Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Структурные и функциональные особенности фотосинтетического аппарата хвойных в условиях Верхнего Приангарья

Диссертация: Структурные и функциональные особенности фотосинтетического аппарата хвойных в условиях Верхнего Приангарья
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Хвоя ели содержит преимущественно ассимилирующую тканьмезофилл и в значительно меньшей степени — структурные ткани. Фотосинтетическая продуктивность собственно ассимилирующей ткани у ели ниже, чем у сосны, и существенно снижается при дефиците увлажнения. Больший процент структурных тканей в хвое сосны соответствует ее большей устойчивости к действию неблагоприятных факторов среды — засухи… Читать ещё >

Структурные и функциональные особенности фотосинтетического аппарата хвойных в условиях Верхнего Приангарья (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список принятых сокращений

Глава 1. Структурные и функциональные особенности фотосинтетического аппарата растений (обзор литературы)

1.1. Фотосинтез: экология и продуктивность

1.2. Влияние факторов окружающей среды на структуру фотосинтетического аппарата растений

1.3. Онтогенез хлоропластов

1.4. Организация фотосинтетических мембран

1.5. Пигменты фотосинтетического аппарата

1.6. Липиды мембран хлоропластов

1.7. Белки фотосинтетического аппарата

Глава 2. Объекты и методы исследования.

Природно-климатические условия Верхнего Приангарья

2.1. Объекты и методы исследования 41 2.1.1. Статистическая обработка данных

2.2. Характеристика природно-климатических условий района исследования

2.3. Геоботаническое описание района исследования

2.4. Почвенный покров района исследований

2.5. Характеристика экспериментального участка

2.6. Биология сосны обыкновенной и ели сибирской

Глава 3. Влияние внешних факторов на структуру и фотосинтез

3.1. Анализ погодных условий 2003−2004 гг.

3.2. Анализ структуры хвои

3.3. Особенности фотосинтеза хвои

3.4. Обсуждение

Глава 4. Состояние мембран хлоропластов хвои сосны в связи с фотосинтезом и влиянием факторов среды

4.1. Особенности вегетационных периодов 2007 и 2008 гг.

4.2. Продуктивность фотосинтеза хвои

4.3. Ультраструктура хвои в годичном цикле >

4.4. Динамика гранального индекса мембран хлоропластов

4.5. Соотношение показателей гранальности и фотосинтетической продуктивности у хвойных в течение вегетации

4.6. Обсуждение

Глава 5. Взаимосвязь содержания жирных кислот липидов хвои и структуры фотосинтетического аппарата в годичном цикле

5.1. Жирнокислотный состав липидов хвои сосны

5.2. Динамика отдельных фракций полиненасыщенных жирных кислот в годичном цикле

5.3. Влияние факторов среды на содержание полиненасыщенных жирных кислот хвои сосны

5.4. Взаимосвязь структурного состояния мембран хлоропластов и содержания полиненасыщенных жирных кислот хвои сосны

5.5. Обсуждение 107

Выводы 110

Список литературы

Список принятых сокращений

ФСА — фотосинтетический аппарат

ЭТЦ — электронтранспортная цепь

ЫРС) — нефотохимическое тушение флуоресценции

ФАР — физиологически активная радиация

ССК — светособирающий комплекс

ФС I — фотосистема I

ФС II — фотосистема II

РЦ — реакционный центр

УФ — ультрафиолетовое излучение

НАДФН — никотинамидадениндинуклеотидфосфат

ВЦ — виолаксантиновый цикл

Р81-СС — коровый комплекс фотосистемы I

ЬНС1 — светособирающий комплекс фотосистемы I

Ртах — максимальная скорость фотосинтеза

С>У — эффективность фотосинтеза

ДАО — донорно-акцепторные отношения

РДФК/О — рибулозодифосфат карбоксил аза/оксигеназа

ИДС — индекс двойных связей

ПНЖК — полиненасыщенные жирные кислоты

Ж К — жирные кислоты

Центральным звеном в изучении механизмов адаптации растений является исследование взаимосвязи структурных и функциональных свойств отдельных органов и тканей (Гамалей, 1978, 1990; Пьянков и др., 1992; Шереметьев, 2005). Устойчивость лесных экосистем Северной Евразии основана на сохранности и воспроизводимости отдельных видов хвойных, выполняющих многообразные средообразующие и защитные функции. Изучение механизмов устойчивости и продуктивности основных лесообразующих видов хвойных заслуживает особого внимания. Исследованиями, проведенными ранее, показана высокая пластичность фотосинтетической функции хвойных в природных условиях, ее способность изменяться в зависимости от сочетания климатических условий (Цельникер, 1978, 1995; Болондинский, 2004; Молчанов, 2007). Исследована регуляция фотосинтеза под воздействием основных факторов среды — освещенности (Цельникер, 1995; Суворова, 2006), температуры (Болондинский, 2004; Суворова и др., 2002, 2003, 2005), влажности воздуха и почвы (Сазонова, Кайбияйнен, 1994; Болондинский, 2004). Установлено, что при комплексе погодных условий, наиболее полно соответствующих экологическим свойствам видов хвойных, ассимиляционная активность стремится к реализации наивысших значений фотосинтеза в любом временном интервале (Суворова, 2006).

Отдельно от исследований фотосинтеза показано, что динамика таких компонентов фотосинтетического аппарата, как зеленые пигменты, жирные кислоты и структура мембран хлоропластов в годичном цикле и в течение вегетации определяются уровнем инсоляции и температурными условиями (Гамалей, 1975, 1980; Новицкая и др, 1985, 1990; Мирославов и др., 1996; Вознесенская, 1996; Фуксман, 1999; Котеева, 2002; Кочубей и др., 2005; Lichtenthaler et al., 1982). Немногочисленными работами выявлена связь между динамикой зеленых пигментов и жирных кислот (Клячко-Гурвич и др., 2000), установлена связь между потенциальной фотосинтетической активностью и содержанием зеленых пигментов (Слемнев, 1996). В то же время, практически отсутствуют комплексные исследования механизмов устойчивости и продуктивности растения, которые основаны на взаимообусловленности динамики зеленых пигментов и жирных кислот, структурных преобразований мембран и фотосинтетической активности ассимилирующих органов растений в природных условиях.

В связи с этим, целью работы было изучение структурных и функциональных особенностей фотосинтетического аппарата сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L. J и ели сибирской (Picea obovata Ledeb.), определяющих устойчивость и продуктивность этих видов хвойных в условиях Верхнего Приангарья.

В связи с поставленной целью необходимо было выполнить следующие задачи:

1. Выявить структурные особенности фотосинтетического аппарата сосны обыкновенной и ели сибирской на уровне мезоструктуры хвои.

2. Установить различия в фотосинтетической активности ассимилирующей ткани — мезофилла у двух видов хвойных — сосны и ели.

3. Исследовать связь фотосинтетической активности хвои с содержанием зеленых пигментов при разных уровнях увлажнения.

4. Выявить изменение мембран хлоропластов сосны в годичном цикле.

5. Определить особенности изменения мембран хлоропластов в связи с фотосинтетической продуктивностью хвои.

6. Оценить динамику жирных кислот липидов хвои сосны в годичном цикле.

7. Установить взаимосвязь показателей структуры и функции фотосинтетического аппарата хвойных на примере сосны обыкновенной.

Работа была выполнена в лаборатории биоиндикации экосистем Сибирского института физиологии и биохимии растений СО РАН. Автор выражает благодарность научному руководителю д.б.н., в.н.с. Суворовой Галине Георгиевне и научному консультанту д.б.н., профессору Евгению Аркадьевичу Мирославову за неоценимую помощь в выполнении работы. Особую признательность автор выражает зам. директора СИФИБР СО РАН, заведующему лабораторией биоиндикации экосистем д.б.н. В. И. Воронину и всему коллективу, а также зам. директора СИФИБР СО РАН, д.б.н. проф. Г. Б. Боровскому, д.б.н. Л. А. Ломоватской, д.б.н., доц. Т. П. Побежимовой, к.б.н. С. П. Макаренко, Т. А. Коненкиной, сотрудникам лаборатории анатомии и морфологии растений БИН РАН за участие и всестороннюю поддержку в проведении экспериментальных исследований.

110 выводы.

1. Хвоя ели содержит преимущественно ассимилирующую тканьмезофилл и в значительно меньшей степени — структурные ткани. Фотосинтетическая продуктивность собственно ассимилирующей ткани у ели ниже, чем у сосны, и существенно снижается при дефиците увлажнения. Больший процент структурных тканей в хвое сосны соответствует ее большей устойчивости к действию неблагоприятных факторов среды — засухи и высокой температуры.

2. Реализация фотосинтетического потенциала (дневной максимум скорости фотосинтеза) и фотосинтетическая продуктивность хвойных в экстремальных условиях регулируется уровнем зеленых пигментов.

3. В условиях почвенной засухи регуляция фотосинтетической активности хвои у сосны осуществляется через последовательность: температура почвы — хлорофилл — фотосинтезу ели: водный режим — хлорофилл — фотосинтез. При оптимуме увлажнения у хвойных проявляется один тип регуляции: температура почвы — хлорофилл.

4. Структурированность мембран хлоропластов изменяется под воздействием факторов среды в годичном цикле. Впервые показано, что на территории Верхнего Приангарья у сосны преобладает «световой» тип структуры хлоропластов.

5. Соответствие динамики гранальности и фотосинтетической продуктивности хвои в течение вегетации свидетельствует о том, что факторы среды, через изменение состояния мембран тилакоидов хлоропластов, определяют уровень фотосинтетической продуктивности сосны.

6. Взаимосвязь динамики полиненасыщенных жирных кислот и гранального индекса хлоропластов свидетельствует об участии жирных кислот в преобразованиях фотосинтетического аппарата сосны, связанных с изменением содержания пигментов и реорганизацией ССК.

7. Взаимообусловленность динамики структурных компонентов (мезофилла, содержания и состава зеленых пигментов, жирных кислот, структурированности мембран хлоропластов), водного статуса и фотосинтетической продуктивности ассимиляционного аппарата хвойных является проявлением одного из адаптивных механизмов, лежащих в основе устойчивости и высокой биологической продуктивности хвойных в экстремальных условиях Верхнего Приангарья.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.А., Тарчевский И. А. Хлорофилл и продуктивность растений. М.: Наука, 2000. 135 с.
  2. Т.Ф. Фотосинтез и азотный обмен листьев. М.: Наука, 1969. 162 с.
  3. В.Ф. Липиды и ионная проницаемость мембран. М.: Наука, 1982. 150 с.
  4. Е.М., Гавриленко В. Ф. Действие предварительного освещения, дитиотрейтола и аскорбиновой кислоты на фотоэнергетические реакции хлоропластов с различной активностью синтеза АТФ // Вестник МГУ. Сер. 16. Биология. 2005. № 2. С. 12−18.
  5. A.B. Растительность юга Восточной Сибири: Карта: Масштаб 1:1 500 000. М.: ГУГК, 1972. 4 л.
  6. А.М., Бондаренко В. А. Молекулярные механизмы криоповреждений биомембран / Физико-химические механизмы криоповреждений биологических структур. М.: ВИНИТИ, 1978. С. 80 113.
  7. А.М., Бондаренко В. А. Структурные изменения биологических мембран при охлаждении. Киев: Наукова думка, 1982. 255 с.
  8. О.Г. Морфоанатомические и ультраструктурные характеристики хвои сосны сибирской в Горном Алтае: Автореф. дис. канд. биол. наук. Красноярск, 2003. 20 с.
  9. A.B., Шашкин A.B. Фотосинтез сосны и лиственницы и его связь с радиальным приростом // Лесоведение. 2003. № 5. С. 38−43.
  10. Л.Д. Мембраны, молекулы, клетки. М.: Наука, 1982. 183 с.
  11. К.С. Биологическая продуктивность хвойных лесов европейского Северо-Востока. Л: Наука, 1987. 156 с.
  12. В.К. Динамика СОг газообмена побегов сосны обыкновенной в условиях среднетаежной зоны: Автореф. дис. канд. биол. наук. Петрозаводск, 2004. 28 с.
  13. Е.Б., Архипова Г. В., Голощапов Л. Н., Молочкина Е. М., Хохлов А. П. Мембранные липиды как переносчики информации / Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука, 1982. С. 74−83.
  14. Н.Г., Рожковский А. Д., Четвериков А. Г., Воскресенская Н.П. Содержание пигментов, реакционных центров фотосистем и потенциальный фотосинтез у проростков ячменя, выращенных на синем или красном свету различной
  15. Н.Г. Динамическая световая регуляция фотосинтеза // Физиология растений. 2004. Т. 51. С. 825−837.
  16. .Р. Системный подход в анатомических исследованиях // Всесоюз. конф. по анатомии растений: Тез. докл. Л., 1984. С. 33−34.
  17. П.С., Кренделева Т. Е., Рубин А. Б. Первичные процессы фотосинтеза и физиологическое состояние растительного организма // Физиология фотосинтеза / Под ред. Ничипоровича A.A. М.: Наука, 1982. С. 55−76.
  18. B.JI. Фотосинтез пустынных растений. JL: Наука, 1977. 256 с.
  19. Е.В. Структура фотосинтетического аппарата у представителей древесных форм высокогорий Восточного Памира. // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 3. С. 391−398.
  20. Н.И., Быстрых Е. Е., Николаева Е. К. О реакции фотовосстановления НАДФ в онтогенезе пшеницы в связи с продуктивностью // Физиология растений. 1979. Т. 26. С. 35—40.
  21. П.Ю. Фотосинтетический континентальный сток углерода: физиологический аспект: Автореф. докт. дисс. М.: ИФР, 2006. 50 с.
  22. В.Н., Солнцева О. Н. Микроэлементный состав растений и дереворазрушающих грибов как индикатор состояния дубрав московского мегаполиса // Лесоведение. 2003. № 6. С. 20−27.
  23. Ю.В. Продолжительность жизни хлоропластов в клетках мезофилла//Цитология. 1975. Т. 17. С. 1243−1249.
  24. Ю.В. Закономерности развития тканей листа: Автореф. дисс. канд. биол. наук. Л., 1978. 18 с.
  25. Ю.В., Куликов Г. В. Развитие хлоренхимы листа. Л.: Наука, 1978. 194 с.
  26. Ю.В. Мезофилл // Атлас ультраструктуры растительных тканей. Петрозаводск, 1980. С. 97−127.
  27. Ю. В. Флоэма листа: развитие структуры и функций в связи с эволюцией цветковых растений. Л.: Наука, 1990. 144 с.
  28. Ю.В., Похомова М. В., Сюткина A.B. Экологические аспекты оттока ассимилятов 1. Температура // Физиология растений. 1992. Т. 39. Вып. 6. С. 1068−1077.
  29. М.С., Кочубей С. М., Островская Л. К., Рейнгард Т. А., Силаева A.M. Фотохимические системы хлоропластов. Киев: Наукова. Думка, 1975. 206 с.
  30. П.А., Окнина Е. З. Состояние покоя и его значение в жизни растений // Материалы симпозиума по физиологии глубокого покоя древесных растений. Уфа. 1969. С. 9−11.
  31. Н.И., Бусарова Н. Г., Моисенко О. П. Возрастные изменения в содержании липидов, жирных кислот и пигментов у бурой водоросли // Физиология растений. 2010. Т. 57. № 1. С. 68−75.
  32. Н.В., Загирова C.B. Структура и фотосинтез хвои Juniperus sibirica (Cupresseae) на Северном Урале // Ботанический журнал. 2009. Т. 94. № u.c. 1672−1680.
  33. Г. И., Зубарева О. Н. Изменение зеленых пигментов сосны обыкновенной под действием высоких температур // Физиологобиохимические процессы у хвойных растений. Красноярск, 1978. С. 34— 47.
  34. Д., Уитмарш Дж. и др. Фотосинтез. М.: Мир, 1987. Т. 1. 728 с.
  35. Т.К., Табаленкова Г. Н., Дымова О. В. Пигментный комплекс растений Приполярного Урала // Ботанический журнал. 2007. Т. 92. С. 1732−1741.
  36. Т.К. Фотосинтетический аппарат растений в условиях среды. М.: Наука, 1989. 204 с.
  37. Т.Г., Полесская О. Г., Алехина Н. Д., Егорова Е. А., Бухов Н. Г. Редокс-состояния фотосистем I и II при освещении листьев проростков пшеницы, выращенных при различных условиях азотного питания // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 2. С. 165−171.
  38. С.Е., Прохоров С. Т. Возрастные изменения в ультраструктуре хлоропластов ассимилирующих клеток пшеницы / Тез. докл. X Всесоюз. конф. по электронной микроскопии. Ташкент, 1976. Т. 2. С. 348−356.
  39. О.В., Головко Т. К. Состояние пигментного аппарата растений живучки ползучей в связи с адаптацией к световым условиям произрастания // Физиология растений. 2007. Т. 54. № 1. С. 47−53.
  40. Е.А., Бухов Н. Г. Механизмы и функции альтернативных путей переноса электронов в хлоропласте, связанных с фотосистемой I // Физиология растений. 2006. Т. 53. С. 645−657.
  41. И.Е. Сезонное развитие сосновых лесов. Новосибирск: Наука, 1976. 230 с.
  42. П.М., Жиров В. К., Руденко С. М. Белковый состав и мембранные липиды интродуцированных растений в Заполярье. Апатиты, 1987. 113 с.
  43. С. В. Структура ассимиляционного аппарата и СОг -газообмен у хвойных. Екатеринбург, 1999. 106 с.
  44. O.B. Эколого-физиологические аспекты изучения фотосинтеза// 37-е Тимирязевское чтение. Л.: Наука, 1977. 57 с.
  45. Л.И., Пьянков В. И. Структурная адаптация мезофилла листа к затенению // Физиология растений. 2002. Т. 49. С. 467−480.
  46. Л.А., Пьянков В. И. Влияние экологических факторов на структурные показатели мезофилла листа // Ботанический журнал. 2002. Т. 87. № 12. С. 17−28.
  47. Э. Л. Параметры световой кривой фотосинтеза у Salix dasyclados и их изменение в ходе вегетации // Физиология растений. 2009. Т.56. № 4. С.490−499.
  48. В.М. Агроклиматические ресурсы юга Восточной Сибири. Иркутск, 1969. 100 с.
  49. Л.В. Фотосинтетический аппарат и световой режим. Минск, 1980. 142 с.
  50. В.И. Схема многоканальной установки с ИК-газоанализатором для исследования фотосинтеза и дыхания растений // Сельскохозяйственная биология. 1972. Т. 7. С. 285−290.
  51. Д. Транспорт ионов и структура растительной клетки. М.: Мир, 1978. 368 с.
  52. Климат Иркутска. Под редакцией Ч. А. Швер, Н. П. Форманчук. Л.: Гидрометеоиздат, 1981. 246 с.
  53. C.B. Биоэнергетическая концепция устойчивости растений к низким температурам // Успехи современной биологии. 1997. Т. 117. С. 133−154.
  54. Клячко-Гурвич Г. Л., Семенова А. Н. Содержание и жирнокислотный состав моногалактозилдиглицеридов в зависимости от освещенности' и фазы роста хлореллы в накопительной культуре // Физиология растений. 1976. № 23. С. 726−731.
  55. Клячко-Гурвич Г. Л., Семенова А. Н. Изменение содержания и жирно-кислотного состава моногалактозилдиглицеридов (МГДГ) приповышении освещенности клеток хлореллы // Физиология растений. 1977. № 24. С. 75−80.
  56. Клячко-Гурвич ГЛ., Пронина H.A., Ладыгин В. Г., Цоглин Л. Н., Семененко В. Е. Разобщенное функционирование отдельных фотосистем. I. Особенности и роль десатурации жирных кислот // Физиология растений. 2000. Т. 47. № 5. С. 688−698.
  57. А.Г., Антипова О. В. Влияние интенсивности света на анатомо-морфологическое строение хвои сосны // Лесоведение. 1983. № 1. С. 2934.
  58. Ю.П. Свободнорадикальное окисление липидов в биомембранах в норме и при патологии / Биоантиокислители. М.: Наука, 1975. Т. 2. С. 5−14.
  59. Г. М., Муратова E.H. Современные голосеменные (морфолого— систематический обзор и кариология). Л.: Наука, 1986. 192 с.
  60. В.Т. Влияние удобрений на урожай и качество зерна озимой пшеницы «Заларинка» в Иркутской области. М.: ООО НПК «Промбезопасность», 2004. 263 с.
  61. Л.Д., Осколков В. А., Янькова Л. С., Суворова Г. Г. Некоторые особенности водного режима древесных и травянистых видов в Прибайкалье // Ботанический журнал. 2007. Т. 92. № 6. С. 884−893.
  62. Н.К. Особенности сезонной ритмики ультраструктуры клеток апикальной меристемы побега и мезофилла хвои Pinus silvestris II Ботанический журнал. 2002. Т. 87. № 11. С. 50−60.
  63. Д.Ю., Логан Б. А., Ходалей A.C. Оценка скорости рапарации фотосистемы II в полевых условиях // Физиология и биохимия культурных растений. 2005. Т. 37. С. 17—22.
  64. С.М., Шевченко В. В., Бондаренко О. Ю. Особенности организации гран хлоропластов гороха // Физиология растений. 2005. Т. 52. № 4. С. 499−506.
  65. И.М., Котеева H.K. Структурные изменения в клетках мезофилла зимнезеленого листа Muscari tubergenianum (Hyacintaceae) в условиях зимних колебаний температур // Ботанический журнал. 2002. Т. 87. № 10. С. 74−79.
  66. Е.М. Липиды клеточных мембран. Л.: Наука, 1981. 330 с.
  67. А.Л. Транспорт и утилизация продуктов фотосинтеза // Теоретические основы фотосинтетической продуктивности / Под ред. Ничипоровича A.A. М.: Наука, 1972. С. 286−300.
  68. Н.В., Тужилкина В. В. Структурная организация и фотосинтетическая активность хвои ели сибирской. Сыктывкар, 1992. 100 с.
  69. Н.П. Особенности климата крупных озер (на примере оз. Байкал). М.: Наука, 1982. 137 с.
  70. В.Д. Спектральные формы хлорофилла мутантов Chlamidomonas с неактивными фотосистемами // Биофизика. 1979. Т. 24. С. 254−259.
  71. В.Д. Получение гибридного штамма Chlamidomonas с неактивными ФС1 и ФС II и установление трех типов антенного хлорофилла в клетках in vivo II Генетика. 1980. Т. 16. С. 994—1001.
  72. В.Г. Структурно-функциональная организация фотосистем в хлоропластах Chlamidomonas reinhardtii II Физиология растений. 1998. Т. 45. С. 741−762.
  73. В.Г., Ширшикова Г. Н. Современные представления о функциональной роли каротиноидов в хлоропластах эукариот // Журнал общей биологии. 2006. Т. 67. С. 163−189.
  74. В.Г., Вайшля О. Б. Спектральные свойства и число реакционных центров фотосистем у хлорофильных мутантов Pisum sativum II Физиология растений. 2005. Т. 52. № 2. С. 172−183.
  75. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1980. 293 с.
  76. А.Н. Климат СССР. Вып. 1. Европейская территория СССР. Л.: Гидрометеоиздат, 1958. 368 с.
  77. Лир X. Физиология древесных растений. М.: Лесная промышленность, 1974. 420 с.
  78. С.П., Холлгрен Д. Е. Измерение ассимиляции С02 растениями в полевых и лабораторных условиях / Фотосинтез и биопродуктивность: методы определения / Под ред. А. Т. Мокроносова. М.: ВО Агропромиздат, 1989. С. 115−165.
  79. Д. А. Структура, регуляция экспрессии и функционирование десатураз жирных кислот // Успехи биологической химии. Т. 41. 2001. С. 163−198.
  80. С.П., Коненкина Т. А., Саляев Р. К. Жирнокислотный состав липидов вакуолей высших растений // Физиология растений. 1999. Т. 46. № 4. С. 643−647.
  81. С.П., Константинов Ю. М., Хотимченко С. В., Коненкина Т. А., Арзиев А. Ш. Жирнокислотный состав липидов митохондриальных мембран у представителей культурных и дикорастущих злаков // Физиология растений. 2003. Т. 50. № 4. С. 548−553.
  82. С.П., Коненкина Т. А., Путилина Т. Е., Донская Л. И., Музалевская О. В. Жирнокислотный состав липидов эндосперама и зародына семян Pinus sibirica и Р. sylvestris // Физиология растений. 2008. Т. 55. № 4. С. 535−540.
  83. И.С., Цельникер Ю. Л., Яшкина А. М. Фотосинтез и дыхание подроста. М.: Наука, 1970. 184 с.
  84. М.Н., Погосян С. И. Деструкция пигментов и липидов в изолированных хлоропластах под действием светового излучения // Молекулярные механизмы биологического действия оптического излучения. М.: Наука, 1988. С. 55−70.
  85. Е.А., Кравкина И. М., Буболо Л. С. Структурная адаптация пластидома и хондриома к условиям высокогорий Крайнего Севера // Экология. 1990. № 4. С. 362.
  86. Е. А. Вознесенская Е.В. Буболо Л. С. Структура хлоропластов северных растений в связи с адаптацией фотосинтетического аппарата к условиям Арктики // Физиология растений. 1996. Т. 43. № 3. С. 374−379.
  87. А.Т., Багаутдинова Р. И. Динамика хлоропластов в листьях картофеля // Физиология растений. 1974. Т. 24. С. 1132−1137.
  88. А.Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука, 1981. 196 с.
  89. А.Т. Фотосинтетическая функция и целостность растительного организма. 42-е Тимирязевское чтение. М.: Наука, 1983. 64 с.
  90. А.Г. Баланс СОг в экосистемах сосняков и дубрав в разных лесорастительных зонах. Тула: Гриф и К, 2007. 284 с.
  91. Н.Е., Разнополое О.Н.,. Разнополова Т. Е., Одинцова В. А., Кайбияйнен Л. К. Динамика потоков влаги в ксилеме ствола яблони // Физиология и биохимия культурных растений. 1989. Т. 21. № 4. С. 381 387.
  92. ЮО.Нестерович Н. Д., Дерюгина Т. Ф., Лучков А. И. Структурные особенности листьев хвойных. Минск: Наука и техника, 1986. 143 с.
  93. М.К., Осипова О. П. Функциональная активность хлоропластов бобов, выращенных при разных интенсивностях света // Физиология растений. 1979. Т. 26. С. 799−807.
  94. М.К., Бухов Н. Г., Егорова Е. А. Активность нециклического и альтернативных путей фотосинтетического транспорта электронов у листьев бобов, выращенных при различных интенсивностях света // Физиология растений. 2005. Т. 52. С. 485191.
  95. ЮЗ.Ничипорович A.A. Продукты фотосинтеза и физиологическая роль фотосинтетического аппарата растений // Тр. ИФР АН СССР. 1953. Т. 8. С. 3−41.
  96. A.A. Теория фотосинтетической продуктивности // Итоги науки и техники. Сер. Физиология растений. М., 1977. Т. 3. С. 11−54.
  97. A.A. Физиология фотосинтеза и продуктивность растений // Физиология фотосинтеза / Под ред. Ничипоровича A.A. М.: Наука, 1982. С. 7−33.
  98. Г. В., Руцкая JI.A., Молотковский Ю. Г. Возрастные изменения липидного состава мембран хлоропластов бобов // Физиология растений. 1977. Т. 24. С. 35—43.
  99. Г. В., Сальникова Е. Б., Суворова Т. А. Изменение насыщенности жирных кислот липидов растений озимой и яровой пшеницы в процессе закаливания // Физиология и биохимия культурных растений. 1990. Т. 22. С. 257−264.
  100. Ю.В., Манцирева JT.B. Годичная динамика пигментов пластид у ели в елово-лиственных насаждениях севера / Устойчивость растений к низким положительным температурам и заморозкам и пути ее повышения. Петрозаводск, 1970. С. 110−115.
  101. Ю.Е. Адаптация сосны к экстремальным факторам среды // Физиолого-биохимические основы роста и адаптации сосны на Севере. JL: Наука. Ленинградское отделение, 1985. С. 113−138.
  102. Ю.И., Чикина П. Ф., Софронова Г. И., Габукова В. В., Макаревский М. Ф. Физиолого-биохимические основы роста и адаптации сосны на Севере. Л.: Наука, 1985. 156 с.
  103. В.А., Воронин В. И. Репродуктивный процесс сосны обыкновенной в Верхнем Приангарье при техногенном загрязнении. Иркутск: Изд-во Иркут. гос. ун-та, 2003. 140 с.
  104. Оскорбина М. В, Копытова Л. Д., Суворова Г. Г., Осколков В. А., Янькова Л. С. Влияние климатических условий на динамику зеленых пигментов и фотосинтетическую продуктивность хвойных // Вестник КрасГАУ. Красноярск, 2010. № 5. № 4. С. 25−30.
  105. М.В., Суворова Г. Г., Копытова Л. Д., Осколков В. А., Янькова Л. С. Влияние структурных особенностей фотосинтетического аппарата и климатических условий на фотосинтетическую продуктивность хвойных // Вестник КрасГАУ, 2010. № 5. С. 28−34.
  106. Петровская-Баранова- Т. П. Физиология адаптации и интродукция растений. М.: Наука, 1983. 151 с.
  107. A.B. Сосновые леса Средней Сибири и Забайкалья. М.: Наука, 1965. 268 с.
  108. С.И. Состояние растительных организмов в природных условиях и окислительное повреждение фотосинтетического аппарата: Автореф. дисс. докт. биол. наук. М.: МГУ, 2003. 56 с.
  109. В.В. Физиология растений: Учебник для биологов специальных вузов. М.: Высшая школа, 1989. 464 с.
  110. Л.В. Леса междуречья-Чуны и Вихоревой. Труды ВСФ СО АН СССР, 1961. Сер. биол. Вып. 39. 142 с.
  111. Л.В. Южнотаежные леса Средней Сибири. Иркутск: Изд-во Иркутского ун-та, 1982. 330 с.
  112. И.А., Маслова Т. Г., Попова О. Ф. Особенности пигментного аппарата растений различных ботанико-географических зон // Экологофизиологические исследования фотосинтеза и дыхания растений / Под ред. Семихатовой O.A. JL: Наука, 1989. С.115−139.
  113. Почвенная карта Иркутской области в масштабе 1: 1 500 ООО (под ред. В. Т. Колесниченко, К.А. Уфимцевой). М.: ГУГК СССР, 1988. 2 л.
  114. С.Г. Минеральное питание сосны (на холодных почвах). Новосибирск: Наука. Сибирское отделение, 1982. 188 с.
  115. В.И., Кузьмин А. Н., Демидов Э. Д., Маслов А. И. Разнообразие биохимических путей фиксации СО2 у растений семейств Роасеае и Chenopodiaceae аридной зоны Средней Азии // Физиология растений. 1992. Т.39. Вып. 4. С. 645−657.
  116. В.И., Мокроносов А. Т. Основные тенденции изменения растительности Земли в связи с глобальным потеплением климата // Физиология растений. 1993. Т. 40. С. 515−531.
  117. Растительность юга Восточной Сибири карта. М. 1:1 500 000 / под ред. A.B. Белова. М.: ГУГК, 1983. 4 л.
  118. А.Б. Биофизика. М.: Университет, 2000. Т. 36. 468 с.
  119. А.Б., Кренделева Т. Е. Регуляция первичных процессов фотосинтеза//Биофизика. 2004. Т. 49. С. 239−253.
  120. Т.А., Кайбияйнен JI.K. Оценка влагообеспеченности дерева по термодинамическим показателям // Лесоведение. 1994. № 4. С. 77−82.
  121. Л.И., Сергеева К. А. Структурно-метаболические механизмы адаптации древесных растений к неблагоприятным факторам среды // Сезонные структурно-метаболические ритмы и адаптация древесных растений. Уфа: Изд-во БФ АН СССР, 1977. С. 11−36.
  122. О.В., Винокурова Р. И. Сезонная динамика содержания хлорофиллов и микроэлементов в формирующейся хвое Abies sibirica и Picea abies II Физиология растений. 2009. Т. 56. № 6. С. 864−870.
  123. В.Б., Ладанова Н. В. Структура однолетней хвои в кроне Picea obovata (Pinaceae) II Ботанический журнал. 1984. Т. 69. № 7. С. 899−904.
  124. H.H. Особенности фотосинтетической деятельности растений Монголии: эволюционные, экологические и фитоценотические аспекты II Физиология растений. 1996. Т. 43. С. 418−436.
  125. Справочник по климату СССР. Вып. 22. Иркутская область и западная часть Бурятской АССР. Ч. I. Солнечная радиация, радиационный баланс и солнечное сияние. Л.: Гидрометеоиздат, 1966 а. 72 с.
  126. Справочник по климату СССР. Вып. 22. Иркутская область и западная часть Бурятской АССР. 4.II. Температура воздуха и почвы. Л.: Гидрометеоиздат, 1966 б. 360 с.
  127. Г. Г., Щербатюк A.C., Янькова Л. С., Копытова Л. Д. Фотосинтетическая продуктивность сосны обыкновенной, ели сибирской и лиственницы сибирской // Ботанический журнал. 2002. Т. 87. № 9. С. 99−109.
  128. Г. Г., Щербатюк A.C., Янькова Л. С., Копытова Л. Д. Максимальная интенсивность фотосинтеза ели сибирской и лиственницы сибирской в Прибайкалье // Лесоведение. 2003. № 6. С. 5865.
  129. Г. Г., Янькова Л. С., Копытова Л. Д., Филиппова А. К. Оптимальные факторы среды и интенсивность фотосинтеза сосныобыкновенной и лиственницы сибирской в Предбайкалье // Сибирский экологический журнал. 2005. № 1. С. 85−96.
  130. Г. Г. Фотосинтетическая активность хвойных деревьев в условиях юга Средней Сибири: Автореф. дис. докт. биол. наук. Иркутск, 2006. 38 с.
  131. Г. Г. Фотосинтез хвойных деревьев в условиях Сибири. Новосибирск: Изд-во «Гео». 2009 г. 194 с.
  132. Н.Е., Гире Г. И., Прокушкина С. Г. и др. Физиология сосны обыкновенной. Новосибирск: Наука, 1990. 248 с.
  133. И.А. Фотосинтез и засуха. Казань: Изд-во Казанского ун-та, 1964. 198 с.
  134. И.А. Регуляторная роль деградации биополимеров и липидов // Физиология растений. 1992. Т. 39. Вып. 6. С. 1215−1223.
  135. А.Н. Защитные механизмы фотосинтеза // Соросовский образовательный журнал. 1999. № 11. С. 16−21.
  136. В.В. Пигментная система хвойных в районе влияния сыктывкарского лесопромышленного комплекса // Вестник института биологии Коми НЦ УрО РАН. 2001. Т. 47. С. 12−22.
  137. . Электронная микроскопия для начинающих. М., 1975. 324 с.
  138. В.А. Фитомасса лесов Северной Евразии: база данных и география. Екатеринбург: УрО РАН, 2001. 706 с.
  139. Д.В. Определение водных и физических свойств почвы при проведении вегетационных опытов // Агрохимические методы исследования почв. М.: Наука, 1975. С. 296−330.
  140. В.В., Шавнин С. А., Марина Н. В., Новоселова Г. Н. Неспецифическая реакция фотосинтетического аппарата хвои сосны на действие аэропромышленных загрязнений и затенения // Физиология растений. 2001. Т. 48. С. 760−765.
  141. И.Л. Влияние природных и антропогенных факторов на метаболизм веществ вторичного происхождения у древесных растений: Автореф. дисс. д-ра биол. наук. С-Пб., 1999. 42 с.
  142. Г. Г. Методы анатомо-гистохимического исследования растительных тканей. М.: Наука, 1979. 153 с.
  143. П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир, 1977. 398 с.
  144. Ю.Л. Репликация хлоропластов, ее регуляция и значение для фотосинтеза. / Мезоструктура и функциональная активность фотосинтетического аппарата. Свердловск: Уральский ун-т., 1978. С. 3145.
  145. Ю.Л. Физиологические основы теневыносливости древесных растений. М.: Наука, 1978. 211 с.
  146. Ю.Л. Упрощенный метод определения поверхности хвои сосны и ели // Лесоведение. 1982. № 4. 85 с.
  147. Ю.Л. Влияние интенсивности света на параметры структуры кроны ели // Лесоведение. 1995. № 5. С. 73−78.
  148. С.А. Морфофизиологическая диагностика состояния хвойных в экологическом мониторинге: Автореф. дис. канд. биол. наук. Екатеринбург, 1994. 31 с.
  149. Шаркова В. Е, Буболо Л. С. Влияние теплового стресса на структуру тилакоидной системы хлоропластов в клетках зрелых листьев пшеницы. // Физиология растений. 1996. Т 43. № 3. С. 409−417.
  150. Шаяхметова И. Ш, Трунова Т. И., Цидендамбаев В. Д, Верещагин А. Г. Роль липидов клеточных мембран в криозакаливании листьев и узловкущения озимой пшеницы // Физиология растений. 1990. Т. 37. С. 11 Soll 96.
  151. С.Н. Травы на градиенте влажности почвы. М.: Товарищество научных изданий КМК, 2005. 271 с.
  152. Ф.П. Биология древесных и кустарниковых пород СССР. М.: Учпедгиз, 1957. 331 с.
  153. А.И. Субмикроскопическая и макромолекулярная организация хлоропластов. Киев: Наукова думка, 1978. 157 с.
  154. А.И., Рейнгард Т. А., Полищук А. И., Островская JI.K. Субмикроскопическая организация тилакоидов стромы хлоропластов гороха // ДАН СССР. 1972. Т. 204. С. 1237−1240.
  155. A.A. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев / Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука, 1971. С. 154−169.
  156. A.A., Прудникова И. В., Савченко Т. Е. и др. Центры биосинтеза хлорофилла и регулирование процесса формирования пигментного аппарата фотосинтеза. // Известия АН СССР. Сер. Биол. 1976. № 1. С. 101−120.
  157. В.П., Иванов Б. Н., Акулова Е. А. Фотофосфорилирование и электронный транспорт в хлоропластах гороха, выращенных при различной интенсивности света // Физиология растений. 1976. Т. 23. С. 869−876.
  158. A.C. Многоканальные установки с С02-газоанализаторами для лабораторных и полевых исследований // Инфракрасные газоанализаторы в изучении газообмена растений. М.: Наука, 1990. С. 38−54.
  159. A.C., Русакова JI.B., Суворова Г. Г., Янькова Л. С. Углекислотный газообмен хвойных Предбайкалья. Новосибирск: Наука. Сибирское отделение, 1991. 135 с.
  160. М.Т. Исследование биосинтеза хлорофилла и биогенеза пигмент-белковых комплексов пластидных мембран: Авторефю. дисс. д-ра биол. наук. Минск: Ин-т экспериментальной ботаники АН БССР, 1978. 31 с.
  161. В.А. Эколого-физиологические особенности пигментного аппарата у растений криолитозоны Якутии: Афтореф. дис. канд. биол. наук. Иркутск. 2010. 22 с.
  162. Т.В. Закономерности аккумуляции тяжелых металлов сосной обыкновенной в фоновых и техногенных местообитаниях // Лесоведение. 2004. № 2. С. 25−35.
  163. Н.П., Дорофеева О. С., Ильинова М. К., Робонен Е. В., Верещагин А. Г. Жирнокислотный состав суммарных липидов хвои сеянцев сосны обыкновенной в связи с обеспеченностью бором // Физиология растений. 2008. Т. 55. С. 404—411.
  164. В. И Эволюция представлений о связи фотосинтеза с продуктивностью растений // Физиология растений. 2008. Т.55. № 1. С. 140−154.
  165. Эколого-биологические основы повышения продуктивности таежных лесов Европейского Севера / К. С. Бобкова, Э. П. Галенко, В. А. Артемов и др. Л.: Наука, 1981. 232 с.
  166. К. Анатомия семенных растений. М.: Мир, 1980. 582 с.
  167. Н.П., Одинцова М. С. Сигнальные системы растений. Пластидные сигналы и их роль в экспрессии ядерных генов // Физиология растений. 2007. Т. 54. № 4. С. 485−498.
  168. Abdallah F., Salamini F., Leister D. A predition of the size and evolutionary origin of the proteome of chloroplasts of Arabidopsis II Trends Plant Sci. 2000. V. 5. P. 141−142.
  169. Allen J.F. Protein phosphorylation in regulation of photosynthesis // Biochim. Biophys. Acta. 1992. V. 1098. P. 275−335.
  170. Anderson J.M. Chlorophyll-protein complexes of higher plant thylakoids distribution, stoichiometry and organisation in the photosynthetic unit // FEBS Lett. 1980. V. 117. P. 327−332.
  171. Andersson B., Andersson J.M. Lateral heterogenity in the distribution of chlorophyll-protein complexes of the thylakoid membranes of spinach chloroplasts//Biochim. Biophys. Acta. 1980. V. 593. P. 427−440.
  172. Anderson J.M. Photoregulation of the composition, function, and structure of thylakoid membranes // Annu. Rev. Plant Physiol. 1986. V. 37. P. 93−136.
  173. Anderson J.M., Chow W.S., Park Y.I. The grand design of photosynthesis: acclimation of the photosynthetic apparatus to environmental cues // Photosynth. Res. 1995. V. 46. P. 129−139.
  174. Bauer H., Martha P., Kirchner—Heiss B., Mairhofer I. The CO2 compensation point of C3 plants — are examination. II. Intraspecific variability // Zetschr. Pflanzenphysiol. 1983. V. 109. P. 143−154.
  175. Bell P.R., Muhlethaler K. The fine structure of the cell taking part in oogenesic in Pteriium aquilinium (1.) Kuhw. // J. Ultrastruct. Res. 1962. V. 7. P. 452−459.
  176. Ben-Shem A., Frolow F., Nelson N. Crystal structure of plant photosystem I // Nature. 2003. V. 426. P. 630−635.
  177. Berry J., Bjorkman O. Photosyntetic response and adaptation to temperature in higher plants // Ann. Rev. Plant Physiol. 1980. V. 31. P. 491−534.
  178. Biaudet P., Haraux F. ApH-dependent activation of chloroplast coupling factors and external pH effects on the 9-aminoacridine response in lettuce and spinach thylakoids // Biochim. Biophys. Acta. 1987. V. 893. P. 544−556.
  179. Bjorkman O., Demmig B. Photon yeld of O2 evolution and chlorophyll fluorescence characteristics at 77 K among vascular plants of diverse origins // Planta. 1987. V. 170. P. 489−504.
  180. Bligh E.C., Dyer W.J. F Rapid method of total lipid extraction and pourification // Can. J. Biochem. Physiol. 1959. V. 37. P. 911−917.
  181. Boekema E.J., Jensen P.E., Schlodder EJ., van Breemen F.L., van Roon H., Scheller H.V., Dekker J.P. Green plant photosystem I binds light-harvesting complex I on one side of the complex // Biochemistry. 2001. V. 40. P. 10 291 036.
  182. Boichenko Y.A. Action spectra and functional antenna sizes of photosystems I and II in relation to the thylakoid membrane organization and pigment composition //Photosynth. Res. 1998. V. 581. P. 163−174.
  183. Brettel K., Leibl W. Electron transfer in photosystem I // Biochim. Biophys. Acta. 2001. V. 1507. P. 100−114.
  184. Bukhov N.G., Boucher N., Carpentier R. Loss of the precise control of photosynthesis and increased yield of non-radiactive dissipation of excitation energy after mild heat treatment of barley leaves // Physiol. Plant. 1998. V. 104. P. 563−570.
  185. Callahan F.E., Wergin W.P., Nelson N., Edelman M., Mattoo A.K. Distribution of thylacoid proteins between stromal and granal lamellae in Spirodella//Plant Physiol. 1989. V. 91. P. 629−635.
  186. Carreau V.P., Dubacq J.P. Adaptation of a macro-scale method to the micro-scale for fatty acid methyl transesterification of biological lipid extracts // J. Chromatogr. 1978. V. 151. P. 348−390.
  187. Castellatti S., Morosinotto T., Robert B., Caffarri S., Bassi R., Croce R. Recombinant Lhca2 and Lhca3 subunits of the photo system I antenna system // Biochemistry. 2003. V. 42. P. 4226−4234.
  188. Ceulemans R., Impens I., Steenackers V. Variations in photosynthetic, anatomical, and enzymatic leaf traits and correlations with growth in recently selected populus hybrids // Can. J. For. Res. 1987. V. 17. P. 273−283.
  189. Ceulemans R., Impens I. Study of CO2 exchange processes, resistances to carbon dioxide and chlorophyll content during leaf ontogenesis in poplar // Biol. Plant. 1979. V. 21. P. 302−306.
  190. Chaves M., Maroco J., Pereirs J. Understanding to drought — from genes to the whole plant // Plant Biol. 2003. V. 30. P. 239−264.
  191. Chitnis P.R. Photosystem I: function and physiology // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol Biol. 2001. V. 52. P. 593−626.
  192. Choudhury N.K., Behera R.K. Photoinhibition of photosynthesis: role of carotenoids in photoprotection of chloroplast constituents // Photosynthetica. 2001. V. 39. P. 481−488.
  193. Christie W.W. Equivalent chain lengths of methyl ester derivatives of fatty acids on gas chromatography // J. Chromatogr. 1988. V. 447. P. 305−314.
  194. Christie W.W. Preparation of ester derivatives of fatty acids for chromatographic analysis. Advances in Lipid Methodology. Two. Oily Press. Dundee. 1993. P. 69−111.
  195. Codingola A., Maffei M., Fusconi A. Preliminary studies on the photosynthetic structures of Trifolium Alpinum L. as related to productivity // Ann. Bot. 1985. V. 55. № 4. P. 509−523.
  196. Demmig-Adams B. Carotenoids and photoprotection in plants. A role for the xanthophyll zeaxanthin//Biochem. Biophys. Acta. 1990. V. 1020. P. 1−24.
  197. Demmig-Adams B., Adams W.W. III. Photoprotection and other responses of plants to higt light stress // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1992. V. 43. P.599−626.
  198. Duysens L.N.M. The discovery of the two photosynthetic systems- a personal account//Photosynth. Res. 1989. V 21. P. 61−79.
  199. Eilam I., Butler R.D., Simon E.W. Ribosomes and polysomes in cucumber leaves during growth and senescence // Plant. Ptysiol. 1971. V. 47. P. 317— 323.
  200. Evans J.R. Carbon fixation profiles do reflect light absorption profiles in leaves // Aust. J. Plant Physiol. 1995. V. 22. P. 865−873.
  201. Evans J.R., von Caemmerer S. Carbon dioxide diffusion inside leaves // Plant Physiol. 1996. V. 110. P. 339−346.
  202. Ganateg U., Strand A., Gustafsson P., Jansson S. The properties of the chlorophyll a/b-binding proteins Lhca2 and Lhca3 studied in vivo using antisense inhibition // Plant Physiol. 2001. V. 127. P. 150−158.
  203. Gobet B., van Grondelle R. Energy transfer and trapping in photosystem I // Biochim. Biophys. Acta. 2001. V. 1507. P. 80−99.
  204. Goldschmidt-Clermont M. Coordination of nuclear and chloroplast gene expression in plant cells // Int. Rev. Cytol. 1998. V. 177. P. 115−180.
  205. Gounaris K., Sundby C., Andersson B., Barger J. FEBS Lett., 1983. V. 156. P. 170−174.
  206. Gunther G., Thiele A., Laasch H. A new method for the determination of the transthylakoid pH gradient in isolated chloroplasts: the pH-dependent activity of violaxanthin de-epoxidase // Plant Sei. 1994. V. 102. P. 19−30.
  207. Flores S., Graan T., Ort D. R. Fhotobiochem. Photobiophis. 1983. V. 6. P. 293−304.
  208. Fork D.C., Govinjee J. Chlorophyll a fluorescence transients of leaves from sun and shade plants // Naturwissenschaften. 1980. V. 67. P. 510−511.
  209. Fromme P., Jordan P., Kraus N. Structure of photosystem I // Biochim. Biophys. Acta. 2001. V. 1507. P. 5−31.
  210. Harwood J.L. Membrane lipids in Algae // Lipids in photosynthesis: structure, function and genetics. Dordrecht: Kluwer, 1998. P. 53−64.
  211. Helmisaary H.-S. Temporal variation in nutrient concentration of Pinus sylvestris needles // Scand. J. For. Res. 1990. V. 5. P. 177−193.
  212. Hideg E., Murata N. The irreversible photoinhibition of the photosystem II complex in leaves of Vicia faba under strong light // Plant Sei. 1997. V. 130. P. 151−158:
  213. Hitchcock S., Nichols B.W. Plant lipid biochemistry. N.Y.: Acad. Press, 1971. 387 p.
  214. Jamorski J.G., Stumpf P.K. Fat metabolism in higher plants. Properties of a soluble stearyl-acyl carrier protein desaturase from maturing Carthamus tinctorius il Arch. Biochem. Biophys. 1974. V. 162. P. 158−165.
  215. Jensen P.E., Haldrup A., Rosgaard L., Scheller H.V. Molecular dissection of photosystem I in higher plants: topology, structure and function // Physiol. Plant. 2003. V. 119- P. 1−9.
  216. Jiao S., Hilarie E., Guikema J.A. Identification and. differential accumulation of two: isoforms — of the CF1 subunit under high- light stress in Brassica rapa II Plant PhysioL Biochem. 2004. V. 42. P. 883−890.
  217. Jordan P., Fromme P., Witt H.T., Klukas O., Saenger W., Kraup N. Three-dimensional structure of cyanobacterial photosystem-1 at 2.5A resolution II Nature. 2001. V. 411. P. 909−917.
  218. Klyachko-Gurvich Ci.L. Adaptive desaturation of fatty acids in microalgal thylacoid lipids // Phycologia (Suppl: Abst. 6th Int- Phycol. Congr.). 1997. V. 36. P. 51. ' ' «
  219. Krause G.H., Weis E. Chlorophyll fluorescence and photosynthesis: the basic // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1991. V. 42. P. 313−349.
  220. Kuhlbrandt W., Da Nelg Wang Y., Fujulyoshi Y. Atomic model of plant light-harvesting complex by electron crystallography // Nature. 1994. V. 2. P: 75-¦ 82. «
  221. Kyle D.J., Staehelin L.A., Arntzen C.J. Lateral: mobility of the light-harvesting complex in chloroplast membranes controls excitation energy distribution in higher plants // Arch. Biochem. Biophys. 1983. V.222. P. 527 541.
  222. Ladygin V.G., Bil K. Ya. Chlorophyll from absorbing at 684 nm as antenna of photosystem IT in chloroplasts of Copiant leaves // Photosynthetica. 1981. V. 15. p:. 49−54. '
  223. Larcher W. Physiological plant ecology: ecophysiology and stress physiology of functional groups. Heidelberg: Springer-Verlag, 2003. 506 p.
  224. Lee W.-J., Whitmarsh J. Photosynthetic apparatus of pea thylakoid membranes. Response to growth light intensity // Plant Physiol. 1989. V. 89. P. 932−940.
  225. Leister D. Chloroplast research in the genomic age // Trends Genet. 2003. V. 19. P. 47−56.
  226. Leon P., Arroyo A., Mackenzie S. Nuclear control of plastid and mitochondrial development in higher plants // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol Biol. 1998. V. 49. P. 453180.
  227. Lichtenthaler H.K. Influence of environmental factors on composition and function of the photosynthetic apparatus // Advances in Photosynthesis Research. The Hague- Boston, Lancaster: M. Nijhoff, Dr. W. Yunk Publ., 1984. V.IVP. 241−244.
  228. Lichtenthaler H.K. Vegetation stress: an introduction to the stress concept in plants // J. Plant Physiol. 1996. V. 148. P. 4−14.
  229. Lichtenthaler H.K. Biosynthesis, accumulation and emission of carotenoids, tocopherol, plastoquinone and isoprene in leaves under high photosynthetic irradiance //Photosynth. Res. 2007. V. 92. P. 163−179.
  230. Long S.P., Humphries S., Falkowski P.G. Photoinhibition of photosynthesis in nature // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1994. V. 45. P. 633−662.
  231. Los D.A., Murata N. Structure and expression of fatty acid desaturases // Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1394. P. 3−15.
  232. Lyons J.M., Wheaton T.A., Pratt Y.K. Relationship between the physical nature of mitochondrial membranes and chilling sensitivity in plants // Plant Physiol. 1964. V. 39. P. 262−268.
  233. Lyons J.M. Chilling injury on plants // Ann. Rev. Plant Physiol. 1973. V. 24. P. 455—466.
  234. Maslova T.G., Popova I.A. Adaptive properties of the plant pigment systems // Photosynthetica. 1993. V. 29. P. 195−203.
  235. Marek J., Hraska S., Petrovic I. Prispevog k otazke degradacie plastidov // Biologia (CSSR). 1976. V. 31. P. 493−500.
  236. Markwell J.P., Nakatani N.Y., Barber J., Thornber J.P. Chlorophyll-protein complexes fractionated from intact chloroplast // EWBS Lett. 1980. V. 122. P. 149−156.
  237. Mattoo A.K., Edelman M. Intra-membrane translocation and posstranslation palmitoylation of the chloroplast 32 kDa herbicide binding protein // Proc. Nalt. Acad. Sci. USA. 1987. V. 84. P. 1497−1501.
  238. Melkozernov A.N., Lin S., Schmid V.H., Paulsen H., Schmidt G.W., Blankenship R.E. Ultrafast excitation dynamics of low energy pigments in reconstituted peripheral light-harvesting complexes of photosystem I // FEBS Lett. 2000. V. 471. P. 89−92.
  239. Melkozernov A.N. Excitation energy transfer in photosystem I from oxygenic organisms // Photosynth. Res. 2001. V. 70. P. 129−153.
  240. Melkozernov A.N., Blankenship R. Structural modeling of the Lhca4 subunit of LHCI-730 peripheral antenna in photosystem I based on similarity with LHC II // J. Biol. Chem. 2003. V. 278. P. 542−551.
  241. Menke W. Uber die chloroplasten von Anthocerus punctatus II Zeitsch. Naturforsch. 1962. V. 16. P. 334−336.
  242. Miller N.J., Sampson J., Candeias L., Bramly P.M., Rice-Evans C.A. Antioxidant activities of carotenes and xanthophylls // FEBS Lett. 1996. V. 384. P. 240−242.
  243. Muraoka H., Takenaka A., Tang Y., Koizumi H., Washilum I. Flexible leaf orientations of Arisema heterophyllum maximize lihgt capture in a forest undestory and excess irradiance at a deforested site // Ann. Bot. 1998. V. 82. P. 297−307.
  244. Napolitano G.E. The Relationship of lipids with light and chlorophyll measurements in freshwater algae and periphyton // J. Phycol. 1994. V. 30. P. 943−950.
  245. Nishio N. Sun., Vogelmann T.C. Carbon fixation gradients across spinach leaves do not follow internal light gradients // Plant Cell. 1993. V. 5. P. 953 961.
  246. Nobel P. S., Walker D.B. Structure of leaf photosynthetic tissue // Photosynthetic mechanisms and environment. Amsterdam, 1985. P. 501−536.
  247. Oguchi R., Hikosaka K., Hirose T. Does the photosynthetic light-acclimation need change in leaf anatomy // Plant. Cell Environ. 2003. V. 26. P. 505−512.
  248. Oguist G., Huner N.P.A. Photosynthesis of overwintering evergreen plants // Annu. Rev. Plant Biol. 2003. V. 54. P. 329−355.
  249. Ohrlogge J., Browse J. Lipid biosynthesis // Plant Cell. 1995. V. 7. P. 957 970.
  250. Oleksyn J., Zytkowiak R., Reich P.B., Tjoelker M.G., Karolewski P. Ontogenetic patterns of leaf CO2 exchange, morphology and chemistry in Betulapendula trees // Trees. 2000. V. 14. P. 271−281.
  251. Osamu M., Iba K. Trienoic fatty acsids and stress responses in higher plants // Plant Biotechnol. 2005. V. 22. P. 423−430.
  252. Papachadjopoulos D. Kimelberg H.K. Phospholipid vesicles as models for biological membranes. Progr. Surface Sci. 1973. V. 4. P. 141−232.
  253. Pfister V.R., Homann P.H. Intrinsic and artifactural pH buffering in chloroplast thylakoids // Arch. Biochem. Biophys. 1986. V. 246. P. 525−530.
  254. Polle J., Melis A. Recovery of photosynthetic apparatus from photoinhibition during dare incubation of the green alga Dunaliella salina II Photosynthesis: Mechanisms and effects. Dordrecht: Kluwer. 1998. V. 3. P. 2261−2264.
  255. Portis A.R., McCarty R.E. Quantitative relationships between phosphorylation, electron flow, and internal hydrogen ion concentrations in spinach chloroplasts // J. Biol. Chem. 1976. V. 251. P. 1610−1617.
  256. Sarafis V. Chloroplasts: a structural approach // J. Plant Physiol. 1998. V. 152. P. 248−264.
  257. Satoh K. Properties of light-harvesting chlorophyll alb protein, and P700 chlorophyll a protein of spinach chloroplast // Plant Cell Physiol. 1979. V. 20. P. 499−512.
  258. Scheller H.V., Jensen P.E., Haldrup A., Lunde C., Knoetzel J. Role of subunits in eukaryotic photosystem I // Biochim. Biophys. Acta. 2001. V. 1507. P. 41−60.
  259. Schmid V.H.R., Thome P., Ruhle W., Paulsen H., Kuhlbandt W., Rogle H. Chlorophyll b is involved in long-wavelength spectral properties of light-harvesting complexes LHCI and LHCIII IFEBS Lett. 2001. V. 499. P. 27−31.
  260. Schmid V.H.R., Potthast S., Wiener M., Bergauer V., Paulsen H., Storf S. Pigment binding of photosystem I light harvesting proteins // J. Biol. Chem. 2002. V. 277. P. 307−314.
  261. Schlodder E., Meyer B. pH Dependence of oxygen evolution and reduction kinetics of photooxidized chlorophyll all (P-680) in photosystem II particles from Synechococcus sp. //Biochim. Biophys. Acta. 1987. V. 890. P. 23−31.
  262. Strain H.H., Svec W.A. Extraction, separation, estimation and isolation of the chlorophyll // Chlorophyll. 1966. P. 21−66.
  263. Strzalka K., Gruszecki W.I. Effect of (3-carotene on structural and dynamic properties of model phosphatidylcholine membrans. I. An EPR spin label study //Biochim. Biophys. Acta. 1994. V. 1194. P. 138−142.
  264. Takabe T., Ishikawa H., Niwa S., Itoh S. Electron transfer between plastocyanin and P700 in highly-purified photosystem I reaction center complex. Effects of pH, cations, and subunit peptide composition // J. Biochem. 1983. V. 94. P. 1901−1911.
  265. Takahashi Y., Koike H., Katoh S. Multiple forms of chlorophyll-protein complexes from a thermophilic cyanobacterium Synechococcus sp. // Arch. Biochem. Biophys. 1982. V. 219. P. 209−218.
  266. Teskey R.O., Grier C.C., Hinckley T.M. Change in photosynthesis and water relations with age and season in Abies amabilis II Can. J. For. Res. 1983. V. 14. P. 77−84.
  267. Thiele A., Schirwitz K., Winter K., Krause G.H. Increased xanthophylls cycle activity and reduced D 1 protein inactivation related to photoinhibition in two plant systems acclimated to excess light // Plant Sci. 1996. V. 115. P. 237 250.
  268. Thompson G.A. Membrane acclimation by unicellular organisms in response to temperature change // J. Bioenerg. Biomembr. 1989. V. 21. P. 43−60.
  269. Thompson G.A. The regulation of membrane lipid metabolism // Boca Raton: CRC. 1992. 230 p.
  270. Tobias D.J., Ikemoto A., Nishimura T. Leaf senescence patterns and photosynthesis in four leaf flushes of two deciduous Oak (Quercus) species // Photosynthetica. 1995. V. 31. P. 231−239.
  271. Todaria N.P., Thapliyal A.P., Purohit A.N. Altitudinal effects on chlorophyll and carotenoid contents in plants // Photosynthetica. 1980. V. 14. № 2. P. 236−238.
  272. Todaria N.P. Changes in pigments and total phenolics in Artemisia species grown at different altitudes in the Garhwal Himalaya II Biol. Plant. 1986. V. 28. № 4. P. 307−309
  273. Trauble H., Haynes D.N. The volume change in lipid hilayer lamellae at the crystalline phase transition. Chem. Phys. Lipids. 1971. V. 7. P. 324—335.
  274. Tremolieres A., Jacques R., Mazliak P. Regulation par la lumieres de 1 accumulation de 1 acide linolenique dans le jeune feuille de pois // Physiol. Veg. 1973. V. 11. P. 239−246.
  275. Troeng E., Linder S. Gas exchange in a 20-year-old stand of Scots Pine. I. Net photosynthesis of current and one-year-old shoots within and between seasons //Physiol. Plant. 1982. V. 54. P. 7−14.
  276. Vintejoux C., Dereuddre J. Etude de quelques aspects de l’alternance saisonniere, chez les Vegetaux // C. R. Sei. Acad. Sei. Fr. 1981. V. 128 (2). P. 7−21.
  277. Vogelmann T.C. Plant tissue optics // Annu. Rev. Plant Mol. Biol. 1993. V. 44. P. 231−251.
  278. Wollman F.A., Diner B.A. Arch. // Biochem. Biophys. 1980. V. 201. P. 646 659.
  279. Wood P.M., Bendall D.S. The kinetics and specificity of electron transfer from cytochromes and copper proteins to P700 // Biochim. Biophys. Acta. 1975. V. 387. P. 115−128.
  280. Yang Z., Su X., Wu F., Gong Y., Kuang T. Effect of phosphatidylglycerol on molecular organization of photosystem I // Biophys. Chem. 2005. V. 115. P. 19−25.
  281. Young A.J., Frank H.A. Energy transfer reaction involving carotenoids: quenching of chlorophyll fluorescence // J. Photochem. Photobiol. B: Biology. 1996. V. 36. P. 3−15.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!