Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Скорость транспорта кислорода в скелетной мышцы крысы

Диссертация: Скорость транспорта кислорода в скелетной мышцы крысы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Одной из главных задач системы микроциркуляции является доставка достаточного количества кислорода для поддержания функции терминальной оксидазы респираторной цепи митохондрий. Доставка кислорода важна по двум главным причинам: первая — более чем 95% энергии для всех физиологических процессов генерируется за счет окислительного фосфорилйрования, и вторая — полный запас кислорода в организме… Читать ещё >

Скорость транспорта кислорода в скелетной мышцы крысы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ОБОЗНАЧЕНИЙ
  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • ГЛАВА II. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Общие замечания
    • 2. 2. Объект исследования
    • 2. 3. Экспериментальная установка и подготовка ее к опыту
    • 2. 4. Регистрация параметров транспорта кислорода в мышце и обра- 34 ботка экспериментальных данных
    • 2. 5. Морфометрия m. cremaster
  • ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Параметры транспорта кислорода в m. cremaster в средах с глюко- 41 зой и глюкозой и сукцинатом натрия при 38°С
    • 3. 2. Параметры транспорта кислорода в m. cremaster в средах 44 с глюкозой и глюкозой и сукцинатом натрия при 28°С
    • 3. 3. Параметры транспорта кислорода в m. cremaster при 38 °C в покое 48 и при сокращении
    • 3. 4. Морфометрические параметры m. cremaster
    • 3. 5. Определение коэффициента диффузии кислорода в волокнах 54 m. cremaster методом численного моделирования
  • ГЛАВА IV. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
    • 4. 1. Скорость потребления и критическое напряжение кислорода
    • 4. 2. Влияние температуры на параметры транспорта кислорода в мыш- 67 це
    • 4. 3. Объем интерстициального пространства в мышце
    • 4. 4. Пределы изменения коэффициента диффузии кислорода в мышеч- 72 ных волокнах
    • 4. 5. Коэффициент диффузии кислорода в мышечных волокнах по ре- 74 зультатам численного моделирования
  • ВЫВОДЫ

Актуальность темы

Одной из главных задач системы микроциркуляции является доставка достаточного количества кислорода для поддержания функции терминальной оксидазы респираторной цепи митохондрий. Доставка кислорода важна по двум главным причинам: первая — более чем 95% энергии для всех физиологических процессов генерируется за счет окислительного фосфорилйрования, и вторая — полный запас кислорода в организме обеспечивает жизнедеятельность в покое менее чем на 5 минут. В массопереносе кислорода из внешней среды к тканям финальным этапом является его транспорт из капилляра к клеточным митохондриям. Скорость этого транспорта можно измерить величиной коэффициента диффузии кислорода (D02). Диффузионный перенос молекулы кислорода обязательно присутствует в интерстициальном и во внутриклеточном пространствах. D02 характеризует проницаемость этих пространств для кислорода и поэтому может являться одним из основных факторов, определяющих скорость доставки кислорода в ткани.

В настоящее время нет единого мнения даже об усредненных (эффективных) значениях D02 в живых тканях и клетках. Ряд исследователей получили величины D02 для мышечной ткани всего в 1,2 — 1,5 раза ниже, чем D02 в воде (2,4−10″ 6 см2/с) [Ellsworth, Pittman 1984; Bentley, Pittman, 1997]. В то же время на изолированных клетках и мышечных волокнах величины D02 оказались в 10−30 и более раз ниже, чем D02 в воде [Jones, Kennedy, 1986; Баранов, 1991аStary, Hogan, 1999; Baranov et al., 2000]. Эти, казалось бы, разноречивые данные могут означать, что в опытах на целых тканях транспорт кислорода происходит через интерстициальные водные щели, и D02 в них близок к D02 в воде. С другой стороны, низкие величины D02 в клетках определяют низкую скорость транспорта в клетках и мышечных волокнах, что может затруднить перенос 02 к митохондриям, особенно при повышенном кислородном запросе, например, при мышечном сокращении. Возникает вопрос: может ли изменяться ООг в мышечном волокне при изменении в нем кислородного запроса. В доступной литературе мы не нашли экспериментальных работ, касающихся этой проблемы.

Цель Экспериментальное, численное определение величины DO2 в мышечном волокне при изменении уровня потребления кислорода в нем (V02).

Задачи исследования: 1. Исследовать на скелетной мышце крысы зависимость V02(p02) при различных уровнях V02 (изменяя V02 температурой инкубации мышцы 38 °C и 28 °C, добавлением в инкубационную среду сук-цината натрия, и сокращением мышцы).

2. Определить объем внеклеточного пространства, диаметр мышечных волокон, толщину мышцы и характер распределения митохондрий по поперечному сечению волокна на препаратах m. cremaster.

3. Определить методом численного моделирования транспорта кислорода в изолированной мышце (на основе полученных данных п. 1 и п. 2) величину и направленность изменений D02 внутри мышечных волокон при изменении их кислородного запроса.

Научная новизна. Установлено, что зависимость изменений величины D02 внутри мышечного волокна от температуры соответствуют зависимости величины D02 для чистой воды.

Обнаружено, что изменения D02 в мышечном волокне, связанные с повышением V02 в нем заметно меньше (в 1,5−2 раза), чем соответствующие изменения V02, и не всегда имеют одинаковую с ней направленность: при сокращении волокна D02 в нем падает, а при добавлении в инкубационную среду сукцината натрия — растет.

Впервые разработана инструментальная методика и численная модель к ней, позволяющие оценивать параметры транспорта кислорода в мышечных волокнах, находящихся в составе изолированной тонкой скелетной мышцы теплокровного животного.

Научно-практическое значение. Результаты исследования являются вкладом в развитие фундаментальных представлений о механизмах транспорта кислорода в мышечной ткани. Получены количественные экспериментальные данные о транспорте кислорода внутри мышечных волокон, что позволяет сопоставлять уровни снабжения их кислородом при заданном потреблении кислорода.

Областями применения полученных данных являются физиология, биофизика. Результаты работы могут быть использованы при изучении снабжения кислородом скелетных мышц при физиологических, физических и фармакологических воздействиях.

Положения, выносимые на защиту. 1. DO2 в мышечном волокне крысы, находящемся в составе изолированной мышцы, на порядок ниже, чем DO2 в чистой воде при той же температуре.

2. DO2 в мышечном волокне не постоянная величина. В процентном отношении DO2 изменяется меньше, чем соответствующие изменения VO2 и рОгкрит, а направления изменений величин DO2 и вышеназванных параметров не всегда совпадают.

3. В мышечном волокне зависимость величины D02 от температуры в диапазоне 38 °C — 28 °C такая же как в чистой воде.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 97 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, глав, посвященных объекту и методам исследования, полученным результатам, их обсуждению и выводов. В начале работы приведен список применяемых сокращений и размерность показателей. Библиография включает 233 ссылку, в том числе 49 — на работы отечественных авторов и 184 — зарубежных. Работа иллюстрирована 9 таблицами и 10 рисунками.

Выводы.

1. Коэффициент диффузии кислорода (DO2) в мышечном волокне, рассчитанный на численной модели плоской мышцы по экспериментальным величинам скорости ее дыхания (VO2) и критического напряжения кислорода на ее поверхности, примерно в 10 раз ниже, чем в воде.

2. Диффузия кислорода в волокне проходит по свободной водной фазе, о чем свидетельствует такая же, как в воде зависимость DO2 от температуры.

3. При изометрическом сокращении мышцы расчетный D02 в волокнах снижается примерно в 2 раза.

4. Добавление сукцината натрия в инкубационную среду и увеличение потребления кислорода мышцей в 1,8 раза сопровождается 1,5-кратным увеличением расчетного DO2 в волокнах.

5. Температурный коэффициент скорости дыхания Qi0 m. cremaster крысы Вистар в нормоксических условиях равняется 2,5 (38°С -28°С).

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. Г. Медицинская морфометрия М. 1990. 240 с.
  2. Т.А. Сезонные изменения температурной компенсации дыхания тканей у гомойотермов в условиях нормоксии и гипоксии // Температурная компенсация и поведенческий гомеостазис. JI. — 1980. — С.39−45.
  3. В.И. Параметры транспорта кислорода в мышечной ткани Автореф. канд. дис. Новосибирск. 1989
  4. В.И. Оценка параметров транспорта кислорода в изолированных мышечных волокнах // Методы исследования массопереноса в системе микроциркуляции Новосибирск. — 1991а. — С.174−179.
  5. В.И. Транспорт BeLств в мышечное волокно // Методы исследования массопереноса в системе микроциркуляции -Новосибирск. 1991b. — С.192−194.
  6. В.И., Савкин В. В. Межклеточное пространство скелетной мышцы. Объем и диффузионная проницаемость // Методы исследования массопереноса в системе микроциркуляции -Новосибирск. 1991. — С.119−123.
  7. В.И., Беличенко В. М., Шошенко К. А. Коэффициент диффузии кислорода в изолированных скелетных волокнах // Физиол. журн. СССР им. И. М. Сеченова. 1991. — У.11. № 7. — Р.29−34.
  8. Н.А. Роль диффузии в биологических процессах // Биофизика. 1959. — Т.4. — № 6. — С.759−763.
  9. И.А., Каулин А. Б. Микроскопическая вязкость мышечных волокон. 4. Анизотропная структура внутриклеточной воды // Цитология. 1973. — Т. 15. — № 6. — С.698−695.
  10. И.А., Каулин А. Б., Трошин А. С. Свойства клеточной воды // Цитология. 1977. — Т.19. — № 12. — С.1309−1326.
  11. А.Д., Шошенко К. А. Коэффициент диффузии Na24 в гистогематическом барьере лягушек // Физиол. ж. СССР. 1969. -Т. 55. — № 6. — С.720−727.
  12. . Временная организация клетки М. 1966. 252 с.
  13. Д.П., Поленов С. А. Регуляция транскапиллярного обмена жидкости // Физиология кровообращения. Физиология сосудистой системы JI. — 1984а. — С.227−239.
  14. Д.П., Поленов СЛ. Транскапиллярный обмен веществ // Физиология кровообращения Физиология сосудистой системы. -Л. 1984b.-С.212−218.
  15. Д.П., Поленов С. А. Транскапиллярный обмен жидкости // Физиология кровообращения. Физиология сосудистой системы -Д. 1984с.-С.218−227.
  16. .И., Иванов И. И., Мордашев С. Р. Биологическая химия М. 1972. 582 с.
  17. Л.П., Леонтьев В. Г. Объем межклеточного пространства тканей // Методы исследования массопереноса в системе микроциркуляции Новосибирск. — 1991. — С.123−125.
  18. А., Дударев В. П., Мисюра А. Г. Объективная характеристика гипоксических состояний // Специальная и клиническая физиология гипоксических состояний Киев. — 1979. -Т.1 С.16−21.
  19. А., Маньковская И. Н., Мисюра А. Г. Дыхание и кислородные режимы организма дельфинов Киев. 1980. 332 с.
  20. М.Н. Биохимический цикл возбуждения // Митохондрии. Ферментативные процессы и их регуляция М. -1968. — С.122−131.
  21. М.Н. Метаболические состояния митохондрий и основные физиологические состояния живой ткани // Свойства и функции макромолекул и макромолекулярных систем М. — 1969, -С.135−160.
  22. М.Н. Регуляция дыхания митохондрий при усиливающемся воздействии на клетку // Биофизика 1970. — Т. 15. — № 2. — С.312−313.
  23. М.Н. Накопление и использование янтарной кислоты в митохондриях // Митохондрии. Молекулярные механизмы ферментативных реакций М. — 1972. — С.151−170.
  24. М.Н., Маевский Е. И. Активация сукцинатдегидрогеназы как основа «анаэробной «работы и устойчивости к гипоксии // Митохондриальные процессы во временной организации жизнедеятельности Пущино. — 1978. -С.6−12.
  25. М.Н., Чаговец Н. Р. Янтарная кислота в скелетных мышцах при интенсивной деятельности и в период отдыха // ДАН СССР. 1971. — Т. 198. — № 1. — С.243−246.
  26. Г., Корн Т. Справочник по математике для научных работников и инженеров. М. 1984. 664 с.
  27. Г. Факторы, ограничивающие интенсивность клеточного дыхания // Регуляция клеточного обмена. М. — 1962. — С.7−26.
  28. А. Биохимия. М. — 1974. — 957 с.
  29. Г. Д. Распределение миоглобина и цитохромоксидазы в мышцах // Журн. эвол. биох. и физиол. 1969. — Т.67. — № 5. -С.213−221.
  30. А.Г. Биофизическая химия. М. 1968. 432 с.
  31. Е.А., Шошенко К. А. Общий запас кислорода и длительность ныряния нерпы // Морфология и экология рыб. -Новосибирск. 1987. — С.110−128.
  32. JI. Кислород, дыхание и метаболизм // Сравнительная физиология животных, Т. 1. М. — 1977. — T. l С.349−429.
  33. Д.Л. Существует ли полупроницаемая клеточная оболочка? // Проблемы проницаемости. М. — 1939. — С.7−17, 74.
  34. Д.Л. Общая физиология. М. 1947. 647 с.
  35. В.О. Элементы квантовой биофизики. СПб. 2001. 44 с.
  36. Р., Поллард Э. Молекулярная биофизика. М. 1964. 437 с.
  37. В. П. Феноптоз: запрограммированная смерть организма //Биохимия. 1999.- Т.64.-№ 12. — С. 1679−1688.
  38. В. П. Как было показано, что миоглобин участвует в транспорте кислорода // Биохимия. 2000. — Т.65. — № 4. — С.515.
  39. .С. Автоматизированный метод прижизненного полярографического определения коэффициента диффузии кислорода в тканях // Физиол. журн. СССР. 1988. — Т.34. — № 1. -С.113−117.
  40. .Н. Основы биофизики и биофизической химии. М. 1960. 223 с.
  41. . Электронная микроскопия для начинающих. М. 1975.260 с.
  42. ., Нил, Э. Кровообращение. М. 1976. 464 с.
  43. В.В. Температурные адаптации и температурный коэффициент Qio тканевого дыхания // Температурная компенсация и поведенческий пжеостазис. JI. — 1980. — С.24−39.
  44. Н.Р. Биохимический анализ компенсаторных процессов в скелетных мышцах после функциональной активности. Автореф. докт. дис. Л. 1974а
  45. Н.Р. Субстратная основа функционального цикла скелетных мышц // Биохимические пути повышения эффективности спортивной тренировки. Матер. Всесоюзн. симпоз. -Л. 1974b.-С.116−130.
  46. Н.Р., Лешкевич Л. Г. Окислительно -восстановительные превращения никотин -амид -динуклеотида в скелетных мышцах при работе и отдыхе // Вопр. мед. хим. 1974. — Т.20. — № 4. — С.425−430.
  47. К.А. Кровеносные капилляры. Новосибирск. 1975. 376 с.
  48. К.А., Баранов В. И., Брод В. И., Вязовой В. В., Голубь А. С. Иванова С.Ф., Нешумова Т. В. Органное кровоснабжение и особенности транспорта кислорода в мышцах // Исследование энергетики движения рыб. Новосибирск. 1984. — С.78−116.
  49. Н.Н. Химия движения: Молекулярные основы мышечной деятельности. (От молекулы до организма). Л. 1983. 191 с.
  50. Acierno R., Agnisola С., Tota В., Sidell B.D. Myoglobin enhances cardiac performance in antarctic icefish species that express the protein //Am. J. Physiol. 1997. — V.273. — № 1 Pt 2. — R100-R106.
  51. Adamson R.H., Huxley V.H., Curry F.E. Single capillary permeability to proteins having similar size but different charge // Am. J. Physiol. -1988. V.254. — № 2 Pt 2. — H304-H312.
  52. Baranov V.I., Belichenko V.M., Shoshenko C.A. Oxygen diffusion coefficient in isolated chicken red and white skeletal muscle fibers in ontogenesis //Microvasc. Res. 2000. — V.60. — P. 168−176.
  53. Battino R., Evans F.D., Danforth W.F. The solubilities of seven gases in olive oil with reference to theories of transport through the cell membrane // J. Am. Oil. Chem. Soc. 1968. — V.45. — № 12. — P.830−833.
  54. Bennett M.V., Barrio L.C., Bargiello T.A., Spray D.C., Hertzberg E., Saez J.C. Gap junctions: new tools, new answers, new questions // Neuron. -1991. V.6. — № 3. — P.305−320.
  55. Bentley T.B., Pittman R.N. Influence of temperature on oxygen diffusion in hamster retractor muscle // Am. J. Physiol. 1997. — V.272.- № 3 Pt 2. HI 106- HI 112.
  56. Betts W.F., Longmuir I.S. Effect of hypoxia on the endoplasmic reticulum of mouse liver // Adv. Exp. Med. Biol. 1986. — V.200. -P.425−427.
  57. Betts W.F., Longmuir I.S. Changes in the endoplasmic reticulum following exposure to hypoxia // Adv. Exp. Med. Biol. 1987. — V.215.- P.255−258.
  58. Blinks L.R., Skow R.K. The time course of photosynthesis as shown by a rapid electrode method for oxygen // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. -1938. V.24. — P.420−427.
  59. Boag J.W. Oxygen diffusion and oxygen depletion problems in radiobiology // Curr. Top. Radiat. Res. 1969. — V.5. — P.141−195.
  60. Bockman E.L. Blood flow and oxygen consumption in active soleus and gracilis muscles in cats // Am. J. Physiol. 1983. — V.244. — № 4. -H546-H551.
  61. Brink P.R., Dewey M.M. Evidence for fixed charge in the nexus // Nature. 1980. — V.285. — № 5760. — P.101−102.
  62. Brink P.R., Ramanan S.V. A model for the diffusion of fluorescent probes in the septate giant axon of earthworm. Axoplasmic diffusion and junctional membrane pefmeability // Biophys. J. 1985. — V.48. — № 2. — P.2°9−309.
  63. Bukauskas F.F., Elfgang С., Willecke К., Weingart R. Heterotypic gap junction channels (connexin26 -connexin32) violate the paradigm of unitary conductance // Pflugers Arch. 1995. — V.429. — № 6. — P.870−872.
  64. Chalazonitis N. Chemoreception and transduction on neuronal models // Tissue hypoxia and ischemia. N. Y-L. — 1977. — P.85−100.
  65. Chang R.L., Deen W.M., Robertson C.R., Brenner B.M. Permselectivity of the glomerular capillary wall: III. Restricted transport of polyanions // Kidney Int. 1975. — V.8. — № 4. — P.212−218.
  66. Chinard F.P., Vosburgh G.J., Enns T. Transcapillary exchange of water and other substances in certain organs of the dog // Am. J. Physiol. -1955.-V.183.-P.221−234.
  67. Chiu S.W., Jakobsson E. Stochastic theory of singly occupied ion channels. II. Effects of access resistance and potential gradients extending into the bath // Biophys. J. 1989. — V.55. — № 1. — P.147−157.
  68. Cieslar J., Huang M.T., Dobson G.P. Tissue spaces in rat heart, liver, and skeletal muscle in vivo // Am. J. Physiol. 1998. — V.275. — № 5 Pt 2. — R1530-R1536.
  69. Clark L.C. Monitor and control of blood and tissue oxygen tension // Trans. Am. Soc. Artif. Intern. Organs. 1956. — V.2. — P.41−46.
  70. Clark M.E., Burnell E.E., Chapman N.R., Hinke J.A. Water in barnacle muscle. IV. Factors contributing to reduced self -diffusion. // Biophys. J. 1982. — V.39. — № 3. — P.289−299.
  71. Coburn R.F. Oxygen tension sensor in vascular smooth muscle // Tissue hypoxia and ischemia. N. Y-L. — 1977. — P. 101−116.
  72. Covell D.G., Jacquez J.A. Does myoglobin contribute significantly to diffusion of oxygen in red skeletal muscle? // Am. J. Physiol. 1987. -V.252. — № 2 Pt 2. — R341-R347.
  73. Cowie D.B., Flexner L.B., Wilde W.S. Capillary permeability: rate of transcapillary exchange of chloride in the guinea pig as determined with radiochloride /7 Am. J. Physiol. 1949. — V.158. — № 2. — P.231−236.
  74. Crone C. The permeability of capillaries in various organs as determined by use of the 'indicator diffusion' method // Acta Physiol. Scand. 1983. — V.58. — P.292−305.
  75. Crone С., Levitt. D.G. Capillary permeability to small solutes transport // Handbook of Physiology. The Cardiovascular System. Bethesda. -1984.-P.411−466.
  76. Curry F.E. Determinants of capillary permeability: a review of mechanisms based on single capillary studies in the frog // Circ. Res. -1986. V.59. — № 4. — P.367−380.
  77. Dani J.A., Levitt D.G. Water transport and ion -water interaction in the gramicidin channel // Biophys. J. 1981. — V.35. — № 2. — P.501−508.
  78. Danneel H. Uber den durch diffundierende Gase hervorgerufenen Reststrom //Z. Elektrochem. 1898. — Bd.4. — P.227−239.
  79. Davies P.W., Brink F. Microelectrodes for measuring local oxygen tension in animal tissues // Rev. Sci. lustrum. 1942. — V.13. — P.524−533.
  80. Davson H., Danielli J.F. The permeability of natural membranes. Cambridge. 1952. 361 p.
  81. Desaulniers N., Moerland T.S., Sidell B.D. High lipid content enhances the rate of oxygen diffusion through fish skeletal muscle // Am. J. Physiol. 1996. — V.271. — № 1 Pt 2. — R42-R47.
  82. Doyle D.A., Morais Cabral J., Pfuetzner R.A., Kuo A., Gulbis J.M., Cohen S.L., Chait B.T., MacKinnon R. The structure of the potassium channel: molecular basis of K+ conduction and selectivity // Science. -1998. V.280. — № 5360. — P.69−77.
  83. Drahota Z. The ionic composition of various types of striated muscles // Physiol. Bohemoslov. 1961. — V.10. — P.160−165.
  84. Edelson E. Gap junctions: conduits for cell/cell communication // Mosaic. 1990. — V.21. — P.48−56.
  85. Egginton S. Metamorphosis of the American eel, Anguilla rostrata LeSeur: I. Changes in metabolism of skeletal muscle // J. Exp. Zool. -1986. V.237. — № 2. — P.173−184.
  86. Egginton S. Metamorphosis of the American eel, Anguilla rostrata LeSeur: III. Contractile characteristics of skeletal muscle // J. Exp. Zool. 1987. — V.243. — № 1. — P.39−50.
  87. Egginton S., Johnston I.A. Muscle fibre differentiation and vascularisation in the juvenile European eel (Anguilla anguilla L.) // Ceil Tissue Res. 1982. — V.222. — № 3. — P.563−577.
  88. Egginton S., Johnston I.A. Effects of acclimation temperature on routine metabolism, muscle mitochondrial volume density and capillary supply in the elver (Anguilla anguilla L.) // J. Therm. Biol. 1984. -V.9.-P. 165−170.
  89. Egginton S., Sidell B.D. Thermal acclimation induces adaptive changes in subcellular structure offish skeletal muscle // Am. J. Physiol. 1989. — V.256. -№ 1 Pt 2. — R1-R9.
  90. Eisenman G., Dani J.A. An introduction to molecular architecture and permeability of ion channels // Ann. Rev. Biophys. Biophys. Chem. -1987.-V.16.-P.205−226.
  91. Ellsworth M.L., Pittman R.N. Heterogeneity of oxygen diffusion through hamster striated muscles // Am. J. Physiol. 1984. — V.246. — № 2 Pt 2. — H161-H167.
  92. Fabel H., Lubbers D.W. Measurements of reflection spectra of the beating heart in situ //Biochem. Ztschr. 1965. — Bd.341. — S.351−356.
  93. Fay F.S., Nair P., Whalen W.J. Mechanism of oxygen induced contraction of ductus arteriosus // Tissue hypoxia and ischemia. N. Y-L. — 1977. -P. 123−134.
  94. Finkelstein A., Andersen O.S. The gramicidin A channel: a review of its permeability characteristics with special reference to the single -file aspect of transport // J. Membr. Biol. -1981. V.59. — № 3. — P. 155−171.
  95. Fischer W., Brickmann J. Ion -specific diffusion rates through transmembrane protein channels. A molecular dynamics study // Biophys. Chem. 1983. — V. 18. — № 4. — P.323−337.
  96. Fletcher J.E. On facilitated oxygen diffusion in muscle tissues // Biophys. J. 1980. — V.29. — № 3. — P.437−458.
  97. Flexner L.B., Cowie D.B., Vosburgh G.J. Studies on capillary permeability with tracer substances // Cold Spring Harbor symposia on quantitative biology. N. Y. — 1948. — V.13. — P.88−98.
  98. Fogg G.E. State and movement water living organisms. Cambridge. 1965.432 p.
  99. Fushimi K., Verkman A.S. Low viscosity in the aqueous domain of cell cytoplasm measured by picosecond polarization microfluorimetry // J. Cell Biol. 1991. — V. l 12. — № 4. — P.719−725.
  100. Gayeski E.J., Honlg C.R. Myoglobin saturation and calculated p02 in single cells of resting gracilis muscles // Oxygen transport to tissue III. -N. Y. 1978. -P.335−342.
  101. Gellhorn A., Flexner L. Transfer of water across the placenta of the guinea pig // Am. J. Physiol. 1942. — V.136. — № 5. — P.750−756.
  102. Gershon N.D., Porter K.R., Trus B.L. The cytoplasmic matrix: its volume and surface area and the diffusion of molecules through it // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1985. V.82. — № 15. — P.5030−5034.
  103. Gold H.J., Longmuir I.S. Application of experimental data to a new model of tissue oxygen transport // Bull. Math. Biophys. -1971. V.33. — № 2. — P.295−297.
  104. Greengard P., Kebabian I.W. Role of cyclic AMP ir synaptic transmission in the mammalian peripheral ervous system // Fed. Proc. -1964.-V.33.-P.1059−1067.
  105. Grisham M.B., McCord J.M. Chemistry and cytotoxicity of reactive oxygen metabolites. // Physiology of oxygen radicals. Bethesda. -1986.-P.1−18.
  106. Grote J., Susskind R., Vaupel P. Oxygen diffusivity in tumor tissue (DS-carcinosarcoma) under temperature conditions within the range of 20−40 degrees С // Pflugers Arch. 1977. — V.372. — № 1. — P 37−42.
  107. Grote J., Thews G. Die Bedingungen fur die 02 Versorgang des Herzmuskelgewebes //Pflugers Arch. — 1962. — V.276. — № 1. — P. 142 165.
  108. Grunewald W.A., Lubbers, D. W. Kryomicrophotometry as a method for analyzing the intracapillary Hb02 saturation of organ under different supply conditions // Oxygen transport to tissue II. N.Y.-L. — 1976. -P.75−82.
  109. Gutfreund H., Jones E.A. The kinetic behavior of enzymes in organized systems. Mitochondrial succinate oxydase and fumarase // Biochem. J. -1964.-V.90.-№ 1. P.208−213.
  110. Hannon J.P., Chinn K.S., Shields J.L. Effects of acute high -altitude exposure on body fluids // Fed. Proc. 1969. — V.28. — № 3. — P. 11 781 184.1. ЯИк
  111. Harris E.J., Manger J.R. Intersubstrate competitions and evidence for compartmentation in mitochondria // Biochem. J. 1969. — V. l 13. — № 4. — P.617−628. «
  112. Hazel J.R., Prosser C.L. Molecular mechanisms of temperature compensation in poikilotherms // Physiol. Rev. 1974. — V.54. — № 3. -P.620−677.
  113. Hazlewood C.F., Nichols B.L., Chamberlain N.F. Evidence for the existence of a minimum of two phases of ordered water in skeletal muscle // Nature. 1969. — У222. — № 195. — P.747−750.
  114. Heglund N.C., Cavagna G.A. Mechanical work, oxygen consumption, and efficiency in isolated frog and rat muscle // Am. J. Physiol. 1987. -V.253. — № 1 Pt 1.-C22- C29.
  115. Hille B. Ionic Channels of Excitable Membranes. Sunderland. 1992. 607 p.
  116. Hills B.A. Linear bulk diffusion into heterogeneous tissue // Bull. Math. Biophys. 1968. — V.30. — № 1. — P.47−59.
  117. Hills B.A. Respiration of tissue as a medium of heterogeneous permeability // Bull. Math. Biophys. 1970. — V.32. — № 2. — P.219−235.
  118. Hofmann W.W. Oxygen consumption by human and rodent striated muscle in vitro // Am. J. Physiol. 1976. — V.230. — № 1. — P.34−40.
  119. Homer L.D., Shelton J.B., Dorsey C.H., Williams T.J. Anisotropic diffusion of oxygen in slices of rat muscle // Am. J. Physiol. 1984. -V.246. — № 1, Pt 2. — R107-R113.
  120. C.R., Frierson J.L., Nelson C.N. 02 transport and VO2 in resting muscle: significance for tissue capillary exchange // Am. J. Physiol. -1971. — V.220. — № 2. — P.357−363.
  121. James N.T. Histochemical demonstration of myoglobin in skeletal muscle fibers and muscle spindles // Nature. 1968. — V.219. — № 159. -P.l 174−1175.
  122. Johnston I.A. Structure and function of fish muscles // Symp. Zool. Soc. Lond. -1981. V.48. — P.71−13.
  123. Johnston I.A., Maitland B. Temperature acclimation in crucian carp, Carassius carassius L., morphometric analyses of muscle fibre ultrastructure // J. Fish. Biol. 1980. — V.17. — P. l 13−125.
  124. Jones D.P., Kennedy F.G. Intracellular 02 gradients in cardiac myocytes. Lack of a role for myoglobin in facilitation of intracellular 02 diffusion // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1982a. — V.105. — № 2. — P.419−424.
  125. Jones D.P., Kennedy F.G. Intracellular oxygen supply during hypoxia // Am. J. Physiol. 1982b. — V.243. — № 5. — C247-C253.
  126. Jordan P.C. The total electrostatic potential in a gramicidin channel // J. Membr. Biol. 1984. — V.78. — P.91−102.
  127. Kao H.P., Abney J.R., Verkman A.S. Determinants of the translational mobility of a small solute in cell cytoplasm // J. Cell Biol. 1993. -V.120. — № 1. — P.175−184.
  128. Kawashiro Т., Nusse W., Scheid P. Determination of diffusivity of oxygen and carbon dioxide in respiring tissue: results in rat skeletal muscle // Pflugers Arch. 1975. — V.359 — № 3 — P.231−251.
  129. Keys A. The apparent permeability of the capillary membrane in man // Trans. Faraday soc. 1937. — V.33. — Pt. 8. — P.930−939.
  130. Kobayashi N., Yonemura K. The extracellular space in red and white muscles of the rat // Japan. J. Physiol. 1967. — V.17. — P.698−707.
  131. Kreuzer F. Facilitated diffusion of oxygen and its possible significance- a review//Respir. Physiol. 1970.-V.9.-№ 1.-P. 1−30.
  132. Kreuzer F. Theoretical and experimental aspects of oxygen transport in blood and 'muscle // Biophysical membrane transport society proceedings V.l. Wroclaw. — 1976. — P.41−89.
  133. Krogh A. The number and distribution of capillaries in muscles withcalculations of the oxygen pressure head necessary for supplying the
  134. U tissue // J. Physiol.(L.). 1919a. — V.52. — № 6. — P.409−415.
  135. Krogh A. The rate of diffusion of gases through animal tissues, with some remarks on the coefficient of invasion // J. Physiol.(L.). 1919b. V.52. — № 6. — P.391−408.
  136. Kruhoffer P. The significance of diffusion and convection for the distribution of solutes in the interstitial space // Acta Physiol. Scand. -1946.-V.ll.-№ 1. P.37−47.
  137. Kunze K. Normal and critical oxygen supply to the muscle // Oxygen transport in blood and tissue. Stuttgart. — 1968. — P. 198−208.
  138. Lahiri S. Oxygen linked response of carotid chemoreceptors // Tissue hypoxia and ischemia. N. Y.-L. — 1977. — P. 185−202.
  139. Landis E.M., Pappenheimer J.R. Exchange of substances through the capillary walls // Handbook of physiology. S.2, V.2 — Washington. -1963. — P.961−1034.
  140. Levick J.R., Michel C.C. The passage of T -1824 albumin out of Individually perfused capillaries of the frog mesentery // J. Physiol. (L.). — 1969. — V.202. — № 2. — P. l 14−115.
  141. Levick J.R., Michel C.C. The effect of bovine albumin on the permeability of frog mesenteric capillaries // J. Physiol. (L.). 1970. -V.210. — № 1. — P.36−37.
  142. Ling G.N. The physical state of water in living and model system // Ann. N.Y. Acad. Sci. 1965. — V.125. — P.401−417.
  143. Ling G.N. The physical state of water in living cells and its physiological significance // Int. J. Neurosci. 1970. — V.l. — № 2. -P.129−152.
  144. Livingston D.J., La Mar G.N., Brown W.D. Myoglobin diffusion in bovine heart muscle // Science. 1983. — V.220. — № 4592. — P.71−73.
  145. Longmuir I.S. The respiration rate of bacteria as a function of oxygen concentration //Biochem. J. 1954. — V.57. — P.81−87.
  146. Longmuir I.S. Respiration rate of rat -liver cells at low oxygen concentration // Biochem. J. 1957. — V.65. — P.378−383.
  147. Longmuir I.S. Tissue respiration // Advance in respiratory physiology. L.- 1966.-P. 18−25.
  148. Longmuir I.S. Search for alternative oxygen carriers // Oxygen and Physiological Functions. Dallas. — 1977. — P.52−68.
  149. Longmuir I.S. Channels of oxygen transport from blood to mitochondria // Adv. Physiol. Sci. 1980. — V.25. — P.19−22.
  150. Longmuir I.S., Betts W.F., Clayton M. Liver organelle changes on exposure to hypoxia // Adv. Exp. Med. Biol. 1988. — V.222. — P.163−167.
  151. Longmuir I.S., Bourke A, Application of Warburg’s equations to tissue slices //Nature. 1959. — V.184. — P.634−635.
  152. Longmuir I.S., Bourke A. The measurement of the diffusion of oxygen through respiring tissue // Biochem. J. 1960. — V.76. — P.225−229.
  153. Longmuir I.S., Pashko L. The induction of cytochrome P -450 by hypoxia// Adv. Exp. Med. Biol. 1976. — V.75. — P. 171−175.
  154. Longmuir I.S., Sun S. A hypothetical tissue oxygen carrier // Microvasc. Res. 1970. — V.2. — № 3. — P.287−293.
  155. Longmuir I.S., Young A., Mailman R. Induction by hypoxia of a new haemoglobin -like pigment // Adv. Exp. Med. Biol. 1977. — V.94. -P.297−300.
  156. Longmuir I.S., Young A., Mailman R. Induction by hypoxia of a new haemoglobin -like pigment // Oxygen transport to tissue III. — N. Y.-L.- 1978.-P.297−300.
  157. Luby -Phelps K., Castle P.E., Taylor D.L., Lanni F. Hindered diffusion of inert tracer particles in the cytoplasm of mouse T3 cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1987. V.84. — № 14. — P.4910−4913.
  158. Luby -Phelps K., Lanni F., Taylor D.L. The submicroscopic properties of cytoplasm as a determinant of cellular function // Ann. Rev. Biophys. Biophys. Chem. 1988. — V.17. — P.369−396.
  159. Luby -Phelps K., Mujumdar S., Mujumdar R.B., Ernst L.A., Galbraith W., Waggoner A.S. A novel fluorescence radiometric method confirms the low solvent viscosity of the cytoplasm // Biophys. J. 1993. — V.65.- № 1. P.236−242.
  160. Mahler M. Diffusion and consumption of oxygen in the resting frog sartorius muscle //J. Gen. Physiol. 1978. — V.71. — № 5. — P.533−557.
  161. Mastro A.M., Keith A.D. Diffusion in the aqueous compartment // J. Cell. Biol. 1984. — V.99. — № 1 Pt 2. — P. 180s-187s.
  162. H., Bentley Т. В., Pittman R. N. Oxygen diffusion in hamster striated muscle: comparison of in vitro and near in vivo conditions // Am. J. Physiol. 1992. — V.263 — № 1, Pt 2 — H35-H39.
  163. Merrel M., Gellhorn A., Flexner L.B. Studies on rate exchange of substances between the blood and extravascular fluid // J. Biol. Chem. -1944.-V. 153. -№ 1. P.83−89.
  164. Michel C.C. The diffusion of ions out of single capillaries and across the mesothelium // Proc. XXIV Internat. Physiol. Sci. 1953. — V.7. -P.226−229.
  165. Michel C.C. The passage of a low molecular weight dye molecule (Patent Blue V) out of individually perfused capillaries of the frog mesentery // J. Physiol.(L.). 1969. — V.204. — № 2. — P.62−63.
  166. Michel C.C. Transport of macromolecules through microvascular walls // Cardiovasc. Res. 1996. — V.32. — № 4. — P.644−653.
  167. Moll W. The diffusion coefficient of myoglobin in muscle homogenate // Pflugers Arch. 1968. — V.299. — № 3. — P.247−251.
  168. Monoi H. Possible existence of ion pairs at the mouths of ion channels // Biochim. Biophys. Acta. 1982. — V.693. — № 1. — P. 159−164.
  169. Monoi H. Ionic interactions and anion binding in the gramicidin channel. An electrostatic calculation // J. Theor. Biol. 1983. — V.102. -№ 1. — P.69−99.
  170. Morel F.F. Mesure, des ecchanges capillaire a laide des indicateurs radioactifs // Helv. Physiol, et Pharmac. Acta. 1950. — V.8. — № 2. -P.146−168.
  171. Mueller-Klieser W. Method for the determination of oxygen consumption rates and diffusion coefficients in multicellular spheroids // Biophys. J. 1984. — V.46. — № 3. — P.343−348.
  172. Murray J.D. On the molecular mechanism of facilitated oxygen diffusion by haemoglobin and myoglobin // Proc. Royal Soc. Lond. B. Biol. Sci. 1971. — V.178. — № 50. — P.95−110.
  173. Noonan T.R., Fenn W.O., Haege L. The distribution of injected radioactive potassium in rats // Am. J. Physiol. 1941. — V. 132. — № 2. -P.474−488.
  174. O’Loughlin M.A., Whillans D.W., Hunt J.W. A fluorescence approach to testing the diffusion of oxygen into mammalian cells // Radiat. Res. -1980. V.84. — № 3. — P.477−495.
  175. Oshino N., Sugano Т., Oshino R., Chance B. Mitochondrial function under hypoxic conditions: the steady states of cytochrome alpha+alpha3 and their relation to mitochondrial energy states // Biochim Biophys Acta. 1974. — V.368. — № 3. — P.298−310.
  176. Pappenheimer J.R., Renkin E.M., Borrero L.M. Filtration, diffusion and molecular sieving through peripheral capillary membranes. A contribution to the pore theory or capillary permeability // Am. J. Physiol. 1951. — V. 167. — № 1. — P. 13−46.
  177. Pashko L., Longmuir I.S. Changes in cytochrome P450 levels in response to light and dark in relation to oxygen transport // Fed. Proc. -1974,-V.33.-P.389−374.
  178. Radford E.P. The physics of gases // Handbook of physiology. S.3, V. l — Washington. — 1964. — P. 125−152.
  179. Reid R.C., Praunsnitz J.M., Sherwood Т.К. The Properties of Gases and Liquids. N.Y. 1977. 578 p.
  180. Renkin E.M. Capillary permeability to lipid -soluble molecules // Am. J. Physiol. 1952. — V. l68. — № 2. — P.538−545.
  181. Renkin E.M. Capillary and cellular permeability to some compounds related to antipyrine // Am. J. Physiol. 1953. — V.173. — № 1. — P.125−130.
  182. Renkin E.M. Capillary permeability and transcapillary exchange in relation to molecular size // The microcirculation. Urbana. — 1959. -P.28−46.
  183. Renkin E.M. Stofftransport durch die Wa’nde der Blutcapillaren // Klin. Wochenschr. 1963. — Bd.41. — № 3. — S. 147−152.
  184. Rosenberg M.D. Intracellular transport fluxes can they be accurately determined? // Intracellular transport. — N.Y.-L. — 1966. — P.45−69.
  185. Rumsey W. L., Schlosser C., Nuutinen E. M., Robiolio, M. Wilson, D. F. Cellular energetic and the oxygen dependence of respiration in cardiac myocytes isolated from adult rat. // J. Biol. Chem. 1990. -V.265 — № 26 — P.5392−5402.
  186. Sarelius I.H., Maxwell L.C., Gray S.D., Duling B.R. Capillarity and fiber types in the cremaster muscle of rat and hamster //' Am. J. Physiol. 1983. — V.245. — № 2. — H368-H374
  187. Sauer F. Nonequilibrium thermodynamics of kidney tubule transport // Handbook of Physiology. V. l, S*8. — Washington. — 1973. -P.399−414.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!