Ранние этапы взаимодействия агробактерий с растением

ВЫВОДЫ.

1. Впервые охарактеризован этап прикрепления агробактерий к поверхности корня и корневого волоска пшеницы. Нарушения синтеза? глюканов, жгутика, рикадгезина, приводят к значительному снижению прикрепления агробактерий к поверхности корневых волосков пшеницы. Прикрепление агробактерий к поверхности корня и кончиков корневых волосков пшеницы является кальций-независимым процессом.

2. Т-пили, состоящие из VirB2 белка, локализованы на одном из полюсов клетокA. tumefaciens в виде пучка тонких гибких фибрилл. VirBl белок образует агрегаты и пилеподобные структуры на поверхности агробактерий. VirB2 и VirBl белки не обнаруживаются в составе контактных структур у скрещивающихся агробактерий. v/r-зависимые поверхностные белки агробактерий участвуют в процессе прикрепления к поверхности корневого волоска пшеницы.

3. TraR мутация у A. tumefaciens приводит к утрате поверхностных белков с м.м. 63,67 кД, и пилеподобных экстраклеточных структур. Установлена связь подвижности клеток в полужидком агаре с синтезом ira-зависимых экстраклеточных структур у агробактерий.

4. Индукция vir генов у агробактерий увеличивает частоту переноса плазмиды pTd33 между агробактериями. Выявлен сходный температурный оптимум (19−22 °С) для частоты переноса плазмиды pTd33 и экспрессии экстраклеточных пилей у агробактерий.

5. Факторы, влияющие на состояние устьиц и цитоскелета растительной клетки (кратковременное охлаждение, обработка колхицином, абсцизовой кислотой, ЭГТА, инкубация в темноте) приводит к закрытию листовых устьиц проростков табака и снижает частоту переноса Т-ДНК.

6. Установлен новый тип ассоциативных взаимоотношений непатогенных агробактерий (A.radiobacter 5 D-1) с растениями. Из корней пшеницы выделен ассоциативный штамм 5 D-1, идентифицированный как A.radiobacter. Инокуляция подсолнечника и пшеницы суспензией клеток A. radiobacter 5 D-1 приводит к увеличению длины, веса надземной части и корней растений. A. radiobacter 5 D-1 продуцирует ИУК, колонизирует корни растений, обладает антиопухолевой активностью, вызванной A.tumefaciens.

Благодарности.

Матвеева В.Ю. я благодарю за совместные дискуссии, послуживший отправной точкой для выполнения работы по выделению ассоциативных бактерий. Солововой Г. К. и Курбановой И. В. я признателен за многолетнее сотрудничество и участие в проведении экспериментов по прикреплению, инокуляции, переносу плазмид у агробактерий, приготовление препаратов для микроскопии и проведении экспериментов по трансформации табака. Панасенко В. И. и Кацы Е. И., Богатырева В. А. я благодарю за полезные замечания и дискуссию при прочтении диссертации. Игнатову В. В. и Ученому Совету ИБФРМ РАН автор признателен за предоставленную в 1988 г возможность начать и развивать в стенах ИБФРМ РАН идеи, отображенные в диссертации.

Горбаню В.В. и Ковлер JI. приношу благодарность за вклад в работу по идентификации агробактерий методом гибридизации тотальной ДНК. Кривопалову Ю. В. автор признателен за многолетний, непростой труд анализа микроскопических объектов на сканирующем микроскопе. Остудину Н. я благодарен за возможность работы на трансмиссионном микроскопе и помощь в получении качественных снимков на оборудовании, которое могло быть оживлено только им одним. Я благодарю за помощь, оказанную при проведении экспериментов методом ацетиленредукции сотрудников группы хроматографии ИБФРМ РАН Гоголеву Ю. В., Шехтман М. И., Макарова O.E. Определение содержания 15N2 в образцах было выполнено Костериным П. В. Я благодарю В. А. Великова за работу по получению и анализу транспозонных мутантов по хемотаксису и полезные дискуссии по проблемам переноса агробактериальной Т-ДНК. Я признателен Карпуниной JI.B. за участие в экспериментах по агглютинации эритроцитов. Иванова И. Б., Егоренков Д., Евтушенко И .Я., Шустова Е., участвовали в экспериментах по определению ИУК.' Тугарова A.B., Плотко H.A. приложили много усилий по электрофоретическому анализу vir, ira белков агробактерий. Кроме того, Тугарова А. принимала участие в создании компьютерной базы данных, что значительно ускорило работу над статьями и диссертацией. Я признателен сотрудникам библиотеки ИБФРМ РАН Гусевой Н. Я. и Черваковой Т. В и сотруднице ОНТИ ИБФРМ РАН Стародубовой В. В. за многолетнюю помощь при работе с литературой. Каневская C.B., Масевкина Г. Г. и Тычинин Д. в разные годы приложили много усилий по переводу на английский язык экспериментальных материалов, отраженных в диссертации. Чумакову Е. М. автор признателен за помощь при оформлении некоторых рисунков. Мельникова А. Г я благодарю за помощь в обеспечении работы компьютеров. Я признателен B. Hohn (Швейцария), за предоставленные штаммы, оттиски статей и помощь во время пребывания в Институте Фридриха Мишера (Швейцария). C. Kennedy я признателен за опыт, приобретенный за время работы в университете Аризоны (Туксон, США) при поиске nif генов у агробактерий. С. Baron (Германия) я признателен за предоставленный набор антител к vir белкам. За помощь при изготовлении фотографических снимков я благодарен Гурьеву А. Ю, Поливоде Е., и Богатыреву В. А. Дыкману J1.A. и Богатыреву В. В. я признателен за синтез и предоставление различных препаратов коллоидного золота, без которых трудно было бы получить многие.

ГЛАВА VI.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

А^оЪас1егтт Ште/ааетбактерия, способная генетически трансформировать растительную клетку. Агробактериальная Т-ДНК является удобным инструментом для переноса новых генов в растение, а сам процесс переноса — хорошей моделью для изучения фундаментальных процессов биологии и генетики. Агробактериальная трансформация стала основой целого направления сельскохозяйственной биотехнологии — получение трансгенных растений с новыми свойствами.

Однако, несмотря на практическое значение трансгенных растений, площадь которых в настоящее время превышает 40 млн. га и удобство изучения взаимоотношений агробактерий с растением как модели, многие процессы, посредством которых Т-ДНК транспортируется из А^оЪас1епит в растение, не изучены.

Кроме патогенной и сапрофитной форм существования у агробактерий обнаружено ассоциированное с растениями существование (Чумаков с соавт., 1992). Но механизм формирования ассоциации и такого типа взаимоотношений агробактерий с растением совершенно неясен.

В рамках данной работы рассмотрены ранние этапы взаимоотношений агробактерий с растением. Прикрепление патогенных агробактерий и ризобий к поверхности двудольных растений играет важную роль в процессе инфекции, хотя, возможно, служит только запуском процесса успешного инфицирования. Процесс переноса, как Т-ДНК, так и плазмидной ДНК требует прямого контакта партнеров, и нарушения прикрепления негативно сказываются на успешности переноса ДНК. На основании анализа литературы выявлены наименее изученные ключевые моменты взаимодействия агробактерий и растений. К ним можно отнести прикрепление бактериальной клетки к поверхности растительной клетки, формирование канала для переноса Т-ДНК и белка.

Процесс прикрепления бактерий к поверхности растительной клетки однодольных растений не исследован, какие поверхностные структуры агробактерий обеспечивают ранние этапы взаимодействия с растительной клеткой также неясно, что и было предметом данного исследования.

Экспериментальные факты, полученные в ходе нашей работы, свидетельствует о том, что высказываемая ранее точка зрения о невозможности успешного прикрепления агробактерий и ризобий к поверхности однодольных растений требует коррекции.

На основании экспериментальных данных проведен сравнительный анализ сходства и различий ранних этапов агробактериальной трансформации двудольных и однодольных растений.

В данной работе впервые описан ряд закономерностей прикрепления непатогенных агробактерий к поверхности однодольных растений.

Прикрепление клеток А. гасИоЪаМег 50−1 к поверхности корня пшеницы наиболее интенсивно происходит в течение 40 минут после инокуляции, начинаясь с первых секунд, после начала совместной инкубации. Клетки не располагаются равномерно по поверхности корня, а локализованы в отдельных местах. Заселение непатогенными агробактериями поверхности корневого волоска пшеницы, включая формирование агрегатов на кончике корневого волоска, было внешне сходным с заселением патогенными агробактериями кончика корневого волоска гороха. Формирование агрегатов из агробактериальных клеток (класс' прикрепления 4) наблюдается чаще на кончиках молодых активно растущих волосков.

В течение первого, часа после инокуляции на поверхности корня и корневых волосков пшеницы начинается образование агрегатов из агробактериальных клеток и внеклеточных фибрилл у агробактерий. С помощью транспозонового мутагенеза получен ряд мутантов, у которых отсутствовало (или было повышенным) свечение на среде с калькофлуором. Обнаружена положительная корреляция между продукцией калькофлуорсвязывающих.

343 полисахаридов и способностью колонизовать поверхность корня пшеницы и риса. Потеря способности продуцировать калькофлуорсвязывающий полисахарид у агробактерий сопровождается утратой синтеза внеклеточных фибрилл при колонизации корней пшеницы.

Внеклеточные целлюлозные фибриллы, наблюдаемые нами при взаимодействии агробактерий с поверхностью однодольных растений, по внешнему виду напоминают внеклеточные фибриллы патогенных агробактерий при колонизации поверхности двудольных растений. По нашим данным при колонизации корней пшеницы, уже спустя 1530 минут после начала совместной инкубации, небольшая часть прикрепившихся к поверхности корня пшеницы агробактериальных клеток имеют нитевидные структуры, связывающие поверхность бактериальной и растительной клеток. Спустя 120 минут количество бактерий, имеющих фибриллы, возрастает, и в отдельных местах фибриллы образуют подобие сети, формируя агрегаты из клеток. В этой работе нами впервые продемонстрировано, что агрегаты из клеток агробактерий формируются на кончиках корневых волосков пшеницы и клетки в агрегатах соединены с помощью фибрилл. Образование агрегатов на кончиках корневых волосков пшеницы и гороха может указывать на сходный механизм колонизации агробактериями поверхности однодольных и двудольных растений.

На основании анализа блокировки целлюлазой прикрепления штамма А. гасИоЬас (ег 5Б-1 и отсутствия способности его транспозоновых мутантов прикрепляться, продуцировать внеклеточные полисахариды на среде с калькофлуором и внеклеточные структуры при колонизации корней мы приходим к заключению, что наблюдаемые нами фибриллы агробактерий состоят из остатков Р-глюканов и могут быть отнесены к целлюлозным фибриллам.

Участие липополисахаридов агробактерий в прикреплении к поверхности корня пшенице не установлено. С помощью предобработки корней пшеницы препаратом О-специфического.

344 липополисахарида (ЛПС) А. гасИоЬас (ег и предобработки агробактерий антителами на ЛПС показано, что ЛПС не участвует в прикреплении к поверхности корня пшеницы.

Число прикрепившихся непатогенных агробактерий к корням пшеницы значительно снижается после предобработки бактерий веществами, действующими на белки (трипсин и глутаровый альдегид).

Данные литературы свидетельствуют о том, что нарушения в генах сИуА/сИуВ агробактерий приводят к нарушениям способности агробактерий к прикреплению к кончикам корневых волосков гороха, синтезу жгутиков, активной формы рикадгезина, переноса плазмид между агробактериями и чувствительности к фагам.

В наших экспериментах мутация по гену сНуВ, недостоверно снижала прикрепление А. Ште/аыет к кончикам корневых волосков пшеницы. Прикрепление агробактерий к поверхности кончиков корневых волосков пшеницы не зависело от наличия кальция в такой степени как при прикреплении к кончикам корневых волосков двудольных растений. На основании проведенных экспериментов по влиянию ионов кальция в среде выращивания и буфере при совместной инкубации, а также анализа прикрепления мутанта по гену сЬуВ, кодирующему синтез активной формы рикадгезина, мы заключаем, что рикадгезин не принимает участие в прикреплении агробактерий к поверхности корня и корневого волоска пшеницы.

Проверка способности некоторых моносахаров и олигосахаридов блокировать прикрепление агробактерий к поверхности корня пшеницы показала, что поверхностные белки типа лектинов агробактерий не играют значительной роли в процессе прикрепления. Мы показали, что, наблюдаемые нами при контакте непатогенных агробактерий с поверхностью корня пшеницы фибриллы, не являются жгутиками. Установлено, что клетки мутанта А. гас1юЬас1ег 5 0−1, у которых отсутствует жгутик, обладают пониженной способностью прикрепляться к поверхности корня и корневого волоска пшеницы.

В литературе имеются противоречивые сведения о связи процесса прикрепления к поверхности растительной клетки и конъюгативного переноса ДНК у агробактерий. Предметом нашего исследования был первоначальный контакт агробактерий с реципиентной (растительной и агробактериальной) клеткой, осуществляемый при участии у/>-зависимых мембранных и экстраклеточных структур.

Нами впервые проанализировано влияние индукции генов вирулентности на способность патогенных агробактерий к прикреплению к поверхности корня и кончиков корневых волосков пшеницы.

Обнаружено, что прединкубация суспензии агробактерий с экстрактом из неповрежденных листьев каланхое стимулирует прикрепление АЛите/аает как к корневым волоскам пшеницы, так и к эпидермису корня пшеницы. Экстракт из предварительно поврежденных листьев стимулировал прикрепление в большей степени, по сравнению с экстрактом из нативных листьев. Прединкубация агробактериальной суспензии с 0,1% водным раствором каланхое вызывала образование экстраклеточных фибрилл у штамма С58 А. Ште/ааепя, несущего И плазмиду. Подобные фибриллы отсутствовали у штамма ЬВА288, без Тл плазмиды.

В рамках данной работы рассмотрено участие у/У-зависимых пилей в образовании контакта у скрещивающихся агробактерий, прикреплении к поверхности корня пшеницы и кончиков корневых волосков пшеницы.

С помощью иммуномикроскопии нами получены прямые доказательства локализации меченых коллоидным золотом антител к %В2 белку на длинных пилеподобных структурах, которые обнаруживаются на поверхности клеток АЛите/аает обработанных ацетосирингоном. У агробактерий, выращенных в условиях, исключающих синтез у/У-зависимых пилей, впервые описано образование тонких прямых фибрилл.

Можно предположить, что пили, как выступающие за пределы клетки надмембранные структуры, могут принимать участие в процессе первичного контакта с поверхностью растительной клетки.

Однако, достоверная разница в прикреплении контрольных (необработанных ацетосирингоном) клеток A. tnmefaciens С58 и предварительно выращенных и обработанных ацетосирингоном бактериальных клеток к корням и корневым волоскам пшеницы не обнаружена. Наблюдается некоторый стимулирующий прикрепление эффект от обработки ацетосирингоном агробактерий во время инкубации с корнями при температуре 19−22 °С. У агробактерий с индуцированными при 25 °C vir генами способность прикрепляться к кончикам корневых волосков пшеницы была оптимальной при температуре ко-инкубации 19−22 °С.

Таким образом, на основании полученных нами результатов молено заключить, что vir-зависимые поверхностные белки агробактерий не принимают значительного участия в прикреплении к корням, но не к к корневым волоскам пшеницы.

На основании проведенных экспериментов мы установили стимулирующее влияние обработки донорных клеток ацетосирингоном и пониженного pH на частоту переноса плазмиды pTd33 между агробактериями. Воздействие на до норную клетку (центрифугирование, обработка блокиратором дыхания (С1ССР), SDS) перед скрещиванием и повышенная температура скрещивания (31 °С) приводит к значительному снижению частоты переноса плазмиды pTd33 между агробактериями. Концентрация кальция в буфере для скрещивания В: пределах (до 0,1 М) была несущественным фактором для процесса переноса плазмиды pTd33. Обработка донорных клеток раствором ЭДТА значительно снижала частоту переноса. Полученные экспериментальные данные позволяют предполагать, что обработка может нарушать экспрессию или конформацию поверхностных молекул (структур) агробактерий, которые участвуют в процессе переноса плазмидной ДНК между агробактериями.

Vir, /га-независимые (адгезивные) пили, кодируемые хромосомой агробактерий, были открыты более десяти лет, но их функция не установлена. F/r-зависимые пили агробактерий открыты пять лет назад и была показана их роль в конъюгативном переносе плазмид между агробактериями, переносе Т-ДНК в растение. Но конкретная функция пилей не установлена. Имеющиеся литературные данные позволяют предположить два механизма переноса Т-ДНК и белка VirE2 — через мембранную пору и через внутренний канал пили.

На основании имеющихся литературных и собственных экспериментальных данных предложено несколько гипотетических моделей контакта мембран партнеров при переносе I.

Т-ДНК из агробактерий в реципиентную клетку.

С помощью разработанной методики из корневой зоны пшеницы выделен ряд ризосферных штаммов, в том числе штамм 5 D-1, который идентифицирован как A.radiobacter. Разработан экспресс-тест определения ассоциированности бактерий с растением и система количественных критериев оценки ассоциированности ризосферных бактерий. Штамм 5 D-1 обладает признаками ассоциативного партнера для растений, хорошо колонизует корни, обладает фитогормональной активностью. Обнаружен высокий положительный эффект от инокуляции штаммом 5 D-1 при обработке подсолнечника и относительно низкий при инокуляции пшеницы. Штамм 5 D-1 способен повторно выделяться из корней после поверхностной стерилизации, но структурные гены нитрогеназы у него нами не выявлены.

1. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. // В кн: Молекулярная биология клетки / М.Мир.1987. 296 с.

2. Баканчикова Т. И., Мякиньков А. Г., Павлова-Иванова Л.К., Майсурян А. Н. Участие генов хемотаксиса в установлении ассоциативных взаимоотношений между Azospirilhm и пшеницей // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 1989. № 4.С.24−32.

3. Баландро Ж. П., Доммерг И. Р., Умаров М. М. Определение несимбиотической азотфиксации в ризосфере риса ацетиленовым методом // Повышение плодородия почв рисовых полей. М.Наука. 1977.С. 107−116.

4. Боровягин В. Л., Василенко И. А., Сабельников А. Г., Тарховский Ю. С. Полиморфные превращения в клеточных мембранах грамотрицательных бактерий // Биол. мембраны. 1987. Т. 4 С. 624−638.

5. Ботаника. Том 1. Анатомия и морфология//М. ГУПИ. 1958. 419 С. (с.112).

6. Бурьянов Я. И. Успехи и перспективы генно-инженерной биотехнологии растений //Физиология растений. 1999. Т.46. №.6.С.930−944.

7. Бурьянов Я. И., Кадо К. И. Стратегия создания трансгенных растений с устойчивостью к фитопатогенам и вредителям //Биоорганическая химия. 1999. Т.25.№ 12.С.903−910.

8. Беликов В. А., Бурьянов Я. И. Образование делеционных производных Ti плазмиды pGV3850 при конъюгативном переносе//Генетика. 1998. Т. 34. №. 8.С.1056−1062.

9. Гамалей Ю. В. Эндоплазматическая сеть растений. Происхождение, структура и функции //С-Петербург. 1994. 80 С.

10. Ю. Гамалей Ю. В. Отток фотоассимилятов в природных и экспериментальных условиях //Физиология растений. 1996.Т. 44. №.1. С. 115−137.

11. Гамалей Ю. В. Происхождение и локализация органелл растений //Физиология растений.1997.Т. 43. №.3. С.328−343.

12. Гамбурге К. З., Рекославская Н. Ш., Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений //Новосибирск: Наука. 1990. 241 с.

13. Генетика симбиотической азотфиксации с основами селекции / Ред. Тихонович И. А., Проворов H.A. Санкт-Петербург. Наука. 1998. 194 с.

14. Глеба Ю. Ю. Биотехнология растений // Соросовский образовательный журнал.1998. № 6. С.3−8.

15. Годова В., Нице Л. К., Моторина М. Ф. Фотосинтез растений и несимбиотическая фиксация азота в корневой зоне // Изв. ТСХА 1983. вып. 1. С. 117−131.

16. Гринюс Л. Л. Транспорт макромолекул у бактерий // М., Наука. 1986. 240 с.

17. Грингауз O.K., Негрецкий В. А, Соколов О. И. Идентификация F-актина растений фаллоидин-коллоидным золотом. 2. Клетки и субклеточные препараты // Физиология растений 1998. Т.45. С.235−240.352.

18. Гусева И. С. Развитие микроорганизмов на поверхности почвы // Дисс. канд.биол.наук. М. МГУ. 1978. 130 с.

19. Дейнеко Е. В. О потенциальных возможностях использования Т-ДНК почвенных бактерий//ВестникВОГИС. 1998.№ 4. С.12−14.

20. Дрейпер Дж., Скотт Р., Армитидж Ф., и др. Генная инженерия растений. Лабораторное руководство. М. Мир. 1991. 408 с.

21. Егорова Е. М., Чизмаджев Ю. А. Взаимодействие липосом с плоскими бислоями // Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Биофизика мембран. 1984. Т. 3. С. 123−174.

22. Ефремова Т. Н., Эндер Н. А., Брудная М. С., Комиссарчик Я. Ю., Хайтлина С. Ю. Реорганизация актиновых филаментов в клетках НЕР-2 в результате инвазии бактерий Escherichia coli А2 // Цитология. 1998. Т.40.№.6. С.524−527.

23. Жакоб Ф., Бреннер С., Кузин Ф. В кн: Синтез и структура нуклеиновых кислот. // М.: Мир. 1966. С. 323−368.

24. Захарченко Н. С., Каляева М. А., Бурьянов Я. И. Индуцирование процессинга агробактериальной Т-ДНК эксудатами однодольных растений // Физиология растений // 1999. Т.46.С. 266−275.

25. Зверева С. Д., Романов Г. А. Репортерные гены для генетической инженерии растений: характеристика и методы тестирования //Физиология растений. 2000. Том. 47.№ 3. С.479−488.

26. Звягинцев ДГ. Почва и микроорганизмы. М. Изд-во МГУ. 1987. 256 с.

27. Зеленин А. В., Биндрина И. Н. Ранние этапы слияния клеток // В кн: Итоги науки и техники. Биофизика мембран. М. ВИНИТИ. 1984. Т. 3. С. 218−242.

28. Иванова Л. Ю., Емцев В. Т., Чумаков М. И. Модифицированный метод выделения ассоциативных азотфиксирующих бактерий из-под злаков //Известия ТСХА. 1987. №. 3. С.112−115.

29. Кагава Я. Биомембраны // М. Высшая школа. 1985. 303 с.

30. Кан Хон Гун Разработка способов переноса генов для сапрофитной азотфиксирующей бактерии Agrobacterium sp5D-l //Дисс. на соиск. уч. степ, канд.биол.наук. М. 1990.129. с.

31. Каменева С. В., Муронец Е. М., Митронова Т. Н., Белавина Н. Е., С. В. Шестаков. Генетика бактерии Agrobacterium radiobacter 5D-1 способной к ассоциативной азотфиксации // Труды ВНИИСХМ. 1991. Т.61. С. 100−109.

32. Клевенская И. Л., Родынюк И. С. Клубеньковоподобные образования травянистых растений Сибири. 1987. Изд-во Наука. Новосибирск. 296 с.

33. Клесов А. А. Биохимия и энзимология гидролиза целлюлозы // Биохимия.1990.Т.55.Вып.10.С. 1731−1765.

34. Клячко H.JI. Белоксинтезирующий аппарат и цитоскелет// Физиология растений. 1998. Т. 45.С. 208−217.

35. КравченкоJI.B. Роль корневых экзометаболитов в интеграции микроорганизмов с растениями //Автореф. дисс. на соиск.уч. степ. докт. биол. наук. М.2000. 51с.

36. Куликова A.JI. Количество и формы актина в проводящих тканях Heracleum sosnovsky I //Физиология растений. 1986. Т. 33.С.629−636.

37. Курбанова' И.В., Соловова Г. К., Эльконин Л. В., Хон Б., Чумаков М. И. Агробактериальная трансформация однодольных растений // Изучение генома и генетическая трансформация растений. 23−27 августа 1999, Иркутск, Материалы Всероссийского симпозиума. С. 15.

38. Курбанова И. В., Чумаков М. И. Образование внеклеточных структур, содержащих VirB2 белки в скрещивающихся культурах агробактерий // Биологические мембраны 2000. Т. 17. №.1. С.107−111.

39. Курочкина С. Д., Картель H.A. Генетическая трансформация растений, процессы рекомбинации и регуляции экспрессии генов у трансгенных растений //Молекулярная генетика, микробиология и вирусология //1998. Т. 4. С.3−12.

40. Кучук Н. В. Генетическая трансформация высших растений, опосредованная бактериями из рода Agrob acterium. II Успехи современной биологии. 1997. Т.117. вып.6. С.645−650.

41. Ли А., Тинланд Б. Интеграция Т-ДНК в геном растений: прототип и реальность //Физиол. растений. 2000. Т.47.№ 3,С.354−359.

42. Лутова Л. А., Павлова З. Б., Иванова М. М. Агробактериальная трансформация как способ изменения гормонального метаболизма у высших растений //Генетика. 1998. Том.34. №.2.С.165−182.

43. Мамедов К. Ю. Моделирование симбиотической ассоциации клубеньковые бактерии-бобовые растения (на примере инфицирования каллусов корней люцерны) //Дисс. канд. биол.наук. М. 1979.17 с.

44. Миронов A.A., Комиссарчик Я. Ю., Миронов В. А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине: методическое руководство / Спб. Наука. 1994. 400 с.

45. Мишустин E.H., Шильникова В. К. Биологическая фиксация атмосферного азота // 1968. М. Наука. 531 с.

46. Муромцев Г. С., Герасимова Н. М., Кобзина И. С., Коренева В. Ю., Смоляков B.C. Регуляторы роста растений микробного происхождения // Успехи микробиол.1984.Вып.19.С. 106−134.

47. Муронец Е. М., Сафьянникова Т. Ю., Митронова Т. Н., Каменева C.B. pVM плазмида сапрофитной азотфиксирующей агробактерии Agrobacteriiim radiobacter 5D-1 //Генетика. 1994. Т.30. №.1 С.49−53.

48. Никитин Д. И., Васильева Л. В. Фимбрии у почвенных бактерий // Известия АН СССР, (серия биол.). 1965. С. 400−402.

49. Пирузян Э. С., Андрианов В. М. Плазмиды агробактерий и генетическая инженерия растений //М., Наука. 1985. 279 с.

50. Пирузян Э. С. Основы генетической инженерии растений М. Наука. 1988. 303 с. 354.

51. Пирузян Э. С. Проблемы экспрессии чужеродных генов в растениях //Итоги науки и техники. Биотехнология / Ред. Кефели В. Н. М.1990.Т.23. 175.с.

52. Прозоров A.A. Трансформация у бактерий //М. Наука. 1988. 255 с.

53. Прозоров A.A. Поглощение ДНК бактериальной клеткой: естественный процесс и лабораторные приемы //Генетика 1998.Т. 34. № 5.С.581−592.

54. Пухальский В. А., Смирнов С П., Корыстылева Т. В., Билинская E.H., Елисеева A.A. Генетическая трансформация пшеницы (Triticum aestivum L.) с помощью Agrobacterium tumefaciens/^Генетика. 1996. Т.32.№.11.С. 1596−1600.

55. Пюлер А., Клип В., Вебер Г. Картирование и регуляция структурных генов niflC, niflD, nifli у Rhizobium meliloti // Молекулярная генетика взаимодействия бактерий с растениями. /М. ВО Агропромиздат. 1988. 416 с.

56. Определитель бактерий Берджи / Ред. Дж. Хоулт., Н. Криг, П. Спит, Дж. Стейнли, С.Уилльямс. 1997. Мир. М. 800 с.

57. Ремпе Е. Х. Микрофлора корневой системы при выращивании растений в водных культурах//Тр. ВНИИСХМ. 1951. Т.ХП. С.56−65.

58. Романов Г. А. Генетическая инженерия растений и пути решения проблемы биобезопасности // Физиология растений. 2000.Т.47.№ 3.С.343−353.

59. Руслякова М. В., Каменева C.B., Шестаков C.B. Создание кольцевой генетической карты хромосомы Agrobacterium radiobacter, локализация генов азотного метаболизма // Генетика микроорганизмов. 1996. Т. 32. №.3. С. 359−365.

60. Руслякова М. В., Муронец Е. М., Каменева C.B. Плейотропные мутации, приводящие к изменению процессов метаболизма азота и синтеза индолилуксусной кислоты у Agrobacterium radiobacter 5D-1 //Генетика. 1998. Т.34. №.2.С.300−303.

61. Сабельников А. Г., Боровягин В. Л. Трансмембранный перенос ДНК у бактерий, индуцируемый катионами: модель переноса//Биол. мембраны. 1988. Т.5. С. 743−751.

62. Сабельников А. Г., Березкина Н. Е., Чупин В. В., Гонгадзе Г. М., Боровягин В. Л. Структурные изменения мембран Escherichia coli во время конъюгации // Биол. мембраны. 1994. Т. 4. С.393−401.

63. Сельскохозяйственная биотехнология: векторные системы молекулярного клонирования / Ред. Негрук В. И. М. ВО Агропромиздат. 1991.534 с.

64. Симаров Б. В., Тихонович И. А. Генетические основы бобово-ризобиального симбиоза //Минеральный и биологический азот в земледелии СССР. М. Наука. 1986. С. 165−174.355.

65. Соколов О. И., Грингауз O.K., Рихтер Т. Я. Идентификация F-актина растений фаллоидин-коллоидным золотом. 1. Биохимические препараты //Физиология растений. 1998. Т. 45.С.227−234.

66. Соловова Г. К., Кривопалов Ю. В., Беликов В. А., Чумаков М. И. Прикрепление Agrobacterium radiobacter 5D-1 к корням пшеницы //Микробиология. 1995. Т. 64. Вып. 4. С. 623−630.

67. Соловова Г. К. Прикрепление Agrobacterium radiobacter 5 D-1 на корнях однодольных растений //Автореферат канд. дисс. 1996. Саратов. 24 с.

68. Соловова Г. К., Калаптур О. В., Чумаков М. И. Анализ прикрепления. агробактерий к корням пшеницы и риса //Микробиология. 1999. Вып. 68. №. 1. С. 63−68.

69. Скрябин К. Т. 21 век в России век космической информации и трансгенных растений // Химия и жизнь. 1999. № 2. С. 10−11.

70. Уикли Б. Электронная микроскопия для начинающих // М.Мир. 1975. 324 с.

71. Умаров М. М. Значение несимбиотической азотфиксации в балансе азота в почве // Изв. АН СССР (сер.биол.). 1982. №. 1. С.92−105.

72. Умаров М. М. Ассоциативная азотфиксация в биогеоценозах//Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. М. 1984. С. 185−198.

73. Фролова В. Д., Муронец Е. М., Митрофанова Т. Н., Белавина Н. В., Каменева C.B., Шестаков C.B. Мутанты Agrobacterium radiobacter с измененной способностью к азотфиксации и взаимодействию с растением//Микробиология. 1994. Т. 63. Вып. 2.С.239−245.

74. Чумаков М. И., Емцев В. Т. Формирование азотфиксирующей ассоциации азотфиксирующей микрофлоры с небобовыми растениями // Сельскохозяйственная биология. 1988а. №. 6. С. 50−57.

75. Чумаков М. И. Ассоциативная азофиксация у пшениц //Дисс. канд. биол. наук. М. ТСХА. 19 886. 182 с.

76. Чумаков М. И. Роль генотипа пшеницы в формировании азотфиксирующей ассоциации в корневой зоне//Изв. Тимирязевской сельхоз. Академии. 1988 В. № 6.С.50−57.

77. Чумаков М. И., Горбань В. В., Ковлер Л. А., Соловова Г. К., Васильев А. Ю., Фролова В. Д., Муронец Е. М., Каменева C.B. Новый ассоциативный диазотроф Agrobacterium radiobacter из ризосферы пшеницы//Микробиология. 1992. Т. 61. Вып.1. С.92−102.

78. Чумаков М. И. Участие поверхностных полисахаридов и белков бактерий семейства Rhizobeaceae в адсорбции и прикреплении к поверхности и инфекции растений // Микробиология. 1996. Т.65. вып. 6. С.725−739.

79. Чумаков М. И, Соловова Г. К., Калаптур О. В. // Материалы Международной конференции по анатомии и морфологии растений. 2−6 июня 1997. С-Петербург. Россия. С.212−213.

80. Чумаков М. И., Курбанова И. В. Локализация VirB 1 белка на поверхности агробактерий // Биологические мембраны. 1998.Т. 15. Вып. 6. С.719−721.

81. Чумаков М. И. Перенос генетической информации из агробактерий в бактериальную и растительные клетки: мембранные и надмембранные структуры, участвующие в переносе (обзор) // Биологические мембраны 2000. Т. 13. №.3. С.245−263.

82. Чумаков М. И., Курбанова И. В. Изучение конъюгативного переноса плазмиды pTd33 между штаммами агробактерий//Микробиология. 2000. Т. 69. №.1. С.81−88.

83. Шаденков А. А., Ковалева М. В., Кузьмин Е. В., Узбекова С. Б., Шемякин М. Ф. VirD2-независимый, но MobA-зависимый перенос ДНК плазмиды широкого круга хозяев RSF1010 из агробактерий в ядро растительной клетки // Молек. биол. 1996. Т.30. Вып.2. С. 454−460.

84. Яблуненко А. Н., Муронец Е. М., Каменева С. В. Генетическая трансформация у сапрофитной азотфиксирующей бактерии Agrobacterium radiobacter 5 D-1 //Генетика. 1995. Т.31 .№ 6.С.778−783.

85. Abracham S.H., Goguen J.D., Sun D., Klem P., Beachey E.H. // J.Bacteriol. 1987. V.169. P. 5530−5535.

86. Achtman M., Morelli G., Schwuchow S. Cell-cell interaction in conjugating Escherichia coli: role ofF pili and fate ofmating aggregates. //J.Bacteriol. 1978.V.135. P.1053−1061.

87. Aird E.L.H., Brightwell G., Jones V.A., Jonston A.W.B. Identification of the exo loci required for exopolisaccharide synthesis in Agrobacterium radiobacter NCIB 11 883 // J.Gen.Microbiol. 1991. V. 137. P.2287−2297.

88. Alt-Morge J., Kuhlmann H., Schroder J. Differences in induction of Ti plasmid vz’rulence genes virG and v/rD, and control of v->D expression by four external factors // Molec. Plant-Microbe Interact. 1989. V.2. №.6. P.301−308.

89. Alt-Morbe J., Stryker J.L., Fugua C., Li P.-L., Farrand S.K., Winans S.C. // J. Bacteriol. 1996. V.178. P.4248−4257.

90. Amemura A., Hisamatsu M., Mitani H., Harada T. Cyclic (l-2)-P-D-clucan and the octasaccharide rep eating-units of extracellular acidic polysaccharides produced by Rhizohium II Carbohydr. Res. 1983. V.114. P.277−285.

91. Amemura A. Synthesis of (l, 2)-P-D-glucan by cell-free extracts of Agrobacterium radiobacter F12665 and Rhizobium phaseoli AHU 1133 // Agric.Biol.Chem. 1984. V.48. P.1809−1817.

92. Ames P., Schluederberg S.A., Bergman K. Behavioral mutants of Rhizobium meJiloti II J.Bacteriol. 1980. V.141. №.2. P.722−727.

93. Anderson L.B., Hertzel A.V., A.Das. Agrobacterium tumefaciens VirB7 and VirB9 form a disulfide-linked protein complex//Pros. Natl. Acad. Sci. USA. 1996.V.93.P.8889−8894.

94. Anderson D.M., Schneewind O. Type DI machines of gram-negative pathogens: injecting virulence factors into host cells and more // Curr. Opin. Microbiol. 1999. V.2. №.1. P. 18−24.

95. AnkenbauerR.G., Nester E.W. Sugar-mediated induction of Agrobacterium tumefaciens vilulence genes: structural specificity and activities of monosaccharides // J.Bacteriol. 1990. V. 172. P.6442−6446.

96. Ankenbauer R.G. Best E.A., Palanca C.A., E.W. Nester Mutants of Agrobacterium tumefaciens virA gene exhibiting acetosyringone-independent expression of the vir regulon. I I Molec. Plant-Microbe Interact. 1991. V.4. №.4. P.400−406.

97. Armstrong G.D., Prost L.S., Sastry P.A., Paranchych W. Comparative biochemical studies on F and EDP208 conjugative pili //J.Bacteriol. 1980 V.141. №. 1. P.333−341.

98. Ashby A.M., Watson M.D., Shaw C.H. A Ti-plasmid determined function is responsible for chemotaxis towards the plant wound product acetosyringone // FEMS Microbiol. Lett. 1987. V. 4l.P. 189−199.

99. Bacterial Adhesion. Mechanisms and Phisiological Significance/ Eds. Savage D.C., Fletcher M. New York and London: Plenum Press. 1985. 476.P.

100. Ballas N., Citovsky V. Nuclear localization signal binding protein-from Arabidobsis mediated nuclear import of Agrobacterium VirD2 protein // Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1997.V.93. P.1072−3-10 728.

101. Barinaga M. A shared strategy for virulence//Science. 1996. V. 272.-P.1261−1263.

102. Baron C., LlosaM, Zhou S., Zambryski P. VirBl, a component of the T-complex tranfer machinery of Agrobacterium tumefaciens is processed to a C-terminal secreted product, VirBl //J.Bacteriol. 1997a. V.179. P. 1203−1210.

103. Baron C., Thorstenson Y.R., Zambryski P. The lipoprotein VirB7 interacts with VirB9 in the membranes of Agrobacterium tumefaciens //J.Bacteriol. 19 976. V.179. P. 1211−1218.

104. Barreto-Bergter E., Camargo C.R., Hogge L.R., GorinP.AJ. Minor structures in p-D-(l, 2)-linked D-glucopyranans from Agrobacterium tumefaciens and Agrobacterium radiobacter II Carbohydr. Res. 1980. V.82. P.366−371.

105. Bashan Y. Migration of the rhizisphere bacteria Azospirillum brasilense and Pseudomonas fluorescens towards wheat roots in the soil //J.General Microb. 1986.V. 182. Part 12. P. 3407−3414.

106. Bashan Y., Levanony H., Klein E. Evidence for a weak active external adsorption of Azospirillum brasilense Cd to wheat roots // J. General Microbiology. 1986.V.132. Part 11. P.3069−3073.

107. Bashan Y, Levanony H. Horizontal and vertical movement of Azospirillum brasilense Cd in the soil and along the rhizosphere of wheat and weeds in controlled and fiueld environments //J.Gen. Microb. 1987. V.133. Part 12. P. 3473−3486.

108. Batthey N.H., James N. C, Greenland A.J., Brownlee C. Exocytosis and endocytosis // The Plant Cell. 1999.V. 11 P.643−659.

109. Bayer M.E. // Role of adhesion zones in bacterial cell-surface function and biogenesis // In: Membrane Biogenesis. 1976. P.393−427. / A. Tzagoloff (ed.) Plenum Publishing Corp. New York.

110. Beaupre C.E., Bohne J., Dale E.M., Binns A.N. Interactions between VirB9 and VirBlO membrane proteins involved in movement of DNA from Agrobacterium tumefaciens into plantcell // J.Bacterid. 1997. V. 179. P.78−89.

111. Beijersbergen A.A., Dulk-Ras R., Schilperroort R.A., Hooykaas P. Conjugative transfer by the virulence system of Agrobacterium tumefaciens II Science. 1992. V.256. P. 13 241 326.

112. Beijersbergen A., Smith S.J., Hooykaas P.J.J. Localization and topology of VirB proteins of Agrobacterium tumefaciens // Plasmid. 1994. V.32. P. 1−7.

113. Belanger C., Canfield M.L., Moore L.W., Dion P. Detection of avirulent mutant of Agrobacterium tumefaciens tumors produced in vitro II Kluwer Academic Publishers / E.W. N ester and D.P.S. Verma. 1993.P.97−101.

114. Belanger C., Loubens I., Nester E.W., Dion P. Variable efficiency of a Ti plasmid-encoded VirA protein in different agrobacterial host // J. Bactenol. 1997. V.179. №.7. P.2305−2313.

115. Berger B.R., Christie P.J. The Agrobacterium tumefaciens v/rB4 gene product is an essential virulence protein requiring an intact nucleoside triphosphate-binding domain // J. Bacteriol. 1993. V.175. №.6. P. 1723−1734.

116. Berger B.R. Christie P.J. Genetic complementation analysis of the Agrobacterium tumefaciens virB operon: v/VB2 through vzVBll are essential virulence genes // J.Bacteriol. 1994. V.176.№.12. P.3646−3660.

117. Billing E. Entry and establishment of pathogenic bacteria in plant tissues // In: Bacteria and Plants / eds. Rhodes-Roberts M.E. and Skiner F.A. Academic Press Inc., London. 1982. P.51−70.

118. Binns A.N., Thomashow M.F. Cell biology of Agrobacterium infection and transformation of plants // Ann. Rev. Microbiol. 1988. V. 42.P.575−606.

119. Binns A.N., Beaupre C.E., Dale E.M. Inhibition of VirB-mediated transfer of diverse substrates from Agrobacterium tumefaciens bythelncQ plasmid RSF1010 //J.Bacteriol. 1995. V.177. P.4890−4899.

120. Boddey R.M., Chakk P.M., Victiria R.L., Matsui E., Dobereiner J. //The use of the 1SN isotope dilution to the nitrogen nutrion of Paspalum notatun cv. batatais II Can.J.Microbiol. 1983.V.29. № 8. P.1036−1048.

121. Bodman S.B., McCutchan J.E., Farrand S.K.Characterization of conjugal transfer functions of Agrobacterium tumefaciens Ti-plasmid pTiC58 //J.Bacteriol. 1989. V.171. №.10. P.5281−5289.

122. Bohlool B.B., Schmidt E.L. Lectins: a possible basis for specificity in the Rhizobiumlegume root nodule symbiosis // Science. 1974. V.185. P.269−271.

123. Boulanger P., Letellier L. Ion channel are likely to be involved in the two steps of phage T5 DNA penetration into Escherichia coli II J.Biol.Chem 1988.V.263. P.9767−9775.

124. Bradley D. E., Taylor D.E., Cohen D.R. Specification of surface mating system amongconjugative drug resistance plasmids in Escherichia coli K-12 // J.Bacteriol. 1980.V.143. P. 1466−1470.

125. Bradley D., Douglas C., Peschon J. Flagella-specific bacteriophages of Agrobacterium tumefaciens'. demonstration of virulence of nonmotile mutants // Can. J. Bacteriol. 1984. V.30. P.676.-681.

126. Breedveld M.W., Miller K.J.Cyclic P-glucans of members ofthe family Rhizobiacea H Microbiol. Rev. 1994. V.58. №.2. P.145−161.

127. Breedveld M.W., Dijkema C., Zevenhuizen L.P.T.M., Zehnder A.J.B. Response of intracellular carbohydrates to a NaCl shock in Rhizobium leguminosarum biovar trifolii TA-1 and Rhizobium meliloti SU-47 //J.Gen.Microbiol. 1993. V.139. P.3157−3163.

128. Brinton C.C. The properties of sex pili, the viral nature of «conjugal» genetic transfer systems, and some possible approaches to the control of bacterial drug resistance // Crit.Rev.Microbiol. 1971. Y. l .P. 105−160.

129. Brishbane P.G., Kerr A. Selective media for three biovars of Agrobacterium // J.Appl.Bacteriol. 1983.V.54. P.425−431.

130. Brown M.E. Plant growth substanses produced by microorganisms of soil rhizosphere // J. Ahhk. Bacteriol. 1972.V.38. № 3.P.443−451.

131. Buchanan-Wollaston V., Passiatore J.E., Cannon F. The mob and oriT mobilization functions of a bacterial plasmid promote its transfer to plants //Nature. 1987. V.328. P. 172−175.

132. Bundock P., Hookaas P.J.J. Integration of Agrobacterium tumefaciens T-DNA in Saccharomices cerevisiae genome by illegitimate recombination // Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1996.V.93. P.15 272−15 275.

133. Caro L.G., Schnos M. The attachment of male-specific bacteriophage fl to sensitive strain of E. coli II Proc.Natl.Acad.Sci.USA 1966. V.56. P.126−132.

134. Caetano Anoles G., Favelukes G. Host-symbiotic specificity expressed during early adsorption of Rhizobium meliloti to the root surface of alfalfa // Appl. Environ. Microbiol. 1986. V.52. №.2. P.377−382.

135. Cangelosi G.A., Martinetti G., Leigh J.A., Chang Lee C" Theines C" Nester E.W. Role for Agrobacterium tumefaciens ChvA protein in export of p-l, 2-glucan//J.Bacteriol. 1989. V.169. P.2086;2091.

136. Cangelosi G.A., Ancenbauer R.G., Nester E.W.Sugar induce the Agrobacterium virulence genes through a periplasmic binding protein and a transmembrane signal protein // Proc.Natl.Acad.Sci. USA. 1990. V.87. P.6708−6712.

137. Cardenas L., Vidali L., Dominguez J., Perez H., Sanchez F., Helper P.K., Quinto C. Rearrgement of actin microfilaments in plant root hairs responding to Rhizobium etli nodulation signal//Plant Physiol. 1998. V.116. P.871−877.

138. Carlson R.W. Heterogenity of Rhizobium lipopolysaccharides // J.Bacteriol. 1984. V.158.№.3.P.10 122−1017.

139. Cavalli-Sfroza L., Lederberg J., Lederberg E. An infective factor controlling sex compatibility in E.coli. //J.Gen.Microbiol. 1953. V.8. P.89−103.

140. Charles T.C., Nester E.W. A chromosomaly encoded two component sensory transduction system is required for virulence of Agrobacterium tumefaciens 11 J.Bacteriol.1993. V.175. P.6614−6625.

141. Chen L" Li C. M., Nester E.W. Transferred DNA (T-DNA)-associated proteins of Agrobacterium tumefaciens are exported independently of virB // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000.V.97. P.7545−7550.

142. Chernomordik L.V., Leikina E., Kozlov M.M., Frolov V.A., Zimmerberg J. Structural intermediates in influenza haemagglutinin-mediated fusion // Molec. Membr.Biol. 1999. V. 16. P.33−42.

143. Chesnokova O., Coutinho J.B., Khan I.H., Mikhail M.S., Kado C.I. Characterization of flagella genes of Agrobacterium tumefaciens and the effect of a bald strain on virulence // Mol.Microbiol. 1997. V.23.P.579−590.

144. Chilton M.- D., Drummond M.H., Merlo D.J., Sciaky D., Montoya A.L., Gordon M.P., Nester E.W. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: the molecular basis of crown gall tumorigenesis// Dept. Bioch. 1977. V. l 1. P.263−271.

145. Chou A.U., Archdeacon J., Kado C.I. Agrobacterium transcription regulator Ros is a prokaryotic .zink finger protein that regulats tha plant oncogen ipt II Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1998. V.95. P.15 293−5298.

146. Christie P.J., Ward J.E., Winans S.C., Nester E.W. The Agrobacterium tumefaciens virE2 gene product is a sinle-stranded-DNA-binding protein that associates with T-DNA // J.Bacteriol. 1988. V.170. №.6. P.2559−2667.

147. Christie P.J., Ward J.E., Jr., Gordon M.O., Nester E.W. A gene required tor transfer of T-DNA to plant encodes an ATPase with antophosphorylating activity // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V.86. P.9677−9681.

148. Christie P.J. Agrobacterium tumefaciens T-complex transport apparatus: a paradigm for a new family of multifunctional transporters in eubacteria // J.Bacteriol. 1997. V.179. P.3085−3094.

149. Chumakov M.I., Solovova G.K. Rhizobium and Agrobacterium attachment to O. sativa L. and T. aestivum L. root surface // Abstr. Int. Workshop on Associative Interactions of Nitrogen-Fixing Bacteria with Plants. June 5−8, 1995. Saratov. Russia. P. 64.

150. Chumakov M. I., Kurbanova I. V. Localization of the protein VirBl involved in contact formation during conjugation among Agrobacterium cells //FEMS Microbiol. Letters. 1998. V.168.P.297−301.

151. Citovsky V.C., Wong M.L., Zambryski P. Cooperative interaction of Agrobacterium VirE2 protein with single-stranded DNA: implications for the T-DNA transfer process / // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V.86. P.1193−1197.

152. Citovsky V., Zupan J., Warnick D., Zambryski P. Nuclear localization of Agrobacterium VirE2 protein in plant cells // Science. 1992. V.256. P. 1802−1805.

153. Citovsky V., Warnick D., Zambiyski P. Nuclear import of Agrobacterium VirD2 and VirE2 proteins in maize and tobacco//Proc.Natl.Acad. Sci.USA. 1994. V. 91. P.3210−3214.

154. Cocking E.C., Webster G. Nodulation of non-legume crops: a newlook // Agro-Inductry Hi-Tich. 1994. № 3. P. 1−15.

155. Cook D.M., Farrand S.K.The oriT region of the Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid pTiC58 shares DNA sequence identity with the transfer origins ofRSFlOlO and RK2/RP4 and with T-region borders // J.Bacteriol. 1992. V.174. №.19. P.623 8−6246.

156. Cook D.M., Li P-L., Ruchaud F., Padden S., Farrand S.K.Ti plasmid conjugation is independent of vir: reconstruction of the tra functions from pTiC58 as a binary system // J.Bacteriol. 1997. V.179. P.1291−1297.

157. Cooley M.B., D’Souza M.R., Kado C.I. The virG and virB operons of the Agrobacterium Ti plasmid are regulated by the Ros chromosomal gene: analysis of the cloned Ros gene//J. Bacteriol. 1991. V.713. №.8. P.2608−2616.

158. Cornish A., Greenwood J.A., Jones C.W. Binding-protein-dependent sugar transport by Agrobacterium radiobacter and A. tumefacients grouwn in continuous culture // J.Gen. Microbiol. 1989. V.135. P.3001−3013.

159. Close T.J., Tait R.C., Kado C.I. Regulation of Ti plasmid virulence genes by a chromosomal locus of Agrobacterium tumefaciens I I J. Bacteriol. 1985. V. 164. №.2. P.774−781.

160. Clore A.M., Dannenhoffer J.M., B.A. Larkins EF-la is associated with cytoskeletal network surrounding protein bodies in maize endosperme cells // Plant Cell. 1996. V.8. P.2003;2014.

161. Clover R.H., Kieber J. Singer E.N. Lipopolysaccharide mutants of Rhizobium meliloti are notdefective in symbiosis //J.Bacteriol. 1989. V.171. №.7. P.3961−3967.

162. Cremers H.C.J.C., Batley M., Redmond J.W., Eydems L" Wijffelman C.A., Lugtenberg B.J.J. Rhizobium leguminosarum exoB mutants are deficient in the synthesis of UDP-glucose 4'-epimerase // J. Biol. Chem.1990. V.265. №.34. P.21 122−21 127.

163. Dag S., Baul T.S.B., Roy B., Day D. A new rapid method of air drying for scanning electron microscopy using TMS // J. Microscopy. 1989. V. 156. P. 259−261.

164. Dang T.A.T., Christie P. The VirB4 ATPase of Agrobacterim tumefaciens is a cytoplamic membrane protein exposed at the periplasmic surface // J.Bacteriol. 1997. V. 179. P.453−462.

165. Das A., Anderson L.B., Xie Y-H. Delineation of the interaction domains of Agrobacterium tumefaciens VirB7 and VirB9 by use of the yeast two-hybrid assay // J.Bacteriol. .1997. V. 179. P.3404−3409.

166. Date T., Inuzuka M., Tomoeda M. Purification and characterization of F pili from Escherichia coli II Biochemistry. 1977. V.16. P.5579−5585.

167. Dazzo F.B., Hubbell D.H. Cross-reactive antigens and lectins as determinants of symbiotic specificity in the Rhizobium-clover association // Appl. Microbiol. 1975. V.30. P.1018−1033.

168. Dazzo F.B., Napoli C.A., Hubbell D.H. Adsorption of bacteria to roots as related to host spesifity in the Rhizobium-clover symbiosis 11 Appl. Environ. Microbiol. 1976. V.32. P. 166−171.

169. Dazzo F., Hollingsworth R.E. Trifoliin A and carbohydrate receptors as mediators of cellular recognition in the Rhizobium trifolii-clover symbiosis // Biol.Cell. 1984a. V.51. P.267- 274.

170. Dazzo F.B., Truchet G.L., Sherwood J. E, Hrabac E.M., Abe M., Pankratz S.H. Specific phases of root hair attachment in the Rhizobium trifolii-clowQx symbiosis // Appl.Environ. Micobiol. 1984b. V.48. №.6. P. 1140−1150.

171. De Cleene M" De Ley J. The host range of crown gall //Bot. Rev. 1976. V.42. №. 4. P.389−466.

172. Dell A., York W.S., McNeil M., Darvill A.G., Albersheim P. The cyclic structure of P-D-(l, 2)-linked D-glucans secreted by Rhizobia and Agrobacteria //Carbohydr.Res. 1983. V. 117. P. 185−200.

173. Deng W" Chen L" Wood D. W., Metcalfe T., Liang X., Gordon M. P., Coma L., Nester E. W. Agrobacterium VirD2 protein interacts with plant host cyclophilins// Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1998. V. 95. P. 7040−7045.

174. Depierreux C., Kang H.-C., Guerin B., Monsigny M., Delmotte F.M. Characterization of an Agrobacterium tumefaciens lectin// Glycobiology. 1991.V.1 №.6. P.643−649.

175. De Vos G., Zambryski P. Expression of Agrobacterium nopaline-specific VirDl, VirD2, and VirCl proteins and their requirement for T-strand production in E. coli //Molecular Plant-Microbe Interactions. 1989. V.2. №.2. P.43−52.

176. Dobereiner J., Day J. M. Associated symbiosis in tropical grasses: characterization of microorganisms and dinitrogen fixing sites // Symp. on Nitrogen Fixation /Newton W.B., Hymans C.J., Washington State University Press, Pulman, 1976. P.518−538.

177. Dombek P., Ream W. Functional domain of Agrobacterium tumefaciens single-stranded DNA-binding protein VirE2 II J.Bacteriol. 1997.V. 179.№.4. P. 1165−1173.

178. Douglas C.J., Halperin W., Nester E.W. Agrobacterium tumefaciens mutants affected in attachment to plant cells//J.Bacteriol. 1982. V.152. №.3. P.1265−1275.

179. Douglas C., Halperin W., Gordon M., Nester E. Specific attachment of Agrobacterium tumefaciens to bamboo cells in suspension cultures // J.Bacteriol. 1985a. V.161. №.2. P.764−766.

180. Douglas C.J., Staneloni R.J., Rubin R.A., Nester E.W. Identification and genetic analysis of an Agrobacterium tumefaciens chromosomal virulence region // J.Bacteriol. 1985b. V.161. №.3. P.850−860.

181. Draper J., Mackenzie A., Davey M.R., Freeman J.P. Attachment of Agrobacterium tumefaciens to mechanicaly isolated Asparagus cells//Plant Sei. Lett. 1983. V.29. P.227−236.

182. Dreiseikelmann B. Translocation of DNA across bacterial membrane // Microbiol. Rev. 1994. V.58.P.293−316.

183. Durrenberger F., Crameri A., Hohn B., Koukolikova-Nicola Z. Covalently bound VirD2 protein of Agrobacterium tumefaciens protects the T-DNA from exonucleolytic degradation // Proc. Natl. Acad. Sei. USA 1989. V.86. №. 23. P.9154−9158.

184. Durrenberger M.B., Villiger W., Bachi Th. Conjugation junction: morphology of specific contact in conjugating Escherichia coli bacteria I I J.StructBiol. 1991. V.107. P. 146 156.

185. Durso N.A., Cyr R.J. A calmodulin-sensitive interaction between microtubules and a higher plant homolog of elongation factor-la//Plant Cell. 1994.V.6.P.893−905.

186. Dylan T., Nagpal Q., Helinski D.R., Ditta G.S. Symbiotic pseudorevertants of Rhizobium meliloti ndv mutants // J.Bacteriol. 1990. V.172. P.1409−1417.

187. Eisenbrandt R., Kalkum M., Lai E-M., Lurz R., Kado C., Lanka E. Conjugative pili of IncP plasmids and the Ti plasmid T pilus are composed of cyclic subunits //J.Biol.Chem. 1999. V.274.№.32. P.22 548−22 555.

188. Engstrom P., Zambryski P., van Montague M., Stachel S. Characterization of Agrobacterium tumefaciens virulence proteins induced by the plant factor acetosyringone // J.Mol.Biol. 1987. V. 197. P.635−645.

189. Ela S.W., Anderson M.A., Brill W.J. Screening and selection of maize to enchance associative bacterial nitrogen fixation//Plant Physiol. 1982. Y.70. № 12. P. 1564−1567.

190. Ellis P., Roberts P., Sutton B. Tranformation of white spruse and other conifer species by A. tumefaciens II Plant Cell. 1989. V, 8. P. 16−20.

191. Escudero J., Neuhaus G., Hohn B. Intercellular Agrobacterium can transfer DNA to the cell nucleus of the host plant// Proc.Natl. Acad. Sci. USA. 1995. V.92. P. 230−234.

192. Escudero J., Hohn B. Transfer and integration of T-DNA without cell injury in the host plant //The Plant Cell. 1997.V.9. P.2135−2142.

193. Farrand S.K., Hwang I., Cook D.M. The tra region of the nopaline-type Ti-plasmid is a chimera with elements related to the transfer systems of RSF1010, RP4 and F// J. Bacteriol 1996. V.178. P.4233−4247.

194. Feldmann K.A. T-DNA insertion mutagenesis in Arabidopsis: mutational spectrum // The Plant Journal. 1991. V. 1 .№. 1. P.71 -82.

195. Feldmann K.A., Marks M.D. Agrobacterium-medinted transformation of germinating seeds of Arabidopsis thaliana: a non-tissue culture approach //Mol.Gen. Genet. 1987. V.208. P. 1−9.

196. Fernandez L.A., Berenguer J. Secretion and assembly of regular surface structures in gram-negative bacteria//FEMS Microbiol. Rev.2000.V.24.P.21−44.

197. Filichkin S.A., Gelvin S.B. Formation of putative relaxation intermediate during T-DNA processing directed by thq Agrobacterium tumefaciens VirDl, VirD2 endonucleases // Mol.Microbiol. 1993. V. 8. P.915−926.

198. Finan T.M., Hirsh A.M., Leight J.A., Johansen E., Kuldau G.A., Deegan S., Walker G.C., Singer E.R. Symbiotic mutants of Rhizobium meliloti that uncouple plant from bacterial differentiation. // Cell. 1985. V.40. P.869−877.

199. Finan T.M., Kunkel B., De Yos G.F., Singer E.R. Second symbiotic plasmid in Rhizobium meliloti carrying exopolysaccharide and thiamine synthetic genes //J.Bacteriol. 1986. V.167. P.66−72.

200. Fogher C., Dusha J., Barbot P., Elmerich C. Heterologous hybridization of Azospirillum DNAto Rhizobium nod and fix genes //FEMS Microbiol. Lett. 1985.V.30. №½. P/245−249.

201. Folkhard W., Leonard R., Malsey S., Marvin D.A., Dubochet J., Engel A., Achtman M., Helmuth R. X-ray difraction and electron-microscope studies on the structure of bacterial F pili //J.Mol.Biol. 1979. V.130. P.145−160.

202. Freeman, etal., 1984, цит. по Курочкиной, Картель, 1997 (см. № 41).

203. Fretz A., Lorz H. In vitro manipulation as a tool in improving cereal crops // Agro-Industry Hi-Tech. 1991 .V. 5 .P. 16−20.

204. Frost L.S., Paranchych W., Willetts N.S. DNA sequence of the F traALE region that includes the gene for F pilin // J.Bacteriol. 1984. V.160. P.395−401.

205. Frost L.S., Ippen-Ihler K., Skurray R.A. Analysis of sequence and gene products of the transfer region of the F sex factor // Microbiol. Rev. 1994. V.58. №. 2. P. 162−210.

206. Fullner K.J., Stephenens K.M., Nester E.W. An essential virulence protein of Agrobacterium tumefaciens, VirB4, requires an intact mononucleotide binding domain to function in transfer of T-DNA. //Mol.Gen.Genet. 1994. V. 245. P. 704−715.

207. Fullner K.J., Lara J.C., Nester E.W. Pilus assembly by Agrobacterium T-DNA transfer genes //Science. 1996a. V.273. P.1007−1009.

208. Fullner K. J, Nester E.W. Temperature affects the T-DNA transfer machinery of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1996b. V.178. P. 1498−1504.

209. Fullner K.J. Role of Agrobacterium virB genes in transfer of T complexes // J.Bacteriol. 1998. V. 180. №.2. P. 430−434.

210. Fuqua W.C. and S.C. Winans A LuxR-LuxI type regulatore system activates Agrobacterium Ti plasmid conjugal transfer in the presence of a plant tumor metabolite //J.Bacteriol. 1994. V.176. №. 10. P.2796−2806.

211. Fuqua W.C., Burbea M., Winans S.C. Activity of the Agrobacterium Ti plasmid conjugal transfer regulator TraR is inhibited by the product of the traM gene // J.Bacteriol.1995. Y.177. №. 5. P. 1367−1373.

212. Fuqua W.C., Winans S.C. Conserved c/s-acting promoter elements are required for density-dependent transcription of Agrobacterium tumefaciens conjugal transfer genes //J.Bacteriol. 1996. V.178. №. 2. P.43 5−440.

213. Fuyii Т., Sano Y., Tyama S. Studies on nitrogen fixing ability in rice rhizosphere // Japan J. Breedg. Suppl. Tokyo. 1979.V.29. № 2. P.64−65.

214. Galan J. Molecular genetic basis of Salmonella entry into host cells // Mol. Microbiol.1996. V.20. P.263−271.

215. Galan J.E., Collmer A. Type HI secretion machines: bacterial devices for protein delivery into host cells // Science. 1999. V.21. №. 284 (541). P.1322−1328.

216. Gamalei Y.Y., Van Bel A.J.E., Pakhomova M.V., Sjutkina A.V. Effects of temperature on the conformation of the endoplasmic reticulum and on starch accumulation in leaves with the symplasmic minor-vein configuration//Planta. 1994. V.194. P.433−453.

217. Garfinkel D.J., Nester E.W. Agrobacterium tumefaciens mutants affected in crown galltumorigenesis and octopine catabolism // J. Bacteriol. 1980. V.144. №.2. P.732−743.

218. Garfinkel D.J., Simpson R.B., Ream L.W., White F.F., Gordon MP., Nester E.W. Geneticanalysis of crown gall: fine structure map of the T-DNA by site-directed mutagenesis // Cell. 1981.1. Y.27. P.143−153.

219. Geiger O., Russo F.D., Silhavy T.J., Kennedy E.P. Membrane-derived oligosaccharides affect porin osmoregulation only in media of low ionic strength//J.Bacteriol. 1992. V.174. P.1410−1413.

220. Gelvin S.B., Habeck L.L. Vir gene influence conjugal transfer of the Ti plasmid of Agrobacterium tumefaciens //J.Bacteriol. 1990. V.172. P. 1600−1608.

221. Gelvin S.B. Agrobacterium VirE2 protein can form a complex with T strand in the plant cytoplasm. //J.Bacteriol. 1998.V.181. P.4300−4302.

222. Ghai J., Das A. The virD operon of Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid encodes a DNA-relaxing enzyme // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1989. V.86. P.3109−3113.

223. Gheysen G., Villarroel R., M. Van Montagu Illegimate recombination in plants: model for T-DNA integration //Genes Dev. 1991. V.5. P.287−297.

224. Giller K.E., Day J.M., Dart P.J., Wani S.P. A method for measuring the transfer of fixed nitrogen from free-living bacteria to higher plants using 1SN // J. Microbiol. Methods. 1984.V.2. № 3.P.307−316.

225. Giller K.E., Wani S.P., Day J.V. Use of isotope dilution to measure nitrogen fixation associated with the roots of sorghum and millet genotypes // Plant Soil. l986.V.90. № ½. P.255−265.

226. Godwin J., Ford-Lloyd B., Newbury H. In vitro approaches to extended the host range of Agrobacterium for plant transformation//Aust. J. Bot. 1992. V. 40. P.751−763.

227. Gonzalez J.E., Glucksmann A., Reuber T.L., Walker G.C. Exopolysaccharides and Rhizobium /we//7ofr'-alfalfa interactions // In: New Horizons in Nitrogen Fixation /ed. Palacios R. Kluwer Academic Publishers. 1993. P.203−206.

228. Graves A.C.F., Goldman S.L. The transformation of Zea mays seedlings with Agrobacterium tumefaciens II Plant Molec.Biol. 1986.V.7.P.43−50.

229. Graves A.E., Goldman S.L., Banks S.W., Graves A.C.F. Scanning electro microscope studies of Agrobacterium tumefaciens attachment to Zea mays, Gladiolus sp., and Triticum aestivum Hi. Bacteriol. 1988. V.170. №.3. P.2395−2400.

230. Gray J., Wang J., Gelvin S.D. Mutation of the mi a A gene ofAgrobacterium tumefaciens results in recent vir gene expression //J.Bacteriol.V.174. №.4.P. 1086−1098.

231. Graves A.C.F., Goldman S.L. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of the minocot genus Gladiolus: detection of expression of T-DNA-encoded genes. // J.Bacteriol. 1987. V.169. P.1745−1746.

232. Greene E.A., Zambryski P. Agrobacteria mate in opine dens // Curr.Biol. 1993. V.3. P.507−509.

233. Guralnik B., Thomson G., Citovsky V. Transport of DNA into the nuclei of Xenopus oocytes by a modified VirE2 protein of Agrobacterium II Plant Cell. 1996. V.8. P.363−373.

234. Grey J.X., Zhan H., Levery SB, Battisti L., Rolfe B.G., Leigh J.A. Heterologous exopolysaccharide production in Rhizobium sp. Strain NGR234 and consequences for nodule development // J. Bacteriol. 1991. V.173. №.10. P.3066−3077,.

235. Haahtela K., Tarkka E., Korhonen T.K. Type 1 fimbria-mediated adhesion of enteric bacteria to grass roots // Appl.Environ.Microbiol. 1985. V.41. P.203−206.

236. Hamilton R., Fall V.Z. The loss of tumor-initiating ability of Agrobacterium tumefaciens by incubation at high temperature // Experimentia. 1971. V.27. P.229−230.

237. Hapfelmeier S., Domke N., Zambryski P., Baron C. VirB6 Is required for stabilization of VirB5 arid VirB3 and formation of VirB7 homodimers in Agrobacterium tumefaciens II J. Bacteriol. 2000. V. 182. №. 16. P. 4505−4511.

238. Hardy R.W.F., Holsten R.D. The acetylene-reduction assay for N-fixation: laboratory and field evaluation //Plant Physiol. 1968. V. 43. № 5. P. l 185−1207.

239. Harrington L.C., Rogerson A.C. The F pilus of Escherichia coli appears to support stable DNA transfer in the absence of wall-to-wall contact between cells 11 J.Bacteriol. 1990. V. 172. P. 7263−7264.

240. Hawes M.C., Pueppke S.G. Correlation between binding of Agrobacterium tumefaciens by root cap cells and susceptibility of plants to crown // Plant Cell Reports. 1987. V.6. №.4. P.287−290.

241. Hawes M.C., Smit L.Y. Requirement for chemotaxis in pathogenisity of Agrobacterium tumefaciens on roots of soil-grown pea plants // 1989.V.171.P.5668−5675.

242. He S.Y. Hrp-controlled interkingdom protein transport: learning from flagellar assembly? // Trends Microbiol. 1997. V.5. №.12.P. 489−495.

243. Heinrich D., Hess D. Chemotactic attraction of Azospirillum lipoferum by wheat roots and characterisation of some attractants //Can. J. Microbiol. 1986. V.36. №.3. P.621−625.

244. Herrera-Estrella L., De Block M., Messens E., Hemalsteens J.-P., Van Montagu M., J. Schell. Chimeric genes as dominant selectable markes in plant cells // The EMBO J. 1987. V.2. №.6. P. 987−995.

245. Hereira-Estrella A., Montagu M.V., K. Wang. A bacterial peptide acting as a plant nuclear targeting signal: The amino-terminal portion of Agrobacterium VirD2 protein directs a.

246. P-galactosidase fusion protein into tobacco nuclei // Proc. Natl.Acad. Sci. USA. 1990. V.87. P.9534−9537.

247. Hernalsteens J.-P. The Agrobacterium tumefaciens Ti plamid as a host vector system for introducing. foreign DNA in plant cells //Nature. 1980. V.287. P.654−656.

248. Hernalsteens J.-P., Thia-Toong L., Schell J., Montagu M.V. An Agrobacterium-transformed cell culture from the mo№cot Asparagus officinalis II The EMBO J. 1984. V.3. №.13. P.3039−3041.

249. Hisamatsu M., Amemura A., Matsuo T., Matsuda H., Harada T. Cyclic (1−2)P-D-glucan and the octasaccharide repeating unit of succinoglycan produced by Agrobacterium II J. Gen. Microbiol. 1982. V.128. P.1873−1879.

250. Hisamatsu M., Amemura A., Koizumi K., Utamura T., Okada Y. Structural studies on cyclic (l, 2)-p-D-glucans (cyclosophorans) produced by Agrobacterium and Rhizobium II Carbohydr.Res. 1983. V. 121. P.31−40.

251. Hisamatsu M. Cyclic (l, 2)-p-D-glucans (cyclosophorans) produced by Agrobacterium and Rhizobium species // Carbohydr.Res. 1992. V.31. P.137−146.

252. Hodgson R., Riker A.J., Peterson W.H. Polysaccharide production by virulent and attenuated crown-gall bacteria//J. Biol. Chem. 1945. V.158. P.89−100.

253. Hoejmakers J.Y.J., BootsmaD. Incisions for excision//Nature. 1994.V.371.P.654−655.

254. Hohn B., Koukolikova-Nicola Z., Durrenberger F., Bakkeren G., Koncz C. The T-DNA on its way from Agrobacterium tumefaciens to the plant // Kluwer Academic Publishers. The Netherlands. 1991. V.l. P. 19−27.

255. Hollingsworth R.I., Dazzo F.B. The complete structure of the trifoliin a lectin-binding capsular polysaccharide of Rhizobium trifolii 843 //Carbohydr. Res. 1988. V. l 72. P.97−112.

256. Hooykaas P.J.J., Klapwijk P.M., Nuti M.P., Schilperoort R.A., Rorsch A. Transfer of the Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid to avirulent Agrobacterium and to Rhizobium ex planta II J. Gen. Microbiol. 1977. V.98. P.477−484.

257. Hooykaas P.J.J., van Brussel A.A.N., den Dulk-Ras H., van Slogteren G.M.S., Schilperoort R.A. Sym plasmid of Rhizobium trifolii expressed in different rhizobial species and Agrobacterium tumefaciens //Nature. 1981. V.291. P.351−353.

258. Hooykaas P.J.J., Peerbolte R., Regensburg-Tuink A.J.G., de Vries P., Schilperoort R.A. A chromosomal linkage map of Agrobacterium tumefaciens and a comparison with the maps of Rhizobium sp. //Mol.Gen.Genet. 1982a. V. l 88.P. 12−17.

259. Hooykaas P.J.J., den Dulk-Ras H., R.A. Schilperoort. Method for the transfer of large cryptic, non-self-transmissible plasmids: ex planta transfer of the virulence plasmid of Agrobacterium rhizogenes II Plasmid. 19 826. V.8.P.94−96.

260. Hooykaas P.J.J., A.G.M. Beijersbergen. The virulence system of Agrobacterium tumefaciens II Annu. Rev.Phytopathol.1994. V.32. P. 157−179.

261. Hooykaas P.J., Schilperoort R. A. Agrobacterium and plant genetic engineering // Plant Mol. Biol. 1992. V.19. P.15−38.

262. Hooykaas P.J., Beijersbergen A.G.M. The virulence system of Agrobacterium tumefaciens// Annu. Rev. Phitopathol. 1994. V.32. P. 157−179.

263. Howard E., Citovsky V. The emerging structure of the Agrobacterium T-DNA transfer complex//BioEssays 1990. V.12. №.3.P. 103−108.

264. Howard E.A., Zupan J.R., Citovsky V., Zambryski P.C. The VirD2 protein of A. tumefaciens contains a C-terminal bipartite nuclear localization signal: implications for nuclear uptake of DNA in plant cells //Cell. 1992. V.68. P.109−118.

265. Hrabak E.M., Urbano M.R., Dazzo F.B. Growth-phase-dependent immu№determinants of Rhizobium trifolii lipopolysaccharide which bind trifoliin A, a white clover lectin // J. Bacteriol. 1981. V. 148. №. 2. P. 697−711.

266. Huang Y. VirA, coregulator of Ti-specified virulence genes, is phosphorylated in vitro II J.Bacteriol. 1990. V. 172. P. 1142−1144.

267. Huang Y-S. Ultrastructure of bacterial penetration in plants // Ann.Rev.Phytopathol. 1986. V.24. P.141−157.

268. Hultgren S.J., Normark S., Abracham S.N. Chaperone-assembly and molecular architecture of adhesive pili//Ann.Rev.Microb. 1991. V.45. P.383−415.

269. Hwang I., Cook D.M., Farrand S.K. A new regulatory element modulates homoserine lactone-mediated autoinduction of Ti plasmid conjugal transfer //J.Bacteriol. 1995. V.177. № 2. P.449−458.

270. Hwang J.-U., Suh S., Yi H., Kim J., Lee J. Actin filaments modulate both stomatal opening and inward Kchannel activities in guard cells of Vicia faba L.// Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 335−342.

271. Hwang I., Smyth A.J., Luo Z.Q., Farrand S.K. Modulating quorum sensing by antiactivation: TraM interacts with TraR to inhibit activation of Ti plasmid conjugal transfer genes //Mol. Microbiol. 1999. V.34.V.2. P.282−294.

272. Ippen-Ihler K., Minkley E.G. Jr., The conjugation system of F, the fertility factior of Esherichia coli //Ann.Rev.Genet. 1986.V.20.P.593−624.

273. Inon de Iannino N., Ugalde R.A. Biochemical characterization of avirulent Agrobacterium tumefaciens chvA mutants: synthesis and excretion of p-(l, 2) glucan // J.Bacteriol. 1989. V.171. P.2842−2849.

274. Irving H., Gehring C., Parish R. Changes in cytosolic pH and calcium of quard cells precede stomatal movements //Proc. Natl. Acad.Sci. USA 1992. V. 89. P. 1790−1794.

275. Isaacson R.E. Pilus adhesins // In: Bacterial Adhesion Mechanisms and Phisiological Significance / Eds. Savage D.C., Fletcher M. Plemium press. New York and London. 1985. P.307−336.

276. Jacob N., Ritchie S., Assman S.V., Gilroy S. Abscisic acid signal transduction in guard cells is mediated by phospholipase D activity // Proc. Natl. Acad.Sci. USA 1999. V. 96. P.12 192−12 197.

277. Jain D.K., Patriquin D.G. Root hair deformation, bacterial attachment and plant growth in wheat Azospirillum associations //Appl. Environm. Microbiol. 1984. V.48. № 6. P. 12 081 213.

278. Jain D.K., Rennie R.J. Use of the spermosphere model the screening of wheat cultivars and N2-fixation // Can. J.Microbiol. 1986.V.32. № 4.P.285−288.

279. Johansen I., Boye E. Acquisition of tumour-inducing ability by non-oncogenic agro bacteria as a result of plasmid transfer// Nature. 1975. V.255. P.742−743.

280. Jones L.A., Shirasu K., Kado C.I. The product of the virB4 gene of Agrobacterium tumefaciens promotes accumulation of VirB3 protein 11 J. Bacteriol. 1994. V. 176. №.17. P.5255−5261.

281. Jones C.H., Pinkner J. S., Roth R, Heuser J., Nicholes A.V., Abraham S.N., Hultgren S. J. FimH adhesin of type 1 pili is assembled into a fibrillar tip structure in the Enterobacteriaceae II Proc.Natl.Acad.Sci.USA 1995. V.92. №. 6. P.2081;2085.

282. Jones A.L., Lai E-M., Shirasu K., Kado C.I. VirB2 is a processed pilin-like protein encoded by the Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid //J.Bacteriol. 1996. V.178.P. 57 065 711.

283. Kado C.I. Molecular mechanisms of crown gall tumorigenesis // Critical. Rew. In Plant Sci.1991. V.10. V.l.P.1−32.

284. Kado C.I. Agrobacterium-mediated transfer and stable incorporation of foreign genes in plants // In: Bacterial Conjugation / ed. Clewell D.B. Plenum Press, New York. 1993. P.243−253.

285. Kado C. I. Promiscuous DNA transfer system of Agrobacterium tumefaciens: role of the virB operon in sex pilus assembly and synthesis. // Molec. Microbiol. 1994. V.12. №.1. P. 1722.

286. Kahl G. Molecular biology of wound healing: the conditioning phenomenon // In: Molecular Biology of Plant Tumors. Kahl G., Schell J. (eds.). New York Academic Press. 1982. P.211−268.

287. Kahn M.E., Barany F., Smith H.O. Transformosomes: specialized membraneous structures that protect DNA during Haemophilus transformation IIProc. Natl. Acad. Sci. USA 1982. V.80. P.6927−6931.

288. Kanvinde L., Sastry G.R.K. Agrobacterium tumefaciens is a diazotrophic bacterium // Appl.Environm.Microbiol.1990. V.56.P.2087;2092.

289. Kapulnik Y., Okon Y., Heeins Y. Changes in root morfology of wheat caused by Azospirillum inoculation //Can. J. Microbiol. 1985. V.31. №.10. P. 881−887.

290. Kapulnik Y., Okon Y., Heins Y. Yield response of spring wheat cultivars (Triticum aestivum and Triticum turgidum) to inoculation with Azospirillum brasilense under field conditions //Biol. Fert. Soil. 1987. V.4. №.½. P.21−26.

291. Karasev A.V., Kashina A.S., Gelfand V.I., Dolja Y.V. HSp70-related 65 kDa protein of beet yellows closterovirus is a microtubule-binding protein //FEBS Letters. 1992.V.304.P.12−14.

292. Katzy E.I., Iosipenko A.D., Igorenkov D.A., Zuravleva E.A., Panasenko V.I., Ignatov V.V. Involving of Azospirillum brasilense plasmid DNA in the production of indol acetic acid //FEMS Microbiol. Letters, 1990.V.72.P.1−4.

293. Kersters K., De Ley J., Sneath P.H.A., Sackin M. Numerical taxonomic analysis of Agrobacterium //J.Gen.Microbiol. 1973. V.78. P.227−239.

294. Keller M., Muller R, Simon R., Puhler A. Rhizobium meliloti genes for exopolysaccharide synthesis and nodule infection located on megaplasmid 2 are actively transcribed during symbiosis // Molec. Plant Microbe Interact. 1988. V. 1. P.267−274.

295. Kemner J.M., Liang X., Nester E.W. The Agrobacterium tumefaciens virulence gene chvE is a part of a putative ABC-type sugar transport operon //J.Bacteriol. 1997.V.179. №.7. P.2452−2458.

296. Kerr A. Transfer of virulence between isolates of Agrobacterium //Nature. 1969. V.223. P.1175−1176.

297. Kerr A., Nane M.E. Agrocins and the biological control of crown gall // Biological Sciences. 1984.V.1. №.1. P. 1−4.

298. Kerr A. The genus Agrobacterium! I In: The Prokaryotes. Second edition. / Eds ABalows, H.G. Truper, M. Dworkin, W. Harder, K-H. Schleifer. 1992. V. EI SpringerVerlag. P.2214−2235.

299. Kijne J.W., Smit G., Diaz C.L., Lugtenberg B.J.J. Lectin-enhanced accumulation of manganis-limited Rhizobium leguminosarum cells on pea root hair tips // J.Bacteriol. 1988. V.170. P.2994−3000.

300. Kim M., Hepler P.K., Eun S.-O., Ha K.S., Lee Y. Actin filaments in mature guard cells are radially distributed and involved in stomatal movement // Plant Physiol. 1995. V.109. P.1077−1084.

301. Klimke W.A., Frost L.S. Genetic analisis of the role of the transfer gene, trciN, of the F and RlOO-l'plasmids in mating pair stabilization during conjugation // J.Bacteriol. 1998. VI80. № 16.P.4036−4043.

302. Knauf V.C., Panagopoulos C.G., Nester E. W. Genetical factor controling the host range of Agrobacterium tumefaciens II Phytopathology. 1982. V.72. №.12. P.1545−1549.

303. Knaf V.C., Yanofsky M., Montoya A., Nester E.W. Physical and functional map of an Agrobacterium tumefaciens tumor-inducing plasmid that confers a narrow host range// J. Bacteriol. 1984. V.160. No.2. P.546−568.

304. Knebel W., Quader H., Schnepf E. Mobile and immobile endoplasmic reticulum in onion bulb epidermis cells: shortand long-term observation with a confocal laser scanning microscope // Eur.J.Cell.Biol. 1990. V.52.P.328−340.

305. Kondorosi A., Kondorosi E., Pankhurst C.E., Broughton W.J., Banfalvi Z. Mobilization of Rhizobium meliloti megaplasmid earring №dulation and nitrogen fixation genes into other rhizobia and Agrobacterium II Mol. Gen. Genet. 1982. V.188. P.433−439.

306. Krens F.A., Molendijk L., Wullems G.J., Schilperoort R.A. The role of bacterial attachment in the transformation of cell-wall-regenerating tobacco protoplasts by Agrobacterium tumefaciens // Planta. 1985. V.166. P.300−306.

307. Krivopalov Yu.V., Chumakov M.I. Electron microscopy of Agrobacterium-wheat roots surface interactions //Abstr. VHth Eastern European Symp. On Biol. Nitr.Fix., 22−26 Sept., 1992, Saratov. Russia. PD.4.

308. Kuehn M.J., Ogg D.J., Kihlberg J., Slonim L.N., Flemmer K., Bergforrs T., S.J. Hultgren Structural basis of pilus subunit recognition by the PapD chaperone // Science. 1993.V.262.P.1234−1241.

309. Kuldau G., De Vos G., Owen J., McCaffrey M., Zambryski P. The virB operon of Agrobacterium tumefaciens pTiC58 encodes 11 open reading frames // Mol.Gen.Genet. 1990. V.221. P.256−266.

310. Lai E-M., Kado C.I. Processed VirB2 is the major subunit of the promiscuos pilus of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1998. V.180. P.2711−2717.

311. Langridge P., Brettschneider R., Lazzeri P., Lorz H. Transformation of cereals via Agrobacterium and the pollen pathway: a critical assesment // The Plant Journal.1992. V.2. №.4. P.631−638.

312. Lanka E., Wilkins B. DNA processing reaction in bacterial conjugation // Ann. Rev. 1995. V. 64.P.141−169. .

313. Larson R.I., Neal Jr. J. Selective colonization of the rhizospheue of wheat by nitrogen-fixing bacteria // Environmental Rose of Nitrogen-fixing Blue-green and Asymbiotic Bacteria / ed. U. Granhall. Ecol.Bull. Stockholm. 1978.V.26. №.3.P.331−342.

314. Lee C., Chen L.B. Dynamic behavior of endoplasmic reticulum in living cells // Cell. 1988.V.54. P.37−46.

315. Lee C.A. Type III secretion systems: machines to deliver bacterial proteins into eukaryotic cells? // Trends Microbiol. 1997. V.5. №.4. P.148−156.

316. Lee L-Y., Gelvin S.B., Kado C.I. pSa causes oncogenic suppression of Agrobacterium by inhibiting VirE2 protein export // J.Bacteriol. 1999. V. 181 .P. 186−196.

317. Leigh J.A., Signer E.R., Walker G.C. Exopolysaccharide-deficient mutants of Rhizobium meliloti that form ineffective №dules //Proc.Natl.Acad.Sci.USA. 1985. V.82. P.6231−6235.

318. Leigh J.A., Reed J.W., Hanks J.F., Hirsch A.M., Walker G.C. Rhizobium meliloti mutants that fail to succinylate their calcofluor-binding exopolysaccharide are defective in №dule invasion // Cell. 1987.V.51. P.579−587.

319. Leigh J.A., Coplin D.L. Exopolysaccharides in plant-bacterial interactions // Annu. Rev. Microbiol. 1992. V.46. P.307−346.

320. Leckie C.P., McAinsh M.R., Allen G.J., Sanders D., Hetherington A.M. Abscisic acid-induced stomatal closure mediated by cyclic ADP-ribose //Proc.Natl.Acad.Sci.USA. //1998.V.95. P. 15 837−15 842.

321. Lenk R, Ramson L., Kaufmann Y., Penman S. A cytoskeletal structure with associated polyribosomes obtained from HeLa cells // Cell. 1997.Y. 10. P.57−78.

322. Lessl M., Balzer D., Pansegrau W., E. Lanka Sequence similarities between the RP4 Tra2 and the TiVirB region strongly support the conjugation model for T-DNA transfer //J.Biol.Chem.1992. V. 267. P.20 471−20 480.

323. Lessl M., Lanka E. Common mechanisms in bacterial conjugation and Ti-mediated transfer to plant cells//Cell. 1994. V.77. P.321 -324.

324. Leroux B., Yanofsky F., Winans S.C., Ward J.E., Zieger S.F., E.W. Nester Characterization of the virA locus of Agrobacterium tumefaciens: a transcriptional regulator and host range determinant//EMBO J. 1987. V.6.P.849−856.

325. Lethbridge G., Davidson M.S. Root-associated nitrogen-fixing nutrition of wheat estimated by 15N isotope dilution method //Soil Biol. Biochem. 1983. V.15. №.4. P. 365−374.

326. Lichtscheidl I., Lancell S. Actin-endoplasmic reticulum complexes in Drosera. Their structural relatioinship with the plasmalemma, nucleus, and organelles in cell prepared by high pressure freezing //Protoplasma. 1990. V.155. P. l 16−126.

327. Lin B.-C., C.I. Kado. Studies on Agrobacterium tumefaciens. VII. Avirulence induced by temperature and ethidium bromide//J. Microbiol. 1977. V.23. P. 1554−1561.

328. Lippincott B.B., Lippincott J.A. Bacterial attachment to a specific wound site as an essential stage in tumor initiation by Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1969. V. 97. №.2. P.620−628.

329. Lippincott J.A., Beiderbeck R., Lippincott B.B. Utilization of octopine and №paline by Agrobacterium //J.Bacteriol. 1973 .V.l 16. № 1. P.378−383.

330. Lippincott J.A., Lippincott B.B. The genus Agrobacterium and plant tumorigenesis // Ann. Rev. Microbiol. 1975. V.29. P.377−398.

331. Lippincott B.B., Whatley M.H., Lippincott J.A. Tumor induction by Agrobacterium involves attachment of the bacterium to a site on the host plant cell wall // Plant Physiol. 1977. V.59. P.388−390.

332. LongS., Reed J. W., Himawan J., Walker G.C. Genetic analysis of a cluster of genes required for synthesis of the calcofluor-binding exopolysaccharide of Rhizobium meliloti II J.Bacteriol. 1988.V. 170. №.9. P.4239−4248.

333. Lorz H., Baker B., Schell J. Gene transfer to cereal mediated by protoplast transformation // Mol. Gen. Genet. 1985.V.199.P. 178−182.

334. Lynch J.M. Soil Biotechnology// In: Microbiological factors in crop productivity. Blackwell scientific Publication. 1983. P.191.

335. Magalhaes F.M.M., Partiguin D., Dobereiner J. Infection of field grown maize with Azospirillum spp. //Rev.Brasil.Biol.l979.V.39.№ 6.P.589−296.

336. Mantis N.J., Winans S.c. The chromosomal response regulatory gene chvl, of Agrobacterium complement an Escherichia coli phoB virulence 11 J.Bacteriol. 1993. V.175.№.20. P.6626−6636.

337. Marsuda I., Sato Z. Bending symptoms of young rice seedlings grown innursery flat causal agent of bacterial stripe of rice EI. Mode of infection // Bull. Natl.Inst. Agric.Res. Ser.C.1983.V.38.P. 169−180.

338. Martens R. Apparatus to study the quantitative relationships between root exudates and microbial populations in the rhizosphere// Soil Biol. Biochem. l982.V.14.№ 3. P.315−317.

339. Marvin D.A., Hohn B. Filamentous bacterial viruses // Bacteriol.Rev. 1969. V.33. P. 172−209.

340. Matthysse A.G., Wyman P.M., Holmes K.V. Plasmid-dependent attachment of Agrobacterium tumefaciens to plant tissue culture cells // Inf. Immun. 1978. V.22. №.2. P.516−522.

341. Matthysse A.G., Holmes K.V., Gurlitz R.H.G. Elaboration of cellulose fibrils by Agrobacterium tumefaciens during attachment to carrot cells//J.Bacteriol. 1981. V.145. №.1. P.583−595.

342. Matthysse A. G., Holmes K.V., Gurlitz R.H.G. Binding of Agrobacterium tumefaciens to carrot protoplasts // Physiol. Plant Pathol. 1982. V.20. P.27−33.

343. Matthysse A., Gurlitz R.H.G. Plant cell range for attachment of Agrobacterium tumefaciens to tissue culture cells //Physiol. Plant Pathol. 1982. V.21. P.381−387.

344. Matthysse A.G. Role of bacterial cellulose fibrils in Agrobacterium tumefaciens infection // J. Bacteriol. 1983. V. 154. №.2. P. 906−915.

345. Matthysse A.G. Mechanisms of bacterial adhesion to plant surfaces // In: Bacterial Adhesion Mechanisms and Phisiological Significance / Eds. Savage D.C., Fletcher M. New York and London. Plemium Press. 1985. P.255−278.

346. Matthysse A.G. Effect of plasmid pSa of auxin on attachment of Agrobacterium tumefaciens to carrot cells //Appl.Environ.Microbiol. 1987a. V.153. №.10. P. 2574−2582.

347. Matthysse A.G. Characterization of nonattaching mutants of Agrobacterium tumefaciens //J.Bacteriol. 1987b. V.169. №.1. P.313−323.

348. Matthysse A.G., White S., Lightfoot R. Genes requered for cellulose synthesis in Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1995a.V.177.№.4.P. 1069−1075.

349. Matthysse A.G., Thomas D.L., White S. Mechanism of cellulose synthesis in Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1995b.V.177.№.4.P. 1076−1081.

350. Matthysse A.G., McMahan S. Root colonization by Agrobacterium tumefaciens is reduced in eel, attB, attD, and attR mutants //Appl. Environ. Microbiol. 1998. V. 64. №. 7. P. 2341−2345.

351. Matzk A., Mantell S., Schieman J. J. Localization of persisting agrobacteria in transgenic tobacco plants //MPMI. 1996. V.9.№.5. P.373−381.

352. McAinsh M.R., Brownlee C., Hetherington A.M. Visualizing changes in cytosolic-free Ca2+ during the response of stomatal guard cells to abscisic acid // Plant Cell. 1992.V.4.P. 11 131 122.

353. Mclntare F.C., Peterson W.N., Riker A.J. A polysaccharide produced by crown-gall organism // J.Biol.Chem. 1942. V. 143. P.491 -496.

354. McLean B.G., Zupan J.R., Zambryski P.C. Tobacco mosaic virus movement protein associates with the cytoskeleton in tobacco cells //Plant Cell. 1995.V.7. P.2101−2114.

355. McMichael J.C., Ou J.T. Structure of common pili from Escherichia coli II J.Bacteriol. 1979. V.138. P.969−975.

356. Mehlin H., Daneholt B., Skoglund U. Translocation of a specific premessenger ribonucleoprotein particle through the nuclear pore studies with electron microscope tomography//Cell. 1992. V.69. P.605−613.

357. Meletzus D., Eichenlaub R. Transformation of the phytopathogenic bacterium Clavibacter. mishiganese by electroporation and development of a cloning vector//J.Bacteriol. 1991.V.173.№.1. P.184−190.

358. Messens E., Dekeyser R, Stachel S. Nontransformable Triticum monococcum monocotyledonous culture produces the potent Agrobacterium v/r-inducing compount ethyl ferulate//Proc. Natl.Acad.Sc.USA. 1990.V. 87.P.4368−4372.

359. Merlo D.J., Nester E.W. Plasmid in avirulent strains of Agrobacterium //J. Bacteriol. 1977. V.129. №.1. P. 76−80.

360. Metts J., West J., Doores S.H., Matthyss A.G. Characterization of three Agrobacterium tumefaciens avirulent mutantion that affect induction of vir genes // J. Bacteriol. 1991. V.173. №.3. P. 1080−1087.

361. Mezit L. A., Lucas W.J. Plasmodesmal cell-to-cell transport of protein and nucleic acids // Plant Molec. Biol. 1996. V.32.P.251−273.

362. Mew T.W., Mew I.C., Huang J.S. Scanning electron microscopy of virulent and avirulent strains of Xanthomonas campestris pv. Oryzae on rice leaves // Phytopathology.1984. Y.74. P.635−641.

363. Michels R., Maris M., Van Stochem M., Vanderleyden J., Van Gool A. Homology of Azospirillum DNA with the Agrtobacterium chromosomal virulense region // Arch.Int. Physiol. Biochem. 1986.V.94.№ 1 .P.33.

364. Miller H.N., Grane G.L. Relative susceptibility of chrysantemum cultivars to A. tumefaciens II Plant Disease Reporter. 1975. V.59. P.576−581.

365. Mills K.K., Bauer W.D. Rhizobium attachment to clover roots // J.Cell.Sci. Suppl.1985. V.2. P.333−345.

366. Minkley E.G. Jr., Polen S. Brinton C.C., Jr., Ippen-Ihler K. Identification of the structural gene for F-pilin // J.Mol.Biol. 1976. V. 108. P. 111 -121.

367. Model P., Russel M. Procariot secretion//Cell. 1990. V.61. P.739−741.

368. Mol O., Oudega B. Molecular and structural aspects of fimbriae biosynthesis and assembly in Escherichia coli IIFEMS Microbiol. Lett. 1996. V. 19. P.25−52.

369. Montoya A.L., Chilton M.D., Gordon M.P., Sciaky D., Nester E.W. Octopine and №paline metabolism in Agrobacterium tumefaciens and crown gall tumor cells: role of plasmid genes. 111. Bacteriol. 1977. V.129. №.1. P. 101−107.

370. Moore D., Sowa A., Ippen-Ihler K. The effect of tra mutations on the synthesis of the F pilin membrane polypeptide // Mol.Gen.Genet. 1981.V.184. P.260−264.

371. Morbe J. A., Kuhlmann H., Schroder J. Differences in induction of Ti plasmid virulence genes virG and virD, and continued control of virD expression by four enternal factors // MPMI. 1989. V.2. P. 301−308.

372. Mushegian A.R., Fullner K.J., Koonion E.Y., Nester E.W. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1996. V.93. P.7321−7326.

373. Mysori R.S., Bassuner D., Deng X.B., Darfinian N.S., Motchoulski A., Ream W. Role of Agrobacterium tumefaciens VirD2 protein in T-DNA transfer and integration // MPMI. 1998. V. 11 .№.7. P.662−683.

374. Nagpal P., Khanuja S.P.S., Stanfield S.W. Suppression of the ndv mutant phenotype of Rhizobium meliloti by cloned exo genes //Mol. Microbiol. 1992. V.6. P.479−488.

375. Napoli C., Dazzo F., Hubbell D. Production of cellulose microfibrils by Rhizobium II Appl. Microbiol. 1975. V.30. №.1. P.123−131.

376. Napoli C., Sanders R., Carlson R., Albersheim P. Host-symbiont interactions: recognizing Rhizobium II Nitrogen Fixation V. EL/ Eds. Newton W.E. and Orme-Johnson W.H. 1980. Baltimore: Univ. Park Press, P. 189−203.

377. Napoli C., Albersheim P. Infection and nodulation of clover by nonmotile Rhizobium trifolii //J. Bacteriol. 1980. V. 141. №.2. P. 979−980.

378. Narasimhulu S.B., Deng X.-B., Sarria R., Gelvin S.B. Early transcription of Agrobacterium T-DNA genes in tobacco and maize // The Plant Cell. 1996. V.8. P.873−886.

379. Neal J.L., Atkinson Т., Larson RI. Changes in the rhizosphere microflora of spring wheat induced by disomic substtution of a chromosome // Can.J. Microbiol. 1970.V. 16. № 1. P.153−158.

380. Nester E.W., Gordon M.P., Amasino R.M., Yanofsky M.F. Crown gall: a molecular and physiological analysis // Ann. Rev. Plant Physiol. 1984. V.35. P.387−413.

381. Neu T.R. Significance of bacterial surface-active compounds in interaction of bacteria with interfaces //Microbiol. Rev. 1996. V.60. № 1. P. 151−166.

382. Ohyama K., Pelcher L.E., Schaefer A.E., Fowke L.C. In vitro binding of Agrobacterium tumefaciens to plant cells from suspension culture//Plant Physiol. 1979. V.63. P.382−387.

383. Okamoto S., Toyoda-Yamamoto A., Ito K., Takebe I., Machida Y. Localization and orientation of the VirD4 protein of Agrobacterium tumefaciens in the cell membrane //Mol.Gen.Genet. 1991. V.228. №. 1−2. P.24−32.

384. Okon Y., Kapulnik Y. Development and function of Azospirillum inoculated roots //Plant Soil. 1986. V.90. № .2. P. l93−210.

385. Otten L., De Greve H., Leemans J., Hain R., Hooykaas P., Schell J. Restoration of virulence of vir region mutants of A. tumefaciens strain B6S3 by coinfection with normal and mutant Agrobacterium strains // Mol.Gen. Genet. 1984. V.195. P. l 59−163.

386. Ou J.T., Anderson T.F. Role of pili in bacterial conjugation //J.Bacteriol. 1970. V.102. P.648−654.

387. Palleschi A., Crescenzi V. On the possible conformation of cyclic p (1,2)-D-glucans // Gazz. Chim. Ital. 1985.V.115.P.243−245.

388. Pan S.Q., Charles T., Jin S., Wu Z-l., Nester E: W. Preformed dimeric state of the sensor protein VirA is involved iruphnt-Agrobacterium signal transduction //Proc. Natl.Acad.Sci.USA. 1993.V.90. P. 9939−9943.'.

389. Panicker M.M., Minkley E.G. DNA transfer occurs during a cell surface contact stage of F sex factor-mediated bacterial conjugation // J.Bacteriol. 1985. V. 162. P. 584−590.

390. Pansergau W., Schoumacher F., Hohn B., Lanka E. Site-specific cleavage and joining of single-stranded DNA by VirD2 protein of Agrobacterium tumefaciens Ti plasmids: analogy to bacterial conjugation //Proc.Natl.Acad.Sci.USA.1993. V.90. P. l 1538−11 542.

391. Pansegrau W., Schroder W., Lanka E. Relaxase of IncP plasmid RP4 catalyzes a site-specific cleaving joining reaction of single-stranded DNA // Proc.Natl.Acad. USA 1993. V. 90. P.2925−2929.

392. Pansegrau W., Lanka E. Enzymology of DNA transfer by conjugation mechanisms // Progress in Nucl. Acid Res. & Molec.Biol. 1996. V.54. P. 197−251.

393. Penyalver R., Serra M.I., Duran-Vila N., Lopez M.M. Attachment of Agrobacterium tumefaciens. B6 and Agrobacterium radiobacter K84 to tomato root tips // Appl.Environm.Microbiol. 1996. V62. №. 9. P.3530−3534.

394. Pazour G.J., Ta C.N., Das A. Constitutive mutations of Agrobacterium tumefaciens transcriptional activator VirG// J.Bacterol. 1992. V.174. №.12. P.4109−4174.

395. Paszkowski J., Shillito R.D., Saul M. W" Mandak V., Hohn N., Hohn B., Potrykus I. Direct gene transferto plants //EMBO J.1984. V.3. P.2717−2722.

396. Petersen S., Stummann B., Olesen P., Henningsen K. Structure and function of root-inciding (Ri) plasmids and their relation to tumour inducing (Ti) plasmids // 1989. V.77. V.427−435.

397. Petit A., Temple J., Kerr A., Holsters M., van Montagu M., Schell J. Substrate induction of conjugative activity of Agrobacterium tumefaciens Ti plasmids // Nature. 1978. V.271. P.570−572.

398. Penalver R., Serra M.T., Duran-Vila N., Lopez M.M. Attachment of Agrobacterium tumefaciens B6 and A. radiobacter K84 to tomato root tips //Appl.Environm. Microbiol. 1996. V.62. №.9. P. 3530−3534. '.

399. Philip-Hollingworth S., Hollingworth R.I., Dazzo F.B. Host-range related structural features of the acidic extracellular polysaccarides of Rhizobium trifolii and Rhizobium leguminosarum //J.Biol. Chem. 1989b. V.264. №.3. P.1461−1466.

400. Philip-Hollingworth S., Hollingsworth R.I., Dazzo F.B. Host-range related structural features of the acidic extracellular polysaccarides of Rhizobium trifolii and Rhizobium leguminosarum //J.Biol. Chem. 1989. V.264. №.3. P.1461−1466.

401. Piers K.L., Heath J.D., Liang X., Stephens K.M., Nester E.W. Agrobacterium tumefaciens-med'mted transformation of yeast // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996. V.93. №. 4. P.1613−1618.

402. Piper K.R., von Bodman S. B., Farrand S.K. Conjugation factor of Agrobacterium lumefaciensf regulates Ti plasmid transfer by autoinduction//Nature. 1993.V.362. №. 6419. P. 448−450.

403. Plazinski J., Rolfe B.G. Analisis of the pectolytic activity of Rhizobium and Azospirillum strains isolated from Trifolium repens II J. Plant Physiol. 1985. V. 120. №. 1. P. 181 -187.

404. Prakash S., Sung P., Prakash L. DNA repair genes and proteins of Saccharomyces cerevisiae // Ann.Rev.Genet. 1993.V.27.P.33−70.

405. Priefer U.B. Genes involved on lipopolysaccharide production and symbiosis are clustered on the chromosome of Rhizobium leguminosarum biovar viciae VF39 //J.Bacteriol. 1989.V.171. №.11. P.6161−6168.

406. Planque K., Kijne J.W. Binding of pea lectins to a glycan type polysaccaride in the cell walls of Rhizobium legumnozarum //FEBS Microbiol.Lett. 1977. V.73. P.64−66.

407. Puchta H., Hohn B. From centiMorgans to base pairs: homologous recombination in plants// Trends in Plant Science. 1996. V.l. P.340−347.

408. Puepke S.G., Benny U.K. Agrobacterium tumorogenesis in potato, effect of added Agrobacterium lipopolysaccharides and the degree of methylation of added plant galacturonans //Physiol. Plant Pathol. 1983. V.23 P.439−446.

409. Pueppke S.G., Hawes M.C. Understanding the binding of bacteria to plant surfaces// Trends in Biotechnol. 1985. V.3. №.12. P.310−313.

410. Pugsley A.P. The complete general secretory pathway in gram-negative bacteria //Microbiol. Rev. 1993. V.57. №.1. P.50−108.

411. Puhler A., Klipp W., Weber G. Mapping and regulation of the structural genes niJK, nifD and nifH of R. meliloti / In: Moleculare Genetic of the Bacterium-Plant Interaction /Ed.A.Puhler, Spring er-Ferlag, Berlin, Heidenberg. 1983. P.69−78.

412. Puvanesarajan V., Schell F.M., Stacey G., Douglas C.J., Nester E.W. Role for linked-P-D-glucan in the virulence of Agrobacterium tumefaciens I I J.Bacteriol. 1985. V. l 64. №.1. P.102−106.

413. Puvanesarajan V., Schell F.M., Stacey G., Douglas C.J., Nester E.F. Role for linked-P-¦ D-glucan in the virulence of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1985. V. l64. №. 1.1. P.102−106.

414. Quader H., Hofmann A., Schnepf E. Reorganization of the endoplasmic reticulum in epidermal cells of onion bulbs scales after cold stress: involvement of cytoskeleton elements // Planta. 1989. V. l77. P.273−280.

415. Quader H., Fast H. Influence of cytosolic pH changes on the organization of the endoplasmic reticulum in epidermal cells of onion bulb scales // Protoplasma. 1990. V.157.P.225−230.

416. Raina J. L., Metzer E., Ravin A.W. Translation of the pre-synaptic complex formed upon DNA uptake by Streptococcus sangius and its inhibition by ethidium bromide // Mol.Gen.Genet. 1979. V. l79. P.249−259.

417. Raineri D.M., Bottino P., Gordon M.P., Nester E.W. Agrobacterium-medi&Xed transformation of rice (Oryza sativa L.) //Bio/technology. 1990. V.43. P. 33−38.

418. Raineri D.M., Boulton M.I., Davies J.W., E.W. Nester. VirA the plant-signal receptor, is responsible for the ti plasmid-specific transfer of DNA to maize by Agrobacterium II Proc. Natl. Acad.Sci.US A. 1993. V.90. P.3549−3553.

419. Rashkova S., Spudich G.M., Christie P.J. Characterization of memrane and protein interactions of the Agrobacteriun tumefaciens VirBll ATPase // J.Bacteriol. 1997. V. 179. P.583−591.

420. Reinhold B., Hurek T., Fendrick I. Cross-reaction of predominant nitrogen-fixing bacteria with enveloped round bodies in the root interrior of kallar grass //Appl. Environm. Microbiol. 1987. V. 53. № 4. P. 889−891.

421. Reinhold B.B., Chan S.Y., Renter T.L., Marra A., Walker G.C., Reinhold V.N. Detailed structural characterization of succinoglucan the major exopolysaccharide of Rhizobium meliloti Rml021 //J.Bacteriol. 1994.V.176.P.1997;2002.

422. Ren H., Gibbon B.C., Ashworth S.L., Sherman D.M., Yuan M., Staiger C.J. Actin purified from maize pollen functions in living plant cells //Plant Cell. 1997.V.9.P.1445−1457.

423. Rennie R., Larson R. Nitrogen fixation associated with disomic chromosomic substitution lines of spring wheat // Can.J.Bot. 1979.V.57. № 21. P.2771−2775.

424. Rennie R., Rennie D. Techniques for quantilying N2-fixation in association with nonlegumes under field and greenhouse conditions // Can. J. Microbiol. 1983.V.29. № 8. P.1022−1035.

425. Reuhs B.L., Kim J.S., A.G. Matthysse Attachment of Agrobacterium tumefaciens to carrot cells and Arabidopsis wound sites is correlated with the presence of a cell-associated, acidic polysaccharide//J.Bacteriol. 1997. V.179. №. 17. P.5372−5379.

426. Reynders L., Vlassak K. Conversion of tryptophan to indolacetic acid by Azospirillum brasilense //Soil Biol. Biochem. 1979. V. l 1. № 5. P.547−548.

427. Ridge R.W., Rolfe B.G. Rhizobium spp. degradation of legume root hair cell wall at the site of infection thread origin//Appl. Environm. Microbiol. 1986. V.50. № 3. P. 717−720.

428. Robertson J.L., Holliday T., Matthysse A.G. Mapping of Agrobacterium tumefaciens chromosomal genes affecting cellulose synthesis and bacterial attachment to host cells // J.Bacteriol. 1988. V.170. № 3. P.1408−1411.

429. Robinson J.B., Tuovinen O.H., Bauer W.D.Role of divalent cations in the subunit associations of complex flagella from Rhizobium meliloti //J.Bacteriol. 1992. V. l 74. № 1. P.3896−3902.

430. Rodriquez Cacerer E.A. Impruved medium for isolation of Azospirillum spp. // Appl.Environm. Microbiol. 1982. V.44. №.4. P.990−991.

431. Roine E., Wei W., Yuan J., Nurmiaho-Lassila E-L., Kalkinnen N., Romantschuk M., He S.Y. Hrp pilus: an Hrp-dependent bacterial surface appendage produced by Pseudomonas syringae pv. syringae II Proc. Natl. Acad. Sci.USA. 1997. V.94. P.3459−3464.

432. Romantschuk M. Attachment of plant pathogenic bacteria to plant surface // Ann.Rev.Phytopathol. 1992. V.30. P.225−243.

433. Romantschuk M., Nurmiaho-Lassila E-L., Roine E., Suomiemi A. Pilus-mediated adsorbtion of Pseudomonas syringae to the surface of host and non-host plant leaves I I J.Gen. Microbiol. 1993. V. 13 9. P.2251−2260.

434. Roos I.M., Hatting M.J. Scanning electron microscopy of Pseudomonas syringae pv. morsprnorum on weet cherry leaves //Phytopathol. Z. 1983. V. l08. P.18−25.

435. Rossi L., Escudero J., Hohn B., B.Tinland. Efficient and sensitive assay for T-DNADependent transient gene expression // Plant Mol. Biol. Rep. 1993. V. 11 .№ 3. P.220−229.

436. Rossi L., Hohn.B., Tinland B. Integration of complete transferred DNA units is dependent on the activity of virulence E2 protein of Agrobacterium tumefaciens II Proc. Natl. Acad. Sci.USA. 1996. V.93. P.126−130.

437. Russin W.A., Evert R.F., Vanderveer P. J., Sharkey T.D., Briggs S.P. Modification of a specific class of plasmodesmata and loss of sucrose export ability in the sucrose export defective 1 maize mutant//The Plant Cell. 1996. V.8. P.645−658.

438. Salmond G.P.C. Secretion of extracellular virulence factors by plant pathogenic bacteria // Ann.Rev.Phytopathol. 1994.V.32. P.181−200.

439. Salmond G.P.C., Reeves P.J. Membrane traffic wardens and protein secretion in gramnegative bacteria//Trends Biochem.Sci. 1993. V.18. P.7−12.

440. Sanger J.M., Chang R., Aschton D., Kaper J.B., Sanger J.W. Novel form of actin-based motility transport bacteria on the surface of infected cells // Cell Motil. Cytoskel. 1996. Y.34. P.279−287.

441. Schank S.C., Smith R.L., Wewiser C.C. Fluorescent antibody technique to identify Azospirillum brasilense associated with roots of grasses // Soil Biol. Biochem. 1979. V. 11. № 3. P.287−295.

442. Schafer W., Gorz A., Kahl G. T-DNA integration and expression in a mnocot crop plant after induction of Agrobacterium 11 Nature. 1987. V.327. P.529−532.

443. Scheiffele P., Pansgrau W., Lanka E. Initiation of Agrobacterium T-DNA processing // J.Biol.Chem. 1995. V.270. P.1269−1276.

444. Scher F.M., Ziegu G.S., Kloepper G.W. A method for assessing the root colonizing capacity of bacteria on maize // Can. J. Microbiol. 1984.V.30. Nol. P.151−157.

445. Scheu A.K., Economou A., Hong G.F., Ghelani S., Johnston A.W., Downie J.A. Secretion of the Rhizobium legumnosarum nodulation protein nodO by haemolysin-type systems // Molec. Microbiol. 1992. V.6. № 2. P.231−238.

446. Schmidt-Eisenlohr H., Domke N., Angerer C., Wanner G., Zambryski P.C., Baron C. Vir protein stabilize VirB5 and mediate its association with the T pilus of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1999. V.181. № 24. P.7485−7492.

447. Schroder G., Waffenschmidt S., Weiler E.W., Schroder J. The T-region of Ti plasmid codes for an enzyme synthesizing indole-3-acetic acid // Eur. J. Biochem. 1984. V.138. P.387−391.

448. Schroder J., Lintig J.V., Zanker H. Functional organization of the region responsible for nopaline and octopine catabolism in Ti plasmids of Agrobacterium tumefaciens II Kluwer Academic Publishers. The Netherlands. 1991. V.l. P.28−31.

449. Sen P., Chatterjee G., Kumar P.M., Sen S.K. Enhancement of attachment of Agrobacterium tumefaciens to plant cell surface results in increase in genetic transformation // J. Experimental.Biol. 1986. Y.24. P. 153−155.

450. Sharma S., Jain N., Shan A.K. Occurence of Azotobacter chroococcum in Pothos scandeus II Curr. Sci. l985.V.54.N 3. P.142−143.

451. Sheikholeslam S., Okubara P.A., Lin B.-C., Dutra J.C., Kado C.I. Large and small plasmid in tumorogenic and cured nontumorigenic Agrobacterium tumefaciens and in Agrobacterium radiobacter II Phytopathology. 1975. V.69. № 1. P. 132−135.

452. Sheikholeslam S.N., Weeks D.P. Acetosyringone promotes high efficiency transformation of Agrobacterium tumefaciens II Plant Molec. Biol. V.8. 1987. P.281−289.

453. Sheng J., Citovsky V. Agrobacterium-plmt cell DNA transport: have virulence proteins, will travel//Plant Cell. 1996. V.8. P.1699−1710.

454. Shimoda N., Toyoda-Yamamoto A., Aoki S., Machida Y. Genetic evidence for an interaction between the VirA sensor protein and the ChvE sugar-binding protein of Agrobacterium II J.Bacteriol. 1993. V.268. № 35. P.26 552−26 558.

455. Shimshick E.C., Hebert R.R. Adsorption of rhizobia to cereal roots //Bioch.Bioph.Res.Commun. 1978.V.84. № 3.P.736−742.

456. Shirasu K., Morel P., Kado C.I. Characterization of the virB operon of an Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid: nucleotide sequence and protein analysis // Mol.Microbiol. 1990.V.4.№ 7.P. 1153−1163.

457. Shirasu K., Kado C. I. Membrane location of the Ti plasmid VirB proteins involved in the biosynthesis of a pilin-like conjugative structure on Agrobacterium tumefaciens! I FEMS Microbiol. Letters. 1993b. V. 111. P.287−294.

458. Shurvinton C.E., Hodges L., Ream W. A nuclear localization signal and the C-terminal omega sequences in the Agrobacterium tumefaciens VirD2 endonuclease are important for tumor formation//Proc. Natl. Acad. Sci. USA .1992.V.89.P.11 837−11 841.

459. Silverman P.M. Towards a structural biology of bacterial conjugation//Mol. Microbiol. 1997. V. 23. P.423−429.

460. Simon R, Priefer U., Puler A. Vector plasmids for in vivo and in vitro manipulations of gramnegative bacteria // In: Mol.Genet.Bact. — Plant Interact. /Ed. A.Puler. Berlin Heidelberg: Springer-Verlag. 1983. P. 98−106.

461. Slogteren G.M.S.H.-V., Hoyokaas P.J.J., Schilperoort R.A. Expression of Ti plasmid genes in monocotyledonous plants infected with Agrobacterium tumefaciens //Nature. 1984. V.311. № 25. P.763−764. '.

462. Smith E.G., Townsend C.O. A plant tumor of bacterial origin //Science. 1907. V.25. P.671−673.

463. Smit G., Kjine J.W., Lugtenberg B.J.J. Correlation between extracellular firbils and attachment of Rhizobium leguminosarum to pea root hair tips // J.Bacteriol. 1986. V. 168.P.821−827.

464. Smit G., Kjine J.W., Lugtenberg B.J.J. Both cellulos fibrils and Ca 2±dependent adhesin are involved in the attachment of Rhizobium leguminosarum to pea root hair tips // J.Bacteriology. 1987. V.169. P.4294−4301.

465. Smit G., Kijne J.W., Lugtenberg B. J.J. Both cellulos fibrils and Ca 2±dependent adhesin are involved in the attachment of Rhizobium leguminosarum to pea root hair tips // J.Bacteriol. 1989. V.171. № 1. P.569−572.

466. Smit G. Adhesins from Rhizobiacea and their role in plant-bacterium interactions //Ph.D.This is. LeudenUniv. The Netherlands. 1994.

467. Smith H.M.S., Raikhel N.V. Nuclear localization signal receptor importin a associates with the cytoskeleton//Plant Cell. 1998. V.10. P.1791−1799.

468. Sokurenko E.V., Courtney H.S., Maslow J., Siitonen A., Hasty D.L. Quantitative differences in adhesiveness of type 1 fimbriated Escherichia coli due to structural differences in fimH genes /J.Bacteriol. 1995.V.177. № 13. P.3680−3686.

469. Soliman M.N., Sastry G.R.K. Chromobacterium lividum NCTC 10 590 is a nitrogen-fixing Agrobacterium radiobacter. In: Molecular Genetics of Plant-Microbe Interaction /Ed.Verma D.P.S., Brisson N., Maptinus NijhoffPublishers. 1987. P.307−308.

470. Sonti R.V., Chiurassi M., Wong D" Davies C.S., Harlow G.R., Mount D.W. Singer E.R. Arabidopsis mutants deficient in T-DNA integration // Proc. Natl. Acad. Sci.USA. 1995. V.92. P.11 786−11 790. '.

471. Spaink H.P. Regulation of plant morphogenesis by lipo-chitin oligosaccharides // Critic.Rev. in Plant Sciences. 1996.V.15. №.5,6. P.553−582.

472. Stachel S.E., Messens E., van Montagu M., Zambiyski P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens II Nature. 1985. V.318. P.624−629.

473. Stachel S.E., Timmerman B., Zambryski P. C. Generation of single-stranded T-DNA molecules during the initial stages of T-DNA transfer from Agrobacterium tumefaciens to plant cells // Nature. 1986a. V.322. P.706−711.

474. Stachel S.E., Zambryski. P.C. VirA and VirG control the plant-induced activation of the T-DNA transfer process of A. tumefaciens II Cell. 1986b. V.46. P.325−333.

475. Stachel S.E., Zambryski. P.C. Agrobacterium tumefaciens and the susceptible plant cell: a novel adaptation of extracellular recognition and DNA conjugation // Cell. 1986c. V.47. P. 155−157.

476. Stachel S.E., Nester E.W., Zambryski P.C. A plant cell factor induces Agrobacterium tumefaciens vir gene expression. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986d. V.83. P.379−383.

477. Stachel S.E., Nester E.W. The genetic and transcriptional organization of the vir region of the A6 Ti plasmid of Agrobacterium tumefaciens //EMBO J. 1986e. V.5.P.1445−1454.

478. Stachel S.E., Timmerman B., Zambryski P.C. Activation of Agrobacterium tumefaciens vir gene expression generates multiple single-stranded T-strand molecules from the pTiA6 T-region: requirement for 5' virD product//EMBO J. 1987.V.6. P.857−863.

479. Stanfield S.W., Ielpi L" O’Brochta D" Helinski D.R., Ditta G.S. The ndvA gene product of Rhizobium melilotiis required for P-(l, 2)-glucan production and has homology to the ATP-binding export protein HlyB //J.Bacteriol. 1988.V.170. P.3523−3530.

480. Staub T., Williams P.H. Factors influencing black rot lesion development in resistant and susceptible cabbage // Phytopathology. 1972. V.62.P.722−728.

481. Steck T.R., Kado C.I. Virulence genes promote conjugative transfer of the Ti plasmid between Agrobacterium strains //J.Bacteriol. 1990. V.172. P. 2191−2193.

482. Steck T.R. Ti plasmid type effects T-DNA processing in Agrobacterium tumefaciens II FEMS Microbiol. Lett. 1997. V.147. P.121−125.

483. Stemmer W.P.C., Sequeira L. Fimbriae of phytopathogenic and symbiotic bacteria // Phytopathol. 1987.V.77.№.12.P. 1633−1639.

484. Stephens K.M., Roush C., Nester E. Agrobacterium tumefaciens VirB 11 protein requires a consensus nucleotide-binding site for function in virulence // J. Bacteriol. 1995. V.77. № 1. P. 27−36.

485. Steenhoudt O., Vanderleyden J. Azospirillum, a free-living nitrogen-fixing bacterium closely associated with grasses: genetic, biochemical and ecological aspects //FEMS Microbiol. Rev. 2000.V.487−506.

486. Sundberg C.D., Meek L., Carroll K., Das A., Ream W. VirEl protein mediated export of the single-stranded DNA binding protein VirE2 from Agrobacterium tumefaciens into plant cells//J.Bacteriol. 1996. V.178. № 4. P. 1207−1212.

487. Sundberg C. D., Ream W. The Agrobacterium tumefaciens chaperone-like protein, VirEl, interacts with VirE2 at domains required for single-stranded DNA binding and cooperative interaction//J. Bacteriol. 1999.V. 181. №.21. P.6850−6855.

488. Swart S., Smit G., Lugtenberg B.J.J., Kijne J.W. Restoration of attachment, virulence and nodulation Agrobacterium tumefaciens chvB mutants by rhicadhesin // Mol.Microbiol. 1993. V.10. P.597−605.

489. Swart S., Lugtenberg B.J.J., Smit G., Kijne J.W. Rhicadhesin-mediated attachment and virulence of an Agrobacterium tumefaciens chvB mutant can be restored by growth in a highly osmotic medium // J.Bacteriol. 1994a. V.176. № 12. P.3816−3819.

490. Swart S. Phicadhesin-mediated attachment of Rhizobiacea II Ph.D.Thesis. Leiden Univ. The Netherlands. 1994.

491. Sykes L.C., Matthysse A.G. Time required for tumor induction by Agrobacterium tumefaciens. II Appl. Environm. Microbiol. 1986. V.52. № 3. P.597−598.

492. Tempe J., Petit A., Holsters M., Montagu M., Shell J. Termosensivity step associated with transfer of the Ti plasmid during conjugation possible relation to transformation in crown gall // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. V. 711. P. 2848−2849.

493. Thomas-Bauzon D., Weinhard P., Villencourt P., Balandreen J. The spermosphere model 1. Its use in greening, conting and isolating N2-fixing bactelria from the rhizosphere of rice //Can.J.Microbiol. 1982.V.28.№ 8.P. 922−928.

494. Thompson D. V, Melchers L.S., Idler K.B., Schilperoort R.A., Hooykaas P.J.J. Analysis of the complete nucleotide sequence of the Agrobacterium tumefaciens virB operon // Nucleic Acids Research. 1988. V.10. P. 4621−4636.

495. Thomashow M.F., Panagopoulos C.G., Gordon M.P., Nester E.W. Host range of Agrobacterium tumefaciens is determined by the Ti plasmid // Macmillan J. 1980. V.283. P.794−796.

496. Thomashow L. S., Reeves S., Thomashow M.F. Crown gall oncogenesis: evidence that a T-DNA gene from the Agrobacterium Ti plasmid pTiA6 encodes an enzyme that catalyzes synthesis of indoleacetic acid//Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1984. Y.81. P.5071−5075.

497. Thomashow M.F., ' Karlinsey J.E., Marks J.R., Hurlbert R.E. Identification of a new virulence locus in Agrobacterium tumefaciens that affects polysaccharide composition and plant cell attachment // J. Bacteriol. 1987. V. l69. № 7. P.3209−3216.

498. Thorstenson Y.R., Kuldau G.A., Zambryski P.C. Subcellular localization of seven VirB proteins of Agrobacterium tumefaciens: implications for the formation of a T-DNA transport structure // J. Bacteriol. 1993. V.175. № 16. P.5233−5241.

499. Thorstenson Y.R., Zambryski P.C. The essential virulence protein VirB8 localizes to the inner membrane of Agrobacterium tumefaciens //J.Bacteriol. 1994. V.176. № 6. P.1711−1717.

500. Tien T.M., Gaskins H.M., Hubbell D.H. Plant growth substances produced by AzospiriUum brasilense and effect on the growth of pearl millet (Pennisetum americanum) II Appl. Environm.Microb.l986.V.37. № 6.P.1016−1024.

501. Tinland B., Koukolikova N.Z., Hall M.N., Hohn B. The T-DNA-linked VirD2 protein contains two distinct functional nuclear localization signals // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V.89.P.7442−7446.

502. Tinland B., Hohn B. Plant genome transformation by Agrobacterium tumefaciens is mediated by a nucleoprotein complex. /In: Virus strategies. Molecular biology and Pathogenesis. Eds W. Doerfler and P. Bohn.1993. P.351−359.

503. Tinland B., Hohn B., H. Puchta Agrobacterium tumefaciens transfers single-stranded trasferred DNA (T-DNA) into the plant cells nucleus //Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1994. V.91. P.8000−8004.

504. Tinland B., Schoumacher F., Gloeckler V., Bravo-Angel A.M., Hohn B. The Agrobacterium tumefaciens virulence VirD2 protein is responsible for precise integration of T-DNA into plant genome // The EMBO J. 1995.V.14. P.3585−3595.

505. Tinland B. The integration of T-DNA into plant genomes// Trends of Plant Science 1996. V.l. P. 178−184.

506. Tomoeda M., Inuzuka M., Date T. Bacterial sex pili // Prog. Bioph. Mol. Biol. 1975. V.30. P. 23−56.

507. Tuker E., Boss W.F. Mastoporan-induced intracellular Ca 2+ fluxes may regulate cell-to-cell communication in plants // Plant Physiol. 1996. V. l 11. P. 459−467.

508. Tummuru M.K.R., Sharma S.A., Blaser M.J. HelibacterpyloripicB, a homologue of the Borde te lia pertussis toxin secretion protein, is requered for induction of IL-8 in gastric epithelial cells. //Mol.Microbiol. 1995. V. l8. P.867−876.

509. Turkina M.V., Kulikova A.L., Sokolov O.I., Bogatirev V.A., Kursanov A.L. Actin and myosin filaments from the conducting tissues of Heraclium sosnowsky //Plant Physiol. Bioch. 1987. V.25. P.689−696.

510. Tzfira T., Rhee Y., Chen M.-H., T. Kunik, Citovsky V. Nuclear acid transport in plant-microbe interactions: the molecules that walk through the walls // Annu. Rev. Microbiol. 2000. 54:187−219.

511. Trulson A.J., Simson R.B., Shahin E.A. Transformation of cucumber (Cucumis sativus L.) plants with Agrobacterium rhizogenes II Theor. Appl.Genet. 1986.V.73. P. l 1−15.

512. Umali-Garcia M., Hubbell D.H., Gaskins M.H. Process of infection of Panicum maximum by Spirillum lipoferum // Ecol.Bull.l978a.V.10.№ 26.P.373−378.

513. Umali-Garcia M., Hubbel D. H., Gaskins M.H., Dazzo F.B. Association of Azospirillum with grass roots //Appl.Environm. 1978b. V. l03. № 6. P. 806−808.

514. Urzainqui A., Walker G.C. Exogenous suppression of the symbiotic deficiencies of Rhizobium meliloti exo mutants // J.Bacteriol. 1992. V. l74. № 10. P.3403−3406'.

515. Usami S., Morikawa S., Takebe I., Machida Y. Factors inducing Agrobacterium tumefaciens vir gene expression present in monocotyledonous plants// Mol. Gen. Genet. 1987.V.209.P.221−226.

516. Uttaro A., Candelosi G.A., Geremia R.A., Nester E.W., Ugalde R. Biochemical characterization of avirulent exoC mutants of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1990. V. l72. P. 1640−1646.

517. Van Larebeke N., Genetello C., Schell J., Schilperoort R.T., Hermans A.K., Hernalsteens J.P., Van Montago M. Acquisition of tumor-inducing ability by non-oncogenic agro bacteria as a result of plasmid transfer// Nature. 1975. V.255. P. 742−743.

518. Van Veen R.J.M., den Dulk-Ras H., Schilperoori R.A., Hooykaas P.J.J. Chromosomal nodulation genes: Sym-plasmid containing Agrobacterium strains need chromosomal virulence genes (chvA and chvB) for nodulation //Plant Molec. Biol. 1987. V.8. P.105−108.

519. Venkatesvarlu B., Rao A.N. Isolation of Azospirillum from the rhizosphere of sojoba (Simmonasia chinensis (Link) Scheinder) and Gnayule (Partenium argentatum) //Proc. Indian. Nat. Sci. Acad. 1982.V.48. № 4.P.552−555.

520. Vesper S.J., Bauer W.D. Characters of Rhizobium attachment to soybean roots. // Symbiosis. 1985. V.l. P. 139−162.

521. Vesper S.J., Bauer W.D. Role of pili (fimbriae) in attachment of Bradyrhizobium japonicum altered in attachment to host roots // Appl. Environ. Microbiol. 1986. V.52. P. 134−141.

522. Vesper S.J., Bhuvaneswari T.V. Nodulation of soybean roots by an isolate of Bradyrhizobium japonicum with reduced firm attachment capability 11 Arch. Microbiol. 1988. V. l50. P. 15−19.

523. Vigel A.M., Das A. The Agrobacterium tumefaciens virD3 gene is not essential for tumorigenicity on plants //J. Bacteriol. 1992. V.174. № 15. P.5161−5164.

524. Vijayachandra K., Palanichelvam K., Veluthambi K. Induction of Agrobacterium tumefaciens vir genes by rice // Intern. Rice Res. Notes. 1996. V.21. № 2−3. P. 36−37.

525. Vogel A.M., Das A. Mutational analysis of Agrobacterium tumefaciens virD2: tyrosine 29 is essential for endonuclease activity//J.Bacteriol. 1992. V.174. № 1. P.303−308.

526. Wagner V., Matthysse A.G. Involvement of a vitroinectin-like protein in attachment of Agrobacterium tumefaciens to carrot suspension culture cells // J.Bacteriol. 1992. V.174. V.5999−6003.

527. Wall L.G., Favelukes G. Early recognition in the Rhizobium we/i/oft'-alfalfa symbiosis: root exudate factor stimulates root adsorption of homologus Rhizobia// J.Bacteriol. 1991. V.173. № 11. P.3492−3499.

528. Waelkens E., Verdickt K., Vanduffel L., Vanderleyden J., Gool A.V., Mergeay M. Intergeneric complementation by Agrobacterium tumefaciens chromosomal genes and its potential use for linkage mapping //FEMS Microbiol. Lett. 1987. V.44. P.329−334.

529. Wagner V., Matthysse A.G. Involvment of a vitronectin-like protein in ttachment of Agrobacterium tumefaciens to carrot suspension culture cells // J.Bacteriol. 1992. V. 174. № 18. P. 5999−6003.

530. Waigmann E., Zambryski P. Tobacco mosaic virus movement protein-mediated proteintransport between trichoma cells // Plant Cell. 1995. V.7. P. 2069;2079.

531. Wang K., Herrera-Estrella A., Van Montagu M. Overexpression of virDl and virD2 genes in Agrobacterium tumefaciens enhances T-complex formation and plant tansformation // J.Bacteriol. 1990. V. l72. № 8. P.4432−4440.

532. Ward E.R., Barnes W.M. VirD2 protein of Agrobacterium tumefaciens very tightly linked to the5 and of T-strand DNA//Science. 1988. V.242.№ 11. P.927−930.

533. Ward I.E. Jr., Dale E.M., Nester E.W., Binns A.N. Identification of a VirBlO protein aggregate in the inner membrane of Agrobacterium tumefaciens II 1990.V.172. № 9.P.5200−5210.

534. Ward J.E.Jr., Dale E.M., Binns A.N. Activity of the Agrobacterium T-DNA transfer machinery is affected by virB gene product //Proc.Natl.Acad.Sei. USA. 1991.V.88.P.9350−9354.

535. Ward B.M., Merdville R., Turgeon R. The geminivirus BL1 movement protein is associated with endoplasmic reticulum-derived tubules in developing phloem cell // Plant Physiol. 1997.V. 114. № 3.P.228.

536. Watanabe I., So R., Ladha J.K., Katayama-Fujimura Y., Kuraishi H. A new nitrogen-fixing species of Pseudomonad: Pseudomonas diazotrophicus spp. nov. isolated from of wetland rice // Can, J. Microbiol. 1987.V.33. N 8. P.676−678.

537. Weiss A.A., Johnson F.D., Bums D.L. Molecular characterisation of an operon required for pertussis toxin secretion // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1993. V.90. P.2970−2974.

538. WhatleyM.H., BodwinJ.S., LippincottB.B., Lippincott J. A. Role for Agrobacterium cell envelope lipopolysaccharide in infection site attachment // Inf. Immun. 1976. V.13. № 4. P.1080−1083.

539. WhatleyM.H., Margot J. B., Schell J., Lippincott B.B., Lippincott J.A. Plasmid and chromosomal determination of Agrobacterium adherence specificity // J. Gen. Microbiol. 1978. V. l07. P.395−398.

540. Whiteside S.T., Goodbourn S. Signal transduction and nuclear targeting regulation of transcription factor activity by subcellular localisation // J. Cell. Sei. 1993.V.l04.P.949−955.

541. White R.G., Badelt K., Overall R.L., Vesk M. Actin associated with plasmodesmata // Protoplasma. 1994. V. 180. P. 169−184.

542. White R.G., Sack F.D. Actin microfilaments in presumptive statocytes of root caps and coleoptiles // Am.J.Bot. 1990. V.77. P. 17−26.

543. Williams M.N.C., Hollingsworth R.I., Brzoska P.M., Singer E.R. Rhizobium meliloti chromosomal loci reguered for suppression of exopolysaccharide mutations by lipopolysaccharide // J.Bacteriol. 1990. V.172. № 1 l.P.6596−6598.

544. Willetts N.S. The transcriptional control of fertility in F-like plasmids // J.Mol.Biol. 1977;V.l 12'. P. 141−148.

545. Willetts N.S., Skurray R. The conjugative system of F-like plasmids // Annu.Rev.Genet. 1980. V.14. P. 41−76.

546. Willetts N. S., Wilkins B. Processing of plasmid DNA during bacterial conjugation //Microbiol. Rev. 1984.V.48. P. 24−41.

547. Winans S.C., Ebert P.R., Stachel S.E., Gordon M.P., Nester E.W. A gene essential for Agrobacterium virulence is homologous to a family of positive regulatory loci // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986. V.83. P.8278−8282.

548. Winans S.C., Kerstetter R.A., Nester E.W. Transcriptional regulation of the virA and virG genes of Agrobacterium tumefaciens II J.Bacteriol. 1988. V.170. № 9. P.4047−4054.

549. Winans S.C., Kerstetter R.A., Ward J.E. and E.W. Nester. A protein required for transcriptional regulation of Agrobacterium virulence genes spans the cytoplasmic membrane 11 J. Bacteriol. 1989. V.171.№ 3. P.1616−1622.

550. Winans, S.C. Two-way chemical signaling in Agrobacterium-plant interactions // Microbiol. Rev. 1992.V. 56. P. 12−31.

551. Wlover R.H., Kieber J., Singer E.N. Lipopolysaccharide mutants of Rhizobium meliloti are not defective in symbiosis //J.Bacteriol. 1989. V.171. № 7. P.3961 -3967.

552. Wolpert J.S., Albersheim P. Host symbiont interaction. I. The lectins of legums interact with the 0-antigen contaning lipopolysaccarides of their symbiont rhizobia // Bio chem. Res. Commun. 1976. V.70. P.729−737.

553. Wood P.J. Specificty in tne interaction of direct dyes with polysaccharides // Carbohydr. Res. 1980. V. 83.P.271−281.

554. Yanofsky M.F., Porter S.G., Young C., Albrigth L.M., Gordon M., E.W. Nester The virD operon of Agrobacterium tumefaciens encodes a site-specific endonuclease // Cell. 1986. V.47. P.471−477.

555. Yusibov V.M., Steck T.R., Gupta V., Gelvin S.B. Association of single-strand transferred DNA from Agrobacterium tumefaciens with tobacco cells // Proc. Natl. Acad. USA 1994. V.91. P.2994−2998.

556. Zasy K.W., Millerr Y. Y.C., Weaver R.W., Barnes C.W. Intraspecific variability for nitrogen fixation in southernpea (Vigna ungewculata (L.) //J.Amer. Soc.Hort.Sci. 1978. V. 103 .№.6.3.806−808.

557. Zambryski P., Tempe J., Schell J. Transfer and function of T-DNA genes from Agrobacterium Ti and Ri plasmids in plants // Cell. 1989. V.56. P.193−201.

558. Zambryski P. Chronicles from the Agrobacterium-plant cell DNA transfer story // Annu.Rev.Plant Physiol. Plant Mol.Biol. 1992. V. 43. P. 465−490. .

559. Zhan H., Leigh J.A. Two that regulate exopolysaccharide production in Rhizobium meliloti II J.Bacteriol. 1990. V.2. P.5254−5259.

560. Zhang L., Murphy P., Kerr A., M. Tate Agrobacterium conjugation and gene regulation by N-acyl-L.-homoserine lactones //Nature. 1993.V.362.P.446−448.

561. Zhu J.-K., Damsz B., Kononowicz A.K., Bressan R.A. and P.M. Hasegawa. A higher plant extracellular vitronectin-like adhesion protein is related to the translational elogation factor-la // The Plant Cell. 1994. V.6. P.393−404.

562. Ziegelin G., Pansegrau W., Strack B., Balzer D., Kroger M., Kruft V., Lanka E. Nucleotide sequence and organization of genes flanking the transfer origin of promiscuous plasmid RP4//J.DNA Sequencing and Mapping. 1991. V. 1. P. 303−327.

563. Ziemienowicz AGorlich D., Lanka E., Hohn B., Rossi L. Import of DNA into mammalian nuclei, by proteins originating from a plant pathogenic bacterium // Proc.Natl.Acad.Sci. USA. 1999.V.96.P.3729−3733.

564. Zorreguieta A., Tolmasky M.E., Staneloni R.J. The enzymatic synthesis of p 1−2 glucans // Arch. Biochem. Bioph.//1985. V.238. № 2. P.368−372.

565. Zorreguieta A., and R.A. Ugalde Formation in Rhizobium and Agrobacterium sp. of a 235-kilodalton protein intermediate in P-D (1−2) glucan synthesis // J.Bacteriol. 1986. V. l 67. № 3. P.947−951.

566. Zorreguieta A., Geremia R.A., Cavaignac S., Cangelosi G.A., Nester E.W., Ugalde and R.A. Identification of the product of an Agrobacterium tumefaciens chromosomal virulence gene//Mol. Plant-Microbe Interact. 1988. V.l. № 3. P. 121−127.

567. Zorreguieta A., Cavaignac S., Geremia R.A., Ugalde R.A. Ocmotic regulation of p (12) glucan synthesis in members of the family Rhizobiacea II J.Bacteriol. 1990. V. l 72. № 8. P.4701−4704.

568. Zulin I.B., Armitage J.P. Motility, chemokinesis, and methyl-independent chemotaxis in Azospirillum brasilense //J.Bacteriol. 1993.V.175.P.952−958.

569. Zupan J.R., Zambryski P. Transfer of T-DNA from Agrobacterium to the plant cell // Plant Physiol. 1995. V.107. P.1041−1047.

570. Zupan J.R., Citovsky V., Zambryski P. Agrobacterium VirE2 protein mediates nuclear uptake of single-stranded DNA in plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1996. V.93. P.2392−2397.

571. Zupan J.R., Ward D., Zambryski P. Assembly of the VirB transport complex for DNA transfer from Agrobacterium tumefaciens to plant cells // Curr. Opin. Microbio 1.1998. V.l. № 6. P.649−655. ¦