chang, 1994; Dumortier, 1994), растительные ферменты с гли-козидазной активностью до сих пор остаются практически не изученными (Чкаников, 1969; Bhallia, 1984; Shi, 1994). В связи с этим, выделение р-гликозидазы, участвующей в катаболизме ИС-гликозида, и изучение ее некоторых физико-химических свойств, а также внутриклеточной локализации у растений в условиях аэрации и гипоксии, представляло бы интерес как для понимания направлений и скорости включения гликозида в метаболические процессы растений, так и для выяснения роли (3-гликозидаз в этих процессах.

Цель и задачи исследования

Целью данной работы явилось изучение пространственной структуры, внутриклеточной локализации изосукцинимид-Р-гликозида и фермента его катаболизма р-гликозидазы в клетках растений в нормальных и гипоксических условиях.

Для достижения цели в работе поставлены следующие задачи:

1. Построить с использованием пакета прикладных компьютерных программ пространственную модель молекулы изосукцинимид-|3-гликозида для оценки лабильности связей и путей метаболизации данного соединения.

2. Изучить распределение изосукцинимид-Р-гликозида, его агликона, а также ряда свободных аминокислот, включая у-аминомасляную кислоту, между цитоплазматическим и вакуолярным фондами клеток растений гороха в условиях аэрации и при дефиците кислорода, а также при действии регуляторов роста.

3. Разработать способы выделения и очистки Р-гликозидазы, участвующей в катаболизме изосукцинимид-Р-гликозида растений гороха.

4. Исследовать некоторые физико-химические и кинетические характеристики, а также внутриклеточную локализацию р-гликозидазы в нормальных и гипоксических условиях.

5. Изучить динамику активности Р-гликозидазы в онтогенезе растений гороха.

Научная новизна. Впервые с помощью квантово-химических методов построена пространственная модель молекулы изосукциними д-р-гл и коз и да, что расширяет наше представление о скорости и направлениях метаболиза-ции этого соединения в растениях.

Получены экспериментальные доказательства наличия в клетках растений гороха двух пространственно разобщенных (вакуолярного и цитоплазма-тического) фондов ИС-гликозида и его агликона, как это ранее только предполагалось. Для агликона и ГАМК выявлена преимущественная цитоплазма-тическая локализация. В то же время, образовавшийся гликозид накапливался преимущественно (до 70%) в вакуолях клеток. Впервые изучен характер изменения распределения этих соединений между цитоплазматическим и ва-куолярным фондами клеток растений в условиях дефицита кислорода. Установлено, что в этих условиях возрастала роль вакуолярных фондов ИС-гликозида, его агликона и свободных аминокислот.

Разработаны способы выделения и выявлена внутриклеточная локализация Р-гликозидазы, участвующей в катаболизме изосукцинимид-(3-гликозида растений гороха. Впервые получен электрофоретически гомогенный ферментативный препарат цитоплазматической Р-гликозидазы и проведены исследования его физико-химических и кинетических свойств.

Практическая значимость работы. Полученные данные расширяют представления о роли и путях метаболизма гликозидов в растениях, включая изосукцинимид-р-гликозид, предшественником агликона которого является непротеиногенная ГАМК. Разработана методика исследования внутриклеточного распределения ИС-гликозида и ряда свободных аминокислот с использованием мембранотропного соединения ДМСО, которая может применяться при изучении компартментации и других соединений растений в нормальных и гипоксических условиях. Предложена схема очистки Р-гликозидазы, которая позволяет получить высокоочищенный электрофоретически гомогенный препарат р-гликозидазы растений гороха, а также может быть использована в медицине и пищевой промышленности при получении ферментативных препаратов этого класса. Разработанные способы хранения препаратов (З-гликозидазы позволяют использовать их в практике биохимических и клинических лабораторий. Материалы работы используются при чтении спецкурсов, а также при выполнении курсовых и дипломных работ на кафедре биологи растений и микробиологи Воронежского госпедуниверсите-та.

Апробация работы. Работа выполнена в период прохождения аспирантуры и является частью плановой темы кафедры биологии растений и микробиологии ВГПУ «Метаболическая адаптация растений в условиях экологических стрессов» и входит в тематику РАН по проблеме «Растительный мир и его адаптация». Основные результаты исследований были представлены и обсуждались на ежегодном симпозиуме ВОФР «Physical — chemical basis of plant physiology» (Москва, 1996), семинаре «Первичные фотофизические и фотохимические процессы в биосистемах разных уровней организации» (Воронеж, 1996), на совещании «Проблемы и достижения современной физиологии растений и их использование в вузовском и школьном преподавании» (Пермь, 1997), на V международной конференции «Регуляторы роста и развития растений» (Москва, 1999), на II Съезде биофизиков России (Москва, 1999), на IV Съезде общества физиологов растений (Москва, 1999), на 5 Путинской конференции молодых ученых «Биология — наука 21— века» (Пу-щино, 2001), на международной конференции «Ecological physiology of plants: problems and possible solutions in the XXI century» (Syktyvkar, 2001).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 14 работ.

Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на 137 страницах текста и состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части и обсуждения результатов (4 главы), заключения, выводов и списка литературы (189 источников). Иллюстративный материал включает 27 рисунков и 20 таблиц.

выводы.

1. С использованием квантово-химических методов и системы компьютерных программ построена пространственная модель молекулы изосукцинимид-(3-гликозида, которая позволила оценить лабильность его связей.

2. Показано, что содержание изосукцинимид-|3-гликозида, его агликона и ряда свободных аминокислот повышается при действии регуляторов роста, таких как эпибрассинолид и кинетин.

3. С помощью мембранотропного соединения ДМСО установлено, что накопление изосукцинимид-Р-гликозида проростков гороха происходило в вакуолярном фонде клеток. В то же время, образование агликона и его предшественника у-аминомасляной кислоты было связано с цитоплазмой. При действии гипоксии и СОо-среды возрастала роль вакуолярных фондов, которые поддерживали стабильность цитоплазматических пулов данных соединений.

4. Выявлено наличие в клетках растений гороха двух форм Р-гликозидазы: цитоплазматической и связанной с клеточными стенками, обладающих разной специфичностью к гидролизуемым гликозидам.

5. Разработана процедура очистки цитоплазматической Р-гликозидазы из проростков гороха. Получен электрофоретически гомогенный препарат с удельной активностью 524,17±5,32 ФЕ/мг белка и степенью очистки — 78 раз.

6. Определено значение молекулярной массы цитоплазматической Р-гликозидазы проростков гороха, которая составила 63,0 ± 2,0 кДа. Показано, что высокоочищенный фермент проявляет максимальную активность при рН 5,2 ± 0,2 и температуре 35 ± 0,5 °С.

7. Отмечено, что цитоплазматическая Р-гликозидаза обладала большим сродством к природным субстратам, чем к синтетическим и не проявляла высокой специфичности по отношению к их агликонам. На.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведено исследование метаболизма ИС-гликозида, который, как показано в ряде работ (Землянухин и др., 1977), является специфическим соединением только растений гороха. При этом было показано, что в различных сортах растений гороха содержание ИС-гликозида и его агликона значительно колеблется. Выявлена корреляция между содержанием ИС-гликозида и ГАМК, а также наличие обратной зависимости между количеством ГАМК и агликона. Исследования показали, что на содержание ИС-гликозида оказывают влияние регуляторы роста, такие как кинетин и эпибрассинолид. Прослеживается четкая взаимосвязь изменения содержания гликозида, его агликона, свободной глюкозы, а также ГАМК у проростков гороха при действии фитогормонов.

С использованием пакета прикладных компьютерных программ нами установлены электронная и молекулярная конформации атомов в молекуле ИС-гликозида, позволившие оценить ее метаболическую активность. Отмечена высокая лабильность связи между гетероциклическим радикалом агликона и пиранозным кольцом глюкозы. Длина гликозидной связи, полученная в результате расчетов, составила 1,57 А°, что превышало ее размеры, необходимые для стабильности молекулы и, следовательно, влияло на ее устойчивость. На основании расчетов расстояний между атомами в молекуле показано, что в агликоне происходит раскрытие цикла по связи С-14, значение которой 1,77 А°. При этом двойная связь в молекуле стремится к гидрированию. Полученные данные подтверждают результаты проведенных экспериментов по изучению скорости метаболизации ИС-гликозида в растенияхетНапикЫп, ЕгяИоуа, 1984).

При исследовании внутриклеточной локализации ИС-гликозида, его агликона и ряда свободных аминокислот, связанных с их обменом, использовали мембранотропное соединение ДМСО, которое избирательно нарушает проницаемость биологических мембран. Нами было установлено, что в клетках проростков гороха существуют по крайней мере два фонда ИС-гликозида: цитоплазматический и вакуолярный. При этом, как и для большинства растительных гликозидов (Kesselmeyer, Urban, 1983), вакуолярный фонд ИС-гликозида составлял 70% от его клеточного пула. В тоже время, агликон и его предшественник гамма-аминомасляная кислота были локализованы преимущественно в цитоплазме. Это подтверждает высказанное ранее предположение (Ершова, 1996), что именно в цитоплазме протекали как реакции образования пирролидоновой структуры агликона, так и реакции синтеза самого гликозида, который далее запасается в вакуолях клеток проростков гороха.

При гипоксии у растений изменяется скорость метаболических процессов (Crawford, 1994; Чиркова, 1983;1995; Shelp et. al., 1995). Нами показано, что в этих условиях объемы цитоплазматических фондов изучаемых соединений поддерживались на уровне аэрируемых растений. При этом в их стабилизации принимали участие вакуолярные пулы. Наиболее значительные изменения внутриклеточной локализации исследуемых соединений наблюдались у растений в условиях С02-среды, что еще раз подтверждает специфичность ее действия как на скорость образования отдельных метаболитов клетки и проницаемость мембран (Землянухин и др., 1984; Ершова и др., 1996) так и, как следствие этого, на компартментализацию соединений.

Как известно, важную роль в катаболизме гликозидов играют |3-гликозидазы. С помощью выделения различных клеточных фракций в клетках растений гороха было обнаружено две формы Р-гликозидазы: цитоплазматическая, обладающая способностью гидролизовать различные гликозиды, включая и ИС-гликозид, и прочно связанная с клеточными стенками, обладающая большей специфичностью к ИС-гликозиду. Так как основная часть ИС-гликозида клеток растений гороха локализована в вакуоле, можно предположить, что такое пространственное разобщение.

115 гликозида и фермента его катаболизма Р-гликозидазы позволяет данному гликозиду накапливаться в клетках растений в достаточно высоких концентрациях. При этом увеличение активности |3-гликозидазы в онтогенезе растений коррелирует с увеличением содержания гликозида. Характер локализации специфической Р-гликозидазы дает возможность предположить, что фермент принимает участие в синтезе материала клеточных стенок как и другие ферменты, прочно связанные с ними. Вероятно, функция широкоспецифического фермента состоит в извлечении глюкозы и ее эпимеров из различных гликозидов во время транспорта последних через клеточные структуры. Подобная функция р-гликозидаз широко распространена у животных. Установлено, что участие неспецифической (цитоплазматической) Р-гликозидазы в метаболизме растительных клеток требует наличия соответствующих механизмов регуляции ее функционального состояния. К ним можно отнести концентрацию субстратов и других низкомолекулярных метаболитов клеток (в частности, С02), что может иметь значение для растений в связи с прохождением ими определенных стадий развития или при изменении окружающей среды.

Показать весь текст

Список литературы

  1. A.c. N784051 СССР, А61 К 31/70. Применение изосукцинимид —? -гликозида в качестве средства для повышения резистентности организма животных / Бузлама B.C., Землянухин A.A., Ершова А. Н. — 1980. — 6с.
  2. Ю.А., Кинтя П. К., Фадеев Ю. М. Тритерпеновые гликозиды в систематике и эволюции цветковых растений // Растительные ресурсы.-1997,-Т. 33, № 2,-С. 125 144.
  3. Л.С., Головко Э. А. Биологическая активность сапонинов // Физиология и биохимия культурных растений. 1998. — Т. 30, № 2. -С.112−123.
  4. Г. М., Маленков А. Г. Биологически активные вещества. Новые принципы поиска. М.: Наука, 1986. — 368 с.
  5. Ю.Д. Активность ß--галактозидазы и ß--глюкозидазы у внеядерных хлорофильных мутантов подсолнечника // Генетика. 1978. -Т. 14, № 8. С. 1387−1391.
  6. Т.А., Демина В. А., Нуцубидзе H.H. Влияние стероидных гликозидов на мембраны Neurospora crassa // Прикладная биохимия и микробиология. 1994. — Т. 30, № 6. — С. 896−901.
  7. П.С., Запрометов М. Н. О локализации ß--глюкозидазы в клетках лепестков розы // Физиология растений. 1981, — Т.28, № 2,-С.430−431.
  8. И.С., Пасешниченко В. А. Состав и биологическая активность стероидных гликозидов из суспензионной культуры клеток Dioscorea deltoidea Wall // Прикладная биохимия и микробиология. 1995. — Т.31, № 5, — С.238−242.
  9. Влияние гамма-аминомасляной и гамма-фенил-гамма-аминомасляной кислоты на калий-натриевую селективность мембран растительных клеток / Юрин В. Н., Кудряшова А. П., Гусев В. В. и др. // Докл. АН СССР, — 1979, — Т.20, № 8, — С. 758−759.
  10. Влияние дихлоризобутирата на метаболизм аминокислот в гипокотилях амаранта / Попова Т. Н., Хожаинова Г. Н., Эрдели Г. С. и др. // Физиология растений. 1996, — Т.43, № 4, — С.561−566.
  11. Влияние фузикокцина и цитокинина на рост высечек из листьев этиолированных проростков фасоли / Цибуля JI.B., Хохлова В. А., Нестерова С. Г. и др. // Физиология растений. 1989. — Т. 36, № 1. — С. 1823.
  12. Влияние цитокинина на рост растений и содержание хлорофилла в листьях в условиях загрязнения среды / Бессонова В. П., Лыженко И. И., Михайлов О. Ф. и др. // Физиология растений. 1984, — Т. 31, № 6,-С.1149−1153.
  13. Т.А., Шкель Н. М., Триль В. М. Фенольные соединения Pentaphylloides fruticosa (L.) в природе и в культуре // Сибирский экологический журнал. 1999. — Т.6, № 3. — С. 231−236.
  14. В.Ф., Ладыгина М. Е., Хандобина Л. М. Большой практикум по физиологии растений. М.: Высш. шк., 1975. — 329 с.
  15. Л.М. Биогенез природных соединений. М.: Мир, 1965, — 160 с. 16.р-гликозидаза из гриба Geotrichum candidum / Родионова H.A., Румянцева Г. Н., Тиунова H.A. и др. // Биохимия. 1977. — Т. 42, № 1, — С.43−48.
  16. И.А., Жук О.И. Влияние синтетических цитокининов и ауксинов на прорастание семян озимой пшеницы в условиях высокотемпературного стресса // Физиология и биохимия культурных растений. 1998, — Т. 30, № 4, — С. 247−252.
  17. Г. М. Регуляция метаболизма растений при недостатке кислорода. М.: Наука, 1975. — 278 с.
  18. A.M., Гродзинский Д. М. Краткий справочник по физиологии растений. Киев: Наукова Думка, 1973. — 592с.
  19. С.П., Гулько Т. П., Кунах В. А. Рост и накопление гликозидов в каллусной культуре тканей женьшеня при длительном воздействииэкзогенных фитогормонов // Физиология растений. 1997, — Т.44, № 1,-С.97−104.
  20. Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. М.: Мир, 1986. Т.2.-269 с.
  21. К.Г., Пасешниченко В. А., Васильева И. С. Локализация олигофуростанозидов и расщепляющей их специфической (3-глюкозидазы в листьях DIOSCOREA DELTOIDEA // Физиология растений. 1986, — Т. ЗЗ, № 6, — С.1144−1151.
  22. Действие терпеновых гликозидов на полную проницаемость холестеринсодержащих бислойных липидных мембран / Корепанова Е. А., Попов A.M., Анисимов М. М. и др. // Докл. АН СССР. 1980,-Т.252, № 5, — С.1261−1263.
  23. Г. Гель -хроматография. М.: Мир, 1970. — 252 с.
  24. М., Уэбб Э. Ферменты. ML: Мир, 1982. — 1120 с.
  25. И.М., Кудрявцева Л. Ф., Бураханова Е. А. Компартментация продуктов фотосинтеза в вакуолях изолированных протопластов мезофилла Beta vulgaris L. // Физиология растений. -1992, — Т.39, № 6, — С. 1098−1107.
  26. Э.В. Связь биологических функций сфинголипидов с их химической структурой // Биоорганическая химия. -2000, — Т. 26, № 1. С. 12−18.
  27. А.Т., Попов В. Н. Ферментативная регуляция метаболизма ди и трикарбоновых кислот в растениях. Воронеж: ВГУ, 1999. -192с.
  28. А.Н. Организация метаболических процессов растений в условиях дефицита кислорода и повышенного содержания углекислого газа. Автореф. дис.. докт. биол. наук. Воронеж, 1996. 52с.
  29. А.Н. Распространение и метаболизм изосукцинимид-|3-гликозида в растениях // Деп. ВИНИТИ 20.10.92. № 3019 В 92. — 1992. — 14 с.
  30. А.Н., Хрипач В. А. Влияние эпибрассинолида на процессы перекисного окисления липидов Pisum sativum в условиях кислородного стресса // Физиология растений. 1996, — Т.44, № 4. — С. 870−873.
  31. Т.А. Рутин и расщепляющие его ферменты в различных тканях листьев гречихи // Физиология растений. 1998, — Т.45, № 2, — С.74−78.
  32. Ю.А., Кесслер P.M. Субстратная специфичность ß--глюкозидаз сладкого миндаля // Биохимия. 1977, — Т.42, № 1.- С.26−33.
  33. Н.В., Дубравина Г. А., Запрометов М. Н. Особенности формирования хлоропластов и накопление фенольных соединений в фитомиксотрофных каллусных культурах чайного растения // Физиология растений. 2000, — Т.47, № 4, — С.537−543.
  34. М.Н. Основы биохимии фенольных соединений. М.: Высш. шк, 1974. -214 с.
  35. М.Н. О функциональной роли фенольных соединений в растениях // Физиология растений. 1992, — Т.39, № 6, — С. 1197−1207.
  36. A.A., Иванов Б. Ф. Биохимия гипоксического метаболизма растений. Воронеж: ВГУ, 1988. — 190 с.
  37. A.A., Иванов Б. Ф., Ершова А. Н. Организация метаболизма гамма-аминомаслянной кислоты в растениях // Успехи современной биологии. 1979, — Т. 87, № 2, — С. 185−197.
  38. С.Ф. Азотный обмен у растений. М.: Наука, 1986. — 320 с.
  39. С.Ф. Метаболизм аминокислот в изолированных корнях и корневых калусных тканях Vicia sativa // Физиология растений. 1974,-Т.21, № 6, — С.329−335.
  40. С.Ф. Пространственная организация азотного обмена в корнях растений // Физиология растений. 1978, — Т.25, № 2, — С.386−400.
  41. С.Ф., Смирнов A.M. Функциональная компартментация дикарбоновых аминокислот в растительной клетке // ВИНИТИ. Сер. Биол. № 20. 1977, — № 5.- С. 733−745.
  42. Интенсивность гликолиза и устойчивость к гипоксии отделенных корней Pisum sativum L. / Андреев В. Ю., Генерозова И. Л., Полякова Л. И. и др. // Физиология растений. -1996, — Т.43, № 2, — С.273−278.
  43. Кванг-Тае Чой, Ин-Ок Ан, Джи Чанг Парк Образование гингенозидов в культуре тканей женьшеня (Panax Ginseng С.A. Meyer) // Физиология растений. 1994, — Т. 41, № 6, — С.891−895.
  44. P.M. Субстратная специфичность и некоторые физико-химические свойства ß--гликозидазы миндаля. Автореф. дис.. канд. биол. наук. Ереван, 1979. -31с.
  45. П.К. Стероидные гликозиды типа спиростана. Кишинев: Штиинца, 1979. 148 с.
  46. И.Е., Лобакова Е. С., Носов A.M. Определение локализации стероидных гликозидов в культуре клеток Dioscorea deltoidea на основе изучения их ультраструктуры // Физиология растений. 1994.- Т. 41, № 6, — С.896−902.
  47. Н.В. Брассиностероиды в растительном мире // Химия природных соединений. -1991,-№ 2, — С. 159−173.
  48. Ю.Е. Низкомолекулярные соединения азота в растениях в условиях стрессов: особенности метаболизма и возможное физиологическое значение // Физиология и биохимия культурных растений. 1995, — Т. 27, № 5−6, — С.324−335.
  49. C.B., Бойков П. Я., Бурлакова Е. Б. Корреляция структура -физиологическая активность у производных пиколиновой кислоты по данным квантовохимических расчетов // Известия АН. Серия биологическая. 2000, — № 2, — С.153−157.
  50. Е.Г. и др. Влияние модификаторов мембран на дыхательный газообмен и содержание пигментов клеток каллюса фасоли / Костина
  51. Е.Г., Курбская О. Г., Лыгин A.B., Гордон Л. Х., Рубан Н. Ф. // Деп. ВИНИТИ 01.07.92. № 2126 В 92. — 1992. — 14с.
  52. С.Я., Голик К. Н., Левчук О. Н. Действие регуляторов роста на фотосинтез, дыхание и азотофиксацию у люцерны при различном обеспечении минеральным азотом // Физиология и биохимия культурных растений. 1999, — Т. 31, № 1, — С. 53−60.
  53. В.Л., Карекина Т. И., Любимова Н. В. Об обмене янтарного полу альдегид, а у-аминомаслянной кислоты у растений // Физиология растений .- 1967.- Т.14, № 5, — С. 913−924.
  54. В.Л. Обмен азота в растениях. М.: Наука, 1972, — 256с.
  55. В.Г. Влияние корневой гипоксии и аноксии на функциональную активность и структуру хлоропластов листьев Pisum sativum и Glycine max // Физиология растений. 1999, — Т.46, № 2.- С. 246−258.
  56. Г. Ф. Биометрия. М.: Высш. шк., 1990. 352с.
  57. М.А. Молекулярные механизмы действия физиологически активных соединений. М.: Наука, 1981. — 213 с.
  58. А. Биохимия. М.: Мир, 1974. — 958с.
  59. Д.И. Роль лабильных гликозидов в углеводном обмене растений // Углеводы и углеводный обмен, — М.: Из-во Академии наук, 1959. С. 222−229.
  60. М.Я. Биосинтез и метаболизм алкалоидов в растениях. М.: Наука, 1981, — 196с.
  61. Локализация ß--глюкозидазы в клетках высших растений / Чкаников Д. И., Тарабрин Г. А., Шабанова A.M. и др. // Физиология растений. 1969. — Т. 16, № 2. — С.322−325.
  62. У.В., Вайняров Т. Р., Ланест Л. Э. Кинетин эффективный стимулятор образования флавоноидных соединений в проростках гречихи и ячменя // Физиология растений. — 1985, — Т. 32, № 6, — С.1127−1136.
  63. Map данов А. А. Влияние цитокининов на рост побегов и корней азотдефицитных растений // Физиология растений. 1985, — Т. 32, № 6,-С.1120−1126.
  64. Н.Б., Филимонов Д. А., Поройков В. В. Компьютерное прогнозирование спектра биологической активности низкомолекулярных пептидов и пептидомиметиков // Биоорганическая химия. 2000, — Т. 26, № 5,-С. 330−339.
  65. В.И. Теория строения молекул М.: Высш. шк., 1979. — 365 с.
  66. О.В., Полевой В. В. Действие фитогормонов на рост изолированных органов проростков кукурузы в зависимости от их возраста // Физиол. и биохимия культ, раст. 1989, — Т.21, № 3, — С.278−286.
  67. С.С. Гетероциклические соединения. М.: Наука, 1981. -350 с.
  68. Некоторые свойства (3-гликозидаз из Allium erubescens, катализирующей расщепление олигофуростанозидов / Вардосанидзе М. Г., Гуриелидзе К. Г., Пруидзе Г. Н. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. -1992 Т.28, № 5. — С.748−751.
  69. A.M. Функции вторичных метаболитов растений in vivo и in vitro // Физиология растений. 1994, — Т. 41, № 6, — С.873−878.
  70. Образование N-гликозида пиклорама в растениях / Чкаников Д. И., Макеев A.M., Павлова Н. Н. и др. // Физиология растений. 1983, — Т.30, № 1.-С. 95−101.
  71. Особенности дыхательного метаболизма в листьях гороха при гипобарической гипоксии / Астафурова Т. П., Вайшля О. Б., Зайцева Т. А. и др. // Физиология растений. 1993, — Т. 40, № 4. — С.656−661.
  72. В.А. Регуляция терпеноидного биосинтеза в растениях и его связь с биосинтезом фенольных соединений // Физиология растений. 1995, — Т.42, № 5, — С.787−804.
  73. Т.С. Количественное определение аминокислот при помощи хроматографии на бумаге / Современные методы биохимии. // М.: Медицина, 1964, — 248 с.
  74. В.В., Зонис С. А. Органическая химия. М.: Просвещение, 1982. — 193 с.
  75. В.В. Фитогормоны. JL: Из-во Ленинградского ун-та, 1982. -248с.
  76. Т.Н., Иванов Б. Ф., Землянухин Л. А. НАДФ-изоцитратдегидрогеназа и превращение изоцитрата и 2-кетоглутарата в растениях, экспонированных в безкислородных средах // Физиология растений. 1991, — Т.38, № 6, — С.1142−1149.
  77. Н.В. Мембрано-активные соединения как средство изучения механизмов и регуляции интенсивности ионных потоков в растениях / Ионный транспорт в растениях // Киев: Наукова Думка, 1970. — 280с.
  78. Программа SCAN для структурного анализа линейных полисахаридов на основе данных 13С-ЯМР-спектров с использованием персональных компьютеров / Кочетков Н. К., Виноградов Е. В., Книрель Ю. А. и др. // Биоорганическая химия. 1992, — Т.18, № 1, — С.116−125.
  79. М.И. Особенности метаболизма сукцината в растениях. Автореф. дис. .канд. биол. наук. Воронеж: ВГУ, 1992. — 25 с.
  80. H.A., Безбородов A.M. О локализации ферментных систем, катализирующих расщепление полисахаридов растительных клеточныхстенок у высших растений // Прикладная биохимия и микробиология. 1997. Т. 33, № 5. — С.467−487.
  81. JI.B., Сидорова Т. М., Чигрин В. В. Гликозидазная активность листьев пшеницы и устойчивость к ржавчине // Физиология растений. -1983, — Т.30, № 2. С.384−388.
  82. Роль интермедиаторов пероксисомального метаболизма в условиях дефицита кислорода и избытка углекислого газа / Игамбердиев В. Д., Иванов Б. Ф., Ничуговская В. Д. и др. // Физиология растений. 1991. Т.38, № 5. — С. 930−937.
  83. Е.Г., Селиванкина С. Ю., Воскресенская Н. П. Действие фитогормонов in vitro на активность протеинкиназ, связанных с мембранами телакоидов // Докл. АН СССР. 1990, — Т.313, № 4. — С.1021−1023.
  84. Рост в длину колеоптилей риса при кислородной недостаточности / Бертани А., Брамбилла И., Мапелли С. и др. // Физиология растений. -1997. т. 44, № 4, — С.624−629.
  85. Рост, фотосинтез и биохимический состав Pisum sativum L. при повышенной концентрации С02 в воздухе / Мудрик В. А., Романова А. К., Иванов Б. Н. и др. // Физиология растений. 1997, — Т.44, № 2, — С. 165−171.
  86. Г. Н., Родионова H.A. Свойства ß--глюкозидазы из целлюлолитического гриба GEOTRICHUM CANDIDUM Зс // Биохимия. 1982, — Т.47, № 1,-С. 108−114.
  87. В.Д., Пономаренко А. Д., Киризий Д. А. Влияние регуляторов роста растений на метаболизм сахарозы в сахарной свекле // Физиология и биохимия культурных растений. 199 8.-Т. 30, № 4.-С. 271−278.
  88. Р.К., Озолина Н. В., Прадедова Е. В. Влияние экзогенных фитогормонов и кинетина на гидролитическую активность протонных помп тонопласта в онтогенезе столовой свеклы // Физиология растений. -1999,-Т. 46, № 1.-С. 5−8.
  89. Синтез, накопление и локализация стероидных гликозидов в клетках разных штаммов Dioscorea deltoidea Wall / Бутенко Р. Г., Воробьев A.C., Носов A.M. и др. // Физиология растений. 1992, — Т. 38, № 6, — С.1146−1154.
  90. Система ß--глюкозидаз подсолнечника. Выделение ферментов и изучение их субстратной специфичности / Жданов Ю. А., Кесслер P.M., Колоколова Н. С. и др. // Биохимия. 1980, — Т.45, № 12. С.2158−2164.
  91. A.A., Перекалин В. В., Щербакова В. Д. Синтез гамма-аминокислот и а-пиролидонов // Органическая химия. 1968, — Т.4, № 12.- С.2245−2253.
  92. Э., Брюггер У., Джуре П. Машинный анализ связи химической структуры и биологической активности. М.: Мир, 1982. -236 с.
  93. А.Ф. Влияние цитокининов на холодо- и теплоустойчивость активно вегетирующих растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1986, — Т. 18, № 1. — С. 64−69.
  94. Н.П., Леонченко В. Г. Функции флавоноидных соединений в растениях // Деп. ВИНИТИ 18.05.89. № 3315 В 89. — 1989.-46 с.
  95. Н.В. Роль компартментов метаболитов в процессах регуляции и адаптации метаболизма в растительных клетках. Киев: Наукова Думка, 1975. -158с.
  96. В.А., Лахвич Ф. А., Жабинский В. Н. Брассиностероиды. -Минск: Наука и техника, 1993. 287с.
  97. Т.В. Пути адаптации растений к гипоксии и аноксии. Л.: Из-во Ленинградского ун-та, 1988. 244 с.
  98. Т.В., Вальтер Г., Леффлер С. Некоторые особенности состояния хлоропластов и митохондрий листьев проростков пшеницы ириса в условиях аноксии и длительной темноты // Физиология растений. 1995. — Т. 45, № 3. — С.368−376.
  99. Bhalla P.L., Singh M.B., Malik C.P. Localization and activity of some glucosidases during early embryogenesis in Tropaedum mazus L. // J. Jndian Bot. Soc. 1982. — V.61, № 1. — P. 91−94.
  100. Bhallia P., Dalling M. Characteristics of a (3-galactosidase associated with the stroma of chloroplasts preparated from mesophyll protoplasts of the primary leaf of wheat // Plant Physiol. 1984. — V.76, № 1. — P.92−100.
  101. Boiler Т., Wiemken A. Dynamics of vacuolar compartmentation // Annu. Rev. Plant Physiol. 1986. — V.37. — P.137−164.
  102. Bown A.W., Shelp B.J. The Metabolism and Functions of y-Aminobutyric Acid//Plant Physiol. 1997. — V. 115, № 1. — P. 1−5.
  103. Breitkreuz K.E., Shelp B.J. Subcellular compartmentation of the 4-aminobutyrate shunt in protoplasts from developing soybean cotyledons // Plant Physiol. 1995. — V.108, № 1. — P.99−103.
  104. Carroll A.D. Dynamics of Nitrogenous Assimilate Partitioning between Cytoplasmis and Vacuolar Fractions in Carrot Cell Suspension Cultures // Plant Physiol. 1992. — V.100, № 7. — P. 1808−1814.
  105. Chang B. S., Mahoney R.R. Thermal denaturation of p-galactosidase from Streptococcus thermophilus and its stabilization by bovine serum albumin // Biotechnol. and Appl. Biochem. 1994. — V.19, № 2. — P.169−178.
  106. Constitutive occurrence of benzoxazinones, their glucosides and glucosidase in Gramineae during juvenile stade of growth / Kazuyasu S., KenkichiE., Natsu M., Tomoaki J. // Plant Physiol. 1997. — V.114, № 3, Suppl. — P.225.
  107. Davis B.L. Disk Electrophoresis. II Method and application to human serum proteins // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1964, — V.121.- P.404−427.
  108. Delmer P. Dimethylsulfoxide as a Potential Tool for Analysis of Compartmentation in Living Plant Cells // Plant Physiol. 1979. — V.64, № 4. — P.623−629.
  109. Dey P.M., Naik S., Pridham J.B. Properties of (3-glucosidase from Vicia faba seeds//Planta. 1986. — V.167, № 1. — P. 114−118.
  110. Dick Arthur J., Opoku-Gyamfua A. Glycosidases of apple fruit: A multifunctional p-galactosidase // Physiol, plant. 1990. — V.80, № 2. — P. 250 256.
  111. Doireau P. Importance et divers aspects de la fermentation alcoolique au cours de la germination de differents types de semences // Physiol. Veg. -1976. -V. 14, № 3. P. 467−486.
  112. Dopico B., Gregorio N., Labrador E. Characterizatoin, Hydrolytic Activity and Variations throughout Growth of a Cell Wall P-Glucosidase and a
  113. Galactosidase from Cicer arietinum Epicotyls 11 J. Plant Physiol. 1991. -V.137. — P.477−482.
  114. Dumortier V., Brassart C. Purification and properties of a B-D-galactosidase from Bifidobacterium bifidum exhibiting a transgalactosylation reaction // Biotechnol. and Appl. Biochem. 1994. — V.19, № 3. — P.341−354.
  115. Ershova A.N. The role of isosuccinimide-beta-glucoside in the respiratory metabolism ofPisum seedlings // Plant Physiol. Biochem. 1996, — Sp. issue. -P.126.
  116. Ershova A.N., Ivanov B.E. The specifity of glutamate and gamma-aminobutyrate metabolism in plants under (Vdeficiency // Symp. ISPA, Lammi. Finland, 1995. P. 16.
  117. Gaba shunt in developing soy bean seeds in associated with gypoxia / Shelp B., Walton C., Snedolen W., Tuin L., Oresnir I., Laysel D. // Physiol. Plantarum. 1995. — V.94, № 1. — P.213−218.
  118. Gao J., Tgalashi K., Nukina M. Radical scavenging activity of phenylpropanoid glycosides in Caryopteris incana // Biosci., Biotechnol. Biochem. 1999. — V.63, № 6. — P. 983−988.
  119. Grayer R.J., Veitch N.C. An-8-hydroxylated external flavone and its 8−0-glucoside from Becium grandiflorum // Phytochemistry.- 1998, — T.47, № 5. -P. 779−782.
  120. Grunweller S., Kesseleier J. Characterization of a membrane bound (3-glucosidase responsible for the activation of oat leaf saponins // Phytochemistry. 1985. — V.24, № 9. — P.1941−1943.
  121. Hays W.S., VanderJagt D.J., Bose B. Catalytic mechanism and specificity for hydrolysis and transglycosylation reactions of cytosolic (3-glucosidase from guinea pig liver // J. Biol. Chem. 1998. — V.273, № 52. — P. 34 941−34 948.
  122. Haslam E. Metabolites and Metabolism: A Commentary on Secondary Metabolism. Oxford: Clarendon press, 1985. 161p.
  123. Isolation and characterization of an enzyme with P-glucosidase and P-fucosidase activities from Dalbergia cochinchinensis Pierre / Chantragan S., Jisnuson S., Rudee S" Voraratt C. // J. Biochem. 1996. — V.119, № 3. -P.585−590.
  124. Janbon G., Derancourt J. A very stable p-glucosidase from a Candida molischiana mutant strain // Biosci., Biotech. Biochem. — 1995. — V.59, № 7. -P.1320−1322.
  125. Johnson E., Stone B.A. Specificity of binding of beta-glucoside activators of ryegrass (1 3) beta-glucan synthase and the synthesis of some potential photoaffimty activators // Plant Physiol. — 1996. — V. Ill, № 8. — P. 1227−1231.
  126. Kakes P. Linamarase and other P-glucosidases are present in the cell walls of Trifolium repens L. leaves // Planta. 1985. — V.166, № 2. — P. 156−160.
  127. Kentaro I., Yutaka E. Purification and characterization of furostanol glycoside 26-O-beta- glucosidase from Costus speciosus rhizomes // FEBS Lett. 1996. — V.378, № 2. — P. 157−160.
  128. Kesselmeyer J., Urban B. Subcellular lokalization of saponins in green and etiolated leaves and green protoplasts // Protoplasma. 1983. — V. 114, № 12. -P.133−137.
  129. Ko Feng N., Chu Chen C., Lin Chun Isoorientin -6-O-glucoside, a water-soluble antioxidant isolated from Gentiana arisanensis // Biochim. biophys. acta. Lipids and Lipid Metab. 1998. — V. 1389, № 2. — P. 81−90.
  130. Lembe L., Udo M. Kinetin as an efficient stimulator of the formation of C-glycosyl-flavones in barley // Plant Sci. 1985. — T.41, № 1. — P.19−22.
  131. Liu T.J., Castelfranco P.A. Isosuccinimid-P-glucoside, the glucosil donor in the synthesis of ethyl-p-glucoside by pea seedling extracts // Arch. Biochem. Biophys. 1968. — V.123, № 3. — P. 645−646.
  132. Liu T.J., Castelfranco P.A. The biosynthesis of ethyl-P-glucoside in extacts of pea seedlings // Plant Physiol. 1970. — V.45, № 4. p. 424−428.
  133. Mayer R.R., Cherry J.H., Rhodes D. Effects of heat shock on amino acid metabolism of cowpea cells // Plant Physiol. 1990. — V.94, № 5. — P. 796 810.
  134. Mazelis M., Pratt H. In vivo conversion of 5-oxoproline to glutamate by higher plants // Plant Physiol. 1976. — V.57, № 1. — P.85−87.
  135. McGee M.C., Murray D.R. Acid Glycosidase Activities in the Cotyledons of Pisum sativum L. // J. Plant Physiol. 1984. — V. l 16. — P.467−472.
  136. McGee C.M., Murray D.R. Comparative Studies of Acid Glucosidases from Thee Legumes // Ann. Bot. 1986. — V. 57, № 2. — P. 179−190.
  137. A.Z., Santhi A. |3-Galactosidase and its significance in ripening mango fruit // Phytochemistry. 1995. — V. 38, № 5. — P. 1109−1114.
  138. Nagahashi G. The pH dependent distribution of (3-glucosidase activity in isolated particulate fractions // Plant. Sci. 1985. V.38, № 3. p. 173−178.
  139. Nevins D.J. Relation of glucosides to bean hypocotyl growth // Plant Physiol. 1970. — V.46, № 3. — P.458−462.
  140. Nidzwiedz S.I. Cyanogenis glucosides in Linum usitatissimum // Phytochemistry. 1998. — V. 49, № 1. — P. 59−63.
  141. Noe F.F., Nickerson W.I. Metabolism of 2-pirrolidone and y-aminobutyric acid by Pseudomonas aeruginosa // J. Bacteriol. 1958. V.75, № 2. — P.674 -688.
  142. Oba K., Conn E., Canut H. Subcellular localization of 2-ocinnamie acids and related (3-glucosidase in leaves of Melilotus alba // Plant. Physiol. 1981. — V.68,№ 6. -P.1359−1366.
  143. Pare P.W., Tumlinson J.H. Induced synthesis of plant volatiles // J. Biochem. 1997. — V.121, № 4. — P.30−31.
  144. Pflugmacher S., Sadermann H. Taxonomic distribution of plant glucosyltransferases acting on xenobiotics // Phytochemistry. 1998. — V.43, № 3. — P.507−511.
  145. Protein measurement with the Folin phenol reagent / Lowry O.H., Rosenbrough N.L., Farr A.L., Randal R.J. // J. Biol. Chem. 1951. — V.193, № 2. — P. 265−275.
  146. Pukazhenthi B., Varma G., Vijay J. Conserved Structural features in glycoprotein processing glucosidase from several tissues and species // Indian J. Biochem. and Biophys. 1993. — V.30, № 6. — P.333−340.
  147. Ramputh A.I., Bown A.W. Rapid y-Aminobutyric Acid Synthesis and the Inhibition of the Growth and Development of Oblique-Banded Leaf-Roller Larvae // Plant. Physiol. 1996. — V. 111, № 12. — P.1349−1352.
  148. Rhodes D., Handa S., Bressan R.A. Metabolic changes associated with adaptation of plant cells to water stress // Plant Physiol. 1986. — V.82, № 6. -P. 890−903.
  149. Rion C., Salmon J-M. Purification, characterization and substrate specificity of a novel highly glucose-tolerant beta-glucosidase from Aspergillus oryzae // Appl. and Environ Microbiol. 1998. — V.64, № 10. — P. 3607−3614.
  150. Sakano K., Tazawa M. Metabolic conversion of amino acid loaded in the vacuole of Chara australis internodal cells // Plant Physiol. 1985. — V. 78,4. P.673−677.
  151. Sanaa T., Etidal W., Mona M. Glycosidases in plant tissues of some Brassicaceae: Screening of different cruciferous plants for glycosidases production // Appl. Biochem. and Biotechnol. 1995. — V.55, № 3. — P. 219 230.
  152. Santosh T.R., Balasubraminian K.K. Enhancement of beta-glucosidase and beta-galactosidase of Trigonella foenum-graecum by exposure to the allelochemical mimosine // J. Agr. and Food Chem. 1999. — V.47, № 2. — P. 462−467.
  153. Sasaki I., Nagayama H. Purification and Characterizatoin of P-Glucosidase from Botrytis cinerea // Biosci., Biotech. Biochem. 1995. — V.59, № 1. -P.100−101.
  154. Sauders J., Gillespie J. Localizaiton and substrate specificity of glycosidases in vacuoles of Nicotiana rustica // Plant Physiol. 1984. — V. 176, № 4.- P.885−902.
  155. Schiemann W. Untersuchungen zum Vorkommen (3-glucosidase in Phaseolus coccineus L. // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1980. — V. 175, № 4. -P.354−368.
  156. Scott N. Glycosidasis from cotyledons of Pisum sativum L. // J. Exp. Bot. 1980. — V.31, № 120. — P.299−312.
  157. Segeta V., Nedralova E. Content of free amino acids and their exosmose from maise kernels in relation to cold resistance // Biol. Plantarium. 1970. -V.125, № 3. — P.15−32.
  158. Shi Y.-M., Yan J.-Q. Purification and characterization of (3-glucosidase from tomato leafs // Plant Sci. 1994. — V.20, № 2. — P. 113−120.
  159. Shipway M.R., Bramlage W.I. Effect of carbon dioxide on activity of apple mitochondria// Plant Physiol. 1973. — V. 51, № 6. — P. 1095−1098.
  160. Streeter J., Thompson J. In vivo and in vitro studies on y-aminobutyric acid metabolism with the radish plant // Plant Physiol. 1972. — V. 49, № 4. -P.579−584.
  161. Studies on tissues associated to hydroxybenzoqyinone secretion in Myrsine laetevirens / Otequi M.S., Gaspar M.L., Maldonado A.S., Vatetti E.L. // Nord. J. Bot. 1998. — V. 18, № 4. — P. 447−459.
  162. Sule S.M., Mathur G.P. Enzymatic formation of a- and D-2-pyrrolidon-5-carboxylic acid from a-D-glutamate acid in human skin and albing rat epidermis // Indian J. Biochem. and Biophys. 1972. — V. 9, № 1. — P.55−58.
  163. K. (3-Galactosidase activity in the germinating seeds of Vigna sinensis // Phytochemistry. 1985. — V. 24, № 12. — P. 2831−2833.
  164. Takashi A. Purification and characterization of (3-glucosidase from germinating rice seeds // Plant and Cell Physiol. 1997. — V.38, Suppl. -P.128.
  165. Takashi A., Hanae K., Naoto S. A cell wall-bound beta glucosidase from germinated rice: Purification and properties // Phytochemistry. — 1998. — V. 48, № 1. — P. 49−54.
  166. Thayer S., Conn E. Subcellular localization of 3-glucosidase and hydroxynitrile lyase in the mesophyll cells of sorghum leaf blades // Plant Physiol. 1981. — V.67, № 4. — P.617−623.
  167. The synthesis of y-am inobutyric acid in response to treatments reducing cytosolic pH / Crawford L.A., Bown A.W., Breitkreuz K.E., Guinel F.C. // Plant Physiol. 1994. — V.104, № 4. — P.865−869.
  168. Vitek V. Sugar-like diphenylamine-positive metabolites in pea seedlings // Biochem. et Biophys. acta. 1964. V.93, № 2. — P.429−432.
  169. Wager H.G. The effect of subjecting peas to air enriched with carbon dioxide. 1. The path of gaseous diffusion the content of C02 and the buffering of the tissue // J. Exp. Bot. 1974. — V.25, № 85. — P. 330−337.
  170. Wallase W., Secor J., Schrader L.E. Rapid accumulation of y-aminobutiric acid and alanine in soybean leaves in response to an abrupt transfer to lower temperature, darkness, or mechanical manipulation // Plant. Physiol. 1984. -V.75, № 2. — P.170−175.
  171. Waterman P.G. Bioactiwe secondary metabolites // 15 th Int. Bot. Cohgr. Yokogama, 1993. P. 106.
  172. Yoshiko M., Takeo K., Kazuo M. Purification and Characterizatoin of a P-Glucosidase from Polygonum tinctorium, Which Catalyzes Preferentially the Hydrolysis of Indican // Biosci., Biotechnol. and Biochem. 1996. — V.60, № 1. -P.147−149.137
  173. Yoshiki Y., Kudou S., Okudo K. Relatioship between chemical structures and biological activities of triterpenoid saponins from soybean // Biosci., Biotechnol. and Biochem. 1998. — V.62, № 12. — P. 2291−2299.
  174. Zhang H.L., Nagatsu A., Okuyama H., Mizukami H., Sakakibara J. Sesquiterpene glycosides from cotton oil cake // Phytochemistry. 1998. — V. 48, № 4, — P. 665−668.
  175. Zemlianukhin A.A., Ershova A.N. Metabolism of Isosuccinimide-p-Glucoside in Pea Seedlings // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1984. — V.179, № 8. — P.679−684.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!