Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Перекись водорода как регулятор устойчивости растений и каллусов пшеницы к грибным патогенам

Диссертация: Перекись водорода как регулятор устойчивости растений и каллусов пшеницы к грибным патогенам
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Рис. 46. Влияние защитных препаратов на устойчивость растений и каллусов пшеницы. образцов характеризуются небольшим количеством плотных участков, в то время как в устойчивых их значительно больше. Культивирование каллусов пшеницы в присутствии индукторов устойчивости приводит к появлению плотных участков и ризоидов на фоне сокращения площади рыхлого каллуса, что в совокупности способствует… Читать ещё >

Перекись водорода как регулятор устойчивости растений и каллусов пшеницы к грибным патогенам (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • УСЛОВНЫЕ ОБОЗНАЧЕНИЯ И СОКРАЩЕНИЯ
  • ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О МОЛЕКУЛЯРНЫХ МЕХАНИЗМАХ РЕГУЛЯЦИИ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ И КАЛЛУСНЫХ КУЛЬТУР (обзор литературы)
    • 1. 1. Общие сведения о развитии неспецифической устойчивости растений
    • 1. 2. Активные формы кислорода в становлении устойчивости растений к фитопатогенам
    • 1. 3. Устойчивость клеток разных тканей растений к фитопатогенным грибам
    • 1. 4. Индукторы устойчивости растений. Механизмы их действия
    • 1. 4. 1.Элиситоры в комплексной регуляции роста и устойчивости растений
      • 1. 4. 2. Салициловая кислота в системной приобретенной устойчивости растений
      • 1. 4. 3. Иммуностимуляторы и фунгициды — индукторы роста и устойчивости растений
    • 1. 5. Каллусная культура как модель для изучения защитных реакций растений и способов их регуляции
      • 1. 5. 1. Сигнальная регуляция формирования структур в каллусе
      • 1. 5. 2. Перспектива применения каллусных культур для решения 34 вопросов фитоиммунитета
    • 1. 6. Взаимоотношение растения-хозяина и патогена на клеточном 36 уровне. Особенности роста и развития фитопатогенных грибов в растениях
  • ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Объекты исследований
    • 2. 2. Экспериментальный материал
      • 2. 2. 1. Выращивание растений
      • 2. 2. 2. Получение каллусов
    • 2. 3. Методы работы с фитопатогенными грибами
      • 2. 3. 1. Характеристика инфекционного материала
      • 2. 3. 2. Инфицирование и учет пораженности растений
      • 2. 3. 3. Получение совместной культуры каллусов пшеницы и возбудителей грибных болезней
    • 2. 4. Способы применения защитных соединений на интактных растениях, каллусных культурах и культурах грибов
    • 2. 5. Микроскопические методы
      • 2. 5. 1. Гистологические исследования
      • 2. 5. 2. Электронно-микроскопические исследования
      • 2. 5. 3. Оценка генерации перекиси водорода в растениях и каллусах пшеницы и эгилопса
      • 2. 5. 4. Количественные измерения содержания общего белка и липидов
      • 2. 5. 5. Прижизненное выявление лигнина и суберина
      • 2. 5. 6. Люминесцентный анализ тканей растений
      • 2. 5. 7. Изучение эктофитной фазы развития Puccinia graminis
      • 2. 5. 8. Изучение эктофитной фазы развития Botrytis cinerea и Fusarium solan
      • 2. 5. 9. Окраска грибов по Граму
    • 2. 6. Статистическая обработка результатов
  • ГЛАВА 3. ПЕРЕКИСЬ ВОДОРОДА В ЗАЩИТНОМ ОТВЕТЕ КЛЕТОК РАСТЕНИЙ ПШЕНИЦЫ, ИНФИЦИРОВАННЫХ ВОЗБУДИТЕЛЯМИ ГРИБНЫХ БОЛЕЗНЕЙ
    • 3. 1. Развитие Bipolaris sorokiniana и Fusarium graminiarum в тканях растений пшеницы
    • 3. 2. Участие базурана, салициловой кислоты и хитоолигосахаридов в защите клеток листьев пшеницы от возбудителя 67 септориоза
    • 3. 3. Генерация Н202 и лигнификация клеточной стенки 76 колеоптиле и корня как фактор устойчивости растений при патогенезе
  • ГЛАВА 4. СОВМЕСТНЫЕ КУЛЬТУРЫ КАЛЛУСОВ ПШЕНИЦЫ И ЭГИЛОПСА С ВОЗБУДИТЕЛЯМИ ГРИБНЫХ БОЛЕЗНЕЙ МОДЕЛЬ ДЛЯ ОЦЕНКИ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ
    • 4. 1. Рост и развитие возбудителей пыльной и твердой головни, 83 Ustilago tritici и Tilletia caries, в каллусах пшеницы
    • 4. 2. Оценка устойчивости каллусов пшеницы к возбудителям 95 грибных болезней
    • 4. 3. Перекись водорода как фактор устойчивости каллусов 100 пшеницы и эгилопса к возбудителю твердой головни
  • ГЛАВА 5. РАЗВИТИЕ УСТОЙЧИВОСТИ КАЛЛУСОВ ПШЕНИЦЫ В УСЛОВИЯХ ИНФИЦИРОВАНИЯ ВОЗБУДИТЕЛЯМИ 106 ГРИБНЫХ БОЛЕЗНЕЙ
    • 5. 1. Индукция устойчивости каллусов пшеницы к возбудителям 106 грибных болезней под влиянием СК, ХОС и фунгицидов
      • 5. 1. 1. Влияние СК и ХОС на устойчивость каллусов пшеницы к 106 S. nodorum, U. tritici и Т. caries
      • 5. 1. 2. Защитный ответ каллусов пшеницы против Т. caries под 115 влиянием бисола 2 и байтана
    • 5. 2. Подавление защитных реакций каллусов пшеницы против
  • Т. caries в условиях ингибирования генерации Н2О
    • 5. 3. Перекись водорода как индуктор устойчивости каллусов пшеницы к Т. caries
  • ГЛАВА 6. РАЗВИТИЕ ФИТОПАТОГЕННЫХ ГРИБОВ В СИСТЕМЕ IN VITRO И В СИСТЕМЕ РАСТЕНИЕ-ХОЗЯИН -ПАТОГЕН
    • 6. 1. Разнонаправленная регуляция метаболизма растения и патогена — факторы защитного действия фунгицидов
      • 6. 1. 1. Ультраструктура клеток мезофилла, инфицированных
    • P. graminis, в условиях предобработки пшеницы бисолом 2 и базураном
      • 6. 1. 2. Влияние возбудителей грибных болезней на функциональную активность ядер пшеницы
      • 6. 1. 3. Содержание белка и липидов в растениях пшеницы, предобработанных байтаном, и паразитирующих на них грибов Bipolar is sorokiniana и Fusarium graminiarum
      • 6. 2. Эпидермис растений как тест-система эффективности применения защитных препаратов
      • 6. 2. 1. Морфология P. graminis на эпидермисе пшеницы, предобработанной бисолом 2 и базураном
      • 6. 2. 2. Морфология В. cinerea на эпидермисе лука
      • 6. 2. 3. Влияние факторов среды на рост и развитие устойчивого к байтану штамма F. solani в культуре и на эпидермисе лука
      • 6. 3. Использование СК и ХОС для изучения морфологии Т. caries в культуре, в растениях и каллусах пшеницы
      • 6. 4. Влияние Н2Ог на рост фитопатогенных грибов в системе in vitro

Актуальность исследований. Одной из первоочередных проблем современной биологии является выявление путей формирования устойчивости растений к фитопатогенам. Благодаря работам ряда специалистов [Аверьянов, 1991; Chen et al., 1997; Alvarez et al., 1998; Joseph et al., 1998; Дмитриев, 2003; Kawano, 2003; Максимов, Черепанова, 2006] в значительной мере стала понятна последовательность событий, развивающихся при контакте растения с патогеном, в результате которых резко и многократно активируются локализованные в клеточной стенке и плазмалемме НАДФН-оксидаза, пероксидаза, оксалатоксидаза — ферменты, участвующие в генерации активных форм кислорода (АФК). Одна из форм АФК, перекись водорода, опосредует лигнификацию клеточной стенки, является сигнальной молекулой в запуске каскада защитных реакций растений [Alvarez, 2000; Тарчевский, 2002], а в высокой концентрации может подавлять рост микроорганизмов [Grant, Loake, 2000]. В то же время, в физиологических концентрациях Н2О2 участвует в регуляции роста и дифференциации клеток растений [Potikha et al., 1999]. В настоящее время интенсивно исследуется сигнальная роль хитина, хитозана и их олигомеров (ХОС), а также салициловой кислоты (СК), индуцирующих продукцию АФК, в защите растений от патогенов [Bestwick et al., 1997; Саприн, Калинина, 1999; Шорнинг и др., 2000; Allen, Tresini, 2000; Ладыженская, Проценко, 2002; Шакирова, Сахабутдинова, 2003; Максимов и др., 2004]. Поэтому не удивительно, что предобработка такого рода индукторами, характеризующимися антистрессовым действием в сочетании с ярко выраженным ростстимулирующим эффектом, способствует формированию устойчивости и продуктивности растений [Шакирова и др., 2000; Тютерев, 2002].

В литературе в последнее время особое внимание уделяется вопросам развития защитных реакций в каллусных культурах растений. Так, в ответ на инфицирование в каллусах выявлено повышение активности пероксидазы, увеличение содержания лигнина и каллозы [Trillas et al., 2000; Максимов и др., 2004], что позволяет провести некую аналогию между реакциями, развиваемыми в растениях и каллусах в ответ на стресс [Максимова и др., 1990; Носов, 1999].

Вместе с тем в литературе практически отсутствуют сведения, касающиеся механизмов развития защитных реакций клеток разных тканей растений при инфицировании, хотя клеточная и тканевая устойчивость является одной из составляющих общей устойчивости особи. Такая же ситуация сложилась и в отношении устойчивости растительных клеток в культуре in vitro. Наряду с этим недостаточны сведения о влиянии защитных препаратов на устойчивость каллусов. Это делает неполной оценку возможностей применения каллусных культур как адекватной модели для выявления способов регуляции устойчивости растений. Основываясь на положении о ключевой роли Н2О2 как мессенджера в запуске ответных реакций клеток растений на инфицирование [Тарчевский, 2002; Kawano, 2003], можно полагать, что этот компонент является важным и в реализации устойчивости каллусов.

Следует заметить, что основной задачей исследователей, занимающихся изучением проблем иммунитета, является познание общих закономерностей устойчивости растений, однако многообразие паразитарных организмов заставляет признать различия в характере взаимоотношений, складывающихся между паразитом и растением в ходе патогенеза. В связи с этим оценка влияния защитных препаратов на рост патогенов в растениях и каллусах на разных стадиях развития болезни является весьма актуальной.

Цель работы состояла в выявлении роли перекиси водорода в регуляции устойчивости растений и каллусов пшеницы к возбудителям грибных болезней.

Задачи исследования:

1. Изучить локализацию генерации перекиси водорода в растениях контрастных по устойчивости сортов пшеницы, предобработанных индукторами устойчивости и инфицированных возбудителями септориоза, пыльной и твердой головни.

2. Проанализировать особенности роста и развития возбудителей пыльной и твердой головни на каллусах пшеницы.

3. Оценить уровень генерации перекиси водорода в совместной культуре каллусов восприимчивого и иммунного образцов пшеницы с возбудителем твердой головни Tilletia caries.

4. С использованием индукторов и ингибиторов генерации перекиси водорода выявить ее роль в устойчивости пшеницы к Т. caries.

5. Исследовать характер развития фитопатогенных грибов в чистой культуре, в совместных с растительными клетками культурах и в инфицированных растениях пшеницы при воздействии защитных препаратов и перекиси водорода.

Положения, выносимые на защиту.

Генерация перекиси водорода, обнаруживаемая в зоне роста фитопатогенов, относится к числу неспецифических защитных реакций клеток растений и каллусов пшеницы.

Индукторы устойчивости, усиливая генерацию Н2О2, инициируют в каллусах появление плотных участков и ризоидов, не поражаемых патогенами, что служит одним из ключевых показателей формирования устойчивости каллусов.

В основе развития устойчивости растений и каллусов под влиянием индукторов устойчивости лежат вызываемые ими аномалии развития фитопатогенных грибов.

Научная новизна.

Впервые выявлена генерация Н2О2 в зоне роста возбудителя твердой головни в поверхностных клетках колеоптиле проростков пшеницы, приводящая к раннему отложению лигнина в клеточной стенке.

Обнаружено усиление генерации Н2Ог в зоне нанесения пикноспор возбудителя септориоза в листьях пшеницы под влиянием салициловой кислоты и хитоолигосахаридов, способствующее ослаблению симптомов болезни.

Впервые показано, что фунгицид базуран вызывает нарушению дифференциации инфекционных структур возбудителя стеблевой ржавчины на эпидермисе листьев растений пшеницы.

Созданы длительно культивируемые совместные культуры каллусов пшеницы с возбудителями твердой и пыльной головни, в которых прослежен полный цикл развития грибов.

Впервые проведена комплексная оценка воздействия салициловой кислоты, хитоолигосахаридов, фунгицидов на морфологию и устойчивость каллусов пшеницы к грибу Т. caries в связи с генерацией перекиси водорода. Обнаружены аномалии развития гриба Т. caries в его совместной культуре с пшеницей под влиянием салициловой кислоты.

Практическая значимость. Визуализация полного цикла развития грибов U. tritici и Т. caries в каллусах позволяет экстраполировать эти сведения для уточнения закономерностей роста и развития грибов в растениях пшеницы. Совместные культуры пшеницы с возбудителями пыльной и твердой головни могут использоваться для скрининга эффективных в повышении устойчивости пшеницы к этим болезням защитных препаратов.

Апробация работы. Основные результаты работы докладывались на Всероссийских съездах общества физиологов растений (С.-Петербург, 1993;

Москва, 1999; Пенза, 2003), общества биохимиков (Москва, 1997, 2004; С. Петербург, 2002), Вавиловского общества генетиков и селекционеров (Москва, 1994, 2004; С.-Петербург, 2000), Всероссийских конференциях по защите и иммунитету растений (С.-Петербург-Пушкин, 1995, 2002; Москва-Б.Вяземы, 2006), «Регуляторы роста и развития растений» (Москва, 1993, 1999, 2001), «Стрессовые белки растений» (Иркутск, 2004), Всероссийских симпозиумах «Biostress» (Москва, 1996), «Новые достижения в исследовании хитина и хитозана» (Москва, 2001; С.-Петербург, 2003), «Signaling Systems of Plant Cell» (Москва, 2001), «Molecular Plant — Microbe Interactions» (С.Петербург, 2003), «The biology of Plant Cells in vitro and Biotechnology» (Москва, 1997; Саранск, 2001; Саратов, 2003), «Молекулярные механизмы генетических процессов и биотехнология» (Москва, 2001), «Plant Growth Substances» (Brno, 2001), «Геном растений» (Одесса, 2003), «Биотехнология: состояние и перспективы развития» (Москва, 2003), «Регуляции роста, развития и продуктивности растении «(Минск, 2005) «XVth Biennial Workshop on the Smut Fungi» (Prague, 2006).

Связь с планами НИР. Исследования проводились в соответствии с планами научных исследований Института биохимии и генетики УНЦ РАН по темам: «Устойчивость пшеницы к грибным заболеваниям и пути ее повышения» (№ 01.92. 18 387), «Молекулярные механизмы узнавания и проявления основных защитных реакций в системе пшеница — грибной патоген» (№ 01.96. 1 034), «Молекулярные механизмы развития ранних защитных реакций растительной клетки при повреждении фитопатогенными грибами» (№ 01.99. 8 298), «Эндогенная регуляция сигнальных молекул при грибных инфекциях растений» (№ 01.2002.5 309). «Оксидоредуктазы в сигнальной регуляции устойчивости растений к фитопатогенным грибам» (№ 01.2004.12 555).

Конкурсная поддержка работы. Исследования были поддержаны грантами РФФИ-Агидель (№ 02−04−97 923) «Совместные культуры клеток пшеницы с фитопатогенами как модель для скрининга средств защиты растений с иммуностимулирующими свойствами» и РФФИ (№ 05−04−48 310) «Хитин-специфичные» оксидоредуктазы в сигнальной регуляции устойчивости растений к фитопатогенным грибам" .

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 59 работ, в том числе 42 статьи в рецензируемых журналах, из них 35 работ — в журналах, входящих в список ВАК.

Личное участие автора в получении научных результатов.

Личный вклад соискателя заключается в разработке идеи работы, в постановке и проведении экспериментов, в статистической обработке и интерпретации полученных результатов.

Благодарности. Выражаю благодарность д.б.н., профессору Ф. М. Шакировой, д.б.н., профессору Н. Н. Кругловой, д.б.н., профессору P.M. Хайруллину, д.б.н. И. В. Максимову, за постоянную и неоценимую помощь, поддержку и внимание при выполнении этой работы. Благодарю сотрудников нашей лаборатории — к.б.н. Л. Г. Яруллину, к.б.н. Сурину О. Б., к.б.н. Р. Ф. Исаева, к.б.н. З. Р. Юсупову и к.б.н. Е. А. Черепанову. Выражаю глубокую признательность к.б.н. Г. В. Сережкиной (ГБС РАН, Москва) за консультации при работе с фитопатогенным материалом. Благодарю родных и близких за понимание и поддержку.

выводы.

1. Впервые прослежен полный цикл развития грибов Т. caries и U. tritici в совместных с этими патогенами культурах каллусов пшеницы.

2. В зоне проникновения гриба Т. caries в проростки пшеницы в поверхностных клетках колеоптиле обнаружена продукция перекиси водорода. Устойчивые растения характеризуются более высоким уровнем ее генерации и ранним отложением в клеточной стенке лигнина. Генерация Н2О2 в поверхностных клетках ризоидов каллусов пшеницы обеспечивает их устойчивость к инфицированию грибом.

3. В инфицированных грибом S. nodorum клетках листьев пшеницы регистрируется генерация Н2О2. В инфицированных грибом Т. caries каллусах пшеницы генерация Н2О2 наблюдается в паренхимоподобных клетках, контактирующих с мицелием. Салициловая кислота и хитоолигосахариды усиливают генерацию Н202 в клетках листьев и каллусов пшеницы, что приводит к ослаблению развития симптомов септориоза на листьях и замедлению роста патогена в каллусах.

4. Индукторы устойчивости вызывают аномалии в цикле развитии грибов в растениях и каллусах пшеницы: фунгицид базуран приводит к формированию аномальных ростковых трубок и подавлению свойств патогенности P. graminisсалициловая кислота вызывает сдвиги в соотношении «палочковидных» и «бусинковидных» гифов Т. caries в сторону «палочковидных» и тормозит формирование спор в каллусах.

5. При культивировании каллусов восприимчивых образцов пшеницы в присутствии индукторов устойчивости наблюдается образование не поражаемых грибами Т. caries и U. tritici плотных участков и ризоидов. При культивировании каллусов в условиях ингибирования генерации Н2О2 происходит разрыхление каллусов и торможение прироста их сухой массы. Эти факты указывают на ключевую регуляторную роль перекиси водорода в процессах организованного роста растительных клеток.

6. Выявленная аналогия в развитии защитных реакций в растениях и каллусах пшеницы доказывает возможность использования каллусных культур с Т. caries для скрининга эффективных индукторов устойчивости нового поколения.

7. Совокупность полученных на растениях и каллусах данных позволяет утверждать, что перекись водорода является важным компонентом АФК в регуляции устойчивости пшеницы к возбудителям грибных болезней.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Выявление путей формирования защитных реакций растений является одной из важных проблем современной биологии. К числу неспецифических ответных реакций растения на воздействие стрессовых факторов разной природы относят изменение активности про-/антиоксидантной системы, регулирующей уровень АФК в тканях [Low, Merida, 1996; Тарчевский, 2002; Droge, 2002]. Считается, что генерация Н2О2 элиситорами и регуляторами роста — индукторами системной устойчивости [Озерецковская и др., 1995; Ryals et al., 1996; Toedt et al., 1999; Alvarez et al., 2000; Luderer et al., 2001] вызывает целый спектр защитных реакций растений, тормозящих развитие патогенов [Lamb, Dixon, 1997; Van Loon, 1999; Тарчевский, 2002]. Несмотря на огромное количество публикаций, посвященных выявлению роли Н2О2 в регуляции защитных реакций растений при инфицировании, характер ответа на эту сигнальную молекулу на клеточном и тканевом уровне исследован не достаточно.

Изучение особенностей локализации генерирующих Н2Ог клеток в тканях растений пшеницы представляет особый интерес. Нами выявлено, что генерация Н2О2 в клетках сосудистого пучка, мезофилла листьев и в поверхностных клетках колеоптиле является характерной ответной реакцией клеток растений пшеницы на инфицирование. Обнаружено, что интенсивность продукции Н2О2 и степень развития защитных реакций, связанных с лигнификацией клеточной стенки, коррелируют с устойчивостью растений.

Каллусные культуры признаны удобной моделью для выявления способов регуляции устойчивости растений к стрессорам [Носов, 1999]. Имеющиеся в литературе данные об участии оксидоредуктаз в становлении устойчивости каллусов к возбудителям грибных болезней дают основание считать, что в инфицированных растениях и каллусах развиваются сходные защитные реакции [Максимов и др., 2004]. Наши результаты показали, что рыхло расположенные паренхимоподобные клетки каллусов и поверхностные клетки ризоидов отвечают на инфицирование возбудителем твердой головни генерацией Н202. Из литературы известно, что формирование защитных реакций эпидермальных клеток листьев растений ячменя в ответ на инфицирование возбудителем мучнистой росы также осуществляется с участием Н202 [Dumas et al., 1995; Thordal-Christensen et al., 1997]. Генерация перекиси водорода детектировалась и в клетках мезофилла растений кормовых бобов, инфицированных возбудителем ржавчины [Medeghini et al., 1994] и Xanthomonas campestris [Brown et al., 1998], латука, инфицированных Pseudomonas syringae [Bestwick et al., 1997], с чем связывают развитие устойчивости растений к этим патогенам. Таким образом, анализ собственных и литературных данных свидетельствует о том, что генерация Н202 в ответ на заражение фитопатогенами является универсальной защитной реакцией растительных клеток.

Применение методов микроскопии позволило нам оценить влияние защитных препаратов непосредственно на рост патогенов в растительных тканях. Оно выразилось в нарушении дифференциации инфекционных структур грибов, приводящему к ослаблению их развития. Этому способствует не только снижение метаболической активности в клетках гриба, но и повышение метаболической активности клеток растения. Обнаруженные нами взаимосвязи между уровнем экзогенной Н202 и степенью прорастания грибов в культуре in vitro, между уровнем продукции Н202 каллусами и интенсивностью заселения грибами, а также уровнем генерации Н202 растениями и степенью развития болезни позволяют отнести перекись водорода к числу необходимых компонентов в устойчивости как растений, так и каллусов к патогенам.

Перекись водорода, являясь частью сложной сигнальной системы, вносит вклад в регуляцию роста и дифференциации растительных клеток. Нами были обнаружены морфологические различия между каллусами устойчивых и восприимчивых образцов пшеницы. Каллусы восприимчивых.

Инфицированные базуран, СК, ХОС растения.

Клетки эпидермиса Нарушение развития листьев 1 гриба, индукция г генерации Н2О2.

Клетки мезофилла Ослабление симптомов листьев болезни.

Инфицированные СК, ХОС, байтан каллусы.

Плотные участки каллусов и ризоиды Увеличение количества не поражаемых грибами плотных участков каллусов и ризоидов Повышение устойчивости каллусов.

Рыхлые паренхимоподобные клетки Индукция генерации н2о2 Торможение роста гриба г.

Рис. 46. Влияние защитных препаратов на устойчивость растений и каллусов пшеницы. образцов характеризуются небольшим количеством плотных участков, в то время как в устойчивых их значительно больше. Культивирование каллусов пшеницы в присутствии индукторов устойчивости приводит к появлению плотных участков и ризоидов на фоне сокращения площади рыхлого каллуса, что в совокупности способствует ограничению роста гриба. Следовательно, индукторы устойчивости приближают структуру каллусов восприимчивых образцов пшеницы к структуре каллусов устойчивых образцов. Напротив, ингибирование генерации Н202 приводит к разрыхлению и оводнению каллусов, нарушению межклеточных взаимодействий, что обеспечивает успешный рост грибов на них. Совокупность этих сведений можно суммировать в схеме, приведенной на рис. 46.

Итак, нами выявлена аналогия развития реакций устойчивости/ восприимчивости растений и каллусов, опосредуемых уровнем генерации Н202 в растительных тканях. Это доказывает возможность использования каллусных культур в качестве модели для исследования регуляции индуцированной устойчивости растений. В свою очередь, знание закономерностей такой регуляции в каллусах позволит эффективно управлять устойчивостью растений с помощью защитных соединений. Известно, например, что оценку защитных свойств препаратов против твердой головни пшеницы проводят только во время уборки урожая зерна. Применение совместных каллусных культур пшеницы с возбудителями твердой или пыльной головни позволяет существенно сократить сроки оценки эффективности индукторов устойчивости в борьбе с этими вредоносными патогенами (рис. 47).

Среда МС.

Среда МС+СК.

Споры не образовались.

Т. caries. i.

45−60 сут.

Среда Споры не.

МС+СК образовались.

Рис. 47. Совместные культуры каллусов Т. aestivum сорта Жница с возбудителями грибных болезней как модель для скрининга защитных соединений. Цикл развития возбудителя пыльной (А) и твердой (Б) в их совместной культуре с каллусами пшеницы в присутствии салициловой кислоты.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.А. Активные формы кислорода и иммунитет растений // Усп. совр. биол. 1991. Т. 111. С. 722−738.
  2. Т.С., Евдотиенко В. Ю., Кудзина Л. Ю. Выделение, очистка и кинетические свойства оксалатоксидазы (ЕС 1.2.3.4.) из листьев свеклы // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 2. С. 196−200.
  3. Л.Н., Плотникова Ю. М. Ржавчина пшеницы: Цитология и физиология. М., Наука. 1989. 301 с.
  4. Л.Н., Плотникова Ю. М., Сережкина Г. В. Гаустории гриба Puccinia graminis Pers f. sp. tritici Eriks et E. Henn. в проводящей системе пшеницы // Микология и фитопатология. 1982. Т. 16. № 4. С. 335— 337.
  5. Л.Н., Талиева М. Н. Физиология взаимоотношений растения-хозяина и патогена: роль физиологически активных веществ // Бюлл. ГБС. 1995. Вып. 171. С. 161−167.
  6. Е.И., Ахматова Н. И. Механизм действия фунгицидов // Микология и фитопатология. 1985. Т. 19. № 3. С. 268−275.
  7. В.М., Ланецкий В. П. Содержание лабильной ДНК и РНК в листьях пшеницы, инфицированных Puccinia graminis Pers f. sp. tritici //Микология и фитопатология. 1982. Т. 16. № 2. С. 122−125.
  8. А.А., Кобыльский Г. И. Влияние источников углерода на активность гидролитических ферментов у фитопатогенного гриба Septoria nodorum II Вестник сельскохозяйственной науки Казахстана. 1989. № 6. С. 83−86.
  9. И.Э. Физиологические особенности формирования защитных реакций пшеницы при действии хитоолигосахаридов. Автореф. дисс.к.б.н. Уфа, 2000.24 с.
  10. Р.П., Веселова Т. Д., Девятое А. Г., и др., Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: Изд-во МГ, 2004. 312.
  11. Т.Б. Хлебное зерно. Л., Наука. 1987. 103 с.
  12. Т.Б. Эмбриогенез и морфогенез половых и соматических зародышей // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 6. С. 884 898.
  13. В.И. Фузарии. Киев, Наукова думка. 1977. 441 с.
  14. Н.П. Необходимые микроэлеменьы растений. Спб.: Издательство ДЕАН, 2005. 256 с.
  15. Большой практикум по физиологии растений. М., Высшая школа. 1978. 408 с.
  16. В.В. Ультраструктура растительной клетки при вирусной инфекции. Кишинев, Штиинца. 1986. 155 с.
  17. Е.И. Исследование анатомических структур вторичных корней озимой пшеницы растений здоровых и пораженных гельминтоспориозом // Тр. Ставропольск. с.-х. ин-та. 1974. Вып. 3 (37). С. 141−147.
  18. Е.И., Аббасова С. А. Особенности анатомических структур первичных корней озимой пшеницы (растения здоровые ипораженные гельминтоспориозом) // Тр. Ставропольск. с.-х. ин-та. 1972. Вып. 3 (35). С. 36−39.
  19. Р.Г. Биология культивируемых клеток и биотехнология растений. М., Наука. 1991. 280 с.
  20. P.P., Киракосян А. Б., Оганесян А. А. и др. Действие элиситоров различной природы на биосинтез лигнанов в каллусной культуре Linum austriacum II Физиология растений. 2003. Т. 50. № 3. С. 336−340.
  21. К.В., Гладких Т. А., Давыдова М. А. Пектолитические ферменты фитопатогенных микроорганизмов в патогенезе растений / Биохимия иммунитета, покоя, старения растений. М., Наука. 1984. С. 105 124.
  22. Н.И., Зиновьева С. В., Ильинская Л. И. и др. Модулирование болезнеустойчивости растений с помощью водорастворимого хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2001. Т. 37. № 4. С. 115−122.
  23. Н.И., Чаленко Г. И., Валуева Т. А. и др. Регуляция иммунных ответов картофеля ламинарином // Прикладная биохимия и микробиология. 2003. Т. 39. № 6. С. 697−702.
  24. Н.И., Чаленко Г. И., Переход Е. А. и др. Производные хитина и хитозана как элиситоры фитофтороустойчивости картофеля // Прикладная биохимия и микробиология. 2000. Т. 36. № 5. С. 433−438.
  25. Л.Л. К вопросу о биологической роли токсических метаболитов Helminthosporium sorokiniana Sacc. / Микробиологические процессы в почвах и урожайность сельскохозяйственных культур. Вильнюс. 1978. С. 14−24.
  26. Я. Устойчивость растений к болезням. М., Колос. 1962.252 с.
  27. В.А., Чеботарева Т. М., Аветисова Л. В. Индукция in vitro каллуса и растений пшеницы из незрелых зародышей // Сельскохозяйственная биология. 1987. Т. № 1. С. 34−38.
  28. И.Г. Пероксидазы растений / Итоги науки и техники. М, ВИНИТИ. 1992. Т. 36. С. 4−52.
  29. Г. Электронная гистохимия. М, Мир. 1974. 488 с.
  30. Гамалей И. А, Клюбин И. В. Перекись водорода как сигнальная молекула // Цитология. 1996. Т. 38. № 12. С. 1233−1247.
  31. Ю.В. Транспортная зависимость эволюции листа двудольных // Журнал общей биологии. 2004. Т. 65. № 5. С. 389−408.
  32. P.M. Исследование взаимоотношений пшеницы с возбудителем твердой головни Tilletia caries (DC) Tul. на ранних этапах патогенеза. Автореф. дисс.к. с.-х. н. Уфа, 2000. 24 с.
  33. Гамбург К. З, Рекославская Н. И, Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. Новосибирск, Наука. 1990. 243 с.
  34. Э.Э. Изучение полевой устойчивости зерновых культур к ржавчине / Ржавчина хлебных злаков. М, Колос. 1975. С. 137−148.
  35. Горшкова Т. А, Николовски Н, Финаев Д. Н. Клеточная стенка растений камень преткновения для молекулярных биологов // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 3. С. 443−462.
  36. Гречкин А. Н, Тарчевский И. А. Липоксигеназная сигнальная система // Физиология растений. 1999. Т. 46. №. 1. С. 132−142.
  37. Гречкин А. Н, Тарчевский И. А. Сигнальные системы клеток и геном // Биоорганическая химия. 2000. Т. 26. № 10. С. 779−781.
  38. Громозова Е. Н, Садовский М. Г. Связь формообразования Thielavia terrestris (Apinis) Malloch et Cain с предыдущими условиями культивирования гриба//ДАН. Т. 206. № 1. С. 139−141.
  39. Гумерова Е. А, Галеева Е. И, Чуенкова С. А, Румянцева Н. И. Соматический эмбриогенез и геммогенез в культуре тканей гипокотилей Fagopyrum esculentum II Физиология растений. 2003. Т. 50. №. 5. С. 716−721.
  40. Данилова М. Ф, Мазель Ю. Я, Телепова М. Н, Житнева Н. Н. Формирование систем поглощения и транспорта ионов в корне кукурузы
  41. Zea mays): анатомия и ультраструктура корня // Физиология растений. 1990. Т. 37. № 5. С. 629−635.
  42. Н.П., Калимова И. Б., Демченко К. П. Влияние никеля на рост, пролиферацию и дифференциацию клеток корневой системы проростков Triticum aestivum // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 2. С. 250−258.
  43. Е.В., Киселевский Д. Б., Бакеева JI.E., Самуилов В. Д. Программируемая клеточная смерть у растений: действие ингибиторов синтеза белка и структурные изменения в устьичных клетках гороха // Биохимия. 2006. Т. 71. № 4. С. 493−504.
  44. А.П., Тверской JI.A., Гродзинский Д. М. Активные механизмы фитоиммунитета лука // Физиология и биохимия культурных растений. 1986. Т. 18. № 5. С. 457−459.
  45. А.П., Ковтун А. В. Роль конститутивных фенольных веществ лука в устойчивости к патогенам // Физиология и биохимия культурных растений. 1988. Т. 20. № 1. С. 29−34.
  46. А.П., Гуща Н. И., Закордонец О. А., Гродзинский Д. М. Защитные реакции лука в ответ на проникновение патогенных и непатогенных грибов // Микология и фитопатология. 1988. Т. 22. № 2. С. 162 165.
  47. А.П. Фитоалексины и их роль в устойчивости растений. Киев., Наукова думка. 1999. 207 с.
  48. А.П. Сигнальные молекулы растений для активации защитных реакций в ответ на биотический стресс // Физиология растений. 2003. Т. 50. № 3. С. 465−474.
  49. А.И., Калиняк Т. Б., Блюм Я. Б. Оценка фито- и цитотоксической активности соединений тяжелых металлов и алюминия с помощью корневой апикальной меристемы лука // Цитология и генетика. 2001. Т. 35. № 1.С. 3−9.
  50. В.Ф., Удачин Р. А. и др. Пшеницы мира. Видовой состав. Достижения селекции, современные проблемы и исходный материал. Л., Агропромиздат. 1987. 560 с.
  51. Г. А., Зайцева С. М., Загоскина Н. В. Изменения в образовании и локализации фенольных соединений при дедифференциации тканей тиса ягодного и тиса канадского в условиях in vitro II Физиология растений. 2005. Т. 52. № 5. С. 755−762.
  52. В.И., Данилевич В. Н., Сузина Н. Е. и др. Изменение тонкой структуры клеток микроорганизмов под воздействием солей-хаотропов // Микробиология. 2004. Т. 73. № 3. С. 406−415.
  53. М.А. Развитие мицелия Ustilago nigra Tapke в тканях ячменя // Микология и фитопатология. 1975. Т. 9. № 3. С. 243−245.
  54. Е.П., Великанов Л. Л. Влияние минерального питания на поражаемость пшеницы грибом Helminthosporium sativum II Биологические науки. 1974. № 12. С. 74−80.
  55. Ю.Т. Физиолого-биохимические механизмы устойчивости растений к грибным болезням / Итоги науки и техники. Защита растений. М., ВИНИТИ. 1983. Т. 3. С. 3−83.
  56. Ю.Т., Озерецковская О. Л., Джавахия В. Г., Багирова С. Ф. Общая и молекулярная фитопатология. Учебное пособие. М., Изд-во Общества фитопатологов. 2001. 302 с.
  57. Е.В., Кашуба О. В. Влияние интенсивной технологии на поражение яровой пшеницы септориозом // Бюллетень СибНИИ земледелия и химизации. 1988. Т. 5. С. 23−26.
  58. М.И., Гилязетдинов Ш. Я., Вахитов В. А. и др. Новый регулятор роста бисол 2 / Регуляторы роста и развития растений. Матер. 2-ой всес. Конф. по регуляторам роста и развития растений. Киев, Наукова думка. 1988. С. 219.
  59. Т.Е. Выделение цитокининов прорастающими уредоспорами стеблевой ржавчины пшеницы // Физиология растений. 1986. Т. 33. № 10. С. 513−517.
  60. Н.В., Федосеева В. Г., Фролова JI.B. и др. Культура ткани чайного растения: дифференциация, уровень плоидности, образование фенольных соединений // Физиология растений. 1994. Т. 41. № 5. С. 762−767.
  61. М.Н. Фенольные соединения: распространение, метаболизм и функции в растениях. М., Наука. 1993. 272 с.
  62. С.Д. Пути рационального использования фунгицидов против комплекса аэрогенной инфекции яровой пшеницы // Химический метод защиты сельскохозяйственных растений от грибных болезней. Л., ВИЗР. 1985. С. 64−70.
  63. С.В., Васюкова Н. И., Озерецковская О. Л. Биохимические аспекты взаимодействия растений с паразитическими нематодами (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40. № 2. С.133−142.
  64. В.Б. Пролиферация клеток в растениях. Итоги науки и техники. Цитология. М., ВИНИТИ. 1987. 217 с.
  65. Э.А., Вафина Г. Х., Трошина Н. Б. Физиолого-биохимический анализ патогенеза пыльной головни пшеницы (Triticum aestivum L.) на ранних этапах инфицирования // Весци нацыянальнай акадэмии навук Беларуси. 2004. № 2. С. 69−73.
  66. Л.Н., Васюкова Н. И., Озерецковская О. Л. Биохимические аспекты индуцированной устойчивости и восприимчивости растений / Итоги науки и техники. Защита растений. М., ВИНИТИ. 1991. Вып. 7. С. 4−102.
  67. Р.Ф. Специфичность взаимодействия геномов пшеницы и эгилопса с возбудителем твердой головни. Автороф. дисс. к.б.н. М. 1988. 24 с.
  68. Исаев Р. Ф, Безрукова М. В, Сахабутдинова А. Р. и др. Гумми-М и салициловая кислота для повышения устойчивости пшеницы к грибным болезням // Аграрная наука. 2004. № 4. С. 11−12.
  69. К.Я. Вредоносность головни пшеницы // Защита растений. 1974. № 5. С. 34−35.
  70. Ф.Л. Химическая регуляция метаболизма, роста и продуктивности растений // Физиология и биохимия культурных растений. 1996. Т. 28. № 3. С. 123−140.
  71. Калинин Ф. Л, Сарнацкая В. В, Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев, Наукова думка. 1980. 488 с.
  72. Канарская З. А, Гамаюрова B.C., Канарский А. В, Гуславский А. И. Применение производных хитина в защите растений против грибных болезней / Докл. 6-ой Межд. конф. «Новые достижения в исследовании хитина и хитозана» М, ВНИРО. 2001. С. 25−26.
  73. Карабаев М. К, Джардемалиев Ж. К. Культивируемые клетки пшеницы и кукурузы. Морфогенез и толерантность // Физиология растений. 1994. Т. 41. № 6. С. 807−814.
  74. Л.В. Фузариозы полевых культур. Кишинев, Штирлица. 1989. 256 с.
  75. И.В. Мицелий Ustilago maydis (DC.) Cda. в тканях патологических новообразований при пузырчатой головне кукурузы // ДАН СССР. 1971 а. Т. 201. № 6. С. 1500−1503.
  76. И.В. Развитие в тканях Zea mays L. возбудителя пузырчатой головни Ustilago maydis (DC.) Cda. в связи с его жизненным циклом // Автореф. дисс.к.б.н. Л, 1971 б. 25 с.
  77. И.В. Головневые грибы (онтогенез и филогенез). JL, Наука. 1981.216 с.
  78. Ф.Г., Тарчевский И. А., Мурсалимова Н. У., Гречкин А. Н. Влияние продукта липоксигеназного метаболизма 12-гидроксидодеценовой кислоты на фосфорилирование белков растений // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 1. С. 148−152.
  79. Н.В. Изменение активности супероксиддисмутазы в каллусной культуре Rauwolfia serpentine Benth., выращенной в стандартных условиях и при температурном шоке // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40. № 1. С. 89−93.
  80. Г. И., Алипеков О. А., Герцог Н. М. Биосинтез индолилуксусной кислоты фитопатогенным грибом Septoria nodorum Berk. // Вестник сельскохозяйственных наук Казахстана. 1990. № 3. С. 37−39.
  81. Д.А., Чмырь П. Г., Коломбет JI.B. Диагностика инфицирования сельскохозяйственных растений фитопатогенами -необходимое условие оптимизации применения современных фунгицидов // Агрохимия. 2004. № 11. С. 87−93.
  82. Н.П., Платонова П. А. Биохимические аспекты гормональной регуляции покоя и иммунитета растений (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 1995. Т. 31. С. 103−114.
  83. Л.И. Биология индивидуального развития. М., Изд-во МГУ. 2002. 264 с.
  84. Е.Е., Абубакирова М. Р., Каримова Ф. Г. цАМФ и Са участвуют в механизмах действия гормона АБК // Рецепция и внутриклеточная сигнализация. Материал междунар. конф. Пущино. 1998. С. 230−233.
  85. Л.Г. Особенности процесса регенерации в каллусной культуре незрелых зародышей пшеницы (Т. aestivum L.) // Сельскохозяйственная биология. 1995. № 1. С. 15−19.
  86. Е.А. Головня опасная тенденция сохраняется // Защита и карантин растений. 1999. № 4. С. 10−11.
  87. М.С., Малышенко С. И., Ралдугина Г. Н. и др. Может ли салициловая кислота влиять на межклеточный транспорт вируса табачной мозаики через изменение проводимости плазмадесм //Физиология растений. 2002. Т. 49. № 1.С. 71−77.
  88. В.И. Физиологическая специализация и распространение рас Ustilago tritici (Pers.) Jens, в СССР // Микол. и фитопатол. 1979. Т. 4. № 2. С. 130−138.
  89. В.И. Устойчивость зерновых колосовых к возбудителям головневых болезней. М., Колос. 1984. 203 с.
  90. Н.Н. Морфогенез в культуре пыльников пшеницы: эмбриологический подход. Уфа, Гилем. 2001. 203 с.
  91. О.Н. Физиологическая роль абсцизовой кислоты // Физиология растений. 1994. Т. 41. № 4. С. 645−646.
  92. С.Н., Алимова Ф. К., Захарова Н. Г. и др. Биопрепараты с разными механизмами действия для борьбы с грибными болезнями картофеля // Прикладная биохимия и микробиология. 2006 а. Т. 42. № 1. С. 86−92.
  93. С.Н., Чирков С. Н., Ильина А. В. и др. Влияние молекулярной массы хитозана на его противовирусную активность в растениях // Прикладная биохимия и микробиология. 2006 б. Т. 42. № 2. С. 224−228.
  94. Е.М., Попов В. И. Метод инокуляции всходов пшеницы Helminthosporium sativum Р.К. et В. // Бюлл. ВИЗР. 1976. № 39. С. 73−75.
  95. Д.М. Действие ретардантов на мезоструктуру листьев малины // Физиология и биохимия культурных растений. 1998. Т. 30. № 2. С. 144−150.
  96. JI.A. Морфологическая разнокачественность каллюсных тканей риса и ее связь с регенерационной способностью // Физиология растений. 1993. Т. 40. № 5. С. 797−801.
  97. Э.П., М.А. Проценко. Биохимические механизмы передачи внешних сигналов через плазмалемму растительной клетки при регуляции покоя и устойчивости // Биохимия. 2002. Т. 67. № 2. С. 181−193.
  98. Г. С. Пузырчатая головня кукурузы в условиях искусственного заражения // Микология и фитопатология. 1976. Т. 10. № 1. С. 56−58.
  99. В.П., Гайворонская Л. М., Аверьянов А. А. Возможность участия АФК в двойной индукции против инфекционных реакций растений // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 1. С. 160−162.
  100. А.Н., Кононенко Г. Н., Соболева Н. А., Малиновская Л. С. Изучение токсиногенеза Fusarium graminearum Schwabe при пониженной температуре культивирования // Микология и фитопатология. 1994. Т. 28. № 1.С. 60−63.
  101. А.С. Вклад окислительного стресса в развитие холодового повреждения в листьях теплолюбивых растений. 1. Образование активных форм кислорода при охлаждении растений // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 5. с. 697−702.
  102. В.В., Иванова О. Н., Чурикова В. В., Талиева М. Н. Цитокининовая активность культуральной среды гриба Botrytis anthophila Bond. возбудителя плесени красного клевера // Микология и фитопатология. 1980. Т. 14. № 4. С. 335−338.
  103. Максимов В. И, Родоман В. Е, Лупцевич В. Г. Фитоактивные хитиновые соединения // Прикладная биохимия и микробиология. 1997. Т. 33. № 4. С. 355−362.
  104. Максимов И. В, Шакирова Ф. М, Хайруллин Р. М, Бузрукова М. В. Гормональный баланс ИУК/АБК в растений пшеницы при инфицировании септориозом // Микология и фитопатология. 1996. Т. 30. №. 1. С. 75−83.
  105. И.В. Оксидоредуктазы и фитогормоны в регуляции устойчивости пшеницы к грибным патогенам. Автореф. дисс.д.б.н. Уфа, 2005. 48 с.
  106. Максимов И. В, Трошина Н. Б, Хайруллин Р. М, Сурина О. Б, Ганиев P.M. Влияние твердой головни на рост проростков и каллусов пшеницы // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 5. С. 767−772.
  107. Максимов И. В, Черепанова Е. А. Про/ антиоксидантная система и устойчивость растений к патогенам // Успехи современной биологии. 2006. Т. 126. № 3. С. 250−261.
  108. Максимова Н. И, Мацкявичене Е. В, Гужова Н. В. и др. Взаимоотношение гриба Phythophtora infestans и клеток картофеля в суспензионной культуре при совместном выращивании // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 2. С. 285−290.
  109. Максимова Н. И, Мерзляк М. Н, Гусев М. В. Культура клеток и тканей в изучении взаимоотношений патогена и растения-хозяина // Биологические науки. 1990. № 2. С. 6−21.
  110. Максютова Н. Н, Галеева Е. И, Мухитов А. Р, Румянцева Н. И. Действие салициловой кислоты на рост каллюссов гречихи татарской с различной способностью к морфогенезу // Физиология и биохимия культурных растений. 2005. Т. 37. № 4. С. 320−325.
  111. А.О. Реализация морфогенетического потенциала растительных организмов // Успехи современной биологии. 1996. Т. 116. № 4. С. 306−319.
  112. А.А., Неттевич Э. Д., Тушинский Т. Ю. Устойчивость яровой пшеницы к септориозу // Вестник сельско-хозяйственных наук. 1991. № 7. С. 110−115.
  113. Д.Р. Прооксидантная и антиоксидантная система в проявлении защитного действия салициловой кислоты на растения пшеницы к засолению. Автореф. дисс.к.б.н. Уфа. 2005. 24 с.
  114. Е.И. Принцип регуляции скорости процесса повреждения клетки и реакция защитного торможения метаболизма (РЗТМ) // Журнал общей биологии. 1985. Т. 46. №. 2. С. 174−189.
  115. Н.Н., Милыптейн И. М. Современное состояние исследований в области фунгицидов//Агрохимия. 1991. №. 7. С. 139−151.
  116. Е.Б., Зенков Н. К., Шергин С. М. Биохимия окислительного стресса. Оксиданты и антиоксиданты. Новосибирск, Наука. 1994. 203 с.
  117. Л.В., Дьяков Ю. Т., Озерецковская О. Л. Индукторно-супрессорная гипотеза фитоиммунитета // Журнал общей биологии. 1986. Т. XL11. № 6. С. 748−758.
  118. Методы экспериментальной микологии. Киев, Наукова думка. 1982. 550 с.
  119. Л.А., Андреева Е. И. О резистентности возбудителей болезней к фунгицидам ингибиторам синтеза эргостеролов. Деп. № 1048-XI188. Черкассы. 1988.15 с.
  120. Ф.В., Л.Х. Гордон. Продукция супероксида и активность внеклеточной пероксидазы в растительных тканях при стрессе // Физиология растений. 2003. Т. 50. № 3. С. 459164.
  121. Ф.И., Рахматуллина Д. Ф., Гордон Л. Х., Вылегжанина Н. Н. Роль супероксида в формировании неспецифического адаптационного синдрома корневых клеток // ДАН. 1997. Т. 355. С. 554−556.
  122. С.М., Комарова Э. П. О биохимических механизмах индуцированной триазоловыми фунгицидами устойчивости растений ржи к ржавчине // Сельскохозяйственная биология. 1987. № 2. С. 70−74.
  123. Т.Г. Почвенная микология. М., МГУ. 1988. 215 с.
  124. Г. Н., Сережкина Г. В., Паулех Ц., Андреев JI.H. О функциональной морфологии различных типов клеток Erysiphe graminis DC. f. sp. hordei Marchal в онтогенезе // Микология и фитопатология. 1989. Т. 23. № 6. С. 529−532.
  125. Г. Н., Сережкина Г. В., Андреев JI.H. Цитофизиологическое исследование влияния аппрессориев Erysiphe graminis hordei на ядерный аппарат клеток ячменя // Известия РАН. Сер. биологическая. 1992. № 4. С. 501- 510.
  126. Г. Н., Сережкина Г. В., Рашаль И. Д. Андреев JT.H. Особенности развития Erysiphe graminis DC f. sp. hordei Marchal на листьях различных по устойчивости генотипах ячменя // Микология и фитопатология. 1988. Т. 226. № 4. С. 292−295.
  127. И.А., Дьяков Ю. Т., Горленко М. В. Сравнительное изучение популяций Thielaviopsis basicola (Berk, et Br.) Ferraris. 1. Культурально-морфологические признаки // Микология и фитопатология. 1984. Т. 18. С. 16−22.
  128. А.Т., Багаутдинова Р. И., Бубнова Е. А., Кобелева И. В. Фотосинтетический метаболизм в палисадной и губчатой тканях листа // Физиология растений. 1973. Т. 20. № 4. с. 1191−1197.
  129. О.О. Влияние салициловой кислоты и Fusarium graminearum на активность каталазы, содержание Н2О2 и эндогенной салициловой кислоты в проростках пшеницы // Физиология и биохимия культурных растений. 2005. Т. 37. № 1. С. 37−42.
  130. О.А., Андреева Е. И. Биологические аспекты изучения азолсодержащих фунгицидов. Химические средства защиты растений. М., НИИТЭХИМ. 1989. 71 с.
  131. Р.П., Касьяненко А. Г. Мутационная изменчивость Verticillium tricorpus Isaac. Генетическая изменчивость возбудителя вилта и пути повышения вилтоустойчивости хлопчатника / Дониш. Душанбе. 1978. С. 122−129.
  132. Ю.М. Цитологические аспекты взаимоотношений растений и фитопатогенных грибов // Микология и фитопатология. 1992. Т. 26. № 1.С. 67−75.
  133. Ю.М., Плотникова Ю. М. Гистологическое исследование растений риса, пораженных пирикуляриозом // Микология и фитопатология. 1989. Т. 23. № 6. С. 576−580.
  134. В.П., Ларина С. Ю., Гусева Н. Н. Цитокинины в патогенезе стеблевой и бурой ржавчины пшеницы //Облигатный паразитизм: цитофизиологические аспекты. М., Наука. 1991. С. 41−47.
  135. М.И., Дьяков Ю. Т., Чайка М. Н. Влияние трициклазола на формирование склероциев грибами Botrytis cinerea Pers. и Sclerotinia sclerotiorum Lib. // Прикладная биохимия и микробиология. 1991. Т. 27. № 2. С. 255−260.
  136. Э., Леффер В. Микология. М., Мир. 1995. 343 с.
  137. А.А., Строилова Ф. А., Ванюшкин В. А. Подавление производными хитина роста некоторых почвенных грибов / Совершенствование производства хитина и хитозана из панцирьсодержащих отходов. М., ВНИРО. 1991. С. 75−77.
  138. А.А. Влияние перекиси водорода на засухоустойчивость растений кукурузы // Агрохимия. 2002. № 9. С. 58−60.
  139. О.Н., Аверьянов А. А. Участие супероксидного радикала в механизме фунгицидного действия фталида и пробеназола // Физиология растений. 1991. Т. 38. № 3. С. 512−520.
  140. Т.Ф., Чканников Д. И. Токсины фитопатогенных грибов и их роль в развитии болезней растений. М., Колос. 1987. 60 с.
  141. A.M. Культура клеток высших растений уникальная система, модель, инструмент // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 6. С. 837−844.
  142. О.Л. Индуцирование устойчивости растений // Аграрная Россия. 1999. № 1. С. 4−9.
  143. О.Л. Проблемы специфического иммунитета // Физиология растений. 2002. Т. 49. № 2. С. 148−154.
  144. О.Л., Васюкова Н. И. При использовании элиситоров для защиты сельскохозяйственных растений необходима осторожность // Прикладная биохимия и микробиология. 2002. Т. 38. № 3. С. 322−325.
  145. О.Л., Васюкова Н. И., Зиновьева С. В. Хитозан как элиситов индуцированной устойчивости растений / Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. М., ВНИРО. 2002. С. 339−345.
  146. О.Л., Леонтьева Г. В., Роменская Г. И. и др. Фрагменты ксилоглюкана регуляторы иммунных эффектов в картофеле // Физиология растений. 1995. Т. 42. С. 773−779.
  147. О.Л., Роменская И. Г. Олигосахарины как регуляторные молекулы растений // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 5. С. 843−852.
  148. С.В., Маничев В. И., Захарченко В. А. и др. Влияние тяжелых металлов на микобиоту почв некоторых промышленных регионов Украины // Микология и фитопатология. 2006. Т. 40. № 2. С. 133−140.
  149. Панина Я. С, Н. И. Васюкова, O.JI. Озерецковская. Свободная и конъюгированные формы салициловой кислоты: содержание и роль в картофеле // Прикладная биохимия и микробиология. 2005. Т. 41. № 3. С. 354−357.
  150. Панина Я. С, Н. И. Васюкова, Г. И. Чаленко, O. JL Озерецковская. Изменение активности каталазы клубней картофеля под действием иммуностимуляторов // ДАН. 2004. Т. 395. № 5. С. 712−714.
  151. Т.И. Корреляционный анализ морфологических признаков гриба Botrytis cinerea Pers ex Fr // Микология и фитопатология. 1984. Т. 18. С. 381−383.
  152. Пантелеймонова Т. И, Дьяков Ю. Т. Сравнительное изучение возбудителя серой гнили земляники Botrytis cinerea Pers. в Подмосковье // Бюлл. МОИП. 1985. Т. 90. С. 93−103.
  153. В.М. Основные положения современной теории стресса и неспецифический адаптационный синдром у растений // Цитология. 1995. Т. 37. С. 66−91.
  154. Переход Е. А, Чаленко Г. И, Васюкова Н. И. Иммуномодулирующая активность олигосахаринов хитина и ксилоглюкана // 4-ый Съузд Общества физиологов растений России. Международная конференция. М. 1999. С. 236.
  155. Пересыпкин В. Ф, Лобань В. Л. Гистологические особенности развития гриба Puccinia triticina Erikss в различных по устойчивости сортах пшеницы // Научные труды УСХА. 1977. вып. 200. С. 86−88.
  156. Пересыпкин В. Ф, Коваленко С. Н. Развитие Septoria tritici Rob. Ex. Desm. в тканях листьев растений озимой пшеницы // Микология и фитопатология. 1981. Т. 15. № 3. С. 242−245.
  157. A.M., Туряница А.П, Козеровская Н. А. Влияние бактерий рода Kiebsiella на регенерационные процессы культуры ткани табака и пшеницы // Физиология и биохимия культурных растений. 1996. Т. 28. № 4. С. 120−122.
  158. Э. Гистохимия. М., Изд-во иностр. лит. 1962. 962 с.
  159. Ю.М., Зайцева Л. Г. Развитие возбудителей стеблевой и желтой ржавчины на поверхности листьев различных по устойчивости сортов пшеницы / Физиология иммунитета культурных растений. М., Наука. 1976. С. 64−71.
  160. Ю.М., Сережкина Г. В., Андреев Л. Н. Реакция различных по устойчивости линий пшеницы сорта Маркиз на внедрение гриба Puccinia graminis tritici 11 Журнал общей биологии. 1981. № 4. С. 519 527.
  161. Ю.М., Сережкина Г. В. Особенности ультраструктуры совместимой и несовместимой комбинации гриба Puccinia graminis tritici и пшеницы // Abh. Akad. Wiss. DDR. 1982. № 1.S. 321−326.
  162. Ф.Я., Паворва А. Ю., Борисова А. А. и др. Влияние лактата хитозана на индукцию ризогенеза в стеблевых черенках садовых культур / Современные перспективы в исследовании хитина и хитозана. М., ВНИРО. 2003. С. 108−111.
  163. П. М. Назарова Л.Н., Санин С. С. Особенности фунгицидного действия триадимефона и цинеба на развитие гриба Puccinia graminis f. sp. tritici//Сельскохозяйственная биология. 1983. № 8. С. 70−72.
  164. В.Н. О гистологии паразитизма JJstilago hordey Kell. et Sw. в проростках ячменя /Труды Харьковского сельскохозяйственного института. 1962. № 38 (75). С. 157−168.
  165. Ю.В. Корневая гниль яровой пшеницы в Кустанайской области // Микология и фитопатология. 1982. Т. 16. № 3. С. 263−266.
  166. К.В., Сережкина Г. В. Особенности проявления неспецифической устойчивости пшеницы к стеблевой ржавчине // Изв. ТСХА. 1978. № 2. С. 151−157.
  167. Е.А., Лутова J1.A. Молекулярно-генетические механизмы устойчивости высших растений к патогенам // Сельскохозяйственная биология. 2000. № 5. С. 20−30.
  168. М.Н. Ботаническая микротехника. М., Высшая школа. 1960. 258 с.
  169. Г. В. Септориозы зерновых культур (Методические указания). М., Колос. 1988. 58 с.
  170. Г. В., Карасева Е. В. Методика изучения возбудителей септориоза на изолированных листьях пшеницы // Сельскохозяйственная биология. 1985. №.12. С. 112−114.
  171. И.Д., Мишина Г. Н., Сережкина Г. В., Васильев В. В. Особенности взимоотношения Erysiphe graminis DC. f. sp. hordei Marchal и различных по устойчивости генотипов ячменя // Латвияс зинатню академияс вестис. 1992. № 8 (541), С. 62−65.
  172. Реунов А. В, Полякова A.M. О некротизации клеток листьев табака, системно пораженного вирусом табачной мозаики // Микробиологический журнал. 1986. Т. 48. № 6. С. 64−67.
  173. М.Н. Химические методы иммунизации растений /Иммунитет сельскохозяйственных растений к болезням и вредителям. М., Колос. 1975. С. 151−158.
  174. И.Г., Чаленко Г. И., Леонтьева Г. В., Озерецковская О. Л. Биологическая активность фрагментов клеточных стенок картофеля // Прикладная биохимия и микробиология. 1994. Т. 30. № 6. С. 907−916.
  175. Н.И. Морфогенез в культуре тканей гречихи: теоретические и прикладные аспекты. Автореф. дис.к.б.н. Казань, 1990. 21 с.
  176. Н.И., Валиева А. И., Самохвалова Н. А. и др. Особенности лигнификации клеточных стенок каллусов гречихи, различающихся по способности к морфогенезу // Цитология. 1998. Т. 40. № 10. С. 835−843.
  177. Н.И., Мухитов А. Р. Индукция колхицином морфологической и генетической нестабильности каллусов Fagopyrum tataricum //Цитология. 2002. Т. 44. № 7. С. 623−631.
  178. Н.И., В.В. Сальников, В.В. Лебедева. Изменение структуры клеточной поверхности каллуса Fagopyrum esculentum Moench. при индукции морфогенеза // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 3. С.430−437.
  179. Н.И., В.В. Сальников, Н.В.Федосеева, В.В.Лозовая. Особенности морфогенеза в длительно культивирумых каллусах гречихи // Физиология растений. 1992. Т. 39. № 1. С. 143−151.
  180. И.М. Пероксидазы стрессовые белки растений // Успехи современной биологии. 1989. Т. 107. № 3. С. 406−417.
  181. В.Д., Олескин А. В., Лагунова Е. М. Программируемая клеточная смерть //Биохимия. 2000. Т. 65.№ 8. С. 1029−1046.
  182. А.Н., Калинина Е. В. Окислительный стресс и его роль в механизмах апоптоза и развития патологических процессов // Успехи биологической химии. 1999. Т. 39. № 4. С. 289−326.
  183. Л.С. Цитоспектрофлуориметрический анализ комплексов нуклеиновых кислот с акридиновым оранжевым в парафиновых срезах // Физиология растений. 1986. Т. 33. № 5. С. 1031−1036.
  184. И.В., Иванов В. Б. Физиологические аспекты токсического действия кадмия и свинца на высшие растения // Физиология растений. 2001. Т. 48. № 5. С. 606−630.
  185. Г. В., Андреев JI.H. Цитологические особенности развития гриба Puccinia graminis Pers f. sp. tritici Eriks et E. Henn. в стебле пшеницы при совместимой и несовместимой комбинации // Микология и фитопатология. 1984. Т. 18. № 6. С. 450−452.
  186. Г. В., Плотникова Ю. М., Андреев JT.H. Прорастание уредоспор Puccinia graminis f. sp. tritici in vitro на поверхности листа // Известия АН СССР. Сер. биологическая. 1975. № 4. С. 524−532.
  187. З.Я., Юшко JI.C., Подчуфарова Г. М. Функции белков в фитопатогенезе. Минск, Наука и техника. 1992. 270 с.
  188. В.А. Биотехнология растений. Клеточная селекция. Киев, Наукова думка. 1990. 280 с.
  189. В.П. Возможная роль активных форм кислорода в защите от вирусных инфекций // Биохимия. 1998. Т. 63. № 12. С. 1691−1694.
  190. Т.В., Плотникова Ю. М., Молканова О. И. Влияние физиологического состояния каллусов на развитие ржавчинных грибов // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 5. С. 685−691.
  191. Т.В. Взаимодействие ржавчинных грибов с клеточными культурами растений. Автореф. дисс.к.б.н. М. 2000. 24 с.
  192. М.И., Логинов И. В. Статистические характеристики, маркирующие морфогенез в каллусных культурах яровой мягкой пшеницы // Физиология растений. 2004. Т. 51. № 2. С. 287−296.
  193. А.С. Головневые болезни ячменя. Челябинск, Южно-Уральское книжное издательство. 1990. 398 с.
  194. Т.Д. О механизме физиологического иммунитета растений к инфекционным заболеваниям. Харьков. 1959. 80 с.
  195. Т.Д., Гречко И. В. О гистологии физиологического иммунитета некоторых форм пшеницы к Tilletia tritici Wint. / Труды Украинск. НИИ растениеводства, селекции и генетики. 1960. № 6. С. 247−259.
  196. В.В., Титов А. Ф., Боева Н. П. Реакция растений на ионы свинца и на неблагоприятную температуру // Докл. РСХА. 1996. № 5. С. 5−7.
  197. М.Н., Белынская Е. В., Кондратьева В. В. Уровень эндогенных цитокининов и абсцизовой кислоты в листьях флокса метельчатого в связи с устойчивостью к возбудителю мучнистой росы // Известия РАН. Сер. биологическая. 1999. № 3. С. 230−235.
  198. М.Н., Мишина Г. Н. Окислительные ферменты во взаимоотношениях растения и патогена при мучнистой росе флокса // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 5. С. 679−684.
  199. М.Н., Филимонова М. В. О паразитической специализации видов рода Botrytis в свете новых экспериментальных данных // Журнал общей биологии. 1992. Т. 53. №. 2. С. 225−231.
  200. М.Н., Филимонова М. В., Андреев JI.H. Вещества с цитокининовой активностью возбудителя мучнистой росы флокса Erysiphe cichoracearum DC. f. phlogis Jacz. // Известия РАН. Сер. биологическая. 1991. № 2. С. 194−200.
  201. М.Н., Фурст Г. Г. Пероноспороз луков: физиология взаимоотношений растения-хозяина и патогена. М., Наука. 1989. 142 с.
  202. И.А. Катаболизм и стресс у растений. М., Наука. 1993. 87 с.
  203. И.А. Элиситор-индуцируемые сигнальные системы и их взаимодействие // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 2. С. 321−331.
  204. И.А. Метаболизм растений при стрессе. Казань, ФЭН. 2001.448 с.
  205. И.А. Сигнальные системы растений. М., Наука. 2002.294 с.
  206. Тихонович И. А, Проворов Н. А. Генетика симбиотической азотфиксации с основами селекции. С-Пб, Наука. 1998. 194 с.
  207. Г. А. Вопросы природы иммунитета пшеницы к твердой головне / Тр. Харьковского с.-х. ин-та. 1962. Вып. 38 (75). С. 47−86.
  208. К.Т. Активные формы кислорода и регуляция экспрессии генов // Биохимия. 2002. Т. 67. № 3. С. 339−352.
  209. Тютерев C. J1. Механизм действия и особенности использования фунгицидов иммуностимуляторов / Химические методы защиты сельскохозяйственных растений от грибных болезней. JI, ВИЗР. 1985. С. 2736.
  210. C.JI. Научные основы индуцирования болезнеустойчивости растений. С-Пб, Инновационный центр защиты растений, ВИЗР. 2002.328 с.
  211. Умнов В. И, Артеменко Е. Н, Чканников Д. И. Индолил-3-уксусная кислота в уредоспорах и мицелии гриба Puccinia graminis и ее влияние на развитие растения-хозяина // Сельскохозяйственная биология. 1984. № 3. С. 26−32.
  212. Упадышев М. Г, Гуськов А. В. Салициловая кислота как регулятор ризогенеза у плодовых и ягодных культур in vitro // Сельскохозяйственная биология. 1998. № 5. С. 63−68.
  213. Е.П. Клеточная стенка грибов. М, Наука. 1983. 248 с.
  214. Е.П. Хитин грибов: распространение, биосинтез, физико-химические свойства и перспективы использования / Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. М, ВНИРО. 2002. С. 100−111.
  215. Г. Г. Методы анатомо-гистохимического исследования растений. М, Наука. 1979.155 с.
  216. Э.Е. Генетическая регуляция морфогенеза растений // Физиология растений. 1998. Т. 45. № 5. С. 763−777.
  217. .А. Методы дифференциации пятнистостей по симптомам и микроскопическим признакам возбудителей // Изв. ТСХА. 1990. Биол. науки. № 2 С. 153 159.
  218. .А., Мельников Н. Н. Механизм действия системных фунгицидов // Агрохимия. 1986. № 2. С. 108−129.
  219. P.M., Ахметова И. Э. Хемилюминесцентный анализ быстрой продукции перекиси водорода интактными проростками пшеницы под влиянием хитоолигосахаридов // Биохимия. 2001. Т. 66. С. 349−353.
  220. Е.А., Климова С. Ю., Чердынцева Т. А., Нетрусов А. И. Микроорганизмы продуценты стимуляторов роста растений и их практическое применение (обзор) // Прикладная биохимия и микробиология. 2006. Т. 42. № 2. С. 133−143.
  221. Н.П. Морфология и размножение грибов. Л., ЛГУ. 1981. 118с.
  222. Е.А. Хитин-специфичные пероксидазы растений. Автореф. дисс.к.б.н. Уфа. 2005. 24 с.
  223. С.И., Павлова В. В., Прусакова Л. Д. Содержание абсцизовой кислоты и рост растений ярового ячменя под действием триазолов // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 1. С. 108−114.
  224. С.Н. Противовирусные свойства хитозана / Хитин и хитозан. Получение, свойства и применение. М., ВНИРО. 2002 а. С. 327−338.
  225. С.Н. Противовирусная активность хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2002 б. Т. 38. № 1. С. 5−13.
  226. Т.В. Физиологические основы устойчивости растений. СПб., Изд-во С-Пб. ун-та. 2002. 244 с.
  227. В.А. Корневые гнили хлебных злаков. Новосибирск, Наука. 1985. 189 с.
  228. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа, Гилем. 2001. 160 с.
  229. Ф.М., Безрукова М. В., Сахабутдинова А. Р. Влияние салициловой кислоты на урожайность яровой пшеницы и баланс фитогормонов в растениях в онтогенезе // Агрохимия. 2000. №. 5. С. 52−56.
  230. Ф.М., Сахабутдинова А. Р. Сигнальная регуляция устойчивости растений к патогенам // Усп. совр. биол. 2003. Т. 123. № 6. С. 563−572.
  231. И.Ф. Соматический эмбриогенез и селекция злаковых культур. Уфа, Башкирский государственный университет. 1999. 166 с.
  232. И.Ф., Асфандиярова P.P. Влияние фитотоксичных метаболитов Bipolaris sorokiniana (Sacc.) SH. на рост каллусной ткани и регенерацию растений пшеницы // Физиология растений. 1991. а Т. 38. № 2. С. 399−405.
  233. И.Ф., Асфандиярова P.P. Изучение фитотоксичности культурального фильтрата Fusarium oxysporum в культуре ткани пшеницы // Микология и фитопатология. 1991 б. Т. 25. № 4. С. 343−347.
  234. И.В., Полякова Г. Г., Здрожевская Г. К. и др. Накопление фенольных соединений каллусными культурами хвойных как реакция на грибы синевы древесины // Физиология растений. 2001. Т. 48. № 2. С. 251 256.
  235. И.А. Динамина ростовых веществ в культуре патогенного гриба Verticillium dahliae и пораженных им растениях. Автореф.к.б.н. Минск, 1979. 24 с.
  236. Н.П. Систематика грибов рода Fusarium / Новое в систематике и номенклатуре грибов. М., Национальная академия микологии, Медицина для всех. 2003. С. 192−218.
  237. Р.Т., Вэнс К. П. Первичные изменения в клетках эпидермиса при проникновении паразита / Инфекционные болезни растений. М., Агропромиздат. 1985. С. 34−53.
  238. .Ю., Смирнова Е. Г., Ягужинский J1.C., Ванюшин Б. Ф. Необходимость образования супероксида для развития этиолированных проростков пшеницы //Биохимия. 2000. Т. 65. № 12. С. 1612−1617.
  239. JI.A., Тырнов B.C. Гистологическое исследование каллусных культур Sorgum caffrorum (Роасеае) со стабильной регенерационной способностью // Ботанический журнал. 1990. Т. 75. № 1. С. 44−48.
  240. А.А. Шкалы для оценки поражения болезнями сельскохозяйственных культур (методические рекомендации). Воронеж. 1981.83 с.
  241. К. Анатомия растений. М., Мир. 1980. 286 с.
  242. З.Р., Ахметова Н. Э., Хайруллин P.M., Максимов И. В. Влияние хитоолигосахаридов на образование перекиси водорода и активность анионных пероксидаз в колеоптилях пшеницы // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 2. С. 238−242.
  243. A.M., Яруллина Л. Г., Шакирова Ф. М. и др. Влияние байтана на содержание индолилуксусной и абсцизовой кислот в листьях пшеницы при заражении корневыми гнилями // Физиол. растений. 1989. Т. 36. № 5. С. 397−403.
  244. A.M., Еркеев М. И. Биохимические исследования влияния иммуностимуляторов на растения пшеницы / Физиолого-биохимические основы иммунитета к грибным болезням растений. Уфа, БНЦ АН СССР. 1988. с. 120.
  245. Т.В., Зубко И. Я. Регрессивные изменения возбудителя твердой головни в тканях пшениц полиплоидного ряда Triticum timopheevii И Генетика. 1966. № 6. С. 159−164.
  246. Т.В. Закономерности регрессивных изменений головневых грибов в тканях питающих растений // Микология и фитопатология. 1968. Т. 2. № 2. С. 133−140.
  247. JI.Г., Максимов И. В., Муртазина Г. Ф. Защитная роль оксалатоксидазы при поражении пшеницы возбудителем корневой гнили Bipolaris sorokiniana II Микология и фитопатология. 2005. Т. 39. № 4. С. 9296.
  248. Л.Г., Максимов И. В., Ямалеев A.M. Защитная роль лигнификации при инфицировании пшеницы септориозом // Микология и фитопатология. 1997. Т. 31. № 6. С. 43−46.
  249. Abbas S., Fletcher R.A., Murr D.P. Alteration of ethylene synthesis in cucumber seedlings by triadimefon // Can. J. Bot. 1989. V. 67. P. 278−280.
  250. Alexandrova K.S., Conger B.V. Isolation of two somatic embriogenesis-related genes from orchard grass (Dactylis glomerata) // Plant Science. 2002. V. 162. P. 301−307.
  251. Allen R.G., Tresini M. Oxidative burst and gene regulation // Free Radical Biol. Med. 2000. V. 28. P. 469−499.
  252. Alvarez M.E. Salicelic acid in the machinery of hypersensitive cell death and disease resistance // Plant Mol. Biol. 2000. V. 44. P. 429−442.
  253. Alvarez M.E., Pennel R.J., Meijer P.J. et al. Reactive oxygen intermediates mediate a systemic signal network in the establishment of plant immunity // Cell. 1998. V. 92. P. 1−20.
  254. Ansari S.A., Kumar S., Palanisamy K. Peroxidase activity in relatiom to in vitro rhizogenesis and processing flowering in Bambusa arundiciaceae II Curr. Sci. 1996. V. 71. P. 358−359.
  255. Apoga D., Akesson H., Jansson H.-B., Odham G. Relationship between production of the phytotoxin prehelminthosporol and virulence in isolates of the plant pathogenic fungus Bipolaris sorokiniana II Eur. J. Plant Pathol. 2002. V. 108. P. 519−526.
  256. Apostol I., Heinstein P.F., Low P. S. Rapid stimulation of an pxidative burst during elicitation of cultured plant cells // Plant Physiol. 1989. V. 90. P. 109 116.
  257. Arnison P.G., Boll W.G. The effect of 2,4-D and kinetin on peroxidase activity and isoenzyme pattern in cotyledon cell suspension cultures of bush bean (Phaseolus vulgaris cv. Contender) // Can. J. Bot. 1976. V. 54. P. 1857−1867.
  258. Ashby A.M. Biotrophy and cytokinin conundrum // Phys. Mol. Plant Pathol. 2000. V. 57. P. 147−158.
  259. Baier R., Schiene K., Kohring B. et al. Alfalfa and tobacco cells reat differently to chitin oligosaccharides and Sinorhizobium meliloti nodulation factors // Planta. 1999. V. 210. P. 157−164.
  260. Baker C.J., Orlandi E.W. Active oxygen species in plant pathogenesis // Ann. Rev. Phytopathology. 1995. V. 33. P. 299−321.
  261. Barnes A.M., Walser R.H., Davis T.D. Anatomy of Zea mays and Glycine max seedlings treated with triazole plant growth regulators // Biol. Plant. 1989. V. 31. P. 370−375.
  262. Blee E. Oxygenated fatty acid and plant defenses // Information. 1995. V. 6. P. 852−861.
  263. Benhamou N., Belanger R.R. Benzothiadiazole-mediated induced resistance to Fusarium oxysporum in tomato // Plant Physiol. 1998. V. 118. P. 1203−1212.
  264. Ben-Shalom N., Ardi R., Pinto R. et al. Controlling gray mould caused by Botrytis cinerea in cucmber plants by means of chitosan // Crop Protect. 2003. V. 22. P. 285−290.
  265. Benton J.M., Cobb A.H. The plant growth regulator activity of the fungicide, epoxiconazole, on Galium aparine L. // Plant Growth Regul. 1995. V. 17. P. 149−155.
  266. Berna A., Bernier F. Regulated expression of a wheat germin gene in tobacco: oxalate oxidase activity and apoplastic localization of the heterologous protein // Plant Mol. Biol. 1997. V. 33. P. 417−429.
  267. Berna A, Bernier F. Regulation by biotic and abiotic stress of a wheat germin gene encoding oxalate oxidase, a H2O2 producting enzyme // Plant Mol. Biol. 1999. V. 39. P. 539−549.
  268. Bestwick C.S., Brown I.R., Bennett M.N.R, Mansfield J.W. Localization of hydrogen peroxide accumulation during the hypersensitive reaction of lettuce cells to Pseudomonas syringae pv. phaseolicola I I Plant Cell. 1997. V. 9. P. 209−221.
  269. Bhattacharya P. K, Pappells A.J. Cytofluorometric study of onion epidermal nuclei in response to wouding and Botrytis allii infection // Physiol. Plant Pathol. 1982. V. 21. P. 217−226.
  270. Bird P.M., Ride J.P. The resistance of wheat to Septoria nodorum'. fungal development in relation to host lignification // Physiol. Plant Pathol. 1981. V. 19. P.289−299.
  271. Blokhina 0, Virolainen E, Fagerstedt K. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review // Annals of Botany. 2003. V. 91. P. 179−194.
  272. Bohland C, Balkenhohl T, Grambow H.J. Differential induction of lipoxygenase isoforms in wheat upon treatment with rust funfus elicitor, chitin oligosaccharides, chitosan, and methyl jasmonate // Plant Physiol. 1997. V. 114. P. 679−685.
  273. Bolwell G. P, Bindschedler L. V, Blee K.A. et al. The apoplastic oxidative burst in response to biotic stress in plants: a three-component system // J. Exp. Bot. 2001. V. 53. P. 1367−1376.
  274. Bolwell G. P, Wojtaszek P. Mechanisms for the generation of reactive oxygen species in plant defence a broad perspective // Physiol, and Mol. Plant Pathology // 1997. V. 51. P. 347−366.
  275. Bonham-Smith P. G, Kapoor M, Bewley J.D. Exogenous application of abscisic acid or triadimefon effects the recovery of Zea mays seedlings from heat shock // Physiol. Plant. 1988. V. 73. P. 27−30.
  276. Borden S., Higgins V.J. Hydrogen peroxide plays a critical role in the defence response of tomato to Cladosporium fulvum II Physiol, and Mol. Plant Pathol. 2002. V. 61. P. 227−236.
  277. Brasier C.M., Gibbs J.N. Origin and development of the current Dutch elm disease epidemics // Plant Disease Epidemiology. Blackwell Sci. Publ. L. 1978. P. 34−39.
  278. Bredemeijer G.M.M., Burg H.C.J., Sree R.C., Dijkhu-is P. Release of peroxidases by cultured potato cells // Acta bot. Neerl. 1985. V. 34. P. 325−335.
  279. Brisson L.F., Tenhaken R., Lamb C. Function of oxidative cross-linking of cell wall structural proteins in plant disease resistance // Plant Cell. 1994. V. 6. P. 1703−1713.
  280. Buatti M., Scala A., Betteni P., Nascari G. Correlation between in vivo resistence to Fusarium and in vitro response to fungal elicitors and toxic substances in carnation // Theoretical Applied Genetics. 1985. V. 70. P. 4247.
  281. Bushnell W., Rowell J. B Suppressors of defense reactions: a model for the roles in specificity // Phytopathology. 1981. V. 71. P. 1012−1014.
  282. Caliskan M., Cuming A.C. Spatial specificity of H202 -generating oxalate oxidase gene expression during wheat embryo germination // Plant J. 1998. V. 15. P. 165−171.
  283. Caliskan M., Ge Turet M., Cuming A.C. Formation of wheat (Triticum aestivun L.) embryogenic callus involved peroxide-generating germin-like oxalate oxidase // Planta. 2004. V. 2004. P. 132−140.
  284. Carlson P. S. Methionine sulfoximine resistant mutants of tobacco // Fungal Genetics and Biology. 1973. V. 180. P. 1366−1368.
  285. Cessna S.G., Sears V.E., Dickman M.B., Low P. S. Oxalic acid, a pathogenicity factor for Sclerotinia sclerotiorum, suppresses the oxidative burst of the host plant // Plant Cell. 2000. V. 12. P. 2191−2199.
  286. Chan D.Y.-S., Thrower L.B. The host parasitic relationship between Liziana caduciflora Tucz. and Ustilago esculenta P. Henn // New Phytol. 1980. V. 85. P. 201−216.
  287. Chappie C., Carpita N. Plant cell walls as targets for biotechnology // Current Opinion in Plant Biology. 1998. V. 1. P. 179−185.
  288. Chen Z., Silva H., Klessig D.F. Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid // Science. 1993. V. 263. P. 1883−1886.
  289. Chen S., Schopfer P. Hydroxyl-radical production in physiological reactions. A novel function of peroxidase // Eur. J. Biochem. 1999. V. 260. P. 726 735.
  290. Chen Z., Lyer S., Caplan A. et al. Differential accumulation of salicylic acid-sensitive catalase in different rice tissue // Plant Physiol. 1997. V. 114. P. 193−201.
  291. Cheong Y.H., Kim C.Y., Chun H.J. et al. Molecular cloning of a soybean class III (3−1,3-glucanase gene that is regulated both developmentally and in response to pathogen infection // Plant Sci. 2000. V. 154. P. 71−81.
  292. Chobot V., Jemenak J., Opletal L. Phytotherapeutic aspects of diseases of the circulatory system. 4. Chitin and chitosan // Ceska Slov. Farm. 1995. V. 44. P. 190−195.
  293. Chong J., Baltz R., Fritig В., Saindrenan P. An early salicylic acid-, pathogen- and elicitor-inducible tobacco glucosy transferase: role in compartmentalization of phenolic and dependent H202 metabolism // FEBS Letters. 1999. V. 458. P. 204−208. .
  294. Coffey M.D. Cytochemical specialisation at the haustorial interface of a biotrophic fungal parasite, Albugo Candida II Can. J. Bot. 1983. V. 61. P. 20 042 014.
  295. Conrath U., Chen Z., Ricigliano J.K., Klessing D.F. Two inducer of plant defense responses 2,6-dichloroisonicotinic acid and salicylic acid inhibit catalase activity in tobacco // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 210−216.
  296. Creelman R.A., Muller J.E. Oligosaccharides, brassinolides and jasmonates: nontraditional regulators of plant growth, development and gene expression // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 1211−1223.
  297. Crute I.R., Pink D.A. Genetics and utilization of pathogen resistance in plants//Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1747−1755.
  298. Cui K.R., Xing G.S., Liu X.M. et al. Effect of hydrogen peroxide on somatic embryogenesis of Lycium barbarum L. // Plant Sci. 1999. V. 146. P. 9−16.
  299. Dalisay R.F. Enhanced peroxidase and its persistence in cucumder plants immunized against anthracnose by foliar inoculation with Colletotrichun lagenarium /I Ptytopath. 1989. V. 79. P.'l 150−1155.
  300. Darr D., Fridovich I. Irreversible inactivation of catalase by 3-amino-1,2,4-triazole // Biochem. Pharmacol. 1986. V. 35. P. 3642−3646.
  301. Davoine C. Le Deunff E., Ledger N. et al. Specific and constitutive expression of oxalate oxidase during the ageing of leaf sheaths of ryegrass stubble // Plant Cell Environment. 2001. V. 24. P. 1033−1043.
  302. De Jong A.J., Yakimova E.T., Kapchina V.M., Woltering E.J. A critical role for ethylene in hydrogen peroxide release during programmed cell death in tomato suspension cells // Planta. 2002. V. 214. P. 537−545.
  303. Delpierre N., Boccon-Gibod J. An extensive hairy root production precedes shoot regeneration in protoplast derived calli of cauliflower (Brassica oleracea var. botrytis) // Plant Cell Rep. 1992. V. 11. P. 351−354.
  304. Deunff E.L., Davione C., Danter C.L. Oxidative burst and expression germin/oxo genes during wounding of ryegrass leaf blades: comparison with senescence of leaf sheaths // Plant J. 2004. V. 38. P. 421−431.
  305. De Wit P.J. Elicitation of active resistance mechanisms // Biology and molecular biology of plant pathogen interactions / Berlin, Springer. 1986. P. 149 169.
  306. Dickinson S. Studies in the physiology of obligate parasitism. 5. Further differences between the uredospore germ tubes and hyphae of Puccinia triticina II Ann. Bot. 1955. V. 19. P. 161−171.
  307. Dickinson S. Studies in the physiology of obligate parasitism. 6. Directed growth // Phytopathol. Ztschr. 1969. Bd. 66. S. 38−49.
  308. Dickinson S. Studies in the physiology of obligate parasitism. 10. Induction of responses to a thigmotropic stimulus // Ibid. 1977. Bd. 89. S. 97−115.
  309. Diner A.M., Mott R.L., Amercon H.V. Cultured cells of white pine show genetic resistance to axenic blister rust hyphae // Science. 1984. V. 224. P. 407−408.
  310. Dixon R.A., Palva N.L. Stress-induced phenylpropanoid metabolism // Plant Cell. 1995. V. 7. P. 1085−1097.
  311. Dmaz C.L., Spaink H.P., Kijne J.W. Heterilogous rhizobial lipochitin oligosacharides and chitin oligomers induce contical cell division in red clover roots // Mol. Plant Micrube Interact. 2000. V. 13. P. 268−276.
  312. Doares S.H., Syrovets Т., Weiler E.W. Oligogalacturonides and chitosan active plant defensine genes through the octadecanoid pathway // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 4095−4098.
  313. Dong X. Finding the missing pieses in the pulse of plant disease resistance // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V. 92. P. 7137−7139.
  314. Douglas C.J. Phenylpropanoid metabolism and lignin biosynthes: from weeds to trees // Trends in plant science. 1996. V. 1. P. 171−178.
  315. Droge W. Free radicals in the physiological control of cell function // Physiol. Rev. 2002. V. 82. P. 47−95.
  316. Du H., Klessig D.E. Identification of a soluble, high affinity salicylic acid binding protein in tobacco // Plant Physiol. 1997. V. 113. P. 1319−1327.
  317. Dumas В., Freyssinet G., Pallet R.E. Tissue-specific expression of germin-like oxalate oxidase during development and fungal infection of barley seedlings//Plant Physiol. 1995. V. 107. P. 1091−1096.
  318. Durner J., Klessig D.F. Salicylic acid is a modulator of tobacco and mammalian catalase //J. Biol. Chem. 1996. V. 271. P. 28 492−28 501.
  319. Dyachok J.V., Tobin A.E., Price N.P.J., von Arnold S. Rhizobial Nod factors stimulate somatic embryo development in Picea abies II Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 290−297.
  320. Elfstrand M., Sitbon F., Lapierre C. et al. Altered lignin structure and resistance to pathogens in spi 2-expressing tobacco plants // Plant J. 2001. V. 19. P. 548−570.
  321. Elkonin L.A., Lopushanskaya R.F., Pakhomova N.V. Initiation and maintance of friable embryogenic callus of sorhum (Sorhum bicolor L) by amino acid I I Maydica. 1995. V. 40. P. 153−157.
  322. El Mansouri I., Mercado J.A., Santiago-Domenech N. et al. Biochemical and phenotypical characterization of transgenic tomato plants overexpressing a basic peroxidase // Physiol. Plant. 1999. V. 106. P. 355−362.
  323. Enyedi A.J., Yalpani N., Silverman P., Raskin I. Localization, conjugation and function of salicylic acid in tobacco during the hypersensitive reaction to tobacco mosaic virus // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. P. 2480−2484.
  324. Espelie K. E, Franceschi V. R, Kolattukudy P.E. Immunochemical localization and time course of appearance of anionic peroxidase associated with suberinization in wound-healing potato tuber tissue // Plant Physiol. 1986. V. 81. P. 48792.
  325. Faivre-Rampant O, Kevers C, Gaspar T. IAA- oxidase activity and auxin protectors in nonrooting, rac, mutant shoots of tobacco in vitro II Plant Sci. 2000. V. 153. P. 73−80.
  326. Fauth M, Schweizer P, Buchala A. et al. Cutin monomers and surface wax constituents elicit H202 in conditioned cucumber hypocotyl segments and enhance the activity of other H202 elicitors // Plant Physiol. 1998. V. 117. P. 13 731 380.
  327. Felle H. H, Kondorosi E, Kondorosi A. et al. Nod signal-induced plasma membrane potential changes in alfalfa root hairs are differently sensitive to structural modifications of the lipooligosaccharide // Plant J. 1995. V. 7. P. 939 947.
  328. Fletcher R. A, von Arnold S. Stimulation of cytokinins and chlorophyll synthesis in cucumber cotyledons by triadimefon // Physiol. Plant. 1986. V. 66. P. 197−201.
  329. Fletcher R. A, Hofstra G. Triadimefon a plant multiprotectant // Plant Cell Physiol. 1985. V. 26. P. 775−780.
  330. Fletcher R. A, Hofstra G. Triasoles as plant stress protectants // Highlights Agr. Res. 1987. V. 10. P. 12−14.
  331. Fukuda H. Trachealy element formation as a model system of cell differentiation // Int. Rev. Cytol. 1991. V. 136. P. 289−332.
  332. Ganesan V, Thomas G. Salicylic acid response in rice: influence of salicylic acid on H202 accumulation and oxidative stress // Plant Sci. 2001. V. 160. P. 1095−1106.
  333. Gao J, Hofstra G, Fletcher R.A. Anatomical changer induced by triazoles in wheat seedlings // Can. J. Bot. 1988. V. 66. P. 1178−1185.
  334. Garcia P.C., Rivero R.V., Ruiz J.M., Romero L. The role of fungicides in the physiology of higher plants: implications for defense responses // Bot. Rev. 2001. V. 69. P. 162−172.
  335. Geirger J. R., Rio В., Nandris D. Peroxidase production in tissue of the rubber tree following infection by root fungi // Physiol, and Mol. Plant Pathol. 1989. V. 34. P. 227−237.
  336. Gleddie S., Fassuliotis G., Keller W.A. Seterfield G. Somatic hybridization as a potential method of transferring nematode and mite resistance into eggplant HZ. Planzenzuchtg. 1985. V. 94. P. 348−351.
  337. Govrin E.V., Levine A. The hypersensitive response facilitates plant infection by the necrotrophic pathogen Botrytis cinerea II Curr. Biol. 2000. V. 10. P. 751−757.
  338. Grant J.J., Loake G.J. Role of reactive oxigen intermediates and cognate redox signaling in disease resistance // Plant Physiol. 2000. V. 124. P. 2531.
  339. Greenberg J.T. Programmed cell death: a way of life for plants // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 12 094−12 097.
  340. Grove S.N., Bracker C.E. Protoplasmic organization of hyphal tips among fungi //J. Bacterid. 1970. V. 104. P. 989−1009.
  341. Haberlach G.T., Budde A.D., Seqeira L., Helgeson J. Modification of disease resistance of tobacco callus tissues by cytokinins // Plant Physiol. 1978. V. 62. P.522−525.
  342. Hadwiger L.A. Host-parasite interaction: elicition of defence responses in plants with chitosan // EXS. 1999. V. 87. P. 185−200.
  343. Halliwell В. Lignin syntesis: the generation of hydrogen peroxides and superoxide by horseradish peroxidase and its stimulation by manganese and phenols//Planta. 1978. V. 140. P. 81−88.
  344. Hammerschmidt R., Kuc J. Lignification as a mechanism for induced systemic resistance of cucumber // Physiol. Mol. Plant Pathol. 1982. V. 20. P. 6170.
  345. Hammond-Kosack K.E., Gones J.D.G. Resistance gene development plant defense responses // Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1773 1791.
  346. Harder D.E., Chong J., Rohringer R., Kim W.K. Structure and cytochemistry of the walls of urediospores, germ tubes and appressoria of Puccinia graminis tritici II Can. J. Bot. 1986. V. 64. P. 476−485.
  347. Harris K.F., Maramorosh K. Vectors of plant pathogens. N.-Y.: Acad. Press, 1980.314 р.
  348. Harrison C.D., Mayo M.A. The use of protoplast in plant virus research / Use of tissue culture and protoplasts in plant pathology. N.-Y., Academic Press, 1983. P. 67−137.
  349. Heath M.C. The absence of active defence mechanisms in compatible host-pathogen interactions / Active defense mechanisms in plants. New-York, Plenum Press. 1982. P. 143−156.
  350. Heath I.B., Heath M.C. Microtubules and organelle movements in the rust fungus Uromyces phaseoli var. vignae // Cytobiologie. 1978. Bd. 16. S. 393 411.
  351. Heil M., Bostock R.M. Induced systemic resistance against pathogens in the context of induced plant defences // Ann. Bot. 2002. V. 89. P. 503−512.
  352. Heitefuss R. Defense reactions of plants to fungal pathogens: principles and perspectives, using powdery mildew on cereals as an example // Naturwissenschaften. 2001. Bd. 88. S. 273−283.
  353. Helgeson J. Studies of host-pathogen interaction in vitro II Use of tissue culture and protoplast in plant pathology. Sydney, Acad. Press. 1983. P. 938.
  354. Herms D.A., Mattson W.J. The dilemma of plants: to grow or to defend // Quarterly Review of Biol. 1992. V. 67. P. 283−335.
  355. Hewett P.A. Cereal seed-borne diseases changing control procedures // Adas Quarterly Review. 1974. V. 14. P. 41−52.
  356. Hippeli S., Heiser I., Elstner E.F. Activated oxygen and free oxygen radicals in Pathology: new insights and analogies between animals and plants // Plant Physiol. Biochem. 1999. V. 37. P. 167−178.
  357. Hirano S., Hayashi M., Murae K. Chitosan and derivates as activators of plant cell in tissues and seeds / Appl. Bioactive Polymeric Materials. N.-Y., Plenum Publ. Corp. 1989. P. 45−59.
  358. Hodges C.S. Modes of infection and spread of Fomes annousus II Ann. Rev. Phytopathol. 1969. V. 7. P. 247−266.
  359. Huckelhoven R., Kogel K.-H. Reactive oxygen intermediates in plant-microbe interactions: Who is who in powdery mildew resistance? // Planta. 2001. V. 216. P. 891−902.
  360. Hurkman W.J., Tanaka C.K. Germin gene expression is induced in wheat leaves by powdery mildew infection // Plant Physiol. 1996. V. 15. P. 512 515.
  361. Hutchinson M.J., Saxena P.K. Acetyl sal icy lie acid enhanceas and synchronized thidiazuron-induced somatic embryogenesis in geranium tissue cultures // Plant Cell Rep. 1996. V. 15. P. 512−515.
  362. Hvoslef-Eide A.K., Corke F.M.K. Embryogenesis specific protein changes in birch suspensions cultures // Plant Cell Tissue Organ Cult. 1997. V. 51. P. 35−41.
  363. Ingram D.S. Applications in plant pathology /Plant tissue and Cell Culture. Berkeley, Los Angeles, Univ. California Press. 1977. P. 743−759.
  364. Inui H., Kosaki H. Induction of chitinases in rice callus treated with chitin derivatives //Agric. Biol. Chem. 1991. V. 55. P. 3107−3109.
  365. Iten M., Hoffmann Т., Grill E. Receptors and signalling components of plant hormones // J. Recept. Signal Transduct. Res. 1999. V. 19. P. 41−58.
  366. Jabs T. Reactive oxygen intermediates as mediators of programmed cell death in plants and animals // Biochemical Pharmacology. 1999. V. 57. P. 231 245.
  367. Jang J.C., Tainter F.H. A tissue culture system for studing disease resistance to Phytophthora cinnamomi // Phytopathology. 1989. V. 79. P. 1221— 1224.
  368. Jordan V.W.L., Hutcheon J.A. Desease management in less-intensive, integrative wheat systems // Septoria on cereals: a stady of pathosystems. CABI Publishing, Wallingford, UK, 1999. P. 263−272.
  369. Joseph L.M., Koon T.T., Man W.S. Antifungal effects of hydrogen peroxide and peroxidase on spore germination and mycelial growth of Pseudocercospora species // Can. J. Bot. 1998. V. 76. P. 2119−2124.
  370. Karjalainen R., Lounatmaa K. Ultrastructure of penetration and colonization of wheat leaves by Septoria nodorum II Physiol, and Mol. Plant Pathol. 1986. V. 29. P. 263−270.
  371. Katz A., Thulke O.U., Conrath U. A benzothiadiazole primes parsley cells for augmented elicitation of defence responses // Plant Physiol. 1998. V. 117. P. 1333−1339.
  372. Kaur S., Malhotra A., Aujla S.S., Gill K.S. Coculture of wheat callus and cell suspension with Neovossia indica//Ind. J. Exp. Biol. 1990. V. 28. P. 193— 194.
  373. Kauss H., Jeblick W. Influence of salicylic acid on the induction of competence for H202 elicitation. Comparison of ergosterol with other elicitors // Plant Physiol. 1996. V. 111. P. 755−763.
  374. Kawano T. Roles of the reactive oxygen species-generating peroxidase reactions in plant defense and growth induction. // Plant Cell Rep. 2003. V. 21. P. 829−837.
  375. Kawano Т., Muto S. Mechanism of peroxidase actions for salicylic acid induced generation of active oxygen species and an increase in cytosolic calcium in tobacco cell suspension culture // Experimental Botany. 2000. V. 51. P. 685−693.
  376. Kazan K., Goulter K.C., Way H.M., Manners J.M. Expression of a pathogenesis related peroxidase of Stylosanthes humilis in transgenic tobacco and its effect on disease development // Plant Sci. 1998. V. 136. P. 207−217.
  377. Kedera C.J., Leslie J.F., Claflin I.F. Genetic diversity of Fusarium section Liseola (Gibberella fujikuroi) in individual maise stalks // Phythopathology. 1994. V. 84. P. 604−607.
  378. Keller H., Pamboukdjian N., Ponchet M. et al. Pathogen-induced elicitin production in transgenic tobacco generates a hypersensitive response and nonspecific disease resistance // Plant Cell. 1999. V. 11. P.223−235.
  379. Keon J.P., Hargreaves J.A. A cytological stady of the net blotch disease of barley caused by Pyrenophora teres И Physiol. Plant Pathol. 1983. V. 22. P. 321−329.
  380. Keon J.P., Hargreaves J.A. The response of barley leaf epidermal cells to infection by Septoria nodorum II New Phytol. 1984. V. 98. P. 387−389.
  381. Keon J., Bailey A., Hardreaves J. A group of expressed cDNA sequences from the wheat leaf blotch pathogen, Mycosphaeria graminicola (Septoria tritici) // Fungal Genet. Biol. 2000. V. 29. P. 118−133.
  382. Keppler L.D., Baker C.J. O2 initiated lipid peroxidation in a bacteria-induced hypersensitive reaction in tobacco cell suspensions // Phytopathology. 1989. V. 79. P. 555−562.
  383. Klink H., Verreet J.-A., Gleser H. Uberregionales Monitoring von Weizenkrankheitserregen // Getreide Mag. 1998. V. 4. P. 91−98.
  384. Kolattukudy P.E. Structure, biosynthesis and biodegradation of cutin and suberin // Annu Rev. Plant Physiol. 1981. V. 32. P. 539−567.
  385. Kolattukudy P.E. Biochemistry and function of cutin and suberin // Can. J. Bot. 1984. V. 62. P. 2918- 2933.
  386. Kombrink E., Hahlbrock K. Responses of cultures parsley cell to elicitors from phytophathogenic fungi // Plant Physiol. 1986. V. 81. P. 216−221.
  387. Kombrink E., Schmelzer E. The hypersensitive response and its role in local disease resistance //Europ. J. Plant Pathol. 2001. V. 107. P. 69−78.
  388. Kotsira V.P., Clonis Y.D. Oxalate oxidase from barley root: purification to homogeneity and study of some molecular, catalytic and binding properties // Arch. Biochem. Biophys. 1997. V. 340. P. 239−249.
  389. Kuc J. Induced immunity to plant disease // Biol. Sci. 1982. V. 32. P. 854−860.
  390. Kumar J., Huckelhoven R., Beckhove U. et al. A compromised Mlo pathway affects the response of barley to the necrotrophic fungus Bipolaris sorokiniana (teleomorph: Cochiobolus sativum) and its toxins // Phytopathology. 2001. V. 91. P. 127−133.
  391. Kumar J., Schafer P., Huckelhoven R. et al. Bipolaris sorokiniana, a cereal pathogen of global concern: Cytological and molecular approaches towards better control // Mol. Plant Pathol. 2002. V. 3. P. 185−195.
  392. Kutzner В., Buchenauer H. Effect of various triazole fungicides on growth and lipid metabolism of Fusarium moniliforme as well as on gibberellin contents in culture filtrates of the fungus // Z. Pflanzenkrank. Pflanzensch. 1986. B. 93. S. 597−607.
  393. Kuznetsov V.V. Plant under environmental stress // Acta Physiol. Plant. 2004. V. 26. P. 5−6.
  394. Laflamme P, Benhamou N., Bussieres G., Dessureault M. Differential effect of chitosan on root rot fungal pathogens in forest nurseries // Can. J. Bot. 1999. V. 77. P. 1460−1468.
  395. Lagrimini L. M, Gingas V., Finger T. et al. Characterization of antisense transformed plant deficient in the tobacco anionic peroxidase // Plant Physiol. 1997. V. 114. P. 1187−1196.
  396. Lamb C, Dixon R.A. The oxidative burst in plant disease resistance. // Ann. Rev. Plant Mol. Biol. 1997. V. 48. P. 251−275.
  397. Langenfeld-Heyser R, Gross K, Rilling T. Assmilattransport in Eschen // Assmilattransport in Baumen / Ed. Langenfeld-Heyser R. Stuttgart: Gustav F. Verlag. 2001. S. 68−94.
  398. Lane B. G, Dunwell J. M, Ray J.A. et al. Germin a protein marker of earlynplant development, is an oxalate oxidase // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. P. 12 239−12 242.
  399. Lane B.G. Oxalate, germin, and the extracellular matrix of higher plants //FASEB J. 1994. V.8. P. 294−301.
  400. Lane B.G. Oxalate oxidases and differentiating surface structure in wheat: germins // Biochem. J. 2000. V. 349. P. 309−321.
  401. Leardy H. S, Jones A. L, Sutton T.B. Effects of postinfection applications of ergosterol biosynthesis-inhibiting fungicides on lesion formation and pseudothecial development of Venturia inaequalis II Phytopathol. 1986. V. 76. P. 119−124.
  402. Lee H.-I, Leon J, Raskin I. Biosynthesis and metabolism of salicylic acid. // Proc. Natl. Acad. Sci. 1995. V. 92. P. 4076−4079.
  403. Lee S. H, Singh A. P, Chung G.C. Rapid accumulation of hydrogen peroxide in cucumber roots due to exposure to loe temperature appears to mediate decreases in water transport // J. Exp. Bot. 2004. V.55. P. 1733−1741.
  404. Legendre L., Rueter S., Heinstein P.F., Low P. S. Characterisation of the oligogalactouronide-induced oxidative burst in cultured soybean (Glicinea max) cells // Plant Physiol. 1993. V. 102. P. 233−240.
  405. Leon J., Lawton M.A., Raskin I. Hydrogen peroxide stimulates salicylic acid bosynthesis in tobacco // Plant Physiol. 2001. V. 108. P. 1673−1678.
  406. Levine A., Tenhaken R., Dixon R., Lamb С. H2O2 from the oxidative burst orchestrates the plant hypersensitive disease response // Cell. 1994. V. 79. P. 583−593.
  407. Leung J., Giraudat J. Abscisic acid signal transduction // Annu. Rev. Plant Mol. Biol. 1998. V. 49. P. 199−222.
  408. Link V.L., Hoffman M.S., Sinha A.K. et al. Biochemical evidence for the activation of distinct subsents of mithogen-activated protein kinases by voltage and defense-related stimuli // Plant Physiol. 2002. V. 128. P. 271−281.
  409. Low P. S., Merida J.R. The oxidative burst in plant defence: function and signal transduction//Physiol. Plantarum. 1996. V. 96. P. 533−542.
  410. Lyon G.D., Reglinski Т., Newton A.C. Novel disease control compounds: the potential to immunize plants against infection // Plant Pathol. 1995. V. 44. P. 407−427.
  411. Lyr H., Muller H.M. Induction of lipid peroxidation, a secondary mechanism of action in DMI and other fungicides? //Tagungsber. Akad. Landwirtschaftswiss. DDR. 1990. B. 291. S. 77−86.
  412. Lu H., Higgins V.J. Measurement of reactive oxygen species generated in planta in response to elicitor AVR9 of Cladosporium fulvum II Physiol, and Mol. Plant Pathol. 1998. V. 52. P. 35−51.
  413. Luderer R., Rivas S., Nurnverger T. et al. No evidence for binding between resistance gene product Cf-9 of tomato and avirulence gene product ANR9 of Cladosporium fulvum //Molecular Plant-Microbe Interactions. 2001. V. 14. P. 867−876.
  414. Luo J.-P., Jiang S.-T., Pan L.-J. Enhanced somatic embryogenesis by salicylic acid of Astragalus adsurgens Pall.: relationship with H2O2 production and H202-metabolizing enzyme activities // Plant Sci. 2001. V. 161. P. 125−132.
  415. MacAdam I., Nelson C.I. Quantitation of peroxidase activity during grass leaf development // Plant Physiol. 1989. V. 89. P. 103−108.
  416. Mader M., Amberg-Fischer V. Role of peroxidase in lignification of tobacco cells. 1. Oxidation of nicotinamide adenine dinucleotide and formation of hydrogen peroxide by cell wall peroxidases // Plant Physiol. 1982. V. 70. P. 11 281 131.
  417. Maheshwari R., Hildebrandt A.C., Allen P.J. The cytology of infection structure development in uredospore germ tubes of JJromyces phaseoli var. typica И Can. J. Bot. 1967. V. 45. P. 447−450.
  418. Mahalingam R., Fedoroff N. Stress response, cell death and signaling: the many faces of reactive oxygen species // Physiol. Plant. 2003. V. 119. P. 56−68.
  419. Margo P. Production of polysaccharide-degrading enzymes by Septoria nodorum in culture and during pathogenesis // Plant Sci. Lett. 1984. V. 37. P. 63−68.
  420. Mauch-Mani В., Metraux J.-P. Salicylic acid and systemic acquired resistance to pathogen attack // Annals Bot. 1998. V. 82. P. 535−540.
  421. Mayfield A.H. Efficacies of fungicides for control of stem rust of wheat // Austral. J. Exp. Agr. 1985. V. 25. P. 44043.
  422. Mazur S., Sczeponek A., Nawrocki J. Effectiveness of chitosan application in the control of some pathogens on cultivated plants / Progress on chemistry and application of chitin and its derivatives. V. 9. Lodz, Poland. 2003. P. 93−100.
  423. McDowell J. M., Dangl J. L. Signal transduction in the plant immunity response // Trends. Biochem. Sci. 2000. V. 25. P. 79−82.
  424. McKeen W.E. Fusarium in barley and corn roots // Can. J. Bot. 1977. V.55.P. 12−16.
  425. Medeghini B.P., Lorenzini G., Baruni F.R. et al. Cytochemical detection of cell wall bound peroxidase in rust infected broad bean leaves // J. Phytopathol. 1994. V. 140. P. 319−325.
  426. Mehdy M.C. Active oxygen species in plant defense against pathogens // Plant Physiol. 1994. V. 105. P. 467−472.
  427. Metraux J.-P., Signer H., Rayals J. et al. Increase in salicylic acid at the onset of systemic acquired resistance in cucumber // Science. 1990. V. 250. P. 1004−1006.
  428. Metraux J.-P. Systemic acquired resistance and salicylic acid: current state of knowledge // Eur. J. Plant Pathol. 2001. V. 107. P. 13−18.
  429. Minibayeva F., Gordon L.K., Kolesnikov O.P., Chasov A.V. Role of extracellular peroxidase in the superoxide production by wheat root cells // Protoplasma. 2001. V. 217. P. 125−128.
  430. Mittler R. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance // Trends in Plant Sci. 2002. V. 7. P. 405−410.
  431. Mo L.H., Egertsdotter U., Von Arnold S. Secretion of specific extracellular proteins by somatic embryos of Picea abies is dependent on embryo morhpology // Am. Bot. 1996. V. 77. P. 143−152.
  432. Moons A., Prinsen E., Van Montagu M. Antagonistic effect of abscisic acid and jasmonates on salt srtess-inducible transcripts in the rise roots // Plant Cell. 1997. V. 9. P. 2243−2259.
  433. Montesano M., Barder G., Palva T. Pathogen derived elicitors: searching for receptors in plants // Mol. Plant Pathol. 2003. V. 4. P. 71−79.
  434. Munnik T. Phosphatidic acid: an emerging plant lipid second messenger // Trends Plant Sci. 2001. V. 6. P. 227−233.
  435. Murakishi H., Lesney M., Carlson P. Protoplasts and plant viruses // Adv. Cell Cult. 1984. V. 3. P. 1−55.
  436. Murashige Т., Scoog F.A. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco cultures // Physiol. Plant. 1962. V. 15. P. 473−497.
  437. Muzzarelli R.A. A chitin. Oxford: Pergamon press, 1977. 309 p.
  438. Natsu S., Saito N., Kosaki H. et al. Stimulation of phenilalanine ammonia-lyase activity and lignification in rice calluses treated with chitin and chitosan and their derivatives // Biosci. Biotech. Biochem. 1994. V. 58. P. 552 553.
  439. Neill S.J., Decikan R., Clarke A. Hydrogene peroxide and nitric oxide as signaling molecules in plants // J. Exper. Botany. 2002. V. 53. P. 1237−1247.
  440. Neuenschwander U., Vernooij В., Friedrich L. et al. Is hydrogen peroxide a second messenger of salicylic acid in systemic acquired resistance // Plant J. 1995. V. 8. P. 227−233.
  441. Neumann D., Nover L., Parthier B. et al. Heat shock and other stress response systems of plants // Biol. Zentralbl. 1989. Bd. 108. S. 1−155.
  442. Niks R.E. Induced accessibility and enaccesibility of barley in cells seedling leaves inoculated with two leaf rust species // J. Phytopathol. 1989. V. 125. P. 296−308.
  443. Nonohay J.S., Mariath J.E.A., Winge H. Histological analysis of somatic embryogenesis in brazilian cultivars of barley, Hordeum vulgare, Poaceae // Plant Cell Rep. 1999. V. 18. P. 929−934.
  444. Newton A.C. Characteristic of strains of Septoria nodorum adapted to wheat or to barley // Plant Pathol. 1991. V. 39. P. 546−553.
  445. O’Donnell J.P., Jones J.B., Antoine F.R. et al. Ethylene-dependent salicylic acid regulates an expanded cell death response to a plant pathogen // Plant J. 2001. V. 25. P. 315−323.
  446. Olmos E., Piqueras A., Martinez-Solano J.R., Hellin E. The subcellular localization of peroxidase and the implication of oxidative stress in hyperhydrated leaves of regenerated carnation plants // Plant Science. 1997. V. 130. P. 97−105.
  447. Ozeki Y, Komamine A. Effects of growth regulators on the induction of anthocyanin synthesis in carrot suspension cultures // Plant Cell Physiol. 1986. V. 27. P. 1361−1368.
  448. Palmer C. L, Skinner W. Mycosphaerella graminicola: latens infection, crop devastation and genomics // Mol. Plant Pathol. 2002. V. 3. P. 6370.
  449. Parbery D.G. Trophism and the ecology of fungi associated with plants // Biol. Rev. 1996. V. 71. P. 473−527.
  450. Parry D. W, Jenkinson P, Mcleod L. Fusarium blight in small grain cereals-a-eview // Plant Pathol. 1995. V. 44. P. 207−238.
  451. Pastori G, Foyer C.H., Mullineaux P. Low-temperature-induced changes in the distribution of H202 and antioxidants between the bundle sheath and mesophyll cells of maize leaves //J. Exp. Bot. 2000. V. 51. P. 107−113.
  452. Pegg G.F. Pathogenic and non pathogenic microorganisms and insects // Encycl. Plant Physiol. V. 11. Hormonal regulation og development. Berlin, Springer. 1985. P. 599−623.
  453. Pegg M, Kuc J. Peroxidase-generated hydrogen peroxide as a source of antifungal activity in vitro and on tobacco leaf disks // Phytopathology. 1992. V. 82. P. 696−699.
  454. Perfect S. E, Green J.R. Infection structures of biotrophic and hemibiotrophic fungal plant pathogens // Mol. Plant Pathology. 2001. V. 2. P. 101 108.
  455. Pieta D, Pastucha A, Struszczyk H, Niekraszewicz A. The use chitosan on controlling bean (Phaseolus coccineus) diseases // Progress on chemistry and application of chitin and its derivatives. V. 9. Lodz, Poland. 2003. P. 120−127.
  456. Pinon J.D., Bossanyi G., Ola G.M. Changements ultrastructuraux observes dans les cellules de bie infecte par Puccinia graminis f. sp. tritici //Acta scihung. 1972. V. 7. P. 21−39.
  457. Potikha T.S., Collins C.C., Johnson D.I. et al. The involvement of hydrogen peroxide in the differentiation of secondary walls in cotton fibers // Plant Physiology. 1999. V. 119. P. 849−858.
  458. Pring R.J., Byrde R.J.W., Willetts H.J. An ultrastructural study of the infection of pear fruit by Monilinia fructigena // Physiol. Plant Pathol. 1981. V. 19. P. 1−6.
  459. Pringle R. Role of toxins in etiology root disease of wheat // Can. J. Bot. 1977. V. 55. P. 1801−1806.
  460. Quiroz-Figueroa F., Mendez-Zeel M., Larque-Saavedra A., Loyola-Vargas V.M. Picomolar concentrations of salicylates induce cellular growth and enchance somatic embryogenesis in Coffea arabica tissue culture // Plant Cell Rep. 2001. V. 2. P. 679−684.
  461. Ragazzi A., Moricca S., Dellavalle I., Gonnelli T. Behaviour of Fusarium oxysporum isolates from Angola on callus tissue of cotton // J. Plant Disease Protection. 1995. V. 102. P. 493−501.
  462. Ramonell K.M., Zhang В., Ewing R.M. Microarray analysis of chitin elicitation in Arabidopsis thaina//Mol. Plant Pathol. 2002. V. 3. P. 301−311.
  463. Ramputh A.I., Arnason J.T., Cass L., Simmonds J.A. Reduced herbivory of the European corn borer (Ostrinia nubilalis) on corn transformed with germin, a wheat oxalate oxidase gene // Plant Sci. 2002. V. 162. P. 431- 440.
  464. Rao M.V., Hale B.A., Ormrod D.P. Melioration of ozone-induced oxidative damage in wheat plants grown under high carbon dioxide. Role of antioxidant enzymes // Plant Physiol. 1995. V. 43. P. 421- 463.
  465. Raskin I. Role of salicylic asid in plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 43. P. 439−463.
  466. Rashid V.A. Induction of multiple shoots by thidiazuron from caryopsis cultures of minor millet and its effect on the regeneration of embryogenic callus culture // Plant Cell Rep. 2002. V. 21. P. 9−13.
  467. Rasmussen J.B., Scheffer R.P. Isolation and biological activities of four selective toxins from Helminthosporium carbonum II Plant Physiol. 1988. V. 86. P. 187−191.
  468. Reinert J., Yeoman M.M. Plant cell and tissue culture. A laboratore manual. Berlin, Springer-Verlag. 1982. 81 p.
  469. Reynolds T. Changes in RNA, protein, and translatable messenger RNA synthesis and accumulation during adventive organogenesis in somatic tissue cultures of Solarium carolinense L. // Plant Sci. 1990. V. 65. P. 77−85.
  470. Ride J.P. The effect of induced lignification on the resistance of wheat cell walls to fungal degradation // Physiol. Plant Pathol. V. 16. P. 187−196.
  471. Roberson R.W., Filler M.S., Grabski K. Effects of the demethylase inhibitor cyproconazole on hyphal tip cells of Sclerotium rolfsii //Pestic. Biochem. Physiol. 1989. V. 34. P. 130−142.
  472. Roby D., Gabelle A., Toppan A. Chitin oligomers as elicitors of chitinase activity in melon plants // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1987. V. 143. P. 885−882.
  473. Robertson A.I. The poisoning of roots of Zea mays by nickel ions, and the protection afforded by magnesium and calcium // New Phytol. 1985. V.100. P. 173−189.
  474. Rock C. Pathways to abscisic acid regulated gene expression // New Phytol. 2000. V. 148. P. 357−396.
  475. Rodriquer A.A., Grumberg K.A., Naleisnik E.L. et al. Reactive oxygen species in the elongation zone of maize leaves are necessary for leaf extension // Plant Physiol. 2002. V. 129. P. 1627−1632.
  476. Roming R.W., Caldwell R.V. Exclusion of Puccinia rubigovera f. sp. tritici by stomate of wheat steams and leaf sheaths // Phytopathology. 1956. V. 46. P. 24−25.
  477. Roming R.W., Caldwell R.V. Stomatal exclusion of Puccinia recondita by wheat peduncles and sheaths // Ibid. 1964. V. 54. P. 214−218.
  478. Ros Barcelo A. Hydrogen peroxide production is a general property of the lignifying xylem from vascular plants // Annals Botany. 1998. V. 82. P. 97 103.
  479. Roustan J.P., Latche A., Fallot J. Inhibition of ethylene production and stimulation of carrot somatic embryogenesis by salicylic acid // Biol. Plant. 2002. V. 32. P. 273−276.
  480. Ryals J.A., Neuenschwander U.H., Willits M.G. et al. Systemic acquired resistance // Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1809−1819.
  481. Ryals J.A., Uknes S., Ward E. Systemic acquired resistance // Plant Physiol. 1994. V. 104. P. 1109−1112.
  482. Sallans B.J. Root rots of cereals // Rot Rev. 1985. V. 31. P. 505−536.
  483. Saini R.S., Chawla H.R., Wagle D.S. Lypoxygenase activity, total lipid content and leaf mass leaching pattern of wheat leaves inoculated with brown rust Puccinia recondita II Biol. Plant. 1989. V. 31. P. 207−212.
  484. Sathiyambama M., Balasubramanian R. Chitosan inducts resistance components in Aracis hypogaea against leaf rust caused by Puccinia arachidis // Crop Protect. 1998. V.17. P. 307−313.
  485. Schweizer P., Christoffel A., Dudler R. Transient expression of members of the germin-like gene family in epidermal cells of wheat confers disease resistance // Plant J. 1999. V. 20. P. 541−552.
  486. Shakirova F.M., Sakhabutdinova A.R., Bezrukova M.V. et al. Changes in hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity // Plant Sci. 2003. V. 164. P. 317−322.
  487. Sherwood R.T. Pathological anatomy of Dactylis glomerata infected by Stagonospora arenaria И Phytopathology. 1982. V. 72. P. 146−150.
  488. Schultze M., Kondorosi E., Ratet P. et al. Cell and molecular biology of Rhizobium-plant interactions // Int. Rev. Cytol. 1994. V. 156. P. 1−75.
  489. Sidhu G.S. Sexual and parasexual variability in soil fungi with special reference of Fusarium moniliforme II Phytopathology. 1983. V. 73. P. 952−955.
  490. Sijmons P.C., Kolattukudy P.E., Bienfait H.F. Iron deficiency decreases suberization in bean roots through a decrease in suberin-specific peroxidase activity // Plant Physiol. 1985. V. 78. P. 115−120.
  491. Skiner W., Keon J., Hardreaves J. Gene information for fungal plant pathogens from expressed sequences // Curr. Opin. Microbiol. 2001. V. 4. P. 381 386.
  492. Smith J.A., Metraux J.-P. Pseudomonas syringae pv. syringae induces systemic resistance to Pyricularia oryzae in rice // Physiol. Mol. Plant Pathol. 1991. V. 39. P. 451−461.
  493. Staxen I., Pical C., Montgomery L.T. et al. Abscisic acid induces oscillations in guard-cell cytosolic free calcium that involve phosphoinositide-specific phospholilase С // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1999. V. 96. P. 1779- 1784.
  494. Stubbs R.W., Plotnikova J.M. Uredospore germination and tube peretration of Puccinia striiformis in seedling leaves of resistant and susceptible wheat varieties // Netherlands J. plant Pathol. 1972. V. 78. P. 258−262.
  495. Suprasanna P., Desai N.S., Nishanth G. et al. Differential gene expression in embryogenic, non-embryogenic and desiccation induced cultures of sugarcane // Sugar Tech. 2004. V. 6. P. 305−309.
  496. Swinburne T.R. Infection of wheat by Tilletia caries. The casual organism of bunt // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1963. V. 46. P. 145−156.
  497. Takahashi H., Chen Z., Liu Y., Klessig D.F. Development of necrosis and activation of disease resistance in transgenic tobacco plants with several reduced catalase levels // Plant J. 1997. V. 11. P. 993−1005.
  498. Thordal-Chrustensen H., Smedegaard-apetersen V. Correlation between induced resistance and host fluorescence in barley inoculated with Erysiphe graminis II J. Phytopathol. 1988. V. 123. P. 34−46.
  499. Thordal-Christensen H., Zhang Z., Wei Y., Collinge D.B. Subcellular localisation of H2O2 in plants. H202 accumulation in papillae and hypersensitive response during the barley-powdey mildew interaction // Plant J. 1997. V. 11. P. 1187−1194.
  500. Tian M., Gu Q., Zhu M. The involvement of hydrogen peroxide and antioxidant enzymes in the process of shoot organogenesis of strawberry callus // Plant Science. 2003. V. 165. P. 701−707.
  501. Thulke O., Conrath U. Salicylic acid has a dual role in the activation of defence-related genes in parsley // Plant J. 1997/ V. l 1. P. 1187−1194.
  502. Toedt J.M., Braswell E.H., Schuster T.M. et al. Biophysical characterization of designed TMV coat protein mutant, R46G, that elicits a
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!