Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Метаболизм D-арабинозы: характеристика бифункциональной арабинокиназы/пирофосфорилазы Leishmania major

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Sieling P.A., Chatteijee D., Porcelli S.A., Prigozy T.I., Mazzaccaro R.J., Soriano Т., Bloom B.R., Brenner M.B., Kronenberg M., Brennan P.J. and et al. CD 1-restricted T cell recognition of microbial lipoglycan antigens. // Science. 269:227−30 (1995). Dermine J.F., Scianimanico S., Prive C., Descoteaux A. and Desjardins M. Leishmania promastigotes require lipophosphoglycan to actively modulate… Читать ещё >

Метаболизм D-арабинозы: характеристика бифункциональной арабинокиназы/пирофосфорилазы Leishmania major (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список использованных сокращений
  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Лейшманиоз
      • 2. 1. 1. Переносчики и хозяева
      • 2. 1. 2. Исторические факты
      • 2. 1. 3. Виды лейшманиоза
      • 2. 1. 4. Диагностика и лечение
      • 2. 1. 5. Вакцины
    • 2. 2. Leishmania spp
      • 2. 2. 1. Жизненный цикл Leishmania
      • 2. 2. 2. Метациклогенез
      • 2. 2. 3. Leishmania в искусственной среде
    • 2. 3. Гликоконъюгаты клеточной поверхности Leishmania
      • 2. 3. 1. Липофосфогликан
        • 2. 3. 1. 1. Структура липофосфогликана
        • 2. 3. 1. 2. Липофосфогликан на разных стадиях жизненного цикла Leishmania
        • 2. 3. 1. 3. Функции липофосфогликана
        • 2. 3. 1. 4. Липофосфогликан амастигот Leishmania
      • 2. 3. 2. Гликозилинозитолфосфолипиды
        • 2. 3. 2. 1. Строение GIPL
        • 2. 3. 2. 2. Функции GIPL
      • 2. 3. 3. GP
      • 2. 3. 4. Протеофосфогликаны
    • 2. 4. Биосинтез фосфогликанов Leishmania
      • 2. 4. 1. Биосинтез GPI-якоря
      • 2. 4. 2. Биосинтез повторяющихся звеньев липофосфогликана
      • 2. 4. 3. Модификации боковых цепей липофосфогликана
      • 2. 4. 4. Биосинтез GIPL
    • 2. 5. D-арабинопираноза
      • 2. 5. 1. Природные арабиносодержащие гликоконъюгаты
      • 2. 5. 2. Биосинтез D-арабинопиранозы
  • 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
    • 4. 1. Идентификация и характеристика арабинокиназыпирофосфорилазы L. major
      • 4. 1. 1. Идентификация бифункциональной арабинокиназыпирофосфорилазы в геноме L. major
      • 4. 1. 2. Тестирование ферментативной активности белков, ^ кодируемых генами lmjF16.0440 и ImjF
      • 4. 1. 3. Сравнение гомологичных ферментов из различных организмов
      • 4. 1. 4. АТР и GTP необходимы для активности FKP40 и AFKP
      • 4. 1. 5. Изучение киназных и пирофосфорилазных доменов FKP и AFKP80 методом сайт-направленного мутагенеза
      • 4. 1. 6. Определение кинетических параметров для FKP40 и AFKP
      • 4. 1. 7. Фукозо-содержащие гликоконъюгаты L. major
    • 4. 2. Биологическая роль FKP40 и AFKP80 в арабинозилировании ^ фосфогликанов клеточной поверхности L. major
      • 4. 2. 1. Гомозиготные нокаутные мутанты L. major по генам FKP40 и AFKP
      • 4. 2. 2. AFKP80 — основной фермент, синтезирующий GDP-[ H]D- ^ Ага в цитозоле Leishmania
      • 4. 2. 3. В отсутствие AFKP80 снижается арабинозилирование ^ фосфогликанов клеточной поверхности L. major
      • 4. 2. 4. Нокаутирование генов lmjF16.480 и lmjF16.0440 не влияет на синтез повторяющихся звеньев липофосфогликана
  • L. major
    • 4. 2. 5. Роль FKP40 и AFKP80 в арабинозилировании боковых ^ цепей липофосфогликана L. major
    • 4. 3. Транспорт GDP-D-Ага в аппарат Гольджи Leishmania
    • 4. 4. Контроль арабинозилирования липофосфогликана ^ проциклических и метациклических промастигот

ВЫВОДЫ.

1. Ген ImjFl6.0480 паразитического простейшего L. major кодирует бифункциональную арабинокиназу/пирофосфорилазу, способную активировать D-Ara до GDP-D-Ara через промежуточный Ara-1-P в присутствии одновременно АТР и GTP. Продукт другого гена, lmjF16.0440, лишен пирофосфорилазной активности, но способен синтезировать Ara-1-P.

2. Ферменты, кодируемые генами ImjF16.0480 и ImjFl6.0440, названные AFKP80 и FKP40, кроме D-Ara могут использовать в качестве субстрата L-Fuc, а именно, синтезировать GDP-L-Fuc в присутствии одновременно АТР и GTP.

3. Киназный домен обоих ферментов L. major расположен на С-конце, а пирофосфорилазный домен формируется при участии последовательностей, расположенных как на N-, так и на С-конце.

4. Белок AFKP80 является главным ферментом L. major, синтезирующим GDP-D-Ara.

5. GDP-D-Ara транспортируется из цитоплазмы в люмен аппарата Гольджи белком-переносчиком LPG2.

6. Синтез свободной D-Ara в цитоплазме запускает и регулирует каскад биосинтетических реакций, ведущих к арабинозилированию боковых цепей липофосфогликана Leishmania.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор выражает свою признательность X. Гуо (Dr. Hongjie Guo, University of Washington, USA) за помощь в идентификации и клонировании генов Leishmania и получении гомозиготных нокаутных линий L. major fkp40(~) и L. major jkp80(-) JI. Комсток (Dr. Laurie Comstock, Harvard Medical School, USA) за предоставление плазмид, содержащих клонированные гены Bacteroides fragilis и Arabidopsis thalianaТ. Ноттон (Timothy Notton, University of Washington, USA) за помощь в проведении сайт-направленного мутагенеза гена lmjF16.0440 Т. Баррон (Tamara Barron, University of Kentucky, USA), С. Турко (Prof. Salvatore Turco, University of Kentucky, USA) и С. Беверли (Prof. Stephen Beverley, University of Washington, USA) за помощь в обсуждении результатов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенные исследования позволили охарактеризовать биосинтез D-арабинозы у паразитического простейшего Leishmania major на этапе синтеза GDP-D-Ara — донора для реакций гликозилирования. В геноме L. major были обнаружены два гена, отличающиеся по трем а.к. остаткам, один из которых {ImjF 16.0480), кодирует бифункциональную арабинокиназу-пирофосфорилазу, способную активировать D-Ara до GDP-D-Ara через промежуточный Ara-1-P в присутствии АТР и GTP. Продукт второго гена (lmjF 16.0440), не обладал пирофосфорилазной активностью и синтезировал только Ara-1-P. При этом оба фермента, AFKP80 (Arabino/FucoKinase/Pyrophosphorylase) и FKP40 (FucoKinase-Pyrophosphorylase) соответственно, обладали бифункциональной активностью со структурным гомологом D-арабинозы, L-фукозой, т. е. синтезировали GDP-L-Fuc из L-Fuc в присутствии АТР и GTP. Методом сайт-направленного мутагенеза было установлено, что киназный домен ферментов L. major расположен на С-конце, а пирофосфорилазный домен разобщен на полипетидной цепи и образуется при участии последовательностей, расположенных как на N-, так и на С-конце. Измерение кинетических параметров позволило предположить, что оба активных центра бифункциональных ферментов связаны между собой и действуют взаимозависимо, обеспечивая максимальную каталитическую активность белков. Установлено, что AFKP80 является главным ферментом, синтезирующим GDP-D-Ara в цитоплазме L. major. Нокаутирование соответствующего гена (ImjF 16.0480) приводило к прекращению арабинозилирования боковых цепей липофосфогликана клеточной поверхности Leishmania. Цитоплазматический GDP-D-Ara должен попасть в аппарат Гольджи, где происходят реакции гликозилирования. В данной работе показано, что у L. major транспорт GDP-D-Ara в аппарат Гольджи осуществляется белком переносчиком LPG2.

Таким образом, проведенное в рамках диссертационной работы исследование расширяет знания о биосинтезе редко встречающихся гликоконъюгатов — производных D-арабинопиранозы, а также, о структуре и особенностях функционирования бифункциональных киназ-пирофосфорилаз, что может быть использовано при дальнейшем изучении этого семейства ферментов.

1. Aebischer Т., Moody S.F. and Handman E. Persistence of virulent Leishmania major in murine cutaneous leishmaniasis: a possible hazard for the host. // Infect Immun. 61:220−6 (1993).

2. Ahmed S.B., Bahloul C., Robbana C., Askri S. and Dellagi K. A comparative evaluation of different DNA vaccine candidates against experimental murine leishmaniasis due to L. major. // Vaccine. 22:1631−9 (2004).

3. Ashford R.W., Kohestany K.A. and Karimzad M.A. Cutaneous leishmaniasis in Kabul: observations on a 'prolonged epidemic'. // Ann Trop Med Parasitol. 86:361−71 (1992).

4. Banulus A.L., Hide M. and Prugnolle F. 1971. Leishmania and Leishmaniasis: A Parasite Genetic Update and Advances in Taxonomy, Epidemiology and Pathogenicity in Humans. In Advances in Parasitology Ed. R.M. J.R. Baker, D. Rollinson. Academic Press.

5. Bennett J. Editorial response: choosing amphotericin В formulations-between a rock and a hard place. // Clin Infect Dis. 31:1164−5 (2000).

6. Berman J.D. Human leishmaniasis: clinical, diagnostic, and chemotherapeutic developments in the last 10 years. // Clin Infect Dis. 24:684−703 (1997).

7. Berman J.D., Gallalee J.V. and Best J.M. Sodium stibogluconate (Pentostam) inhibition of glucose catabolism via the glycolytic pathway, and fatty acid beta-oxidation in Leishmania mexicana amastigotes. // Biochem Pharmacol. 36:197−201 (1987).

8. Berman J.D., Waddell D. and Hanson B.D. Biochemical mechanisms of the antileishmanial activity of sodium stibogluconate. // Antimicrob Agents Chemother. 27:916−20(1985).

9. Brajtburg J. and Bolard J. Carrier effects on biological activity of amphotericin B. // Clin Microbiol Rev. 9:512−31 (1996).

10. Brennan P.J. and Nikaido H. The envelope of mycobacteria. // Annu Rev Biochem. 64:2963 (1995).

11. Brittingham A., Chen G., McGwire B.S., Chang K.P. and Mosser D.M. Interaction of Leishmania gp63 with cellular receptors for fibronectin. // Infect Immun. 67:4477−84 (1999).

12. Buckner F.S. and Wilson A.J. Colorimetric assay for screening compounds against Leishmania amastigotes grown in macrophages. // Am J Trop Med Hyg. 72:600−5 (2005).

13. Capul A.A., Barron Т., Dobson D.E., Turco S.J. and Beverley S.M. Two functionally divergent UDP-Gal nucleotide sugar transporters participate in phosphoglycan synthesis in Leishmania major. // J Biol Chem. 282:14 006−17 (2007).

14. Chakraborty A.K. and Majumder H.K. Mode of action of pentavalent antimonials: specific inhibition of type I DNA topoisomerase of Leishmania donovani. // Biochem Biophys Res Commun. 152:605−11 (1988).

15. Cook G.C. Leishmaniasis: some recent developments in chemotherapy. // J Antimicrob Chemother. 31:327−30 (1993).

16. Cox F.E. History of human parasitology. // Clin Microbiol Rev. 15:595−612 (2002).

17. Coyne M.J., Reinap В., Lee M.M. and Comstock L.E. Human symbionts use a host-like pathway for surface fucosylation. // Science. 307:1778−81 (2005).

18. Croft S.L., Davidson R.N. and Thornton E.A. Liposomal amphotericin В in the treatment of visceral leishmaniasis. // J Antimicrob Chemother. 28 Suppl В: 111−8 (1991).

19. Denton H., McGregor J.C. and Coombs G.H. Reduction of anti-leishmanial pentavalent antimonial drugs by a parasite-specific thiol-dependent reductase, TDR1. // Biochem J. 381:405−12(2004).

20. Dermine J.F., Scianimanico S., Prive C., Descoteaux A. and Desjardins M. Leishmania promastigotes require lipophosphoglycan to actively modulate the fusion properties of phagosomes at an early step of phagocytosis. // Cell Microbiol. 2:115−26 (2000).

21. Descoteaux A. A specialized pathway affecting virulence glycoconjugates of Leishmania. // Science. 269:1869−1872 (1995).

22. Descoteaux A. and Turco S.J. Glycoconjugates in Leishmania infectivity. // Biochim BiophysActa. 1455:341−52 (1999).

23. Desjardins M. and Descoteaux A. Inhibition of phagolysosomal biogenesis by the Leishmania lipophosphoglycan. // J Exp Med. 185:2061;8 (1997).

24. Desjeux P. Leishmaniasis. Public health aspects and control. // Clin Dermatol. 14:417−23 (1996).

25. Dever Т.Е., Glynias M.J. and Merrick W.C. GTP-binding domain: three consensus sequence elements with distinct spacing. // Proc Natl Acad Sci USA. 84:1814−8 (1987).

26. Ellis D. Amphotericin B: spectrum and resistance. // J Antimicrob Chemother. 49 Suppl 1:7−10 (2002).

27. Ferguson M.A. Colworth Medal Lecture. Glycosyl-phosphatidylinositol membrane anchors: the tale of a tail. // Biochem Soc Trans. 20:243−56 (1992).

28. Ferguson M.A. The structure, biosynthesis and functions of glycosylphosphatidylinositol anchors, and the contributions of trypanosome research. // J Cell Sci. 112 (Pt 17):2799−809 (1999).

29. Flohe S.B., Bauer C., Flohe S. and Moll H. Antigen-pulsed epidermal Langerhans cells protect susceptible mice from infection with the intracellular parasite Leishmania major. // Eur J Immunol. 28:3800−11 (1998).

30. Franke E.D., McGreevy P.B., Katz S.P. and Sacks D.L. Growth cycle-dependent generation of complement-resistant Leishmania promastigotes. // J Immunol. 134:2713−8 (1985).

31. Funk V.A., Thomas-Oates J.E., Kielland S.L., Bates P.A. and Olafson R.W. A unique, terminally glucosylated oligosaccharide is a common feature on Leishmania cell surfaces. // Mol Biochem Parasitol. 84:33−48 (1997).

32. Gantt K.R., Goldman T.L., McCormick M.L., Miller M.A., Jeronimo S.M., Nascimento E.T., Britigan B.E. and Wilson M.E. Oxidative responses of human and murine macrophages during phagocytosis of Leishmania chagasi. // J Immunol. 167:893−901 (2001).

33. Glaser T.A., Moody S.F., Handman E., Bacic A. and Spithill T.W. An antigenically distinct lipophosphoglycan on amastigotes of Leishmania major. // Mol Biochem Parasitol. 45:337−44(1991).

34. Goswami M., Dobson D.E., Beverley S.M. and Turco S.J. Demonstration by heterologous expression that the Leishmania SCA1 gene encodes an arabinopyranosyltransferase. // Glycobiology. 16:230−6 (2006).

35. Green P.J., Feizi Т., Stoll M.S., Thiel S., Prescott A. and McConville M.J. Recognition of the major cell surface glycoconjugates of Leishmania parasites by the human serum mannan-binding protein. // Mol Biochem Parasitol. 66:319−28 (1994).

36. Ha D.S., Schwarz J.K., Turco S.J. and Beverley S.M. Use of the green fluorescent protein as a marker in transfected Leishmania. // Mol Biochem Parasitol. 77:57−64 (1996).

37. Hanks S.K., Quinn A.M. and Hunter T. The protein kinase family: conserved features and deduced phylogeny of the catalytic domains. // Science. 241:42−52 (1988).

38. Harms G. 2003. Лейшманиоз. In Инфекционная дерматология Ed. P.A.M. W. Blackwell Verlag, Berlin, Wien, pp 521−530.

39. Holm A., Tejle K., Gunnarsson Т., Magnusson K.E., Descoteaux A. and Rasmusson B. Role of protein kinase С alpha for uptake of unopsonized prey and phagosomal maturation in macrophages. // Biochem Biophys Res Commun. 302:653−8 (2003).

40. Hong К M.D., Beverley SM, Turco SJ. The Leishmania GDP-mannose transporter is an autonomous, multi-specific, hexameric complex of LPG2 subunits. // Biochemistry. 39:2013;2022 (2000).

41. Ilg T. Proteophosphoglycans of Leishmania. // Parasitol Today. 16:489−97 (2000).

42. Ilg T. Lipophosphoglycan of the protozoan parasite Leishmania: stageand species-specific importance for colonization of the sandfly vector, transmission and virulence to mammals. // Med Microbiol Immunol. 190:13−7 (2001).

43. Ilg Т., Etges R., Overath P., McConville M.J., Thomas-Oates J., Thomas J., Homans S.W. and Ferguson M.A. Structure of Leishmania mexicana lipophosphoglycan. // J Biol Chem. 267:6834−40 (1992).

44. Ilg Т., Stierhof Y.D., Craik D., Simpson R., Handman E. and Bacic A. Purification and structural characterization of a filamentous, mucin-like proteophosphoglycan secreted by Leishmania parasites. // J Biol Chem. 271:21 583−96 (1996).

45. Ilg Т., Stierhof Y.D., Wiese M., McConville M.J. and Overath P. Characterization of phosphoglycan-containing secretory products of Leishmania. // Parasitology. 108 Suppl: S63−71 (1994).

46. Ilgoutz S.C., Mullin K.A., Southwell B.R. and McConville M.J. Glycosylphosphatidylinositol biosynthetic enzymes are localized to a stable tubular subcompartment of the endoplasmic reticulum in Leishmania mexicana. // EMBO J. 18:3643−54 (1999a).

47. Ilgoutz S.C., Zawadzki J.L., Ralton J.E. and McConville M.J. Evidence that free GPI glycolipids are essential for growth of Leishmania mexicana. // EMBO J. 18:2746−55 (1999b).

48. Irwin M. and Leaver A. Use of the orcinol-sulphuric acid reaction in the positive identification of certain monosaccharides from a salivary mucoid. // Nature. 177:1126 (1956).

49. Ishihara H., Massaro D.J. and Heath E.C. The metabolism of L-fucose. 3. The enzymatic synthesis of beta-L-fiicose 1-phosphate. // J Biol Chem. 243:1103−9 (1968).

50. Jha Т.К. Evaluation of diamidine compound (pentamidine isethionate) in the treatment resistant cases of kala-azar occurring in North Bihar, India. // Trans R Soc Trop Med Hyg. 77:167−70(1983).

51. Joshi P.B., Kelly B.L., Kamhawi S., Sacks D.L. and McMaster W.R. Targeted gene deletion in Leishmania major identifies leishmanolysin (GP63) as a virulence factor. // Mol Biochem Parasitol. 120:33−40 (2002).

52. Joshi P.B., Sacks D.L., Modi G. and McMaster W.R. Targeted gene deletion of Leishmania major genes encoding developmental stage-specific leishmanolysin (GP63). // Mol Microbiol. 27:519−30 (1998).

53. Kamhawi S., Ramalho-Ortigao M., Pham V.M., Kumar S., Lawyer P.G., Turco S.J., Barillas-Mury C., Sacks D.L. and Valenzuela J.G. A role for insect galectins in parasite survival.//Cell. 119:329−41 (2004).

54. Kayser O., Olbrich C., Croft S.L. and Kiderlen A.F. Formulation and biopharmaceutical issues in the development of drug delivery systems for antiparasitic drugs. // Parasitol Res. 90 Suppl 2: S63−70 (2003).

55. Khamesipour A., Dowlati Y., Asilian A., Hashemi-Fesharki R., Javadi A., Noazin S. and Modabber F. Leishmanization: use of an old method for evaluation of candidate vaccines against leishmaniasis. // Vaccine. 23:3642−8 (2005).

56. Killick-Kendrick R. Some epidemiological consequences of the evolutionary fit between Leishmaniae and their phlebotomine vectors. // Bull Soc Pathol Exot Filiales. 78:747−55 (1985).

57. Killick-Kendrick R. Phlebotomine vectors of the leishmaniases: a review. // Med Vet Entomol. 4:1−24 (1990).

58. Kotake Т., Hojo S., Tajima N., Matsuoka K., Koyama T. and Tsumuraya Y. A bifUnctional enzyme with L-fucokinase and GDP-L-fucose pyrophosphorylase activities salvages free L-fucose in Arabidopsis. // J Biol Chem. 283:8125−35 (2008).

59. Larabi M., Pages N., Pons F., Appel M., Gulik A., Schlatter J., Bouvet S. and Barratt G. Study of the toxicity of a new lipid complex formulation of amphotericin B. // J Antimicrob Chemother. 53:81−8 (2004).

60. Lawyer P.G., Ngumbi P.M., Anjili C.O., Odongo S.O., Mebrahtu Y.B., Githure J.I., Koech.

61. D.K. and Roberts C.R. Development of Leishmania major in Phlebotomus duboscqi and Sergentomyia schwetzi (Diptera: Psychodidae). // Am J Trop Med Hyg. 43:31−43 (1990).

62. Legare D., Papadopoulou В., Roy G., Mukhopadhyay R., Haimeur A., Dey S., Grondin K., Brochu C., Rosen B.P. and Ouellette M. Efflux systems and increased trypanothione levels in arsenite-resistant Leishmania. // Exp Parasitol. 87:275−82 (1997).

63. Lessa M.M., Lessa H.A., Castro T.W., Oliveira A., Scherifer A., Machado P. and Carvalho.

64. E.M. Mucosal leishmaniasis: epidemiological and clinical aspects. // Braz J Otorhinolaryngol. 73:843−7 (2007).

65. Lillico S., Field M.C., Blundell P., Coombs G.H. and Mottram J.C. Essential roles for GPI-anchored proteins in African trypanosomes revealed using mutants deficient in GPI8. // Mol Biol Cell. 14:1182−94 (2003).

66. Lo H., Tang C. and Exley R. Mechanisms of avoidance of host immunity by Neisseria meningitidis and its effect on vaccine development. // Lancet Infect Dis. 9:418−427 (2009).

67. Lovelace J.K., Dwyer D.M. and Gottlieb M. Purification and characterization of the extracellular acid phosphatase of Leishmania donovani. // Mol Biochem Parasitol. 20:24 351 (1986).

68. Lucumi A., Robledo S., Gama V. and Saravia N.G. Sensitivity of Leishmania viannia panamensis to pentavalent antimony is correlated with the formation of cleavable DNA-protein complexes. // Antimicrob Agents Chemother. 42:1990;5 (1998).

69. Ma D., Russell D.G., Beverley S.M. and Turco S.J. Golgi GDP-mannose uptake requires Leishmania LPG2. A member of a eukaryotic family of putative nucleotide-sugar transporters. // J Biol Chem. 272:3799−805 (1997).

70. Mauel J. Vaccination against Leishmania infections. // Curr Drug Targets Immune Endocr Metabol Disord. 2:201−26 (2002).

71. McConville M.J. Glycosylated-phosphatidylinositols as virulence factors in Leishmania. // Cell Biol Int Rep. 15:779−98 (1991).

72. McConville MJ B.A. A family of glycoinositol phospholipids from Leishmania major. Isolation, characterization, and antigenicity. // J Biol Chem. 264:757−766 (1989).

73. McConville M.J. and Blackwell J.M. Developmental changes in the glycosylated phosphatidylinositols of Leishmania donovani. Characterization of the promastigote and amastigote glycolipids. // J Biol Chem. 266:15 170−9 (1991).

74. McConville M.J. and Ferguson M.A. The structure, biosynthesis and function of glycosylated phosphatidylinositols in the parasitic protozoa and higher eukaryotes. // Biochem J. 294 (Pt 2):305−24 (1993).

75. McConville M.J., Mullin K.A., Ilgoutz S.C. and Teasdale R.D. Secretory pathway of trypanosomatid parasites. // Microbiol Mol Biol Rev. 66:122−54- table of contents (2002).

76. McConville M.J., Schneider P., Proudfoot L., Masterson C. and Ferguson M.A. The developmental regulation and biosynthesis of GPI-related structures in Leishmania parasites. // Braz J Med Biol Res. 27:139−44 (1994).

77. McConville M.J., Schnur L.F., Jaffe C. and Schneider P. Structure of Leishmania lipophosphoglycan: interand intra-specific polymorphism in Old World species. // Biochem J. 310 (Pt 3):807−18 (1995).

78. McConville M.J., Thomas-Oates J.E., Ferguson M.A. and Homans S.W. Structure of the lipophosphoglycan from Leishmania major. // J Biol Chem. 265:19 611−23 (1990).

79. McConville M.J., Turco S.J., Ferguson M.A. and Sacks D.L. Developmental modification of lipophosphoglycan during the differentiation of Leishmania major promastigotes to an infectious stage. // EMBO J. 11:3593−600 (1992).

80. McCoy J.J., Beetham J.K., Ochs D.E., Donelson J.E. and Wilson M.E. Regulatory sequences and a novel gene in the msp (GP63) gene cluster of Leishmania chagasi. // Mol Biochem Parasitol. 95:251−65 (1998).

81. McGwire B.S., Chang K.P. and Engman D.M. Migration through the extracellular matrix by the parasitic protozoan Leishmania is enhanced by surface metalloprotease gp63. // Infect Immun. 71:1008−10 (2003).

82. McNeely T.B., Rosen G., Londner M.V. and Turco S.J. Inhibitory effects on protein kinase С activity by lipophosphoglycan fragments and glycosylphosphatidylinositol antigens of the protozoan parasite Leishmania. // Biochem J. 259:601−4 (1989).

83. McNeil M., Darvill A.G., Fry S.C. and Albersheim P. Structure and function of the primary cell walls of plants. // Annu Rev Biochem. 53:625−63 (1984).

84. Medina-Acosta E., Karess R.E. and Russell D.G. Structurally distinct genes for the surface protease of Leishmania mexicana are developmentally regulated. // Mol Biochem Parasitol. 57:31−45 (1993).

85. Medina-Acosta E., Karess R.E., Schwartz H. and Russell D.G. The promastigote surface protease (gp63) of Leishmania is expressed but differentially processed and localized in the amastigote stage. // Mol Biochem Parasitol. 37:263−73 (1989).

86. Mengeling B.J., Beverley S.M. and Turco S.J. Designing glycoconjugate biosynthesis for an insidious intent: phosphoglycan assembly in Leishmania parasites. // Glycobiology. 7:873−80 (1997).

87. Menon A.K., Mayor S. and Schwarz R.T. Biosynthesis of glycosyl-phosphatidylinositol lipids in Trypanosoma brucei: involvement of mannosyl-phosphoryldolichol as the mannose donor. // EMBO J. 9:4249−58 (1990).

88. Miao L., Stafford A., Nir S., Turco S.J., Flanagan T.D. and Epand R.M. Potent inhibition of viral fusion by the lipophosphoglycan of Leishmania donovani. // Biochemistry. 34:4676−83 (1995).

89. Moller W. and Amons R. Phosphate-binding sequences in nucleotide-binding proteins. // FEBS. 186:2622−2628 (1985).

90. Moody S.F., Handman E., McConville M.J. and Bacic A. The structure of Leishmania major amastigote lipophosphoglycan. // J Biol Chem. 268:18 457−66 (1993).

91. Moss J.M., Reid G.E., Mullin K.A., Zawadzki J.L., Simpson R.J. and McConville M.J. Characterization of a novel GDP-mannose:Serine-protein mannose-1-phosphotransferase from Leishmania mexicana. // J Biol Chem. 274:6678−88 (1999).

92. Mottram J.C. and Coombs G.H. Leishmania mexicana: enzyme activities of amastigotes and promastigotes and their inhibition by antimonials and arsenicals. // Exp Parasitol. 59:151−60 (1985).

93. Mukhopadhyay R., Dey S., Xu N., Gage D., Lightbody J., Ouellette M. and Rosen B.P. Trypanothione overproduction and resistance to antimonials and arsenicals in Leishmania. // Proc Natl Acad Sci USA. 93:10 383−7 (1996).

94. Murray H.W. Treatment of visceral leishmaniasis (kala-azar): a decade of progress and future approaches. // Int J Infect Dis. 4:158−77 (2000).

95. Neuber H. Leishmaniasis. // J Dtsch Dermatol Ges. 6:754−65 (2008).

96. Okwor I. and Uzonna J. Vaccines and vaccination strategies against human cutaneous leishmaniasis. // Hum Vaccin. 52 009).

97. Olliaro P.L. and Bryceson A.D. Practical progress and new drugs for changing patterns of leishmaniasis. // Parasitol Today. 9:323−8 (1993).

98. Orlandi P.A., Jr. and Turco S.J. Structure of the lipid moiety of the Leishmania donovani lipophosphoglycan. // J Biol Chem. 262:10 384−91 (1987).

99. Pastuszak I., Ketchum C., Hermanson G., Sjoberg E.J., Drake R. and Elbein A.D. GDP-L-fucose pyrophosphorylase. Purification, cDNA cloning, and properties of the enzyme. // J Biol Chem. 273:30 165−74 (1998).

100. Peters C., Kawakami M., Kaul M., Ilg Т., Overath P. and Aebischer T. Secreted proteophosphoglycan of Leishmania mexicana amastigotes activates complement by triggering the mannan binding lectin pathway. // Eur J Immunol. 27:2666−72 (1997a).

101. Peters С., Stierhof Y.D. and Ilg T. Proteophosphoglycan secreted by Leishmania mexicana amastigotes causes vacuole formation in macrophages. // Infect Immun. 65:783−6 (1997b).

102. Piedrafita D., Proudfoot L., Nikolaev A.V., Xu D., Sands W., Feng G.J., Thomas E., Brewer J., Ferguson M.A., Alexander J. and Liew F.Y. Regulation of macrophage IL-12 synthesis by Leishmania phosphoglycans. // Eur J Immunol. 29:235−44 (1999).

103. Pimenta P.F., Turco S.J., McConville M.J., Lawyer P.G., Perkins P.V. and Sacks D.L. Stage-specific adhesion of Leishmania promastigotes to the sandfly midgut. // Science. 256:1812−5 (1992).

104. Ponte-Sucre A., Heise D. and Moll H. Leishmania major lipophosphoglycan modulates the phenotype and inhibits migration of murine Langerhans cells. // Immunology. 104:462−7 (2001).

105. Proudfoot L., O’Donnell C.A. and Liew F.Y. Glycoinositolphospholipids of Leishmania major inhibit nitric oxide synthesis and reduce leishmanicidal activity in murine macrophages. // Eur J Immunol. 25:745−50 (1995).

106. Puentes S.M., Da Silva R.P., Sacks D.L., Hammer C.H. and Joiner K.A. Serum resistance of metacyclic stage Leishmania major promastigotes is due to release of C5b-9. // J Immunol. 145:4311−6(1990).

107. Puentes S.M., Dwyer D.M., Bates P.A. and Joiner K.A. Binding and release of C3 from Leishmania donovani promastigotes during incubation in normal human serum. // J Immunol. 143:3743−9 (1989).

108. Puentes S.M., Sacks D.L., da Silva R.P. and Joiner K.A. Complement binding by two developmental stages of Leishmania major promastigotes varying in expression of a surface lipophosphoglycan. // J Exp Med. 167:887−902 (1988).

109. Pyle R.L. Clinical pharmacology of amphotericin B. // J Am Vet Med Assoc. 179:83−4 (1981).

110. Reithinger R., Brooker S. and Kolaczinski J.H. Visceral leishmaniasis in eastern Africa-current status. // Trans R Soc Trap Med Hyg. 101:1169−70 (2007).

111. Remer K.A., Apetrei C., Schwarz Т., Linden C. and Moll H. Vaccination with plasmacytoid dendritic cells induces protection against infection with Leishmania major in mice. // Eur J Immunol. 37:2463−73 (2007).

112. Ribeiro J.M., Vachereau A., Modi G.B. and Tesh R.B. A novel vasodilatory peptide from the salivary glands of the sand fly Lutzomyia longipalpis. // Science. 243:212−4 (1989).

113. Russell D.G. and Alexander J. Effective immunization against cutaneous leishmaniasis with defined membrane antigens reconstituted into liposomes. // J Immunol. 140:1274−9 (1988).

114. Ryan K.A., Garraway L.A., Descoteaux A., Turco S.J. and Beverley S.M. Isolation of virulence genes directing surface glycosyl-phosphatidylinositol synthesis by functional complementation of Leishmania. // Proc Natl Acad Sci USA. 90:8609−13 (1993).

115. Sacks D. and Sher A. Evasion of innate immunity by parasitic protozoa. // Nat Immunol. 3:1041−7 (2002).

116. Sacks D.L., Brodin T.N. and Turco S.J. Developmental modification of the lipophosphoglycan from Leishmania major promastigotes during metacyclogenesis. // Mol Biochem Parasitol. 42:225−33 (1990).

117. Sacks D.L. and da Silva R.P. The generation of infective stage Leishmania major promastigotes is associated with the cell-surface expression and release of a developmentally regulated glycolipid. // J Immunol. 139:3099−106 (1987).

118. Sacks D.L., Modi G., Rowton E., Spath G., Epstein L., Turco S.J. and Beverley S.M. The role of phosphoglycans in Leishmania-sand fly interactions. // Proc Natl Acad Sci USA. 97:406−11 (2000).

119. Sacks D.L. and Perkins P.V. Development of infective stage Leishmania promastigotes within phlebotomine sand flies. // Am J Trop Med Hyg. 34:456−9 (1985).

120. Schneider P., McConville M.J. and Ferguson M.A. Characterization of GDP-alpha-D-arabinopyranose, the precursor of D-Arap in Leishmania major lipophosphoglycan. // J Biol Chem. 269:18 332−7 (1994).

121. Schneider P., Treumann A., Milne K.G., McConville M.J., Zitzmann N. and Ferguson M.A. Structural studies on a lipoarabinogalactan of Crithidia fasciculata. // Biochem J. 313 (Pt 3):963−71 (1996).

122. Schofield L., McConville M.J., Hansen D., Campbell A.S., Fraser-Reid В., Grusby M.J. and Tachado S.D. CDld-restricted immunoglobulin G formation to GPI-anchored antigens mediated by NKT cells. // Science. 283:225−9 (1999).

123. Scott P., Pearce E., Natovitz P. and Sher A. Vaccination against cutaneous leishmaniasis in a murine model. I. Induction of protective immunity with a soluble extract of promastigotes. //J Immunol. 139:221−7 (1987a).

124. Scott P., Pearce E., Natovitz P. and Sher A. Vaccination against cutaneous leishmaniasis in a murine model. II. Immunologic properties of protective and nonprotective subfractions of soluble promastigote extract. // J Immunol. 139:3118−25 (1987b).

125. Shaw J.J. 2002. New world Leishmaniasis: the ecology of Leishmaniasis and the diversity of leishmanial species in Central and South America. In World Class Parasites: Leishmania Ed. F.J. P. Kluwer Academic Publishers.

126. Sieling P.A., Chatteijee D., Porcelli S.A., Prigozy T.I., Mazzaccaro R.J., Soriano Т., Bloom B.R., Brenner M.B., Kronenberg M., Brennan P.J. and et al. CD 1-restricted T cell recognition of microbial lipoglycan antigens. // Science. 269:227−30 (1995).

127. Soares R.P. and Turco S.J. Lutzomyia longipalpis (Diptera: Psychodidae: Phlebotominae): a review. // An Acad Bras Cienc. 75:301−30 (2003).

128. Spath G.F., Garraway L.A., Turco S.J. and Beverley S.M. The role (s) of lipophosphoglycan (LPG) in the establishment of Leishmania major infections in mammalian hosts. // Proc Natl Acad Sci USA. 100:9536−41 (2003).

129. Spath GF L.L., Segawa H, Sacks DL, Turco SJ, Beverley SM. Persistence without pathology in phosphoglycan-deficient Leishmania major. // Science. 301:1241−1243 (2003).

130. Sundar S. Drug resistance in Indian visceral leishmaniasis. // Trop Med Int Health. 6:84 954 (2001).

131. Tachado S.D., Mazhari-Tabrizi R. and Schofield L. Specificity in signal transduction among glycosylphosphatidylinositols of Plasmodium falciparum, Trypanosoma brucei, Trypanosoma cruzi and Leishmania spp. // Parasite Immunol. 21:609−17 (1999).

132. Titus R.G., Gueiros-Filho F.J., de Freitas L.A. and Beverley S.M. Development of a safe live Leishmania vaccine line by gene replacement. // Proc Natl Acad Sci USA. 92:1 026 771 (1995).

133. Tonetti M., Sturla L., Bisso A., Benatti U. and De Flora A. Synthesis of GDP-L-fucose by the human FX protein. // J Biol Chem. 271:27 274−9 (1996).

134. Tonetti M., Sturla L., Bisso A., Zanardi D., Benatti U. and De Flora A. The metabolism of 6-deoxyhexoses in bacterial and animal cells. // Biochimie. 80:923−31 (1998).

135. Turco S.J. The lipophosphoglycan of Leishmania. // Subcell Biochem. 18:73−97 (1992).

136. Turco S.J. and Descoteaux A. The lipophosphoglycan of Leishmania parasites. // Annu Rev Microbiol. 46:65−94 (1992).

137. Turco S.J., Wilkerson M.A. and Clawson D.R. Expression of an unusual acidic glycoconjugate in Leishmania donovani. // J Biol Chem. 259:3883−9 (1984).

138. Turnock D.C. and Ferguson M.A. Sugar nucleotide pools of Trypanosoma brucei, Trypanosoma crazi, and Leishmania major. // Eukaryot Cell. 6:1450−63 (2007).

139. Van Voorhis W.C. Therapy and prophylaxis of systemic protozoan infections. // Drugs. 40:176−202(1990).

140. Wilson W.D., Tanious F.A., Mathis A., Tevis D., Hall J.E. and Boykin D.W. Antiparasitic compounds that target DNA. // Biochimie. 90:999−1014 (2008).

141. Wyllie S., Cunningham M.L. and Fairlamb A.H. Dual action of antimonial drugs on thiol redox metabolism in the human pathogen Leishmania donovani. // J Biol Chem. 279:39 925−32 (2004).

142. Yao C., Donelson J.E. and Wilson M.E. The major surface protease (MSP or GP63) of Leishmania sp. Biosynthesis, regulation of expression, and function. // Mol Biochem Parasitol. 132:1−16(2003).

143. Zaph C., Uzonna J., Beverley S.M. and Scott P. Central memory T cells mediate long-term immunity to Leishmania major in the absence of persistent parasites. // Nat Med. 10:110 410 (2004).

144. Zawadzki J., Scholz C., Currie G., Coombs G.H. and McConville M.J. The glycoinositolphospholipids from Leishmania panamensis contain unusual glycan and lipid moieties. // J Mol Biol. 282:287−99 (1998).

145. Zilberstein D. and Shapira M. The role of pH and temperature in the development of Leishmania parasites. // Annu Rev Microbiol. 48:449−70 (1994).

Показать весь текст
Заполнить форму текущей работой