Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Жизнеспособность фрагментов мицелия почвенных микроскопических грибов в разных экологических условиях

Диссертация: Жизнеспособность фрагментов мицелия почвенных микроскопических грибов в разных экологических условиях
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Обнаружено, что используемые в почвенных микробиологических анализах способы обработки образцов — ультразвуковое воздействие и взбалтывание на качалке — не одинаково влияют на способность к росту фрагментов мицелия и на уровень прорастания спор грибов, что может определять качественный и количественный состав учитываемых в посевах микроскопических грибов. Жизнеспособность фрагментов мицелия… Читать ещё >

Жизнеспособность фрагментов мицелия почвенных микроскопических грибов в разных экологических условиях (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Обзор литературы
  • 1. Вопросы оценки живого мицелия в почвах
  • 2. Особенности существования микроскопических грибов в почвенных условиях
    • 2. 1. Особенности развития и формирования колоний микроскопических грибов в почвенных условиях
    • 2. 2. Причины возможной фрагментации мицелия грибов в почвах
  • 3. Рост и развитие колоний микроскопических грибов на твердых питательных средах
    • 3. 1. Характеристика фаз роста «типичной» грибной колонии
    • 3. 2. Механизмы роста мицелия при развитии «типичной» грибной колонии
  • Экспериментальная часть
  • 4. Объекты и методы исследования
    • 4. 1. Объекты
    • 4. 2. Методы исследования
  • Результаты
  • 5. Определение жизнеспособности фрагментов мицелия грибов
    • 5. 1. Влияние на жизнеспособность фрагментов мицелия и прорастание спор микроскопических грибов различных способов обработки, используемых при подготовке к почвенным микробиологическим анализам
    • 5. 2. Оценка жизнеспособности фрагментов мицелия с использованием красителей
    • 5. 3. Определение величины жизнеспособного фрагмента гифы
    • 5. 4. Зависимость жизнеспособности фрагментов мицелия
  • А. alternata от плотности закладки септ в гифах
    • 5. 5. Влияние экологических условий на жизнеспособность фрагментов мицелия микроскопических грибов
    • 5. 6. Сопоставление уровня прорастания спор грибов и жизнеспособности фрагментов мицелия в исследованном интервале экологических условий
  • 6. Особенности формирования микроколоний грибов из фрагментов мицелия и из спор в разных экологических условиях
    • 6. 1. Формирование микроколоний из фрагментов гиф и из спор в стандартных условиях культивирования
    • 6. 2. Фунгистатический эффект при прорастании спор и фрагментов мицелия
    • 6. 3. Влияние загрязнения кадмием на показатели роста мицелия
    • 6. 4. Сроки спорообразования в микроколониях грибов
    • 6. 5. Влияние экологических факторов на морфологию мицелия грибов
  • 7. Жизнеспособность фрагментов мицелия и спор микроскопических грибов в почвенных условиях
    • 7. 1. Жизнеспособность спор и рост их них мицелия в почве
    • 7. 2. Жизнеспособность фрагментов мицелия и их рост в почве
  • 8. Обсуждение
  • Выводы

Актуальность проблемы. Почвенные микроскопические грибы — важные функциональные компоненты наземных экосистем. Именно почвенными грибами активно осуществляются процессы деструкции и трансформации органических, ряда минеральных веществ в почвах, что происходит благодаря развитой у грибов мицелиальной системе, адсорбционному типу питания, большому пулу экзометаболитов и т. д. [Аристовская, 1980; Звягинцев и др., 1992; Мюллер, Леффлер, 1995; Lynch, 1988; Rayner, 1988; Christensen, 1989]. В природе микроскопические грибы могут находиться в виде мицелия и спор. Особенности прорастания спор, феномен фунгистазиса, формирование из спор колоний грибов, кинетические основы роста — изучены достаточно подробно и в лабораторных и в некоторых естественных условиях [Мирчинк, 1988; Van Etten et al., 1983; Trinci, 1984; Lockwood, 1992; Prosser, 1993; Rayner et al., 1995; и др.]. Однако, и в природе, и при посевах на питательные среды развитие колоний грибов происходит не только из спор, но и из мицелия или его частей. Фрагментация мицелия грибов в почвах происходит в результате жизнедеятельности беспозвоночных животных [Козловская, 1984; Гузев и др., 1986; Dash et al., 1986; Lynch, Hobbie, 1988; Hedlung, Augustsson, 1995], роста корней растений, высыхания, замерзания, оттаивания почв и т. д. [Почвоведение, 1989], а также в лабораторных исследованиях при подготовке почвенных образцов к микробиологическим анализам [Методы ., 1991]. Тем не менее, жизнеспособность отдельных фрагментов гиф, их дальнейший рост, закономерности развития из них колоний грибов — до сих пор фактически не изучены.

Цель работы. Изучение жизнеспособности фрагментов мицелия некоторых видов почвенных микроскопических грибов и особенностей развития из них микроколоний в ряде экологических условий для более полного понимания их роста в почве.

Задачи исследования:

1. Определение влияния фрагментации мицелия некоторых видов почвенных микроскопических грибов на жизнеспособность фрагментов мицелия разной длины в лабораторных и почвенных условиях.

2. Исследование влияния на жизнеспособность фрагментов грибного мицелия ряда экологических факторов (концентрации органического вещества, температуры, кислотности, загрязнения тяжёлым металлом).

3. Изучение особенностей развития мицелия из фрагментов гиф микроскопических грибов в зависимости от экологических условий.

4. Выявление специфики роста микроколоний почвенных грибов при развитии из спор и фрагментов мицелия.

Научная новизна. В работе впервые исследовано влияние фрагментации мицелия почвенных грибов на его жизнеспособность. Установлено, что жизнеспособность фрагментов мицелия зависит от 1) строения мицелия гриба- 2) начальной длины фрагмента- 3) экологических условий среды.

Для исследованных видов грибов определены размеры минимальных способных к росту фрагментов мицелиявведено понятие «критической величины фрагмента» — КВФпоказано, что величина минимального способного к росту фрагмента определяется строением мицелия (септированный, несептированный), плотностью закладки септ в гифах, зависит от способа фрагментации грибного мицелия и может увеличиваться в неблагоприятных условиях среды.

Обнаружено, что используемые в почвенных микробиологических анализах способы обработки образцов — ультразвуковое воздействие и взбалтывание на качалке — не одинаково влияют на способность к росту фрагментов мицелия и на уровень прорастания спор грибов, что может определять качественный и количественный состав учитываемых в посевах микроскопических грибов.

В ряде экологических условий установлено наличие явления фунгистазиса как при прорастании спор, так и при росте фрагментов мицелия грибов.

При вегетативном (из фрагментов мицелия) и бесполом (из спор) размножении на ранней стадии роста микроколоний грибов отмечены отличия в длительности лаг-фазы, экспоненциальной фазы роста, скоростях роста и характере ветвления растущего мицелия, которые в линейной фазе роста нивелируются.

Показано, что оптимальные условия для начала образования колоний микроскопических грибов при вегетативном и бесполом размножении могут различаться, так как жизнеспособность фрагментов мицелия и прорастание спор грибов могут достигать наибольших значений при разном уровне проявления экологических факторов.

Практическая ценность. Данные о жизнеспособности фрагментов мицелия почвенных грибов и особенностях роста фрагментов гиф и спор — разных колониеобразующих единиц (КОЕ) — имеют методическое значение при выборе способа обработки образцов для почвенно-микологических анализов и интерпретации результатов.

Установленные закономерности формирования микроколоний грибов при вегетативном и бесполом размножении в исследованном интервале экологических условий дают более полное представление о развитии микроскопических грибов и судьбе фрагментов грибного мицелия в почвах.

Выявленные особенности развития микроскопических грибов могут использоваться при решении практических задач в целях биотехнологии для культивирования колоний грибов, развивающихся из разных КОЕ.

Материалы диссертации используются на факультете почвоведения МГУ им. М. В. Ломоносова при чтении курса лекций «Почвенная микология» .

Автор выражает глубокую и искреннюю признательность своему научному руководителю ст.н.с., к.б.н. О. Е. Марфениной, приносит слова благодарности всем сотрудникам каф. биологии почв ф-та почвоведения МГУ, и особенно проф., д.б.н. Д. Г. Звягинцеву, проф., д.б.н., проф. М. М. Умарову, доц., к.б.н. И. П. Бабьевой, д.б.н. Г. М. Зеновой, к.б.н. А. В. Куракову, к.б.н. П. А. Кожевину, к.б.н. Б. А. Бызову, к.б.н. И. Н. Скворцовой, к.б.н. Т. Г. Добровольской, к.б.н. Л. В. Лысак за проявленный интерес и полезные советы в процессе работы над диссертацией, а также А. Семиколенных за помощь в подготовке иллюстративных фотографий.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

выводы.

1. На примере почвенных микроскопических грибов Alternaria alternata (Fries) Keissler, Mucor hiemaiis Wehmer, Penicillium spinulosum Thom показано, что фрагментация мицелия оказывает влияние на его жизнеспособность. Наименее жизнеспособны короткие фрагменты, с увеличением длины фрагментов их жизнеспособность увеличивается.

2. Жизнеспособность фрагментов мицелия почвенных грибов зависит от строения мицелия, его септированности. Мелкие фрагменты мицелия с более плотной частотой закладки септ более жизнеспособны. В неблагоприятных условиях среды может происходить увеличение септированности мицелия грибов, что показано на примере A alternata.

3. Фрагменты меньше определенной длины — критической величины фрагментак росту не способны. КВФ определяется строением мицелия: виды с септированным мицелием характеризуются меньшим значением КВФ по сравнению с видами, имеющими ценоцитный мицелий.

4. Способ подготовки почв к анализу влияет на жизнеспособность фрагментов мицелия и уровень прорастания спор, что может определять результаты микологических анализов почв.

5. При развитии микроколоний грибов из фрагментов мицелия и из спор на первых этапах роста отмечены различия в длительности лаг-фазы и экспоненциальной фазы роста, скоростях роста, ветвлении. В линейной фазе роста различия нивелируются.

6. Под воздействием ряда экологических факторов (концентрация органического вещества, температура, кислотность, загрязнение кадмием) изменяются жизнеспособность фрагментов мицелия и уровень прорастания спор грибов, а также ростовые показатели (скорости роста, ветвление) и морфологические характеристики растущего мицелия (диаметр гиф, септированность). Оптимальные условия для жизнеспособности фрагментов под влиянием какого-либо экологического фактора, как правило, могут быть несколько отличны от оптимальных условий для прорастания спор, то есть вегетативное и бесполое размножение могут иметь разные экологические оптимумы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т.В. Микробиология процессов почвообразования. JL: Наука, 1980. 126с.
  2. КБ., Бойцова Л. Ю., Потапова Т. В., Смолянинов В. В. «Единица гифального роста» Neurospora crassa как экспериментальная модель для анализа концепции информационно-энергетического модуля // Биологические мембраны, 1996 (а). Т. 13, № 1, с.29−39.
  3. КБ., Вачадзе Д. М., Замятнин A.A., мл., Пожарская Т. Р., Рочее Ю. А., Селезнёва И. И. Цыганов М.А., Чайлахян Л. М. Компартментализация определяет динамику роста многоклеточной системы // Биологические мембраны, 1996 (б). Т. 13, № 3, с.289−298
  4. E.H. Сравнительно-экологическое исследование микромицетов из почв отдалённых географических районов. Автореферат дисс.к.б.н. Биологический факультет МГУ им. М. В. Ломоносова. М., 1983. 18с.
  5. З.Э. Физиология и биохимия грибов. М.: Изд-во МГУ, 1988. 227с.
  6. A.A. Роль растительных выделений в развитии грибных инфекций // Микология и Фитопатология, 1969. Т. З, вып.6, с. 50?-5Ч?.
  7. В.И. Определение роста и биосинтетической активности грибов / Методы экспериментальной микологии. Под общ. ред. В. И. Билай. 1973. С.5−16.
  8. Р.В. О степенном росте мицелиальных колоний в моделях, построенных на базе ветвящихся с переменным режимом процессов / Вероятностные методы исследования систем с бесконечным числом степеней свободы. Киев: Ин-т математики АН УССР, 1986. С. 13−17.
  9. Л.Л. Роль грибов в формировании мико- и микробиоты почв естественных и нарушенных биоценозов и агроэкосистем. Автореферат дисс. докт.биол.наук. М.: МГУ, Биологический ф-т, 1997. 36 с.
  10. Л.Л. Эволюция покоящихся стадий у грибов // Микология, 1980. Т. 14, вып. З, с.256−259.
  11. Т.С., Мирчинк Т. Г. Динамика грибной биомассы в гумусово-аккумулятивных горизонтах некоторых почв //Почвоведение, 1984. № 4, с.86−91.
  12. Т.С., Мирчинк Т. Г. Определение грибной биомассы в почвах методом мембранных фильтров //Микология и фитопатология, 1983 (б). Т. 17, вып.6, с. 517−520.
  13. Т.С., Мирчинк Т. Г. Распределение биомассы грибов в некоторых почвенных типах//Вестник Моск. ун-та. Сер 17, Почвоведение, 1983 (а). № 4, с.36−40.
  14. Е.А. Математическая статистика в почвоведении: Учебник. М.: Изд-во МГУ, 1995. 320с.
  15. A.B., Зданович В. В. Рост колоний Penicillium chrysogenum Thorn при постоянных и переменных температурах // Микология и фитопатология, 1997. Т.31, вып.1, с.52−56.
  16. Н.В. Физиологическое состояние почвенных микроорганизмов при остром дефиците питательных веществ. Автореф.дисс.канд.биол.наук. Л., 1989. 24с.
  17. Л.Н. Почвенные грибы Дальнего Востока. Гифомицеты. Ленинград: Наука. 1986. 192 с.
  18. М.А. Законы роста микробных колоний и размножение. Петроград: «Квара», 1915. 60с.
  19. H.H., Василевская А. И. Экстремальная экология грибов в природе и эксперименте. Киев: Наука думка, 1982. 168с.
  20. Д.Г. Взаимодействие микроорганизмов с твердыми поверхностями. М., 1973. 176 с.
  21. Д.Г. Почва и микрорганизмы. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1987.256 с.
  22. Д.Г., Асеева И. В., Бабьева И. П., Мирчинк Т. Г. Методы почвенной микробиологии и биохимии. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1980. 224 с.
  23. Д.Г., Добровольская Т. Г., Бабьева И. П., Зенова Г. М., Лысак Л. В., Марфенина O.E. Роль микроорганизмов в биогеоценотических функциях почв // Почвоведение, 1992. № 6, с.63−77.
  24. Д.Г., Конкина Г. А., Кожевин П. А. Новые подходы к изучению сукцессий микроорганизмов в почве / Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. Отв. ред. Е. Н. Мишустин. М.: Наука, 1984. С.81−103.
  25. Н.Е., Мирчинк Т. Г. Влияние концентрации источников углерода на степень дифференциации грибного мицелия // Микология и фитопатология, 1983. Т. 17, Вып.5, с.367−370.
  26. Н.Е., Мирчинк Т. Г. Влияние осмотического потенциала на почвенные микромицеты // Вестн. Моск. ун-та. Сер.17. Почвоведение, 1988. № 1, с.39−43.
  27. Н.Е., Мирчинк Т. Г. Влияние температур на жизнеспособность грибов-микромицетов, выделенных из почв разных природных зон // Биологические науки, 1984. № 8, с. 100−103.
  28. И. А. Взаимодействие между дождевыми червями и микроскопическими грибами. Дисс.канд.биол.наук. М.: МГУ, ф-т Почвоведения, 1995. 117 с.
  29. И.В., Нездойминого Э. Л. История и предварительные итоги исследования микофлоры Российской Арктики // Микология и фитопатология, 1994. Т.28, вып. З, с.70−83.
  30. И.Ю., Воробьев Н. И., Терешенков О. М. Сообщества микромицетов из почв подзоны типичных тундр в районе северного побережья Таймырского озера //Микология и фитопатология, 1996. Т.30, вып.2, с.9−13.
  31. И.Ю., Воробьева Н. И., Терешенкова О. М. Влияние промышленного загрязнения на сообщества почвенных микромицетов лесотундры полуострова Таймыр //Микология и фитопатология, 1995. Т.29, вып.4, с. 12−19.
  32. П.А. Динамика микробных популяций в почве // Вестн. Моск. ун-та. Сер.17, Почвоведение. 1992. № 2, с.39−56.
  33. Ю.Е. Особенности развития микроскопических грибов при загрязнении почв тяжелыми металлами. Дипломн. работа. М., МГУ, ф-т Почвоведения, 1990. 63с.
  34. Л.С. Взаимоотношения почвенных беспозвоночных с макро- и микромицетами. / Микоризные грибы и микоризы лесообразующих пород Севера. Петрозаводск, 1980. С.31−36.
  35. JI.C. Особенности взаимоотношений почвенных беспозвоночных с микроорганизмами / Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. Отв. ред. Е. Н. Мишустин. М.: Наука, 1984. С. 53−65.
  36. В.А. Реакция микроскопических грибов на разных стадиях жизненного цикла на загрязнение кадмием. Дипломн. работа. М., МГУ, ф-т Почвоведения, 1992. 52с.
  37. В.Н. Моделирование ранней стадии роста мицелиальной колонии // Докл. АН УССР. Сер. Б, Геол., хим. и боил. науки, 1988. № 1, с.70−73.
  38. В.Н., Сиренко И. П. Кинетика роста гифы мицелиальной колонии // Докл. АН УССР. Сер. Б, 1986. № 5, с.69−72.
  39. Т.М. Изучение экологии почвообитающего фитопатогена Verticillium dahliae Kleb. методом мембранных камер. Автореферат дисс.канд.биол.наук. Л., 1985.17с.
  40. А.П., Погорлецкая В. Б. Ингибиторы протеиназ из семян подсолнечника // Физиология и биохимия культурных растений, 1995. Т. 17, № 2, с.153−157.
  41. А.Ю., Микулъскене А. И., Шляужене Д. Ю. Каталог микромицетов — биодеструкторов полимерных материалов. М.: Наука, 1987. 341с.
  42. H.A. Влияние уплотнения почвы на развитие микроскопических грибов. Дисс.канд.биол.наук. М.: МГУ, ф-т Почвоведения, 1987. 165 с.
  43. O.E. Анализ состояния грибов в почвах (на примере горных почв) / Выделение, идентификация и хранение микромицетов. Вильнюс, 1990. С.88−89.
  44. O.E. Микологический мониторинг почв: возможности и перспективы//Почвоведение. 1994. № 1. С.75−80.
  45. O.E. Микробиологические аспекты охраны почв. М.: Изл-во МГУ, 1991. 118 с.
  46. O.E., Лукина H.H. Влияние кадмия на некоторые почвенные микроскопические грибы и некоторые показатели их роста и развития // Микология и Фитопатология, 1989. Т.23,№ 5, с.434−439.
  47. O.E., Макарова H.A., Попова JI.B. Прорастание спор микроскопических грибов как показатель антропогенного воздействия на почву // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 17, Почвоведение. 1989. № 4, с.64−68.
  48. O.E., Мирчинк Т. Г. Фунгистатические свойства дерново-подзолистых длительно удобряемых почв // Почвоведение, 1976. № 4, с.97−100.
  49. O.E., Попова JI.B., Звягинцев Д. Г. Особенности циклов развития микроскопических грибов в почвах // Почвоведение, 1991. № 8, с. 80−87.
  50. Э. Экологическое разнообразие и его измерение. Москва: Мир, 1992. 182 с.
  51. Методы почвенной микробиологии и биохимии / Под ред. Звягинцева Д. Г. // Москва: Изд-воМГУ. 1991. 303 с.
  52. Т.Г. Почвенная микология: Учебник. М.: Изд-во МГУ, 1988.220 с.
  53. Т.Г., Марфенина O.E. Влияние длительного применения удобрений и известкования на численность микроорганизмов в дерново-подзолистых почвах // Вестн. Моск. ун-та. Сер. Биология, Почвоведение, 1974. № 2, с.80−84.
  54. ТТ., Марфенина O.E. Почвенный фунгистазис // Биологические науки, 1975. № 6, с.93−101.
  55. Т.Г., Паников Н. С. Современные подходы к оценке биомассы и продуктивности грибов и бактерий в почве // Успехи микробиологии, 1985. Вып.20, с. 198−226.
  56. Т.Г., Степанова JI.H. Биомасса мицелия и спор грибов в разных типах почв // Биологические науки, 1982. № 1 (217), с.97−102.
  57. Г. С., Черняева И. И. Фунгистатическое и фунгицидное действие почв на фитопатогенные грибы / Вопросы экологии и физиологии микроорганизмов, используемых в сельском хозяйстве. 1976. С. 81−97.
  58. Э., Леффлер В. Микология / Перевод с нем. к.б.н. КЛ. Тарасова II М.: Мир, 1995. 343 с.
  59. H.H. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на физиологическую активность целлюлозоразрушающих микроорганизмов // Биологические науки, 1982. № 10/2, с.79−85.
  60. З.И., Антоненко A.M. Изучение роста культур микроорганизмов впочве методом мембранных камер / Закономерности развития почвенных микроорганизмов. Л., 1975. С.202−213.
  61. З.И., Мамитко A.B. Определение предельно допустимых концентраций техногенных веществ для микробных популяций методом мембранных камер // Геграфия и Природные Ресурсы, 1981. № 4, с. 171 -173.
  62. ДМ. Почвенная микробиология. Алма-Ата: Изд-во АН Казах. ССР, 1956. 402 с.
  63. А.И., Ефремова JI.JI. Охрана и рекультивация почв, загрязнённых тяжёлыми металлами // Материалы 2-ой Всесоюзной конференции «Тяжёлые металлы в окружающей среде и охрана природы». М.: 1988. 4.1, с.20−25.
  64. Е.Б. Анионные ингибиторы протеаз из семян гречихи: их свойства и влияние на патогенную микрофлору. Автореферат дис.к.б.н. Ин-т биохимии им. А. И. Баха. М., 1997. 22с.
  65. Н.С. Кинетика роста микроорганизмов: общие закономерности и экологические приложения. М.: Наука, 1991. 311с.
  66. О.М. Микрофлора тундровых почв. Эколого-географические особенности и продуктивность // Ленинград: Наука. 1989. 159 с.
  67. С. Дж. Основы культивирования микроорганизмов и клеток / Под ред. КЛ.Работновой. Перевод с англ. Т. А. Петровой, И. Н. Позмоговой. М.: Мир, 1978. 332с.
  68. Н.С. Популяционная микробиология. Новосибирск: Наука. Сибирское отд-е, 1978. 280с.
  69. Н.М., Милъко A.A. Атлас мукоральных грибов. Киев: Наукова Думка, 1971. 116с.
  70. И.О., Савельева В. А. Влияние мелиорантов на состояние кобальта в почве и его поступление в растения // Агрохимия, 1997. № 8, с.68−73.
  71. Л.М. Микробная сукцессия в почве. Автореферат дисс.докт.биол.наук. МГУ, ф-т почвоведения. 1996. 96 с.
  72. Л.М., Головченко A.B. Звягинцев Д. Г. Микробная биомасса в почвах // Доклады АН России, 1995. Т.344, № 6, с.846−848.
  73. Л.М., Тиунов A.B. Заселенность микроорганизмами стенок нордождевых червей Lumbricus terrestris L. // Микробиология, 1996. T.65, № 1, c.99−101.
  74. JT.B. Особенности развития микроскопических грибов в почвах. Автореферат дисс.канд.биол.наук. М.: МГУ, ф-т Почвоведения, 1990. 24 с.
  75. Т.В., Левина Н. Н. Реакция нейроспоры на локальные повреждения клеточной мембраны // Биологические мембраны, 1985. Т.2, № 12, с.1216−1218.
  76. Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. Отв. ред. Е. Н. Мишустин. М.: Наука, 1984. 248 с.
  77. Почвоведение. Под ред. И. С. Кауричева. 4-е изд. М.: Агропромиздат, 1989. 719 с. Работнова И. Л., Иванова И. И. Рост и развитие микробных культур // Успехи микробиологии. М., 1971. Вып.6, с.67−107.
  78. О.Ю., Максимов В. Н. Действие тяжёлых металлов на микроорганизмы // Успехи микробиологии, 1985. Вып.20, с.227−252.
  79. .Р. Питание почвенных сапрофагов М.: Наука, 1980,243 с. Стриганова Б. Р., Марфенина О. Е., Пономаренко В. А. Некоторые новые аспекты влияния дождевых червей на почвенные грибы // Изв. АН СССР. Сер. Биологическая, 1988. № 9, с.715−719.
  80. В.В. Тяжёлые металлы: загрязнение окружающей среды и глобальная геохимия / Тяжёлые металлы в окружающей среде. Под ред. В.ВДобровольского. М.: Изд-во Моск. ун-та, 1980. С.3−12.
  81. Тяжёлые металлы в системе почва растение — удобрение. Под общ. ред. М. М. Овчаренко. М., 1997. 290с.
  82. В.О. Основные положения растительной биоэнергетики. М., JL: Изд-во АН СССР, 1950. 320 с. (Цит. по Паников, 1991).
  83. Е.П. Биохимичекие особенности покоящихся стадий в цикле развития мукоровых грибов / Торможение жизнедеятельности клеток. Рига: Зинатне, 1987. С. 172−179.
  84. Н.Г. Среди природы и лаборатории. М.: Издание МОИП, 1949.
  85. Цит. по Новогрудский, 1956).
  86. А.И., Лесоеой B.C., Лащеное П. М. Действие бациллярныхингибирующих веществ на патогенные для человека фитопатогенные и сапротрофные грибы //Микробиологический журнал (Киев), 1991. Т. 53, № 3, с.21−24.
  87. Adams Р.В. A buried membrane filter for studying behavior of soil fungi // Phytopathology, 1967. V.57, № 6, p.602−603.
  88. Allan E.J., Prosser J.I. Mycelial growth and branching of Streptomyces coelicolor A3(2) on solid medium // J. of Gen. Microbiol., 1983. Y.129, p.2029−2036.
  89. Altman F.D. Tetrazolium salts and formazans // Progress in Hitochemistry and cytochemistry. 1976.-V.9.,№ 3.
  90. Armentrout V.N., Downer A.J., Nameth S.T. A simplified branching assay for Rhizoctonia solani //Mycologia, 1986. V.78, p.657−663.
  91. Arora D.K. Effect of microorganisms on the aggressiveness of Bipolaris sorokiniana // Can. J. Bot., 1988. Y.66, p.242−246.
  92. Arora D.K., Filonow A.B., Lockwood J.L. Exudation from 14C-labeled fungal propagules in the presence of specific microorganisms // Can J. of Microbiol., 1983. V.29, p. 1487−1492.
  93. Arora D.K., Pandey A.K., Srivastva A.K. Effects of heat stress on loss of C, germination and pathogenicity from chlamidospores of Fusarium oxysporum f.sp. ciceri ?1 Soil Biol. Biochem., 1996. V.28, Iss.3, p.399−407.
  94. Aspiras R.B., Allen O.N., Harris R.F., a Chesters G. The role of microorganisms in the stabilization of soil aggregates I I Sol Biol. Biochem., 1971. V.3, № 4, p.347−353.
  95. Azmi O.R., Seppelt R.D. Fungi of the Windmill Islands, continental Antarctica -effect of temperature, pH and culture media on the growth of selected microfungi // Polar Biology, 1997. V.18, Iss.2, p.128−134.
  96. Baath E. Autoradiografic determing metaboliciti activity fundy gheat in forest soil // Soil Biol. Biochem., 1988. V.20, № 1, p. 123−125.
  97. Baath E., Soderstrom B. E FDA-stained fungal mucelium and rate respiration in renocular steril soil // Soil Biol. Biochem., 1988. V.20, № 3. p. 403−404.
  98. Bartnicki D.D., Gierz G., Bartnicki-Garcia S. «Fungus simulator»: a Windows application to model fungal morphogenesis / V International Mycological Congress.
  99. Vancouver, Canada, 1994, Aug., 14−21. Abstracts. P. 12.
  100. Bartnicki-Garcia S. Cellular determinants of wall morphology / V International Mycological Congress. Vancouver, Canada, 1994, Aug., 14−21. Abstracts. P. 12.
  101. Bartnicki-Garcia S., Hergert F., Gierz G. Computer simulation of fungal morphogenesis and the mathematical basis for hyphal (tip) growth // Protoplasma, 1989. V.153, p.46−57.
  102. Benlioglu S., Delen N. Studies on the sporulation of the early Blight agent Alternaria solani (Ell. and Mort.) Jones and Grout. of tomatoes // J. Turk. Phytopathol., 1996. V.25, №½, p.23−28.
  103. Berg M.P., Kniese J.P., Verhoef H.A. Dynamics and stratification of bacteria and fungi in the organic layers of a Scots Pine forest soil // Biology and Fertility of soil, 1998. V.26, Iss.4, p.313−322.
  104. Bertolini P., Tian S.P. Low-temperature biology and pathogenicity of Penicillium hirsutum on garlic in storage // Postharvest Biology and Technology, 1996. V.7, №½, p.83−89.
  105. Beyer P. U., Hirte W.F., Sermann H. The behavior of the entomopathogenic fungus Verticillium lecanii (Zimm) Viegas in soil. 1. Viability in soil at different ecological condition // J. of Plant Diseases and Protection, 1997. V. 104, Iss. 1, p. 54−64.
  106. Bottone E.J., Nagarsheth N., Chiu K. Evidence of self-inhibition by filamentous fungi accounts for unidirectional hyphal growth in colonies I I Can. J. of Microbiology, 1998. V.44, Iss.4, p.390−393.
  107. Bruncwik H. Untersuchungen uber Geschlechts und Kernverhaltnisse bei der Hymenomyzetengattung Coprinus / Botanische Abhandlungen. Ed.: K.Goebel. Gustav Ficher, Jena, 1924. P. l-152. (LJht. no Bartnicki-Garcia et al, 1989).
  108. Byzov B.A., Kurakov A. V., Tretyakova E.B., Thanh V.N., Luu N.D.T., Rabinovich Y.M. Principles of the digestion of microorganisms in the gut of soil millipedes: specificity and possible mechanisms //Applied Soil Ecology, 1998. Iss. 9, p. 145−151.
  109. Caldwell J.Y., Trinci A.P.J. The growth unit of the mould Geotrichum candidum II Archiv fur Microbiologie, 1973. B.88., p.1−10.
  110. Carroll G.C., Pike L.H., Perkins J.R., Sherwood M. Biomass and distribution patterns of conifer twig microepiphytes in a Douglas fir forest // Can J. Bot., 1980. V.58, p.624−630.
  111. Cheng W., Virginia R.A. Measurement of microbial biomass in arctic tundra soils using fumigation-extraction and substrate-induced respiration procedures // Soil Biol. Biochem., 1993. V.25, № 1, p.135−141.
  112. Christensen M.A. View of fungal ecology // Mycologia, 1989. V.81, № 1, p. 1−19.
  113. Cohen S.D. Detection of mycelium and oospores of Phytophtora megasperma forma spetialis glycinea by vital strains in soil // Mycologia, 1984. V.76, № 1.
  114. Cooke A. The effects of fundy in food selection by Lumbricus terrestris L. / Eathworm Ecology. Ed. by J.E.Satchell. London: Chapman and Hall, 1983. P.365−373.
  115. Cotter D.A. Spore activation / The fungal spore: morphogenetic controls. Eds. by D.J. Weber, W.M.Hess. Wiley, New York, 1981. P.385−411.
  116. Couteaudier Y., Alabouvette C. Survival and inoculum potential of conidia and chlamydospore of Fusarium oxysporum f.sp. lini in soil // Can. J. of Microbiology, 1990. V.36, № 8, p.551−556.
  117. Criseo G., Urzi C., Pernice I., Medici M.A. Growth and aflatoxin production by Aspergillus flavus Link under cycling temperatures // Italian Journal Of Food Science, 1990. V.2,№l, p.43−52.
  118. Dash H.K., Beura B.N., Dash M.C. Gut load, transit time, gut microflora and turnover of soil, plant and fungal material by some tropical earthworms // Pedobiologia, 1986. V.29, № 1, p. 13−20.
  119. Davidson F.A., Sleeman B.D., Rayner A.D.M., Crawford J.W., Ritz K. Travelling waves and pattern formation in a model for fungal development // J. of Mathematical Biology, 1997. V.35, Iss.5, p.589−608.
  120. De Hoog G.S., Guarro J. Atlas of clinical fungi. Centraalbureau voor Schimmelcultures Baarn and Delft, The Netherlands. Universitat Rovira i Virgili Reus, Spain. 1998.720 p.
  121. Delatorre M., Cardenascota H.M. Prodiction of Paecilomyces fumosoroseus conidia in submerged culture I I Entomophaga, 1996. V.41, Iss.3−4, p.443−453.
  122. Dereu J.C., Rombouts F.M., Griffiths A.M., Nout M.J.R. Effect of oxygen and carbon-dioxide on germination and growth of Rhizopus oligosporus on model media and soya beans // Applied microbiology and biotechnology, 1995. V.43, Iss. 5, p.908−913.
  123. Dix N.J. Effect of soil fungistsis on spore germination and germ-tube growth in Penicillium species //Trans. Br. Mycol. Soc., 1972. V.58, Part 1, p.59−66.
  124. Dobbs C.G. Factors in soil mycostasis //Recent Progr. Microbiol. Toronto, 1963.
  125. Dobbs C.G., Hinson W.H. A widespread fungistasis in soil // Nature, 1953. V.172, № 4379, p. 197−199.
  126. Dobbs C.G., Hinson W.H., Bywater J. Inhibition of fungal growth in soils / The ecology of soil fungi. Eds. by D. Parkinson, J.S. Waid. Liverpool: Liverpool Univ. Press, 1960. P.47−130.
  127. Domsh K.H., Gams W. Andersen T.H. Compendium of soil fungi. London: Acad. Press, 1993. V. 1.860 p.
  128. Dowson C.G., Boddy L., Rayner A.D.M. Development and extention of mucelial cords in soil at different temperatures and moisture contents // Mycological Research, 1989. V.92,№ 4, p.383−391.
  129. Dowson C.G., Rayner A.D.M., Boddy L. Outgrowth patterns of mycelial cord-forming Basidiomycetes from and between woody resource unit in soil // J. of Gen. Microbiol., 1986. V.132, № 1, p.203−211.
  130. Drazkiewicz M. Generic composition of fungi in soil aggregates // Folia Microbiologica, 1996. V.41,№ 3,p.272−276.
  131. Duijff B.J., Erkelens A., Bakker P.A.H.M., Schippers B. Influence of pH on suppression of Fusarium wilt of carnation by Pseudomonas fluorescens WCS417r // J. Phytopathology, 1995. V. 143, p.217−222.
  132. Edwards M.C., Blaceman J.P. An autiradiographic method for determining nutrient competition between leaf epicphytes and plant pathogens // J. Microscopy, 1986. V.133, p.205−212.
  133. Ellis M.B. Dematiaceous hyphomycetes. Commonwealth Mycological Institute. Kew, Surrey, England. 1971. 608 p.
  134. Farley J.D., Wilhelm S., Snyder W.C. Repeated germination and sporulation of Verticilliun albo-atrum in soil //Phytopathology, 1971. V.61, p.260−264.
  135. Fiddy C., Trinci A.P.J. Nuclei, septation, branching and growth of Geotrichum candidum //J. of General Microbiology, 1976(a). V.97, № 2, p. 185−192.
  136. Fiddy C., Trinci A.P.J. Septation in mycelia of Mucor hiemalis and Mucor rammanianus // Transaction of the British Mycological Society, 1976(6). V.68, p. 118−120.
  137. Flanagan P.W., van Cleve K. Microbial biomass, respiration and nutrient cycling in a black spruce of ecosystem / Soil organisms as components of ecosystems. Eds.: U. Lohm, T. Persoon II Ecol. Bull., 1977. V.25, p.261−273.
  138. Flouri F., Balis C. Is the nitrogen cycle involved in soil mycostasis? / Perspectives in microbial ecology. Eds. by F. Megusar, M.Gantar. Slovene Society for Microbiology, Ljubljana, 1986. P.571−578.
  139. Francland J.C. Estimation of live fungal biomass // Soil Biol. Biochem., 1975. V.7, p.339−340.
  140. Furch B. Spore germination: heat mediated events / The fungal spore: morphogenetic controls. Eds. G. Turian, H.R. Hohl. New York, Academic, 1981. P.413−433.
  141. Garraway M.O., Evans R.C. Fungal nutrition and physiology. J. Wiley & Song. New York, Chichester, Brisbane, Toronto, Singarore. 1984. 401 p.
  142. Gochenaur S.E., Sheehan P.L. Microholder facilitates insevetion and retrievae of material buried in soil // Mycologia, 1980. V.72, p.644−646.
  143. Gooday G. W. Cell envelope diversity and dynamics in yeasts and filamentous fungi //J. of Applied Bacteriology Symposium Supplement, 1993. V.74, p, 12S-20S.
  144. Gooday G.W. The dynamiccs of hyphal growth // Mycological Research, 1995. V.99, Iss.4, p.385−394.
  145. Gottlieb D. Carbohydrate metabolism and spore dermination / The fungal spore: form and function. Eds. by D.J. Weber, WMHess. Wiley, New York, 1976. P. 141−163.
  146. Gow N.A.R. Transhyphal electrical currents in fungi // J. of Gen. Microbiol., 1984. V.130, p.3313−3318.
  147. Hedlund K., Augustsson A. Effects of enchytraeid grazing on fungal growth and respiration II Soil Biol. Biochem., 1995. V.27, № 7, p.905−909.
  148. Ho W.C., Ko W.H. Microbiostasis by nutrient deficiency shown in natural and synthetic soils // J. Gen. Microbiol., 1986. V.132, № 10, p.2807−2815.
  149. Hosking S.L., Robson G.H., Trinci A.P.J. Phosphoinositides play a role in hyphalextension and branching in Neurospora crassa II Experimental Mycology, 1995. V.19, Iss. l, p.71−80.
  150. Hutchinson S.A., Sharma P., Clarke K.R., Macdonald I. Control of hyphal orientation in colonies of Mucor hiemalis II Transaction of the British Mycological Society, 1980. V.75,№ 2, p. 177−191.
  151. Hyakumachi M., Loffler H.J.M., Lockwood J.L. Methods for determination of carbon loss from fungal propagules incubated in soil // Soil Biol. Biochem., 1989. V.21, p.567−571.
  152. Jenkinson D.S., Powlson D.S. The effect of biocidal treatment on metabolism in soil. V. A metod for measuring soil biomass // Soil Biol. Biochem., 1976. V.8, p.209−213.
  153. Jennings D.H. Morphological plasticity in fungi / Plasticity in Plants, Symposia of the Society for Experimental Biology, 1986. V.40, p.329−346.
  154. Kaczmarek W., PedziwilkZ. Mycolytic activity and the development of microflora in soils of different mechanical structure // Soil Biol. Biochem., 1988. V.20, p.129−136.
  155. Kaminskyj S.G.M., Hamer J.E. Hyp loci control cell pattern formation in the vegetative mycelium of Aspergillus nidulans // Genetics, 1998. V. 148, Iss. 2, p.329−346.
  156. Katz D., Goldstein D., Rosenberger R.F. Model for branch initiation in Aspergillus nidulans based on measurements of growth parameters // J. of Bacteriology, 1972. V.102, p. 1097−1100.
  157. Kjoller A., Struve S. Decomposition of beach litter. A comparison of fungi isolated on nutrient poor media//Trans. Mycol. Soc. Japan, 1990. V.31, p.5−16.
  158. Ko W.H., Lockwood J.L. Mechanisms of lysis of fungal mycelia in soil // Phytopathology, 1970. V.60, № 1, p. 148−154.
  159. Ko W.H., Lockwood J.L. Soil fungistasis: relation to fungal spore nutrition // Phytopathology, 1967. V.57, № 8, p.894−901.
  160. Ko W.H., Hora F.H. Factors affecting the activity of a volatile fungistasis substance in certain alkaline soils // Phytopathology, 1974. V.64, № 7, p. 1042−1043.
  161. Ko W.H., Hora F.H. Identification of an A1 ion as a soil fungitoxin // Soil Sci., 1972. V.113, p.42−45.
  162. Koch A.L. The kinetics of mycelial growth // J. of Gen. Microbiol., 1975. V.89, p.209−216.
  163. Koch A.L. The problem of hyphal growth in streptomycetes and fungi // J. of Theoretical Biology, 1994. V.171, Iss.2, p. 137−150.
  164. Kotov V.N., Reshetnikov S.V. A stochastic model for early mycelial growth // Mycological Research, 1990. V.94, № 5, p.577−586.
  165. Macko V. Inhibitors and stimulants of spore germination and infection structure formation in fungi / The fungal spore: morphogenetic controls. Eds. by D.J.Weber, W.M.Hess. Wiley, New York, 1981. P.565−584.
  166. Manavathu A.K., Thomas D.D.S. Chemotropism of Achlya ambisexualis to methionin and methionyl compounds // J. of General Microbiology, 1985. V. 131, p.751−756.
  167. Marin S., Sanchis V., Seenz R., Ramos A.J., Vinas I., Magan N. Ecological determinants for germination and growth of some Aspergillus and Penicillium spp. from Maize Grain Hi. of Applied Microbiology, 1998. V.84, Iss. 1, p.25−36.
  168. McLean K.M., Prosser J.I. Development of vegetative mycelium during colony growth of Neurospora crassa II Transaction of the British Mycological Society, 1987. V.88, p.489−495.
  169. Microorganisms in action. Concepts and application in microbial ecology / Eds. by Lynch J.M., HobbieJ.E. Oxford-London-Boston: Blackwell Sci. Publ., 1988. P.363.
  170. Mischke S., Adams P.B. Temporal and spatial factors affecting germination of macroconidia of Sporidesmium sclerotivorium II Mycologia, 1996. V.88, Iss.2, p.271−277.
  171. Molin P., Gervais P., Lemiere J.P., Davet T. Direction of hyphal growth: A relevant parameter in the development of filamentous fungi // Research in Microbiology, 1992. V.143, № 8, p.777−784.
  172. Mondal S.N., Kageyama K., Hyakumachi M. Germinability, viability, and virulence of clamydospores of Fusarium solani f.sp. phaseoli as affected by the loss of endogenous carbon //Phytopathology, 1995. V.85, Iss. 10, p.1238−1244.
  173. MonodJ. //Annu. Rev. Microbiol., 1949. V.3, p.371−394. (IJht. no TIciHUKoe, 1991)
  174. Morgan P., Cooper C.J., Battersby N.S., Lee S.A., Lewis S.T., Machin T.M., Graham S.C., Watkinson R.J. Automated image analysis method to determine fungal buomass in soils and on solid matrices // Soil Biol. Biochem., 1991. V.23, № 7, p.609−616.
  175. Mukherjee P.K., Raghu K. Effect of temperature on antagonistic and biocontrol potential of Trichoderma sp. on Sclerotium rolfsii I I Mycopathologia, 1997. V. 139, Iss.3, p. 151−155.
  176. Nakashima N., Moromizato Z., Matsuyama N. Chaetomium spp., antagonistic microorganisms to phytopathogenic fungi // J. of the Faculty of Agriculture Kyushu University, 1991. V.36, №½, p. 109−116.
  177. Neely C.L., Beare M.H., Hargrove W.L., Coleman D.C. Relationships between fungal and bacterial substrate-induced respiration, biomass and plant residue decomposition // Soil Biol. Biochem., 1991. V.23, № 10, p.947−954.
  178. Nesbitt H.J., Malajszuk N., Glenn A.P. Effect of soil moisture and temperature on the survival of Phytophtora cinnamomi rands in soil // Soil Biol. Biochem., 1979. V. ll, № 2, p. 137−140.
  179. Newell S. Y, Estimating fungal biomass and productivity in decomposing litter // The fungal community it is organization and role in ecosystem. New York: Marsel Deccer, 1992.P.521−561.
  180. Newell S.Y., Fallon R.D., Tabor P. S. Direct microscopy of natural assemblages / Bacteria in Nature. Volume 2. Eds. by J.S.Poindexter, E.R.Leadbetter. Plenum Press, New York, 1986. P. 1−48.
  181. Olsson S. Mycelial Density Profiles of Fungi on Heterogeneous Media and Their Interpretation in Terms of Nutrient Reallocation Patterns // Mycological Research, 1995. V.99, IssFeb, p. 143−153.
  182. Olsson S. Uptake of glucose and phosphorus by growing colonies of Fusarium oxysporum as quantified by image-analysis // Experimental Mycology, 1994. V.18, Iss 1, p.33−47.
  183. Olsson S., Baath E., Soderstrom B.E. Growth of Verticillium dahliae Kleb. hyphae and of bacteria along the roots of rape (Brassica napus L.) seedlings // Can J. of Microbiol., 1987. V.33, p.916−919.
  184. Otten W, Gilligan C.A. Effect of physical conditions on the spatial and temporal dynamics of the soil-borne fungal pathogen Rhizoctonia solani // New Phytologist, 1998. V.138, Iss.4, p.629−637.
  185. Ouellette G.B., Ward E.W.B. Low-temperature requirements for ascospore germination and growth of Hypoxylon diathrauston II Canad. J. Bot., 1970. V.48, p.2223−2225.
  186. Ouimet A., Carisse O., Neumann P. Environmental and nitritional factors affecting the in vitro inhibition of the vegetative growth of Venturia inaequalis by 5 antagonistic fungi I I Can. J. of Botany, 1997. V.75, Iss.4, p.632−639.
  187. Park D. Application of Horton’s first and second laws of branching to fungi // Transaction of the British Mycological Society, 1985. V.84, p.577−584.
  188. Parkinson D., Visser S., Whittaker J.B. Effects of Collembolon grazing on fungal colonization of leaf letter // Soil Biol. Biochem., 1979. V. l 1, p.529−535.
  189. Parton R.M., Fisher S., Malho R., Parasouliotis O., Jelitto T.C., Leonard T., Read N.D. Pronounced cytoplasmic pH gradients are not required for tip growth in plant and fungal cells // J. of Cell Sci., 1997. V. l 10, Iss. May, p. l 187−1198.
  190. Paustian K., Schnurer J. Fungal growth response to carbon and nitrogen limitation: a theoretical model // Soil Biol. Biochem., 1987. V. l9, № 5, p.613−620.
  191. Phillirs G.J., Borgia P.T. Effect of oxygen on morphogenesis and polypeptide expression by Mucor racemosus II J. Bacterid., 1985. V.164, № 3, p.1039−1048.
  192. Pitt J.I. The genus Penicillium and its teleomorphic states Eupenicilliun and
  193. Talaromyces. London: Academic Press. 1980.634 p.
  194. Prosser J.I. Kinetics of mycelial colony growth and ascomycetes agregations // Mycological Research. 1993.-V.97., № 5. P.513−528.
  195. Prosser J.I. Mathematical modelling of mycelial growth / Fungal wall and hyphal growth. Eds. by J.H.Burnett, A.P.J.Trinci. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1979. P.359−384.
  196. Prosser J.I., Trinci A.P.J. A model for hyphal growth and branching // J. of Gen. Microbiol., 1979. № 111, p. 153−164.
  197. Raper K.B., Thom C., Fennel D.I. A manual of the Penicillia Baltimore: The Williams & Wilkins Company. 1949. 875 p.
  198. Rayner A.D.M. Life in a collective: lessons from the fungi // New Scientist. 1988. Vol.120, p.49−53.
  199. Rayner A.D.M. The challenge of the individualistic mycelium I I Mycologia, 1991. V.83, № 1, p.48−71.
  200. Rayner A.D.M., Ramsdale M., Watkins Z.R. Origins and significance of genetic and epigenetic instability in mycelial systems // Can.J.Bot., 1995. V.73, Suppl. l, S1241-S1248.
  201. Reeslev M., Kjoiler A. Comparison of biomass dry weights and radial growth rates of fungal colonies on media solidified with different gelling compounds // Applied and Environmental microbiology, 1995. V.61, Iss.12, p.4236−4239.
  202. Reisener H.J. Lipid metabolism of fungal spores during sporogenesis and germination / The fungal spore: form and function. Eds. by D.J. Weber, W.M.Hess. Wiley, New York, 1976. P.165−185.
  203. Righelato R.C. The kinetics of mycelial growth / Fungal wall and hyphal growth. Eds. by J.H.Burnett, A.P.J.Trinci. Cambridge: Cambridge Univ. Press, 1979. P.385−402.
  204. Roberson R. W. The hyphal tip cell of Sclerotium rolfsii: cytological observations / Fungal cell wall and immune response. Eds. by J.P.Latge, D.Boucias. Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 1991. P.27−37.
  205. Robinson P.M. Autotropism in fungal spores and hyphae. // The botanical review, 1973. V.39,. p.367−384.
  206. Robinson P.M., Smith J.M. Development of cells and hyphae of Geotrichumcandidum in chemostat and batch culture // Transaction of the British Mycological Society, 1979. V.72, p.39−47.
  207. Robson G.D., Bell S.D., Kuhn P.J., Trinci A.P.J. Clucos and penicillin cjncetrations in agar medium below fungal colonies // J. of General. Microbiol., 1987. V. 133, p.361−367.
  208. Robson G.D., Prebble E., Richers A., Hosking S" Denning D.W., Trinci A.P.J., Robertson W. Polarized growth of Fungal hyphae is defined by an alkaline pH gradient // Fungal Genetics and Biology, 1996. V.20, Iss. 4, p.289−298.
  209. Robson G.D., Wiebe M.G., Trinci A.P.J. Involvement of calcium in the regulation of hyphal extension and branching in Fusarium graminearum A 3/5 // Experimental Mycology, 1991 (S). V. 15, № 3, p.263−272.
  210. Robson G.D., Wiebe M.G., Trinci A.P.J. Low calcium concentration induce increased branching in Fusarium graminearum II Mycological Research, 1991 (a). V.95, Iss.5, p.561−565.
  211. Rosenzweig W.D., Stotzky G. Inflience of environmental factors on antagonism of fungi by bacteria in soikclay minerals and pH // Applied and Environmental Microbiology, 1979. V.38, № 6, p. 1120−1126.
  212. Soderstrom B.E. Seasonal fluctuations of active fungal biomass in horizons of a podzolzed pine-forest soil in Central Sweden // Soil Biol. Biochem, 1979 (a). V. l 1, № 2, p. 149−154.
  213. Soderstrom B.E. Some problem in assesing the fluorescein diacetate active fungal biomass in the soil // Soil Biol. Biochem., 1979(6). V. l 1, № 2, p.147−148.
  214. Soderstrom B.E. Vital staining of fungi in pure cultures and in soil with fluorescein diacetate I I Soil Boil. Biochem., 1977. V.9, p. 59−63.
  215. Saad R.R. Effect of water activity on growth and lipids of xerophilic fungi, Aspergillus repens and Aspergillus amstelodami II Zentralblatt fixer mikrobiologie, 1992. V.147, №l/2.p.61−64.
  216. Saks Y., Golan R.B. Aloe vera gel activity against plant pathogenic fungi // Postharvest Biol, and Technol., 1995. V.6, № 1−2, p. 159−165.
  217. Saltarelli R, Ceccaroli P., Vallorani L., Zambonelli A., Citterio B., Malatesta M., Stocchi V. Biochemical and morphological modifications during the growth of Tuber Borchii mycelium //Mycol. Research, 1998. V. l02, Iss.Apr., p.403−409.
  218. Schupp H., Frei E. Soil fungistasis with respect to pH and profile // Canad. J. Microbiology, 1969. V.15, № 11.
  219. Schippers B., Meijer J.W., Liem J.I. Effect of ammonia and other volatiles on germination and growth of soil fungi // Trans. Br. Mycol. Soc., 1982. V.79, p.253−259.
  220. Schippers B., van Eck W.H. Formation and survival of chlamidospores in Fusarium / Fusarium: diseases, biology, and taxonomy. Eds. by P.E.Nelson, T.A.Toussoun, R. J. Cook. Penn. State Univ. Press, University Park, PA, 1981. P.250−260.
  221. Schnurer J., Clarholm M., Bostrom S., Rosswall T. Effects of moisture on soil microorganisms and nematodes: a field experiment//Microb. Ecol., 1986. V.12, p.217−230.
  222. Schuerger A.C., Mitchell D.J. Effects of temperature and hydrogen ion concentration on attachment of macroconidia of Fusarium solani f. sp. phaseoli to mung bean root in hydroponic nutrient solution I I Phytopathology, 1992. V. 82, № 11, p. 1311 -1319.
  223. Sekiguchi I., Gaucher G.M., Costerton I.W. Microcycle conidiation in Penicillium urticae: An ultrastructural investigation of spherical spore growth I I Can. J. of Microbiol., 1975. V.21, № 12, p.2048−2058.
  224. Simpson D.R., Wiehe M.G., Robson G.D., Trinci F.J. Use of pH auxostats to grow filamentous fungi in continuous flow culture at maximum specific growth rate // FEMS Microbiology Letters, 1995. V.126, p.151−158.
  225. Slatter J.H. Microbial population and commynity dynamics // Microorganisms in action: concepts and applications in microbial ecology. Eds. by J.M.Lynch, J.E.Hobbie. Blackwell Sei. Publ., 1988. P.51−74.
  226. Smith J.E., Anderson J.G., Kristiansen B., Al-Bawi A., Yahya A.G. Microcycle conidiation / The fungal spore: morphogenetic controls. Eds. by G. Turian, H.R.Hohl. New York: Academic Press, 1981. P.627−650.
  227. Stamatiadis S., Doran J. W., Ingham E.R. Use of staining and inhibitors to separate fungal and bacterial activity in soil // Soil Biol. Biochem., 1990. V.22, p.81−88.
  228. Stangheilini M.E., Hancock J.G. The sporangium of Pythium ultimum as a survival structure in soil // Phytopathology, 1971. V.61, p. 157−164.
  229. Steele G.W., Trinci A.P.J. Morphology and growth kinetics of hyphae of differentiated mycelia of Neurospora crassa // J. of Gen. Mycrobiol., 1975. V.91, p.362−368.
  230. Steiner G. W., Lockwood I.L. Soil fungistasis: sensitivity of spores in relation togermination time and size // Phytopathology, 1969. V.59, № 8, p. 1084−1092.
  231. Stewart A., Deacon J. W. Vital fluorochromes as traces for fungal growth studies // Biotechnic & Histochemistry, 1995. V.70, Iss.2, p.57−65.
  232. Sundara B., Saksena S.B. Fungistasis due to volatile inhibitors produced by some Penicillium species // Curr. Sci., India, 1980. V.49, № 13, p.515−517.
  233. Sussman A.S., Doutb. it H.A. Dormancy in microbial spores // Annu. Rev. Plant Physiol., 1973. V.24, p.311−352.
  234. Sutherland E.D., Cohen S.D. Evaluation of tetrazolium bromids as a vital stain for fungal oospores // Phytopathology, 1983. V.73.
  235. The fungal community it is organization and role in ecosystem / Eds. by D.T. Wicklow, G.C. Carrol. New York: Marsel Deccer. 1992.
  236. Trinci A.P.J. A kinetics study of the growth of Aspergillus nidulans and other fungi //J. of General Microbiology, 1969.V.57, № 1, p. 11−24.
  237. Trinci A.P.J. A study of the kinetics of hyphal extension and branch initiation of fungal mycelium. // J. of General Microbiology, 1974. V.81, p.225.236.
  238. Trinci A.P.J. Influence of the peripheral growth zone on the radial growth rate of fungal colonies//J. of Gen. Microbiol., 1971. V.67, p.325−344.
  239. Trinci A.P.J. Regulation of hyphal branching and hyphal prientation. // The Ecology and Physiology of the Fungal Mucelium. Eds .D.H.Jennings, A.D.M.Payner. Cambridge University Press: Cambridge. 1984. P.23−52
  240. Trinci A.P.J. The duplication cycle and branching in fungi. / Fungal walls and hyphal growth. Eds. J.P.Barrnet, A.P.J.Trinci. Cambridge: Cambridge University Press, 1979. P.319−358.
  241. Trinci A.P.J., Saunders P.T., Gosrani R., Campbell K.A.S. Spiral growth of mycelial and reproductive hyphal // Transactions of the British Mycological Society, 1979. V.73, p.283−292.
  242. Van der Drift J. The effects of animal activity in the litter layer / Experimental Pedology. Eds. byE.G.Hallsworth, D.V.Crawford. London: Butterworths, 1965. P.227−235.
  243. Van Etten J.L., Danlberg K.R., Russo G.M. Fungal spore germination // Fungal differentiation: a contemporary synthisis. Ed. by J.E.Smith. New York and Basel: Marsel Deccer, Inc., 1983. P.235−266.
  244. Van Suijdam J.C., Metz B. Influence or engineering variables on the morphology of filamentous molds // Biotechnology and Bioengineering, 1981. V.23, p. 11−148.
  245. Vercesi A., Locci R., Prosser J.I. Growth kinetics of Botrytis cinerea on organic acids and sugars in relation to Colonization of grape berries // Mycological Research, 1997. V.101, Iss. Feb, p. 139−142.
  246. Vidal C., Fargues J., Lacey L.A. Intraspecific variability of Paecilomyces fumosoroseus effect of temperature on vegetative growth I I J. of Invertebrate Pathology, 1997. V.70, Iss. l, p. 18−26.
  247. Wardle D.A., Parkinson D. Comparison of physiological techniques for estimating the response of soil microbial biomass to soil moisture // Soil Biol. Biochem, 1990. V.22, p. 817−823.
  248. Wessels J. GM. Role of cell wall architecture in fungal tip growth generation / Tip growth in plant and fungal cells. Ed. by LB.Heath. New York: Academic press, 1990. P. 1−29.
  249. West A. W. Improvement of the selective respiratory inhibition technique to measure eukaryote: prokaryote ratios in soil // J. of Microbiological Methods, 1986. № 5, p. 125−128.
  250. Zycha H., Stepmann R., Linnemann G. Mucorales. Lenre, Verlag von J. Cramer, 1969. 356 p.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!