Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Внеклеточные полимеры культуры клеток гречихи татарской Fagopyrum tataricum (L.) Caertn. и их участие в процессах роста и морфогенеза

Диссертация: Внеклеточные полимеры культуры клеток гречихи татарской Fagopyrum tataricum (L.) Caertn. и их участие в процессах роста и морфогенеза
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Культивируемые клетки растений выделяют в питательную среду большое количество разнообразных соединений, многие из которые жизненно необходимы для пролиферации клеток и сохранения их морфогенетических потенций. Например, установлено, что активация деления в суспензионных культурах при переносе на новую среду зависит от плотности культуры: чем ниже начальная плотность культуры, тем дольше лаг-фаза… Читать ещё >

Внеклеточные полимеры культуры клеток гречихи татарской Fagopyrum tataricum (L.) Caertn. и их участие в процессах роста и морфогенеза (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Морфогенез в культуре клеток растений
      • 1. 1. 1. Факторы, влияющие на реализацию морфогенного потенциала in vitro
        • 1. 1. 1. 1. Влияние генотипа
        • 1. 1. 1. 2. Влияние фитогормонов на морфогенез
    • 1. 2. Особенности секреции у растений
    • 1. 3. Секреция макромолекул культурами клеток растений
      • 1. 3. 1. Секреция белков и гликопротеинов
        • 1. 3. 1. 1. Секреция белков и морфогенный потенциал культивируемых клеток
        • 1. 3. 1. 2. Влияние экзогенных факторов и условий культивирования на секрецию белков и гликопротеинов
        • 1. 3. 1. 3. Участие секретируемых белков в регуляции дифференцировки и морфогенеза
      • 1. 3. 2. Выделение полисахаридов культурами клеток
        • 1. 3. 2. 1. Особенности секреции полисахаридов культурами клеток растений
        • 1. 3. 2. 2. Роль внеклеточных полисахаридов в культурах клеток растений
        • 1. 3. 2. 3. Роль олигосахаринов
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объект исследования
    • 2. 2. Условия культивирования
    • 2. 3. Приготовление цитогенетических препаратов
    • 2. 4. Определение митотической активности
    • 2. 5. Определение жизнеспособности клеток
    • 2. 6. Приготовление препаратов для гистологических и электронно-микроскопических исследований
    • 2. 7. Выделение фракции водорастворимых белков из каллусной ткани
    • 2. 8. Выделение полимеров из среды культивирования
    • 2. 9. Получение фракции поверхностных полимеров
    • 2. 10. Выделение арабиногалактановых белков
    • 2. 11. Определение содержания моносахаридов
    • 2. 12. Электрофорез белков в полиакриламидном геле
    • 2. 13. Определение активности пероксидазы
    • 2. 14. Влияние реагента Ярива на воспроизводство ПЭКК в морфогенном каллусе гречихи
    • 2. 15. Определение уровня тирозинового фосфорилирования белков
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Динамика экстраклеточных полимеров каллусных культур гречихи татарской с различной морфогенной активностью в ходе культурального цикла
    • 3. 2. Сравнение внутриклеточных и внеклеточных белков морфогенного и неморфогенного каллусов
    • 3. 3. Динамика полипептидного спектра поверхностных белков морфогенного каллуса в ходе пассажа
    • 3. 4. Влияние ингибитора секреции белков брефельдина, А на процесс воспроизводства проэмбриональных клеточных комплексов в морфогенном каллусе гречихи
    • 3. 5. Арабиногалактановые белки, секретируемые морфогенными и неморфогенными культурами
      • 3. 5. 1. Секретируемые арабиногалактановые белки в морфогенных и неморфогенных культурах гречихи татарской
      • 3. 5. 2. Влияние ингибитора арабиногалактановых белков реагента Ярива на рост и морфогенез в каллусных культурах гречихи татарской
      • 3. 5. 3. Электронно-микроскопическое изучение клеток морфогенного каллуса гречихи татарской при действии реагента Ярива
      • 3. 5. 4. Влияние реагента Ярива на фосфорилирование белков in situ по остаткам тирозина

Актуальность исследований.

Культивируемые клетки растений выделяют в питательную среду большое количество разнообразных соединений, многие из которые жизненно необходимы для пролиферации клеток и сохранения их морфогенетических потенций. Например, установлено, что активация деления в суспензионных культурах при переносе на новую среду зависит от плотности культуры: чем ниже начальная плотность культуры, тем дольше лаг-фаза (Sakano et al., 1995), а в некоторых случаях культивирование при низкой плотности вызывает апоптоз (McCabe et al., 1997). Напротив, добавление кондиционированной среды позволяет клеткам пролиферировать и при низкой плотности культивирования (Bellincampi, Morpurgo, 1987; Bellincampi, Morpurgo, 1989; Huang et al., 1990). Вероятно, в кондиционированной среде накапливаются определенные факторы, которые поддерживают жизнеспособность клеток и позволяют им делиться при низкой плотности культивирования. Ни один из известных до сих пор гормонов не способен заменить собой кондиционированную среду. «Факторы кондиционирования» объединяют широкий класс разнообразных молекул. К ним относятся: арабиногалакгановые белки (McCabe et al., 1997; Toonen at al., 1997), липохитоолигосахариды (Dyachok et al., 2002), олигосахариды (Schroder et al., 1998), пептиды (Matsubayashi, Sakagami, 1996; Kobayashi et al., 1999b). Установлено, что факторы кондиционирования могут как стимулировать, так и ингибировать эмбриогенный потенциал и развитие соматических зародышей in vitro (Gavish et al., 1992; Toonen at al., 1997; Maes et al., 1997; Kobayashi et al., 1999b). В связи с этим питательная среда может рассматриваться как экстраклеточный компартмент клетки, а динамика секреции молекул — как важная составляющая общего метаболизма культуры, оказывающая влияние на дифференцировку клеток и морфогенез in vitro.

Сравнительное исследование динамики секреции и состава молекул, секретируемых культурами с различным морфогенным потенциалом, может быть одним из подходов для выявления соединений, регулирующих морфогенетическую активность клеток.

Цель и задачи исследований.

Цель проводимых исследований заключалась в определении роли внеклеточных полимеров в процессах роста и морфогенеза в культурах клеток гречихи татарской Fagopyrum tataricum (L.) Gaertn. с различным морфогенным потенциалом. Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачии:

1. Проследить динамику содержания внеклеточных полимеров (белков и полисахаридов) в ходе культурального цикла.

2. Сравнить спектры внутриклеточных белков, поверхностных белков и белков из среды культивирования морфогенного и неморфогенного каллусов и выявить характерные особенности.

3. Проследить динамику спектра поверхностных белков морфогенного каллуса в ходе пассажа.

4. Определить влияние ингибитора везикулярной секреции брефельдина, А на процесс воспроизводства проэмбриональных клеточных комплексов в морфогенном каллусе гречихи.

5. Установить качественный и количественный состав секретируемых арабиногалактановых белков в каллусных и суспензионных культурах гречихи татарской.

6. Выявить влияние ингибитора арабиногалактановых белков реагента Ярива на рост и морфогенез в каллусных культурах гречихи татарской.

Положения, выносимые на защиту.

1. Количество внеклеточных белков и полисахаридов существенно выше в морфогенных культурах гречихи татарской, чем в неморфогенных культурах. Динамика спектра внеклеточных белков и гликопротеинов в морфогенных культурах связана с процессом образования и развития проэмбриональных клеточных комплексов.

2. Спектр внеклеточных белков и гликопротеинов у морфогенных культур более разнообразен, чем у неморфогенных.

Секреция белков необходима для воспроизводства ПЭКК в морфогенных культурах гречихи татарской.

Количество и спектр секретируемых арабиногалактановых белков существенно различается у морфогенных и неморфогенных культур гречихи татарской. Морфогенные культуры секретируют в 30−100 раз больше арабиногалактановых белков, чем неморфогенные. Спектр внеклеточных АГБ морфогенных культур содержит 2 полипептида, а неморфогенных только 1 полипептид.

Арабиногалактановые белки, выделяемые морфогенными культурами гречихи татарской участвуют в воспроизводстве ПЭКК.

127 ВЫВОДЫ.

1. Было обнаружено, что в морфогенных культурах гречихи татарской количество секретируемых белков и полисахаридов значительно выше (в среднем в 510 раз), по сравнению с неморфогенными. В ходе пассажа морфогенного каллуса наблюдается два выброса полимеров в среду культивирования: на 2−4-е сут. и на 1618-е сут. культивирования, которые предшествуют формированию ПЭКК. В неморфогенном каллусе увеличение содержания внеклеточных полимеров наблюдается постепенно в ходе пассажа, а максимум сдвинут к стационарной фазе развития культуры. При этом оба типа каллуса выделяют больше полисахаридов, чем белков.

2. Установлено, что спектр секретируемых белков существенно отличается у морфогенного и неморфогенного каллусов гречихи татарской. Спектр секретируемых белков и гликопротеинов был более разнообразен у морфогенного каллуса (15 полипептидов) по сравнению с неморфогенным (8 полипептидов). В спектре поверхностных белков морфогенного каллуса были выявлены полипептиды, увеличение содержания которых коррелировало с появлением и ростом ПЭКК.

3. Впервые показано, что ингибирование экстраклеточной секреции белков брефельдином, А приводит к нарушению формирования ПЭКК, а восстановление секреторной активности каллуса коррелирует с процессами образования ПЭКК. Полученные данные свидетельствуют о тесной связи процессов экстраклеточной секреции белков и поддержания эмбриогенного состояния культивируемых клеток.

4. В спектре внеклеточных белков каллусных культур гречихи татарской были выявлены АГБ. Количество АГБ, секретируемых морфогенным каллусом, было значительно выше (в 30−100 раз) по сравнению с неморфогенным. У морфогенного каллуса было выявлено наличие двух внеклеточных АГБ с молекулярной массой 91 до 116 кДа, а у неморфогенного — только одного АГБ с молекулярной массой 116 кДа.

5. При изучении действия специфического ингибитора АГБ реагента Ярива на каллусные культуры гречихи татарской было обнаружено, что реагент Ярива не оказывает влияния на рост неморфогенного каллуса, в то время как существенно ингибирует пролиферацию клеток, воспроизводство ПЭКК, геммогенез и соматический эмбриогенез в морфогенном каллусе.

6. Ингибирование образования ПЭКК под действием высокой дозы реагента Ярива (250 мкМ) объясняется не только связыванием АГБ, секретируемых в среду культивирования, но и активацией гибели поверхностных, секретирующих клеток, а также нарушением функциональной активности нижележащих эмбриогенно-компетентных клеток.

7. Впервые было обнаружено, что обработка морфогенного каллуса гречихи татарской 250 мкМ реагента Ярива приводит к изменению уровня фосфорилирования растворимых белков по остаткам тирозина в клетках морфогенного каллуса, что может свидетельствовать об участии АГБ в регуляции сигнальных каскадов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В процессе развития растения клетки делятся, растут, дифференцируются, стареют и, в конечном счете, умирают. На разных этапах своей жизнедеятельности они взаимодействуют с другими клетками, постоянно «оценивая» и корректируя свою роль в системе целого организма. Межклеточное взаимодействие жизненно необходимо для координированной экспрессии генов и осуществления процессов, приводящих к клеточной дифференциации, морфогенезу, развитию и росту многоклеточных организмов. В отличие от клеток животных, растительные клетки, за исключением некоторых примеров, не способны к передвижению. Поэтому определяющую роль в их судьбе играет позиционный принцип, согласно которому индивидуальная клетка может изменить судьбу своего развития, если она будет помещена в окружение клеток, детерминированных на выполнение другой программы развития. Таким образом, изолированная клетка растения не имеет своего индивидуального предопределенного пути развития, а зависит от позиционной информации, которую она получает от других клеток. В системе целого растения все клетки зависят друг от друга, влияют друг на друга и дифференцируются согласно их позиции. В растениях межклеточная коммуникация осуществляется через плазмодесмы и клеточные стенки. Транспорт регуляторных молекул (гормонов, транскрипционных факторов и других регуляторных белков, олигосахаринов и др.) может быть как симпластным, так и апопластным. Благодаря плазмодесмам клетки объединяются в симпластные домены (наиболее хорошо изученные — слои апикальной меристемы побега) и координированно делятся, дифференциируются и растут. Координированное развитие клеток в симпластных доменах во многом регулируется (вероятно, концентрационно-зависимым способом) определенными транскрипционными факторами и другими белками, которые транспортируются через плазмодесмы. Эти транскрипционные факторы могут работать трансцеллюлярно: синтезироваться в одних клетках, а функционировать в других. Пул регуляторных молекул апопласта, вероятно, в значительной степени определяется процессами экзоцитоза и модификации клеточных стенок. Установлено участие внеклеточных молекул в регуляции различных морфогенетических программ: зиготическом эмбриогенезе, гистогенезе трахеогенезе), ризогенезе, росте пыльцевых трубок и др. Тем не менее, механизмы действия экстраклеточных факторов изучены крайне слабо, что в первую очередь объясняется сложностью выделения активных компонентов апопласта в количествах, необходимых для биохимического анализа.

Культивируемые клетки растений выделяют в питательную среду большое количество разнообразных соединений, многие из которых вовлечены в регуляцию роста и морфогенеза in vitro. Среду культивирования можно рассматривать как часть апопласта культивируемых клеток. Выделение внеклеточных молекул из среды культивирования, где они могут накапливаться в значительных количествах, технически более легкая процедура, чем выделение внеклеточных молекул из апопласта. Важно отметить, что морфогенные и неморфогенные культуры имеют разные количественные и качественные «наборы» внеклеточных молекул, что позволяет говорить о тесной связи процессов экстраклеточной секреции с морфогенной способностью клеток и использовать сравнительный анализ для выделения и идентификации новых биологически-активных соединений.

Проведенные нами исследования выявили не только количественные и качественные различия в составе экстраклеточных соединений морфогенных и неморфогенных культур гречихи, но и показали, что выбросы молекул в среду культивирования клетками морфогенного каллуса корррелируют с дифференциацией клеток — циклическим воспроизводством проэмбриональных клеточных комплексов (ПЭКК). В наших экспериментах нарушение процессов экзоцитоза с помощью ингибитора везикулярной секреции брефельдина, А подавляло формирование ПЭКК, что свидетельствует о непосредственном участии серкетируемых белков в воспроизводстве ПЭКК. Нам удалось показать, что увеличение содержания некоторых внеклеточных полипептидов связано с процессами воспроизводства ПЭКК, и важным представляется их дальнейшая идентификация. Существенным результатом наших исследований было обнаружение участия арабиногалактановых белков в дифференциации ПЭКК, что подтверждает мнение об АГБ как о молекулах, вовлеченных в регуляцию соматического эмбриогенеза. В задачу наших исследований не входило детальное изучение внеклеточных полисахаридов. Тем не менее, их количественное преобладание в среде культивирования по сравнению с белками, а также динамика их выбросов в среду культвирования указывают на их важное функциональное значение.

Обнаруженная нами обедненность внеклеточных белков неморфогенных культур по сравнению с морфогенными при незначительных качественных отличиях их внутриклеточных белков свидетельствует о серьезных нарушениях в межклеточной коммуникации этих культур и позволяет рассматривать неморфогенные культуры как мутантные клоны, специализированные к быстрой пролиферации при определенных условиях культивирования.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , В.А. Фермент нероксидаза / В. А. Андреева. М: Наука. — 1988. — 130 с.
  2. , Т.Б. Хлебное зерно. Атлас / Т. Б. Батыгина Л.: Наука. — 1987.- 103 с.
  3. , Л.В. Биологический морфогенез / Л. В. Белоусов. М.: Изд-во МГУ. -1987.-338 с.
  4. , И.Я. Спектрофотометрический анализ в органической химии / И. Я. Берпштейп, Ю. П. Каминский.-Л.: Наука. 1975.-230 с.
  5. , В.М. Формирование организмов па земле / В. М. Бурень, И. В. Бурень // Труды Арцстотелевской академии формы. Пушкин. — 1999. Т.1. — 121 с.
  6. , Р.Г. Индукция морфогенеза в культуре тканей растения / Р. Г. Бутенко // В книге: Гормональная регуляция онтогенеза растений. М.: Наука. — 1984.-С. 42−54.
  7. , Р.Г. Клеточные и молекулярные аспекты морфогенеза растений in vitro / Р. Г. Бутепко // I Чайлахяповские чтения. Пущипо. — 1994. — С.7−26.
  8. Полинентидный состав каллусов гречихи татарской (Fagopyrum tataricum L.) Gaertn с различным морфогенным потенциалом / Е. И. Галеева, Н. Н. Максютова, И. А. Тарчевский, Н. И. Румянцева // Доклады РАН. 2001.- С.235−241.
  9. Биометрия / II.B. Глотов, Л. А. Жнвотовский и др. Л.: Изд-во ЛГУ. — 1982. — 263 с.
  10. , Е.А. Реализация морфогенного потенциала гшюкотилей гречихи культурной Fagopyrum esculentum Moench. в зависимости от способа регенерациирастений in vitro: Авторефереат дисс. канд. биол. наук: 03.00.12. / Е.А.
  11. Гумерова- Казанский институт биохимии и биофизики КПЦ РАН. Казань., -2003. — 24 с.
  12. , А. Практическая химия белка / А. Дарбре М.: «Мир». — 1989. — 621 с.
  13. , Ю.И. Балланс эндогенных фитогормонов в незрелых зародышах компетентной и некомпетентной к соматическому эмбриогенезу линий кукурузы / Ю. И. Долгих, Т. Н. Пустовойтова, Н. Т. Жданова // Физиология растений. 1999. -Т.46.-С.861−864.
  14. , Ю.И. Сомаклональная изменчивость растений и возможности ее практического использования (па примере кукурузы): Автореферат дисс.. на соискание стсп. докт.бнол.наук: 03.00.12. Ю.А. Долгих- Институт физиологии растений РАН. М., — 2005. — 50 с.
  15. Методы биохимического исследования растений / А. И. Ермаков, В. В. Арасимович, П. П. Ярош, Ю.В.и др. Л.: Агропромиздат. — 1987. — 430 с.
  16. , И.П. Регуляция начальных этапов эмбриогенеза у высших растений / Ермаков И. П., Матвеева Н. П. // Физиология растений. 1994. — Т.41. — С.467−477.
  17. , В.Б. Пролиферация клеток в растениях. / В. Б. Иванов.- М. -1987. 217 с. Деп. в ВИНИТИ.
  18. , В.Г. Морфогенез и молекулярно-биологический анализ растений. / В. Г. Конарев.- СПб. 1998. — 375 с. Деп. в ВИНИТИ растениеводства
  19. Копертех, J1.F. Нативные фитогормоны экспланта и морфогенез пшеницы in vitro / Копертех Л. Г., Бутенко Р. Г. // Физиология растений. 1995. — Т.42.- С.555−559.
  20. , Ю.А. Особенности каллусогенеза и морфогенеза в культуре тканей различных видов гречихи: Автореф. Дисс.. канд. биол. наук.: 03.00.12. Ю. А. Костюкова. Казанский институт биохимии и биофизики КНЦ РАН. Казань. -2000. — 20 с.
  21. , Н. Н. Морфогенез в культуре изолированных пыльников: роль фитогормонов / Н. Н. Круглова, В. Ю. Горбунова, П. А. Куксо // Успехи совр. биол. -1999. -Т. 119.-С. 567−577.
  22. , Н.Н. Морфогенез в культуре пыльников пшеницы: эмбриологический подход / Н. Н. Круглова. Уфа. Гилем. 2001. — 202 с.
  23. , В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 3. каллусообразование in vitro / Кунах В. А. // Биополимеры и клетка. -1997. -Т.13. -С.362−371.
  24. , Г. Ф. Биометрия / Г. Ф. Лакин. М.: Высшая школа. — 1990. -163 с.
  25. , В. В. Особенности формирования клеточной стенки изолированными протопластами высших растений / В. В. Лозовая, — Казань: КИБ АН СССР. 1987.-126с.
  26. Влияние генотипа растений на регенерационные процессы / Л. А. Лутова, Л. В. Бондаренко, И. С. Бузовкина, Е. А. Левашина, О. Н, Тиходеев, Л. Т. Ходжайкова, Н. В. Шарова, С. О. Шишкова // Генетика. -1994. -Т.30. С. 1065−1074.
  27. Влияние салициловой кислоты на белковый состав каллусов гречихи татарской Fagopyrum tataricum с различной спсобностью к морфогенезу / Н. Н. Максютова, Е. И. Галеева, Н. И. Румянцева, Л. В. Викторова // Биохимия. 2005. — Т.70. — С .390 396.
  28. , А.О. Реализация морфогенетического потенциала растительных организмов / Марченко А. О. // Успехи соврем, биологии. 1996. — Т.116. — С.306−319.
  29. Экспрессия генов в эмбриогенезе // Морозова, Н. М. Семя: Мир и семья-95 / Морозова Н.М. С. Пб., -1997. — Гл16. — С. 605−607.
  30. , В.В. Физиология растений / В. В. Полевой. М.: Высш. шк. — 1989. -464 с.
  31. В.М., Матусевич Л. Г., Селиверстова Т. С. Сравнение кальций-пектатного и спектрофотометрического методов анализа пектиновых веществ // Химия древесины.- 1982.- № 2.- С.108−113.
  32. , В.В. Пероксидаза как компонент антиоксидантной системы живых организмов / В. В. Рогожин. С.Пб. Гиорд. 2004, — 240 с.
  33. Гемицеллюлозы зерна злаков и ферменты, катализирующие их расщепление / Н. А. Родионова, J1.B. Капрельянц, П. В. Середницкий, АЛО. Килимник // Прикл. биохимия и микробиология.- 1992. Т.28.- С.645−665.
  34. Н. И., Сергеева Н. В., Хакимова J1. В. и др. Органогенез и соматический эмбриогенез в культуре двух видов гречихи // Физиол. растений.- 1989.- Т.36.-№ 1.- Р. 187−194.
  35. , Н. И. Морфогенез в культуре тканей гречихи: теоретические и прикладные аспекты: Автореферат дисс.. канд. биол. наук: 03.00.12 / Н. И. Румянцева Казанскиий институт биологии КНЦ РАН. Казань. — 1990.- 29 с.
  36. Особенности морфогенеза в длительно культивируемых каллусах гречихи / Н. И. Румянцева, В. В. Сальников, Н. В. Федосеева, В. В. Лозовая // Физиология растений. -1992. Т.39. — С.143−151.
  37. Особенности лигнификации клеточных стенок каллусов гречихи, различающихся по способности к морфогенезу / Н. И. Румянцева, А. И. Валиева, Н. А. Самохвалова и др. // Цитология. 1998. -Т.40. — С. 835−844.
  38. , И. А., Марченко Г. Н. Биосинтез и структура целлюлозы / И. А. Тарчевский, Г. Н. Марченко.- М.: Наука. 1985.- 279 с.
  39. , И.А. Сигнальные системы клеток растений / И. А. Тарчевский: М.: Наука.-2002.-212 с.
  40. , О. А., Румянцева Н. И. Морфологические и физиологические особенности каллусных и суспензионных культур растений / О. А. Тимофеева, Н. И. Румянцева. Казань.: Издательство КГУ. — 1998. — 30 с.
  41. , А.И. Раздельное определение гексоз и пентоз при помощи о-толуидинового реагента / Усов А. И., Яроцкий С. В. // Известия АН СССР, сер. Химическая. -1974. № 4. — С. 877−880.
  42. Размножение сельскохозяйственных культур in vitro II Хасси, Г. Биотехнология сельскохозяйственных растений. / Хасси Г. -М., 1987. Гл. 8. С. 105−133.
  43. Влияние генетических характеристик исходных растений на морфогенный потенциал каллусных клеток кукурузы / В. Г. Чернышева, Ю. И, Долгих, З. Б. Шамина, Р. Г. Бутенко // Докл. АН СССР. 1988. — Т.300. — С.227−229.
  44. Изменчивость по качественным и количественным признакам в потомстве растений регенерантов кукурузы / Т. Н. Чеченева, Е. А. Ларченко, В. В. Моргун,
  45. B.А. Труханов // Физиология и биохимия культурных растений. 1990.- Т.22.1. C.542−550.
  46. , Е.И. Транспорт белков в клетках растений / Шарова Е. И. // Физиология растений. 2002. — Т.49.- С.286−301.
  47. Agostini, Е. Production of peroxidases dy hairy roots of Brassica napus / E. Agostini, M.S. de Forchetti, H.A.Tigier // Plant Cell, Tissue and Organ Cultures. -1997. V.47. -P.177−182.
  48. Ammirato, P. V. Some effects of the environment on the development of embryos from cultured free cells / Ammirato P. V., Steward F. C. // Bot. Gaz. -1971. V. 132. — P. 149 158.
  49. Embryogenesis // Ammirato, P. V. Handbook of Plant Cell Culture / Evans D. A. -New-York., 1983. Ch.7. — P. 82−123.
  50. Armstrong, C.L. Improve tissue culture responce of an elite maize inbread through backcross breeding and identification of chromosomal regions important for
  51. Ф regeneration by RFLP Analyses / C.L. Armstrong, J. Romero-Stevenson, Т.К. Hodges
  52. Theor. Appl. Genet. 1992. — V.84. — P.755−762.
  53. Asamizu, T. Pectic polysaccharides in carrot cells growing in suspension culture / T. Asamizu, N. Nakayama, A. Nishi // Planta.- 1984.- V.160.- P.469−474.
  54. Extracellular polysaccharides from shaken liquid cultures of Zea mays. / A. Bacic, S.F.ф Moody, J.A. McComb et al. //Aust J Plant Physiol. 1987. — V.14. — P.633−641.
  55. DcAGPl, a secreted arabinogalactan protein, is related to a family of basic proline-rich proteins / T.C. Baldwin, C. Domingo, T. Schindler et al. // Plant Mol. Biol. 2001. -V.45. — P. 425−435.
  56. Balen, B. Protein and Glycoprotein Patterns Related to Morphogenesis in Mammillaria gracillis PfeifT. / B. Balen, J. Milo, M. Krsnik-Rasol // Tissue Culture, Food Technol.
  57. Biotechnol. 2002. — V.40. — P.275−280.
  58. Cloning of a cDNA encoding DNA topoisomerase I in Daucus carota and expression analysis in relation to cell proliferation / A. Balestrazzi, I. Toscano, G. Bernacchia et al. // Gene. 1996. — V. l83. — P. 183−190.
  59. Spatial expression of DNA topoisomerase I genes during cell proliferation in Daucus carota / A. Balestrazzi, G. Bernachia, L. Pitto et al. // Eur.J. Histochem. 2001. — V.45 -P. 31−38.
  60. F-actin-dependent endocytosis of cell wall pectins in meristematic root cells: insights from brefeldin A-induced compartments / F. Baluska, A. Hlavacka, J. Samaj // Plant Physiol. 2002. — V.130. — P.422−431.
  61. Baker, A. Protein targeting and translocation- a comperative survey / A. Baker, C.P. Kaplan, M.R. Pool // Biol.Rev. 1996. — V.71. — P.673−702.
  62. Evidence suggesting protein tyrosine phosphorylation in plants depends on the developmental conditions / E. Barizza, F. Lo Schiavo, M. Terzi et al. // FEBS Letters. -1999.-V.447.-P.191−194.
  63. Battey, N.H. The control of exocytosis in plant cells / Battey N.H., Blackbourn H.D. // New Phytol. 1993. — V.125. — P.307−338.
  64. Exocytosis and endocytosis / N.H. Battey, N.C. James, A.J. Greenland et al. // Plant Cell. 1999. — V. l 1. — P.643−659.
  65. Blakely, L.M. Cell dynamic studies on the perecycle of radish seedling roots / Blakely L.M., Evans T.A. //Plant Sci. Lett. 1979. — V.14. — P.79−83.
  66. Belanger, K.D. Membrane recycling occurs during asymmetric tip growth and cell plate formation in Fucus distichus zygotes / Belanger, K.D., Quatrano, R.S. // Protoplasma. -2000a.-V.212.-P.24−37.
  67. Bellincampi, D. Evidence for the presence of a second conditioning factor in plant cell cultures / Bellincampi D., Morpurgo G. // Plant Sci. 1989. — V.65. — P.125−130.
  68. Berger R.G. Isozymes in nutrient medium of suspension-cultured apple cells (Malus sylvestris Mill.) / R.G. Berger, F. Drawert, C. Kunz // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1988. — V.15. — P.137 — 147.
  69. Peroxidase isozymes in normal and habituated calli of sugar beet during transfer from light to darkness / M.A. Bernal, B. Bisbis, M.A. Pedreno. et al. // Biologia Plantarum. -1997. V.39. — N.2. — P.161−168.
  70. Betina, V. Biological effects of the antibiotic brefeldin A (decumbin, cyanein, ascotoxin, synergisidin): a retrospective / Betina V. // Folia Microbiol. 1992. — V.37. — P.3−11.
  71. Effect trifluraline and colchicine on the extracellular matrix surface networks during early stages of direct somatic embryogenesis of Drossera rotundifolia L. / M. Bobak, A. Hlavacka, M. Ovecka et al. // J. Plant Physiol. 1999. — V. l55. — P.387−392.
  72. Transport of virally expressed gren fluorecent protein throught the secretory pathway in tobacco leaves is inhibited by cold shock or brefeldine A / P. Boevink, B. Martin, K. Oparka, S. Cruz et al. // Planta. 1999. — V.208. — P.392−400.
  73. Prediction of glycosylphosphatidylinositol-anchored proteins in Arabidopsis: a genomic analysis / G.H. Borner, D.J. Sherrier, T.J. Stevens et al., // Plant Physiol. 2002. -V.129. — P .486−499
  74. Bouget, F.Y. Position dependent control ofcell fate in the Fucus embryo: role of intercellular communication. / F.Y. Bouget, F. Berger, C. Brownlee // Development. -1999. V.125. — P.1999−2008.
  75. Bradford, M.M. A rapid and sensitive methods for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding / Bradford M.M. // Anal. Biochem. 1976. — V.72. — P.248−254.
  76. Brandau, K. Differences in compounds released by embryogenic and non-embryogenic suspension cultures of Euphorbia pulcherrima. / K. Brandau, W. Priel, R. Lieberei // Biologia Plantarum. 1997. — V.39. — P. l 13−124.
  77. Brett, C.T. Physiology and biochemistry of plant cell wall.- / Brett C.T., Waldron E.K.- Eds. Black M., Cahapman E.J.- London.: Unwin Hyman. 1990.- 194 p.
  78. Brian, W. Stimulation of pectinmethylesterase activity of cultured tobacco pith by indole acetic acid / Brian W., Newcomb E.H. // Physiol. Plant. 1994.- V.7. — P.290−297.
  79. Role of extensin peroxidase in tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) seedling growth / M.D. Brownleader, J. Hopkins, A. Mobasheri et al. // Planta. 2000. — V.210. — P.668−676.
  80. Brummell, D.A. Cell wall metabolism in fruit softening and quality and its manipulation in transgenic plants /Brummell D.A., Harpster M.H. // Plant Mol Biol. 2001. — V.47. -P.311−40.
  81. The structure of plant cell walls VI. A survey of the walls of suspension-cultured monocots / D. Burke, P. Kaufman, M. McNeil et al. // Plant Physiol. 1974. — V.54. -P.109−115.
  82. Glycoproteins // Butters, T.D. Encyclopedia of life sciences / Butters T.D. London., -2002. Ch.5. P.245−270.
  83. Camacho, P. Calreticulin inhibits repetitive intracellular Ca2+ waves / Camacho P., Lechleiter J.D. // Cell. 1995. — V.82. — P.765−771.
  84. Carpita, N.C. Structural models of primary cell walls of flowering plants: consistency of molecular structure with the physical properties of the walls during growth / Carpita N.C., Gibeaut D.M. // Plant J. 1993. — V.3.- P. 1−30.
  85. Ca2+, annexins, and GTP modulate exocytosis from maize root cap protoplasts / A.D. ^ Carroll, C. Moyen, P. van Kesteren et al. // Plant Cell. 1998. — V.10. — P.1267−1276.
  86. Catala, C. Auxin regulation and spatial localization of an endo-l, 4-beta-D-glucanase and a xyloglucan endotransglycosylase in expanding tomato hypocotyls / C. Catala, J.K. Rose, A.B. Bennett // Plant J. 1997. — V.12. — P.417−26.
  87. Removal of the fibrillar network surrounding Cichoium somatic embryos using cytoskeleton inhibitors: analysis of proteic components / A. Chapman, S. Helleboid, A.-S. Blervacq // Plant Sci. 2000. — V.150. — P. 103−114.
  88. Arabinogalactan-proteins in Cichorium somatic embryogenesis: effect of P-glucosyl Jariv reagent and epitope localization during embryo development / A. Chapman, A-S.
  89. Blervaq, J. Vasseur // Palnta. 2000. — V.211. — P.305−314.
  90. Transcriptional Profiling Reveals Novel Interactions between Wounding, Pathogen, Abiotic Stress, and Hormonal Responses in Arabidopsis / Y. H. Cheong, H.-S. Chang, R. Gupta // Plant Physiology. 2002. — V.129. — P.661−677.
  91. Chugh A., Gene expression during somatic embryogenesis recent advances / Chugh A., Khurana P. // Current Science. — 2002. — V.83. — P.715−730.
  92. Clarke, A.E. Form and function of arabinogalactans and arabinogalactan-proteins / A.E. Clarke, R.L. Anderson, В .A. Stone //Phytochemistry. 1979. — V.18. — P.521−540.
  93. Classen, B. Characterization of an arabinogalactan-protein isolated from pressed juice of Echinacea purpurea by precipitation with the b-glucosyl Yariv reagent / B. Classen, K. Witthohn, W. Blaschek // Carbohydrate Research. 2000. — V.327. — P.497−504.
  94. Cleary, A.L. Plasma membrane-cell wall connections: roles in mitosis and cytokinesis ^ revealed by plasmolysis of Tradescantia virginiana leaf epidermal cells / Cleary A.L. //
  95. Protoplasma. 2001. — V.215. — P.21−34.
  96. Extracellular protein patterns of grapevine cell suspension in embryogenic and non-embryogenic situation / P. Coutos-Thevenot, O. Maes, T. Jouenne et al. // Plant Science. 1992.-V.86.-P.137−145.
  97. Manipulation of the morphogenetic pathways of tobacco explants by oligosaccharins / A.G. Darvill, D.J. Gollin, P. Chelf et al. // Nature. 1985. — V.314. — P.615−617.
  98. A carrot somatic embryo mutant is rescued by chitinase / A. J. de Jong, J. Cordewener, F. Lo Schiavo // The Plant Cell. 1992. — V.4. — P.425−433.
  99. Rhizobium lipo-oligosacharides rescue a Daucus carota somatic embryo variant. / A. J. de Jong, R. Heidstra, H.P. Spaink et al. // Plant Cell. 1993. — V.5. — P.615−620.
  100. Gum heteropolysaccharide and free redusing mono- and oligisaccharides of Anadenanthera colubrina / C.L. Delgobo, P.A.Gorim, C. Jines et al. // Phytochemistry. -1998. V.47. — P.1207−1214.
  101. Carrot somatic ebryogenesis depends on the phytohormone-controlled presense of correctly glycosylated extracellular proteins / S.C. de Vries, H. Booij, R. Janssens et al. // Genes and Development. 1988. — V.2. — P.462−476.
  102. Acquisition of embryogenic potential in carrot cell suspension cultures / S.C. de Vries, H. Booij, P. Meyerink et al. // Planta. 1988. — V.176. — P.205−211.
  103. Dharmasiri, S. The role of regulated protein degradation in auxin response / Dharmasiri S., Estelle M. // Plant Molecular Biolog. 2002. — V.49. — P.401−409.
  104. Dodeman, V.L. Zygotic embryogenesis versus somatic embryogenesis. / V.L. Dodeman, G. Ducreux, M. Kreis // J. Exp. Bot. 1997. — V.48. — P.1493−1509.
  105. Dolgikh, Yu.I. The content of hormones in the embryos of inbreds competent and incompetent for morfogenesis / Yu.I. Dolgikh, N.T. Zhdanova, T.N. Pustovoitova // Maize Genetics Cooperation Newsletter. 1999. — V.73. — P.71.
  106. Donnelly, S. R. Annexins in the secretory pathway / Donnelly S. R., Moss S. E. // Cell. Mol. Life Sci. 1997. — V.53. — P.533−538
  107. Dong, J.Z. Endochitinase and b-l, 3-glucanase genes are developmentally regulated during somatic embryogenesis in Picea glauca / Dong J.Z., Dunstan D.I. // Planta. -1997.-V.201.-P.189-/194.
  108. Multiple cDNAs encoding the esk-kinase predict transmembrane and intracellular ф enzyme isoforms / E.M. Douville, D.E.Afar, B.W. Howell et al. // Mol Cell Biol. -1992.- V.12. P.2681−2689.
  109. Dudits, D. Molecular and cellular approaches to the analysis of plant embryo development from somatic cells in vitro / D. Dudits, L. Bogre, J. Gyorgyey // J. Cell Sci.- 1991.- V.99. P.475−484.
  110. Endogenous Nod-factor-like signal molecules promote early somatic embryo development in Norway spruce / J.V. Dyachok, M. Wiweger, L. Kenne et al. // Plant Physiol. 2002. — V.128. — P.523−533.
  111. Egertsdotter, U. Importance of arabinogalactan proteins for the development of somatic embryos of Norway spuce (Picea abies). / Egertsdotter U., von Arnold S. // Physiologia Plantarum. 1995. — V.93. — P.334−345.
  112. Emons, A.M.C. A freeze fracture analysis of the surface of embryogenic and non-embryogenic suspension cells of Daucus carota / A.M. Emons, J.W. Vos, H. Kieft // Plant Sci. 1992. — V.87. — P.85−97.
  113. Felix, G. Developmental and hormonal regulation of p-l, 3-glucanase in tobacco. / Felix G., Meins F. //Planta. 1986. — V.167. — P.206−211.
  114. N-glycans harboring the lewis a epitope are expressed at the surface of plant cells / A.C. Fitchette-Laine, V. Gomord, M. Cabanes // Plant J. 1997. — V.12. — P.1411−1417.
  115. Fowler, J.E. Plant cell morphogenesis: plasma membrane interactions with the cytoskeleton and cell wall / Fowler J.E., Quatrano R.S. // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. ф 1997. V. 13. — P.697−743.
  116. Fry, S.C. Phenolic components of the primary cell wall and their possible role in hormonal regulation of growth / Fry S.C. // Planta. 1979. — V.146. — P.343−351.
  117. Fry, S.C. Feruloylated pectins from the primary cell wall: their structure and possible functions / Fry S.C. // Planta. 1983. — V. 153. — P. 111−123.
  118. Fry, S.C. Cross-linking of matrix polymers in the growing cell walls of angiosperms / Fry S.C. //Annu.Rew.Plant Physiol. 1986. — V.61. — P. 165−186.
  119. Fry S. C. Intracellular feruloylation of pectic polysaccharides /Fry S. CM Planta. -1987.-V.171.-P.205−211
  120. Fry, S.C. The growing plant cell wall: chemical and metabolic analysis. New York.: Longmann scientific and technical., 1988. — P.333.
  121. Fry, S. C. Roles of primary cell wall in morphogenesis. / Fry S.C. In: Progress in ^ plant cellular and molecular biology./ Eds: H.J.Nijkamp Kluwer Academic Publishers.- 1990. P.504−513.
  122. Fry, S.C. Polysaccharide-modifying enzymes in the plant cell wall / Fry S.C. // Ann. Rev. Physiol. Mol. Biol. 1995. -V.46. — P.497−520.
  123. Fry, S.C. The growing plant cell wall: chemical and metabolic analysis, 2nd Impression. / Fry S.C. Caldwell, NJ, USA: Blackburn Press. — 2000. — 28 p.
  124. Fujimura, Т. Mode of action of 2,4-D and zeatin on somatic embryogenesis in a carrot cell suspension culture / Fujimura Т., Komamine A. // Z. Pflanzenphysiol. 1980. -V.99.-P.1−8.
  125. Activity of cell wall degradation associated with differentiation of isolated mesophyll ф cells of Zinnia elegans into tracheary elements. / H. Fukuda, M. Sugiyama, K.
  126. Kakegawa et al. // Planta. 1995. — V.215. — P.177−184.
  127. Galston, A.W. Polyamines as modulator of plant devwlopment/ Galston A.W. // Bio Sciense. 1983. — V.33. — P.382−388.
  128. Gamborg, O. L. Plant cell cultures. I. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells / O.L. Gamborg, R.A. Miller, K. Ojima // Exp. Cell Res. 1968. — V. 50. — P.151−158.
  129. Structural analysis of the carbohydrate moiety of arabinogalactan-proteins from stigmas and styles of Nicotiana alata / A. M. Gane, D. Craik, S.L. Munro et al. //ф Carbohydr. Res. 1995. — V.277. — P.67−85.
  130. Gao, M. Yariv reagent treatment induces programmed cell death in Arabidopsis cell cultures and implicates arabinogalactan protein involvement / Gao M., Showalter A.M. // Plant J. 1999. — V. l9. — P.321−332.
  131. Two bean cell wall proteins more abundant during water deficit are high in proline and interact with a plasma membrane protein / B.I. Garcia-Gomez, F. Campos, M. Hernandez et al. // Plant J. 2000. — V.22. — P.277−88
  132. Habitation and vitrification of plants cultured in vitro a reciprical relatioship./ T. Gaspar, C. Kevers, M. Crevecoeur et al. // Wiss.Z.Humboldt-Univ. Berlin. MathemNaturwiss R. -1992. V.41. — P.35−40.
  133. Gavish, H. Suppresion of somatic embryogenesis in Citrus cell cultures by extacellular proteins / H. Gavish, A. Vardi, R. Fluhr // Planta. 1992. — V. l86. — P.511• 5,7.
  134. Gaynor, E.C. COP I in ER/Golgi and intra-Golgi transport: Do yeast COP I mutants point the way? / E.C. Gaynor, T.R. Graham, S.D. Emr // Biocnim.Biophys.Acta. 1998. — V.1404.-P.33−51.
  135. Gens, J.S. Arabinogalactan-protein and wallassociated kinase in a plasmalemmal reticulum with specialized vertices / J.S. Gens J.S., M. Fujiki, B.G. Pickard // Protoplasma. 2000. — V.212. — P. l 15−134.
  136. Transcriptional profiling reveals novel interactions between wounding, pathogen, abiotic stress, and hormonal responces in Arabidopsis / Y.H. Cheong, H.S. Chang, R. Gupta et al. // Plant Physiol. 2002. — V.129. — P.661−677.
  137. Giroux, R.W. Characterization of somatic embryogenesis-related cDNAs from alfalfa ф сMedicago sativa L.) / Giroux R.W., Pauls K.P. // Plant Mol. Biol. 1997. — V.33. — P.393.404.
  138. Auxin regulates SCF-TIR1-dependent degradation of AUX/IAA proteins / W. M. Gray, S. Kepinski, D. Rouse et al. // Nature. 2001. — V.414. — P.271−276.
  139. Green, С. E. Plant regeneration from tissue cultures of maize / Green С. E., Phillips # R. L. // Crop Sci. 1975. — V.15. — P. 417−421.
  140. Guan, Y. Binding of arabinogalactan proteins by Yariv phenylglycoside triggers wound-like responses in arabidopsis cell cultures / Guan Y., Nothnagel E. // Plant Physiol. 2004. — V.135. — P.1346−1366.
  141. Hale, A. D. Polysaccharide production in liquid cell suspension cultures of Phleum pratense L. / A.D. Hale, C.J. Pollock, S.J. Dalton // J. Cell Sci. 1987. — V.85. — P.35−40.
  142. Halperin, W. Population density effects on embryogenesis in carrot-cell cultures / Halperin W. // Exp. Cell Res. 1967. — V.48. — P.170−173.
  143. Hammond, C. Quality control in the secretory pathway / Hammond C., Helenius A. // Curr. Opin.Cell. Biol. 1995. — V.7. — P.523−529.
  144. A secreted peptide growth factor, phytosulfokine, acting as a stimulatory factor of carrot somatic embryo formation / H. Hanai, T. Matsuno, M. Yamamoto et al. // Plan Cell Physiol. 2000a. — V.41. — P.27−32.
  145. Hari, V. Effect of cell density changes and conditioned media on carrot cell embryogenesis / Hari V. // Z.Pflanzenphysiologie. 1980. — V.96. — P.227−231.
  146. Structure of a sugar chain of a protease inhibitor isolated from Barbados pride seeds / S. Hase, S. Koyama, H. Daiyasu//J. Biochem. 1986. — V.100. — P. l-10.
  147. Hassan, A.M. Calreticulin is the major Ca2+ storage protein in the endoplasmic reticulum of the pea plant (Pisum sativum) / A.M. Hassan, C. Wesson, W.R. Trumble. // Biochem Biophys Res Commun. 1995. — V.211. — P.54- 59.
  148. Isolation and characterization of cDNA clones for plant cyclins /S.Hata, H. Kouchi,
  149. Ф I. Suzuka. et al. // EMBO J. 1991. — V.10. — P.2681−88.
  150. Hillestad, A. Structural studies of water-soluble glycoproteins from Cannabis sativa L./ A. Hillestad, J.K. Wold, P. S. Paulsen // Carbohydr Res. 1977. — V.57. — P. 135−44.
  151. A 37-kDa peroxidase secreted from liverworts in response to chemical stress / T. Hirata, Y. Ashida, H. Mori et al. // Phytochemistry. 2000. — V.55. — P.197−202
  152. Hirt, H. Multiple roles of MAP kinases in plant signal transduction / Hirt H. // Trends. Plant Sci. 1997. — V.2. — P. 11−15.
  153. Extracellular P-l, 3-glucanases are induced during early somatic embryogenesis in Cichorium / S. Helleboid, G. Bauw, L. Belingheri et al. // Planta. 1998. — V.205.• P.56−63.
  154. Hernandez-Fernandez, M. Inheritance of somatic embryogenesis in alfalfa (Medicago sativa L.) / Hernandez-Fernandez M" Christie B.R. // Genome. 1989. — V.32. — P.318−321.
  155. Homann, U. Ca 'independent and Ca GTP-binding protein controlled exocytosis in plant cell / Homann U., Tester M. // Proceedings / Natl. Acad. Sci. USA. 1997. — V.94. — P.6565−6570.
  156. Extracellular polysaccharides produced by tuberose callus / Y. Honda, H. Inaoka, A. Takei et al. //Phytochemistry. 1996. — V.41. — P. 1517−1521.
  157. Ни, C. Y. Further observations on Ilex embryoid production / C.Y. Hu., J.D. Ochs, F.M. Mancini // Z. Pflanzenphysiol. 1978. — V.89. — P.41−49.
  158. Hunter, T. Protein kinases and phosphatases: the yin and yang of proteinphosphorylation and signaling /Hunter T. // Cell. 1995. — V.80. — P.225−236.
  159. Indrianto A. Assessment of various stresses and carbohydrates for their effect on the induction of embryogenesis in isolated wheat microspores / A. Indrianto, E. Heberle-Bors, A. Touraev // Plant Sci. 1999. — V.143. — P.71−79.
  160. Characterisation of extracellular polysaccharides from suspension cultures of members of the Poaceae / M. Ian, K. Sims, K. Middleton et al. // Planta. 2000. -V.210. — P.261−268.
  161. The effects of acidic oligosaccharides to tissue culture of aspen and Japanese black pine / K. Ishi, T. Mohri, I. Kinoshita et al. // Trans. Jpn. For. Sot. 1993. — V.104. -P.609−610.
  162. Ishii, T. Inhibition of gibberellin-induced elongation growth of rice by feruloyl oligosaccharides/ Ishii Т., Nishijima T. // Plant Cell Physiol. 1995. — V.36. — P.1447−1451.
  163. Ishii, T. Oligosaccharides generated by hydrolysis of the borate rhamnogalactouronan II comblex from sugar beet / Ishii Т., Kaneko S.// Phytochemistry. 1998.-V.49.- P. 119 501 209.
  164. Isumi, S. Secretion of an esterase from the cultured suspension cell of marchantia polymorpha / S. Isumi, Y. Yamamoto, T. Hirata T. // Phytochemistry. 1995. — V. 38. -P. 831−833.
  165. Endogenous hormones levels during somatic embryogenesis in Medicago falcata / A. Ivanova, M. Velcheva, A. Denchev et al. // Physiol. Plant. 1994. — V.92. — P.85−89.
  166. High levels of non-methylesterified pectins and low levels of peripherally located pectines in loosely attached non-embryogenic callus of carrot / H. Iwai, A. Kikuchi, T. Kobayashi et al. // Plant Cell Rep. 1998. — V. 18. — P.561−566.
  167. Jackson, C.L. Turning no ARF: the Sec7 family of guanine-nucleotide exchange factora / Jackson C.L., Casanova J.E. // Trends Cell Biol. 2000. — V.10. — P.60−67.
  168. Jacobs, T.W. Why do plant cell divide? / Jacobs T.W. // Plant Cell. 1997. — V.9. -P. 1021−1029.
  169. Jauh, G.Y. Localization of pectins and arabinogalactanproteins in lily (Lilium longiflorum L.) pollen tube and style, and their possible roles in pollination / Jauh G.Y., Lord E.M. // Planta. 1996. — V.199. — P.251−261.
  170. Kaldenhoff, R. Gene activation in the suspension-cultured cells of Arabidopsis thaliana during blue-light-dependent plantlet regeneration / R. Kaldenhoff, U. Henningsen, G. Richter // Planta. 1994. — V.195. — P. 182−187.
  171. Production of acidic xylo-oligosaccharides by a family 10 endoxylanase from Thermoascus aurantiacus and use as plant growth Regulators / P. Katapodis, A. Kavarnou, S. Kintzios et al. // Biotechnol. Lett. 2002. — V.24. — P.1413−1416.
  172. Enzymic Production of Aldopentauronic Acid and Use as a Bioregulator in Plant ф Airlift Bioreactors / P. Katapodis, S. Knitzios, J. Konstas et al. // Journal of Bioscienceand Bioengineering. 2003. — V.95. — P.630−632.
  173. Invilvement of phenolic esters in cell aggregation of suspension cultured rice cells / Y. Kato, H. Yamanouchi, K. Hirata et al. // Plant Physiol. 1994. — V. l04. — P. 147−152.
  174. A gene expressed in the globular-stage of somatic embryogenesis encodes elongation-factor la in carrot / R. Kawahara, S. Sunabory, H. Fukuda et al. // Eur. J. Biochem. 1992. — V.209. — P. 157−162.
  175. Kawaguchi, K. A novel tetrasaccharide, with a structure similar to the terminal sequence of an arabinogalactan-protein, accumulates in rice anthers in a stage-specific• manner / K. Kawaguchi, N. Shibuya, T. Ishii // Plant J. 1996. — V.9. — P.777−785.
  176. FASCIATA genes for chromatin assembly factor-1 in Arabidopsis maintain the cellular organization of apical meristems / H. Kaya, K. Shibahara, K. Taoka et al. // Cell. -2000.-V.104.-P.131−142.
  177. Kerr, E. M. Pre-formed xyloglucans and xylans increase in molecular weight in three distinct compartments of a maize cell-suspension culture / Kerr E. M., Fry S. C. // Planta. 2003. — V.217. — P.327 — 339.
  178. Keyes, G. J. Genetic variation in tissue cultures of red clover / G.J. Keyes, G.B. Collins, N.L. Taylor//Theor. Appl. Genet. 1980. — V.58. — P.265−271.
  179. Clonal analysis of the Arabidopsis root confirms that position, not lineage, determines cell fate / C. Kidner, V. Sundaresan, K. Roberts et al. // Planta 2000. -V.211. — P.191−199.
  180. A histidine-rich extensin from Zea mays is an arabinogalactan protein / M.J. Kieliszewski, A. Kamyab, J.F. Leykam et al. I I Plant Physiol. 1992. — V.99. — P.536−547.
  181. The helix-loop-helix protein Id2 is overexpressed in human pancreatic cancer / J. Kleeff, T.A. Ishiwata, A. Kumbasar et al. // J. Clin. Invest. 1998. — V.102. — P. 16 621 673.
  182. Klimaszewska, K. Maturation of somatic embryos of Pinus strobus is promoted by a ф high concentration of gellan gum / Klimaszewska K., Smith D. // Physiol. Plant. -1997.1. V.100. P.949−957.
  183. Knetsch, M. Z. W. Abscisic acid induces mitogen-activated protein kinase activation in Barley aleurone protoplasts / M. Z. W. Knetsch, M. Wang, В. E. Snaaz-Jagalska, Heimovaara-Dijkstra // Plant Cell. 1996. — V.8. — P. 1061−1067.
  184. Knox, J.P. A set of cell surface glycoproteins forms an early marker of cell position but not cell type, in the root apical meristem of Daucus carota L./ J.P. Knox, S. Day, K. Roberts // Development. 1989. — V.6. — P.47−56
  185. Developmentally regulated epitopes of cell surface arabinogalactan-proteins and their ф relation to root tissue pattern formation / J.P. Knox, P. J. Sinsteade, J. Peart, et al. //
  186. J. 1991.-V.1.-P.317−326.
  187. Physiological properties of inhibitory conditioning factor (s), inhibitory to somatic embryogenesis, in high-density cell cultures of carrot / T. Kobayashi, K. Higashi, T. Saitou et al. //Plant Science. 1999 b. — V.144. — P.69−75.
  188. Phytosulfokine-a, a peptidyl plant growth factor, stimulates cell division that leads to somatic embryogenesis in carrot./ T. Kobayashi, C-H. Eun, H. Hanai et al. // J. Exp Bot. 1999.-V.50.-P.1123−1128.
  189. Komalavilas, P. Arabinogalactan-proteins from the suspension culture medium and plasma membrane of rose cells / P. Komalavilas, J-K. Zhu, E.A. Nothnagel // Journal of Biological Chemistry. 1991. — V.266. — P.15 956−15 965.
  190. Extracellular Matrix Surface Network During Plant Regeneration in Wheat Anther Culture / R. Konieczny, J. Bohdanowicz, A. Z. Czaplicki et al. // Plant Cell, Tissue and Organ culture 2005. — V.83. — P.201 — 208.
  191. Kontos, F. Production and secretion of a-galactosidase and endo-P-mannanase by Carob (Ceratonia siligua L) endosperm protoplasts / Kontos, F., Spyropoulos, C.G., // J. Exp. Botany. 1995. — V.46. — P.577−583.
  192. Purification and characterization of three chutinases and one 1,3-glucanase ф accumulating in the medium of cell suspension cultures of barley (Hordeum vulgare L.) /
  193. K.M. Kragh, S. Jacobsen, D. Mikkelsen et al. // Plant Science. 1991. — V.76. — P.65−77.
  194. Characterization of chitinases able to rescue somatic embryos of the temperature-sensitive carrot variant ts 11 / K.M. Kragh, T. Hendriks, A. J. De Jong A.J. et al. // Plant Mol. Biol. 1996. — V.31. — P.631−645.
  195. Kreis, Т.Е. COPs regulating membranne traffic / Т.Е. Kreis, M. Lowe, R. Pepperkok // Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 1995. — V. l 1. — P.677−706.
  196. Somatic embryogenesis of Cyclamen persicum in liquid medium / M. Kreuger, E. Postma, V. Brouwer et al. // Physiol Plant. 1995. — V.94. — P.605−612
  197. Kreuger, M. Arabinogalactan proteins and plant differentiation / Kreuger M., van Hoist G.J. // Plant Mol Biol. 1996. — V.30. — P. 1077−1086.
  198. Kurosaki, F. Secretion of chitinase from cultured carrot cell treated whith fungal mycellar walls / F. Kurosaki, N. Taskiro, A. Nishi //Physiol. Mol. Plant Pathology -1987. V.31. — P.211−216.
  199. Laemmli, U. K. Cleavage of the structural proteins during assembly of the bacteriophage T4./ Laemmli U. К.// Nature. 1970. — V.227. — P 680−685.
  200. Langan, K.L. Cell surface arabinogalactan-proteins and their relation to cell ^ proliferation and viability / Langan K.L., Nothnagel E.A. // Protoplasma. 1997. -V.l96.- P. 87−98.
  201. Laurie, S. The role of protein kinases in the regulation of plant growth and development / Laurie S., Halford N. G. // Plant Growth Regulation 2001. — V.34. -P.253−265.
  202. Lease, K. Challenges in understanding RLK function / K. Lease, E. Ingham, J.C. Walker // Curr. Opin. Plant Biol. 1998. — V.l. — P.388−392.
  203. Carrageenan oligosaccharides enhance stress-induced microspore embryogenesis in Brassica oleracea var. italica / C. Lemonnier-Le Penhuizic, C. Chatelet, B. Kloareg et al. // Plant Science. 2001. — V. l60. — P. 1211−1220.
  204. Immunocytochemical evidence of calreticulin-like protein in pollen tubes and styles of Petunia hybrida Hort / M. Lenartowska, K. Karas, J. Marshall, R. Napier et al. // Protoplasma. 2002. — V.219. — P.23−30.
  205. N-glycoprotein biosyntesis recent development and future trends / P. Lerouge, M. Cabanes-Macheteau, C. Rayon et al. // Plant. Mol. Biol. 1998. — V.38. — P.31−48.
  206. Li, Z. Molecular cloning and characterization of calreticulin, a calcium-binding protein involved in the regeneration of rice cultured suspension cells / Li Z., Komatsu S. // Eur. J. Biochem. 2000. — V.267. — P.737−745.
  207. The reticuloplasmin calreticulun is released into the medium by carrot cell cultures /М. Libik, Z. Miszalski, L. Przywara et al. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. -2003.-V.75.- P.109- 116.
  208. Phytohormone regulation of isoperixidases in Catharantus roseus suspension cultures / F. Limam, K. Chahed, N. Ouelhazi, R. Ghrir et al. // Phytochemistry. 1998. — V.49. -P.1219−1225.
  209. Expression cloning of the TGF-beta type II receptor, a functional transmembrane serine/threonine kinase /H.Y. Lin, X.F. Wang, E. Eaton et al. // Cell. 1992. — V.68. -P.775−785.
  210. Lindberg, R.A. Dual-specificity protein kinases: will any hydroxyl do? /R.A. Lindberg, A. M. Quinn, T. Hunter // Trends Biochem Sci. 1992. — V.17. — P. l 14−119.
  211. Lindquist, S. The heat shock proteins / Lindquist S, Craig EA // Annu Rev Genet. -1988. -V.22.-P.631−677.
  212. Liners, F. Acetyl- and methyl-esterification of pectins of friable and compact sugar-beet calli: Consequences for intercellular adhesion / F. Liners, T. Gaspar, P. Van Cutsem // Planta. 1994. — V.192. — P.545−556.
  213. LoSciavo, L.A. Tunicamycin affects somatic embryogenesis but not cell proliferation of carrot / F. LoSciavo, L.A. Quesada-Allue, Z.R. Sung // Plant Sci. 1986. — V.44. -P.65−71.
  214. Loopstra, С.A. Purification and cloning of an arabinogalactan-protein from xylem of loblolly pine / C.A. Loopstra, J.D. Puryear, E.G. No // Planta. 2000. — V.210. — P.686−689.
  215. Callus cell wall phenolics and plant regeneration ability / V. Lozovaya, T. ф Gorshkova, E. Yablokova et al. // J. Plant. Physiol. 1996. — V.148. — P.711−717.
  216. Luan, S. Tyrosine phosphorylation in plant cell / Luan S. // Proceedings/ Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2002. — V.99. — P. 11 567−11 569.
  217. Lu, C. Somatic embryogenesis in Zea mays L. / Lu C., Ozias-Akins P. // Theor. Appl. Genet. 1982. — V. 62. — P. 109−112.
  218. Influence of extracellular proteins, proteases and protease inhibitors on grapevine somatic embryogenesis / O. Maes, P. Coutos-Thevenot, T. Jouenne// Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1997. — V.50. — P.97−105.
  219. Mandal, A. K. A. Factors affecting somatic embryogenesis from cotyledonary # explants of safflower / A.K.A. Mandal, S. Dutta Gupta, A.K. Chatterji // Biologia
  220. Plantarum. 2001. — V.44. — P. 503−507.
  221. O-acetylated xyloglucan in extracellular polysaccharides from cell-suspension cultures of Mentha / K. Maruyama, C. Goto, M. Numata // Phytochemistry. 1996. -V.41.-P. 1309−1314.
  222. Matsubayashi Y., Sakagami Y. Phytosulfokine pentapeptide that induce the proliferation of single mesophyll cells of Asparagus officinalis L. / Y. Matsubayashi Y., Y. Sakagami // Procedings/ Natl Acad Scie USA. 1996. — V.93. — P.7623−7627.
  223. Physiological relationships between auxin, cytokinin, and a peptide growth factor, phytosulfokine-a, in stimulation of asparagus cell proliferation / Y. Matsubayashi, A. Morita, E. Matsunaga et al. // Planta. 1999. — V.207. — P.559−565.
  224. Molecular cloning of cDNAs encoding the protein backbones of arabinogalactan-proteins from the filtrate of suspension-cultured cells of Pyrus communis and Nicotiana alata / S. L. Mau, C.G. Chen, Z. Y. Pu et al. // Plant J. 1995. — V.8. — P.269−281.
  225. Soluble signals from cell identified at the cell wall establish a developmental pathway in carrot / P.F. McCabe P. F, T.A. Valentine, L.S. Forsberg et al. // The Plant Cell. 1997. — V.9. — P. 2225−2241.
  226. A programmed cell death pathway activated in carrot cell cultured at low cell density ф / P.F. McCabe, A. L. Levine, P.J. Meijer et al. // Plant J. 1997. — V. 12. — P. 276−280.
  227. McCabe, P.F. Programmed cell death in cell cultures / McCabe P.F., Leaver C.J. // Plant Mol. Biol. 2000. — V.44. — P.359−368.
  228. Structure and function of the primary cell walls of plantsm / M. McNeil, A. G. Darvill, S. Fry et al. // Annu. Rev. Biochem. 1984. — V.53. — P.625−663.
  229. Identification of the human Lewis a carbohydrate motif in a secretory peroxidase from a plant cell suspension culture (Vaccinium myrtillus L.) / N.S. Melo, M. Nimtz, H. S. Conradt, Fevereiro P. S., Costa J. // FEBS Lett.1997. V.415. P.186−191.
  230. Calreticulin / M. Michalak, R.E. Milner, K. Burns et al. // Biochem.J. 1992. -ф V.285. — P.681−692.
  231. Regulation of indole-3-acetic acid biosynthetic pathways in carrot cell cultures / L. Michalczuk, D.M. Ribnicky, T.J. Cooke, et al. // Plant Physiol.-1992.-V. 100.-P. 13 461 353.
  232. Miller, S.G. Post-Golgi membrane traffic: brefeldin A inhibits export from distal Golgi compartments to the cell surface but not recycling /S.G.Miller, L. Carnell, H.H. Moore // J.Cell.Biol. 1992. — V. l 18. — P.267−283.
  233. Miyamoto, K. Sugar release from maize coleoptiles during auxin-, fiisicoccin- and acid-mediated elongation growth. / Miyamoto K, Schopfer P. //Journal of Plant Physiology. 1997. — V.150.- P.309−316.
  234. Mollard, A. Acacia Senegal cells cultured in suspension secrete a hydroxyproline-deficient arabinogalactan-protein / Mollard A, Joseleau J.P. // Plant Physiol Biochem1994.-V.32.-P.703 709.
  235. Montreuil, J. Glycoproteins. / J. Montreuil, J.F. Vliegenthart, H. Schachter. -Amsterdam.: Elsevier. -1995. 200 p.
  236. Moreno, O.A. Peroxidase activity in calluses and cell suspension cultures of radish Raphanus sativus var. Cherry Bell / O.A. Moreno, A. Oscar, R. Vazquez-Duhalt R. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1989. — V. l8. — 1989.
  237. Moreno, О. A. Extracellular accumulation of high specific-activity peroxidase by cell suspension cultures of cowpea / O.A. Moreno, R. Vazquez-Duhalt, H. Nolasco // Plant Cell Reports. 1990. — V.9. — P.147−150.
  238. Morimoto, R. The biology of heat shock proteins and molecular chaperones / R. щ Morimoto, A. Tissieres, C. Georgopoulos // New-York, Cold Spring Harbor Laboratory1. Press. 1994. 127 p.
  239. Nichols, B.J. SNAREs and membrane fusion in golgi apparatus / Nichols B.J., Pelham H.R.B. // Biochem. Biophys. Acta. 1998. — V.1404. — P.9−31.
  240. Niehrs, C. Purification and characterization of tyrosylprotein sulfotransferase /. Niehrs C., Huttner W.B. // EMBO J. 1990. — V.9. — P.352.
  241. Nielsen, K.A. Appearance of extracellular proteins associated with somatic embyogenesis in suspension cultures of barley / Nielsen K.A., Hansen I.B. // J. Plant Physiol. 1992. — V. -139. — P.489−497.
  242. Secretion of a 112 kDa phosphatase from the cultured suspension cells of liverworts / A. Nishizaki, A. Satake, L. Chen L. et al.// Chemical Letters. 1996. — V.52. — P.807−808.
  243. Nothnagel, E.A. Structural requirements for binding of phenulglycosides to the surface of protoplasnts / Nothnagel, E.A., Lyon, J.L. // Plant Physiol. 1986. — V.80. -P.91−98.
  244. Nothnagel, E.A. Proteoglycans and related components in plant cell / Nothnagel E.A. //Cytology. 1997. — V.174. — P. 195−291.
  245. Plant regeneration fron immature enbryo-derived calli of wheat isogenic lines / N., Omelianchuk, O.B. Dobrovolskaya, S.F. Koval et al. // Hereditas. 1992. — V. l 16. -P.311−314.
  246. Osuga, K. Cell density is an important factor for synchronization of the late stage of somatic embryogenesis at high frequency / K. Osuga, H. Kamada, A. Komamine A. // Plant Tissue Culture Lett. 1993. — V. l0. — P. 180−183.
  247. Ozias-Akins, P. Somatic embryogenesis in Arachis hypogaea L.: genotype comparison / P. Ozias-Akins, W.F. Anderson, C.C. Holbrook // Plant Sci. 1992. — V. 83.-P. 103−111.
  248. Ozolina, N.V. The dynamics of hormonal status of developing red beet root (Beta vulgaris L.) in correlation with the dynamics of sugar accumulation /N.V. Ozolina, Pradedova E.V., R.K. Saliaev // Izv Akad Nauk Ser Biol. 2005. — V. L — P.30−5.
  249. Proteins produced by barley microspores and their derived androgenic structures promote in vitro zygotic maize embryo formation / A. Paire, P. Devaux, C. Lafitte et al. // Plant Cell Tissue and Organ Culture. 2003. — V.73. — P.167−176.
  250. Identification of a novel contactin-associated transmembrane receptor with multiple domains implicated in protein-protein interactions / E. Peles, M. Nativ, M. Lustig et al. // EMBO J. 1997. — V.16. — P.978−988.
  251. Pelham, H.R.B. Intracellular membrane traffic: getting proteins sorted / Pelham H.R.B. // Philos. Trans.R.Soc.London.Biol.Sci. 1999. — V.354.- P.1471−1478.
  252. Pennell, R. I. Sexual development in the pea is presages by altered expression of arabinogalactan proteins / Pennell R. I., Roberts K. // Nature. 1990. — V.344. — P.547−549.
  253. Developmental regulation of a plasma membrane arabinogalactan protein epitope in oilseed rape flowers / R. I Pennell, L. Janniche, P. Kjellbom et al. // Plant Cell.- 1991. -V.3. P.1317−1326.
  254. Identification of transitional cell state in the developmental pathway to carrot somatic embriogenesis / R.I. Pennell, L. Janniche L., G.N. Scofield et al. // J. Cell Biol. -1992.-V.l 19.- P.1371−1380.
  255. Peskan, T. Identification of low-density triton X-100 insoluble plasma membrane microdomains in higher plants / T. Peskan, M. Westermann, R. Oelmuller // Eur. J.Biochem. 2000. — V.267. — P.6989−6995.
  256. Phillips, A. Gibberellins in Arabidopsis / Phillips A. // Plant Physiol Biochem. -1998.-V.36.- P. l 15−124.
  257. In situ localization and in vitro induction of plant COPI-coated vesicles / P. Pimpl, A. Movafeghi, S. Coughlan et al. // Plant Cell. 2000. — V12. — P.2219−2236.
  258. Synthesis of extracellular proteins in embryogenic and non-embryogenic cell cultures of alfalfa / G.B. Pouisen, G. Frugis, M. Albrechtsen et al. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. -1996. V.44. — P.257−260.
  259. Qi, W. Gum arabic glycoprotein is a twisted hairy rope: a new model based on O-galactosylhydroxyproline as the polysaccharide attachment site / W. Qi, C. Fong, D.T.A. Lamport // Plant Physiol. 1991. — V.96. — P.848−855
  260. Coffee bean arabinogalactans: acidic polymers covalently linked to protein R.J. Redgwell, D. Curti, M. Fischer et al. // Carbohydr. Res. 2002. — V.337. — P.239−253.
  261. Resta, R. Ecto-enzyme and signaling functions of lymphocyte CD73./ R. Resta, Y. Yamashita, L.F. Thompson // Immunol. Rev. 1998. — V. l61. — P.95−109.
  262. Reynolds, J. F. Asexual embryogenesis in callus cultures of palms / Reynolds J. F., Murashige T. // In Vitro. 1979. — V.15. — P.383−387.
  263. Expression of an Arabidopsis lectin kinase receptor genrs, LeRK-al, is induced during senescense, wounding, and in response to ologogalacturonic acids / C. Riou, C. Herve, V. Pacquit, et al. // Plant Physiol. Biochem. 2002. — V.40. — P.431−438.
  264. Reevaluation of the effects of brefeldin A on plant cells using tobacco bright yellow 2 cells expressing Golgi targeted green fluorescent protein and COPI antisera / C. Ritzenthaler, A. Nebenfuhr, A. Movafeghi // Plant Cell. 2002. — V.14. P. 237−261
  265. Robinson D.G. Post-Golgi, pre-vacuolar compartments / D.G. Robinson, J.C. Rogers, G. Hinz // Annu. Plant Rev. 2000. — V.6. — P.270−298.
  266. Effects of Yariv phenylglycoside on cell wall assembly in the lily pollen tube / S.J. Roy, G. YJauh, P.K. Hepler et al. // Planta. 1998. — V.204. — P.45058.
  267. Uncoupling secretion and tip growth in lily pollen tubes: evidence for the role of calcium in exocytosis / S.J. Roy, T.L. Hodaway-Clarke, G.R. Hackett et al. // Plant J. -1999. V. l9. — P.379−386
  268. Rubin, C. S. Phosphorylation-dephosphorylation of enzymes / Rubin C.S., Rosen O. Ф M. // Annu. Rev. Biochem. 1975. — V.44. — P.831−883.
  269. Arabinogalactan proteins in embryogenic and non-embryogenic callus cultures of Euphorbia pulcherrima / K. Saare-Surminski, W. Preil, J.P. Knox et al. // Physiologia Plantarum. 2000. — V.108. — P.180−187.
  270. Tissue-specific expression of Pal8, a putative lipid transfer protein gene, during embryo development in Norway spruce (Picea abies) /I. Sabala, M. Elfstrand., I. Farbos et al. // Plant Mol.Biol. 2000. — V.42. — P. 461−478.
  271. Sakurai, M. Induction of anthocyanin accumulation in rose cell suspension-cultured cells by conditioned medium of strawberry suspension cultures / M. Sakurai, Y. Ozeki, ф T. Mori // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1997. — V.50. — P.211−214.
  272. Developmental SEM observations on an extracellular matrix in ebryogenic calli of Drossera rotundifilia and Zea mays / J. Samaj, M. Bobak, A. Blchova et al. // Protoplasma. 1995. — V.185. — P.205−211.
  273. Auxine-controlled glycoprotein release into the medium of embryogenic carrot cells / S. Sato, H. Kamada, H. Harada et al. // Plant Physiol. 1986. — V.81.- P.931−933.
  274. Satoh, S. Purification of GP57, an auxin-regulated extracellular glycoprotein of carrots and its immunocytochemical localization in dermal tissues / Satoh S., Fujii T. // Planta. 1988. — V. 175. — P.364−373.
  275. Scales, S.J. Coat proteins regulating membrane traffic/ S. J. Scales, M. Gomez, Т.Е. Kreis // Int Rev Cytol. 2000. — V.195. — P.67−144.
  276. Scherrier, D.J. Glycosylphosphatidylinositol-anchored cell-surface proteins from ^ Arabidopsis / D.J. Scherrier, T.A. Prime, P. Dupree. // Electrophoresis. 1999. — V.20.1. P. 2027−2035.
  277. GPI-anchors on arabinogalactanproteins: implications for signalling in plants / C.J. Schultz, P. Gilson, D. Oxley // Trends Plant. Sci. 1998. — V.3. — P.426−431.
  278. The classical arabinogalactan protein gene family of Arabidopsis / C.J. Schultz, K.L. Johnson, G. Currie G. et al. // Plant Cell. 2000. — V. l2. — P. 1751−1768.
  279. Using genomics resources to guide research directions: the arabinogalactanprotein gene family as a test case / C.J. Schultz, M.P. Rumsewicz, K.L. Johnson et al. // Plant Physiol. 2002. — V.129. — P.1448−1463.
  280. Biochemical and molecular characterisation of xyloglucan endotransglycosylase from ripe kiwifruit /R. Schroder, R.G. Atkinson, G. Langenkamper et al. .// Planta. -1998. V.204. — P.242−251.
  281. Serpe, M.D. Effects of Yariv phenylglycosides on Rosa cell suspensions: evidence for the involvement of arabinogalactanproteins in cell proliferation / Serpe M.D., Nothnagel E.A. // Planta. 1994. — V. 193. — P.542−550.
  282. Serpe, M.D. Heterogeneity of arabinogalactan-proteins on the plasma membrane of Rose cells / Serpe M.D., Nothnagel E.A. // Plant Physiol. 1996. — V.112. — P.1261−1271.
  283. Serpe M.D., Nothnagel E.A. Arabinogalactan-proteins in the multiple domains of the plant cell surface / Serpe M.D., Nothnagel E.A. // Adv Bot Res. 1999. — V.30. — P.207−289.
  284. Accumulation of extracellular proteins bearing unique proline-rich motifs in intercellular spaces of the legume nodule parenchyma / D.J. Sherrier, G.S. Taylor, K.A. Silverstein et al. // Protoplasma. 2005. — V.225. — P.43−55
  285. Shiozaki, K. Stress-activated protein kinase pathway in cell cycle control of fission yeast / Shiozaki K., Russell P. // Methods Enzymol. 1997. — V.283. — P.506−520.
  286. Polyamines as biomarkers for plant regeneration capacity: improvement of regeneration by modulation of polyamine metabolism in different genotypes of indica rice / F. Shoeb, J.S. Yadav, S. Bajaj. et al. // Plant Science. 2001. — V.160. — P.1229−1235.
  287. Showalter, A.M. Structure and function of plant cell wall proteins / Showalter A.M. // Plant Cell. 1993. — V.5. — P.9−23.
  288. Showalter, A.M. Arabinogalactan-proteins: structure, expression and function / Showalter A.M.// Cell. Mol. Life Sci. 2001. — V.58. — P.1399−1417.
  289. Shukla, A. Cytokinin metabolism and cetokinin oxidase and adenine phosphoribosyktransferase activity in male sterile Brassica napus leaves / Shukla A., Sawhney V.K. // Phytochemistry. 1997. — V.44. — P.377−381
  290. Characterization of exstacellular polysaccharides from suspension cultures of members of the Poaceae / I.M. Sims, K. Middleton, A.G. Lane et al. // Planta. 2000. -V.210.-P. 261−268.
  291. Immunological comparison of membrane-associated and secreted arabinogalactans-proteins in rice and carrot / M. Smallwood, E.A. Yates, G.T. Willats et al. // Planta. -1996.-V. 198.-P.452−459.
  292. Smith, D. L. Somatic proembryo production from excised, wounded zygotic carrot embryos on hormone-free medium: evaluation of the effects of pH, ethylene and activated charcoal / Smith D. L., Krikorian A. D. // Plant Cell Rep. 1990. — V.9. -P. 468−470.
  293. Smith, R.D. Plant protein phosphatases /Smith R.D., Walker J.C. // Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. 1996. — V.47. — P.101−125.
  294. A family of cycline D homologs from plants differentially controlled by growth regulators and containing the conserved retinoblastoma protein interaction motif / R. Soni, J.P. Carmichael, Z. H. Shah et al. // Plant Cell. 1995. — V.7. — P.85−103.
  295. Souter, M. Polarity and signalling in plant embryogenesis / Souter M., Lindsey K. // J.Exp.Bot. 2000. — V.51. — P. 971−983.
  296. Interaction of the Arabidopsis polycomb group proteins FIE and MEA mediates their common phenotypes / C. Spillane, C. MacDougall, C. Stock //Curr. Biol. 2000. — V.10. — P.1535−1538.
  297. Spiro, R.G. Protein glycosylation: nature, distribution, enzymatic formation, and disease implications of glycopeptide bonds / Spiro R.G. //Glycobiology. 2002. V.12. P. 43.
  298. Stacey, N.J. Patterns of expression of the JIM4 arabinogalactan-protein epitope in cell cultures and during somatic embryogenesis in Daucus carota L. / N.J. Stacey, K. Roberts, J.P. Knox //Planta. 1990. — V.180. — P.285−292.
  299. Dynamic changes in cell surface molecules are very early events in the differentiation of mesophyl cells from Zinnia elegans into tracheary elements / N.J. Stacey, K. Roberts, N.C. Carpita et al.// Plant J. 1995. — V.8. — P.891−906.
  300. Stejskal, J. Comparative analysis of some isozymes and proteins in somatic and ф zygotic embryos of soybean (Glycine max L. J / Stejskal J., Griga M. //Plant Physiology.- 1995.- V. 146.- P.497−502.
  301. Steele, C. Golgi membrane destribution in higher plants cells. / Steele C. // Ph D. Thesis / Oxford Brookes University. 1997. — P. 10.
  302. Stephan, D. Some aspects of peroxidase synthesis by cultured peanut / Stephan D., Van Huystee R.B. // Z.Phlanzenphysiol. 1981. — B.101.- S.313−317.
  303. Molecular and biochemical markers for embryogenic potential and regenerative capacity of barley (Hordeum vulgare L.) cell cultures / S. Stirn, A.P. Mordhorst, S. Fuchs et al. //Plant Sci. 1995. — V.106. — P.195−206.
  304. Stone, J.M. Plant protein kinase families and signal transduction. /Stone J. M, Walker J.C. // Plant Physiol. 1995. — V.108. — P.451−457
  305. Plant growth-promoting oligosaccharides produced from tomato waste/ T. Suzuki, K. Tomita-Yokotani, H. Tsubura et a. // Bioresour. Technol. 2002.- V.81. — P.91−96.
  306. Isolation of putative glycoprotein gene from early somatic embryo of carrot and its possible involvement in somatic embryo development / K. Takahata, M. Takeuchi, M. Fujita, et al. // Plant Cell Physiol. 2004. — V.45. — P. 1658−68.
  307. Expression and function of cell wall-bound cationic peroxidase in asparagus somatic embryogenesis / H. Takeda, T. Kotake, N. Nakagawa et al. // Plant Physiol. 2003. -V.131. — P.739−8521.
  308. Tamer, M. Protease from callus and cell suspension cultures of Onopordum turcicum (Compositae) / Tamer M., Mavituna F. // Biotechnology Letters. 1996. — V.18. — P.361 -366.
  309. Tan, L. Glycosylation motifs that direct arabinogalactan addition to arabinogalactan-proteins / L. Tan L, J.F. Leykam J.F., M.J. Kieliszewski// Plant Physiol. 2003. — V.132. — P.1362−1369.
  310. Tchorbadjieva, M. An acidic esterase as a biochemical marker for somatic ф embryogenesis in orchardgrass (Dactylis glomerata L.) suspension cultures /
  311. Tchorbadjieva M., Odjakova. K. // Plant Cell Reports. 2001. — V.20. — P.28−33.
  312. Thiel, G. Exocytosis in plants / Thiel G., Battey N. // Plant Molecular Biology. 1988. -V.38.-P.111−125.
  313. Thompson, H.J.M. Stage-specific responses of embryogenic carrot cell suspension cultures to arabinogalactan protein-binding-glucosyl Yariv reagent / Thompson H.J.M., Knox J.P. // Planta. 1998. — V.205. — P.32−38.
  314. Promotive and inhibitory effects of diverse arabinogalactan proteins on Daucus carota L. somatic embryogenesis./ M.A.J. Toonen, D.L.Schmidt, A. Van Kammen //
  315. Planta. 1997. — V.203. — P.188−195.
  316. The Arabidopsis erecta gene encodes a putative receptor protein kinase with extracellular leucine-rich repeats / K.U. Torii, N. Mitsukawa, T. Oosumi et al. // Plant Cell.- 1996.- V.8. -P.735−746.
  317. Stress as a major signal controlling the developmental fate of tobacco microspores: towards a unified model of induction of microspore/pollen embryogenesis / A. Touraev, M. Pfosser, O. Vicente et al. // Planta. 1996. — V.200. — P. 144−212.
  318. Tran Thanh Van, K. Manipulation of the morphogenetic pathways of tobacco explants by oligosaccharins / K. Tran Thanh Van, P. Touhart, A. Cousson // Nature. -1985. V.314.-P.615−6 17.
  319. Sulphated lipooligosaccharide signals of Rhizobium meliloti elicit rootnodule organogenesis in alfalfa / G. Truchet, P. Roche, P. Lerouge et al. // Nature. 1991.1. V.351. P.670- 673.
  320. Ullrich, A. Signal transduction by receptors with tyrosine kinase activity /Ullrich A., Schlessinger J. // Cell. 1990. — V.61. — P.203−12.
  321. N-Acetylglucosamine and glucosamine-containing arabinogalactan proteins control somatic embryogenesis / A.J. Van Hengel, Z. Tadesse, P. Immerzeel et al. // Plant Physiol. 2001. — V.125. — P.1880−1890.
  322. Van Hoist, G-J. Quantification of arabinogalactan-protein in plant extracts by single radial gel diffusion / Van Hoist G-J., Clarke A.E. // Anal Biochem. 1985. — V.148. -P.446−450.
  323. Van Hoist, G.-J. Organ specific arabinogalactan-proteins of Licopersicon pernvianum (Mill.) demonstrated by crossed electrophoresis / Van Hoist G.-J., Clarke A. E. // Plant Physiol. 1986. — V.80. — P.786−789.
  324. Van Hoist, G.-J. Hydroxyproline glicosides in secretory arabinogalactan-proteins of Phaseolus vulgaris L. / Van Hoist G.-J., Klis F. M. // Plant Physiol. 1981. — V.68. -P.979−980.
  325. Vardi, A. Citrus cell culture: Isolation of protoplasts, plating densities, effect of mutagens and generation of embryos / A. Vardi, P. Spiegel-Roy, E. Galun // Plant. Sci. Lett. -1975. V.4. — P.231−236.
  326. Vasil, V. Somatic embryogenesis and plant regeneration from suspension cultures of pearl millet (Pennisetum americanum) / Vasil V., Vasil I. K. // Ann. Bot. 1981. — V. 47. — P.669−678.
  327. Ultrastructural chahches in cocount calluses associated with the acqusition of embryogenic competence / J.L. Verdeil, V. Hocher, C. Huet et al. .// Ann. Bot. 2001. -V.88. — P.9−18.
  328. Verhagen, S. A. Norway spruce somatic embryogenesis: high-frequency initiation from light-cultured mature embryos / Verhagen S. A., Wann S. R. // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 1989.-V.16.-P.103−111.
  329. Vesseire, P. Effects of conditioned media on the somatic embryogenesis of Hebea brasiliensis / P. Vesseire, F. Cailloux, A. Coudret // Plant Physiol. Biochem. 1994. -V.32. — P.57−576.
  330. Vieira, C.C. J. Fructans in callus of Gomphrena macrocephala St.-Hil./ C.C.J. Vieira C.C. J., M.R. Braga, R.C.L. Figueiredo-Ribeiro //Plant Cell, Tissue and Organ Culture. -1995.-V.42.-P.233−238.
  331. Developmental pathways of somatic embryogenesis. / S. Von Arnold, I. Sabala, P. Bozhkov et al. // Plant Cell Tissue Organ Cult. 2002. — V.69. — P.233−249.
  332. Propagation of Norway spruce via somatic embryogenesis / S. von Arnold, P. Bozhkov, D. Clapham et al. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2005. — V.81. -P.323−329.
  333. Walden, R. Triggering pathway in plant growth and development / R. Walden, A. Cordeiro, A.F. Tiburcio//Plant Physiol. 1997. — V. l 13. — P.1009−1013.
  334. Wallace, G. Phenolic components of the plant cell wall / Wallace G., Fry S. // Int.Rev.Cytology. 1993. — V. 36. — P.229−267.
  335. Walker, J.C. Isolation of cloned cDNAs to auxin-responsive poly (A)RNAs of elongating soybean hypocotyl /Walker J.C., Key J.L. // Proceedings/ Natl Acad Sci USA.-1982. V.79.-P.7185−7189.
  336. Weber, K. The reability of the molecular weight determination by dodecylsulphate gel electrophoresis / Weber K., Osborn M. // J. Biol. Chem. 1969. — V.244. — P.4406−4412.
  337. Targetting of active sililtransferase to the plant golgi apparatus / E.G.-T. Wee, D.J. Sherrier, T.A. Prime et al. // Plant Cell. 1998. — V.10. — P.1759−1768.
  338. Wende, G. O-feruloyated, o-acetyllated oligisaccharides as side chains of grass xylan / Wende G., Fry S. // Phytochemistry. 1997. — V.44. — P. 1011−1018.
  339. Williams, E.G. Somatic embryogenesis: Factors influencing coordinated behavoir of cell as an embbryogenic group / Williams E.G., Maherswaran G. // Ann.Bot. 1986. -V.57. — P.443−462.
  340. Willats, W.G.T. A role for arabinogalactan-proteins in plant cell expansion: evidence from studies on the interaction of P-glucosil Yariv reagent with seedlins of Arabidopsis thaliana / Willats W.G.T., Knox J.P. // Plant J. 1996. — V.9. — P.919−925.
  341. Wilms, F.H.A. Origin and development of floral buds in tobacco explants / Wilms F.H.A, Sassen M.M.A. // New Phytol. 1987. — V.105. — P. 57−65.
  342. Xu, N. Abscisic acid and osmoticum prevent germination of developing alfalfa embryos but only osmoticum maintains the synthesis of developmental proteins / N. Xu N, K.M. Coulter, J.L. Bewley // Planta. 1990. — V. l82. — P.382−390.
  343. Xu, Y. Association of calcium and calmodulin to peroxidase secretion and activation / Xu Y., van HuysteeR.B. //J. PlantPhysoil. 1993. — V.141. — P.141−146.
  344. Formation of embryogenic cell clumps from carrot epidermal cells is suppressed by 5-azacytidine, a DNA methylation inhibitor / N. Yamamoto, H. Kobayashi, T. Togashi, et al. // J Plant Physiol. 2005. — V. l62. -.P.47−54.
  345. Stimulatory effects of a novel peptidyl plant growth factor, phytosulfokine, on adventitious bud formation in Antirrhinum majus / G. Yang, S. Shen, T. Kobayashi et al. //Plant Biotechnol. 1999a. — V. l6. — P.231−234.
  346. Arabidopsis thaliana ECP63 encoding a LEA protein is located in chromosome 4 / H. Yang, T. Satiou, Y. Komeda et al. // Genetics. 1997. — V. l84. — P.83−88.
  347. Phytosulfokine, a peptide growth factor found in higher plants: its structure, functions, precursor and receptors / H. Yang, Y. Matsubayashi, H. Hanai et al. // Plant Cell Physiol. 2000a. — V.41. — P.825−830.
  348. Yariv, J. The interaction of glycosides and saccharides with antibody to the corresponding phenylazo glycosides / J. Yariv, M.M. Rapport, L. Graf // Biochem J. -1962. V.85. — P.383−388.
  349. Yariv J., Lis H., Katchalski E. Precipitation of arabic acid and someseed polysaccharides by glycosylphenylazo dyes. // Biochem J. 1967. V.105. P.10−20.
  350. Yinggen, Y. Somatic embryogenesis in Picea wilsonii. / Yinggen Y, Zhongchen G. / In: Jain MS, Gupta PG, Newton RJ (eds). Somatic Embryogenesis in Woody Plants. -1999.-V.4.-P.461−490.
  351. Yoshida, K. Dissociation of cortical cell walls and enhancement of cellulose activity during the emergence of callus from rice roots in the presence of 2,4-D / Yoshida K., Komae K. // Plant Cell Physiol. 1993. — V.34. — P.507−514.
  352. Biologically active oligosaccharides from pectins of Pisum sativum L. seedlings affecting root generation /О.А. Zabotina, N.N. Ibragimova, A.I. Zabotin et al. //Biochemistry (Moskow). 2002. — V.62. — P.227−232.
  353. Zhang G.F. Funcional compartmentation of the golgi apparatus of plant cell / Zhang G.F., Staehelm D.J. // Plant Physiol. 1992. V.99. P. 1070−1083.
  354. Tomato LeAGP-1 arabinogalactan protein purified from transgenic tobacco corroborates the Hyp contiguity hypothesis / Z.D. Zhao, L. Tan, A.M. Showalter et al. // Plant J. 2002. — V.31. — P.431−444.
  355. Zhu, J-K. Loss of arabinogalactan-proteins from the plasma membrane of NaCl-adapted tobacco cells / J-K.Zhu, R.A. Bressan, P.M.Hasegawa //Planta. 1993. — V. l90. — P.221−226.
  356. Автор выражает благодарность своим колегам, участвовавшим в проведении экспериментов: к.б.н. Мухитову А. Р., м.н.с. Лебедевой В. В., аспирантам Кузьминой А. В. и Камаловой Г. В.
  357. Автор выражает благодарность д.б.н., проф. Каримовой Ф. Г. за искреннюю поддержку и помощь в обсуждении результатов диссертационной работы.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!