Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Сократительные свойства изолированных скелетных мышц мыши в норме, в условиях сенсибилизации и нарушенного нейротрофического контроля

Диссертация: Сократительные свойства изолированных скелетных мышц мыши в норме, в условиях сенсибилизации и нарушенного нейротрофического контроля
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Материалы исследования доложены и обсуждены на III научно-практической конференции молодых ученых КГМУ (Казань, 1998 г), на V Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань, 1998 г), на VI Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань, 1999 г), на VII Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань… Читать ещё >

Сократительные свойства изолированных скелетных мышц мыши в норме, в условиях сенсибилизации и нарушенного нейротрофического контроля (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 2. 0. Б30Р ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Современные представления о нейротрофическом контроле структуры и функции скелетной мышцы
      • 2. 1. 1. Нейротрофический контроль
      • 2. 1. 2. Нейротрофические факторы, регулирующие морфо-функциональные характеристики скелетных мышц
    • 2. 2. Мышь как объект исследований в нервно-мышечной физиологии
    • 2. 3. Сократительные свойства скелетных мышц мышей
      • 2. 3. 1. Сократительные свойства изолированных скелетных мышц мышей при электрической стимуляции
      • 2. 3. 2. Сократительные свойства изолированных скелетных мышц мышей при гуморальной стимуляции
    • 2. 4. Сократительные свойства скелетных мышц мыши в условиях сенсибилизации и нарушения нейротрофического контроля
  • 3. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Материалы и методы исследования
      • 3. 1. 1. Объект исследования
      • 3. 1. 2. Метод регистрации сократительных свойств препарата скелетной мышцы in vitro в изометрическом режиме
        • 3. 1. 2. 1. Описание экспериментальной установки
        • 3. 1. 2. 2. Выделение препаратов скелетных мышц
        • 3. 1. 2. 3. Регистрируемая кривая сокращения
        • 3. 1. 2. 4. Оценка сократительного ответа
      • 3. 1. 3. Оперативные вмешательства
        • 3. 1. 3. 1. Денервация мышц правой задней конечности мыши
        • 3. 1. 3. 2. Аппликация колхицина на седалищный нерв правой задней конечности мыши
      • 3. 1. 4. Метод сенсибилизации мыши
      • 3. 1. 5. Контроль сенсибилизации. Метод пассивной кожной анафилаксии
    • 3. 2. Статистическая обработка результатов
  • 4. РЕЗУЛЫАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 4. 1. Сократительные свойства мышц длинный разгибатель пальцев и камбал овидной мыши
    • 4. 2. Сократительные свойства скелетных мышц сенсибилизированной мыши
    • 4. 3. Сократительные свойства денервированных скелетных мышц мыши
      • 4. 3. 1. Влияние денервации на сократительные свойства скелетных мышц мыши
      • 4. 3. 1. Влияние денервации на сократительные свойства скелетных мышц сенсибилизированной мыши
    • 4. 4. Сократительные свойства скелетных мышц мыши в условиях блокады аксонного транспорта колхицином
  • 5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • 6. ВЫВОДЫ

Актуальность проблемы.

Вопрос о механизмах мышечного сокращения продолжает оставаться центральной проблемой нервно-мышечной физиологии (Кроленко С.А., Адамян С .Я., 2001; Подлубная З. А. и др., 2001). Решение этой проблемы является важнейшим в понимании основных закомерностей двигательной активности организма (Бэгшоу К., 1985).

Одним из основных методологических направлений в экспериментальной физиологии мышечного сокращения является изучение сократительных свойств скелетных мышц в изометрическом режиме. В частности, метод стимуляционной изометрической механомиографии, позволяющий изучать основную функцию мышц — сократительную. Изменения этой функции являются обязательным компонентом первичных и вторичных мышечных поражений, поэтому проблема изучения механизмов сокращения скелетных мышц имеет непосредственное отношение к клиническим проявлениям некоторых заболеваний опорно-двигательного аппарата. Применение этого способа исследования в настоящее время позволило установить ряд физиологических и патологических механизмов процесса мышечного сокращения (Богданов Э.И., 1989; Девятаев A.M., 1996; Фасхутдинов P.P., 1997) как в работах in vivo, так и на изолированных органах.

Изолированные препараты скелетных мышц широко применяются как в фундаментальных биологических исследованиях (Наследов Г. А. и др., 2001), так и при скриннинге физиологически активных соединений (Murrant C.L. et al, 1994; Allen D.G., Westerblad H., 1998). Данный факт можно связать с тем обстоятельством, что при выделении изолированного препарата мышцы орган освобождается от регуляторных нервных и гуморальных влияний, значительно усложняющих его функцию in vivo (Блаттнер Р. и др., 1983).

Однако, работы, посвященные изучению сократительных б характеристик изолированных быстрых и медленных скелетных мышц, немногочисленны. Вместе с тем, вопрос о том, каким образом функциональная специализация и функциональная пластичность мышцы отражаются на ее структурной организации, по-прежнему остается актуальным. Возможно, его решение позволит в будущем осуществлять направленную регуляцию дифференциации мышечных волокон на разных стадиях миогенеза.

Но в подобных работах (как в физиологических, так и патофизиологических) изолированные скелетные мышцы мыши в качестве объекта исследования применяются редко. Поэтому представляется интересным изучение контрактильных характеристик изолированных быстрой и медленной скелетных мышц мыши методом стимуляционной изометрической механомиографии как в норме, так и в различных условиях экспериментальной патологии.

Цель: изучить сократительные свойства изолированных скелетных мышц мыши в норме и в условиях экспериментальной патологии.

Задачи:

1. Изучить сократительные свойства изолированных быстрой (длинного разгибателя пальцев) и медленной (камбаловидной) мышц интактных мышей при гуморальной стимуляции.

2. Исследовать контрактильные характеристики мышц сенсибилизированной мыши.

3. Изучить сократительные свойства мышц после денервации и в сочетании с сенсибилизацией животных.

4. Исследовать контрактильные характеристики мышц мыши в условиях аппликации колхицина на седалищный нерв.

Научная новизна.

Получены новые данные, характеризующие сократительные 7 характеристики быстрых и медленных мышц интактных животных, а также мышц мыши в условиях экспериментальной патологии (сенсибилизация, нарушение нейротрофического контроля), и свидетельствующие о сложных взаимоотношениях нервной и гуморальной систем в регуляции функционирования скелетных мышц.

Впервые приводятся данные о разнонаправленных изменениях функциональных свойств быстрой и медленной мышц сенсибилизированной мыши при инициации сокращения карбахолином и однонаправленных изменениях сократительных свойств при их стимуляции хлористым калием.

Новыми являются результаты об однонаправленных изменениях контрактильных свойств быстрой и медленной денервированных мышц сенсибилизированной мыши при инициации сокращения карбахолином и разнонаправленных изменениях сократительных свойств при стимуляции хлористым калием.

Приоритетными следует считать данные об изменениях сократительных параметров быстрых и медленных мышц мыши в условиях блокады аксонного транспорта аппликацией колхицина на седалищный нерв.

Теоретическая и практическая значимость работы.

Результаты данного исследования могут служить основанием для дальнейших физиологических и патофизиологических исследований сократительных ответов на Кх скелетных мышц мыши разных фенотипов в экспериментальных условиях.

Полученные данные позволяют рекомендовать механомиографический метод изучения контрактильных характеристик изолированных скелетных мышц мыши в изометрическом режиме для дальнейшего изучения функции поперечно-полосатых мышц в области миологии, неврологии, фармакологии и аллергологии.

Основные положения, выносимые на защиту. 1. Быстрая и медленная мышцы мыши неодинаково изменяли 8 сократительные характеристики при их стимуляции карбахолином в условиях сенсибилизации по сравнению с контролем:

— в медленной мышце увеличивались сила сокращения, время развития максимального напряжения и время полурасслабления;

— в быстрой мышце сократительные параметры не изменялись.

2. Сократительные свойства быстрых и медленных мышц мыши при гуморальной стимуляции в условиях нарушенного нейротрофического контроля изменяются однонаправленно — в сторону повышения силы сокращения.

Апробация материалов работы.

Материалы исследования доложены и обсуждены на III научно-практической конференции молодых ученых КГМУ (Казань, 1998 г), на V Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань, 1998 г), на VI Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань, 1999 г), на VII Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань, 2000 г), на XVIII Всероссийском съезде физиологов (Казань, 2001 г), на VIII Всероссийской школе молодых ученых «Актуальные проблемы нейробиологии» (Казань, 2001 г). Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 6 печатных работ. Объем и структура диссертации.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, полученных результатов и их обсуждения, выводов, указателя цитируемой литературы. Работа изложена на 156 страницах машинописного текста. Список цитируемой литературы включает 465 ссылок на 135 отечественных и 330 иностранных источников. Работа иллюстрирована 42 рисунками и 19 таблицами.

6.ВЫВОДЫ.

1. Сенсибилизация по-разному влияет на мышцы разных фенотипов мыши, при стимуляции карбахолином, повышая в медленной камбаловидной мышце силу сокращения, время развития максимального напряжения, время полурасслабления, и не изменяя сократительные свойства быстрой мышцы длинного разгибателя пальцев по сравнению с контролем.

2. В условиях сенсибилизации животного при инициации хлористым калием увеличивается сила сокращения и время полурасслабления быстрой и медленной мышц мыши.

3. Денервация мышц приводит к увеличению всех изучаемых сократительных параметров на карбахолин в быстрой и медленной мышцах, а при действии хлористого калия повышается сила и скорость сокращения обеих мышц мыши.

4. Денервация мышц у сенсибилизированных животных оказывает однонаправленное влияние, повышая сократительные характеристики как быстрой, так и медленной мышц при стимуляции карбахолином.

5. Денервация мышц сенсибилизированных мышей оказывает разнонаправленное действие на сократительные свойства быстрой и медленной мышц в ответ на хлористый калий в этих условиях:

— в медленной камбаловидной мышце снижается сила сокращения, время развития максимального напряжения, время полурасслабления;

— в быстрой мышце длинный разгибатель пальцев повышается сила и скорость сокращения и время плато.

6. Аппликация колхицина на седалищный нерв вызывает изменения сократительных параметров на карбахолин, повышая силу сокращения, время полурасслабления и время плато в камбаловидной мышце. В длинном разгибателе пальцев в этих условиях увеличивается сила сокращения, время развития максимального напряжения и время плато.

7. Аппликация колхицина на седалищный нерв мыши повышает силу.

107 сокращения, время развития максимального напряжения и время полурасслабления как быстрой, так и медленной мышц мыши при стимуляции хлористым калием.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.С., Капитонова М. Д., Рахматуллин И. М. Об изменении деятельности скелетных мышц при сенсибилизации и анафилаксии. // Научные труды конф. молодых ученых.- 1964.-N 15.- С. 3 8.
  2. Адо А. Д. Антигены как чрезвычайные раздражители нервной системы. / М: Медгиз.- 1952.- С. 203.
  3. Адо А.Д., Гинецинский А. Г. Анафилактическая контрактура скелетной мышцы // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1964.Т. 18.-Вып. 4−5.-N 10−11.- С. 64−67.
  4. Адо А.Д., Гинецинский А. Г., Шамарина Н. М. Аллергическая реакция скелетной мышцы // Физиол. журн. СССР.- 1946.- Т.32.- N 1.- С. 76−88.
  5. Адо А. Д. Общая аллергология / М.: Медицина. 1978.- С. 464.
  6. Я.И. Трофическая функция нервной системы / М.: Наука. 1990. -С. 672.
  7. И.Г. Современные представления о взаимодействиях регулирующих систем: нервной, эндокринной и иммунной // Успехи физиол. наук.- 1996.- Т.27.- N 1.- С. 3−20.
  8. Г. Н., Чалисова Н. И. Роль нейротрофических факторов в адаптационных процессах в нервной системе // Рос. физиологический журнал.- 1995.- Т.81.- N 8.- С.12−17.
  9. Р.Х., Филиппов Е. Б. Изменение силовых характеристик мышечных волокон с помощью фотоэлектрического преобразователя // Физиол. журн. СССР.- 1986.- Т.72, — N 3, — С. 387−390.
  10. Ю.Балезина О. П., Букия А. Н., Лаптева В. И. Модуляция рианодином и дантроленом Са2+ зависимого выброса медиатора в нервно-мышечном синапсе мыши // Тезисы докладов XVIII съезда физиологического общества им. И. П. Павлова. Казань.- 2001.- С. 23.
  11. П.Балезина О. П., Посконова М. А. Влияние ингибиторов ацетилхолинестеразы на процесс реиннервации скелетной мышцы мыши109
  12. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1988.- Т. 106.- N 10.- С. 490−492.
  13. Дж. Мышцы, молекулы и движение.- М.: Мир.- 1970.-С. 256.
  14. Р., Классен X., Денерт X., Деринг X. Эксперименты на изолированных препаратах гладких мышц / М.: Мир.- 1985.- С. 201.
  15. П.Богданов Э. И., Фасхутдинов P.P. Сократительные свойства мышц при нарушениях периферической иннервации (обзор) // Журн. неврологии и психиатрии им. Корсакова.-1991.- Т.91.- Вып.2.- С. 129−132.
  16. А. А. Биохимические аспекты электромеханического сопряжения.- М.: Изд-во Московского ун-та.- 1977.- С. 208.
  17. Г. В. Фармакологические свойства антихолинорецепторных антител // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, — 1989.-T.108.-N9 С. 320−322.
  18. К. Мышечное сокращение / М.: Мир.- 1985.- С. 124.
  19. И.С. Влияние нарушения быстрого аксонного транспорта колхицином на функцию двигательных нервных окончаний амфибий. / Дисс.. канд. мед. наук. Казань, 1982.- С. 123.
  20. Э.К. Аутоаллергический компонент при обширных повреждениях ткани скелетных мышц / Автореф. дисс.. канд. мед. наук.- Казань, 1970.- С. 23.
  21. В.В. Влияние декаметазона на развитие денервационных изменений в быстрой и медленной скелетных мышцах // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1999.- Т.128.- N 7.- С. 51−53.
  22. И.В., Балезина О. П. Облегчение регенерации моторных и сенсорных аксонов мыши под действием, а МСГ и СЕМАКСА // Тезисы докладов XVIII съезда физиологического общества им. И. П. Павлова. Казань.-2001.-С. 48−49.
  23. Влияние сенсибилизации на медленную мышцу морской свинки при нарушении нейротрофического контроля/ Валиуллин В. В., Девятаев A.M., Исламов P.P. и др. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1992.- N 2.- С. 198−200.
  24. Е.М. Факторы нейротрофического контроля ацетилхолиновой рецепции скелетных мышц//Успехи физиол. наук.- 1989.-Т.20.-N 2.-С. 26−45.
  25. Е.М., Полетаев Г. И., Хамитов Х. С., Уразаев А. Х. Первичные постденервационные изменения электрогенных свойств мышечной мембраны у млекопитающих// Успехи современной биологии.- 1987.-T.104,N6.-C. 412−425.
  26. Е.М. Нейротрофический контроль функциональных свойств поверхностной мембраны фазных мышечных волокон // Дисс.. докт. мед. наук. Казань, 1985.- С. 573.
  27. Е.М., Полетаев Г. И. Влияние блокады аксонного транспорта на токи концевой пластинки мышечных волокон лягушки // Нейрофизиология.- 1985.- Т. 17.- N 2.- С. 204−211.1.l
  28. E.M., Фросин В. Н. Неквантовый выход ацетилхолина из двигательных нервных окончаний и денервационные изменения мембраны мышечных волокон крысы после блокады аксонного транспорта // Нейрофизиология.- 1984.- Т.16.- N 2.- С. 231−238.
  29. Е.М., Полетаев Г. И. Влияние денервации и возможные механизмы нейротрофического контроля хемочувствительной и электрогенной мембран скелетных скелетных мышечных волокон // Успехи физиол. наук.- 1982.-Т.13.-N 3.-С. 9−30.
  30. Е.М., Наследов Г. А., Полетаев Г. И. Электрические и холинорецептивные свойства мембраны мышечных волокон после блокады аксоплазматического транспорта колхицином // Нейрофизиология.- 1980.- Т. 12.- N 5.- С. 550−557.
  31. В.А. Механизм неквантового освобождения медиатора из двигательных нервных окончаний / Дисс.. канд. мед. наук. Казань.-1990.- С. 135.
  32. Гаусманова-Петрусевич И. Мышечные заболевания / Варшава: Польское гос.мед.изд.- 1971.- С. 440.
  33. .М. Теоретическая и клиническая электромиография / Л.: Наука. -1990.- С. 230.
  34. .М., Санадзе А. Г. Анализ нарушения сократительной функции мышцы по оценкам степени потенциации вызванного механического ответа мышцы // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.-1985.- Т.100.- N 5.- С. 552−554.
  35. .М., Ильина И. А. Нервно-мышечные болезни / М.: Медицина.-1982, — С. 352.
  36. .М. Роль нарушений нервной трофики в механизмах формирования нервно-мышечных заболеваний // Нервный контроль структурно -функциональной организации скелетных мышц.-Л.- 1980.-С. 119−141.112
  37. А.Г., Шамарина Н. М. Тономоторный феномен в денервиро-ванной мышце // Успехи соврем, биологии.- 1942.- Т. 15.- N 2.- С. 283 294.
  38. А.Н. Механизмы аллергических реакций.- Киев: Госмедиздат УССР.-1961.-С. 264.
  39. А.Н., Шиманский Действие сыворотки на денервированную лапку // Каз.мед. журнал.- 1937.- N 7.- С. 904−908.
  40. М.М. Нейрогуморальные механизмы регуляции мышечной деятельности / М.: Наука.- 1965.- С. 234.
  41. B.C., Левик Ю. С. Скелетная мышца. Структура и функция / М.: Наука.- 1985.- С. 141.
  42. И.С., Зебрев А. И., Богуш Н. Л., Алешкин В. А., Пономарева A.M. Экспериментальная модель для разработки и оценки способов контроля немедленной аллергии // Патол. физиол. и эксперим. терапия.- 1986.- N 4.-Р. 18−23.
  43. И.С. Немедленная аллергия клетки / М.: Медицина.- 1976.- С. 153.
  44. A.M., Теплов А. Ю., Бочкова Л. А., Рахматуллин И. М. Участие гуморальных факторов в регуляции сократительного ответа скелетной мышцы // Тезисы докладов III съезда физиологов Сибири и Дальнего Востока. Новосибирск.- 1997а.- С. 56.
  45. A.M., Теплов А. Ю., Бочкова Л. А. Механомиография изолированного препарата диафрагмальной мышцы мыши при электрической и гуморальной стимуляции // В сб. «Материалы научной конференции, посвященной 35-летию ЦНИЛ КГМУ». Казань.- 1997b.- С. 36. из
  46. A.M. Механизмы аллергических реакций скелетных мышц / Дисс.. докт. мед. наук. Казань.- 1996.- С. 215.
  47. A.M., Валиуллин В. В. Избирательное влияние сенсибилизации на фенотип быстрой и медленной скелетных мышц морской свинки // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины,-1994.-N2.- С. 191−193.
  48. A.M., Валиуллин В. В., Валиуллина М. Влияние сенсибилизации на медленную мышцу морской свинки при нарушении нейротрофического контроля И Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1992.- N 2.- С. 198−200.
  49. A.M., Теплов А. Ю. Скелетная мышца кошки при анафилактическом шоке // Актуальные вопросы патологии кровообращения.- Оренбург.- 1987.- С. 38−39.
  50. A.M., Теплов А. Ю., Рахматуллин И. М. Электрофизиологический анализ анафилактической реакции быстрой и медленной скелетной мышцы кролика // Проблемы патологии в эксперименте и клинике.- Львов, — 1986.- С. 41−42.
  51. П.П. Ганглиолитики / Л.: Медгиз.- 1959.- С. 118.
  52. Р.А., Валиуллин В. В. Катаболический эффект анаболического стероида в скелетной мышце при нарушении нейротрофического контроля // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, — 1999.-T.127.-N6.-C. 17−24.
  53. Г. А. О рефлексах на кровообращение и дыхание, вызванных антигенами с хеморецепторов скелетных мышц // Патол. физиол. и эксперим.терапия.- I960.- N 2.- С. 37.
  54. Р.П. Нервно-трофическая регуляция пластической активности мышечной ткани / М.: Наука.- 1974.- С. 239.
  55. Ильчевич Н.В.и др. Антитела и регуляция функций организма / Киев: Наукова Думка.- 1986.- С. 248.
  56. Иммунологические методы. Под ред. Фримеля Г. / М.: Медицина.- 1987.-С. 472.
  57. Иммуноцитохимические и сократительные характеристики денервированных мышечных волокон при сенсибилизации / Девятаев A.M., Валиуллина М. Е., Теплов А. Ю. и др. // Функциональные резервы и адаптация.- Киев.- 1990.- С. 289−291.
  58. М.И., Рогозкин В. А. Биохимия мышечной деятельности / Киев: Здоровье.- 1989.- С. 142.
  59. М.Э., Рахматуллин И. М. Об изменении функционального состояния проприорецепторов скелетных мышц при сенсибилизации и анафилаксии // Аллергия и реактивность.- М.-Львов.- 1969.- Т.1.- С. 122 127.
  60. Н.В., Посконова М. А., Прудникова М. А., Чайлахян Л. М. Электрофизиологические характеристики мышечных волокон при денервации И Биофизика.- 1989.- Т.34, — N 1.- С. 97−100.
  61. В.П., Боровиков Ю. С. Изучение состояния сократительного аппарата при развитии патологического процесса в мышцах // Цитология.-1981.- Т.23.- N 9.- С. 1003−1008.115
  62. Клиническая иммунология и аллергология / Под ред. Л. Иегера: в 3-томах.- М.: Медицина.- 1986.- Т.1.- С. 476.
  63. С. и др. Механизмы иммунопатологии / Коен С., Уорд П. А., Мак-Класки Р.Т.- М.: Медицина.- 1983.- С. 398.
  64. С.А., Адамян С. Я. Особенности строения и функционирования Т системы мышечных волокон // Тезисы докладов XVIII съезда физиологического общества им. И. П. Павлова. Казань.- 2001.- С. 130.
  65. Г. Н. Патофизиология на рубеже нового столетия. Тезисы докл. II Российского международного конгресса по патофизиологии / Москва. 2000.- С. 6−10.
  66. Г. Н. Болезни регуляции // Клинич. Медицина.- 1997.-Т.75.- N 7.- С. 4−7.
  67. Г. Н., Адрианов О. С., Бехтерева Н. П., Неговский В. А., Судаков К. В., Хананашвили М. М. Интегративная деятельность нервной системы в норме и при патологии // Вестник РАМН.- 1995.- N 8.- С. 32−36.
  68. Г. Н., Луценко В. К. Значение нейротрофических факторов для патологии нервной системы // Успехи современной биологии.- 1995.-T.115.-N1.- С. 31−48.
  69. Г. Н. Патология регуляторных механизмов // Патол. физиол. и эксперим. терапия.- 1990.- N 2.- С. 3−8.
  70. Г. Н. Расстройства нервной регуляции // Патология нервной регуляции функций.- М., 1987.- С. 5−41.
  71. Крыжановский Г. Н.и др. Патология синаптического аппарата мышцы / Крыжановский Г. Н., Поздняков О. М., Полгар А.А.- М.: Медицина.-1974.- С. 184.
  72. Г. Н. Системная дезинтеграция и растормаживание функциональных структур как общепатологические закономерности // Патол. физиол. и эксперим. терапия.- 1977.-N 5.- С. 33−41.116
  73. В.В. Некоторые аспекты регуляции мышечного сокращения (аналитич. обзор) // Структурные основы и регуляция биологической подвижности.- М.- 1980.-С. 221−271.
  74. Лечение обменных нарушений при наследственных миодистрофиях (Обзор) / Бадалян JI.O., Темин П. А., Мухин К. Ю., и др. // Журн. неврологии и психиатрии им. Корсакова.- 1986.- Т.86.- Вып. 11.- С. 17 131 720.
  75. Н.В. Фиксация антигена клетками сенсибилизированных животных// Вестник АМН СССР.- 1963.- N.4.-C. 31.
  76. Механизмы нейрональной регуляции мышечной функции / Под ред. Наследова Г. А.- Д.: Наука.- 1988, — С. 137.
  77. Т.В., Копоненко B.C. Зависимость работы мышцы от нагрузки при действии гетерогенного белка // Аллергия и реактивность организма.-М.-Львов.- 1969.- Т.1.-С. 115−116.
  78. Г. А. Некоторые аспекты эволюции электромеханической связи в скелетных мышцах // Тезисы докладов XVIII съезда физиологического общества им. И. П. Павлова. Казань.- 2001, — С. 170.
  79. Г. А., Катина И. Е., Житникова Ю. В. Фармакологический анализ различий в механизме электромеханической связи у высших и низших позвоночных // Тезисы докладов XVIII съезда физиологического общества им. И. П. Павлова. Казань.- 2001.- С. 170.
  80. Г. А., Радзюкевич Т. Л. Терентьев Д.А. Роль связывания кальция с наружной мембраной в регуляции электромеханической связи в раннем миогенезе // Докл. РАН, — 2000.- Т. 370.- N 4.- С. 559−561.
  81. Г. А. Нейротрофический контроль функционирования электромеханической связи в скелетных мышечных волокнах // Механизмы нейрональной регуляции мышечной функции.- Л.: Наука, 1988.- С. 42−52.
  82. Г. А. Тоническая мышечная система позвоночных / Л.: Наука.-1981.-С. 187.117
  83. Нервный контроль структурно-функциональной организации скелетных мышц / Под ред. Наследова Г. А.- Л.: Наука,-1980.-С. 167.
  84. Г. А., Радзюкевич Т. Л. Роль калиевой проницаемости в формировании потенциалов действия денервированных мышечных волокон лягушки // Биофизика.- 1980.- Т.26.- N 5.- С. 814−816.
  85. Г. А., Скоробовичук Н. Ф., Лапшина И. Б. О различии между ацетилхолиновой и деполяризационной контрактурами // Структурные основы и регуляция биологической подвижности.- М.- 1980.- С. 285−288.
  86. Е.Е. Влияние карбахолина на миниатюрные потенциалы и токи концевой пластинки скелетной мышцы крысы // Нейрофизиология.-1982.- T.14.-N2.-C. 185−189.
  87. Е.Е., Гиниатуллин Р. А. Прекращение пресинаптического действия карбахолина тубокурарином // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины.- 1979.- Т.87.- N 2.- С. 171−174.
  88. Т.И. Неквантовая секреция ацетилхолина из двигательных нервных окончаний, пути ее регуляции и функциональное значение при118инактивации ацетилхолинестеразы / Автореферат дисс.. канд. биол. наук. Казань.- 1990.- С. 18.
  89. JI.A. Теория адаптационно-трофического влияния нервной системы /Избранные труды.- М.: Медицина.- 1962.- Т.2.- С. 227−234.
  90. JI.A. Эволюционный принцип в применении к физиологии центральной нервной системы // Успехи соврем, биологии.- 1942.- Т. 15.-N3.-C. 257−272.
  91. О.Я., Собиева З. И. Об изменении антигенной структуры мышечной ткани под влиянием нервно-дистрофического процесса // Доклады АН СССР.- 1963.- Т.138.- N 5.- С. 1241−1244.
  92. И.П. О трофической иннервации / Полное собрание сочинений.- М.: -1951.-Т. 1.- С.577−582.
  93. И.П. Усиливающий нерв сердца / Полное собрание сочинений.-М.: 1951.-Т.1.- С.419−457.
  94. Ч.В. Иммунология. Под ред. У. Пола, в 3 томах / Берзовски Д. А., Берковер А.Дж., Браун Э.Дж. и др.- М.: Мир.- 1989.- Т.З.- С. 170 247.
  95. Р.В. Иммунология / М.: Медицина.- 1983.- С. 367.
  96. Повышение физиологических резервов скелетных мышц в эксперименте с использованием низкомолекулярных лимфопептидов / Рахматуллин И. М., Антоненко В. Т., Теплов А. Ю. и др. // Функциональные резервы и адаптация.- Киев.- 1990.- С. 373−376.
  97. Д. Ван Норден С. Введение в иммуноцитохимию: современные методы и проблемы // М.: Мир.- 1987.- С. 78.119
  98. Г. И. Гуморальная регуляция нервно-мышечной передачи и нейротрофический контроль скелетного мышечного волокна // Каз. мед. журнал.- 2001.- Т.82. -N 5.- с. 321−325.
  99. Г. И. Денервационные изменения мембраны мышечного волокна // Нервный контроль структурно функциональной организации скелетных мышц.- JL- 1980 — С. 7−21.
  100. В.И. Сенсибилизация// БМЭ.- 1984.-Т.2.-С. 109−111.
  101. И.М. Некоторые механизмы аллергической реакции скелетной мышцы / Автореф. дис.. докт. мед. наук.- Казань.- 1965.- С. 38.
  102. И.М., Девятаев A.M., Теплов А. Ю. Системная анафилаксия скелетных мышц кошки. Электрофизиологические исследования // Экспериментальная и клиническая иммунология и аллергология.- Чебоксары, — 1985.-С. 117−119.
  103. И.М., Девятаев A.M., Теплов А. Ю. Этапы развития исследований аллергической реакции в скелетной мышце // Реактивность и резистентность: фундаментальные и прикладные вопросы.- Киев.- 1987.- С. 123−125.
  104. Н.П. Общие закономерности дифференцировки и пластичности скелетных мышц: Автореф. дис.. докт.мед.наук.-Казань.- 1982.- С. 33.
  105. Н.П., Никольский Е. Е. Изменение свойств быстрой и медленной мышцы крысы при перекрестной реиннервации // Физиол. журн. СССР.- 1978.- Т.64.-С.1117−1123.
  106. Скелетная мышца: структурно-функциональные аспекты адаптации / Шмерлинг М. Д., Филюшина Е. Е., Бузуева И. И. и др.- Новосибирск: Наука.-1991.-С. 121.
  107. В.И., Шуба М. Ф. Нервно-мышечная физиология // Киев: Вища школа.- 1986.-С. 220.120
  108. А.Д. Учение о нервной трофике как путь иследовательской работы в медицине / Избранные труды. -1955.- С. 415 421.
  109. А.Ю. Сократительные свойства диафрагмальной мышцы морской свинки в норме и патологии / Дисс.. канд. биол. наук.- 1994.-Казань.-С. 122.
  110. А.Ю., Рахматуллин И. М., Девятаев A.M. Н рефлекс скелетных мышц при анафилактическом шоке // Актуальные вопросы клинической и экспериментальной аллергологии и иммунологии.-Каунас.- 1986.- С. 38.
  111. Э.Г., Резвяков Н. П. Нейротрофический контроль фазных мышечных волокон // Нервный контроль структурно функциональной организации скелетных мышц.-Л.- 1980.-С. 84−104.
  112. Ф.А., Исмагилов М. Ф. Современные представления о нейротрофическом контроле // Журн. неврологии и психиатрии им. Корсакова.- 1991.-T.91.-N4.-C. 113−116.
  113. Ф.А., Богданов Э. И., Фасхутдинов P.P. Динамика восстановления сократительных свойств скелетных мышц после повреждения периферического нерва // Журн. неврологии и психиатрии им. Корсакова.- 1983.- T.83.-N 11.- С. 1659−1663.
  114. Х.С., Богданов Э. И., Кац Е.М. Силоизмерительные элементы для регистрации сократительных характеристик мышц // Физиол. журн. СССР.- 1983.- Т.69.- N 8.- С. 1113−1115.
  115. А. Механика мышечного сокращения // М.: Мир, — 1972.- С. 179.121
  116. A.M. Об аллергической реакции скелетных мышц // I Всесоюз. конф. патофизиологов г. Казани: Тез.докл.- М., 1950.- С.72−73.
  117. P.P. Автоматизированный анализ механомиограммы и его возможности при диагностике заболеваний нейромоторного аппарата / Автореферат дисс.. канд. мед. наук.- 1997.- Казань.
  118. Н.Д. Нейротрофические факторы и рецепторы к ним. // Нейрохимия.- 1997.- Т.14.- N 1.- С.30−39.
  119. И.Т., Москаленко И. Е. Изменение сократительного аппарата мышц при денервации // Нервный контроль структурно -функциональной организации скелетных мышц.-Л., 1980.-С. 36−51.
  120. Allard В., Bernengo J.C., Rougier O., Jacquemond V. Intracellular Ca2+ -changes and Ca activated К — channel activation induced by acetylcholine at the endplate of mouse skeletal muscle fibres // J. Physiol.- 1996.- V.494.- N 2.- P. 337−349.
  121. Allard В., Lazdunski M., Rougier O. Activation of ATP dependent K+ -channels by metabolic poisoning in adult mouse skeletal muscle: role of intracellular Mg2+ and pH // J. Physiol.- 1995.- V.485.- N 2.- P. 283−296.122
  122. Allard В., Lazdunski M. Pharmacological properties of ATP-sensitive K+ channels in mammalian skeletal muscle cells // Eur. J. Pharmacol.- 1993.-V.236.-N 3.- P. 419−426.
  123. Allen D.G., Westerblad H. The effects of caffeine on intracelllular calcium, force and the rate of relaxation of mouse skeletal muscle // J. Physiol.- 1998.-V.487.-N2.- P. 331−342.
  124. Alonso-deFlorida F. The in vitro effects of calcium and potassium in resensitization of tracheal smooth muscle of the allergyzed guinea pig // Gat. Arch. Allergy Appl. Immun.- 1977.- N 55.- P. 201−214.
  125. Alonso-deFlorida F., del Castillo J., Carmen C. Conzales., V. Sanchez. Anaphylactic reaction of denervated skeletal muscle in the guinea pig// Science.- 1965a.-V. 147.-N 3662.-P. 1155−1156.
  126. Alonso-deFlorida F., del Castillo J., Carmen C. Conzales., V. Sanchez. On the pharmacological and anaphylactic responsiveness of denervated skeletal muscle of the guinea pig// Br. J. Pharmacol.- 1965b.-V.25.-P. 610−620.
  127. Alonso-deFlorida F., del Castillo J., Xavilra Garcia, Gijon E. Mechanism of the Schultz-Dale reaction in the denervated diaphragmatic muscle of the guinea pig// J. Gen. Physiol.- 1968.-V.51.-P. 677−694.
  128. Alshuaib WB, Fahim MA. Effect of exercise on physiological age-related change at mouse neuromuscular junctions // Neurobiol. Aging.- 1990.-V.11.- N 5.- P. 555−561.
  129. Anderson P.J. Antigen-induced bronchial-anaphilaxis in actively sensitized guinea pigs // Allergy. 1980.- V.35.- P. 65−71.123
  130. Apfel S.C., Arezzo J.C., Moran M., Kessler J.A. Effects of admistration off ciliary neurotrophic factor on normal motor and sensory peripheral nerves in vivo // Brain Res.- 1993.- V.604.- P. 1−6.
  131. Arakawa Y., Sendner M., Thoenen H. Survival effect of ciliary neurotrophic factor (CNTF) on chick embryonic motoneurons in culture: comparison with other neurotrophic factors and cytokines // J. Neurosci.- 1990.- V.10.- P. 35 073 515.
  132. Asmussen G., Gaunitz U. Temperature effects on isometric contractions of slow and fast twitch muscles of various rodents-dependence on fibre type composition: a comparative study // Biomed. Biochim. Acta.- 1989a.- V.48.- N 5−6, — P. S536-S541.
  133. Asmussen G., Marechal G. Maximal shortening velocities, isomyosins and fibre types in soleus muscle of mice, rats and guinea-pigs // J. Physiol.- 1989b.- V.416.- P. 245−254.
  134. Austin L., Bower J.J., Bennett T.M., Lynch G.S., Kapsa R., White J.D., Barnard W., Gregorevic P., Byrne E. Leukemia inhibitory factor ameliorates muscle fiber degeneration in the mdx mouse // Muscle Nerve.- 2000.- V.23.- N 11.- P. 1700−1705.
  135. Austin L., Bower J.J., Kurek J.B., Muldoon C.M. Controlled release of leukaemia inhibitory factor (LIF) to tissues // Growth. Factors.- 1997.- V.15.-N1.-P. 61−68.
  136. Austin L., Bower J., Kurek J., Vakakis N. Effects of leukaemia inhibitory factor and other cytokines on murine and human myoblast proliferation // J. Neurol. Sci.- 1992.-V. 112.-N 1−2.-P. 185−191.
  137. Axelsson J., Thesleff S. A study of supersensivity in denervated mammalian skeletal muscle // J.Physiol.- 1959.-V. 149.-P. 178−193.
  138. Balnave C.D., Allen D.G. Evidence for Na+/Ca2+ exhange in intact single skeletal muscle fibres from the mouse // Am. J. Physiol.- 1998.- V.274.- N 4.-P. C940-C946.---------124
  139. Balnave C.D., Allen D.G. The effect of muscle length on intracellular calcium and force in single fibres from mouse skeletal muscle // J. Physiol.-1996.- V.492.- N 3.- P. 705−713.
  140. Barclay C.J. Mechanical efficiency and fatigue of fast and slow muscles of the mouse // J. Physiol.- 1996.- V.497.- N 3.- P. 781−794.
  141. Barclay С J. Effect of fatigue on rate of isometric force development in mouse fast- and slow-twitch muscles // Am. J. Physiol.- 1992.- V.263.- N 5.-P. C1065-C1072.
  142. Barnard W., Bower J., Brown M.A., Murphy M., Austin L. Leukemia inhibitory factor (LIF) infusion stimulates skeletal muscle regeneration after injury: injured muscle expresses lif mRNA // J. Neurol. Sci.- 1994.- V.123.- N 1−2.-P. 108−113.
  143. Bateson D.S., Parry D.J. Motor units in a fast-twitch muscle of normal and dystrophic mice // J. Physiol.- 1983.- V.345.- P. 515−523.
  144. Belluardo N., Westerblad H., Mudo G., Casabona A., Bruton J., Caniglia G., Pastoris O., Grassi F., Ibanez C.F. Neuromuscular junction disassembly and muscle fatigue in mice lacking neurotrophin-4 // Mol. Cell. Neurosci.- 2001.-V.18.-N 1.-P. 56−67.
  145. Bennett T.M., Dowsing B.J., Austin L., Messina A., Nicola N.A., Morrison W.A. Anterograde transport of leukemia inhibitory factor within transected sciatic nerves // Muscle Nerve.- 1999.- V.22.- N 1.- P. 78−87.
  146. Bhoola K.D., Scharter M. Contracture of the denervated rat diaphragm by adrenaline // J. Physiol.-1961.- V.157.- P. 20.
  147. Bidon J.C., Souilem O., Gogny M., Blin M., Tuan Vu A., Jondet A. Effect of temperature reduction on the vas deferens hyperresponsiveness of sensitized mice // J. Auton. Pharmacol.- 1995.- V. 15.- N 4.- P. 227−238.
  148. Blottner D., Luck G. Nitric oxide syntase (NOS) in mouse skeletal muscle development and differentiation myoblasts // Cell. Tissue. Res.- 1998.- V.292.-N2.-P. 293−302.125
  149. Boldyrev A.A., Dupin A.M., Pindel E.I., Severin S.E. Antioxidative properties of histidine-sontaining dipeptides from skeletal muscle of vertebrate // Сотр. Biochem. and Physiol.- 1988.- V.89.- N 2.- P. 245−250.
  150. Bower J., Vakakis N., Nicola N.A., Austin L. Specific binding of leukemia inhibitory factor to murine myoblasts in culture // J. Cell. Physiol.- 1995.-V.164.- N 1.- P. 93−98.
  151. Brooks S.V., Faulkner J.A. The magnitude of the initial injury induced by stretches of maximally activated muscle fibres of mice and rats increases in old age // J. Physiol.- 1996.- V. 497.- N 2.- P. 573−580.
  152. Brooks S.V., Zerba E., Faulkner J.A. Injury to muscle fibres after single stretches of passive and maximally stimulated muscles in mice // J. Physiol.-1995.- V.488.- N 2.- P. 459−469.
  153. Brooks S.V., Faulkner J.A. Skeletal muscle weakness in old age: underlying mechanisms // Med. Sci. Sports Exerc. -1994a.- V. 26.- N 4.- P. 432−439.
  154. Brooks S.V., Faulkner J.A. Isometric, shortening and lengthening contractions of muscle fibre segments from adult and old mice // J. Physiol. -1994b.- V.267.- N 2.- P. C507-C513.
  155. Brooks S.V., Faulkner J.A. Maximum and sustained power of extensor digitorum longus muscles from young, adult and old mice // J. Gerontol.-1991a.- V.46.- N 1.- P. B28-B33.
  156. Brooks S.V., Faulkner J.A. Forces and powers of sow and fast skeletal muscles in mice during repeated contractions // J. Physiol.- 1991b.- V.436.- P. 701−710.
  157. Brooks S.V., Faulkner J.A., McCubbrey D.A. Power outputs of slow and fast muscles of mice // J. Appl. Physiol.- 1990a.- V.68.- N 3.- P. 1282−1285.
  158. Brooks S.V., Faulkner J.A. Contraction-induced iinjury: recovery of skeletal muscles in young and old mice // Am. J. Physiol.- 1990b.- V.258.- N 3.- P. 436−442.
  159. Brooks S.V., Faulkner J.A. Contractile properties of skeletal muscle from young, adult and aged mouse // J. Physiol.- 1988.- V.404.- P. 71−82.126
  160. Brotto M.A., Andretta van Leyen S., Nosek C.M., Brotto L.S., Nosek T.M. Hypoxia and fatigue-induced modification of function and proteins in intact and skinned murene diaphragm muscle // Pflugers Arch.- 2000.- V. 440.- N 5.-P. 727−734.
  161. Brown M.C., Hopkins W.G., Keynes R.J. Comparison of effects of denervation and botulinum toxin paralysis on muscle properties in mice // J. Physiol.- 1982.- V.329.- P. 439−450.
  162. Bruton J.D., Lannergren J., Westerblad H. Effects of C02-induced acidification on the fatigue resistance of single mouse muscle fibres at 28 degrees С // J. Appl. Physiol.- 1998.- V.82.- N 2.- P. 478−483.
  163. Buffeli M., Busetto G., Cangiano A. The use of in vivo direct drug application to the assesss neural regulation of muscle properties // J. Neurosci. Methods.-2001.-V.106.-N 2.-P. 113−120.
  164. Buller A.J., Eccles J.C., Eccles R.M. Interactions between motoneurones and muscles in respect to the characteristic speeds of their responses // J. Physiol. -I960.- V.150.- P. 417−439.
  165. Buonanno A., Cheng J., Venepally P., Weis J., Calvo S. Activity-dependent regulation of muscle genes: repressive and stimulatory effects of innervation // Acta. Physiol. Scand.- 1998.- V.163.- N 3.- P. S17-S26.
  166. Cairns S.P., Hing W.A., Slack J.R., Mills R.G., Louselle D.D. Role ofry, extracellular Ca. in fatigue of isolated muscle 11 J. Appl. Phisiol.- 1998.-V.84.-N 4.- P. 1395−1406.
  167. Cairns S.P., Westerblad H., Allen D.G. Changes of tension and Ca2+.i during adrenoreceptor activation of single, intact fibres from mouse skeletal muscle // Pflugers Arch.- 1996.- V.425.- N 4.- P. 150−155.
  168. Cairns S.P., Westerblad H., Allen D.G. Changes of tension and Ca2+.i during beta-adrenoceptor activation of single, intact fibres from mouse skeletal muscle // Pflugers Arch.- 1993.- V.425.- N 1−2.- P. 150−155.127
  169. Cangiano A., Buffelli M., Busetto G., Tognana E., Pasino E. Studies on anterograde trophic interactions based on general muscle properties // Arch. Ital. Biol.- 1997.- V.135. -P. 331−341.
  170. Cannon W. B, Rosenblueth A. The supersensitivity of denervated structures. A law of denervation / New York. The Macmillan Company, 1949.- 245 p.
  171. Chin E.R., Balnave C.D., Allen D.G. Role of intracellular calcium and metabolites in low-frequency fatigue of mouse skeletal muscle // Am. J. Physiol.- 1997.- V.272.- P. C550-C559.
  172. Chin E.R., Allen D.G. The role of elevations in intracellular Ca2+. in the development of low frequency fatigue in mouse single muscle fibres // J. Physiol.- 1996.- V.491.- P. 813−824.
  173. Clansy J.S., Takeshima H., Hamilton S.L., Reid M.B. Contractile function is unaltered in diaphragm from mice lacking calcium release channel isoform 3 // Am. J. Physiol.- 1999.- V. 277.- N 4.- P. R1205-R1209.
  174. Close R.I. Dynamic properties of mammalian skeletal muscles// Physiol. Rev.- 1972.- V.52.- P. 129−197.
  175. Close R.I., Hoh J.K.Y. The after-effects of repetitive stimulation on the isometric twitch contractions of rat fast skeletal muscle // J. Physiol.- 1968.- V.197.- P. 461−477.
  176. Csernoch L., Bernengo J.C., Szentezi P., Jacquemond V. Measurements ofIintracellular Mg concentration in mouse skeletal muscle fibres with the fluorescent indicator mag-indo-1 // Biophys. J.- 1998.- V.75.- N 2.- P. 957−967.
  177. Curtis R., Adrian K.M., Zhu Y., Harkness P.J., Lindsay R.M., DiStefano P. S. Retrograde axonal transport of ciliary neurotrophic factor is increased by peripheral nerve injury // Nature.- 1993.- V. 365.- P. 253−255.
  178. Dahlstrom A. Effect of colchicine on transport of amine storage granules in sympathetic nerves of rat // Eur. J. Pharmacol.- 1968.- V.5.- N 1.- P. 111−113.
  179. Dale H.H., Gasser H.S. The pharmacology of denervated mammalian muscle. Part I. The nature of the substances producing contracture // J. Pharmacol. Exp. Ther.- 1926.- V.29.- P. 53−67.
  180. Dangain J., Neering I.R. Effect of caffeine and high potassium on normal and dystrophic mouse EDL muscles at various developmental stages // Muscle Nerve.- 1993.-V. 16.-N l.-P. 33−42.
  181. Dangain J., Neering I.R. Effect of low Ca solution on muscle contraction of developing, preclinical dystrophic (dy2j) mice // Muscle Nerve.- 1992.-V.15.-N l.-P. 77−86.
  182. Davis H.L., Bressler B.H., Jasch L.G. Myotrophic effects on denervated fast-twitch muscles of mice: correlation of physiologic, biochemical and morphologic findings // Exp. Neurol.- 1988.- V.99.- N 2.- P. 474−489.
  183. Davis S., Aldrich Т.Н., Stahl N., Pan L., Taga Т., Kishimoto Т., Ip N.Y., Yancopoulos G.D.
  184. FP and gpl30 as heterodimerizing signal transducers of the tripartite CNTF receptor // Science.- 1993a.- V.260.- P. 1805−1808.
  185. DeChiara T.M., Vejsada R., Poueymirou W.T., Acheson A., Suri C., Conover J.C., Friedman В., McClain J., Pan L., Stahl N. Mice lacking the129
  186. CNTF receptor, unlike mice lacking CNTF, exhibit profound motor neuron deficits at birth I I Cell.- 1995.- V.83.- N 2.- P. 313−322.
  187. Deviataev A.M., Teplov A.Yu., Kim K.V., Dzamukov R.A., Valiullin V.V. Unlike denervation axonal transport blockade doesnt’t cause anaphylactic contraction in slow skeletal muscle//Brain Pathology.- 1994.-V.4.- P. 567.
  188. Deviataev A.M., Teplov A. Yu, Valiullin V.V. The role of mast cells in mechanisms of skeletal muscle anaphylaxis // Allergy.- 1992.- V.47.- N 12.-P. 273.
  189. Dezaki K., Kimura I. Acetylcholine sensitivity of biphasic Ca2+ mobilization induced by nicotinic receptor activation at the mouse skeletal muscle endplate // Br. J. Pharmacol.- 1998.- V.123.- N 7.- P. 1418−1424.
  190. Djabali K., Zissopoulou A., de Hoop M.J., Georgatos S.D., Dotti C.G. Peripherin expression in hippocampal neurons induced by muscle soluble factor (s) // Cell. Biol.- 1993.- V.123.- N 5.- P. 1197−1206.
  191. Di Giamberrardino L., Courand J.Y. Rapid accumulation of high molecular weight acetylcholinesterase in transected sciatic nerve // Nature.- 1978.-V.271.-N5641.- P. 170−172.
  192. Donato R., Cheema S., Finkelstein D., Bartlett P., Morrison W. Role of leukaemia inhibitory factor (LIF) in rat peripheral nerve regeneration //Ann. Acad. Med. Singapore.- 1995.- V.24.- N 4.- P. 94−100.
  193. Dowsing B.J., Hayes A., Bennett T.M., Morrison W.A., Messina A. Effects of LIF dose and laminin plus fibronectin on axotomized sciatic nerves // Muscle Nerve.- 2000.- V.23.- N 9.- P. 1356−1364.
  194. Drachman D.B., Johnston N. M Neurotrophic regulation of dynamic properties of skeletal muscles // J. Physiol.- 1975.-V.252.-P. 657−667.130
  195. Dribin L.B., Simpson S.B. Histochemical and morphological study of dystrophic (c57BL/6jdy2j/dy2j) and normal muscle // Exp. Neurol. 1977.-V.82.-N2.- P. 404−412.
  196. Dulhunty A.F. Activation and inactivation of excitation-contraction coupling in rat soleus muscle // J Physiol. 1991.- V.439- P. 605−626.
  197. Dulhunty A.F., Cage P.W. Effects of extracellular calcium concentration and dihydropyridines on contraction in mammalian skeletal muscle // J Physiol.- 1988.- V.399.-P. 63−80.
  198. Dulhunty A.F. Slow potassium contractures in mouse limb muscles // J. Physiol.-1981.- V. 314.- P. 91−105.
  199. Dulhunty A.F. Potassium contractures and mechanical activation in mammalian skeletal muscles // J. Membr. Biol.- 1980.- V.57.- N 3.- P. 223 233.
  200. Dunn J.F., Tracey I., Radda G.K. A 31P-NMR study of muscle exercise metabolism in mdx mice: evidence for abnormal pH regulation // J. Neurol. Sci.- 1992.- V. l 13.- N 1.- P. 108−113.
  201. Duty S., Allen D.G. The effects of glibenclamide on tetanic force and intracellular calcium in normal and fatigued mouse skeletal muscle // Exp. Physiol.- 1995.- V.80.- N 4.- P. 529−541.
  202. Duty S., Allen D.G. The intracellular calcium concentration in isolated single fibres of mouse skelatal muscle during fatiguing stimulation // Pflugers Arch.- 1994.- V.427.- N 1−2.- P. 102−109.
  203. Dorlocher M., Irintchev A., Brinkers M., Wernig A. Effects of enchanced activity on synaptic transmission in mouse extensor digitorum longus muscle // J. Physiol.-1991.- V. 436.- P. 283−292.
  204. Eberstein A., Eberstein S. Electrical stimulation of denervated muscle: is it worthwhile? // Med. Sci. Sports. Exerc.- 1996.- V. 28.- N 12.- P. 1463−1469.
  205. Eccles J.C. Iterrelationship between the nerve and muscle cell // The effects of use and disuse on neuromuscular functions / Eds E. Gutmann, P. Hnik. Prague/- 1963.- P. 19−28.131
  206. Eddinger Thomas J., Moss Richard L. Mechanical properties of skinned single fibers of identified types from rat diaphragm // Am. J. Physiol.-1987.- V.253.- N 2.- P. 210−218.
  207. Eisenberg B.R., Kuda A.M. Discrimination between fiber population in mammalian skeletal muscle by using ultrastructural parameters // J. Ultrastruct.- 1976.- V.54.- P. 76−88.
  208. Elving H., Lande S., Hygren H. Sensibilization // J. Immunol. Meth.-1980.- V.38.-N ¾.- P. 257.
  209. Evans R.H., Smith J.W. The effect of catecholamines on the influx of calcium and the development of tension in denervated mouse diaphragm muscle // Br. J. Pharmacol.- 1976.- V.58.- N 1.- P. 109−116.
  210. Evans R.H., Schild H.O., Thesleff S. Effects of drugs on depolarized plain muscle // J. Physiol.- 1958.- V.143.- P. 474−485.
  211. Fahim M.A. Endurance exercise modulates neuromuscular junction of C57BL/6NNia aging mice // J. Appl. Physiol- 1997.- V.83.- N 1.- P. 59−66.
  212. Fahim M.A., Holley J. A., Robbins N. Topographic comparison of neuromuscular junctions in mouse slow and fast twitch muscle // J. Neuroscience.- 1984.- V.13.- N 1.- P. 227−235.
  213. Fernandez H.L., Ramirez B.U. Muscle fibrillation induced by blockage of axoplasmic transport in motor nerves // Brain Res.- 1974.- V.79.- N 3.- P. 385 395.
  214. Finkelstein D.I., Bartlett P.F., Home M.K., Cheema S.S. Leukemia inhibitory factor is a myotrophic and neurotrophic agent that enhances the reinnervation of muscle in the rat // J. Neurosci. Res.- 1996.- V.46.- N l.-P. 122−128.
  215. Fisher J., Levkovitch-Verbin H., Schori H., Yoles E., Butovsky O., Kaye J.F., Ben-Nun A., Schwartz M. Vaccination for neuroprotection in the mouse optic nerve: implications for optic neuropathies // J. Neuroscience.- 2001.-V.21.-N1.-P. 136−142.132
  216. Fisher J.S., Brown M. Immobilization effects on contractile properties of aging rat skeletal muscle // Aging.- 1998.- V.10.- N 1.- P. 59−66.
  217. Florendo J.A., Reger J.D., Law P.K. Electrophysiologic differences between mouse extensor digitorum longus and soleus muscle // Exp. Neurol. 1983.-V.82.-N2.- P. 404−412.
  218. Forger N.G., Roberts S.L., Wong V., Breedlove S.M. Ciliary neurotrophic factor maintains motoneurones and their target muscles in developing rats // J. Neuroscience.- 1993.- V.13.- P. 4720−4726.
  219. Fowler W.M., Lieberman J.S., Taylor R.G., Abresch R.T., Gardinet G.H. Serotonin-induced contractile and structural changes in fast and slow skeletal muscles in mice // Arch. Phys. Med. Rehabil.- 1985.- V. 66.- N 11.- P. 731 735.
  220. Franco-Obregon A.J., Lansman J.B. Spontaneous opening of the acetylcholine receptor channel in developing muscle cells from normal and dystrophic mice // J. Neurosci. Res.- 1995, — V.42.- N 4.- P. 452−458.
  221. Frank G. Effects of changes in extracellular calcium concentration on the potassium induced contracture of frogs skeletal muscle // J. Physiol.- 1960.-V.151.-P. 518−538.
  222. Fraysse В., Guillet C., Huchet-Cadiou C., Camerino D.C., Gascan H., Leoty C. Ciliary neurotrophic factor prevents unweighting-induced functional changes in rat soleus muscle // J. Appl. Physiol.- 2000.- V.88.- N 5.- P. 16 231 630.
  223. Frenette J., Cote C.H. Modulation of structural protein content of the myotendinous junction following eccentric contractions // Int. J. Sports Med.-2000.- V.21.- N 5.- P. 313−320.
  224. Friedrich О., Elmer Т., Fink K.H.A. Calcium currents during contraction and shortening in ensymatically isolated murine skeletal muscle fibres // J. Physiol.- 1999.- V.517.- N 3.- P. 757−770.
  225. Fu W.M., Yang S.H., Liu S.H., Lin-Shiau S.Y. Influence of muscle activity on the actions of chloride channel blockers in the mouse skeletal muscle // Arch. Int. Pharmacodyn. Ther.- 1994.- V.327.- N 1.- V. 96−112.
  226. Fu W.M., Day S.Y., Lin-Shiau S.Y. Studies on cadmium-induced myotonya in the mouse diaphragm // Naun. Schmied. Arch. Pharmacol. 1989.- V. 340.-N2.-P. 191−195.
  227. Fukada K., Korsching S., Towle M.F. Tissue-specific and ontogenetic regulation of LIF protein levels determined by quantitative enzyme immunoassay // Growth Factors.-1997.- V. 14.- N 4.- P. 279−295.
  228. Gallant E.M., Lentz L.R., Taylor S.R. Modulation of caffeine contractures in mammalian skeletal muscles by variation of extracellular potassium // J. Cell. Physiol- 1995.- V.165.- N 2.- P. 254−260.
  229. Gomez-Pinilla F., Ying Z., Opazo P., Roy R.R., Edgerton V.R. Differential regulation by exercise of BDNF and NT-3 in rat spinal cord and skeletal muscle // Eur. J. Neurosci.- 2001.- V.13.- N 6.- P. 1078−1084.
  230. Gordon A.M., Homsher E., Regnier M. Regulation of contraction in striated muscle // Physiol. Rev.- 2000.- N 80.- N 2.- P. 853−924.
  231. Gordon Т., Vrbova G. Changes in chemosensitivity of developing chick muscle fibres in relation to endplate formation // Pflugers Arch.- 1975.- V.360.-N4.- P. 349−364.
  232. Grange R.W., Cory C.R., Vandenboom R., Houston M.E. Myosin phosphorylation augments force-displacement and force-velocity relationships of mouse fast muscle // Am. J. Physiol.- 1995.- V.269.- N 3.- P. C713-C724.134
  233. Granum В., Gaarder P.I., Eikeset A., Stensby B.A., Lovic M. The adjuvant effect of particles-importance of genetic background and presensitisation // Int. Arch. Allergy Immunol.- 2000.- V. 122.- N 3.- P. 167−173.
  234. Greensmith L., Vrbova G. Motoneurone survival: a functional approach // Trends Neurosci.- 1996.- V.19.- P. 450−455.
  235. Gregorevic P., Hayes A., Lynch G.S., Williams D.A. Functional properties of regenerating skeletal muscle following LIF administration// Muscle Nerve.-2000.- V.23.-N 10.-P. 1586−1588.
  236. Grow M.T., Kushmerick M.J. Chemical energetics of slow and fast twitch muscles of the mouse // J. Gen. Physiol.- 1982.- V.79.- N 1.- P. 147−166.
  237. Guillet C., Auguste P., Mayo W., Kreher P., Gascan H. Ciliary neurotrophic factor is a regulator of muscular strength in aging // J. Neuroscience.- 1999.-V.19.-N4.-P. 1257−1262.
  238. Gulati Adarsh K. Long-term retention of regenerative capability after denervation of skeletal muscle, and dependency of late differentiation on innervation. // Anat. Rec.- 1988.- N 4.- P.429−434.
  239. Gundersen K. Determination of muscle contractile properties: importance of the nerve // Acta Physiol. Scand.-1998.- V.162.- P. 333−341.
  240. Gundersen К., Eken T. The importance of frequency and amount of electrical stimulation for the contractile properties of denervated rat muscles // Acta. Physiol. Scand.- 1992.- V.145.- N 1.- P. 49−57.
  241. Guth L., Samaha F.J. Procedure for the histochemical demonstration of actomyosin ATPase // Exp.Neurol.- 1970.-V.28.-P. 365−367.
  242. L. «Trophic» influences of nerve on muscle // Physiol. Rev.- 1968.-V.48.-N.4.-P. 645−687.
  243. Guth L., Watson P.K. The influence of innervation on the soluble proteins of slow and fast muscles of the rat // Exp. Neurol.- 1967.- V.17.- N 1.- P. 107 117.
  244. Guttmann E., Melichna J. Contractile and histochemical properties of denervated and reinnervated fast and slow skeletal muscle of135newborn and adult guinea-pigs // Physiol. Bohemoslov.- 1978.- У.21.- N 1.-P. 35−42.
  245. Guttmann E. Neurotrophic relations // Ann. Rev. Physiol.- 1976.-V.38.- Nl.-P. 177−216.
  246. Guttmann E., Melichna J., Syrovy J. Contraction properties and ATP-ase activity in fast and slow muscle of the rat during denervation // Exp. Neurol. 1972.- V.36.- P. 488−497.
  247. Hall Moire Т., Maleque M.A., Wadsworth R.M. The role of extracellular calcium in the contraction produced by acetylcholine in chronically denervated muscle // Br. J. Pharmacol.- 1977.- V.61.- N 4.- P. 627−638.
  248. Hall Moire Т., Maleque M.A., Wadsworth R.M. Desensitization in the chronically denervated soleus muscle of the mouse // Br. J. Pharmacol.- 1975.-V.55.-Nl.-P. 125−131.
  249. Harborne A.J., Smith M.E. Agonist-induced potentiation of acetylcholine sensitivity in denervated skeletal muscle // Nature.- 1979.- V.282.- N 5734.- P. 85−87.
  250. Harborne A.J., Smith M.E., Jones R. The effect of hydrolytic enzymes on the acetylcholine sensitivity of the skeletal mascle cell membrane // Pflugers Arch.- 1978.- V.377.- N 2.- P. 147−153.
  251. Harris J.B. Denervation supersensitivity some pharmacological curiosities// Trends. Neurosci.- 1980.-V.3.-N9.- P. 224−225.
  252. Harris A.J. Inductive function of the nervous system // Annual Rev. Physiol.- 1974.- V.36.-P. 251−307.
  253. Hayes A., Williams D.A. Contractile function and low-intensity exercise effects of old dystropic (mdx) mice // Am. J. Physiol.- 1998.- V.274.- N 4.- P. C1138-C1144.
  254. Head S.Y. Membrane potential, resting calcium and calcium transients in isolated muscle fibres from normal and dystrophic mice // J. Physiol.- 1993.-V.469.-P. 11−19.136
  255. Hehl S., Neumcke B. Diverse effects of pinacidil on KATP channels in mouse skeletal muscle in the presence of different nucleotides // Cardiovasc. Res.- 1994a.- V. 28.- N 6.- P.841−846.
  256. Hehl S., Neumcke B. KATP channels of mouse skeletal muscle: mechanism of channel blockage by AMP-PNP // Eur. Biophys. J.- 1994b.- V. 23.- N 4.- P. 231−237.
  257. Hehl S., Neumcke B. Negative cooperativity may explain flat concentration-response curves of ATP-sensitive potassium channels // Eur. Biophys. J.- 1993.- N22.- N 1.- P. 1−4.
  258. Helgren M.E., Squinto S.P., Davis H.L., Parry D.Y., Boulton T.G., Heck C.S., Zhu Y., Yancopoulos G.D., Lindsay R.M., DiStefano P. S. Trophic effect of ciliary neurotrophic factor on denervated skeletal muscle // Cell.- 1994.-V.76.- P. 493−504.
  259. Herbison G.J., Jawed M.M., Ditunno J.F. Muscle fiber types // Arch. Phys. Med. Rehabil.- 1982.- V.63.- N 5.- P. 227−230.
  260. Herrera A.A., Grinell A.D. Contralateral denervation causes enhanced transmitter release from frog motor nerve terminal // Nature.- 1981.- V.291.-P. 495−497.
  261. Hirschfield W., Moody M.R., O’Brien W.E., Gregg A.R., Bryan R.M., Reid M.B. Nitric oxide release and contractile properties of skeletal muscles from mice deficient in type III NOS // Am. J. Physiol.- 2000.- V. 278.- N 1.- P. R95-R100.
  262. Hofmann W.W., Peacock J.H. Postjunxctional changes induces by partial interruption of axcoplasmic flow in motor nerves // Exp. Neurol.- 1974.- V.41.-P. 345−356.
  263. Hollingworth S., Zhao M., Baylor S.M. The amplitude and time course of the myoplasmic free Ca2+. transient in fast-twitch fibers of mouse muscle // J. Gen. Physiol.- 1996.- V.108.- N 5.- P. 455−469.137
  264. Hooper S.L., Weaver A.L. Motor neuron activity is often insufficient to predict motor response // Curr. Opin. Neurobiol.- 2000.- V. 10.- N 6.- P. 676 682.
  265. Hudson C.S., Dyas B.K., Rash J.E. Changes in number and distribution of orthogonal arrays during postnatal muscle development // Brain. Res.- 1982.-V.256.-N 1.-P. 91−101.
  266. Hughes S.M. Muscle development: electrical control of gene expression // Curr. Biol.- 1998.- V.8.- N 24.- P. R892-R894.
  267. Hussain M., Wareham A.C. Rundown and reactivation of ATP-sensitive potassium channels (KATP) in mouse skeletal muscle // J. Membr. Biol.-1994a.-V.141.-N 3.-P.257−265.
  268. Hussain M., Wareham A.C., Head S.I. Mechanism of action of a K+ channel activator BRL 38 227 on ATP-sensitive K+channels in mouse skeletal muscle fibres // J. Physiol.- 1994b.- V.478.- P. 523−532.
  269. Huxley A.F. Review lecture: Muscular contraction // J. Physiol.- 1974.-V.243.-P. 1−44.
  270. Ingalls C.P., Warren G.L., Williams J.H., Ward W.W., Armstrong R.B. E-C coupling failure in mouse EDL muscle after in vivo eccentric contractions // J. Appl. Physiol.- 1998.- V.85. -N 1.- P. 58−67.
  271. Ip F.C., Cheung J., Ip N.Y. The expression profiles of neurotrophins and their receptors in rat and chicken tissues during development // Neurosci. Lett.-2001.-V.301.-N2.-P. 107−110.
  272. Jacquemond V., Allard B. Activation of Ca activated К channels by an increase in intracellular Ca2+ induced by depolarisation of mouse skeletal muscle fibres // J. Physiol.- 1998.- V.509.- P. 93−102.138
  273. Jakubiec- Puka A., Lakowska-Boszek M. Morphological changes of fast and slow skeletal rat muscle following denervation // Folia histochim. et cytochim.- 1974.- V.12.-P.719−727.
  274. James R.S., Altringmam J.D., Goldspink D.F. The mechanical properties of fast and slow skeletal muscles of the mouse in relation to their locomotory function // J. Exp. Biol.- 1995.- V.198.- N 2.- P. 491−502.
  275. Jinnai K., Ashizawa Т., Atassi M.S. Analysis of exposed regions on the main extracellular domain of mouse acetylcholine receptor a-subunit in the live muscle cells by binding profiles of antibodies // J. Protein. Chem.- 1994.-V.13.-N 8.- P. 715−722.
  276. Juel C. Potassium and sodium shifts during in vitro isometric muscle contraction and the time course of the ion-gradient recovery // Pflugers Arch.-1986.- V. 406.- N 5.- P. 458−463.
  277. Kang J.J., Cheng Y.W. Effects of boldine on mouse diaphragm and sarcoplasmic reticulum vesicles isolated from skeletal muscle // Planta Med.-1998.- V.64.-N1.- P. 18−21.
  278. Kasemkijwattana C., Menetrey J., Bosch P., Somogyi G., Moreland M.S., Fu F.H., Buranapanitkit В., Watkins S.S., Huard J. Use of growth factors to improve musce healing after strain injury // Clin. Orthop.- 2000.- V.370.-P. 272−285.
  279. Kaufmann F. C., Warnick J. E., Albuquerque E.X. Uptake of 3H-colchicine from silastic implants by mammalian nerves and muscles // Exp. Neurol.- 1974.- V.44.- N 2.- P. 404−416.
  280. Kelly S.S., Robbins N. Statistics of neuromuscular transmitter release in young and old mouse muscle // J. Physiol.- 1987.- V.385.- P. 507−516.
  281. Kelly S.S., Robbins N. Progression of age changes in synaptic transmission at mouse neuromuscular junctions //J. Physiol.- 1983.- V.343.- P. 375−378.
  282. Kernell D., Bakels R., Copray J.C. Discharge properties of motoneurones: how are they matched to the properties and use of their muscle units? // J. Physiol. Paris.- 1999.- V.93.- N 1−2.- P. 87−96.139
  283. Khammari A., Noireaud J. Changes in potassium contractures due to simulated weightless in rat soleus muscle // J. Appl. Physiol.- 1994.- V.77.- N 5.-P. 2420−2425.
  284. Khan S., Smith M.E. Effect of beta-endorphin on the contractile responses in mouse skeletal muscle // Muscle Nerve.- 1995. V.18.- N 11.- P. 12 501 256.
  285. Kimura I., Kimura M., Kimura M. Increase in electrically-stimulated Ca release and suppression of caffeine response in diaphragm muscle of alloxan-diabetic mice compared with the denervation effect // Diabetologia.- 1990.-V.33.-N2.- P. 72−76.
  286. Kjasra P., Talesara C.L. Differential adaptive response alterations in the mammalian skeletal muscles under certain experimental model of study // J. Sci. and Ind. Res.- 1988.- V.47.- N 5.- P. 225−268.
  287. Kolbeck R.C., Nosek T.M. Fatigue of rapid and slow onset in isolated perfused rat and mouse diaphragms // J. Appl. Physiol.- 1994.- V.77.- N 4.- P. 1991−1998.
  288. Komatsu K., Higashimori E., Uchida K., Satoh S. Effect of protein synthesis inhibitors on trophic action of the nerve stump // Exp. Neurol.- 1983.-V. 80.-N3.- P. 499−507.
  289. Kotsias Basilio A., Muchnik Salomon. Muscle mechanical changes following denervation and their modification by the use of on inhibitor for RNA synthesis//Life Sci.- 1975.- V.17.-N.8.-P. 1277−1285.
  290. Kurek J.B., Bower J.J., Romanella M., Roentgen F., Murphy M., Austin L. The role of leukemia inhibitory factor in skeletal muscle regeneration // Muscle Nerve.- 1997.- V.20.- N 7.- P. 815−822.
  291. Kurek J.B., Nouri S., Kannourakis G., Murphy M., Austin L. Leukemia inhibitory factor and interleukin-6 are produced by diseased and regenerating skeletal muscle // Muscle Nerve.- 1996.-V.19.- N 10.- P. 12 911 301.140
  292. Labella J.J., Daood M.J., Koretsky A.P., Roman B.B., Sieck G.C., Wieringa В., Watchko J. F. Absence of myofibrillar creatinkinase and diaphragm isometric function during repetetive activation // J. Appl. Physiol.- 1998, — V. 84.-N4.-P. 1166−1173.
  293. Lawler J.M., Hu Z., Barnes W.S. Effect of reactive oxygen species on K+ -contractures in the rat diaphragm // J. Appl. Physiol.- 1998.- V.84.- N 3.- P. 948−953.
  294. Lennon V.A., Griesmann G.E. Evidence against acetylcholine receptor having a mainimmunogenic region as target for antoantibodies in myasthenia gravis //Neurology.- 1989.- V.39.- N 8.- P. l069−1076.
  295. Leong J., Hayes A., Austin L., Morrison W. Muscle protection following motor nerve repair in combination with leukemia inhibitory factor // J. Hand. Surg.- 1999.- V.24.- N 1.- P. 37−45.
  296. Levi-Montalcini R. Effects of mouse tumor transplantation on the nervous sistem // Ann. NY. Acad. Sci.- 1952.- V.55.- P. 330−343.
  297. Levin B.B., Vas N.M. Effect of combination of inbred strain, antigen and antigen dose on immune respensiveness and reagin production in the mouse// Int.Arch.Allergy.- 1970.-V.39.-P. 156−171.
  298. Lewis D.M., Kean C.J., McGarrick J.D. Trophic functions of the neuron. II. Denervation and regulation of muscle. Dynamic properties of slow and fast muscle and their trophic regulation // Ann. N. Y. Acad. Sci.- 1974.- V.228.- P. 105−120.
  299. Lewis D.M. The effect of denervation on the mechanical and electrical responses of fast and slow mammalian twitch muscle // J. Physiol.- 1972.-V.222.-N l.-P. 51−75.
  300. Liley A.W. An investigation of spontaneous activity at the neuromuscular junction of the rat // J. Physiol.- 1956.- V.132.- P. 650−666.
  301. Lin L.F., Doherty D.H., Lile J.D., Bektesh S., Collins F. GDNF: a glial cell line-derived neurotrophic factor for midbrain dopaminergic neurons //1. Science.1 411 993.-V.260.- N 5111.- P. 1130−1132.
  302. Lindsay R.M. Neuron saving schemes // Nature.- 1995.- V.373.- N 6512.-P. 289−290.
  303. Lin-Shiau S.Y., Liu S.H., Fu W.M. Studies on the contracture of the mouse diaphragm induced by sodium selenite // Eur. J. Pharmacol.- 1989a.- V.167.-N1.-P. 137−146.
  304. Lin-Shiau S.Y., Fu W.M., Liu S.H., Ni C.T. Studies on contractures induced in mouse diaphragm by caffeine and cupric and selenite ions // Arch. Int. Pharmacodyn. Ther.- 1989b.- V.300.- P. 265−280.
  305. Lomo T. Regulation of acetylcholine sensitivity in normal and denervated muscle // Neurosci. Lett.- 1979.- V.13.- N 3.- P. 317.
  306. Lorcovic H., Jager U. Chlorpromasine and diltiazem effects in muscle: blocage of acetylcholine-evoked contractures, membrane currents and tracer calcium uptake // Pharmacology.- 1996.- V. 53.- N 1.- P. 11−18.
  307. Lorcovic H. Acetylcholine contractures of skeletal muscles: ingibition by chlorpromazine and diltiazem. // Neuropharmacology.- 1995.- V.34. N 7.- P. 695−700.
  308. Lorcovic H. Acetylcholine-evoked currents in juvenile mouse muscles // Сотр. Biochem. Physiol. Pharmacol. Toxicol. Endocrinol.- 1994.- V.107.- N 3.- P. 373−377.
  309. Lorcovic H. Force and membrane potential in acetylcholine and potassium contractures of denervated mouse muscles // Pflugers Arch.- 1985.- V.404.- N 1.- P. 50−55.
  310. Lorcovic H. Differential effects of succinylcholine and acetylcholine on endplate and extrajunctional membranes of normal and denervated mouse skeletal muscles fibres //Neurosci. Lett.- 1984.- V.46.- Nl.-P. 31−34.142
  311. Lorcovic H. Potassium contractures in mouse limb muscles // J. Physiol.-1983.-V.343.-P. 569−576.
  312. Lorcovic H. Desensitization in denervated mouse muscles // Pflugers Arch.-1981.-V.391.-N3.-P. 171−177.
  313. Lorcovic H. Antagonism between calcium and monovalent cations in depolarized denervated muscles // Am. J. Physiol.- 1972.- V.222.- N 6.- P. 1427−34.
  314. Luff A.R., Atwood H.L. Membrane properties and contraction of single muscle fibers in the mouse // Am. J. Physiol.- 1972.- V.222.- N 6.- P. 14 351 440.
  315. Luff A.R. Dynamic properties of the inferior rectus, extensor digitorum longus, diaphragm and soleus muscles of the mouse // J. Physiol.- 1981.- V. 313.- P. 161−171.
  316. Luff A.R. Dynamic properties of mammalian skeletal muscles // Physiol. Rev.- 1978.- V. 52.- P. 129−197.
  317. Lullmann H., Preuner J., Sunano S. On the interaction of acetylcholine, caffeine and altered Ca-concentration upon the excitation-contraction conpling in chronically denervated skeletal muscle // Pfluger Arch.- 1974.- V.352.- N 4.- P.279−289.
  318. Lupa M.T., Krzemien D.M., Schaller K.L., Caldwell J.H. Expression and distribution of sodium channels in short- and long-term denervated rodent skeletal muscles // J. Physiol.- 1995.- V. 483.- P. 109−118.
  319. Lynch G.S., Hinkle R.T., Faulkner J.A. Force and power output of diaphragm muscle strips from mdx and control mice after clenbuterol treatment // Neuromuscul. Disord.- 2001.- V.ll.- N 2.- P. 192−196.143
  320. Lynch G.S., Hinkle R.T., Faulkner J.A. Year-long clenbuterol treatment of mice increases mass, but not specific force or normalized power, of skeletal muscles // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol.- 1999.- V.26.- N 2.- P. 117−120.
  321. MacLennan A.J., Vinson E.N., Marks L., McLaurin D.L., Pfeifer M., Lee N. Immunohistochemical localization of ciliary neurotrophic factor receptor alpha expression in the rat nervous system // J. Neurosci.- 1996.-V.16.- P. 621−630.
  322. Maconochie D.J., Steinbach J.H. The channel opening rate of adult- and fetal-type mouse muscle nicotinic receptors activated by acetylcholine // J. Physiol.- 1998.- V.506.- P. 53−72.
  323. MagendieF. (1824). Цит. по: Ажипа Я.И.
  324. Maggs A.M., Taylor-Harris P., Peckham M., Hughes S.M. Evidence for differential post-transplantation modifications of slow myosin heavy chain during murine skeletal muscle development // J. Muscle Res. Cell Motil.-2000.- V.21.-N2.-P. 101−113.
  325. Mallouk N., Jacquemond V., Allard B. Elevated subsarcolemmal Ca2+ in mdx mouse skeletal muscle fibers detected with Ca -activated К channels // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A.- 2000.- V.97.- N 9.- P. 4950−4955.
  326. Margeth A., Mauro S. Early biochemical consequence of denervation in fast and slow skeletal muscles and their relationship to neural control over muscle differentiation // Biochem. J.- 1989.- V.126.- N 5.- P. 1099−1110.
  327. Marshall Jean S., Stead Ron H., McSharry Charles et all. The role of mast cell degranulation products in mast cell huperplasia. 1. Mechanism of action of nerve growth factor// J. Immunol.- 1990.- V. 144, — N 5.- P. 1886−1892.
  328. Masu Y., Wolf E., Holtmann В., Sendtner M., Brem G., Thoenen H. Disruption of the CNTF gene results in motor neuron degeneration // Nature.-1993.- V. 365.- P. 27−32.
  329. McCloskey E.W., Womack M.D., Fieber L.A. Structural properties of voltage-dependent calcium channels // Int. Rev. Cytol. 1993.- V.137 — P. 3954.144
  330. McConnell M.G., Simpson L.L. The role of acetylcholine receptors and acetylcholinesterase activity in the development of denervation supersensitivity // J. Pharmacol. Exp. Ther.- 1976.- V.198.- N 3.- P.507−517.
  331. McLennan A.J., Gaskin A.A., Lado D.C. CNTF receptor alpha mRNA expression in rodent cell lines and developing rat // Mol. Brain. Res.- V.25.- P. 251−256.
  332. McGeachie John K. Sustained cell proliferation in denervated skeletal muscle of mice // Cell and Tissue Res.- 1989.- V.257.- N 2.- P.455−457.
  333. Menetrey J., Kasemkijwattana C., Day C.S., Bosch P., Vogt M., Fu R.H., Moreland M.S., Huard J. Growth factors improve muscle healing in vivo // J. Bone Joint. Surg. Br.- 2000.- V.82.- N 1.- P. 131−137.
  334. Mercier C., Jobin J., Lepine C., Simard C. Effects of hindlimb suspension on contractile properties of young and old rat muscles and the impact of electrical stimulation on the recovery process // Mech. Ageing Dev.- 1999.-V.106.-N3.-P. 305−320.
  335. Miledi R., Stefani E. Non-selective re-innervation of slow and fast muscle fibres in the rat // Nature.- 1969.- V.222.- N 193.- P. 569−571.
  336. Miledi R. The acetylcholine sensitivity of frog muscle fibres after complete or partial denervation // J. Physiol.- 1960 a.- V. 151.- N 1.- P. l-23.
  337. Miledi R. Junctional and exrajunctional acetylcholine receptors in skeletal muscle fibres // J. Physiol.- 1960 b.- V.151.- N 1.- P.24−30.
  338. Miledi R, Slater C. R. On the degeneration of rat neuromuscular junction after nerve section//J. Physiol.- 1969.-V.207.-N 3.-P.507−528.
  339. Mitsumoto H., Ikeda K., Klinkosz В., Cedarbaum J.M., Wong V., Lindsay R.M. Arrest of motor neuron disease in wobbler mice cotreated with CNTF and BDNF // Science.- 1994.- V.265.- P. 1107−1110.145
  340. Moens P., Partridge T.A., Morgan J.E., Beckers-Bleukx G., Marechal G. Regeneration after free muscle grafting in normal and dystrophic (mdx) mice // J. Neurol. Sci.- 1992.- V. l 11.- N 2.- P. 209−213.
  341. Moore R.L., Palmer B.M., Williams S.L., Tanabe H., Grange R.W., Houston M.E. Effect of temperature on myosin phosphorylation in mouse skeletal muscle // Am. J. Physiol.- 1990.- V.259.- N 3.- P. C432-C438.
  342. Moser C., Hehl S., Neumcke B. Inhibition of ATP-sensitive K+ channels of mouse skeletal muscle by Disopyramide // Eur. J. Pharmacol.- 1995.- V.284.-N1−2.-P. 35−40.
  343. Murrant C.L., Barclay J.K. Endothelial cell products alter mammalian skeletal muscle function in vitro // Can. J. Physiol. Pharmacol.- 1994.- V.73.-N6.- P. 736−741.
  344. Nagaraj R.Y., Nosek C.M., Brotto M.A., Nishi M., Takeshima H., Nosek T.M., Ma J. Increased susceptibility to fatigue of slow- and fast-twitch muscles from mice lacking the MG29 gene // Physiol. Genomics.- 2000.- V.4.- N 1.- P. 43−49.
  345. Nasledov G.A., Thesleff S. Denervation changes in frog skeletal muscle // Acta. Physiol. Scand.- 1974.- V.90.- N 2.- P. 370−380.
  346. Noireaud J., Leoty C. Potassium and caffeine contractures in limb muscles normal and dystrophic (C57BL/6J dj2J/dj2J) mice // Exp. Neurol.- 1985a.-V. 87,-N3.- P.495−502.
  347. Noireaud J., Leoty C., Schmidt H. Acetylcholine-sensitivity in fast and slow muscle of normal and dystrophic (C57BL/6J dj2J/dj2J) mice // Pflugers Arch.- 1985b.-V. 404.- N 2.- P.185−189.146
  348. Nojima H., Kimura I., Kimura M. The external Ca2+ dependence of acetylcholine-induced contracture in single innervated and denervated skeletal muscle cells in mice // Jpn. J. Pharmacol.- 1991.- V.56.- N 1.- P. 109−112.
  349. Oppenheim R.W., Prevette D., Yin Q.W., Collins F., MacDonald J. Control of embryonic motoneuron survival in vivo by ciliary neurotrophic factor // Science.-1991.-V.251.-P. 1616−1618.
  350. Ormstad H., Groeng E. C., Lovic M., Ceir H. The fungal cell wall component bate-l, 3-glucan has an adyvant effect on the allergic response to ovalbumin in mice // J. Toxicol. Enviroment. Health.- 2000.- V.61.- N 1.- P.55−67.
  351. Ovalle W.K., Bressler B.H., Jasch L.G., Slonecker C.E. Abnormal distribution of fiber types in the slow-twitch soleus muscle of the C57BL/6J dy2J/dy2J dystrophic mouse during postnatal development // Am. J. Anat.-1983.- V.168.- N 3.- P. 291−304.
  352. Ovary Z., Benacerraf В., Bloch R.I. Properties of guinea-pig 7S antibodies. II. Identification of antibodies involved in passive cutaneous and systemic anaphylaxis//J. Exp. Med.- 1963.-V. 117.- P.951.147
  353. Oz M. and Frank G.B. Decrease in the size of tetanic responses produced by nitrendipine by extracellular calcium ion removal without bloking twitches or action potentials in skeletal muscles // J. Pharmacol. Exp. Ther.- 1991.-V.257.-P. 575−581.
  354. Pagala M., Ravindran K., Amaladevi В., Namba Т., Grob D. Potassium and caffeine contractures of mouse muscles before and after fatiguing stimulation // Muscle Nerve.- 1994.-V. 17.- N 8.- P.852−859.
  355. Parsons R.L., Nastuk E.L. Activation of contractile system in depolarized skeletal muscle fibers // Am. J. Physiol.- 1969.- V.217.- N 2.- P.364−369.
  356. Pastoret C., Sebille A. Fibres of intermediate type 1С and 2C are found continuously in mdx soleus muscle up to 52 weeks // Histochemistry.- 1993.-V.100.-N4.- P. 271−276.
  357. Petrof B.J., Stedman H.H., Shrager J.B., Eby J., Sweeney H.L., Kelly A.M. Adaptations in myosin heavy chain expression and contractile function in dystrophic mouse diaphragm // Am. J. Physiol.- 1993.- V.265.- N 3.- P. C834-C841.
  358. Pette D., Vrbova G. What does chronic electrical stimulation teach us about muscle plasticity? // Muscle Nerve.- 1999.- V. 22.- N 6.- P. 666−677.
  359. Pette D. Trayning effects on the contractile apparatus // Acta. Physiol. Scand.- 1998.- V.162.- N 3.- P. 367−376.
  360. Pette D. Plasticity of muscle / Walter de Gruyter Co., Berlin N.Y.- 1980.230 p.
  361. Phillips S.K., Wiseman R.W., Woledge R.C., Kushmerick M.J. Neither changes in phosphorus metabolite levels nor myosin isoforms can explain the weakness in aged mouse muscle // J. Physiol.- 1993.- V.463.- P. 157−167.
  362. Prewitt M.A., Salafsky E. Enzymic and histochemical changes in fast and slow muscles after cross innervation // Am. J. Physiol.- 1970, — V.218.- Nl.-P. 69−74.148
  363. Ranatunga K.W., Wylie S.K. Isometric contractile properties of fast- and slow-twitch skeletal muscles in normal and spastic mice // Exp. Neurol.-1980a.- V.70.- N 2.- P. 205−210.
  364. Ranatunga K.W. Influence of temperature on isometric tension development in mouse of fast- and slow-twitch skeletal muscles // Exp. Neurol.- 1980b.-V.70.- N 2.- P. 211−218.
  365. Reardon K.A., Kapsa R.M., Davis J., Kornberg A.J., Austin L., Choong P., Byrne E. Increased levels of leukemia inhibitory factor mRNA in muscular dystrophy and human muscle trauma // Muscle Nerve.- 2000.-V.23.- N 6.- P. 962−966.
  366. Redenbach D.M., Bressler B.H. Alterations in contractile properties of extensor digitorum longus muscle from C57BL/6j mice following denervation // Can. J. Physiol. Pharmacol.- 1988a.- V.63.- N 6.- P. 681- 686.
  367. Redenbach D.M., Ovalle W.K., Bressler B.H. Effects of neonatal denervation on the distribution of fiber types in a mouse fast-twitch skeletal muscle // Histochemistry.- 1988b.- V.89.- N 4.- P. 333- 342.
  368. Rezvani M., Cafarelli E., Hood D.A. Performance and excitability of mdx mouse muscle at 2, 5, and 13 wk of age // J. Appl. Physiol.- 1995.- V.78.- N 3.-P. 961−967.
  369. Rios E., Brum G. Involvement of dihydropiridine receptors in excitation-contraction coupling in skeletal muscle //Nature.- 1987.- V.325- P.717−720.
  370. Rossi R., Bottinelli R., Sorrentino V., Reggiani C. Response to caffeine and ryanodine receptor isoforms in mouse skeletal muscles // Am. J. Physiol. Cell. Physiol.- 2001.- V.281.- N 2.- P. C585-C594.149
  371. Romanul F.C., Van der Meulen J.P. Slow and fast muscles after cross innervation. Enzymatic and physiological changes // Arch. Neurol.- 1967.-V.17.-N4.- P. 387−402.
  372. Sandow A. Excitation contraction coupling in muscular response // Yale. J. Biol. Med.-1952.-V.25.-P. 176−201.
  373. Schiaffino S., Serrano A.L., Jercovic R., Di Lisi R., Murgia M. Neural regulation of myosin gene expression in regeneration skeletal muscle // Acta Physiol. Scand.- 1998.-V.163.- N3.-P. S11-S15.
  374. Shepherd D., Brehm P. Two types of ACh receptors contribute to fast channel gating on mouse skeletal muscle // J. Neurophysiol.- 1997.- V.78.- N 6.- P. 2966−2974.
  375. Shepherd D., Brehm P. Adult forms of nicotinic acetylcholine receptors are expresed in the absense of nerve during differentiation of a mouse skeletal muscle cell line // Dev. Biol.- 1994.- V.162.- N 2.- P. 549−557.
  376. Sheridan R.E., Deshpande S.S., Nicholson J.D., Adler M. Structural features of aminoquinolines necessary for antagonist activity against botulinum neurotoxin//Toxicon.- 1997.-V.35.-N9.-P. 1439−1451.
  377. Sheridan R.E., Deshpande S.S. Interactions between heavy metal chelators and botulinum neurotoxins at the mouse neuromuscular junction // Toxicon.-1995.- V.33.- N 4.- P. 539−549.
  378. Shrier I. Distribution of intracellular calcium in isolated mouse skeletal muscle fibres // Pflugers Arch.- 1995.- V. 430.- N 4.- P. 602−604.
  379. Sendtner M., Gotz R., Holtmann В., Thoenen H. Endogenous ciliary neurotrophic factor is a lesion factor for axotomized motoneurons after axotomy // J. Neurosci.- 1997.- V.17.- P. 6999−7006.
  380. Sendtner M., Schmalbruch H., Stockli K.A., Carroll P., Kreutzberg G.W., Thoenen H. Ciliary neurotrophic factor prevents degeneration of motor neurons in mouse mutant progressive motor neuronopathy // Nature.- 1992.- V.358.- P. 502−504.
  381. Siegel S.G., Patton В., English A.W. Ciliary neurotrophic factor is required for motoneuron sprouting // Exp Neurol.- 2000.- V.166.- N 2.- P. 205−212.
  382. Simon M., Terenghi G., Green C.J., Coulton G.R. Differential effects of NT-3 on reinnervation of the fast extensor digitorum longus (EDL) and the slow soleus muscle of rat// Eur. J. Neurosci.- 2000.- V.12.- N 3.- P. 863−871.
  383. Singh Y.N., Dryden W.F. Isometric contractile properties and caffeine sensitivity of the diaphragm, extensor digitorum longus and soleus muscles of the mouse // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol.- 1989.- V.16.- N 7.- P. 581−589.
  384. Singh Y.N., Dryden W.F. Potassium contractures in mouse diaphragm: regional variation in the multiphasic response // Clin. Exp. Pharmacol. Physiol.- 1988.- V.15.- N 1.- P. 1−8.
  385. Slack J.P., Grupp I.L., Luo W., Kranias E.G. Phospholamban ablation enhances relaxation in the murine soleus // Am. J. Physiol.- 1997.- V.273.- P. C1-C6.
  386. Slater C.R. Time course of failure of neuromuscular transmission after motor nerve section // Nature. 1966.- V.209.- N 3.- P. 305−306.
  387. Sleeman M.W., Anderson K.D., Lambert B.D., Yancopoulos G.D., Wiegand S.J. The ciliary neurotrophic factor and its receptor, CNTFR alpha // Pharm. Acta. Helv.- 2000.- V.74.- N 2−3.- P. 265−272.
  388. Spector S.A. Trophic effects on the contractile and histochemical properties of rat soleus muscle // J. Neuroscience.- 1985.- V. 5.- N 8.- P. 2189−2196.
  389. Sreter F. Effect of denervation on fragmented sarcoplasmic reticulum of white and red muscle // Exp. Neurol.- 1970.- V.29.- N 1.- P. 52−64.
  390. Steinbach J. Neuromuscular junction and a-bungarotoxin binding sites in denervated and contralateral cat skeletal muscles // J. Physiol.-1981.-V.313.-P. 513−528.
  391. Storella B.J., Ackerman T.S. Atropine and neuromuscular fade in the mouse phrenic nerve-diaphragm // Can. J. Anaesth.- 1996.- V.43.- N 2.- P. 169−171.152
  392. Syrovy J. Gutmann E. The effect of denervation on contraction and myosin properties of fast and slow rabbit and cat muscles // Physiol. Bochemosl.- 1972.-V.21.- N 4.- P. 353−359.
  393. Syrovy J. Gutmann E. Differentiation of myosin in soleus and extensor digitorum longus muscles in differents animal species during development // Pflugers Arsh.- 1977.- V.369.- P. 85−89.
  394. Takamori M., Mari K., Ide Y., Tsijihta M. Contractile and chemosensitive properties of muscle treated with calcium ionophire A23187 // J.Neurol.Sci.-1981.- V.51.- N 2.- P. 207−215.
  395. Taquahashi Y., Yonezawa K., Nishimura M. Influence of motor activities on the release of transmitter quanta from motor nerve terminals in mice // J. Vet. Med. Sci.- 1999.- V.6L- N 5.- P. 513−516.
  396. Taylor R.G., Abresch R.T., Lieberman J.S., Sharman R.B., Entrikin R.K., Fowler W.M. Fast and slow skeletal muscles: effect of ethanol on contractility of muscles from mice // Arch. Phys. Med. Rehabil.- 1992.- V.73.- N 4.- P. 355 358.
  397. Taylor R.G., Fowler W.M., Lieberman J.S., Ullmann N., Abresch R.T. Fast and slow skeletal muscles: contractility evaluated by paired stimuli in mice // Arch. Phys. Med. Rehabil.- 1980.- V.61.- N 4.- P. 151−159.
  398. Taylor R.G., Fowler W.M., Doerr L. Exercise effect on contractile properties of skeletal muscle in mouse muscular dystrophy // Arch. Phys. Med. Rehabil.- 1976a.- V.57.- N 4.- P. 174−80.
  399. Taylor R.G., Fowler W.M. Fast and slow skeletal muscles: simultaneous in vitro study // Arch. Phys. Med. Rehabil.- 1976b.- V.57.- N 5.- P. 223−228.
  400. Tian W.H., Festoff B.W., Blot S., Dias J., Hantai D. Synaptic transmission blocade increases plasminogen activator activity in mouse skeletal muscle153poisoned with botulinum toxin type A // Synapse.- 1995.- V. 20.- Nl.-P. 2432.
  401. Vakakis N., Bower J., Austin L. In vitro myoblast to myotube transformations in the presence of leukemia inhibitory factor // Neurochem. Int.- 1995.- V. 27.- N 4−5.- P. 329−335.
  402. Vandenboom R., Grange R.W., Houston M.E. Threshold for force potentiation associated with skeletal myosin phosphorylation // Am. J. Physiol.- 1993.- V.265.-N6. P. C1456-C1462.
  403. Vatanpour H., Harvey A.L. Modulation of acetylcholine release at mouse neuromuscular junction by interaction of three homologous scorpion toxins with K+ channels // Br. J. Pharmacol.- 1995.- V. 114.- N 7.- P. 1502−1506.
  404. Visser S.L., Oosterhoff E., Harmens H.I., Boon K.L., Zilvold G. Single switch contraction curves in patterns with spastic hemiparesis in relation to EMG findings// Electromyogr. and Clin. Neurophysiol.- 1985.-V.25.-N 1.-P. 63−71.
  405. Vullhorst D., Klocke R., Bartsch J.W., Jockusch H. Expression of the potassium channel KV3.4 in mouse skeletal muscle parallels fiber type maturation and depends on excitation pattern // FEBS. Lett.- 1998.- V.421.- N 3.-P. 259−262.
  406. Washio H., Imazato-Tanaka C., Kanda K., Nomoto S. Choline acetyltransferase and acetylcholinesterase activities in muscles of aged mice // Brain. Res.- 1987.- V.416.- Nl.-P. 69−74.154
  407. Weis P., Hiscoe H.B. Experiments on the mechanism of nerve growth // J. Exp. Zool.- 1948.- V.107.-N.3.- P. 315−395.
  408. Webster D.M., Bressler B.H. Changes in isometric contractile properties of EDL and SOL muscles of C57BL/6j mice following denervation // Can. J. Phisiol. Pharmacol. 1985.-V.63.- N 6.- P. 681- 686.
  409. Werning A., Zweuer M., Ininthcev A. Function of skeletal muscle tissue after myoblast transplantation into irradiated mouse muscles // J. Physiol.-2000.- V.522.-N 2.- P. 333−345.
  410. Westrblad H., Allen D.G. The effect of intracellular injection of phosphate on intracellular calcium and force in single fibres from mouse skeletal muscle //Pflugers Arch.- 1996.-V.431.-N 6.-P. 964−970.
  411. Westrblad H., Allen D.G. The role of sarcoplasmic reticulum in relaxation of mouse muscle- effects of 2,5 di (tret-butyl) -1,4 — benzohydroquinone // J. Physiol.- 1994.- V. 474.- N2.- P. 291−301.
  412. Westrblad H., Allen D.G. The conribution of Ca2+.i to the slowing of relaxation in fatigued single fibres from mouse skeletal muscle // J. Physiol.-1993a.-V. 468.- P. 729−740.
  413. Westrblad H., Duty S., Allen D.G. Intracellular calcium concentracion during low-frequency fatigue in isolated single fibers of mouse skelatal muscle // J. Appl. Physiol.- 1993b.- V.75.- N 1.- P. 382−388.
  414. Wetzel P, Gros G. Decay of Ca and force transients in fast- and slow-twitch skeletal muscles from the rat, mouse and Etruscan shrew // J. Exp. Biol.-1998.-V.201.-P. 375−384.
  415. Windisch A., Gundersen K., Szabols M J., Gruber H., Lomo T. Fast to slow transformation of denervated and electrically stimulated rat muscles // J. Physiol.- 1998.-V.510.-P. 623−632.
  416. Wiseman R.W., Beck T.W., Chase P.B. Effect of intracellular pH on force development depends on temperature in intact skeletal muscle from mouse // Am. J. Physiol.- 1996.- V.271.- N 3.- P. C878-C886.155
  417. Wittmann T.A., Kelsen S.G. Diaphragmatic muscle force in normal hamsters: the effect of caffeine // Am. Rev. Resp. Dis.- 1982.- V.126.- N 3.-P.499−509.
  418. Woittier R.D., Baan G.C., Huijing P.A., Rosendal R.H. Functional characteristics of the calf muscles of the rat // J. Morphol.- 1985.- V.184.-N 3.-P.375−387.
  419. Zardini D.M., Parry D.J. Physiological characteristics of identified motor units in the mouse extensor digitorum longus muscle: an in vitro approach // Can. J. Physiol. Pharmacol.- 1998, — V.76.- N 1.- P. 68−71.
  420. Zemskova H., Viskochil F., Edwards C. A study on early post-denervation changes of non-quantal and quantal acetylcholine release in the rat diaphragm//Eur. J.Physiol.- 1987.- V.409.- P.540−546.
  421. Zuberi R.I., Apgar J.R., Chen S.-S., Liu F.-T. Role for Ig E in airway secretions: Ig E complexes are more potent inducers than antigen alone of airway inflammation in a murine model // J. Immunol.- 2000.- V.164.- N 5.- P. 2667−2673.
  422. Yamauchi H., Kasuga N. Fiber types and some contractile properties of extensor digitorum longus and soleus muscles in different animals species // Nippon. Seirrigaki. Zasshi.-1991.- V.53.-N 6.- P. 191−206.
  423. Yellin H. Neural regulation of enzymes in muscle fibers of red and white muscle // Exp. Neurol.- 1967.- V.19.- N 1.- P. 92−103.
  424. Yu X.M., Hall Z.W. Amino- and carboxyl-terminal domains specify the identity of the delta subunit in assembly of the mouse muscle nicotinic acetylcholine receptor // Mol. Pharmacol.- 1994.- V.46.- P. 964−969.156
  425. Выражаю глубокую благодарность и признательность моему научному руководителю доктору медицинских наук, профессору Девятаеву Александру Михайловичу за ту огромную помощь, которая была оказана в процессе выполнения и написания данной работы.
  426. Хотелось бы произнести слова благодарности в адрес доктора медицинских наук, профессора, заведующего кафедрой патологической физиологии КГМУ Миннебаева Марселя Миргаязовича за предоставление возможности выполнения работы.
  427. Считаю своим долгом выразить глубокую признательность профессору кафедры патологической физиологии КГМУ Рахматуллину Иреку Махмудовичу за замечания и рекомендации, сделанные в процессе работы над диссертацией.
  428. Благодарю кандидата биологических наук Теплова Александра Юрьевича за неоценимую помощь и участие, проявленные в период выполнения мною экспериментального раздела диссертации.
  429. Выражаю искреннюю благодарность коллективу кафедры патологической физиологии Казанского медицинского университета за помощь, моральную подержку при выполнении и участие при обсуждении данной работы.
  430. Кроме того, я искренне признательна своим родителям, друзьям и родным за участие и помощь, проявленные в период моей работы над диссертацией.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!