Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Роль нейротрансмиттеров и нейромодуляторов нейронов зоны А5 в регуляции активности дыхательного центра в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro

Диссертация: Роль нейротрансмиттеров и нейромодуляторов нейронов зоны А5 в регуляции активности дыхательного центра в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на Самарской областной студенческой научной конференции (Самара, 1998, 1999, 2000), Международной конференции молодых ученых и студентов «Актуальные проблемы современной науки» (Самара, 2000), Втором Российском Конгрессе по патофизиологии с международным участием «Патофизиология органов и систем. Типовые патологические… Читать ещё >

Роль нейротрансмиттеров и нейромодуляторов нейронов зоны А5 в регуляции активности дыхательного центра в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Проблема дыхательного центра в современной нейрофизиологии
    • 1. 2. Структурно-функциональная организация дыхательного центра у новорожденных животных (in vitro)
      • 1. 2. 1. Особенности электрической респираторной активности в бульбоспи-нальном препарате новорожденных крыс in vitro
      • 1. 2. 2. Характеристика дыхательных нейронов у новорожденных животных in vitro
      • 1. 2. 3. Синаптические связи между дыхательными нейронами и их роль в генерации дыхательного ритма
      • 1. 2. 4. Механизмы генерации активности дыхательного центра у новорожденных животных in vitro
    • 1. 3. Роль А5 зоны моста в модуляции активности дыхательного центра
      • 1. 3. 1. Структурно-функциональная организация зоны А5 у взрослых животных
      • 1. 3. 2. Структурно-функциональная организация зоны А5 у новорожденных животных
  • Глава 2. Материалы и методы исследования
    • 2. 1. Экспериментальные животные
    • 2. 2. Экспериментальная модель изолированного понто-бульбоспинального препарата мозга новорожденных крыс in vitro
    • 2. 3. Изучение влияния норадреналина на генерацию дыхательного ритма в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
    • 2. 4. Изучение влияния глутамата на генерацию дыхательного ритма в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
    • 2. 5. Изучение влияния оксида азота (NO) на генерацию дыхательного ритма в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
    • 2. 6. Изучение роли структур моста в регуляции активности дыхательного центра в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
      • 2. 6. 1. Эксперименты с поперечной перерезкой
      • 2. 6. 2. Эксперименты с изолированной перфузией
    • 2. 7. Изучение участия медиаторов и модуляторов нейронных структур зоны А5 в регуляции активности дыхательного центра в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
      • 2. 7. 1. Эксперименты с микроинъекциями
      • 2. 7. 2. Гистологический контроль места микроинъекций
    • 2. 8. Обработка и анализ данных
  • Глава 3. Возрастные особенности норадренергической модуляции респираторной активности в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 3. 1. Возрастная динамика респираторной активности в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 3. 2. Влияние норадреналина на генерацию дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 3. 3. Участие структур моста в реализации модулирующего влияния норадреналина на генерацию дыхательного ритма в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
    • 3. 4. Роль агонистов адренорецепторов в регуляции влияния нейронов зоны А5 на генерацию дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 3. 5. Обсуждение результатов
  • Глава 4. Роль глутаматергической системы в регуляции влияния нейронов зоны А5 на генерацию дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 4. 1. Влияние глутамата на генерацию дыхательного ритмогенеза в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 4. 2. Участие глутамата в регуляции влияния нейронов зоны А5 на генерацию дыхательного ритма в понтобульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 4. 3. Роль NMD, А рецепторов в регуляции влияния нейронов зоны А5 на генерацию дыхательного ритма в понтобульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 4. 4. Роль non-NMDA рецепторов в регуляции влияния нейронов зоны А5 на генерацию дыхательного ритма в понтобульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 4. 5. Обсуждение результатов
  • Глава 5. Роль оксида азота (NO) в модуляции влияния нейронов зоны А5 на генерацию дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных препаратах новороиеденных крыс in vitro
    • 5. 1. Влияние NO на активность дыхательного центра в понтобульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 5. 2. Участие структур моста в реализации модулирующего влияния NO на генерацию дыхательного ритма в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro
    • 5. 3. Участие NO в модуляции дыхательного ритмогенеза нейронами зоны А5 в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro
    • 5. 4. Обсуждение результатов

Актуальность проблемы. Дыхательный ритм у новорожденных животных генерируется сетью нейронов вентролатеральных отделов продолговатого мозга (Smith et al., 1991; Onimaru, 1995; Onimaru et al., 1987, 1996, 1997, 1998; 2003; Ballanyi et al., 1999; Thoby-Brisson et al., 2000; Thoby-Brisson and Ramirez, 2001; Mellen et al., 2003). Механизмы генерации и регуляции дыхательного ритма формируются у плодов поздних сроков гестации (Di Pasquale et al., 1992, 1994; Greer et al., 1992; Bissonnette et al., 1997; Kobayashi et al., 2001; Пятин и Мирошниченко, 2001; Onimaru and Homma, 2002; Pagliardini et al., 2003; Liu and Wong-Riley, 2004; Greer et al., 2006), и продолжают интенсивно созревать после рождения (Denavit-Saubie et al., 1994; Liu and Wong-Riley, 2002; Мирошниченко, 2002). При этом в нейронах дыхательного центра изменяется активность ионных каналов, происходит активная экспрессия мембранных рецепторов, формируются межнейрональные контакты (Paton and Richter, 1995; Greer et al., 1992; Hilaire and Duron, 1999; Vlasic et al., 2001; Liu and Wong-Riley, 2002; Onimaru and Homma, 2002; Elsen and Ramirez, 2005). Известно, что для нормального функционального созревания дыхательного центра в эмбриогенезе ключевую роль играет норадренергическая модуляция, доказательством чему служат различные мутации, нарушающие нормальное развитие норадренергических зон ствола мозга и приводящие к формированию дыхательной недостаточности ранней гибели новорожденного потомства (Dauger et al., 2001; Huang et al., 2005; Qian et al., 2001; Shirasawa et al., 2000; Viemari et al., 2004). Модулирующее влияние норадренергических структур ствола мозга на дыхательный центр имеет место и в раннем постнатальном периоде развития. В частности, спонтанно активные норадренергические нейроны зоны А5 (Huangfu and Guyenet, 1997) оказывают тоническое тормозное влияние на генератор дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных новорожденных мышей и крыс in vitro (Errchidi et al., 19 906 1991; Hilaire et al., 2004). При этом неизвестно, изменяются ли норадренергические механизмы контроля активности дыхательного центра в течение первых суток жизни млекопитающих животных.

Спонтанная активность норадренергических нейронов зоны А5 у взрослых животных in vivo полностью подавляется активацией расположенных на их поверхности а2-адренорецепторов (Andrade et al., 1982; Byrum et al., 1984). Помимо адренорецепторов нейроны зоны А5 взрослых млекопитающих содержат в своей мембране ГАМКв рецепторы (Burman et al., 2003), а также 8-опиоидные рецепторы (Arvidsson et al., 1995) и NK рецепторы, чувствительные к субстанции Р и нейромедину К (Chen et al., 2000). Показано, что активность нейронов зоны А5 у взрослых животных может усиливаться под влиянием глутамата или М-метил-О-аспартата (Huangfu et al., 1991, 1992; Koshiya and Guyenet, 1994; Maiorov et al., 1999; Dawid-Milner et al., 2001). Показано, что норадренергические нейроны зоны А5 новорожденных крыс также содержат на своей поверхности а2-адренорецепторы, активация которых вызывает гиперполяризацию данных нейронов (Huangfu et al., 1997, а и б). Тем не менее, не ясно, участвует ли адренергический механизм модуляции активности нейронов зоны А5 в регуляции их тормозных влияний на генератор дыхательного ритма у новорожденных крыс in vitro и меняется ли он на протяжении нескольких первых суток жизни. Известно, что базовый уровень спонтанной активности нейронов различных отделов ЦНС, в том числе и пейсмейкерных нейронов дыхательного центра, регулируется эндогенно высвобождающимися возбуждающими аминокислотами, действующими через разные типы рецепторов (Ge and Feldman, 1998; Flint et al., 1999; Garaschuk et al., 2000; Shao et al., 2003; Okada et al., 2003). Однако до настоящего времени открытым остается вопрос о том, может ли глу-тамат контролировать базовый уровень активности нейронов зоны А5 и, как следствие, регулировать степень выраженности их тонического тормозного влияния на генератор дыхательного ритма у новорожденных животных. Известно, что эндогенный и экзогенный оксид азота вызывает торможение дыхательного ритма в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro, содержащих мост (Volgin et al., 2000; Пятин с соавт., 2001). Не исключено, что тормозное влияние оксида азота на дыхательный ритмогенез у новорожденных животных реализуется через нейроны зоны А5. Тем не менее, этот вопрос до настоящего времени также остается открытым.

Цель исследования. Изучить роль глутаматергической системы нейронов зоны А5 и модуляторов их активности в регуляции дыхательного ритмоге-неза у новорожденных крыс in vitro.

Основные задачи исследования.

1. Изучить особенности проявления спонтанной ритмической активности дыхательного центра в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс в период от рождения до 4-х суток.

2. Установить возрастные особенности влияния норадреналина на стволовые нейронные сети, генерирующие дыхательный ритм и модулирующие ритмическую активность дыхательного центра на раннем этапе его развития.

3. Изучить роль NMDA и non-NMDA подтипов глутаматных рецепторов в механизме модуляции дыхательного ритмогенеза нейронами зоны А5 у новорожденных крыс.

4. Установить модулирующую роль монооксида азота (NO) в механизме тормозного тонического влияния нейронов зоны А5 на процесс генерации активности дыхательного центра мозга новорожденных крыс в течение первых 4 суток после рождения.

Научная новизна. В ходе исследования установлено, что структурно-функциональное развитие дыхательного центра у новорожденных крыс в течение первых четырех суток жизни сопровождается увеличением частоты и уменьшением вариабельности генерируемого дыхательного ритма, а также повышением относительной мощности среднечастотных осцилляций инспиратор-ных залпов. Впервые показано, что тормозное влияние нейронов зоны А5 на генератор дыхательного ритма снижается на 3 сутки жизни новорожденных крыс, что может иметь ключевое значение для постнатального развития дыхательного центра.

Выявлено, что активация адренорецепторов нейронов зоны А5 в препаратах мозга новорожденных крыс in vitro приводит к ослаблению их тормозного влияния на дыхательный центр.

Впервые показано, что стимуляция спонтанно активных нейронов зоны А5 глутаматом усиливает их тоническое тормозное влияние на генератор дыхательного ритма в изолированных понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс, при этом активирующее влияние глутамата на нейроны зоны А5 обусловлено его действием на NMDA и non-NMDA рецепторы, при ведущем участии non-NMDA подтипа рецепторов. Впервые установлено, что глутама-тергический механизм регуляции активности нейронов зоны А5 модулирует не только частоту дыхательного ритмогенеза, но также вариабельность генерируемого ритма, и спектральные параметры инспираторных залпов.

Впервые показано, что нейроны зоны А5 принимают участие в модулирующем влиянии оксида азота на генерацию дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс in vitro. При этом повышение содержания N0 в области нейронов зоны А5 усиливает их тоническое влияние на генератор дыхательного ритма.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные в работе данные значительно дополняют современные представления о процессах развития медиаторных и модуляторных механизмов регуляции дыхания у млекопитающих животных в раннем постнатальном периоде онтогенеза. Впервые показано, что норадренергическая модуляция дыхательного центра нейронами зоны А5 может играть ключевую роль в постнатальном созревании механизмов генерации и регуляции дыхательного ритма и определять специфику формирования ритма и паттерна респираторных залпов у новорожденных животных. Также впервые показаны механизмы регуляции активности нейронов зоны А5 и степени их тормозного влияния на дыхательный центр посредством глутамата и оксида азота.

Учитывая тот факт, что генетические аномалии, приводящие к нарушению эмбриогенетического развития норадренергических зон ствола мозга, оказываются несовместимыми с жизнью, можно утверждать, что полученные данные имеют фундаментальное значение для формирования представлений о роли генетических факторов в реализации программы развития центральных механизмов регуляции дыхания на ранних этапах онтогенеза.

Полученные нами данные имеют практическую значимость, в частности, для развития прикладных вопросов клинической физиологии дыхания в неона-тологии, в том числе при недостаточности дыхательной функции у новорожденных детей. Данные о закономерностях созревания активности дыхательного центра в ходе раннего постнатального периода позволяют разрабатывать эффективные методы и приемы коррекции таких жизненно опасных нарушений дыхания у новорожденных, как периодическое нерегулярное дыхание, идиопа-тические остановки дыхания во время сна, синдром внезапной смерти у новорожденных, синдром врожденной центральной гиповентиляции, и т. п.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Генерация дыхательного ритма у новорожденных крыс in vitro находится под тоническим тормозным влиянием нейронов зоны А5, которое регулируется глутаматергической системой ствола мозга преимущественно через поп-NMDA и, в меньшей степени, через NMDA рецепторы мембраны нейронов зоны А5.

2. Модулирующее тоническое тормозное влияние нейронов зоны А5 на процесс бульбарного дыхательного ритмогенеза в ранний период развития респираторной нейронной сети уменьшается при активации адренорецепторов мембраны нейронов зоны А5 и усиливается под влиянием монооксида азота.

3. Тоническое тормозное модулирующее влияние нейронов зоны А5 на дыхательный центр, контролируемое глутаматергической и адренергической системами ствола мозга, уменьшается на 3 сутки жизни новорожденных крыс.

Апробация работы. Основные положения диссертации доложены и обсуждены на Самарской областной студенческой научной конференции (Самара, 1998, 1999, 2000), Международной конференции молодых ученых и студентов «Актуальные проблемы современной науки» (Самара, 2000), Втором Российском Конгрессе по патофизиологии с международным участием «Патофизиология органов и систем. Типовые патологические процессы» (Москва, 2000), VIII Всероссийской Школе-семинаре с международным участием «Экспериментальная и клиническая физиология дыхания» (Бологое, 2001), XVIII Съезде Физиологического Общества им. И. П, Павлова РАН (Казань, 2001), Всероссийской научно-практической конференции «Компенсаторно-приспособительные процессы: фундаментальные и клинические аспекты» (Новосибирск, 2002), III Международном конгрессе молодых ученых «Наука и человек» (Томск, 2002), Всероссийской конференции с международным участием «Достижения современной функциологии и их место в практике образования» (Самара, 2003), Международной конференции «Стресс и висцеральные системы» (Минск, 2005), Российской медико-биологической конференции молодых ученых «Человек и его здоровье» (Санкт-Петербург, 2006).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 12 работ, из них 7 в центральной печати, в том числе 2 в реферируемых журналах.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, трех глав с изложением собственных результатов исследований, заключительного обсуждения, выводов и списка литературы, включающего 303 источника, в том числе 26 отечественных и 277 зарубежных.

выводы.

1. Механизмы регуляции и модуляции дыхательного ритмогенеза у новорожденных крыс в период от рождения до 4-х суток функционируют гетеро-хронно, что проявляется в статистически значимом возрастном увеличении частоты и снижении вариабельности генерируемого дыхательного ритма, а также повышении относительной мощности среднечастотных осцилляций инспираторных залпов.

2. Модулирующее влияние норадренергической системы ствола мозга на генерацию дыхательного ритма у новорожденных крыс в ранний постнатальный период определяется характером взаимодействия респираторной нейронной сети продолговатого мозга и норадрергических нейронов зоны А5 моста, в частности, снижением тонического тормозного влияния нейронов зоны А5 на процесс дыхательного ритмогенеза на 3 сутки жизни.

3. Тоническое тормозное влияние нейронов зоны А5 на генератор дыхательного ритма регулируется и модулируется глутаматергическим, норадренерги-ческим и NO-ергическим механизмами, обусловливающими функциональную активность и взаимодействие норадренергической нейронной сети зоны А5 моста и респираторной нейронной сети продолговатого мозга.

4. Активация глутаматергической системы приводит к усилению тонического тормозного влияния нейронов зоны А5 на сеть респираторных нейронов продолговатого мозга, что обусловлено действием глутамата преимущественно на non-NMDA рецепторы и в меньшей степени на NMDA рецепторы мембраны нейронов зоны А5.

5. У новорожденных крыс в период от рождения до 4 суток постнатального развития оксид азота принимает участие в модулирующем влиянии нейронов зоны А5 на бульбарную сеть дыхательных нейронов, при этом повышение содержания N0 в области нейронов зоны А5 увеличивает степень их тормозного воздействия на процесс дыхательного ритмогенеза.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Механизмы генерации и регуляции дыхательного ритма формируются еще до рождения, у плодов поздних сроков гестации (Di Pasquale et al., 1992, 1994; Greer et al., 1992; Bissonnette et al., 1997; Kobayashi et al., 2001; Пятин и Мирошниченко, 2001; Onimaru and Homma, 2002; Pagliardini et al., 2003; Liu and Wong-Riley, 2004; Greer et al., 2006), и продолжают интенсивно созревать после рождения (Denavit-Saubie et al., 1994; Liu and Wong-Riley, 2002; Мирошниченко, 2002). При этом в нейронах дыхательного центра изменяется активность ионных каналов, происходит активная экспрессия мембранных рецепторов, формируются межнейрональные контакты (Paton and Richter, 1995; Greer et al., 1992; Hilaire and Duron, 1999; Vlasic et al., 2001; Liu and Wong-Riley, 2002; Onimaru and Homma, 2002; Elsen and Ramirez, 2005). Все это свидетельствует о серьезных перестройках, происходящих в дыхательном центре в раннем постнатальном онтогенезе. Эти глубокие перестройки, происходящие в дыхательном центре, отражаются на характере респираторной активности плодов и новорожденных животных. Как показали наши исследования, развитие механизмов дыхательного ритмогенеза у новорожденных крыс в течение нескольких первых суток жизни происходит по пути увеличения частоты и уменьшения вариабельности генерируемого дыхательного ритма, а также сопровождается изменением паттерна инспираторных разрядов. Важным индикатором развития генератора инспираторного паттерна являются возрастные изменения спектральных показателей электрической активности дыхательного центра новорожденных животных.

В регуляции респираторной активности у новорожденных крыс важную роль принимают структуры моста, в частности, норадренергические нейроны зоны А5, которые оказывают тоническое тормозное влияние на дыхательный центр продолговатого мозга. Активность нейронов зоны А5 контролируется через адренорецепторы, и снижение активности нейронов данной зоны под влиянием норадреналина или адреналина приводит к стимуляции дыхательного ритмогенеза. Как показали наши исследования, тормозное влияние нейронов зоны А5 у новорожденных крыс ослабевает к 3 суткам жизни. Скорее всего, это вызвано снижением числа норадренергических нейронов в данной зоне (Ito et al., 2002). Параллельно с этим на 3 сутки жизни происходит изменение параметров паттерна инспираторной активности и, как показывают исследования, меняется экспрессия субъединиц глутаматных и ГАМК рецепторов в структурах дыхательного центра (Liu and Wong-Riley, 2002). Это дает основание предполагать, что норадренергическая модуляция, в частности, опосредованная нейронами зоны А5, играет важную роль в постнатальном созревании дыхательного центра. По-видимому, 3 сутки являются критическим периодом в развитии механизмов генерации и регуляции дыхательного ритма у новорожденных крыс. Вероятно, высокая активность нейронов зоны А5 является причиной относительно низкой стабильности параметров респираторной активности у новорожденных животных. Кроме того, степень тонического торможения дыхательного ритмогенеза нейронами зоны А5 может определять характер модулирующего влияние других норадренергических структур ствола мозга на генерацию дыхательного ритма у новорожденных крыс в ранний постнатальный период.

Глутамат является основным возбуждающим медиатором в ЦНС (Mel-drum, 2000), а глутаматергическая передача играет ключевую роль в регуляции и синхронизации активности нейронов дыхательного центра у новорожденных животных in vitro (Funk et al., 1997; Ge and Feldman, 1998; Koshiya an Smith, 1999; Shao et al., 2003; Morgado-Valle and Feldman, 2004). Полученные нами данные впервые показали, что стимуляция нейронов зоны А5 глутаматом усиливает их тоническое тормозное влияние на генератор дыхательного ритма в изолированных понто-бубльбоспинальных препаратах новорожденных (1−4 суток) крыс. Стимулирующее влияние глутамата на нейроны зоны А5 обусловлено его действием на NMDA и non-NMDA рецепторы, при ведущем участии non-NMDA подтипа рецепторов. Впервые установлено, что глутаматергический механизм нейронов зоны А5 регулирует не только частоту, но и вариабельность дыхательного ритма у новорожденных крыс in vitro, а также спектральные параметры инспираторных разрядов.

Полученные нами результаты свидетельствуют о том, монооксид азота способен модулировать активность нейронов зоны А5, а нейроны зоны А5, в свою очередь, принимают участие в реализации модулирующего влияния NO на генерацию дыхательного ритма в понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс. Увеличение содержания NO в зоне А5, по-видимому, приводит к повышению активности нейронов данной зоны и усилению их тормозного влияния на генератор дыхательного ритма. Механизм активирующего влияния NO на нейроны зоны А5 остается неизвестным. Возможно, NO усиливает выделение эндогенного глутамата, который, действуя через NMDA и non-NMDA глутаматные рецепторы нейронов зоны А5 увеличивает их спонтанную активность. Не исключается также прямые цГМФ зависимые' и цГМФ-независимые пути активации нейронов зоны А5 при участии NO.

Таким образом, в периоде раннего постнатального онтогенеза происходят качественные изменения в структурно-функциональной организации дыхательного центра, в чем принимают участие норадренергические нейроны зоны А5 моста, оказывающие тоническое тормозное влияние на генератор дыхательного ритма. Активация адренорецепторов нейронов зоны А5 приводит к снижению их активности и ослаблению тормозного влияния на дыхательный центр. Повышение содержания эндогенного глутамата, а также оксида азота в области зоны А5 приводит к увеличению тонического тормозного влияния нейронов данной зоны на дыхательный центр у новорожденных крыс. мост.

Глутамату+9 non-NMD.

Норадреналин, адреналин Генератор^ч (дыхательного) ритма.

ПРОДОЛГОВАТЫЙ мозг.

Схема 1. Нейромедиаторные и нейромодуляторные механизмы регуляции тонического тормозного влияния нейронов зоны А5 на дыхательный центр в изолированных понто-бульбоспинальных препаратах новорожденных крыс.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Айо О. Д. Влияние ацетилхолина, глутамата и гамма-аминомасляной кислоты на формирование периодической активности дыхательного генератора in vitro // Автореферат дисс. на соискание уч. степени канд. биол. наук. Киев, 1993.
  2. И.С., Глебовский В. Д. Регуляция дыхания //Л.: «Наука», 1981. 280 с.
  3. Я., Бурешова О., Хьюстон Д. П. Методики и основные эксперименты по изучению мозга и поведения: Пер. с англ. Е.Н. Живописцевой// М.: «Высшая школа», 1991. 399с.
  4. А.Ф. Оксид азота в биомедицинских исследованиях // Вестник РАМН. 2000. — № 4. — С.3−5.
  5. С. Медико-биологическая статистика: Пер. с англ. д-ра физико-математических наук Ю. А. Данилова, под ред. Н. Е. Бузикашвили и Д.В. Самойлова// М.: «Практика», 1991. 459с.
  6. А.В. Функциональная роль оксида азота в центральной нервной системе //Успехи физиол. наук. 1997. — Т.28. — №.1. — С.53−60.
  7. Н.Н. Основы биомоделирования //М.: Изд-во ВПК, 2004. -608с.
  8. Г. Н., Тараканов И. А., Сафонов В. А. Участие ГАМКергиче-ской системы мозга в формировании дыхательного ритма //Физиол. журнал СССР. 1993. — Т.79. -№ 11.- С.13−23.
  9. Г. А. Курс патогистологической техники //Издание четвертое. Ленинград: «Медгиз», 1963. 340с.
  10. Ю.Мирошниченко И. В. Механизмы регуляции спонтанной ритмической активности дыхательного центра плодов и новорожденных крыс in vitro
  11. Автореферат дисс. на соискание уч. степени доктора мед. наук. Самара, 2002.
  12. Объекты биологии развития //Ред. коллегия «Проблемы биологии развития», М.: «Наука», 1975. 579с.
  13. В.Ф., Мирошниченко И.В, Кульчицкий В. А. Участие NO-ергического механизма в регуляции ритмогенеза дыхательного центра бульбоспинально-го препарата новорожденных крыс //Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 2001. — Т. 132. -N.8.-C. 129−132.
  14. В.Ф., Мирошниченко И. В. Влияние оксида азота на респираторную активность бульбоспинальных препаратов мозга плодов крыс in vitro // Бюлл. Эксп! Биол. Мед. 2001. — Т. 132. — N.8. — С. 133−137.
  15. В.Ф., Мирошниченко И. В., Кульчицкий В. А. Роль монооксида азота в центральных механизмах генерации дыхательного ритма //Доклады Национальной Академии Наук Беларуси 2001. — Т.45 — N.5. — С.87−89.
  16. В.Ф., Никитин О. Л. Генерация дыхательного ритма //Самара, 1998. -96 с.
  17. В.Ф., Татарников B.C. Оксид азота в зоне А5 модулирует реакцию на гипоксию дыхательного центра и артериального давления у крыс // Бюлл. Эксп. Биол. Мед. 2005. — Т. 139. — N.2. — С. 159−162.
  18. В.А., Ефимов В. Н., Чумаченко А. А. Нейрофизиология дыхания //М.: «Медицина», 1980. 222 с.
  19. М.В. Дыхательный центр млекопитающих животных и регуляция его деятельности //М., 1950.
  20. М.В., Габдарахманов Р. Ш., Огородов A.M., Сафонов В. А., Якунин В. Е. Структура и функциональная организация дыхательного центра //Новосибирск, изд-во НГУ, 1993. 192 с.
  21. М.В., Меркулова Н. А., Габдарахманов Р. Ш., Якунин В. Е., Сергеев О. С. Дыхательный центр //М.: «Медицина», 1975. 183 с.
  22. А.В. Роль циклических нуклеотидов в реализации эффектов оксида азота (II) на секрецию медиатора и ионные токи двигательного нервного окончания //Автореферат дисс. на соискание уч. степени канд. биол. наук. Казань, 2004.
  23. В.Е. Нисходящие пути медиальных ядер дыхательного центра к дыхательным мышцам //Физиологический журнал СССР им И. М. Сеченова. -1990а. Т.76. — № 5. — С.613−620.
  24. В.Е. Структурно-функциональная организация дыхательного центра // В сб. «Функциональная организация дыхательного центра и его связи с другими системами». Куйбышев, «Куйбышевское книжное издательство», 19 906.-С. 16−20.
  25. В.Е., Якунина С. В. Нейроанатомическая и функциональная организация пре-Бетцингера комплекса кошки //Росс. Физиол. Журнал им. И. М. Сеченова. 1998.- Т.84. -№ 11. — С. 1278−1286.
  26. A1-Zubaidy Z.A., Erickson R.L., Greer J.J. Serotoninergic and noradrenergic effects on respiratory neural discharge in the medullary slice preparation of neonatal rats //Pflugers Arch. 1996. — Vol.431. — N.6. — P.942−949.
  27. Andrade R., Aghajanian G.K. Single cell activity in the noradrenergic A-5 region: responses to drugs and peripheral manipulations of blood pressure //Brain Res. -1982. Vol.242. — N.l. — P.125−135.
  28. Arata A., Onimaru H., Homma I. Effects of с AMP on respiratory rhythm generation in brainstem-spinal cord preparation from newborn rat //Brain Res. 1993. -Vol.605.-P.193−199.
  29. Arata A., Onimaru H., Homma I. Possible synaptic connections of respiratory neurons in the medulla of newborn rat in vitro //NeuroReport 1998a. — Vol.9. -N.4. — P.773−746.
  30. Arata A., Onimaru H., Homma I. The adrenergic modulation of firings of respiratory rhythm-generating neurons in medulla-spinal cord preparation from newborn rat //Exp. Brain Res. 19 986. — Vol.119. — P.399−408.
  31. Arsenault J., Moreau-Bussiere F., Reix P., Niyonsenga Т., Praud J.-P. Postnatal maturation of vagal reflexes in preterm and full-term lambs //J. Appl. Physiol. -2003. Vol.94. — N.5. — P.1978−1986.
  32. Bach K.B., Mitchell G.S. Hypercapnia-induced long-term depression of respiratory activity requires a2-adrenergic receptors //J. Appl. Physiol. 1998. — Vol.84.- N.6. P.2099−2105.
  33. Bajic D., Proudfit H.K. Projections of neurons in the periaqueductal gray to pontine and medullary catecholamine cell groups involved in the modulation of nociception /Л. Сотр. Neurol. 1999. — Vol.405. — N.3. — P.359−379.
  34. Balkowiec A., Katz D. M, Brain-derived neurotrophic factor is required for normal development of the central respiratory rhythm in mice //J. Physiol. 1998. -Vol.510.-No.2. -P.527−533.
  35. Ballantyne D., Scheid P. Mammalian brainstem chemosensitive neurones: linking them to respiration in vitro //J. Physiol. 2000. — Vol.525. — No.3. -P.567−577.
  36. Ballanyi K., Kalia K. Activity-evoked changes in intracellular pH //from «pH and Brain Function», Ed. K. Kalia and B.R. Ransom, Wiley-Liss Inc., 1998, Chapter 16, P.291−308.
  37. Ballanyi K., Lalley P.M., Hoch В., Richter D.W. cAMP-dependent reversal of opioid- and prostaglandin-mediated depression of the isolated respiratory network in newborn rats //J. Physiol. 1997. — Vol.504. — N.l. — P. 127−134.
  38. Ballanyi K., Onimaru H., Homma I. Respiratory network function in the isolated brainstem spinal cord of newborn rats //Progress in Neurobiology. — 1999. -Vol.59. — P.583−634.
  39. Barman S., Kitchens H.L., Leckow A.B., Gebber G.L. Pontine neurons are elements of network responsible for the 10-Hz rhythm in sympathetic nerve discharge //Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 1997. — Vol.273. — P.H.1909-H1919.
  40. Barman S.M., Orer H.S., Gebber G.L. Differential effects of an NMDA and non-NMDA receptor antagonist on medullary lateral field neurons //Am. J. Physiol.: Regulatory Integrative Сотр. Physiology. 2002. — Vol.282. — N.l. — P. R100-R.113.
  41. Bezzi P., Voltera A. A neuron-glia signalling network in the active brain //Curr. Opin. Neurobiol. 2001. — Vol.11. — N.3. — P.387−394.
  42. Bissonnette J.M., Hohimer A.R., Knopp S.J. Non-NMDA receptors modulate respiratory drive in fetal sheep //J. Physiol. 1997. — Vol.501. — No.2. -P.415−423.
  43. Bissonnnette J.M. Mechanisms regulating hypoxic respiratory depression during fetal and postnatal life //Am. J. Physiol. 2000. — Vol.278. — P. R1391-R1400.
  44. Bou-Flores C., Berger A.J. Gap junctions and inhibitory synapses modulate inspiratory motoneuron synchronization //J. Neurophysiol. 2001. — Vol.85. — P.1543−1551.
  45. Bruce E.N. Correlated and uncorrelated high-frequency oscillations in phrenic and reccurent laryngeal neurogramms surface //J. Neurophysiol. 1988. — Vol. 59. -No.4.-P.l 188−1203.
  46. Bruce E.N., Mitra J., Cherniack N.S., Romaniuk J.R. Alteration of phrenic high frequency oscillation by local cooling of the ventral medullary surface //Brain Res. -1991. Vol. 538. — P.211−214.
  47. Burman K.J., Ige A.O., White J.H., Marshall F.H., Pangalos M.N., Emson P.C., Minson J.B., Llewellyn-Smith I J. GABAB receptor subunits, R1 and R2, in brainstem catecholamine and serotonine neurons //Brain Research. 2003. — Vol.970. -N.l-2. — P.35−46.
  48. Burnett A., Gebhart G.F. Characterization of descending modulation of nociception from the A5 cell group //Brain Res. 1991. — Vol.546. — N.2. — P.271−281.
  49. Butera R.J. Jr., Rinzel J., Smith J.C. Models of respiratory rhythm generation in the pre-Botzinger complex. I. Bursting pacemaker neurons //J. Neurophysiol. -1999.-Vol.81.-P.382−397.
  50. Byrum C.E., Guyenet P.G. Afferent and efferent connections of the A5 noradrenergic cell group in the rat //J. Сотр. Neurol. 1987. — Vol.261. — N.4. — P.529−542.
  51. Byrum C.E., Stornetta R., Guyenet P.G. Electrophysiological properties of spi-nally-projecting A5 noradrenergic neurons //Brain Res. 1984.- Vol.303. — N.l. -P. 15−29.
  52. Cannazza G., Chiarugi A., Parenti C., Zanoli P., Baraldi M. Changes in kynurenic, anthranilic and quinolinic acid concentration in rat brain tissue during development //Neurochemical Research 2001. — Vo.26. — N.5. — P.511−514.
  53. Castle M., Comoli E., Loewy A.D. Autonomic brainstem nuclei are linked to the hippocampus //Neurosci. 2005. — Vol.134. — N.2. — P.657−669.
  54. F., Gros F., Larnicol N. 5-HT2a/2c receptor-mediated hypopnea in the newborn rat: relationship to Fos immureactivity //Pediatr. Res. 2001. — Vol.50. -P.596−603.
  55. Champagnat J., Denavit-Saubie M., Grant K., Shen K.F. Organization of synaptic transmission in the mammalian solitary complex, studied in vitro //J.Physiol. -1986 a.-Vol.381. -P.551−573.
  56. Champagnat J., Jacquin Т., Richter D.W. Voltage-dependent currents in neurones of the nuclei of the solitary tract of rat brainstem slices // Pflugers Arch. 1986 6. — Vol. 406. — P.372−379.
  57. Chanchevalap S., Yang Z., Cui N., Qu Z., Zhu G., Liu G., Giwa L.R., Abdulkair L., Jiang C. Involvement of histidine residues in proton sensing of ROMK1 channel //J. Biol. Chem: — 2000. Vol.275. — N.ll. — P.7811−7817.
  58. Chang Q., Balice-Gordon R.J. Gap junctional communication among developing and injured motor neurons //Brain Research Reviews. 2000. — Vol.32. — P.242−249.
  59. Chatonnet F., Thoby-Brisson M., Abadie V., del Того E.D., Champagnat J., Fortin G. Early development of respiratory rhythm generation in mouse and chick //Respiratory Physiol, and Neurobiol. 2002. — Vol.131. — P.5−13.
  60. Clark F.M., Proudfit H.K. The projections of noradrenergic neurons in the A5 cateholaminergic cell group to the spinal cord in the rat: anatomical evidence that A5 neurons modulate nociception //Brain Res. 1993. — Vol.616. — N. l-2. -P.200−210.
  61. Close J.M., Neil J.J., Loewy A.D. Actions of N-methyl aspartate and its antagonist aminophosphonovalerate on the A5 catecholamine cell group //Brain Res. 1982. — Vol.249. — N.2. — P.393−396.
  62. Cohen M.I., See W.R., Christakos C.N., Sica A.N. High-frequency and medium-frequency components of different inspiratory nerve discharges and their modulation by various inputs //Brain Res. 1987. — Vol.417. — P. 148−152.
  63. Coles S.K., Dick Т.Е. Neurons in the ventrolateral pons are required for post-hypoxic frequency decline in rats //J. Physiol. 1996. — Vol.497. — N.l. — P.79−94.
  64. Contestabile A. Roles of NMD A receptor activity and nitric oxide production in brain development //Brain Res. Rev. 2000. — Vol.32. — P.476−509.
  65. Del Negro C.A., Koshiya N., Butera R.B. Jr., Smith J.C. Persistent Sodium current, membrane properties and bursting behavior of pre-Botzinger complex inspiratory neurons in vitro //J. Neurophysiol. 2002. — Vol.88. — P.2242−2250.
  66. Di Pasquale E., Monteau R., Hilaire G. In viro study of central respiratory-like activity of the fetal rat //Exp. Brain Res. 1992. — Vol.89. — P.459−464.
  67. Di Pasquale E., Monteau R., Hilaire G. Involvement of the rostral ventro-lateral medulla in respiratory rhythm genesis during peri-natal period: an in vitro study in newborn and fetal rats // Developmental Brain Res. 1994. — Vol.78. — P. 143 152.
  68. Dobbins E.G., Feldman J.L. Brainstem network controlling descending drive to phrenic motoneurons in rat //J. Сотр. Neurol. 1994. — Vol.347. — N.l. — P.64−86.
  69. Drye R.G., Baisden R.H., Whittington D.L., Woodruff M.L. The effects of stimulation of A5 region on blood pressure and heart rate in rabbits //Brain Res. Bull.1990. Vol.24. — N.l. — P.33−39.
  70. Dutschmann M., Herbert H. NMDA and GABAA receptors in the rat Kolliker-Fuse area control cardiorespiratory responses evoked by trigeminal ethmoidal nerve stimulation //J. Physiol. 1998. — Vol.510. — N.3. — P.793−804.
  71. Dutschmann M., Paton J.F.R. Glycinergic inhibition is essential for coordinating cranial and spinal respiratory motor outputs in the neonatal rat //J. Physiol. 2002. — Vol.543. — N.2. — P.643−653.
  72. Elsen F.P., Ramirez J.-M. Postnatal development differentially affects voltage-activated calcium currents un respiratory rhythmic versus nonrythmic neurons if the pre-Botzinger complex //J. Neurophysiol. 2005. — Vol.94. — P. 1423−1431.
  73. Erickson J.T., Millhorn D.E. Hypoxia and electrical stimulation of the carotid sinus nerve induce c-fos like immunoreactivity within catecholaminergic and sero-toninergic neurons of the rat brainstem //J. Сотр. Neurol. 1994. — Vol. 348. -P.161−181.
  74. Errchidi S., Hilaire G., Monteau R. Permanent release of noradrenaline modulates respiratory frequency in the newborn rat: an in vitro study //J. Physiol. 1990. -Vol.429.-P.497−510.
  75. Errchidi S., Monteau R., Hilaire G. Noradrenergic modulation of the medullary respiratory rhythm generator in the newborn rat: an in vitro study //J. Physiol.1991. Vol.443. — N.l. — P.477−498.
  76. Esser M.J., Pronych S.P., Allen G.V. Trigeminal-reticular connections: Possible pathways for nociception-induced cardiovascular reflex responses in the rat //J. Сотр. Neurol. 1998. — Vol.391. — N.4. — P.526−544.
  77. Eugenin J., Nichols J.G. Chemosensory and cholinergic stimulation of fictive respiration in isolated CNS of neonatal opossum //J. Physiol. 1997. — Vol.501. -N.2. — P.425−437.
  78. Fay R., Kubin L. Pontomedullary distribution of 5-HT2A receptor-like protein in the rat //J. Сотр. Neurol. 2000. — Vol.418. — P.323−345.
  79. Fedirchuk В., Dai Y. Monoamines increase the excitability of spinal neurones in the neonatal rat by hyperpolarizing the threshold for action potential production //J. Physiol. 2004. — Vol.557. — N.2. — P.355−361.
  80. Fedorko L., Kelly E.N., England S.J. Importance of vagal afferents in determining ventilation in newborn rats // J. Appl. Physiol. 1988. — Vol. 65. — P. 1033−1988.
  81. Feldman J.L., Smith J.C. Cellular mechanisms underlying modulation of breathing pattern in mammals //Annals of the New York Academy of Sciences. 1989. -Vol.28.-P.114−130.
  82. Feldman J.L., Smith J.C. Neural control of respiratory pattern in mammals: an overview. In: Regulation of breathing, Ed. by J.A. Dempsey and A.I. Pack. New York: Dekker, 1995, P. 39−69.
  83. Fenik V., Marchenko V., Janssen P., Davies R.O., Kubin L. A5 cells are silenced when REM sleep-like signs are elicited by pontine carbachol //J. Appl. Physiol. -2002. Vol.93. — P. 1448−1456.
  84. Flint A.C., Dammerman R.S., Kriegstein A.R. Endogenous activation of me-tabotropic glutamate receptors in neocortical development causes neuronal calcium oscillations //PNAS. 1999. — Vol.96. — N.21. — P.12 144−12 149.
  85. Fontan J.J.P., Velloff C.R. Neuroanatomic organization of the parasympathetic bronchomotor system in development sheep // Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 1997. — Vol.273. — N.l. — P. R121-R133.
  86. Fukuda Т., Kosaka Т., Gap junctions linking the dendritic network of GABAergic interneurons in the hippocampus //J. Neurosci. 2000. — Vol.20. — N.4. — P. 15 191 528.
  87. Funk G.D., Feldman J.L. Generation of respiratory rhythm and pattern in mammals: insights from developmental studies //Curr. Opin. Neurobiol. 1995. -Vol.5.-778−785.
  88. Funk G.D., Johnson S.M., Smith J.C., Dong X.-W., Lai J, Feldman J.L. Functional respiratory rhythm generating networks in neonatal mice lacking NMDAR1 gene //J. Neurophysiol. 1997. — Vol.78. — No.3. — P. 1414−1420.
  89. Funk G.D., Smith J.C., Feldman J.L. Generation and transmission of respiratory oscillations in medullary slices: role of excitatory amino acids //J. Neurophysiol. 1993. — Vol.70. — N.4. — P.1497−1515.
  90. Garaschuk O., Linn J., Eliers J., Konnerth A. Large-scale oscillatory calcium waves in the immature cortex //Nat. Neurosci. 2000. — Vol.3. — N.5. — P.452−459.
  91. Gaytan S., Calero F., Nunez-Abadez P.A., Morillo A.M., Pasaro R. Pontome-dullary efferent projections of the ventral respiratory neuronal subsets of the rat //Brain Res. Bull. 1997. — Vol.42. — N.4. — P.323−334.
  92. Ge Q., Feldman J.L. AMPA receptor activation and phosphatase inhibition affect neonatal rat respiratory rhythm generation //J. Physiol. 1998. — Vol.509. -N.l. — P.255−266.
  93. Gereau R.W., Conn P.J. Presynaptic enhancement of excitatory synaptic transmission by P-adrenergic receptor activation //J. Neurophysiol. 1994. -Vol.72. — N.3. — P.1438−1442.
  94. Gharami K., Das S. Role of protein-tyrosine phosphoatase on P-adrenergic receptor mediated morphological differentiation of astrocytes //J. Chem. Neuroanatomy 2003. — Vol.26. — N.2. — P.125−132.
  95. Gozal D., Gozal E. Episodic hypoxia enhances late hypoxic ventilation in developing rat: putative role of neuronal NO synthase //Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 1999. — Vol.276. — P. R17-R22.
  96. Gozal D., Torres J.E., Gozal Y.M., Littwin S.M. Effect of nitric oxide synthase inhibition on cardiorespiratory responses in the conscious rat //J. Appl. Physiol. -1996. Vol.81. — N.5. — P.2068−2077.
  97. Greer J.J., Funk G.D., Ballanyi K. Preparing for the first breath: prenatal maturation of respiratory neural control //J. Physiol. (Lond.) 2006. — Vol.570. — N.3.- P.437−444.
  98. Greer J.J., Smith J.C., Feldman J.L. Respiratory and locomotor patterns generated in the fetal rat brain stem-spinal coed in vitro //J. Neurophysiol. 1992. -Vol.657. — P.996−999.
  99. Grzanna R., Chee W.K., Akeyson E.W. Noradrenergic projections to brainstem nuclei: evidence for differential projections from noradrenergic subgroups //J. Сотр. Neurol. 1987. — Vol.263. — N. l — P.76−91.
  100. Guyenet P.G., Alpha2A-adrenergic receptors are present in lower brainstem catecholaminergic and serotoninergic neurons innervating spinal cord //Brain Res.- 1994. Vol.638. — N. l-2. — P.285−294.
  101. Guyenet P.G., Koshiya N., Huangfu D., Verberne A.J.M., Riley T.A. Central respiratory control of A5 and A6 noradrenergic neurons //Am. J. Physiol. 1993. — Vol.264. — P. R1035-R1044.
  102. Hamada 0., Garcia-Rill E., Skinner R.D. Respiration in vitro: I. Spontaneous activity //Somatosensory and Motor Research. 1992. — Vol. 9. — No.4.- P.313−326.
  103. Hammarstrom A.K.M., Gage P.W. Nitric oxide increases persistent sodium current in rat hippocampal neurons //J. Physiol. (Lond). 1999. — Vol.520. — N.2. -P.451−461.
  104. Haxhiu M.A., Chang C.H., Dreshaj I.A., Erokwu В., Prabhakar N.R., Cher-niack N.S. Nitric oxide and ventilatory response to hypoxia //Respir. Physiol. -1995. Vol.101. — N.3. — P.257−266.
  105. Haxhiu M.A., Tolentino-Silva F., Pete G., Kc P., Mack S.O. Monoaminergic neurons, chemosensation and arousal //Resp. Physiol. 2001. — Vol.129. — P.191−209.
  106. Haxhiu M.A., Yung K., Erokwu В., Cherniack N.S. C02-induced c-fos expression in the CNS catecholaminergic neurons //Respir. Physiol. 1996. -Vol.105.-N.1−2.-P.35−45.
  107. Hayar A., Guyenet P.G. a2-adrenoceptor-mediated presynaptic inhibition in bulbospinal neurons of rostral ventrolateral medulla //Am. J. Physiol.: Heart Circ. Physiol. 1999. — Vol.277. — P. H1069−1080.
  108. Hayward L.F., von Reitzenstein M. c-Fos expression in the midbrain periaqueductal gray after chemoreceptor and baroreceptor activation //Am. J. Physiol. -2002. Vol.283. — P. H1975-H1984.
  109. Hermann G.E., Nasse J.S., Rogers R.C. Alpha-1 adrenergic input to solitary nucleus neurons: calcium oscillations, excitation and gastric reflex control //J. Physiol. Vol.562. — Pt.2. — P.553−568.
  110. Hilaire G., Bou C., Monteau R. Rostral ventrolateral medulla and respiratory rhythmogenesis in mice //Neurosci. Lett. 1997. — Vol.224. — N.l. — P. 13−16.
  111. Hilaire G., Duron B. Maturation of the mammalian respiratory system //Physiol. Reviews 1999. — Vol.79. — No.2. — P.325−360.
  112. Hilaire G., Monteau R., Errchidi S. Possible modulation of the medullary respiratory. rhythm generation by the noradrenergic A5 area: an in vitro study in the newborn rat //Brain Res. 1989. — Vol.485. — N.2. — P.325−332.
  113. Hilaire G., Monteau R., Gauthier P. Rega P., Morin D. Functional significance of the dorsal respiratory group in adult and newborn rats: in vivo and in vitro studies // Neurosci. Lett.- 1990. Vol. 111. — P.133−138.
  114. Hilaire G., Viemari J.-C., Coulon P., Simmoneau M., Bevengut M. Modulation of the respiratory rhythm generator by the pontine noradrenergic A5 and A6 groups in rodents //Respir. Physiol. & Neurobiol. 2004. — Vol.143. — N.2−3. -P.187−197.
  115. Hirooka Y., Poison J.W., Potts P.D., Dampney R.A.L. Hypoxia-induced fos expression in neurons projecting to the pressor region in the rostral ventrolateral medulla //Neurosci. 1997. — Vol.80. — P. 1209−1224.
  116. Hosoya Y., Suguira Y., Ito R., Koho K. Descending projections from the hypothalamic paraventricular nucleus to the A5 area, including the superior salivatory nucleus, in the rat //Exper. Brain Res. 1990. — Vol.82. — N.3. — P.513−518.
  117. Huang L., Guo H., Hellard D.T., Katz D.M. Glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) is required for differentiation of pontine noradrenergic neurons and patterning of central respiratory output //Neurosci. 2005. — Vol.130. -N.l. — P.95−105.
  118. Huangfu D., Guyenet P. Auloactivity of A5 neurons: role of subthreshold oscillations and persistent Na+ current //Am. J. Physiol. (Vol.273): Heart Circ. Physiol. 1997a. — Vol.42. — P. H2280-H2289.
  119. Huangfu D., Guyenet P. a2-adrenergic autoreceptors in A5 and A6 neurons of neonate rats //Am. J. Physiol. (Vol.273): Heart Circ. Physiol. 19 976. — Vol.42. -P.H2290-H2295.
  120. Huangfu D., Hwang L.J., Riley T.A., Guyenet P.G. Splanchnic nerve response to A5 area stimulation in rats //Am. J. Physiol. 1992. — Vol.263. — N.2. -P.R437-R446.
  121. Huangfu D.H., Koshiya N., Guyenet P. A5 noradrenergic unit activity and sympathetic nerve discharge in rats //Am. J. Physiol. 1991. — Vol.261. — N.2. -P.R393-R402.
  122. Iizuka M. Intercostal expiratory activity in an in vitro brainstem-spinal cord-rib preparation from the neonatal rat // J. Physiol. 1999. — Vol.520. -No.l. — P. 293 302.
  123. Infante C.D., von Bernhardi R., Rovegno M., Llona I., Eugenin J.L. Respiratory responses to pH in the absence of pontine and dorsal medullary areas in the newborn mouse in vitro //Brain Res. 2003. — Vol.984. — N. l-2. — P.198−205.
  124. Ito Y., Oyamada Y., Hakuno H., Yamaguchi K. Morphological analysis of developmental changes in pontine noradrenergic groups in the neonatal rat //Brain Res. 2002. — Vol.925. — P. 107−109.
  125. Ito Y., Oyamada Y., Okada H., Hakuno H., Aoyama R., Yamaguchi K. Optical mapping of pontine chemosensitive regions of neonatal rat //Neurosci. Lett. -2004. Vol.366. — N.l. — P.103−106.
  126. Ito Y., Oyamada Y., Yamaguchi K. Age-dependent chenosensitive pontine inhibition of medullary respiratory rhythm in the isolated brainstem of the neonatal rat //Brain Res. 2000. — Vol.887. — P.418−420.
  127. Jacquin T.D., Borday V., Schneider-Maunoury S., Topilko P., Ghilini G., Kato F., Charnay P., Champagnat J. Reorganization of pontine rhythmogenic neuronal networks in Krox-20 knockout mice //Neuron 1996. — Vol.17. — P.747−758.
  128. Jansen A.S., Wessendorf M.W., Loewy A.D. Transneuronal labeling of CNS neuropeptide and monoamime neurons after pseudorabies virus injections into the stellate ganglion //Brain Res. 1995. — Vol.683. — N.l. — P. 1−24.
  129. Jodkowski J.S., Coles S.K., Dick Т.Е. A 'pneumotaxic centre' in rats //Neurosci. Lett. 1994. — Vol.172. — N. l-2. — P.67−72.
  130. Jodkowski J.S., Coles S.K., Dick Т.Е. Prolongation of expiration evoked from ventrolateral pons of adult rats //J. Appl. Physiol. 1997. — Vol.82. — N.2. -P.377−381.
  131. Johnson S.M., Koshiya N., Smith J.C. Isolation of the kernel for respiratory rhythm generation in a novel preparation: the pre-Botzinger complex «island» //J. Neurophysiol. 2001. — Vol.85. — P.1772−1776.
  132. Johnson S.M., Smith J.C., Feldman J.L. Modulation of respiratory rhythm in vitro: role of Gi/o protein-mediated mechanisms //J. Appl. Physiol. 1996. -Vol.80. — N.6. — P.2120−2133.
  133. Johnson S.M., Smith J.C., Funk G.D., Feldman J.L. Pacemaker behavior of respiratory neurons in medullary slices from neonatal rat //J. Neurophysiol. -1994. Vol.72. — N.6. — P.2598−2608.
  134. Johnston B.M., Gluckman P.D. Lateral pontine lesions affect central chemo-sensitivity in unanesthetized fetal lambs //J. Appl. Physiol. 1989. — Vol.67. -N.3. — P. 1113−1118.
  135. Johnston B.M., Gluckman P.D. Peripheral chemoreceptor respond to hypoxia in pontine-lesioned fetal lambs in utero //J. Appl. Physiol. 1993. — Vol.75. — N.3. — P.1027−1034.
  136. Kashiwagi M., Onimaru H., Homma I. Correlation analysis of respiratory neuron activity in ventrolateral medulla of brainstem-spinal cord preparation isolated from newborn rat // Exp. Brain Res. 1993. Vol.95. — P.277−290.
  137. Kato F., Morin-Surun M.-P., Denavit-Saubie M. Coherent inspiratory oscillation of cranial nerve discharges in perfused neonatal cat brainstem in vitro //J. Physiol. 1996. — Vol.497. — No.2. -P.539−549.
  138. Kawai A., Ballantyne D., Muckenhoff K., Scheid P. Chemosensitive medullary neurons in the brainstem-spinal cord preparation of the neonatal rat //J. Physiol. -1996. Vol.492. — N.l. — P.277−292.
  139. Khater-Boidin J., Rose D., Duron B. Central effects of 5-HT on activity of respiratory and hypoglossaly innervated muscles in newborn kittens //J. Physiol. -1996. Vol.495. — N.l. — P.255−265.
  140. Kiehn O., Sillar K.T., Kjaerulff O., McDearmid J.R. Effects of noradrenaline on locomotor rhythm-generating networks in the isolated neonatal spinal cord //J. Neurophysiol. 1999. — Vol.82. — P.741−746.
  141. Kobayashi K., Lemke R.P., Greer J.J. Ultrasound measurements of fetal breathing movements in the rat //J. Appl. Physiol. 2001. — Vol.91. — P.316−320.
  142. Kobayashi S., Onimaru H., Inoue M., InoueT., Sasa R. Localization and properties of respiratory neurons in the rostral pons of the newborn rat //Neurosci. -2005. Vol.134. — P.317−325.
  143. Kocsis В., Gyimesi-Pelczer K. Power spectral analysis of inspiratory nerve activity in the anesthetized rat: uncorrelated fast oscillations in different inspiratory nerves //Brain Res. 1997. — Vol.745. — No.2. -P.309−312.
  144. Kocsis В., Gyimesi-Pelczer K., Vertes R.P. Medium-frequency oscillations dominate the inspiratory nerve discharge of anesthetized newborn rats //Brain Res. 1999. — Vol.818. — No.l. -P.180−183.
  145. Koshiya N., Guyenet P. A5 noradrenergic neurons and the carotid sympathetic chemoreflex //Am. J. Physiol. 1994. — Vol.267. — N.2. — P. R519-R526.
  146. Koshiya N., Smith J.C. Neuronal pacemaker for breathing visualized in vitro //Nature 1999. — Vol.400. — P.360−363.
  147. Kosmidis E.K., Pierrefiche О., Vibert J.-F. Respiratory-like rhythmic activity can be produced by an excitatory network of non-pacemaker neuron models //J. Neurophysiol. 2004. — Vol.92. — P.686−699.
  148. Krukoff T.L. Central actions of nitric oxide in regulation of autonomic functions //Brain Res. Rev. 1999. — Vol.30. — P.52−65.
  149. Lalani S., Remmers J.E., Green F.H., Bukhari A., Ford T.G., Hasan S.U. Effects of vagal denervation on cardiorespiratory and behavioral responses in the newborn lamb //J. Appl. Physiol. 2001. — Vol.91. — P.2301−2313.
  150. Lara J.P., Dawid-Milner M.S., Lopez M.V., Montes C., Spyer K.M., Gonzalez-Baron S. Laryngeal effects of stimulation of rostral and ventral pons in the anaesthetized rat //Brain Res. 2002. — Vol.934. — P.97−106.
  151. Lee A., Wissekerke A.E., Rosin D.L., Lynch K.R. Localization of a2c-adrenergic receptor immunoreactivity in catecholaminergic neurons in the rat central nervous system //Neurosci. Vol.84. — N.4. — P. 1085−1096.
  152. Leonard Т.О., Lydic R. Pontine nitric oxide modulates acetylcholine release, rapid eye movement sleep generation and respiratory rate //J. Neurosci. 1997. -Vol.17. — N.2. — P.774−785.
  153. Li A., Nattie E. Catecholamine neurones in rats modulate sleep, breathing, central chemoreception and breathing variability //J. Physiol. (Lond.) 2006. -Vol.570.-N.2.-P.385−396.
  154. Li Y.M., Shen L., Peever J.H., Duffin J. Connections between respiratory neurons in the neonatal rat transverse medullary slice studied with cross-correlation //J. Pjysiol. 2003. — Vol.549. — N.l. — P.327−332.
  155. Li Y.-W., Dampney R.A.L. Clonidine and rilmenidine suppress hypotension-induced Fos expression in the lower brainstem of the conscious rabbit //Neurosci. 1995. — Vol.66. — N.2. — P.391−402.
  156. Lin L.-H., Sahai A.K., Rockland K.S., Talman W.T. The distribution of neuronal nitric oxide synthase in the nucleus tractus solitarius of squirrel monkey //Brain Res. 2000. — Vol.856. — P.84−92.
  157. LingL., Karius D.R., Speck D.F. Endogenous nitric oxide required for an integrative respiratory function in the cat brain //J. Neurophysiol. 1992. — Vol.68. -N.5. — P.1910−1912.
  158. Liu G., Feldman J.L., Smith J.C. Excitatory amino acid mediated transmission of inspiratory drive to phrenic motoneurons //J. Neurophysiol. — 1990. -Vol.64. — N.2. — P.423−436.
  159. Liu Q., Wong-Riley M.T.T. Developmental changes in the expression of GABAa receptor subunits in the rat pre-Botzinger complex //J. Appl. Physiol. -2004. Vol.96. — P. 1825−1831.
  160. Liu Q., Wong-Riley M.T.T. Postnatal changes in cytochrome oxidase expression in brain stem nuclei of rats: implications for sensitive periods //J. Appl. Physiol. 2003. — Vol.95. — P.2285−2291.
  161. Liu Q., Wong-Riley M.T.T. Postnatal expression of neurotransmitters, receptors and cytochrome oxidasein the rat pre-Botzinger complex //J. Appl. Physiol. -2002. Vol.92. — N.3. — P.923−934.
  162. Liu Y.-Y., Wong-Riley M.T.T. Developmental study of cytochrome oxidase activity in the brain stem respiratory nuclei of postnatal rats //J. Appl. Physiol. -2001.-Vol.90.-P.685−694.
  163. Lizasoain I., Weiner C.P., Knowles R.G., Moncada S. The ontogeny of cerebral and cerebellar nitric oxide synthase in the guinea pig and rat //Pediatr. Res. -1996. Vol.39. — N.5. — P.779−783.
  164. Loewy A.D., Marson L., Perry M.A., Sawyer W.B. Descending noradrenergic pathways involved in the A5 depressor response //Brain Res. 1986. — Vol.386. -N.l-2. — P.313−324.
  165. Lowry T.F., Forster H.V., Pan L.G., Kodrucki M.A., Probst J., Franciosi R.A., Forster M. Effect of carotid body denervation on breathing in neonatal goats //J. Appl. Physiol. 1999. — Vol.87. — N.3. — P.1026−1034.
  166. Ma S., Abboud F.M., Felder R.B. Effects of L-arginine-derived nitric oxide synthesis on neuronal activity in nucleus tractus solitarius // Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 1995. — Vol.268. — P. R487-R491.
  167. Maiorov D.N., Malpas S.C., Head G.A. Influence of pontine A5 region on renal sympathetic nerve activity in conscious rabbits //Am. J. Physiol. 2000. -Vol.278.-P.R311-R319.
  168. Maiorov D.N., Wilton E.R., Badoer E., Petrie D., Head G.A., Malpas S. Sympathetic response to stimulation of the pontine A5 region in conscious rabbits //Brain Res. 1999. — Vol.815. — N.2. — P.227−236.
  169. Martin-Caraballo M., Greer J.J. Electrophysiological properties of rat phrenic motoneurons during perinatal development //J. Neurophysiol. 1999. — Vol.81. -P.1365−1378.
  170. Mc Crimon D.R., Smith J.C., Feldman J.L. Involvement of excitatory amino acids in neurotransmission of inspiratory drive to spinal respiratory motoneurons //J. Neurosci. 1989. — Vol.9. — N.6. — P.1910−1921.
  171. McCulloch P.F., Panneton W.M. Activation of brainstem catecholaminergic neurons during voluntary diving in rats //Brain Res. 2003. — Vol.984. — N. l-2. -P.42−53.
  172. Meldrum B. Glutamate and glutamine in the brain //J. Nutrition. 2000. -Vol.130.-P.1007S-1015S.
  173. Mellen N.M., Feldman J.L. Phasic lung inflation shortens inspiration and respiratory period in the lung-attached neonate rat brain stem spinal cord //J. Neurophysiol. 2000. — Vol. 83. — P. 3165−3168.
  174. Mellen N.M., Feldman J.L. Phasic vagal sensory feedback transforms respiratory neuron activity in vitro // J. Neurosci. 2001. — Vol.21. — N.18. — P.7363−7371.
  175. Mellen N.M., Janczewski W.A., Bocchario C., Feldman J.L. Opioid-induced quantal slowing reveals dual networks for respiratory rhythm generation //Neuron. 2003. — Vol.37. — P.821−826.
  176. Mellen N.M., Milson W.K., Feldman J.L. Hypothermia and recovery from respiratory arrest in a neonatal rat in vitro brain stem preparation //Am. J. Physiol.: Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 2002. — Vol.282. — P. R484-R491.
  177. Mentis G.Z., Diaz E., Moran L.B., Navarrete R. Increased incidence of gap junctional coupling between spinal motoneurones following transient blockade of NMDA receptors in neonatal rats //J. Physiol. 2002. — Vol. 544. — N.3. — P.757−764.
  178. Monteau R., Morin D., Hilaire G. Acetylcholine and central chemosensitivity: in vitro study in the newborn rat //Respiration Physiology. 1990. — Vol.81. -P.241−254.
  179. Montoro R., Yuste R. Gap junctions in developing neocortex: a reviw //Brain Research Reviews 2004. — Vol.47. — P.216−226.
  180. Morgado-Valle C., Feldman J.L. Depletion of substance P and glutamate by capsaicin blocks respiratory rhythm in neonatal rat in vitro //J. Physiol. 2004. -Vol.555. — N.3. — P.783−792.
  181. Morin D., Bonnot A., Ballion D., Viala D. al-adrenergic receptor-induced slow rhythmicity in nonrespiratory cervical motoneurons of neonatal rat spinal cord //Eur. J. Neurosci. 2000. — Vol.12. — P.2950−2956.
  182. Morin D., Viala D. Coordinations of locomotor and respiratory rhythms in vitro are critically dependent on hindlimb sensory inputs //J. Neurosci. 2002. -Vol.22. — N. l 1. — P.4756−4765.
  183. Mutolo D., Bonglanni F., Carfi M., Pantaleo T. Respiratory changes induced by kainic acid lesions in rostral ventral respiratory group of rabbits //Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 2002. — Vol.283. — P. R227-R242.
  184. Nunez-Abadez P.A., Morilli A.M., Pasaro R. Brainstem connections of the ventral respiratory subgroups: afferent projections //J. Aut. Nerv. Syst. 1993. -Vol.42.-N.2.-P.99−118.
  185. Ogawa H., Mizusawa A., Kikuchi Y., Hida W., Miki H., Shirato K. Nitric oxide as a retrograde messenger in the nucleus tractus solitarii of rats during hypoxia //J. Physiol. 1995. — Vol.486. — N.2. — P.495−504.
  186. Okada H., Miyakawa N., Mori H., Mishina M., Miyamoto Y., Hisatsune T. NMDA receptors in cortical development are essential for the generation of coordinated increases in Ca2+.i in 'neuronal domains' //Cerebral Cortex. 2003. -Vol.13.-P.749−757.
  187. Onimaru H. Studies of the respiratory center using isolated brainstem spinal cord preparations //Neurosci. Res. — 1995. — Vol.21. — P.183−190.
  188. Onimaru H., Arata A., Homma I. Firing properties of respiratory rhythm generating neurons in the absence of synaptic transmission in rat medulla in vitro //Exp. Brain Res. 1989. — Vol.76. — N.3. — P.530−536.
  189. Onimaru H., Arata A., Homma I. Inhibitory synaptic inputs to the respiratory rhythm generator in the medulla isolated from newborn rats //Pflugers Arch. -1990. Vol.417. — P.425−432.
  190. Onimaru H., Arata A., Homma I. Localization of respiratory rhythm-generating neurons in the medulla of brainstem-spinal cord preparations from newborn rats//Neurosci. Lett. -1987. -Vol. 78. P. 151−155.
  191. Onimaru H., Arata A., Homma I. Neuronal mechanisms of respiratiry rhythm generation: an approach using in vitro preparation //Jap. J. Physiol. 1997. -Vol.47. — No.5. — P.385−403.
  192. Onimaru H., Ballanyi K., Homma I. Contribution of Ca2±dependent conductances to membrane potential fluctuations of medullary respiratory neurons of newborn rats in vitro //J. Physiol. 2003. — Vol.552. — N.3. — P.727−741.
  193. Onimaru H., Ballanyi K., Richter D.W. Calcium-dependent responses in neurons of the isolated respiratory network of newborn rats //J. Physiol. 1996. -Vol.491. — No.3. -P.677−695.
  194. Onimaru H., Homma I. A novel functional neuron group for respiratory rhythm generation in the ventral medulla //J. Neurosci. 2003. — Vol.23. — N.4. — P. 14 781 486.
  195. Onimaru H., Homma I. Development of the rat respiratory neuron network during the late fetal period //Neurosci. Res. 2002. — Vol.42 — N.3 — P.209−218.
  196. Onimaru H., Homma I. Whole cell recordings from respiratory neurons in the medulla of brainstem-spinal preparations isolated from newborn rats // Pflugers Arch. 1992. — Vol. 420. — P.399−406.
  197. Onimaru H., Kashiwagi M., Arata A., Homma I. Possible mutual excitatory couplings between inspiratory neurons in caudal ventrolateral medulla of brainstem-spinal cord preparation isolated from newborn rat // Neurosci. Lett. 1993. -Vol.150. -P.203−206.
  198. Onimaru H., Shamoto A., Homma I. Modulation of respiratory rhythm by 5-HT in the brainstem-spinal cord preparation from newborn rat //Pflugers Arch. -1998. Vol.435. — P.485−494.
  199. Oyamada Y., Ballantyne D., Muchenhoff K., Scheid P. Respiration modulated membrane potential and chemosensitivity of locus coeruleus neurones in the in vitro brainstem-spinal cord of the neonatal rat //J. Physiol. 1998. — Vol.513. — N.2. — P.381−398.
  200. Pagliardini S., Ren J., Greer J.J. Ontogeny of the pre-Botzinger complex in perinatal rats //J. Neurosci. 2003. — Vol.23. — N.29. — P.9575−9584.
  201. Paneton W.M., McCulloch P.F., Sun W. Trigemino-autonomic connections of the muskrat: the neural substance for the diving response //Brain Res. 2000. -Vol.874. — P.48−65.
  202. Panneton W.M. Controlled bradycardia induced by nasal stimulation in the muskrat, Ondatra zibethicus //J. Auton. Nerv. Syst. 1990. — Vol.30. — N.3. — P.253−263.
  203. Panneton W.M., McCulloch P.F., Sun W. Trigemino-autonomic connections in the muskrat: the neural substrate for the diving response //Brain Res. 2000. -Vol.874.-N.l.-P.48−65.
  204. Paton J.F.R. A working heart-brainstem preparation of the mouse //J. Neurosci. Methods 1996. — Vol.65. — P.63−68.
  205. Paton J.F.R., Richter D.W. Role of fast inhibitory synaptic mechanisms in respiratory rhythm generation in the maturing mouse //J. Physiol. 1995. — Vol.484. -No.2. -P.505−521.
  206. Paxinos G. and Watson C. The rat brain in stereotaxic coordinates //Forth edition, Academic Press, USA, 1998.
  207. Pehl U., Schmid H.A. Electrophysiological responses of neurons in the rat spinal cord to nitric oxide //Neurosci. 1997. — Vol.77. — N.2. — P.563−573.
  208. Pena F., Parkis M., Tryba A., Ramirez J.-M. Differential contribution of pacemaker properties to the generation of respiratory rhythms during normoxia and hypoxia//Neuron. 2004. — Vol.43. — P.105−117.
  209. Pena F., Ramirez J.-M. Endogenous activation of serotonine-2A receptors is required for respiratory rhythm generation in vitro //J. Neurosci. 2002. — Vol.22. -N.24.-P. 11 055−11 064.
  210. Pena F., Ramirez J.-M. Substance P mediated modulation of pacemaker properties in the mammalian respiratory network //J. Neurosci. — 2004. — Vol.24. -N.34.-P.7 549−7556.
  211. Phillip M., Brede M., Hein L. Physiological significance of a2-adrenergic receptor diversity: one receptor is not enough //Am. J. Physiol.: Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 2002. — Vol.283. — P. R287-R.295.
  212. Poison J., Mrljak S., Potts P.D., Dampney R.A.L. Fos expression in spinally projecting neurons after hypotension in the conscious rabbit //Auton. Neurosci. -2002. Vol.100. — N. l-2. — P.10−20.
  213. Ponn C.-S., Zhou Z., Champagnat J. NMDA receptor activity in utero averts respiratory depression and anomalous long-term depression in newborn mice //J. Neurosci. 2000. — Vol.20. — RC.73 — P. l-6.
  214. Pudovkina O.L., Westerink B.H.C. Functional role of a 1-adrenoceptors in the locus coeruleus: a microdialysis study //Brain Res. 2005. — Vol.1061. — N. l-2. -P.50−56.
  215. Qu Z., Yang Z., Cui N. Zhu G" Liu C., Xu H., Chanchevalap S., Shen W., Wu J., Li Y., Jiang C. Gating of inward rectifier K+ channels by proton-mediated interactions of N- and C-terminal domains //J. Biol. Chem. 2000. — Vol.275. -N.41.-P.31 573−31 580.
  216. Ramirez J.M., Quellmalz U.J., Richter D.W. Postnatal changes in mammalian respiratory network as revealed by transverse brainstem slice of mice //J. Physiol.- 1996. Vol.491. — N.3. — P.799−812.
  217. Ramirez J.M., Quellmalz U.J.A., Wilken В., Richter D.W. The hypoxic response of neurones within the in vitro mammalian respiratory network //J. Physiol.- 1998. Vol.507. — No.2. -P.571−582.
  218. Rekling J.C., Champagnat J., Denavit-Saubie M. Electroresponsive properties and membrane potential trajectories of three types of respiratory neurons in the newborn mouse brain stem in vitro //J. Neurophysiol. 1996. — Vol. 75. — N.2. -P.795−810.
  219. Rekling J.C., Champagnat J., Denavit-Saubie M. Thyrotropin-relising hormone (TRH) depolarizes a subset of respiratory neurons in the newborn mouse brain stem in vitro //J. Neurophysiol. 1996. — Vol.75. — N.2. — P.811−819.
  220. Rekling J.C., Feldman J.L. Bidirectional electrical coupling between inspiratory motoneurons in the newborn mouse nucleus ambiguus //J. Neurophysiol. -1997. Vol.78. — No.6. -P.3508−3510.
  221. Rekling J.C., Shao X.M., Feldman J.L. Electrical coupling and excitatory synaptic transmission between rhythmogenic respiratory neurons in the preBotzinger complex //J. Neurosci. 2000. — Vol. 20. — RC 113. — P. l-5.
  222. Ren J., Momose-Sato Y., Sato K., Greer J.J. Rhythmic neuronal discharge in the medulla and spinal cord of fetal rats in the absence of synaptic transmittion //J. Neurophysiol. 2006. — Vol.95. — P.527−534.
  223. Riche D., Foutz A.S., Denavit-Saubie M. Developmental changes of NADPH-diaphorase neurons in the forebrain of neonatal and adult cat //Develop. Brain Res. 1995. — Vol.89. — N.l. — P.139−145.
  224. Richter D.W., Ballanyi K., Schwarzacher S. Mechanisms of respiratory rhythm generation //Current Opinion in Neurobiology 1992. — Vol.2. — P.788−793.
  225. Richter D.W., Champanat J., Jacquin Т., Benacka R. Calcium currents and cal-cium-dependet potassium currents in mammalian medullary respiratory neurons // J. Physiol. 1993. — Vol.470. — No.l. — P.23−33.
  226. Ritucci N.A., Dean J.B., Putnam R.W. Intracellular pH response to hypercap-nia in neurons from chemosensitive areas of the medulla // Am. J. Physiol. (Vol.273): Regul., Integr. and Сотр. Physiol. 1997. — Vol.42. — N.4. -P. R433-R411.
  227. Robinson E., Hudson A. Adrenoceptor pharmacology //Tocris Reviews. -1998.-N.8.-P.1−6.
  228. Roerig В., Feller M.B. Neurotransmitters and gap junctions in developmental neural circuits //Brain Research Reviews. 2000. — Vol.32. — P.86−114.
  229. Romagnano M.A., Harshbarger R.J., Hamill R.W. Brainstem projections to spinal anatomic nuclei //J. Neurosci. 1991. — Vol.11. — P.3539−3555.
  230. Roux J.C., Peyronnet J., Pascual O., Dalmaz Y., Pequignot J.M. Ventilatory and central neurochemical reorganization of 02 chemoreflex after carotid sinus nerve transection in rat //J. Physiol. 2000. — Vol.522. — N.3. — P.493−501.
  231. Rozental R., Giaume C., Spray D.C. Gap junctions in the nervous system //Brain Research Reviews. 2000.- Vol.32. — P. ll-15.
  232. Saether К., Hilaire G., Monteau R. Dorsal and ventral respiratory groups of neurons in the medulla of the rat //Brain Res. 1987. — Vol.419. — P.87−96.
  233. Schlenker E.H., Prestbo A. Elimination of the post-hypoxic decline in conscious rats lesioned in pontine A5 region // Respir. Physiol. & Neurobiol. 2003.- Vol.138. N.2−3. — P.179−191.
  234. Schreihoffer A.M., Guyenet P. Sympathetic reflexes after depletion of bulbospinal catecholaminergic neurons with anti-DpH-saporin // Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 2000. — Vol.279. — P. R729-R742.
  235. Shao X.M., Feldman J.L. Acetylcholine modulates respiratory pattern: effects mediated by M3-like receptors in the preBotzinger complex inspiratory neurons //J. Neurophysiol. 2000. — Vol.83. — P.1243−1252.
  236. Shao X.M., Feldman J.L. Respiratory rhythm generation and synaptic inhibition of expiratory neurons in pre-Botzinger complex: differential roles of gly-cinergic and GABAergic neural transmission //J. Neurophysiol. 1997. — Vol.77.- N.4. P.1853−1860.
  237. Shao X.M., Ge Q., Feldman J.L. Modulation of AMPA receptors by cAMP-dependent protein kinase in preBotzinger complex inspiratory neurons regulates respiratory rhythm in the rat //J. Physiol. 2003. — Vol.547. — N.2. — P.543−553.
  238. Shirasawa S., Arata A., Onimaru H., Roth K., Brown G., Horning S., Arata S., Okumura K., Sasazuki Т., Korsmeyer S. Rnx deficiency results in congenital central hypoventilation //Nature Genetics 2000. — Vol.24. — P.287−290.
  239. Shvarev Y.N., Lagercrantz H., Yamamoto Y. Two types of rhythm in the respiratory network output in the isolated ventrolateral medulla in the neonatal rats //Neurosci. Lett. 2003. — Vol.347. — P.53−56.
  240. Sica A.L., Gandhi M.F., Steele A.M. Central patterning of inspiratory activity in the neonatal period //Developmental Brain Res. 1991. — Vol.64. — P.77−86.
  241. Sica A.L., Seele A.M., Gandhi M.R., Donnely D., Prasad N. Power spectral analyses of inspiratory activity in neonatal pigs //Brain Res. 1988. — Vol.440. -P.370−374.
  242. Smith B.N., Dou P., Barber W.D., Dudek F.E. Vagally evoked synaptic currents in the immature rat nucleus tractus solitarii in an intact in vitro preparation //J. Physiol. 1998. — Vol.512. — No.l. -P.149−162.
  243. Smith J.C., Ellenberger H.H., Ballanyi K., Richter D.W., Feldman J.L. PreBotzinger complex: a brainstem region that may generate respiratory rhythm in mammals // Science. 1991. — Vol. 254. — P. 726−729.
  244. Smith J.C., Feldman J.L. In vitro brainstem-spinal cord preparations for study of motor systems for mammalian respiration and locomotion // J. Neurosci. Methods. 1987. — Vol. 21.- P. 321−333.
  245. Song G., Poon C.-S. Functional and structural models of pontine modulation of mechanoreceptor and chemoreceptor reflexes //Respir. Physiol. & Neurobiol. -2004. Vol.143. — N.2−3. — P.281−292.
  246. St. John W.M. Medullary regions for neurogenesis of gasping: noeud vital or noeuds vitals? //J. Appl. Physiol. 1996. — Vol.81. — N.5. — P. 1865−1877.
  247. St. John W.M., Zhou D. Rostral pontine mechanisms regulate durations of expiratory phases //J. Appl. Physiol. 1991. — Vol.71. — N.6. — P.2133−2137.
  248. St.-John W.M., Rybak I.A., Paton J.F.R. Potential switch from eupnea to fic-tive gasping after blockade of glycine transmission and potassium channels // Am. J. Physiol.: Regul., Integr., Сотр. Physiol. 2002. — Vol.283. — N.3. — R721-R731.
  249. Stornetta R.L., Norton F.E., Guyenet P.G. Autonomic areas of rat brain exhibit increased Fos-like immunoreactivity during opiate withdrawal in rats //Brain Res. 1993. — Vol.624. — N. l-2. — P.19−28.
  250. Strack A.M., Sawyer W.B., Piatt K.B., Loewy A.D. CNS cell groups regulating the sympathetic outflow to adrenal gland as revealed by transneuronal cell body labeling with pseudorabies virus //Brain Res. 1989. — Vol.491. — N.2. -P.274−296.
  251. Sun W., Panneton W.M. Defining projections from caudal pressor area of the caudal ventrolateral medulla /Я. Сотр. Neurol. 2005. — Vol.482. — N.3. -P.273−293.
  252. Suzue T. Respiratory rhythm generation in the in vitro brainstem-spinal cord preparation of the neonatal rat // J.Physiol. .-1984. -Vol. 354.-P.173−183.
  253. Tagawa Т., Imaizumi Т., Harada S., Endo Т., Shiramoto M., Hirooka Y., Take-shita A. Nitric oxide influences neuronal activity in the nucleus tractus solitarius of rat brainstem slices //Circ. Res. 1994. — Vol.75. — N.l. — P.70−76.
  254. Tanabe A., Fujii Т., Onimaru H. Facilitation of respiratory rhythm by a j-i-opioid agonist in newborn rat pons-medulla-spinal cord preparations //Neurosci. Lett. 2005. — Vol.375. — N.l. — P. 19−22.
  255. Tavares I., Lima D., Coimbra A. The pontine A5 noradrenergic cells which project to the spinal cord dorsal horn are reciprocally connected with the caudal ventrolateral medulla in the rat //Eur. J. Neurosci. 1997. — Vol.9. — N.ll. -P.2452−2461.
  256. Telgkamp P., Ramirez J.-M. Differential responses of respiratory nuclei to anoxia in rhythmic brain stem slices of mice //J. Neurophysiol. 1999. — Vol.82. -N.5. -P.2163−2170.
  257. Teppema L., Berkensbosch A., Olievier C. Effect of N^nitro-L-arginine on ventilatory response to hypercapnia in anesthetized cats //J. Appl. Physiol. 1997. — Vol.82. — N.l. — P.292−297.
  258. Teppema L.J., Veening J.G., Kranenburg A., Dahan A., Berkenbosch A., Olievier C. Expression of c-fos in the rat brainstem after exposure to hypoxia and to normoxic and hyperoxic hypercapnia // J. Сотр. Neurol. 1998. — Vol.388. -N.2. — P.169−190.
  259. Thach B. Fast breaths, slow breaths, small breaths, big breaths: importance of vagal innervation in the newborn lung //J. Appl. Physiol. 2001. — Vol. 91. -P.2298−2300.
  260. Thoby-Brisson M., Ramirez J.-M. Identification of two types of inspiratory pacemaker neurons in the isolated respiratory neural network of mice //J. Neurophysiol. 2001. — Vol.86. — P. 104−112.
  261. Thoby-Brisson M., Telgkamp P., Ramirez J.-M. The role of the hyperpolariza-tion-activated current in modulating rhythmic activity in the isolated respiratory network of mice //J. Neurosci. 2000. — Vol.20. — N.8 — P.2994−3005.
  262. Tresch M.C., Kiehn О. Synchronization of motor neurons during locomotion in the neonatal rat: predictors and mechanisms //J. Neurosci. 2002. — Vol.22. -N.22. -P.9997−10 008.
  263. Tryba A.K., Pena F., Ramirez J.-M. Stabilization of bursting respiratory pacemaker neurons //J. Neurosci. 2003. — Vol.23. — N.8. — P.3538−3546.
  264. Tryba A.K., Ramirez J.-M. Hyperthermia modulates respiratory pacemaker bursting properties //J. Neurophysiol. 2004. — Vol.92. — P.2844−2852.
  265. Viemari J.-C., Bevengut M., Coulon P., Hilaire G. Nasal trigeminal inputs release the A5 inhibition received by the respiratory rhythm generator of the mouse neonate //J. Neurophysiol. 2004 6. — Vol.91. — P.746−758.
  266. Viemari J.C., Hilaire G. Noradrenergic receptors and in vitro respiratory rhythm: possible interspecies differences between mouse and rat neonates //Neurosci. Lett. 2002. — Vol.324. — P.149−153.
  267. Viopio J., Ballanyi K. Interstitial pC02 and pH, and their role as chemostimu-lants in the isolated respiratory network of neonatal rats //J. Physiol. 1997. -Vol.499.-N.2.-P.527−542.
  268. Vlasic V., Simakajornboon N., Gozal E., Gozal D. PDGF-p receptor expression in the dorsocaudal brainstem perallels hypoxic ventilatory depression in the developing rat //Pediatric Research. 2001. — Vol.50. — N.2. — P.236−241.
  269. Volgin D., Volgina A., Seredenlo M. Involvement of nitric oxide in regulation of the medullary respiratory rhythm in neonatal rats //Acta Neurobiol. Exp. (Warsz.) 2000. — Vol.60. — N.2. — P.175−186.
  270. Wang W., Fung M.-L., Darnall R.A., St John W.M. Characterizations and comparisons of eupnoea and gasping in neonatal rats //J. Physiol. 1996. -Vol.490. — N.l. — P.277−292.
  271. Wang W., Fung M.L., St. John W.M. Pontile regulation of ventilatory activity in the adult rat //J. Appl. Physiol. 1993. — Vol.74. — N.6. — P.2801−2811.
  272. West A.R., Galloway M.P., Grace A.A. Regulation of striatal dopamine neurotransmission by nitric oxide: effector pathways and signalling mechanisms //Synapse. 2002. — Vol.44. — P.227−245.
  273. Westlund K.N., Craig A.D. Association of spinal lamina I projections with brainstem catecholamine neurons in the monkey //Exper. Brain. Res. 1996. -Vol.110. — N.2. — P.151−162.
  274. Wodruff M.L., Baisden R.H., Whittington D.L. Effects of electrical stimulation of the pontine A5 cell group on blood pressure and heart rate in the rabbit //Brain Res. 1986. — Vol.379. — N.l. — P.10−23.
  275. Yamomoto Y., Onimaru H., Homma I. Effect of substance P on respiratory rhythm and pre-inspiratory neurons in the ventrolateral structure of rostral medulla oblongata: an in vitro study //Brain Res. 1992. — Vol.599. — P.272−274.
  276. Yang Z., Xu H., Cui N., Qu Z., Chanchevalap S., Shen W., Jiang C. Biophysical and molecular mechanisms underlying the modulation of heterometric Kir4.1-Kir5.1 channels by C02 and pH //J. General Physiol. 2000. — Vol.116. — N.l. -P.33−46.
  277. Zanzinger J., Czachurski J., Seller H. Nitric oxide in the ventrolateral medulla regulates sympathetic responses to systemic hypoxia in pigs // Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Сотр. Physiol. 1998. — Vol.275. — P. R33-R39.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!